JPS607363A - 抗原もしくは抗体の測定方法 - Google Patents

抗原もしくは抗体の測定方法

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JPS607363A
JPS607363A JP11673683A JP11673683A JPS607363A JP S607363 A JPS607363 A JP S607363A JP 11673683 A JP11673683 A JP 11673683A JP 11673683 A JP11673683 A JP 11673683A JP S607363 A JPS607363 A JP S607363A
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JP
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antibody
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Fumio Ishikawa
文雄 石川
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Sekisui Chemical Co Ltd
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    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/544Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being organic
    • G01N33/545Synthetic resin

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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 不発8Aは免疫測定法による新規な抗原もしくは抗体の
測定方法に関する。
免疫測定法とは、抗原(ハプテンを含む)で実験動物を
免疫して該抗原と特異的に結合する抗体を実験動物に作
らせ、この抗体と上記抗原との間の特異的な結合反応を
利用して、抗原または抗体を測定する方法である。
この測定法では、測定対象物である抗原もしくは抗体と
、試薬として用いる抗原または抗体とを抗原抗体反応さ
せるに際し、後者の抗原または抗体を酵素、放射性同位
元素、蛍光物質、不対電子をもつ化合物等で標識してお
き、抗原抗体反応した標識抗原もしくa標識抗体と、未
反応の標識抗原もしくは標識抗体の何れか一方の標識を
測定する。したがって、通常、抗原抗体反応した(Bo
und) 標識抗原または標識抗体と、未反応の(Fr
ee)標識抗原または標識抗体とを、分離(B/F分離
)することが必要とされる。
しかし、均一な溶液として抗原抗体反応を行なった場合
には、B/F9離が極めて繁雑となる。そこで、B/F
分離を容易にするため、抗原もしくは抗体を固体状の担
体に結合させ、こうして得られる同相化抗原もしくは固
相化抗体を用いることが知られている。例えば内径lχ
径程度毛細管自身を担体として毛細管内面に抗体を付着
せしめてB/F分離をしたり、スチレンビーズを担体と
して試験管内でB/F分離をしたりすることが行われて
いる。
しかしながら、111者は毛細管内面の表面積が小さく
固相化電が小さいので低a度域における測定対象物の定
量性が極めて悪いという欠点があり、後者は、試験管内
部の洗浄が不充分になFJ勝ちであシ又粒径の小さなビ
ーズを用いた場ある。
本発明は、上記測定法の現状に鑑み、筒便忙して、精度
が高く、従来の機器を用いることにより容易に自動化が
可能な抗原もしくは抗体の測定方法を提供することを目
的とするもので、その要旨は、免疫測定法による抗原も
しくは抗体の測定方法において、測定対象物と同様の抗
原もしくは抗体又は測定対象物と反応する抗体もしくは
抗原が同相化された担体が充填されたカラムに、該カラ
ム中の担体に測定対象物と同様の抗原もしくは抗体が同
相化された場合は、測定試料と、測定対象物と反応する
既知量の標識抗体もしくは抗原とを導入し、又は、該カ
ラム中の担体に測定対象物と反応する抗体もしくは抗原
が同相化された場合は、測定試料と、測定対象物と同様
の既知量の標識抗原もしくは抗体、又は、試αj定対象
物と反応する既知量の標識抗原もしくは抗体とを導入し
、上記担体に結合した標識抗体もしくは標識抗原の量を
担体に結合した状想で測定することを特徴とする抗原も
しくは抗体の測定方法に存する。
本発明において、測定対象物とは測定しようとする抗原
(ハプテンを含む)もしくけ抗体を意味し、測定対象物
と同様の抗原もしくは抗体とは、例えば人のインシュリ
ンを抗原として測定する場合の固相化抗体としては抗ヒ
トインシュリン抗体のみならずモルモット等に免疫して
得られた抗ヒトインシュリン抗体が使用可能なことから
明らかなように、測定対象物と同一の抗原もしくは抗体
又は測定対象物と類似の抗原性もしくは抗体活性を有す
る物質を意味する。
抗原もしくは抗体を(a有化するのに用いる担体の材質
は、抗原もしくは抗体を安定な状態で結合し得る限り何
等限定されず、その具体例としてはポリスチレン、ポリ
オレフィン、セルロース、’R性y カロース、ガラス
等が挙げられポリスチレンやセルロースC*にアルミ基
が導入された熱可塑性セルロース)等が多用される。又
、担体は、洗浄液が残溜しない点で無孔性のものが好ま
しく、その寸法形状は、固相化率を高めることが出来、
カラムに供給する液体の流速を早くし得る点で粒径0.
