JPS61275221A - タンパク質 - Google Patents
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- JPS61275221A JPS61275221A JP60115502A JP11550285A JPS61275221A JP S61275221 A JPS61275221 A JP S61275221A JP 60115502 A JP60115502 A JP 60115502A JP 11550285 A JP11550285 A JP 11550285A JP S61275221 A JPS61275221 A JP S61275221A
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- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明はヒト又は他の動物の腫瘍、癌ならびに脳神経系
疾患の治療用剤、診断用剤に適応しうるタンパク質に関
する。
疾患の治療用剤、診断用剤に適応しうるタンパク質に関
する。
従来の技術
癌の診断においてα−フェトプロティン、癌胎児性抗原
(cHA) 、CA 19−9などの癌関連抗原がlI
t瘍マーカーとして用いられて来た。さらにまた各種の
癌の発現、進行に伴い、生体内に正常とは異なる物質が
消長することが明らかにされ、これらをマーカーとして
新しい癌の診断法を確立する試みが、ますます盛んに行
われている。
(cHA) 、CA 19−9などの癌関連抗原がlI
t瘍マーカーとして用いられて来た。さらにまた各種の
癌の発現、進行に伴い、生体内に正常とは異なる物質が
消長することが明らかにされ、これらをマーカーとして
新しい癌の診断法を確立する試みが、ますます盛んに行
われている。
本発明者はかかる見地より動物の胚発生の初期段階にの
み出現する物質について研究を行い、マウスの脳神経系
の発生・分化の時間的経過において出現しかつ消失する
タンパク質について鋭意研究を行った結果、ある種のタ
ンパク質が時期特異的に脳胚に出現し、成熟した正常動
物においては存在しないことを見い出した。これらのタ
ンパク質は増殖細胞に特異的であり、過剰増殖に対する
マーカーとなり得るものと考え、その有用性から特許出
願した(特願昭58−206899)。
み出現する物質について研究を行い、マウスの脳神経系
の発生・分化の時間的経過において出現しかつ消失する
タンパク質について鋭意研究を行った結果、ある種のタ
ンパク質が時期特異的に脳胚に出現し、成熟した正常動
物においては存在しないことを見い出した。これらのタ
ンパク質は増殖細胞に特異的であり、過剰増殖に対する
マーカーとなり得るものと考え、その有用性から特許出
願した(特願昭58−206899)。
更に本発明者は脳外科手術により得られた患者の脳神経
系腫瘍組織についても検討した結果、ヒト脳神経系細胞
にも、マウス脳神経系細胞と同様、特異的なタンパク質
が存在することを発見し、その脳神経系疾患やがんの領
域での有用性に鑑み、特許出願した(特願昭60−73
550 )。
系腫瘍組織についても検討した結果、ヒト脳神経系細胞
にも、マウス脳神経系細胞と同様、特異的なタンパク質
が存在することを発見し、その脳神経系疾患やがんの領
域での有用性に鑑み、特許出願した(特願昭60−73
550 )。
発明が解決しようとする問題点
前記特許出願にかかわるタンパク質抗原は、マウス胎児
の肺肝や患者の脳神経系腫瘍組繊細胞から抽出・分離・
精製されるもので、これらタンパク質を工業的に大量に
確保するためには時間と手間をきわめて要し、経済的で
はない。特に患者の腫瘍組織を量的に集めることは実際
的には大変困難であり、前記特願昭60−73550に
あるようにわずかに得られた腫瘍組織をヌードマウスあ
るいはハムスターなどに植えて増殖させる手段をとる必
要がある。
の肺肝や患者の脳神経系腫瘍組繊細胞から抽出・分離・
精製されるもので、これらタンパク質を工業的に大量に
確保するためには時間と手間をきわめて要し、経済的で
はない。特に患者の腫瘍組織を量的に集めることは実際
的には大変困難であり、前記特願昭60−73550に
