JPS61502814A - 光動力的除草剤 - Google Patents

光動力的除草剤

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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 弐−勤一カーはり 本出願は、1984年7月27日に出願された係属中の出願番号第634,93 2号の一部継続出願である。
本明細書に記載の発明は、ザ・ニー・ニス・デパートメント・オヴ・アグリカル チ+ −(the Ll、S、Department of Agri−cuH ,ure)、ザ・ナショナル・サイエンス・ファンデーション(the Nat ional 5cience Foundation)およびザ・ユニバージテ ィー・オヴ・イリノイ (the 1Jniversity of l1lin ois)からの認可によって支持された研究の間になされたものである。
本発明は、除草剤組成物および方法に、さらにとりわけ植物中に光動力的テトラ ピロールの蓄積をmQするための除草剤組成物および方法に関する。
除草剤による望ましくない植物の除去は現代の農業の実際に列して臣n界的であ り、多量の時間および金が、現在、有効で環境的に安全な除草剤の発見にあてら れている。一般に、この発見は除草剤活性に対するある範囲の生化学物質のスク リーニングから始まる。次いで、有望な除草剤活性を示す化学物質を、その物質 の効力、選択性、環境的影響、および魚類、昆虫および動物への毒性作用を定義 することを目的とする一層の試験に付す。この計画において、作用の様式の理解 は無関係であり、その優先性は低い。その結果、広く用いられている所定の除草 剤の詳しい作用様式はいまだに完全には理解されていない。例えば、バービサイ ド ハンドブック(Herbicide Handbook) 、ベステ、シー 、イー、 (Bes te、 C,E、)、編集〔ウィードサイエンスソク、オ ヴアメリカ (WeedScience Soc、 of America)、 シャンペイン(Champain)、イリノイ州、1983年〕、1〜469頁 を参照されたい。安全で効果的な除草剤の選択および/または設計に対する確固 とした科学的根拠もなく、環境へのまたは標的でない植物および動物への有害な 影響を及ぼしそうな化合物を組織立てて排除するための科学的根拠もない。
従って、本発明の目的は除草剤の組織立った計画および処方のモデルを提供する ことにある。
本発明の別の目的は確実な根拠のある生化学的原理に基づく予定された新規な作 用様式を介して望ましくない植物を殺す除草剤の分類を提供することにある。
本発明のさらに別の目的は環境的に安全で選択性がありかつ低濃度で有効な除草 剤を提供することにある。
今や、δ−アミルプリン酸および/またはδ−アミルプリン酸の誘導物質(in ducer)および/またはδ−アミルプリン酸の光動力的テトラピロールへの 転換の促進剤(enhancer)および/またはジビニルテトラピロールのモ ノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤(inhibitor)を含有する組 成物は植物に適用され次いでその植物が光に暴露される場合に安全で、有効で選 択性のある除草剤となることが発見された。本発明の除草剤組成物は、光動力的 テトラビロール中間体の誘導された蓄積を含むと考えられている作用によって植 物組織の死および破壊をもたらす。
本明細書中で用いる以下の語は特に断らない限り以下の意味を有する。AIK− 未知の鎖長のアルキル基、ALA−δ−アミルプリン酸、Chl−クロロフィル 、Chlidea−クロロフィリド土、coprogen =コブロボルフィリ ノゲン、CV=品種(culむ1var) 、dicot=双子葉植物、DP− ジピリジル、DV−ジビニル、E−エステル、F、Al−脂肪アルコール、1、 讐肝−低波長メタロポルフィン(環E形成の推定上の中間体)、M−メチル化、 ME=メチルエステル、Me−メチル、Me、 P−メチルプロピオネート、m onoco を−単子葉植物、MPE=Mg−プロトポルフィリンモノエステル 、MP(E)=MPEとMg−プロトポルフィリン ル、P=ゲラニオールによるエステル化、それに続くゲラニオールのフィトール への段階転換、PBG−ポルホビリノゲン、PChl=7’ロトクロロフィル、 PChlide=プロトクロロフィリド、Phy−フィトール、Proto=プ ロトポルフィリン■、Protogen =プロトポルフィリンゲン、Urog en =ウロボルフィリノゲン、var−変種(variety)。
本発明を第1図(6つに分岐したChla生合成経路)および第■図(第1図に 示したメクロテトラビロールのいくつかの代表的構造)と共にさらに詳細に説明 する。
クロロフィル生合成は生物圏における主要な生物学的現象であり、緑化の間の光 合成膜の生合成におよび成熟した緑色植物中のChlの修復および維持に必須の ものである。クロロフィルは緑色植物において光合成の作用を介する太陽エネル ギーの化学エネルギーへの転換を触媒する一群のMg−テトラピロールである。
クロロフィルa (Chla)およびクロ学エネルギーへの変換に関係しており 、一方Chlbは太陽エネルギーの収集にのみ関係していると考えられている。
極く最近まで、緑色植物において光合成過程は葉緑体膜の特定のりボタンバク質 と共同してただ1種類のChi aによって触媒されると考えられていた。最近 になって、10種類もの異なるChlaが関与し得るということが見い出された 。第1図に示すように、これら10種類のChi aはすべて、1つの共通の前 駆体δ−アミルプリン酸(ALA)からの多数の分岐した経路を介して、集合的 にテトラビロールまたはテトラビロール中間体(第■図参照)と呼ばれる一連の ポルフィリン、Mg−ポルフィリンおよびプロトクロロフィル中間体を介して合 成される。クロロフィル合成経路を広範囲に再調査するには、レベイツ、シー、 ニー、(Rebeiz, C. A.)、ニス、エム、つ(S. M. Wu) 、エム、クハジャ(M, Kuhadja)、エイチ.ダニエル(H. Dan iell)およびイー、ジエイ.バーキンス(E.J. Perkins) 、 モル、セル、バイオケム. (Mo1.Cell。
Biochem.) 57 : 97〜125頁(1983年)を参照されたい 。
5炭素アミノ酸であるδ−アミルプリン酸は大部分の生きている動物および植物 細胞中に見い出されるものであり主たるテトラビロール前駆体である。これは種 々の化学特製品の供給所、例えば、ミズーリ州セントルイス在のシグマ・ケミカ ル社(Sigma Chemical Co.)から入手できる。実験室で少量 のALAを用いて処理された切取られた植物組織はChlide土およびChl aの中間前駆体であるPChlideを合成し蓄積すること、およびALAはC hl生合成経路の初期のテトラビロール中間体、例えば、コブロポルフィリン、 Pro toおよびMP (E)の蓄積を誘導することが知られている。第1図 に示したように、ALAがテトラビロール中間体の合成を刺激すると、そのテト ラビロール中間体は通常日光の存在において種々の形のChlaに転換される。
