JPS61242592A - キシラン分解物の製造方法 - Google Patents
キシラン分解物の製造方法Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、キシラン分解生成物を所望の比率で含有する
キシラン分解生成物混合物の製造方法に関する。
キシラン分解生成物混合物の製造方法に関する。
従来・キシランから、加水分解法により、キシロースの
製造が行なわれてきた。
製造が行なわれてきた。
最近では、種々のオリゴ糖が甘味料、増量剤、賦形剤、
包接剤、保湿剤、或いは増粘剤など、食品及び薬品工業
に広く使用できるものと考えられ、これらの用途に応じ
た種々のオリゴ糖の製造技術の開発が要望されている。
包接剤、保湿剤、或いは増粘剤など、食品及び薬品工業
に広く使用できるものと考えられ、これらの用途に応じ
た種々のオリゴ糖の製造技術の開発が要望されている。
部分加水分解法によるキシロオリゴ糖の製造法は精製工
程が繁雑で、収率も低く工業生産には適さない。そこで
、キシロビオース(X2)、キシロトリオース(X3)
、キシロテトラオース(X4)等のキシロオリゴ糊、又
は所望の比率でこれらを含有するキシロオリゴ糖混合物
を特異的に生成せしめるキシラナーゼの開発が必要とさ
れる。
程が繁雑で、収率も低く工業生産には適さない。そこで
、キシロビオース(X2)、キシロトリオース(X3)
、キシロテトラオース(X4)等のキシロオリゴ糊、又
は所望の比率でこれらを含有するキシロオリゴ糖混合物
を特異的に生成せしめるキシラナーゼの開発が必要とさ
れる。
キシラナーゼとしては従来から、ハシルス・ズブチリス
(Bacillus 5ubtilis)が生産する
酵素(醗酵工学雑誌↓上、 181−186.1963
) 、ストレプトマイセス(Streptomyces
sp、)菌株が生産する酵素(農芸化学会誌↓3.
t45−1s3.t9e9)−アスペルギルス・ニガー
(^spcrgillus niger)が生産する酵
素〔バイオテクノロジー・レター(Biotech。
(Bacillus 5ubtilis)が生産する
酵素(醗酵工学雑誌↓上、 181−186.1963
) 、ストレプトマイセス(Streptomyces
sp、)菌株が生産する酵素(農芸化学会誌↓3.
t45−1s3.t9e9)−アスペルギルス・ニガー
(^spcrgillus niger)が生産する酵
素〔バイオテクノロジー・レター(Biotech。
Letter) 3 、345−350.1981)
等が知られているが、キシラナーゼにより特異的にキシ
ロオリゴ糖を製造する方法についての研究は少ない。キ
シロオリゴ糖の製造の例としては、フミコーラ・ラヌギ
ノーザ(Ilumicola Ianuginosa)
由来のキシラナーゼによるキシロビオース及びキシロト
リオースの製造〔ジャーナル・オブ・ファーメンテ−ジ
ョン・テクノロジー(J、 Ferment、Tech
no+、) 62415−420、1984)や、スト
レプトマイセス属由来のキシラナーゼによるキシロース
及びキシロビオースの製造(農芸化学会誌↓立、 14
5−153.1969)等の例がある。しかしながら、
キシロトリオース及びキシロテトラオースを主として製
造する方法は知られていない。
等が知られているが、キシラナーゼにより特異的にキシ
ロオリゴ糖を製造する方法についての研究は少ない。キ
シロオリゴ糖の製造の例としては、フミコーラ・ラヌギ
ノーザ(Ilumicola Ianuginosa)
由来のキシラナーゼによるキシロビオース及びキシロト
リオースの製造〔ジャーナル・オブ・ファーメンテ−ジ
ョン・テクノロジー(J、 Ferment、Tech
no+、) 62415−420、1984)や、スト
レプトマイセス属由来のキシラナーゼによるキシロース
及びキシロビオースの製造(農芸化学会誌↓立、 14
5−153.1969)等の例がある。しかしながら、
キシロトリオース及びキシロテトラオースを主として製
造する方法は知られていない。
従ってこの発明は、キシロビオース、キシロトリオース
、キシロテトラオース等を所望の比率で含有するキシラ