あるようにわずかに得られた腫瘍組織をヌードマウスあ
るいはハムスターなどに植えて増殖させる手段をとる必
要がある。
問題点を解決するための手段
そこで、本発明者は外科手術により得られる動物の脳神
経系組織にたよることなく、既に株細胞として樹立され
たマウス、ラット、ヒトなどに由来する脳神経系腫瘍細
胞を大量に集めれば、正常マウス、正常ラット、正常ヒ
トの脳神経組繊細胞には存在しないで、胎児に特異的な
あるいは腫瘍に特異的なタンパク質が発見できるのでは
ないかと想到した。そして本発明者は各種動物の脳神経
系細胞を培養器内で培養するか、あるいは動物体内で増
殖させた後細胞を集め、正常動物脳神経組織には存在し
ない、脳神経系腫瘍細胞特異的なタンパク質を分離・精
製・同定するに到り、本発明を完成した。
経系組織にたよることなく、既に株細胞として樹立され
たマウス、ラット、ヒトなどに由来する脳神経系腫瘍細
胞を大量に集めれば、正常マウス、正常ラット、正常ヒ
トの脳神経組繊細胞には存在しないで、胎児に特異的な
あるいは腫瘍に特異的なタンパク質が発見できるのでは
ないかと想到した。そして本発明者は各種動物の脳神経
系細胞を培養器内で培養するか、あるいは動物体内で増
殖させた後細胞を集め、正常動物脳神経組織には存在し
ない、脳神経系腫瘍細胞特異的なタンパク質を分離・精
製・同定するに到り、本発明を完成した。
本発明のタンパク質は継代培養された各種動物由来の脳
神経腫瘍細胞に存在し、二次元電気泳動法による分子量
が55,000ないし140.000であり、等電点が
4.5ないし5.8であることを特徴とするタンパク質
である。
神経腫瘍細胞に存在し、二次元電気泳動法による分子量
が55,000ないし140.000であり、等電点が
4.5ないし5.8であることを特徴とするタンパク質
である。
本発明者の用いた動物細胞には次のものがある。
マウス由来細胞としては神経芽細胞腫(Neurobl
astoma ) N−18株、同N−115株、同N
B41A3株、同Neuro 2a株、平滑筋様脳腫瘍
(Smooth muscle−1ikebrain
tumor) BC3H1株、ラット由来細胞としては
褐色細胞腫(Pheochromocytoma) P
Cl3株、ダリア細胞腫(Glial cell tu
mor) C6株、下垂体腫瘍(Pituitary
tumor) GH3%骨格筋筋原細胞腫(5kel
etal muscle myoblast > L
6株、またヒト由来細胞としてはIMR−32株、ヒト
胎児脳Flow3000株である。
astoma ) N−18株、同N−115株、同N
B41A3株、同Neuro 2a株、平滑筋様脳腫瘍
(Smooth muscle−1ikebrain
tumor) BC3H1株、ラット由来細胞としては
褐色細胞腫(Pheochromocytoma) P
Cl3株、ダリア細胞腫(Glial cell tu
mor) C6株、下垂体腫瘍(Pituitary
tumor) GH3%骨格筋筋原細胞腫(5kel
etal muscle myoblast > L
6株、またヒト由来細胞としてはIMR−32株、ヒト
胎児脳Flow3000株である。
本発明者はこれら細胞をそれぞれに適当な培養液、血清
を用いて適当な培養日数、培養器内で培養するか、動物
体内で増殖させた後大量に集め、下記試剤を用いてホモ
ジネートにし、タンパク質を抽出し、二次元電気泳動法
で分析した結果、培養脳神経系腫瘍細胞のタンパク質の
主要のものは約100種存在し、正常マウス脳および正
常ラット脳には検出されないか、わずかしか存在せず、
培養脳神経系腫瘍細胞にのみ検出されるか、より多く検
出されるタンパク質が、各脳神経系腫瘍細胞について計
8種類以上(NAK−1ないしNAK−8など)存在す
ることが明らかとなった。
を用いて適当な培養日数、培養器内で培養するか、動物
体内で増殖させた後大量に集め、下記試剤を用いてホモ
ジネートにし、タンパク質を抽出し、二次元電気泳動法
で分析した結果、培養脳神経系腫瘍細胞のタンパク質の
主要のものは約100種存在し、正常マウス脳および正
常ラット脳には検出されないか、わずかしか存在せず、