しかしながら、この律速の転換は暗所では起こらない。日光のない状態では、テ トラビロール中間体はそのそれぞれの代謝プールに少量蓄積する。
る。
1974年に、カステルフランコ、ビー、ニーjcastelfranco。
P.A.) 、ピー、エム、リッチ(P. M. Rich)およびニス、アイ 、ピーク (S. 1. Beak)はプラント フィシオル、(PlantP hysiol.) 53 : 615〜618頁において、貧化組織の緑化の誘 導期を研究する間に、暗所で16時間ALAに浸された切取られたキュウリ子葉 は次の光への暴露後に明らかな組織の損傷を被り、これは外因的ALAから形成 されるテトラピロールに原因するものであったということを述べている。この現 象は極めて弱い赤色光を用いた照射によってまたはm続光を用いた照射によって 避けられるものであると考えられた。本発明までの間、外因的ALAによるテト ラピロールの蓄積は貧化の特有な状況に帰すことができる現象であると信じられ ていた。実際に、貧化組織の緑化が開始されると、クロロフィルの生合成は正常 な緑色組織において見い出せない程の異常な高率で進む。 “ 今や、生きている緑色植物は外因的ALAへの暴露によって生きている植物に通 常見い出されるレベルを越える多量の光動力的テトラピロール中間体を人為的に 蓄積するように誘導され得ること、およびこのようにして人為的に誘導された高 レベルは誘導された植物を次に日光へ暴露することが致命的である程十分に光動 力的であることが見い出された。これは驚くべきことである。なぜならば、全緑 色植物は葉の伸長および修復に遅れないに十分な速度でのみクロロフィルを合成 するからであり、この速度が致死量のテトラピロールの蓄積を許容するに十分で あるということは従来考えられていなかったからである。
蓄積されたテトラピロールは極めて強力な酸化体である一重項酸素の形成に光増 感を与えると考えられる。−他項の酸素は迅速に植物細胞膜のりボタンバク質成 分を酸化して、高分解遊離基連鎖反応を始動させる。これを以下のように要約す ることができる(hν=光の光子、’Tet=−重項基底状他項基底状態ロール 、”Tet“=三他項励起状態のテトラピロール、30□=三重項基底状態の酸 素、10□′=−他項励起状態の酸素、UMLP =不飽和の膜リポタンパク質 ):1)’Tet+hシーー→ ”ret”2) ”Te t” + 302  −〉’Te t 十’Qz”3) ’Oz” +(UMLP) −−→ヒドロベ ルオキシド4)ヒドロベルオキシドー−→遊離基 9)】分離、1.(、+−11MLP−−−−一一より多量のヒドロペルオキシ ド6)大部分のU M L Pが酸化されるまで工程(4)および(5)の反復 1入されたテトラピロールによる光増感は動物およびヒトの耕itvにおいて記 載されている〔例えば、エレフソン、アール。
ディ、 (Ellefson、 R,D、) 、マヨ クリニック ブロク(M ayo Cl1nic Proc、) 57 : 454〜458 Tj (1 982年);クリスヲンセン、ティー、 (Christensen、 T、)  、ティー、サンドハーグ(T、 5andquist)、チー。フェレン(K 、 Feren)、エイチ。
ワクスヴイソク(Il、 Waksvik)およびジェイ、モーノ(、J、 M oan)、プル、ジェイ、キャンサー(Br、 J、 Cancer) 48  : 35〜43頁(1983年);ホプフ、エフ、アール、 (llopf、  F、 R,)および(Dolphin、 D、) 、kl集(アカテミノ’)  7’ Ii ス、ニュー ヨーク、 1978年)、161〜195真:サンド ハーグ、ニス、 (Sand−berg、 S、) 、アイ、ロムスロ(1,R omslo) 、ジー、ホヴディング(G、 Hovding)およびティー、 ブジョルンダール(T。
Bjorndal) 、アクタ デルマトヴエナ−(Acta Dermato vener)(ストックホルム)サプル、(Suppl、) 100 : 75 〜80頁(1982年);ラサム、ビー、ニス、 (Latham、 P、S、 )およびジェイ。
アール、ブルーマーU、 R,Bloomer) 、フォトサム。フォトパイオ ル、(Photochem、 Photobiol、) 37 : 553〜5 5T頁(1983年);ビノカーズ、ディー、アール、 (Bickers+  D、 R,)、アール、ディグジット(R,Dixit)およびエイチ、ムクク ー(11゜Mukh tar)、ハイオキム、ハイオフィズ、レス、コム、 ( Biochim。
Biophys、 Res、 Comm、) 108 : 1032〜1039 頁(1982年)を参照されたい〕が、この現象は今まで全緑色植物において証 明されたことはなく、また望ましくない感受性の植物種を選択的に殺すように適 用されたことはなかった。
さらに、外因的ALAへの暴露のほかに、ALAの誘導物質に生きている植物を 暴露することによっても植物組織中に多量の光動力的テトラピロール中間体の蓄 積が起こることが見い出された。r A L Aの誘導物質」または「誘導物質 」とは、植物に適用された場合に、植物を刺激して前述した外因的ALAと同し 効果を持つ内因的ALAを正常量より多量に生ずる化合物をいう。従って、本発 明の除草剤組成物はALA自体に加えてまたはそれに代えて1種またはそれ以上 のALAの誘導物質を含んでいることができる。限定的でない誘導物質の例は、 例えば、0−フェナントロリン、1.7−フェナントロリン、4,7−フェナン トロリンおよびフェナントロリンであり、これらはすべて、例えば、マサチュー セッツ州ダンバーズ(Danvers)在のアルファ・プロダクツ(Alpha  Products)から入手することができる。0−フェナントロリンが好ま しい。
2.2′−ジピリジルは切取られた植物組織においてテトラビロールの生合成お よび蓄積を促進することが証明された。
例えば、デュガン、ジェイ、 (Duggan、 J、)およびエム、ガスマン (M、 Gassman)、プラント フィシオル、(Plant Physi ol、)53:206〜215頁(1974年)を参照されたい。しかしながら 、所定の化合物が全緑色植物においてALAの促進剤として機能することは従来 知られておらず今初めて発見された。
r A L、 Aの促進剤」または「促進剤」とは生きている全緑色植物に適用 された場合に処理された植物の外因的または内因的ALAを光動力的テトラビロ ールに転換する能力を高める化合物をいう。従って、本発明の除草剤組成物はA LAまたはALAの誘導物質に加えてまたはそれらに代えて1種またはそれ以上 のALAの促進剤を含んでいることができる。限定的でない適当な促進剤の例は 、例えば、2,2′−ジピリジル(2,2’−DP)、2.3’−ジピリジル( 2、3’−DP)、4.4’−ジピリジル(4,4’−DP)、ピリジンアルデ ヒド、ピリジンアルドオキシムおよびピコリン酸であり、これらはすべてライス コンシン州ミルウォーキー(Milwaukee)在のアルドリッチ・ケミカル 社(八ldrichChemicalCo、)から入手することができる。2. 2’−DP。