1%〜o、 s ″g程度のビーズや同程度の大きさの
フィルム状物が好適に用上記担体に抗原もしくは抗体を
同一化するには、抗原もしくは抗体を緩衝液中に添加、
溶解次いでとの担体を、例えば、F部にグラスクール等
が詰められた管状体に充填してカラムとし、更に下端を
粘土等でシールしく但し随時聞放可fE)、必要により
、緩衝液を添加する。場合によっては管状体に予め担体
を充填しておいてから抗原もしくけ抗体を結合させて同
相化してもよい。
上記管状体の容量は、小さ過ぎると担体充填量が少くな
り、従って試料の低濃度域の測定精度が悪くなるが、一
方多過ぎても特に測定精度が上るということはなくこの
種の試験の性質上試料は多量に採取されるものではない
ので、通゛縫は内径5〜20%程度、高さlO〜100
%程度とされる。
本発明における標識抗体もしくは標識抗原を調整する際
の標識としては、酵素、放射性同位元素(1125等)
、蛍光物質、不対電子をもつ化合物、色素等が使用され
、特に酵素や放射性同位元素が好適に用いられる。
上記担体が充填されたカラムに、通°帛は溶液状の測定
(、試料を添加、導入した後、標識抗体もしくは標識抗
原を添加、導入する。標識抗体もしくは標識抗原は予め
測定試料と混合しておいてもよい。
本発明においては、カラムの下端に設けられた粘土等よ
りなるシールを除去して上記標識抗体もしく#′i標識
抗体をカラムに添加し、必要により更に緩衝液を添加す
ることにより容易にB/F分離が行われる。酵素標識を
用いた場合、上記担体に結合した標識抗体もしくは標識
抗原の量の測定は、更に基質を添加しカラム通過中に分
解された基質の量を、70−セルによって、或いは一度
試験管等に採取してから通常の角型セルを用いることに
よって容易に行うことが出来、更に高速液体クロマトグ
ラフィーのポンプ、パルプ、オートナンプラーを適宜配
列結合すれば、測定が容易に自動化される。
又放射性同位元素、不対電子をもつ化合物を標識として
用いた場合は、通常のカウンターを用いる仁とにより標
識抗体もしくは標識抗原を添加した後のカラムをそのま
ま測定対象とすることができる。更に、蛍光物質や色素
を標識とした場合は、通常の分光学的測定方法が採用さ
れる。
本発明における測定対象物の抗原の具体例としては、各
種ポリペプチド糸ホルモン、ステロイド糸ホルモン、ビ
ラ528121葉!、サイロキシン、トリヨードサイロ
ニン、補体、α−クエトプヮティン、カルジノエンブリ
オニック1ンチゲン、臓器および血液中の各種酵素およ
び蛋白質、HBs抗原等の各種微生物抗原、植物ホルモ
ン、抗生物質、抗てんかん剤等の薬物等が挙げられ、そ
のうち特に重要なものは、甲状腺ホルモン、下垂体ホル
モン、HBs抗原、インシュリン、免反グロブリンおよ
び肝酵素である。
本発明における抗体としては、上に述べた抗原に対応し
て動物体内で生産されるものが含まれる。
又、本発明における測定対象物、同相化抗原もしくは抗
体、標識抗体もしくは抗原の王者の組合せに基づく本発
明方法の分〃(の例を以下に示す。
fil 測定対象物の抗原Aと同様の抗原を固オ目イヒ
し、八と反応する標識抗体を用いる競合反応法0 (2) 測定対象物の抗体Bと同様の抗体を同相化し、
Bと反応する標識抗原を用いる焼全′反−ルー″7i法
(3) 測定対象物の抗f、(Aと反応する抗体を固I
tl化し、Aと同様の標識抗原を用いる競合反応法。
(4) 測定対象物の抗原Aとj反応する抗体を同相化
し、Aと反応する標識抗体を用いるサンドイツチ法。
(5) 測定対象物の抗体Bと反応する第2抗体を同相
化し、Bと反応する標識抗原を用いるサンドイツチ法。
(6) 測定対象物の抗体Bと反応する抗)帛を固41
1化し、Bと反応する標識杭1鼠を用いるサンドイツチ
法。
(7) 測定対象物の抗体Bと反11′5する抗原を同