培養脳神経系腫瘍細胞にのみ検出されるか、より多く検
出されるタンパク質が、各脳神経系腫瘍細胞について計
8種類以上(NAK−1ないしNAK−8など)存在す
ることが明らかとなった。
本タンパク質の分離・精製は公知の技術で行うことがで
きる。たとえば脳神経系腫瘍細胞をトリトンX−100
、フェニルメチルスルフォニルフルオライドなどを含む
トリス・塩酸緩衝液でホモジナイズし低温で抽出を行い
、次いで高速遠心分離し得られた上清にエタノールなど
のアルコールを加え沈澱させた分画を、ゲル口過および
イオン交換クロマトグラフィーなどにより処理すること
によって各タンパク質を分離・精製することができる。
きる。たとえば脳神経系腫瘍細胞をトリトンX−100
、フェニルメチルスルフォニルフルオライドなどを含む
トリス・塩酸緩衝液でホモジナイズし低温で抽出を行い
、次いで高速遠心分離し得られた上清にエタノールなど
のアルコールを加え沈澱させた分画を、ゲル口過および
イオン交換クロマトグラフィーなどにより処理すること
によって各タンパク質を分離・精製することができる。
また各タンパク質の物理化学的性質は、ホモジネート粗
分画中の各タンパク質をSOSポリアクリルアミドゲル
上での二次元電気泳動法により分離し、それらの分子量
および等電点を測定することにより確認された。表−1
に各タンパク質の物性をまとめた。
分画中の各タンパク質をSOSポリアクリルアミドゲル
上での二次元電気泳動法により分離し、それらの分子量
および等電点を測定することにより確認された。表−1
に各タンパク質の物性をまとめた。
表−1かられかるように各タンパク質の等電点は酸性に
よっており、これらタンパク質のあるものは、本発明者
が先に出願した前記特願昭58−206899および特
願昭60−73550に記載したタンパク質と同様に、
シアル酸を含むシアロ糖タンパク質である可能性がある
。一般に糖タンパク質の場合、電気泳動法による分子量
の測定はみかけ上の値を測っている。また表−1に示し
た分子量は、±2゜000程度の誤差があると考えられ
る。
よっており、これらタンパク質のあるものは、本発明者
が先に出願した前記特願昭58−206899および特
願昭60−73550に記載したタンパク質と同様に、
シアル酸を含むシアロ糖タンパク質である可能性がある
。一般に糖タンパク質の場合、電気泳動法による分子量
の測定はみかけ上の値を測っている。また表−1に示し
た分子量は、±2゜000程度の誤差があると考えられ
る。
脳神経系腫瘍細胞のあるものは神経成長因子(nerv
e growth factor、 NGF)を存在さ
せることにより分化が誘導され、また神経突起の数が増
加し、突起が進展する。その間に各種タンパク質の消長
が起こる。本発明者は褐色細胞腫PC12株細胞につい
てNGFの処理時間を変えることにより、タンパク質の
消長を調べ、NGPで処理しない株細胞におけると同様
、正常ラット脳および正常マウス脳には見られないか、
わずかしか存在せず、本細胞には見られる、タンパク質
NAK−1ないしNAK−8を見い出した。そのうちN
AK−4およびNAK−5タンパク質の量はNGF処理
処理3定後処理期間中最大に達した。
e growth factor、 NGF)を存在さ
せることにより分化が誘導され、また神経突起の数が増
加し、突起が進展する。その間に各種タンパク質の消長
が起こる。本発明者は褐色細胞腫PC12株細胞につい
てNGFの処理時間を変えることにより、タンパク質の
消長を調べ、NGPで処理しない株細胞におけると同様
、正常ラット脳および正常マウス脳には見られないか、
わずかしか存在せず、本細胞には見られる、タンパク質
NAK−1ないしNAK−8を見い出した。そのうちN
AK−4およびNAK−5タンパク質の量はNGF処理
処理3定後処理期間中最大に達した。
以下実施例により本発明をさらに詳述するが、本発明は
これらに限定されない。
これらに限定されない。
実施例1
ラット副腎髄質由来褐色細胞腫(Pheochromo
cytoma) PC12株細胞(S、E、Pfeif
fer博士より入手)をコラーゲン塗布した90mmプ
ラスチック皿(Nunc社製)にまき、炭酸ガス培養器
(5%CO2+95%air )中、37℃、PH7,