ピコリン酸およびピリジンアルデヒドが好ましい。ある組成物中で誘導物質とし て機能する所定の化合物は別の組成物中でまたは異なる濃度で促進剤として機能 することができる。
例えば、2.2’−DPは30mMより高い濃度において誘導物質にもなる。
第1図かられかるように、合成経路の技の3つはジビニル(DV)経路として示 されており、その2つのモノカルボン酸経路は光の存在においてdicotおよ びmonocotで優勢であると考えられる。残りの3つの技はモノビニル(M V)経路として示されており、その2つのモノカルボン酸経路は暗所においてm onocotで優勢である。植物はいずれの経路が優勢であるかによって「モノ ビニル」植物または「ジビニル」植物として分類することができる。モノビニル 植物は暗所においてM■モノカルボン酸生合成ルートを介してMV PChli deを蓄積しそして光への暴露後MVモノカルボン酸ルートを介して初めに主と してChlを生成する植物種である。ジビニル植物は暗所において主としてD  V PChlideを蓄積しそして光への暴露後DVモノカルボン酸生合成ルー トを介して初めに優先的にCh、 ]を生成する植物種である。日光中で数時間 後、MV植物およびDV植物は両方ともDVモノカルボン酸ルートを介してCh iを生成するように思われる。
DV植物種において、人為的な多量のDVテトラビロールまたは等しいかもしく は低いレベルのMVテトラピロールの蓄積は次の光への暴露移植物にとって致死 的であり、一方MV植物種においてはその逆が真であり、すなわち人為的な多量 のMVテトラピロールまたは等し、いかもしくは低いレベルのDVテトラピロー ルの蓄積は次の光への暴露後致死的であることが発見された。ALAおよび/ま たは誘導物質および/または促進剤の所定の配合物はMV植物におけるMVテト ラピロールの蓄積に好都合であり、一方他のそのような配合物はMV植物におけ るDVテトラピロールの蓄積に好都合であることも発見された。同様に、ALA および/または誘導物質および/または促進剤の所定の配合物はDY植物におけ るDVテトラピロールの蓄積に好都合であり、一方他の配合物はDV植物におけ るMVテトラピロールの蓄積に好都合である。さらに、所定の化合物はDV抑制 剤として機能することが発見されたrDV抑制剤」または「抑制剤」とは、植物 に適用された場合に、DVテトラピロールのMVテトラビロールへの転換を抑制 する化合物をいう。限定的でない抑制剤の例は2.3’−DP、2.4’−DP および4.4’−DPである。2.3’−DPが好ましい。従って、当業者によ って容易に為し得るALAおよび/または誘導物質および/または促進剤および /または抑制剤の適当な配合物の適切な選択によって、MVまたはDV植物種を 優先的に殺すことができる。さらに、異なる植物種はその光動力的感受性におい て変化するので、選択的に別種の植物よりある種類のMV植物をまたは別種の植 物よりある種類のDV植物を殺す適切な配合物を選択することができる。
本発明の除草剤組成物はALA、誘導物質、促進剤および抑制剤からなる群より 選ばれる2種またはそれ以上の化合物の組合わせを含んでいることもできる。こ の組合せは、例えば、ALA+1種またはそれ以上の誘導物質、ALA+1種ま たはそれ以上の促進剤、ALA+1種またはそれ以上の抑制剤、ALA+1種ま たはそれ以上の誘導物質+1種またはそれ以上の促進剤、ALA+ 1種または それ以上の誘導物質+1種またはそれ以上の抑制剤、ALA+1種またはそれ以 上の促進剤+1種またはそれ以上の抑制剤、1種またはそれ以上の誘導物質+1 種またはそれ以上の促進剤、1種またはそれ以上の誘導物質+1種またはそれ以 上の抑制剤、1種またはそれ以上の促進剤+1種またはそれ以上の抑制剤、1種 またはそれ以上の誘導物質+1種またはそれ以上の促進剤+1種またはそれ以上 の抑制剤等である。
本組成物は1種もしくはそれ以上の下記のものを含んでいることもできる:適当 な担体〔例えば、コロイドマグネシウムアルミニウムシリケート、軽石、タルク またはそれらの組合わせ〕 ;溶剤〔例えば、水、0.45アセトン: 0.4 5エタノール:0.1ツイーン80:9水(v/v/v/v) 、0.45アセ トン: 0.45メタノール二〇、1ツイーン80:9水(V/V/v/v)、 水中0.1〜1%ツイーン80 (V/V) 、0.9ポリエチレングリコール (PEG10.1ツイーン80:9水(v/’v/v) 、0.1〜0.7 P EG : 0.2〜0.8メタノール:0、1ツイーン80:9水(V/V/V /V) 、0.9メタノール:0.1ツイーン80:9水(v/v/v) 、0 .45アセトン:0.45エタノール;0.2ツイーン80:0.9エチレング リコール:18水(v/v/v/v/v) 、または1種もしくはそれ以上の下 記のもの:ベンゼン、トルエン、キシレン、ケロシン、2−メトキシエタノール 、プロピレングリコール、ジエチレングリコール、ジエチレングリコールジエチ ルエーテル、ホルムアミド、メチルホルムアミド、シクロヘキサノン、イソホロ ン〕 ;緩衝剤〔例えば、クエン酸〕 ;湿潤剤〔例えば、ナトリウムN−メチ ル−N−オレオイルタウレート、アルキルフェノキシポリオキシエチレンエタノ ール、α−オレフィンスルホン酸ナトリウム、イソプロピルナフタレンスルホン 酸ナトリウム、ポリオキシエチル化植物油〕 ;分散助剤〔例えば、リグニンス ルホン酸ナトリウム、ナフタレンスルホン酸−ホルムアルデヒド縮合物のナトリ ウム塩、ヒドロキシエチルセルロース〕 ;脱泡剤〔例えば、シリコーン〕 ; 吐剤〔例えば、トリポリリン酸ナトリウム、ピロリン酸四カリウム、アレコチン 、アポモルヒネ、硫酸銅〕 ;悪臭物質〔例えば、ピリジン] ;浸透剤;界面 活性剤;乳化剤;アジユバント〔例えば、フィトブレンドオイル〕 ;および1 種またはそれ以上の他の既知除草剤、例えば、Goal” Cペンシルベニア州 フィラデルフィア在ローム・アンド・ハース社(Rohm &Haas Co、 ) )、La5so” Cミズーリ州セントルイス在モンサント社(Monsa nto Co、))、Roundup” (ミズーリ州セントルイス在モンサン ト社〕または5utan Plus” (コネチカソト州つェストボート在スト −ファー・ケミカル社(StaufferChemical Co、) )。も ちろん、任意のかかる追加の成分は本発明の除草剤成分および混合物中の他の成 分と相溶性でなければならない。
本組成物は、当業者に公知の手順に従って、除草剤調製物に常用されている任意 に方法により、例えば、溶液、懸濁液、乳濁液、流動性濃厚物、乳化性濃厚物、 ゲル、ペースト、フオーム、クリーム、エアゾール、湿潤性粉末、ダスト、分散 性顆粒等として調製することができる。好ましくは、本組成物は溶液、懸濁液、 乳濁液、エアゾール、流動性または乳化性濃厚物、または湿潤性粉末である。も ちろん、本配合物はその活性成分が植物組織に浸透してテトラピロール合成の部 位まで移動するようなものでなければならない。本組成物は溶液として調製する 場合に、好都合には約2〜約30mMのALAおよび約10〜約30mMの誘導 物質、促進剤または抑制剤を含んでいる・ことができる。