ン分解物の製造方法を提供しようとするものである。
、キシロテトラオース等を所望の比率で含有するキシラ
ン分解物の製造方法を提供しようとするものである。
前記の目的は、特定の条件下でキシランに作用してキシ
ロビオース、キシロトリオース、キシロテトラオース等
を所望の比率で生成せしめるキシラナーゼによりキシラ
ンを加水分解する方法により達成される。
ロビオース、キシロトリオース、キシロテトラオース等
を所望の比率で生成せしめるキシラナーゼによりキシラ
ンを加水分解する方法により達成される。
本発明者らは、キシランから、オリゴ糖生産能の強い微
生物を求めて、土壌中より微生物の検索を行なった結果
、バチルス・プミラスと同定された微生物S A M2
O2S株が、キシロビオース、キシロトリオース、キシ
ロテトラオース等のキシロオリゴ糖を効率良く生成する
キシラナーゼを菌体外に、著量に生産することを認めた
。
生物を求めて、土壌中より微生物の検索を行なった結果
、バチルス・プミラスと同定された微生物S A M2
O2S株が、キシロビオース、キシロトリオース、キシ
ロテトラオース等のキシロオリゴ糖を効率良く生成する
キシラナーゼを菌体外に、著量に生産することを認めた
。
さらに、S A M2O2S株の生産するキシラナーゼ
によるキシランの分解条件を検討した結果、適当に条件
を設定することにより、糖組成の異なったキシロオリゴ
糖を作り分けることが可能であることを認め、本発明を
完成した。
によるキシランの分解条件を検討した結果、適当に条件
を設定することにより、糖組成の異なったキシロオリゴ
糖を作り分けることが可能であることを認め、本発明を
完成した。
以下にパシルス・プミラスが生産する本発明において使
用するキシラナーゼの性質を記載する。
用するキシラナーゼの性質を記載する。
(1)作用:本酵素はキシランに作用し、キシロビオー
ス、キシロトリオース、キジロチ1−ラオース等のキシ
ロオリゴ糖を主として生成する。また、作用条件を変え
ることにより、生成糖の組成比を変えることができる。
ス、キシロトリオース、キジロチ1−ラオース等のキシ
ロオリゴ糖を主として生成する。また、作用条件を変え
ることにより、生成糖の組成比を変えることができる。
例えば、キシロビオースは10〜80%、キシロトリオ
ースは10〜60%、キシロテトラオースは0〜40%
の範囲で組成比を変えることが可能である。
ースは10〜60%、キシロテトラオースは0〜40%
の範囲で組成比を変えることが可能である。
(2)作用pH範囲と最適作用p H:pH5〜9の範
囲で作用し、最適pHは、約6である(1%キシラン、
50℃、10分間反応)(第1図)。
囲で作用し、最適pHは、約6である(1%キシラン、
50℃、10分間反応)(第1図)。
(3)pH安定性:pH5,5〜8.0の範囲で安定(
0,1M緩衝液中で、3時間(室温)放置後、残存活性
を測定)である(第3図)。
0,1M緩衝液中で、3時間(室温)放置後、残存活性
を測定)である(第3図)。
(4)作用温度範囲及び最適作用温度:約70℃まで作
用し、最適作用温度は45〜55℃(1%キシラン、p
H6,0,10分間反応)である(第2図)。
用し、最適作用温度は45〜55℃(1%キシラン、p
H6,0,10分間反応)である(第2図)。
(5)熱安定性: p H6,0,10分間加熱処理後
、残存活性を測定した。その結果、50℃で30%、6
0℃で90%、70℃でほぼ完全に失活した(第4図)
。
、残存活性を測定した。その結果、50℃で30%、6
0℃で90%、70℃でほぼ完全に失活した(第4図)
。
(6)活性測定法=1%(W/V)キシラン(larc
h wood)を含む50mMリン酸緩衝液(p H6
,0) 0.48m[に、0.02mj!の適当に希釈
した酵素液を加え、50℃、1\0分間反応を行ない、
生成した還元糖をDNS法で比色定量する。1分間にキ
シロース1μモルに相当する還元力を生ずる酵素量を一
単位とする。
h wood)を含む50mMリン酸緩衝液(p H6
,0) 0.48m[に、0.02mj!の適当に希釈
した酵素液を加え、50℃、1\0分間反応を行ない、