0〜7.2で培養した。培養液は牛胎児血清(FBS
、 5%)と馬血清(HS、 10%)を含むDulb
ecco’s modified Eagle’s m
sdium(DME 、 85%)を用いた。細胞が1
0日間の培養で定常期に達した後、培地を除き水冷した
Ca−Mgを含まないリン酸緩衝生理食塩水(Dulb
ecco+ P)17゜0)で2回洗い、細胞をはがし
、遠心管に集め、冷却遠心機(日立社製)内で1 、0
00rpm、5分で遠沈して一皿あたり3X10”の細
胞を集めた。これに2%トリトンX−100、0,15
M食塩、50trg /mgフェニルメチルスルフォニ
ルフルオライド(PMSF)を含む10mM )リス・
塩酸緩衝液(PH7,6) 0.1mlを加え、ホモジ
ナイズし、4℃で30分間抽出を行った。次いで高速遠
心分離(40,OOOrpm )を60分間行い、得ら
れた上清に10倍量のエタノールを加え、10分間遠心
分離(3,00Orpm) L、上清を除去した。得ら
れた沈澱に9.5M尿素、2%NP−40(半井社製)
、2%アンホライン(PH3,5〜10)(ファルマシ
ア製)、5%メルカプトエタノール、0.25%ソジウ
ムドデシルサルフェート(以下SOSと略記)よりなる
可溶化溶液に溶かし溶液とした。次いでこの溶液の二次
元電気泳動を行い、各タンパク質を分離し、分子量及び
等電点を測定した。対照のタンパク質として、いずれも
Sigma社製のチログロブリン(分子量330,00
0 > 、ラクトフェリン(同88,000) 、ウ
シ血清アルブミン(同67、000)、卵白アルブミン
(同43,000)及びアルドラーゼ(同34,000
)を用いた。一次元目の電気泳動には次の処方のゲルを
使用した。〔尿素2.76g 、30%アクリルアミド
0.67m1.10%NP−401mlアンホライン(
PH3,5−10) 0.25m1.10%過硫酸アン
モニア10A11,5%TEMED 0.14m1.水
0.91m1) (6本分)。サンプルをこの一次元
ゲルにかけ、陽極液として10mM H3PO4、陰極
液として20mM NaOHをそれぞれ用い、400v
で13時間、次いで800Vで1時間電気泳動を行った
。次いで泳動後のゲルをSO3試料緩衝液(10%グリ
セリン、5%β−メルカプトエタノール、2.3%SO
3,62,5mM )リス−塩酸緩衝液(PH6,8)
)と平衡化し、7.5%のアクリルアミドスラブゲル
(25mM )リス、192mMグリシン、0.1 %
SOS ) ニかけ、120Vテ4時間二次元目の電気
泳動を行った。分離した各タンパク質を0.05%クマ
シブルー、10%メチルアルコール、10%酢酸で1時
間染色した後、10%メチルアルコール、10%酢酸で
脱色し各タンパク質スポットを測定した。正常ラット脳
および正常マウス脳には見い出せないスポットをNAK
−1ないしNAK−6と名づけた。更に正常ラット脳に
はわずかじか存在しないが、本PC12株細胞には多量
に存在するスポットをNAK−7およびNAK−8と名
づけた。
cytoma) PC12株細胞(S、E、Pfeif
fer博士より入手)をコラーゲン塗布した90mmプ
ラスチック皿(Nunc社製)にまき、炭酸ガス培養器
(5%CO2+95%air )中、37℃、PH7,
0〜7.2で培養した。培養液は牛胎児血清(FBS
、 5%)と馬血清(HS、 10%)を含むDulb
ecco’s modified Eagle’s m
sdium(DME 、 85%)を用いた。細胞が1
0日間の培養で定常期に達した後、培地を除き水冷した
Ca−Mgを含まないリン酸緩衝生理食塩水(Dulb
ecco+ P)17゜0)で2回洗い、細胞をはがし
、遠心管に集め、冷却遠心機(日立社製)内で1 、0
00rpm、5分で遠沈して一皿あたり3X10”の細
胞を集めた。これに2%トリトンX−100、0,15
M食塩、50trg /mgフェニルメチルスルフォニ
ルフルオライド(PMSF)を含む10mM )リス・
塩酸緩衝液(PH7,6) 0.1mlを加え、ホモジ
ナイズし、4℃で30分間抽出を行った。次いで高速遠
心分離(40,OOOrpm )を60分間行い、得ら
れた上清に10倍量のエタノールを加え、10分間遠心