本発明の除草剤組成物は典型的には、例えば、ダスト、ソータ、ディツブ、スプ レー、ミストまたはフオッグとして、光動力的テトラビロールの蓄積を誘導する に十分量で適用することができる。これに代えて、本除草剤組成物は、植物の根 によって吸収させそして植物の茎葉部へ移動させるように、または種子の発芽を 阻止する出芽前処理として土壌に適用することができる。適用される本除草剤組 成物の量は選ばれる特定の活性成分に応じて変化するが、概して1ニーカー当り 約Log〜約15kgのALAおよび/または1ニーカー当り約Log〜約10 kgの誘導物質、促進剤または抑制剤を供給するに十分な量である。最適な適用 率を決定する方法は当業者の範囲内である。
植物を本発明の除草剤組成物への暴露によって人為的に多量のテトラピロールの 蓄積を開始するよう誘導すると、植物は光への暴露から保護されて最大量のテト ラピロールの蓄積を行ない得る。かかるダークインキュベーションは活性に対し ては必要ないが除草剤組成物の効率を最高にする傾向を有している。植物は、任 意の常法によって、例えば、植物を黒色紙、布またはホイルでおおい包むことに よって、または植物を暗室または暗容器内に置くことによって遮光することがで きる。田畑の条件下では、ダークインキュベーションの期間を与える理想的な方 法は、暗中で少なくとも1時間植物を休ませるように選ばれた時刻に、日暮れに または夜の間に除草剤組成物を適用することである。テトラピロール蓄積を促進 するための暗さには完全に光を無くしてしまう必要はなく、むしろ300〜70 0nmの波長の光が実質的に存在しないことが必要である。好ましくは、植物を 暗中で約1時間から約20時間休ませるようにする。1時間から8時間がとりわ け好ましい。
その後、植物を約300〜約700nmの波長の約61.0m (200f t 、)の燭光またはより多くの光に暴露する。光は任意の好都合な供給源、例えば 、白熱電球、メタルハライドランプ、太陽灯または白色もしくはスカイライトけ い光ランプによって供給することができる。田畑においては、もちろん、好まし い光源は日光である。植物は大部分の不飽和の膜リポタンパク質を酸化するに十 分な時間にわたって光に暴露される。約1日〜約14日間の期間が好ましい。
除草剤活性は葉、茎および/または節の漂白、それに続くしおれおよび死によっ て示される。すべての葉芽が処理されているわけではない場合には、植物が回復 するために繰り返しの処理が必要となることがある。
本発明は以下の限定的でない例からさらに理解することができよう。特に断らな い限りは本明細書中で用いる場合、すべての温度および温度範囲は摂氏系であり そして周囲温度および室温とは約20〜25°Cの温度をいう。パーセントまた は(%)とは重量%をいい、モルとはグラムモルをいう。
「有意水準」とは、相関係数(r)がゼロに等しい母集団について、相関係数が 与えられた標本に対して報告されたrの計算値に等しいかまたはその値を越える 場合に大きさnの標本を取り得る確率をいう。略語rn、s、jは「有意でない 」ということを表わす。
第 I 節 光動力的除草剤組成物測定のための実験方法以下の例は、当業者が本発明に有用 な光動力的化合物および組成物を容易に測定し得るモデルシステムを述べるもの でALAの 倭 が除草1効果 、キュウリ 〔キュカミス サチヴアス エル、 (Cucumissativ us L、) c v ベイト アルファ エムアール(BeitAlpha  MR) 〕実生を温室において深さ9ω直径90のガラス容器中のバーミキュラ イトで発芽させた。ホーグランド液を用いて定期的に実生に水を与えた。光同期 は15m(15ft)燭光の白熱灯を用いて1日当り14時間の光に維持した。
1容器当り10個体まで間引いた6日齢の若い実生にALA〔シグマ ケミカル 社(Sigma Chemical Co、)、ミズーリ州セントルイス在〕を 微細なスプレーとして適用した。ALAは0〜20mMの範囲の濃度で、稀HC βを用いてpo3.sに調整した0、45アセトン: 0.45エタノール:0 ,1ツイーン80:9水(v / v / v / v )からなる溶剤混合物 中に溶解した。
各9 cm直径のガラス容器(約63.6ca1葉表面積)に、約0.15rr r/ニーカー(40ガロン/ニーカー)のスプレー率および約0〜524g/ニ ーカーのA L Aの田畑適用率に等しい0.25mj!のALA(処理)また は0.25mβの溶剤(対照)をスプレーした。溶液は次のようにして、変形ピ アス(Pierce) rキンクススプレー(Quixspray) Jエアゾ ールスプレーキット〔ピアス ケミカル社(Pierce Chemical  Co、) 、イリノイ州ロックフォード在〕を用いて極めて微細かつ均質なスプ レーとして適用した:0.25mAの溶液を、短くした10mβの円錐形遠心管 に入れ、これをキンクススプレースプレージャー内部に入れた。細い内径のポリ プロピレン管(0,3鶴内径、またはより粘稠な溶液に対しては0.5 am内 径)を介して溶液をポンプ輸送することによって極めて微細なミストの適用を達 成した。細い内径の管の一端をキックススプレー取入れホース内に挿入し、一方 その他端を円錐形遠心管内の溶液中に入れた。
この方法により、0.25mβのスプレーを適用するに要する時間は10〜20 秒であり、この時間は実生に十分にスプレーして葉を飽和させるに十分な時間を 与えた。
スプレーした後、植物をアルミホイルに包み、2層の黒色プラスチックで包まれ たボール箱内に置いた。次いで、この暗箱を28℃で一夜間(17時間)インキ ュベーションし、テトラピロールの生合成および蓄積が起こるようにした。
翌朝、処理した植物をサンプリングしてそのテトラピロール含有量を調べた。暗 箱内の植物は、どのような方法でもそのテトラピロール含有量に影響を与えるこ となく処理組織の取扱いを行ない得る緑色の安全光を備えた暗室へ運んだ。2回 の反復実験のそれぞれについて各2枚の子葉のうちの1枚を切り取った。次いで 、2〜3gのバッチをソーヴアルオムニミキサー(Sorval Omnimi xer) (デュポン インストウルメンツ社(Dupont Instrum ents)、コネチカット州ニュートン在〕を用いてアセトン: 0. I N  NH4oH(9: 1 v/v)中で3gの組織当り18rrlの溶剤の割合 で均質化した。得られる種々のテトラピロールを含有する80%アセトン抽出物 から39.000Xgで0℃において10分間の遠心分離によってリポタンパク 譬および細胞デブリスを取除いた。クロロフィル、十分にエステル化されたテト ラピロールを、レベイツ、シー。
ニー、 (Rebeiz、 c、 A、) 、ジェイ、アール、マセイス(J、  R。
Mathheis) 、ビー、ビー、スミス(B、 B、 Sm1th) 、シ ー、シー、レベイツ(C,C,Rebeiz)およびディー、エフ、ディトン( D、 F、 Dayton)、アーク、バイオケム、バイオフィズ、 (Arc h。