相化し、Bと反応する標識第2抗体を用いるサンドイツ
チ法。
尚、本発明においては、チオシアン酸ナトリラムを洗浄
することにより抗原もしくはt/L体が同相化きれた担
体に結合したjl11定対象物や標識抗体もしくは標識
抗原を担体から脱敲させて、同相化抗原もしくけ抗体を
繰返し使用することが可能である。
(以下余白) 本発明抗原もしくけ抗体の測定方法は、上述の通シの構
成罠なされ、抗原もしくは抗体が固相化された担体が、
Q、ji充填されたカラムに、測定資料と、標識抗体も
しくは標識抗原を導入し、上記担体に結合した標識抗体
もしくは標識抗原の量を担体に結合した状態で測定する
ので、抗原もしくは抗体を毛細管内面に直接同相化する
方法や抗原もしくは抗体を同相化した担体を有底の試験
管に充填して測定する従来法と比較して、抗原もしくは
抗体の同相化量が多い為測定精度が高く、且つ比較的簡
便な操作でB/F分離(及び酵素標識を用いる場合は酵
素基質反応まで)をカラムで行う・ことができ、又、容
易に自動化が可能であるという利点を有する。
以下、実施例及び比較例により本発明の実施態様と効果
を詳細に説明する。単にチとあるのは重量%を意味する
実施例 サンドインチ法によるインシュリン抗原の測(A)抗イ
ンツユリン抗体の固相化 モルモット産の抗ブタインシュリン抗血清を硫安沈澱法
によりT−グロブリン分画まで精製した。
このT−グロブリン分画をP H7,0の0.1Mリン
酸緩衝液(以下この液を0.1 MP、 B、(P H
7,0)と表わす)100ml!に溶解して濃度100
μy/−の浴液と、シ、粒径0.2〜0,6〜のポリス
fVンピーズ担体50yと混合し、37℃で1時間イノ
キュベートした後、4°Cで16時間放置した。
次いで0.1MP、B、(PH7,0)で充分洗浄し、
0.11VI Nap l 、1 mMMgCe2. 
0.1 %NaN3゜0.1%牛血悄アルブミンを含む
0.02M2Mリン酸緩衝液H7,4,以下緩衝液Aと
dう)20d中に移し、4℃で16時間インキュベート
した。インキュベート後の担体を取シ出し、長さが約7
−1中央郡の内径が7%で先細にされたポリプロピレン
製管状体(エツペンドル7社製。
100〜1000 p l用)で先端にグラスクールを
詰めたものに0.6fずつ分取してカラムを作成した。
分注後、カラム先端(下端)を粘土(クレイアダムス社
製「クール・イーズ」)Kよシノールし、カラムを緩衝
液Aで満たして上端をパラフィンフィルム(アメリカン
−カン・カンパニーの商品名)でノールし4℃に保持し
た。
(B)酵素標識抗体の、、I4整 酵素としてβ−ガラクトシダーゼを用いた。
(A)で用いた抗イン/ニリン抗血清のT−グロブリン
分画のSH基とβ−ガラクト7ダーゼのSH基とをN−
(m−マレイミドベンゾオキ/)サクシイミドによシ架
檎し、変性アガロースからなるカラム(サルマゾア社製
、セファロースCL−6B)によシ梢製して酵素標識抗
体を得た。
(C)定量曲線の作成 精製フ゛タインシュリン (ノボ社製、アクトラビッド
MC)を緩衝液Aで稀釈し濃度640゜320.160
+ 80.40.20 (μunit/me)の稀釈液
及び緩衝液[株]を用意し、(A)で調整したカラムに
100μlずり添加した。添加の際、カラム下端の7−
ルをとυ、添加後再びノールをして30℃で1時間イン
キュベートした。
次いで上下端の7−ルを除去し2 meの緩衝液への添
加にエリカラムを洗浄し、540munitの酵素を含
む300μlの酵素標識抗体を添加し、上下端を7−ル
し37℃で2時間インキュベートした。
その後、7−ルを取って4−の緩働iAでカラムを洗浄
し、緩衝液Aに基質として0−ニトロフェニル−β−D
ガラクトビラノンドを溶〃トした0、5チ溶液を0.5