分離(3,00Orpm) L、上清を除去した。得ら
れた沈澱に9.5M尿素、2%NP−40(半井社製)
、2%アンホライン(PH3,5〜10)(ファルマシ
ア製)、5%メルカプトエタノール、0.25%ソジウ
ムドデシルサルフェート(以下SOSと略記)よりなる
可溶化溶液に溶かし溶液とした。次いでこの溶液の二次
元電気泳動を行い、各タンパク質を分離し、分子量及び
等電点を測定した。対照のタンパク質として、いずれも
Sigma社製のチログロブリン(分子量330,00
0 > 、ラクトフェリン(同88,000) 、ウ
シ血清アルブミン(同67、000)、卵白アルブミン
(同43,000)及びアルドラーゼ(同34,000
)を用いた。一次元目の電気泳動には次の処方のゲルを
使用した。〔尿素2.76g 、30%アクリルアミド
0.67m1.10%NP−401mlアンホライン(
PH3,5−10) 0.25m1.10%過硫酸アン
モニア10A11,5%TEMED 0.14m1.水
0.91m1) (6本分)。サンプルをこの一次元
ゲルにかけ、陽極液として10mM H3PO4、陰極
液として20mM NaOHをそれぞれ用い、400v
で13時間、次いで800Vで1時間電気泳動を行った
。次いで泳動後のゲルをSO3試料緩衝液(10%グリ
セリン、5%β−メルカプトエタノール、2.3%SO
3,62,5mM )リス−塩酸緩衝液(PH6,8)
)と平衡化し、7.5%のアクリルアミドスラブゲル
(25mM )リス、192mMグリシン、0.1 %
SOS ) ニかけ、120Vテ4時間二次元目の電気
泳動を行った。分離した各タンパク質を0.05%クマ
シブルー、10%メチルアルコール、10%酢酸で1時
間染色した後、10%メチルアルコール、10%酢酸で
脱色し各タンパク質スポットを測定した。正常ラット脳
および正常マウス脳には見い出せないスポットをNAK
−1ないしNAK−6と名づけた。更に正常ラット脳に
はわずかじか存在しないが、本PC12株細胞には多量
に存在するスポットをNAK−7およびNAK−8と名
づけた。
結果を表−1に示す。
実施例2
実施例1と同様の条件で培養開始したラット褐色細胞腫
PC12株細胞の培養液を、2日後捨て、2゜5S N
GF (V、Bocchini and P、V、An
geletti+ Proc、Nat、Acad、sc
i、U、s、A、、旦(1969) 787−794を
参照)を50ng/ml含む新しい培養液を10m1加
え、NGF処理を行った(Tatsuro Koike
、 Brain Re5earch、 2羽(1983
) 293−303を参照)。NGFを加えた後、1日
後、2日後、3日後、5日後、NGF処理時間の異なる
それぞれの皿の培養液を捨て、氷冷したリン酸緩衝生理
食塩水で2回洗い、以下実施例1と同様の方法で、I
XIO”の細胞を集めた。次いで実施例1と同様の方法
で本細胞を処理し、そのホモジネートを二次元電気泳動
して抽出タンパク質を分離・検出し、その性状を確認し
た。正常ラット脳および正常マウス脳には見い出せない
NAK−1ないしNAK−6タンパク質が検出された。
PC12株細胞の培養液を、2日後捨て、2゜5S N
GF (V、Bocchini and P、V、An
geletti+ Proc、Nat、Acad、sc
i、U、s、A、、旦(1969) 787−794を
参照)を50ng/ml含む新しい培養液を10m1加
え、NGF処理を行った(Tatsuro Koike
、 Brain Re5earch、 2羽(1983
) 293−303を参照)。NGFを加えた後、1日
後、2日後、3日後、5日後、NGF処理時間の異なる
それぞれの皿の培養液を捨て、氷冷したリン酸緩衝生理
食塩水で2回洗い、以下実施例1と同様の方法で、I
XIO”の細胞を集めた。次いで実施例1と同様の方法
で本細胞を処理し、そのホモジネートを二次元電気泳動
して抽出タンパク質を分離・検出し、その性状を確認し
た。正常ラット脳および正常マウス脳には見い出せない
NAK−1ないしNAK−6タンパク質が検出された。
NAK−4およびNAK−5タンパク質の量はNGF処
理3日後に、処理期間中最大に達した。また正常ラット