Biochem、 Biophs、)166 : 446〜465頁(1975 年)の方法に従ってヘキサンを用いた抽出により水性アセトン溶液から取出した 。より極性のモノ−およびジカルボン酸テトラピロール、例えば、Proto、 、MP (E)およびPChlideがヘキサン抽出水性アセトン分画中に残っ ていた。これらのテトラピロールの化学構造は、レベイツ、シー、ニー、(Re beiz、 C,A、)およびジェイ、ラソセルズ(J、 La5celles )によるフォトシンセシス:エナジー コンバージョン パイ プランタ アン ドバクテリア(Photos nthesis : Energ Conver sion b Plantsand Bacteria) 、Vol、 1、ゴ ヴインジエ(Govindjee) 、編集〔アカデミツク プレス (Aca demic Press) 、ニューヨーク、1982年〕、699〜780頁 ;およびレベイッ、シー、ニー6、ニス、エム、つ(S、 M、 Wu)、エム 、クハジャ(M、 Kuhadja)、エイチ、ダニエル(H,Daniell )およびイー、ジェイ、パーキンス(E、 J、 Perkins) 、モル、 セルラー バイオケム、(Mol。
Ce1lular Biochem、)57 : 97〜125頁(1983年 )に十分に論じられている。Proto、 MP (E)およびPChlide の量はレベイツ、シー、ニー1、ジェイ、アール、マセイス、ビー、ビー、スミ ス、シー、シー、 レベイツおよびディー、エフ、ディトン、アーク、バイオケ ム、バイオフイズ、(Arch、 Biochem。
Biophys、)171 : 549〜567頁(1975年)の方法に従っ てヘキサン抽出アセトン分画のアリコートについて分光けい先約に測定した。C 旧゛土および−b−を含有するヘキサン抽出物の小アリコートはN2ガス下に乾 燥させ、その残渣を80%アセトン中に再溶解した。次いで、このアセトン溶液 中のChlaおよび互の量を、バザツ、エム、ビー、 (Bazzaz+M、  B、)およびシー、ニー、レベイツ、フォトケム、フォトパイオル。
(Photochem、 Photobiol、) 30 : 709〜721 頁(1979年)に従って分光けい先約に測定した。
けい光スペクトルは、2の赤色感受性長Sho光電子増倍管(EMI 965B )を備えマイクロコンピュータ−システムMode19B25 S (ヒューレ ソトーパソカード社(Hewlett−PLckard)、カリフォルニア州す ニーヴエイル(Sunnyvale)在〕とインターフェースで接続された十分 に補正した光子カウント分光けい光計Model SLM 8000 DS ( エスエルエムーアミンコ社(SLM−八m1nco)、イリノイ州アーバナ(U rbana)在〕で記録した。テトラピロール溶液は、3鶴直径の円筒形マイク ロセル中でQ、3ml試料について室温において観察した。デジタルのスペクト ルデータの濃度への転換は、関係するスペクトルの記録の後、レベイツ、シー、 ニー、およびエイチ、ダニエル、(4th S m osiui on Bio technolo in Energ Productionand Con5 ervation) 、スコツト、シー、ディー、、’1!A集(ジョン ウィ リー アンド サンズ、 ニューヨーク、1982年)、413〜439頁の方 法に従ってマイクロコンピュータ−によって自動的に実施した。発光スペクトル および励起スペクトルは2鶴の励起および発光のバンド幅で記録した。
モノビニルテトラピロールはエーテル中77°Kにおけるその確立した分光けい 先約特性によりジビニルテトラピロールから識別した〔前掲のレベイッおよびラ ッセルズ;前掲のレベイツ、つ、クハジャ、ダニエルおよびバーキンス;ペラン ジャー、エフ、シー(Belanger、 F、 C,)、ジエイ、エックス、 デュガン(J、 X、 Duggan)およびシー、エイ、レベイツ、ジェイ、 パイオル、ケム、 (J、 Biol、 Chem、) 257 : 1360 〜1371頁(1982年);およびペランジャー、エフ、シー0、ジエイ、エ ックス、デュガンおよびシー、エイ、レベイツ、ジエイ、パイオル、ケム、 ( J、 Biol、 Chem、) 257 : 4849〜4858頁(198 2年)−参照〕。低温けい光発光および励起スペクトルはニーエン1.シー、イ ー、 (Cohen、 C,E、)およびシー、ニー・レベイツ、プラント フ ィシオル、(Plant Physiol、) 61 :824〜829頁(1 978年)に記載のように円筒形試験管を用いて記録した。
吸収スペクトルは、スリット−ビーム様式によって操作されるアミツク(Ami nco)三波長分光光度計モデルDW−2(SLM−アミツク、イリノイ州アー バナ在)を用いて2顛のスリット幅で記録した。
m織ホモジネートの遠心分離後に残ったアセトン不溶性残渣を全ガラス製組m磨 砕機を用いて蒸留水中に悲濁させた。
脱脂質化(del 1pidation)後、レベイツ、シー、ニー、、ビー、 ニー、キャステルフランコ (P、 A、 Ca5telfranco)および ニー、エイチ、エンゲルブレヒト (E、 H,Engelbrecht)、プ ラント フィシオル、 (Plant Physiol、)40 : 2B1〜 286頁(1965年)の方法に従って、懸濁液の小アリコートについて全タン パク質を定量した。
次いで、まだそのままその子葉の半分を有している実生を光による光動力的損傷 の評価に用いた。実生を温室内で日光に暴露し〔雲量に依存して、正午で122 〜1524m (400〜5000ft、)燭光〕、その成長を10日間の期間 にわたって評価した。
処理された植物の成長挙動の永続的記録を確保するために、それを毎日写真に撮 った〔コダカラー(Kodacolor) 、400ASA、イーストマン コ ダック社(Eastman Kodak Co、)、ニューヨーク州ロチェスタ ー在)。写真は、写真を撮った日の日付または時刻を各写真に印すデジタルバッ クおよびSMCペンタックス(Pentax)−A 1 : 1.4 50 t mレンズを備えたペンタックススーパープログラムカメラ〔ヘリックス(Hel ix)、イリノイ州シャンペイン在〕を用いて盪影した。パーセント光動力的損 傷を、日光の暴露に反応したスプレーされた組織のパーセント死として評価した 。例えは、スプレーされた10の葉または子葉のうちの10が日光への暴露の結 果として死んだ場合に光動力的損傷を100%であると考えた。スプレーされた 10の葉または子葉のうち5だけが死んだ場合に光動力的損傷を50%だけであ ると考えた、等。
光動力的損傷の程度は通常の相関分析によって蓄積したテトラピロールの量に関 係付けた。蓄積したテトラピロールの量は組織タンパク質100■当りのナノモ ル(nmol)で表わした。
これらの実験結果を第1表および第■図に示す。