d添加後再び7−ルをして37℃で1時間インキュベー
トした。次いで、酵素反応停止剤として0.1 Mの炭
酸ナトリウム2−を加えて酵素反応を停止させると共に
管状体を洗浄し、カラムを通過した基質分解生成物0−
ニトロフェノール液を採取し、波長420nmの元の吸
光度を測定した。かかる定量を3回行い平均値によりブ
タインシュリン濃度〜吸光度曲線を作成し第1図のE線
で示した。
比較例1 実施例の囚で調整した濃度100 /l 9 / rJ
のT−グロブリン分画溶液を100μl試験管にとり、
実施例で用いた緩衝液Aを0.5 me加え、実施例で
用いたポリスチレンピーズ0.5yを加え37℃で1時
間インキュベートした。次いで実施例の(C)で調整し
たズタイン7ユリン稀釈液を加え、2mlの緩衝液Aで
吸引洗浄し実施例の(B)で調整した酵素標識抗体を3
00Jl/加えた後37℃で2時間インキュベートした
。その後2 mlの緩衝液で2回吸引洗浄し、実施例と
同様KL、−rO,5%0−ニトロフェニル−β−D 
−カラクジトビ2フフド溶液を0.5 rnl添加し、
37℃で1時間インキュベートした。次いで2 rne
の0、1 M炭酸ナトリクムを加えて酵素反応を停止さ
せ、O−二トロフェノール溶液の波長420nmの光の
吸光度を測定した。結果は第1図の■線の通)であった
比較例2 比較例1において濃度100μy/−〇丁−グロブリン
分画溶液を500μl試験管にとシ直径6.3%のポリ
スチレンピーズ1個を用いる以外は比較例1と同様の測
定を行った。結果は第1図の■線の通りであった。
燗寺堵444ジ祠シ致う4シ卓4禰嶋徳4過ユ・度=−
1かした4ぼ〒第1図から比較例2では抗原の定量が殆
んど不可能でおることが明らかである。
又、比較例1では抗原濃度Ounit / dの値が異
常に高く、従って低i度域における測定値の信頼性が乏
しく、又比較的高濃度の領域においても測定値のバラツ
キが太きい。これは繰返し行われた吸引洗浄の過程でピ
ーズが吸引によシ一部失われた為と思われる。
【図面の簡単な説明】
第1図は実施例及び比較例によシ作成されたイン/ニリ
ンの定量曲線でbる。 E:実施例による定量曲線 ■:比較例1による定量曲線 ■:比較例2による定量曲線 特許出願人 積水化学工業株式会社 代表者 藤 沼 基 利

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 L 免疫測定法による抗原もしくは抗体の測定方法にお
    いて、測定対象物と同様の抗原もしくは抗体又は測定対
    象物と反応する抗体もしくは抗原が固相化された担体が
    充填されたカラムに、f漬方ラム中の担体に測定対象物
    と同様の抗原もしくは抗体が固相化された場合は、測定
    試料と、測定対象物と反応する既知量の標識抗体もしく
    は抗原とを導入し、又は、該カラム中の担体に測定対象
    物と反応する抗体もしくは抗原が同相化された場合は、
    測定試料と、測定対象物と同様の既知量の標識抗原もし
    くは抗体、又は、該測定対象物と反応する既知量の標識
    抗原もしくは抗体とを導入し、上記担体に結合した標識
    抗体もしくは標識抗原の量を担体に結合した状0で測定
    することを特徴とする抗原もしくは抗体の測定方法。 2 担体が無孔性である第1.11J記載の測定方法。 λ 担体が粒径0.1〜5%のビーズである第1項又は
    第2項記載の測定方法。 克 担体がポリスチレン製である第1項〜第3゛何れか
    1項に記載の測定方法。 飄 担体がアミ7基の導入された熱可塑性セルロース製
    である第1項〜第3゛項何れか1項に記載の測定方法。
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