脳にはわずかしか存在しないが、本PC12株細胞には
多量に存在するスポットが実施例1の定常期のpc株細
胞同様に見られ、同じ< NAK−7およびNAK−8
と名づけた(表−1参照)。
理3日後に、処理期間中最大に達した。また正常ラット
脳にはわずかしか存在しないが、本PC12株細胞には
多量に存在するスポットが実施例1の定常期のpc株細
胞同様に見られ、同じ< NAK−7およびNAK−8
と名づけた(表−1参照)。
実施例3
ラット由来ダリア細胞腫C6株(ATTC由来)を、培
養液の組成がDME95%とFB35%であること以外
は実施例1と同様の条件で、皿1枚中、7日間培養した
。そして2枚の皿から実施例1と同様の方法で1×10
8の細胞を集めた。次いで実施例1と同様の方法で本細
胞のタンパク質を抽出し、二次元電気泳動で分離し、正
常ラット脳および正常マウス脳には見い出せないタンパ
ク質スポットを検出し、NAK−1、NAK−2、NA
K−3およびNAK−6と名づけた。NAK−3は他の
細胞の場合に比しその量が多かった。また正常ラット脳
にはわずかしか存在しないが、本細胞には多量に存在す
るスポットが見られNAK−7と名づけた(表−1参照
)。
養液の組成がDME95%とFB35%であること以外
は実施例1と同様の条件で、皿1枚中、7日間培養した
。そして2枚の皿から実施例1と同様の方法で1×10
8の細胞を集めた。次いで実施例1と同様の方法で本細
胞のタンパク質を抽出し、二次元電気泳動で分離し、正
常ラット脳および正常マウス脳には見い出せないタンパ
ク質スポットを検出し、NAK−1、NAK−2、NA
K−3およびNAK−6と名づけた。NAK−3は他の
細胞の場合に比しその量が多かった。また正常ラット脳
にはわずかしか存在しないが、本細胞には多量に存在す
るスポットが見られNAK−7と名づけた(表−1参照
)。
実施例4
ラット由来下垂体腫瘍GH3株細胞(ATTC由来)を
、実施例1と同様の条件で、皿3枚、7日間培養した。
、実施例1と同様の条件で、皿3枚、7日間培養した。
そして実施例1.と同様の方法で5X107の細胞を集
めた。次いで実施例1と同様の方法で本細胞のタンパク
質を抽出、分離し、正常ラット脳および正常マウス脳に
は見い出せないタンパク質スポットを検出し、NAK−
1、NAK−2、NAK−3およびNAK−6と名づけ
た。また正常ラット脳にはわずかじか存在しないが、本
細胞には多量に存在するスポットが見られNAK−7と
名づけた(表−1参照)。
めた。次いで実施例1と同様の方法で本細胞のタンパク
質を抽出、分離し、正常ラット脳および正常マウス脳に
は見い出せないタンパク質スポットを検出し、NAK−
1、NAK−2、NAK−3およびNAK−6と名づけ
た。また正常ラット脳にはわずかじか存在しないが、本
細胞には多量に存在するスポットが見られNAK−7と
名づけた(表−1参照)。
実施例5
ラット由来骨格筋筋原細胞If!L6株(^TTC由来
)を実施例3と同様の条件で、皿3枚、6日間培養した
。そして実施例1と同様の方法で3X10?の細胞を集
めた。次いで実施例1と同様の方法で本細胞のタンパク
質を抽出、分離し、正常ラット脳および正常マウス脳に
は見い出せないタンパク質スポットを検出し、NAK−
1、NAK−2、NAK−3およびNAK−6と名づけ
た。また正常ラット脳にはわずかしか存在しないが、本
細胞には多量に存在するスポットが見られNAK−7お
よびNAK−8と名づけた(表−1参照)。
)を実施例3と同様の条件で、皿3枚、6日間培養した
。そして実施例1と同様の方法で3X10?の細胞を集
めた。次いで実施例1と同様の方法で本細胞のタンパク
質を抽出、分離し、正常ラット脳および正常マウス脳に
は見い出せないタンパク質スポットを検出し、NAK−
1、NAK−2、NAK−3およびNAK−6と名づけ
た。また正常ラット脳にはわずかしか存在しないが、本
細胞には多量に存在するスポットが見られNAK−7お
よびNAK−8と名づけた(表−1参照)。
実施例6
マウス由来神経芽細胞腫N−18株細胞を実施例3と同
様の条件で、皿5枚、7日間培養した。そして実施例1
と同様の方法で4 XIO”の細胞を集めた。次いで実