第■図は、20mM(524g/ニーカー)ALAで処理した25) 28 ’ Cで17時間のダークインキュベーションを行ないその後温室で日光に暴露〔正 午に1524m (5000ft、燭光)〕シた6日齢のキュウリ実生における 光動力的損傷の時間経過を示すものである。図の左下ずみの数は写真を撮った日 の時刻または日付を示すものである。A、B=17時間のダークインキュベーシ ョン直後の対照(A)および処理(B)植物;C,D:日光に2時間暴露後の同 じ対照(C)および処理(D)植物、 E 、 F’ :日光に5時間暴露後の 同じ対照(E)および処理(F)植物、G、H:温室で24時間後の同じ対照( G)および処理(H)植物。17時間のダークインキュベーション後、処理され た植物は、タンパク質100■当り対照の値に加えてそれぞれ382.82およ び2.、36nmo lのPChlideおよびMP (E)を蓄積していた。
光動力的損傷の徴候は次の2つの形を考えた:徐々に広がる緑色の葉組織の漂白 、例えば第■図H;および胚軸の激しい漂白、例えば第■図り、F。両方の場合 、影響を受けた組織の膨圧の激しい損失を伴っていた。光動力的損傷は細胞膜に 影響を与えてこれを漏出性にすることにより組織の迅速かつ激しい脱水が起こる と考えられる。例えば、10〜20m M (262〜524 g /ニーカー )のALA濃度において、多数の実生が日光への4〜5時間の暴露後年可逆的損 傷を受けた(第■図F)。死の原因は、通常、葉および/または胚軸組織の激し い脱水、漂白および急激な衰弱によるものであった(第■図F 、 H)。一方 、暗中に同じ時間にわたって維持された処理サンプルは影響を受けなかった(例 ■参照)。
例■ 旦旦訂韮 例Iと同様な方法により、下記の代表的化合物がALAの有効な誘4物質である ことを見い出した。
例■と同様にしてキュウリ実生を発芽させ生育させた。1容器当り10個体まで 間引いた6日齢の若い実生に表示のスプレー率で下記の除草剤組成物A−Pの1 つの0.25m1を午後遅くにスプレーした。対照には溶剤だけをスプレーした 。
?容剤はHClを用いてp)13.5に調整した0、457セトン: 0.45 エタノール;0.1ツイーン80:9水(V/V/V/V)であった。植物をホ イルに一夜間包み、翌日ホイルを取除いて10日間温室内に置き、その時点で例 Iの方法に従って光動力的損傷を測定した。
結果を第■表および第■図に示す。
第■図は処理植物に与えられた5日後の損傷を示している。
例■ ALAP テトラピロール の2 、2 ’ −DPにょる゛およびそれに く  ・7、11″イ 2.2′−ジピリジル(2、2’−DP)は比較的安価であって入手容易な化学 物質である。2.2’−DP(シグマケミカル社、ミズーリ州セントルイス在) とALAとの種々の混合物を用いて例Iの手順を繰り返した。結果を第1II、 IVおよびV表に示す。
結果は、少量のALA (5mM、131g/ニーカー)の存在において増加量 の2.2’−DP(それぞれ1.2または4mM=27.54または107 g  /ニーカー)は処理された組織のテトラピロール生合成能力を有意に高めたこ と、さらにそれは混合物の光動力的除草剤特性を高めたことを示している(第■ 表) 、 5〜10 mM(134〜268 g/ニーカー)の範囲の種々の量 の2.2’−DPの存在において、増加量のALA (1〜5mM、26〜13 1g/ニーカー)もテトラピロール蓄積を増大させそして5mMALA(131 g/ニーカー)の濃度まで混合物の光動力的除草剤活性を高めた(第■表A。
B)。添加される2、2’−DPの量の一層の増加は極めて低いALAの濃度( すなわち、3mM、78g/ニーカー)でのみALA+2.2 ’−DPの処理 の光動力的除草剤効果を高めるように思われた(第■表C)。ALAおよび2゜ 2 ’ −DPは相乗的に作用して光動力的損傷を与えるように思われる(第V 表)。ALA+2.2 ’ −DP混合物への15 mM(184g/ニーカー )のジメチルスルホキシド(浸透促進剤)の添加は抑制的でありスプレーの効果 を高めないように思われた(第V表)。
例■ ALAの 的テトラピロールへの−の 進前述のように、2 、2 ’ −DP はALAの促進剤として好ましい。しかしながら、例Iと同様の手順により、下 記の代表的化合物もALAとの組合わせにおいて相乗的効果を生ずる有効な促進 剤であることを見い出した:2.3 ′ 〜DP ピコリン酸 ピリジンアルデヒド ピコリンアルドオキシム。
例Iと同様にしてキュウリ実生を発芽させ生育させた。1容器当り10個体まで 間引いた6日齢の若い実生に表示のスプレー率で下記の除草剤組成物A−FFの 1つ0.25mffを午後遅くにスプレーした。対照には溶剤だけをスプレーし た。
溶剤はl1C1を用いてp)13.5に調整した 0.45アセトン:0.45 エタノール:0.1ツイーン80:9水(V/V/V/V) であった。植物を ホイルに一夜間包み、翌日ホイルを取除いてlO日間温室内に置き、その時点で 例■の方法に従って%光動力的損傷を測定した。
結果を第■表および第7図に示す。
第■表 ALAの促進剤 第V図は実験I−PおよびU−BBの処理5日後を示している。
例■ 光条件 例工の方法に従って6日齢の若いキュウリ実生に高濃度(各々20mM)のAL Aおよび2 、2 ’ −DP温溶液スプ対照植物を暗中で17時間インキュベ ーションしてテトラピロールの蓄積を誘導した。翌朝、対照および処理植物を白 色けい光下におよび紫外線(360n m )下に写真を揚った。後者の場合、 その赤色けい光によって蓄積したテトラピロールを視覚的に検出するために写真 を撮った。次いで撮影した植物を温室内で日光〔約1370m (4500ft )燭光〕に暴露して光動力的損傷を誘発した。全く同様のセットの処理および対 照植物を同じ時間の長さにわたって暗中に保ち、多量のテトラピロールの蓄積が 暗中で損傷を惹き起こすかどうかを測定した。
日光または暗所に6時間暴露した後、処理植物と対照植物とを比較した(第V図 )。
第V図は光動力的損傷を惹起するためにはテトラピロール蓄積に加えて光が必要 条件であることを示している。A、B:工7時間のダークインキュベーション直 後の処理植物(A)および対照植物CB);C,D:処理された実生の茎中の赤 色けい光を発するテトラピロールの蓄積を示すために360nmの紫外線の下で 見た同じ処理植物(C)および対照植物(D);E、F:処理された実生の茎、 成長点および葉部中の赤色けい光を発するテトラビロールの蓄積を示すために別 の角度から撮影した同し処理植物(E)および対照植物(F”);G。
■(二日光に約6時間暴露した後の同じ処理植物(G)および対照植物(H); I、J:植物G、Hが日光に暴露されている間6時間暗中に置いた処理植物(1 )および対照植物(J)。
ALA+2.2 ’−DP処理植物における多量のテトラピロール蓄積の誘導が 、第■図C,D、EおよびFに写真によって示されている。これは対照には示さ れていない。ALA+2.2’−DP処理植物だけが茎および葉組織において赤 テトラビロールけい光を示した(第■図C,E)。日光への暴露の6時間後、A LA+2.2 ’−DP処理植物は完全に破壊された(第■図G)が、一方対照 植物は正常に生育した(第■図H)。結局、6時間暗中に保たれた全く同様のセ ントの対照およびALA+2.2 ’ −DP処理植物は元気があり健康を維持 していた(第■図I 、 J)。
これらの結果は、はっきりと、ALA+2.2 ’ −DP処理が光の存在にお いてのみ光動力的損傷を惹き起こしたことおよびI員傷と蓄積したテトラビロー ルとの相関関係を証明していることを示している。