生成した還元糖をDNS法で比色定量する。1分間にキ
シロース1μモルに相当する還元力を生ずる酵素量を一
単位とする。
次に、この発明の方法に使用するキシラナーゼの生産菌
の代表であるS A M2O2S株の菌学的性質を記載
する。
の代表であるS A M2O2S株の菌学的性質を記載
する。
(A)形態
(1)細胞の大きさは約0.5μm X 2.0μmの
桿菌である。
桿菌である。
(2)細胞の多形性はない。
(3)運動性があり、鞭毛は周毛である。
(4)胞子の形紙、1−A $6 VI:lて′ある。
(5)ダラム染色性は陽性である。
(B)培地におL−する生育状態
(1)肉汁液体培地
菌体は黄白色を呈し、表面に膜状に生
育する。
(2)肉汁寒天平板培地
発育は旺盛で、菌体は黄白色を呈する。
コロニーの直径は約2mmで、表面は
凹凸があり、光沢はなく、周縁は波状
を呈する。
(3)肉汁寒天斜面培地
(2)と同様の生育状態を示し、拡布
状に生育する。
(4)肉汁ゼラチン穿刺培地
ゼラチンを?夜化しない。
(5)リドマスミルク
リ1−マス色素を赤変し、凝固させる。
(C)生理的性質
(1)硝酸塩の還元 −
(2)vPテスト 士
(3)MRテスト +
(4)OFテスト0
(5)インドールの生成 −
(6)硫化水素の生成 −
(7)デンプンの加水分解 −
(8)カゼインの分解 →−
(9)馬尿酸の分解 十
(10)プロピオン酸の利用 −
(11)^naerobic Agarでの生育 −(
12) 7%NaC]に対する耐性 →−(13)
カタラーゼの生成 十 (14)オキシダーゼの生成 士 (15) 50℃での生育 →=(16)酸素
に対する態度 好気性(D)糖から酸およびガスの
生成 酸の生成 ガスの生成 (1)L−アラビノース 十 −(2) r
l−キシロース 十 −(3)D−グリコ
ース 十 −(4)D−マンノース
+ −(5)D−フラクトース →−− (6)D−ガラクトース ± −(7)マル
トース ± −(8)ザソカロース
十 −(9)ラケトース − (10) )レバロース 十 −(1
1) n−ソルビット − (12) D−マンニット + −(13
)イノジット − (14)グリセリン + −(15)デ
ンプン − (E)DNAのGC含量 本菌のDNAのGC含量は、41.7%であった〔測定
は、J、Tamaoka及びに、Komagata、
1984.逆相高速液体クロマトグラフィーによるDN
A塩基組成の決定(Determination of
DNA base composi−tion b
y reversed−phase high−per
formance 1i−quid chromato
graphy)、FBMS ミクロビオロジー・レター
ズ(Microbiology I、etters)
25 : 125−128に従って行った〕。
12) 7%NaC]に対する耐性 →−(13)
カタラーゼの生成 十 (14)オキシダーゼの生成 士 (15) 50℃での生育 →=(16)酸素
に対する態度 好気性(D)糖から酸およびガスの
生成 酸の生成 ガスの生成 (1)L−アラビノース 十 −(2) r
l−キシロース 十 −(3)D−グリコ
ース 十 −(4)D−マンノース
+ −(5)D−フラクトース →−− (6)D−ガラクトース ± −(7)マル
トース ± −(8)ザソカロース
十 −(9)ラケトース − (10) )レバロース 十 −(1
1) n−ソルビット − (12) D−マンニット + −(13
)イノジット − (14)グリセリン + −(15)デ
ンプン − (E)DNAのGC含量 本菌のDNAのGC含量は、41.7%であった〔測定
は、J、Tamaoka及びに、Komagata、
1984.逆相高速液体クロマトグラフィーによるDN
A塩基組成の決定(Determination of
DNA base composi−tion b
y reversed−phase high−per
formance 1i−quid chromato
graphy)、FBMS ミクロビオロジー・レター
ズ(Microbiology I、etters)