施例1と同様の方法で本細胞のタンパク質を抽出し、二
次元電気泳動で分離し、正常マウス脳には見い出せない
タンパク質スポットを検出し、NAK−1、NAK−2
、NAK−3、NAK−6、NAK−7およびNAK−
8と名づけた(表−1参照)。NAK−6タンパク質は
ノイラミニダーゼ処理を行った後、二次元電泳法により
分析してもそのスポットの位置に変化はなかった。
様の条件で、皿5枚、7日間培養した。そして実施例1
と同様の方法で4 XIO”の細胞を集めた。次いで実
施例1と同様の方法で本細胞のタンパク質を抽出し、二
次元電気泳動で分離し、正常マウス脳には見い出せない
タンパク質スポットを検出し、NAK−1、NAK−2
、NAK−3、NAK−6、NAK−7およびNAK−
8と名づけた(表−1参照)。NAK−6タンパク質は
ノイラミニダーゼ処理を行った後、二次元電泳法により
分析してもそのスポットの位置に変化はなかった。
実施例7
マウス由来神経芽腫癌細胞N−115株細胞を実施例3
と同様の条件で、皿5枚、7日間培養した。
と同様の条件で、皿5枚、7日間培養した。
そして実施例1と同様の方法で3X107の細胞を集め
た。次いで実施例1と同様の方法で本細胞のタンパク質
を抽出、分離し、正常マウス脳には見い出せないタンパ
ク質スポットを検出し、NAK−1、NAに−2、NA
K−3、NAK−6、NAK−7およびNAK−8と名
づけた(表−1参照)。NAK−6タンパク質はノイラ
ミニダーゼ処理を行った後、二次元電泳法により分析し
てもそのスポットの位置に変化はなかった。
た。次いで実施例1と同様の方法で本細胞のタンパク質
を抽出、分離し、正常マウス脳には見い出せないタンパ
ク質スポットを検出し、NAK−1、NAに−2、NA
K−3、NAK−6、NAK−7およびNAK−8と名
づけた(表−1参照)。NAK−6タンパク質はノイラ
ミニダーゼ処理を行った後、二次元電泳法により分析し
てもそのスポットの位置に変化はなかった。
実施例8
マウス由来の平滑筋様脳腫瘍BC381株細胞(^TT
C由来)を、培養液の組成がDMB 90%とFB51
0%であること以外は実施例1と同様の条件で、皿3枚
、14日間培養した。そして実施例1と同様の方法でl
Xl0”の細胞を集めた。次いで実施例1と同様の方法
で本細胞のタンパク質を抽出、分離し、正常マウス脳お
よび正常ラット脳には見い出せないタンパク質スポット
を検出し、NAK−1、NAに−2、NAK−3および
NAK−6と名づけた。NAK−1およびNAK−2は
他の細胞の場合に比し、その量が多かった。また正常ラ
ット脳にはわずかしか存在しないが、本細胞には多量に
存在するスポットが見られNAK−7と名づけた(表−
1参照)。
C由来)を、培養液の組成がDMB 90%とFB51
0%であること以外は実施例1と同様の条件で、皿3枚
、14日間培養した。そして実施例1と同様の方法でl
Xl0”の細胞を集めた。次いで実施例1と同様の方法
で本細胞のタンパク質を抽出、分離し、正常マウス脳お
よび正常ラット脳には見い出せないタンパク質スポット
を検出し、NAK−1、NAに−2、NAK−3および
NAK−6と名づけた。NAK−1およびNAK−2は
他の細胞の場合に比し、その量が多かった。また正常ラ
ット脳にはわずかしか存在しないが、本細胞には多量に
存在するスポットが見られNAK−7と名づけた(表−
1参照)。
本実施例により明らかにされたこれらNAK−1ないし
NAK−8タンパク質は、本発明者の先に出願した前記
特願昭58−206899および特願昭60−7355
0に記載したタンパク質とは、分子量が近似していても
等電点の違いやノイラミニダーゼに対する感受性などで
違いがあり、別なタンパク質と考えられる。
NAK−8タンパク質は、本発明者の先に出願した前記
特願昭58−206899および特願昭60−7355
0に記載したタンパク質とは、分子量が近似していても
等電点の違いやノイラミニダーゼに対する感受性などで
違いがあり、別なタンパク質と考えられる。
作用
本発明のタンパク質は脳神経系の組繊細胞の成長の必須
因子あるいは促進物質として作用し、生体に投与するこ
とによりその効果を発揮する。また本タンパク質は各種