例VI けい 発光および励起スペクトル 第■図は、0.25m1の5mMALA+15mM2.2 ’ −DPを用いて 処理し28℃において17時間暗中に置いた6日齢のキュウリ実生のMP (E ) +PChlideプールの77゜Kにおけるエーテル中でのけい光発光(A )および励起(B)スペクトルを示している。MP (E) +PChlide プールは、例■に記載の如くにインキ1ベーシヨンの後直ちに抽出しそしてエー テルに移した。593nmにおいてMV+DVMP(E)発光をおよび626n mにおいてM V + D V PChlide発光を示す発光スペクトルを4 20nmにおける励起によって引き出した。それぞれ417nmおよび423n mにおいてMVおよびDV MP (E)最大をならびにそれぞれ437 n  mおよび451 n mにおいてMV (By (○−0))およびDV[Bx (○−0) ) PChlide最大を示す励起スペクトルを表示の発光最大に おいて記録した(すなわち、第■図に示したF値)。これらのプールの分光けい 先約特性は、前掲のペランジャー(Belanger)およびレベイッ、および 前掲のデュガン(Duggan)およびレベイッによる2つの論文に詳細に記載 されている。基線はスペクトルのオーバーランプを避けるために縦座標に沿って 任意に調整した。矢印は表示したプールの波長最大を示すものである。
例■ 蓄積したテトラビロールと光動 的t!(の程度との間の間延 ALA+2.2 ’−DP誘導テトラピロール蓄積と光動力的損傷との相関関係 は、1%〜0.1%の有意水準で概して有意であった(第■表■〜■)。最も良 い相関関係はPChlide蓄積と光動力的損傷との間で観察された。MP ( E)およびProto蓄積と光動力的損傷との間の有意な相関関係は、それらの 濃度が所定の限界濃度に達した後でのみ観察された(第■、■表対第■、7表) 。
第■図に示したように、有意量のMVPChlideおよびDVPCh I i deおよびMP (E)はALA+2.2 ’ −DP処理植物に蓄積した。第 4図は日光中でのPChlideおよびMP (E)消失の時間経過を示してい る。例Iと同様な方法により、6日齢のキュウリ実生をpH3,5の0.25m #の5 m M A L A +15mM2.2’ DPで処理した。次いで、 この実生を28℃において17時間暗中に置いた。1 ’7時間のダークインキ ュベーションの終りにおよび示された時間の日光〔正午に〜914 m (〜3 000ft)燭光〕への暴露後、テトラビロール含有量について分析した。ダー クインキュベーションの間ごく少量のr’rotoが形成された。この特別の実 験において、6回の反復実験の平均の光動力的損傷は80%となった。温室にお いて8時間の日光への暴露後および短い瞬間的なMP(E)含有量の増加後、M P (E)プールの76%およびPChlideブールの93%が消失した。こ れは光破壊の結果によると考えられる。ALA誘1Pchlideは、温室にお ける典型的な晴天の日の光度(1,220〜1830m (4000〜6000  f t 〕燭光〕のような強い光度の下で破壊されてChiに転換されないこ とが知られている。例えば、シスシー、イー、シー。
(Sisler、E、C,)およびダブリュ、エイチ、クレイン(W、H。
Klein)、フィシオル、プラント、(Physiol、PIant、) 1 6 : 315〜322頁(1963年)を参照されたい。
例■ スプレー後の暗照間 6日齢のキュウリ・実生に例Iの方法に従って0.25mAの溶剤(対照)また はpH3,5で5mMALA+表示濃度の2゜2 ’−DPを含有する溶剤をス プレーして、これを28℃において一夜間暗中に置いた。翌朝、すなわち17時 間のダークインキュベーションの後、対照および処理植物を日光に暴露した。同 時に、同様に温室で育てた同齢の実生に同様にして溶剤のみ(対照)またはAL A+2.2 ’ −DP (処理)をスプレーしてこれをダークインキュベーシ ョン期間を介在させずに温室で日光に暴露した。この実験の結果を第■表に示す 。
第■表から明白なように、この実験において用いたような溶剤系においてALA +2.2 ’ −DPの光動力的除草剤活性を十分に表現させるためにはスプレ ー後のダークインキュベーション期間が推奨される。スプレー後ダークインキュ ベーションに付された処理植物はスプレー後ダークインキュベーション期間に付 されなかった処理植物に比べて約3倍以上の光動力的損傷を示した。
例■ 一々の手物種のALA+2.2 ’−DP几 に対する 動方煎孜草見反庭 例Iの方法を下記の代表的monco tおよびdicotについて実5ati vus L、)cvベイトアルファ エムアール(Beit Alphaスベリ ヒュ〔ボルテユラカ オレラセ(Fortulacaesculentum)c vジェットスター(Jet 5tar))’7 Ja (販u■nLherba cium )cvコツカー(Coker) 315 )アカインゲンマメ(Re d Kidney bean) Cファセオラス −グアルガリス エル、(P haseolus u■肛圏り、)cvカリフォルニアダーク レッド(Cal ifornia Dark Red) )ダイズ〔グリシン マックス(i m ax )cvウイリアムズ(1+I i 11 iams) )ペレニアルプル ーグラス〔±ヱ プラテンシス (豫虹7cvアスペン(Aspen) ) オオムギ〔ホルデウム ヴアルガレ(Hordeum vulgare)。
var、ビーコンスプリング(Beacon Spring))スィートコーン 〔ズイー メイズ エル、(Zea mays L、)cvゴールドキャップ( Gold Cup))メジヒバ〔ディジタリア サンギナリス エル、 (Di gitariaオオエノコログサ(Giant foxtail) (セタリア  ファベリ(Setaria faberii))オートムギ(アヴエナ サテ ィヴア(^vena 5ativa)cvセンテニアル(Cen tenn i a l) )コムギ〔トリチカム サティヴアム(Triticum sati vum)cvオーパーン(Auburn) ) 温室で栽培した実生を、0.25rrlの5mM(131g/ニーカー)ALA +15mM(402g/ニーカー)2.2’−DP、pH3,5を用いて処理し た。対照は溶剤だけで処理した。次いで、すべての植物を暗中で17時間インキ ュベーションした。翌朝、dicotに対しては例Iの方法をそしてmonoc ot 4こ対しては次の方法を用いて暗中で実生をサンプ]ノングしテトラビロ ール含有量を測定した:2の反復試験の一方の実生を上半分と下半分とに切った 。次いで、切取った組織の2の/’(7チを別々にソーヴアルオムニミキサーを 用いてアセトン: 0.1 NN1(40f((9: 1. V / V )中 でm′i@3g当り)容剤18m、ffの害11合で均質化した。反復試験の他 方を用いて実生への光の光動力的影響を評価した。所定のdicotに対して、 茎ならびGこ葉をテ1−ラピロールについて分析した。結果を第4表に示す。
この限られた調査の結果の考察は3の異なる方法で植物がALA+2.2 ’  −DPスプレーに反応することを示した。