25 : 125−128に従って行った〕。
(F)細胞内キノンの分子量の同定
木菌はメナキノン7 (MK−7)を有する〔測定は
、山田h1を三・倉石行・1982年、ユビキノンとメ
ナキノンモキ駒形和男編「微生物の化学分類実験法J
P 143−155.学会出版センター、東京)±に従
った〕。
、山田h1を三・倉石行・1982年、ユビキノンとメ
ナキノンモキ駒形和男編「微生物の化学分類実験法J
P 143−155.学会出版センター、東京)±に従
った〕。
以上の菌学的性質に従い、本発明の菌株SAM0045
の分類学的地位をハーシェーズ・マニュアル・オブ・テ
ターミネティブ・ハタテリオロジ=(Bergey ’
sManual of I)eterminativ
e Bacteri−ology)第8版により求める
と、ダラム陽性かん菌で、胞子を形成し、運動性があり
、DNAのGC含量が41.7%であることから、本菌
株はハシルス(Baci l 1us)属に属する細菌
であると同定された。
の分類学的地位をハーシェーズ・マニュアル・オブ・テ
ターミネティブ・ハタテリオロジ=(Bergey ’
sManual of I)eterminativ
e Bacteri−ology)第8版により求める
と、ダラム陽性かん菌で、胞子を形成し、運動性があり
、DNAのGC含量が41.7%であることから、本菌
株はハシルス(Baci l 1us)属に属する細菌
であると同定された。
さらにカタラーゼを生産し、■P反応陽性、50℃で生
育し、7%NaC+に耐性ある、という性質からGor
don R,E、W、C,Haynes及びC,I(、
−N、Pang。
育し、7%NaC+に耐性ある、という性質からGor
don R,E、W、C,Haynes及びC,I(、
−N、Pang。
1973、ザ・ジーナス・ハシルス、ユナイテソド・ス
テイク・デパートメント・オブ・アグリカルチュアー・
ハンドフック(The Genus Bacillus
、Un−4ted 5tates Depertmen
t of Agriculture Handb−oo
k)No、427により、本菌株ばB、ズブチリス([
1゜5ubtilis) 、B、プミルス(B、pum
i 1us)、B、リケニホルミス(B、 ]i、ch
eniformis)らに近縁の種であることが判明し
た。
テイク・デパートメント・オブ・アグリカルチュアー・
ハンドフック(The Genus Bacillus
、Un−4ted 5tates Depertmen
t of Agriculture Handb−oo
k)No、427により、本菌株ばB、ズブチリス([
1゜5ubtilis) 、B、プミルス(B、pum
i 1us)、B、リケニホルミス(B、 ]i、ch
eniformis)らに近縁の種であることが判明し
た。
さらに詳しい検討を行った結果、硝酸塩還元能なし、デ
ン“プン分解能なし、プロピオン酸を利用せずAnae
robic Agarで生育せず、馬尿酸を分解すると
いう性質から、本菌株はバシルス・プミルス(Baci
llus pumilus)であると同定された。
ン“プン分解能なし、プロピオン酸を利用せずAnae
robic Agarで生育せず、馬尿酸を分解すると
いう性質から、本菌株はバシルス・プミルス(Baci
llus pumilus)であると同定された。
次に、本菌を用いてキシラナーゼを生産せしめるための
培養条件について述べる。培養法としては、通常の細菌
の培養法が使用できる。
培養条件について述べる。培養法としては、通常の細菌
の培養法が使用できる。
まず、炭素源としては、キシラン、ビール又はウィスキ
ーの麦芽糖化粕、小麦ふすま、或いはその他のW!類を
、単独または組合わせて用いる。窒素源としては、無機
化合物として硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、尿
素等、また、有機窒素含有物として、イーストエキス、
ペプトン、マルトエキス、コーン・ステイープ・リカー
、スキムミルク、各種アミノ酸類等が単独または組合わ
せて用いられる。
ーの麦芽糖化粕、小麦ふすま、或いはその他のW!類を