の腫瘍マーカーなどとしても有用であり、これらに対す
る抗体を利用した癌の診断および治療が期待される。
因子あるいは促進物質として作用し、生体に投与するこ
とによりその効果を発揮する。また本タンパク質は各種
の腫瘍マーカーなどとしても有用であり、これらに対す
る抗体を利用した癌の診断および治療が期待される。
Claims (1)
- 動物由来脳神経系腫瘍細胞に存在し、二次元電気泳動法
による分子量が55,000ないし140,000であ
り、等電点が4.5ないし5.8であることを特徴とす
るタンパク質。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60115502A JPS61275221A (ja) | 1985-05-30 | 1985-05-30 | タンパク質 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60115502A JPS61275221A (ja) | 1985-05-30 | 1985-05-30 | タンパク質 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61275221A true JPS61275221A (ja) | 1986-12-05 |
Family
ID=14664103
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60115502A Pending JPS61275221A (ja) | 1985-05-30 | 1985-05-30 | タンパク質 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61275221A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1989001947A1 (fr) * | 1987-08-22 | 1989-03-09 | Mitsui Toatsu Chemicals, Incorporated | Proteine derivee d'un corps vivant |
| WO2000049410A3 (en) * | 1999-02-16 | 2001-03-08 | Us Health | Lcm (laser capture microdissection) for cellular protein analysis |
| US6969614B1 (en) | 1999-02-16 | 2005-11-29 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Methods for the isolation and analysis of cellular protein content |
-
1985
- 1985-05-30 JP JP60115502A patent/JPS61275221A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1989001947A1 (fr) * | 1987-08-22 | 1989-03-09 | Mitsui Toatsu Chemicals, Incorporated | Proteine derivee d'un corps vivant |
| WO2000049410A3 (en) * | 1999-02-16 | 2001-03-08 | Us Health | Lcm (laser capture microdissection) for cellular protein analysis |
| US6969614B1 (en) | 1999-02-16 | 2005-11-29 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Methods for the isolation and analysis of cellular protein content |
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