、単独または組合わせて用いる。窒素源としては、無機
化合物として硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、尿
素等、また、有機窒素含有物として、イーストエキス、
ペプトン、マルトエキス、コーン・ステイープ・リカー
、スキムミルク、各種アミノ酸類等が単独または組合わ
せて用いられる。
培養温度は、20〜35℃が適している。また、初発p
Hは、5〜11の広い範囲が利用可能であるが、特に、
アルカリ条件が適している。培養日数は、通常1〜2日
である。固体培養、液体培養のいずれも可能であるが好
気的条件下で液体培養するのが好ましい。
Hは、5〜11の広い範囲が利用可能であるが、特に、
アルカリ条件が適している。培養日数は、通常1〜2日
である。固体培養、液体培養のいずれも可能であるが好
気的条件下で液体培養するのが好ましい。
培養終了後、既知の手法を利用して、キシラナーゼを採
取することが可能である。次にその一例を示す。
取することが可能である。次にその一例を示す。
まず、培養液中の菌体及び固形分を遠心除去し、上澄液
を得る。この上澄液を粗酵素として利用することも可能
である。この上澄液を約40%硫酸アンモニウムで沈で
んさせる。沈でんを一晩透析し、20mMリン酸緩衝液
(pH7,0)で平衡化LJ、:T)EAE ・セル
ロースカラムを通過させ、素通り区分を集める。次に、
この素通り区分を50mMリン酸緩衝液(pH6,5)
で平衡化したCMセルロースに吸着させた後に、食塩濃
度を0.1〜0.7Mまで変化させて酸素を溶出させ、
キシラナーゼ活性区分を集める。更に、酵素純度を」二
げるためには、セファデックスG−100カラムでゲル
濾過を行ない、最終標品を得る。
を得る。この上澄液を粗酵素として利用することも可能
である。この上澄液を約40%硫酸アンモニウムで沈で
んさせる。沈でんを一晩透析し、20mMリン酸緩衝液
(pH7,0)で平衡化LJ、:T)EAE ・セル
ロースカラムを通過させ、素通り区分を集める。次に、
この素通り区分を50mMリン酸緩衝液(pH6,5)
で平衡化したCMセルロースに吸着させた後に、食塩濃
度を0.1〜0.7Mまで変化させて酸素を溶出させ、
キシラナーゼ活性区分を集める。更に、酵素純度を」二
げるためには、セファデックスG−100カラムでゲル
濾過を行ない、最終標品を得る。
この発明の方法によりキシラン加水分解物混合物を製造
するための酵素反応は、p H5,5〜8.0.30℃
〜60℃の温度において3〜48時間、特に好ましくは
3〜15時間行う。また反応液中のキシラン濃度は通常
1〜40%、特に好ましくは1〜20%とする。反応媒
体としては緩衝液、例えばリン酸緩衝液を用いるのが好
ましい。
するための酵素反応は、p H5,5〜8.0.30℃
〜60℃の温度において3〜48時間、特に好ましくは
3〜15時間行う。また反応液中のキシラン濃度は通常
1〜40%、特に好ましくは1〜20%とする。反応媒
体としては緩衝液、例えばリン酸緩衝液を用いるのが好
ましい。
上記の範囲内で反応pH1反応温度、及び反応時間を変
えても、生成物中のキシロオリゴ糖の比率はほとんど変
わらなかった。また基質であるキシランの初濃度を高く
するに従ってキシロオリゴ糖の収率が低下する傾向があ
ったが、この場合もキシロオリゴ糖の生成比率は変わら
なかった。
えても、生成物中のキシロオリゴ糖の比率はほとんど変
わらなかった。また基質であるキシランの初濃度を高く
するに従ってキシロオリゴ糖の収率が低下する傾向があ
ったが、この場合もキシロオリゴ糖の生成比率は変わら
なかった。
これに対して酵素の濃度を変えることによって生成糖の
組成は大きく変化した。すなわち、キシロビオース(X
2)は10〜80%、キシロトリオース(X3)は10
〜60%、そしてキシロテトラオース(X4)は0〜4
0%の変化を示した。キシランの初濃度を5%として種
々のキシラナーゼが濃度において加水分解を行った場合
のキシロース(X、)、キシロビオース(X2)、キシ
ロトリオース(X3)、及びキシロテトラオース(X4
)の生成濃度を第6図、及び下の表に示す。
組成は大きく変化した。すなわち、キシロビオース(X
2)は10〜80%、キシロトリオース(X3)は10
〜60%、そしてキシロテトラオース(X4)は0〜4
0%の変化を示した。キシランの初濃度を5%として種
々のキシラナーゼが濃度において加水分解を行った場合
のキシロース(X、)、キシロビオース(X2)、キシ
ロトリオース(X3)、及びキシロテトラオース(X4
)の生成濃度を第6図、及び下の表に示す。
反応は、反応液を加熱してキシラナーゼを不活性化する
ことにより停止することができる。次に、常法に従って
加水分解生成物を反応液から分離採取する。例えば、加
熱処理した反応液を濾過して透明な反応液を得、これを
濃縮することによって製品濃厚液、又はシロップを得る
ことができる。
ことにより停止することができる。次に、常法に従って
加水分解生成物を反応液から分離採取する。例えば、加
熱処理した反応液を濾過して透明な反応液を得、これを
濃縮することによって製品濃厚液、又はシロップを得る
ことができる。
又、反応液又はその濃縮液を凍結乾燥することにより粉
末製品を得ることができる。
末製品を得ることができる。
次に実施例により、この発明をさらに具体的に説明する
。
。
U遣1−0 群芳版p馴製
キシラン1%:酵母エキス0.3%、ポリペプトン0.
5%、K211PO4,0,1%、及びMg5O,l
・7■200.1%からなる培地27!を5pのジャ
ーファーメンタ−に仕込み、バシルス・プミラス(微工
研菌寄第8175号)を、l Vvll 、300rp
mにて48時間培養した。培養後、培養液を遠心分離し
て上滑液を得た。この−上滑液は585ユニット/ml
のキシラナーゼを含有していた。
5%、K211PO4,0,1%、及びMg5O,l
・7■200.1%からなる培地27!を5pのジャ
ーファーメンタ−に仕込み、バシルス・プミラス(微工
研菌寄第8175号)を、l Vvll 、300rp
mにて48時間培養した。培養後、培養液を遠心分離し
て上滑液を得た。この−上滑液は585ユニット/ml
のキシラナーゼを含有していた。
」U江1. 反疫
実施例1で得られた培養上清0,01m1lを4%キシ
ランを含むp H6,0の50mMリン酸緩衝液10m
7!に添加し、45℃、10時間反応させた。
ランを含むp H6,0の50mMリン酸緩衝液10m
7!に添加し、45℃、10時間反応させた。
生成糖を液体クロマトグラフィー(カラムCo5m0−
sil ・5NH2、溶出液アセトニトリル70%:
水30%、検出器5hodexRI−3E51)にて分
析した結果、キシロビオース17%、キシロトリオース
43%、キシロテトラオース37%であり、キシロトリ
オースとキシロテトラオースを主成分(合計80%)と
する生成物が得られた(第5図a)。
sil ・5NH2、溶出液アセトニトリル70%:
水30%、検出器5hodexRI−3E51)にて分
析した結果、キシロビオース17%、キシロトリオース
43%、キシロテトラオース37%であり、キシロトリ
オースとキシロテトラオースを主成分(合計80%)と
する生成物が得られた(第5図a)。
実施例3. 反庭
実施例1で得られた培養上清0.1rrlを、0.5g
キシランを含む50mMリン酸バッファー(pH6,0
)10mnに添加し、45℃12時間反応させた。生成
糖の分析を行なった結果、キシロビオース41%、キシ
ロトリオース53%であり 、キシロビオースとキシロ
トリオースを主成分(合計94%)とする生成物が得ら
れた(第5図b)。
キシランを含む50mMリン酸バッファー(pH6,0
)10mnに添加し、45℃12時間反応させた。生成
糖の分析を行なった結果、キシロビオース41%、キシ
ロトリオース53%であり 、キシロビオースとキシロ
トリオースを主成分(合計94%)とする生成物が得ら
れた(第5図b)。
実施例4. 反痘
実施例1で得られた培養上澄を、40%硫酸アンモニウ
ムで沈澱させた。この沈澱を透析して得た粗酵素液を、
50mMリン酸バッファー(pH6,5)で希釈して4
00単位/m7!とじた。この酵素液10m1に、0.
5gキシランを添加して、45°C15時間反応を行な
った。生成糖の分析を行なった結果、キシロース13%
、キシロビオース76%、′キシロトリオース11%で
あり、キシロビオースを主成分とする生成物が得られた
く第5図C)。またこの際のキシロビオースの収率は3
4%であった。
ムで沈澱させた。この沈澱を透析して得た粗酵素液を、
50mMリン酸バッファー(pH6,5)で希釈して4
00単位/m7!とじた。この酵素液10m1に、0.
5gキシランを添加して、45°C15時間反応を行な
った。生成糖の分析を行なった結果、キシロース13%
、キシロビオース76%、′キシロトリオース11%で
あり、キシロビオースを主成分とする生成物が得られた
く第5図C)。またこの際のキシロビオースの収率は3
4%であった。
第1図は本発明に用いるキシラナーゼのpHと ′活性
の関係を示すグラフであり、第2図は該キシラナーゼの
温度と活性の関係を示すグラフであり、第3図は該酵素
のpH安定性を示すグラフであり、第4図は該酵素の温
度安定性を示すグラフであり、そして第5図及び第6図
は種々の酵素濃度におけ 。 る生成糖の比率を示す。 (’10) (’/、) 第2図 (’/、) 第4図 第5図
の関係を示すグラフであり、第2図は該キシラナーゼの
温度と活性の関係を示すグラフであり、第3図は該酵素
のpH安定性を示すグラフであり、第4図は該酵素の温
度安定性を示すグラフであり、そして第5図及び第6図
は種々の酵素濃度におけ 。 る生成糖の比率を示す。 (’10) (’/、) 第2図 (’/、) 第4図 第5図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、バシルス(Bacillus)属細菌由来のキシラ
ナーゼでキシランを加水分解してキシラン分解物混合物
を得る方法において、加水分解媒体中のキシラナーゼ濃
度を調節することによりキシロビオース、キシロトリオ
ース、及びキシロテトラオースの内の複数種類のキシロ
オリゴ糖を所望の比率で含有する混合物を得ることを特
徴とする方法。 2、前記バシルス属細菌がバシルス・プミラス(Bac
illus Pumilus)SAM0045(微工研
菌寄第8175号である特許請求の範囲第1項記載の方
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8361085A JPS61242592A (ja) | 1985-04-20 | 1985-04-20 | キシラン分解物の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8361085A JPS61242592A (ja) | 1985-04-20 | 1985-04-20 | キシラン分解物の製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61242592A true JPS61242592A (ja) | 1986-10-28 |
Family
ID=13807253
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP8361085A Pending JPS61242592A (ja) | 1985-04-20 | 1985-04-20 | キシラン分解物の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61242592A (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS62278961A (ja) * | 1986-05-27 | 1987-12-03 | Norin Suisansyo Ringyo Shikenjo | 飲食物の製造方法 |
| JPH0856607A (ja) * | 1995-08-25 | 1996-03-05 | Rinyachiyou Shinrin Sogo Kenkyusho | 飲食物 |
| US5939309A (en) * | 1986-10-30 | 1999-08-17 | Suntory Limited | Bifidobacterium bifidum proliferation promoting composition containing xylooligosaccharide |
| US10253343B2 (en) | 2014-10-31 | 2019-04-09 | Toray Industries, Inc. | Method of producing sugar solution and xylooligosaccharide |
-
1985
- 1985-04-20 JP JP8361085A patent/JPS61242592A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS62278961A (ja) * | 1986-05-27 | 1987-12-03 | Norin Suisansyo Ringyo Shikenjo | 飲食物の製造方法 |
| US5939309A (en) * | 1986-10-30 | 1999-08-17 | Suntory Limited | Bifidobacterium bifidum proliferation promoting composition containing xylooligosaccharide |
| JPH0856607A (ja) * | 1995-08-25 | 1996-03-05 | Rinyachiyou Shinrin Sogo Kenkyusho | 飲食物 |
| US10253343B2 (en) | 2014-10-31 | 2019-04-09 | Toray Industries, Inc. | Method of producing sugar solution and xylooligosaccharide |
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