キュウリによって例示されるdicotの1群(第■、■図)は、第1表で1型 と呼ばれる除草剤反応を示した。この群の植物はALA+2.2 ’ −DPス プレーに対してキュウリの場合と全(同じに反応した。葉組織、茎および成長点 は有意量のテトラピロールを蓄積し激しい光動力的損傷に付された(第1表)。
一般に、実生は極めて迅速に枯れ、この反応の迅速さは温室内の光の強さに依存 していた。例えば、この研究で用いた低スプレー濃度(131g /ニーカーA LA+402g/ニーカー2.2’・−DP)において、快晴の日〔正午に12 19〜1829m (4000〜6000ft)燭光〕には4〜5時間だけの日 光への暴露で植物の枯死を惹起するに十分であった。一方、同じ結果を極めて曇 った日〔正午に122m (400f t、)燭光〕に達成するには2〜3日の 日光暴露が必要であった。この型の光動力的除草剤反応を示した所定の植物種、 例えば、シロザ、マスタード、レソドルートピノグウィードおよびスベリヒュは 著しい悪影響を与える雑草であると考えられる。十分に広がった子葉および小さ い発育中の初生葉を有する13日齢のトマト植物はI型反応を示したが(第1表 )、8〜10日齢の若いトマト実生はスプレーによる影響がずっと少なかった( 〜40%光動力的損傷)。
他のdicot 、例えば、コツトン、インゲンマメおよびダイスはALA+2 .2 ’ −DP処理に対して異なる反応を示した。この反応は第1表中で■型 と呼ぶ。この群に属する植物は葉組織中に有意量のテトラピロールを蓄積するが 、コノトンおよびダイスの場合のように茎中には有意量を蓄積しない。
他の種類、例えばインゲンマメも茎中に少量のテトラピロールを蓄積した。テト ラピロールを蓄積する葉は極めて激しい光動力的損傷を示し数時間以内に枯死し た(第1X図)。しかしながら、子葉、茎および成長点は影響を受けない。かか る植物は通常、新しい葉を生ずることによって最初の光動力的損傷から回復する (第1X図)ので2回目の適用の必要があり得る。この群における■型反応も実 生の齢に依存している。
例えば、初生葉がまだ子葉内に包まれている6日齢のダイスはALA+2.2  ’ −DP処理によって完全には影響を受けない。一方、広がった初生葉を有す る9日齢のダイス植物は典型的な■型の光動力的除草剤反応を示した(第1X図 B)。
この型の反応を示すことが観察された唯一のmonocotはペレニアルブルー グラスでありスプレーされた葉の約30〜40%が枯死し、その後植物体は回復 し新たな葉を発育させた。
ALA+2.2 ’ −DP処理によって引き出された第3の型の光動力的除草 剤反応を■型反応と呼ぶ。入手できるデータによれば、monocotがこの型 の反応を示した。ALA+2゜2’−DP処理は植物による有意量のテトラピロ ールの蓄積を誘導したが、光動力的損傷はコムギ、オートムギおよびコーンの場 合のようにごくわずかであるかまたはオオムギの場合のように認められる場合で も少割合のスプレーされた植物の上半分に躍られていた。その場合、光動力的損 傷は小さなネクロシス部分からなっていた。実生は強健に成長を続は健康な植物 体に発育した(第1X図H)。
第1X図はそれぞれダイスおよびオオムギの■型およびm型の光動力的除草剤反 応を示している:A、B:3時間日光に暴露した後の対照(A)および処理(B )ダイス植物体;C2D;温室内で11日後の同じ対照(C)および処理(D) 植物体、E、F:温室内で2日間日光に暴露した後の対照(E)および処理(F )オオムギ実生、G、H,温室内で15日後の同じ対照(G)および処理(H) オオムギ植物体。
これらの例で述べた光動力的除草剤配合物は種、齢および器官依存の選択性のす ぐれた目安を示した。双子葉植物、例えばシロザ、マスタード、レッドルートピ ソグウィードおよびスベリヒュはテトラピロール誘導の光動力的損傷に対して極 めて感受性が高かったが、単子葉植物、例えばコーン、コムギ、オートムギおよ びオオムギは逆にスプレーによって影響を受けなかった。他のdicotは、イ ンゲンマメ、ダイスおよびコツトンについて観察されたように、ダイスの場合の ように発育の初期においてはスプレーによって影響を受けなかったか、または新 たな健康な葉を生ずることによって初生葉の迅速な破壊から十分に回復した。さ らに、テトラピロールを蓄積した所定の組織、例えば豆の茎は全く光動力的損傷 を示さなかった。この器官、齢および種依存の光動力的除草剤の選択性の生化学 的基礎はとりわけテトラピロール回転率に例X M双」ソシな除重IL MV植物種は通常、DVテトラビロールを植物が有効に代謝し得るMVテトラピ ロールへ転換することによって損傷を与えるり、Vテトラビロールを取除(。し かしながら、DVテトラピロールのMVテトラピロールへの転換を抑制する化合 物、例えば2.3−DP、2.4’−DPまたは4.4’−DPをスプレーした 場合には、DVテトラピロールのMVテトラビロールへの転換は抑制されそして MV植物種は損傷を与えるDVテトラビロールを蓄積する。MV植物は有効にD Vテトラビロールを代謝することができないので、DVテトラピロールが蓄積し 植物を光に暴露した後光動力的損傷が惹起される。この例は本発明に従って望ま しくない植物種例である。
オオエノコログサ〔セタリア ファベリ−(Setariafaberii)、 代表的monocot )を例Iの場合のように発芽させて発育させた。6日齢 の若い実生を1容器当り10個体まで間引いた。
10日齢の実生に下記の除草剤組成物A−Dの1つの0.25m1を午後遅くに スプレーして表示の用量を与えた。対照には溶剤だけをスプレーした。用いた溶 剤はHC4によってpH3,5に8周整した0、45アセトン: 0.45エタ ノール: 0.1−ンイーン80:9水(v/v/v/v)であった。植物を一 夜間ホイルに包み、次いで翌日ホイルを取除いて10日間温室内に置き、その時 点で例rの方法に従って%光動力的損傷を測定した。
結果を第■表および第X図に示す。
第■表 MV除草剤 第X図は種々の処理された植物に与えられた2日後の損傷を示している。
前記結果は前述した実験方法に従うことによってMV特異的除草剤の開発を証明 している。
第■節 溶剤系 処理した植物をホイルに包まない場合には(すなわち、温室または田畑の条件下 では)、溶剤が極めて速く蒸発してしまうために除草剤組成物の活性成分が浸透 しおよびテトラビロール形成が起こるtm内部の葉緑体へ転流することが不可能 な場合がある。以下の例は、モデルとなる温室および田畑における溶剤系の開発 を記載するものである。
例X1 Hおよび処、のタイミングの影登 キュウリ実生を例Iの場合のように発芽させ生育させた。
6日齢の若い実生を1容器当り10個体まで間引いて、各容器に下記の除草剤組 成物A−Pの1つ0.25m12をスプレーして表示のスプレー率を与えた。使 用した溶剤は表示したpHの0.45アセトン: 0.45エタノール二〇、1 ツイーン80:9水(v/v/v/v)であった。植物を表示のように午前(a  m)または午後(p m)に処理し、おおいをせずに温室で10日間放置し、 その時点で例Iの方法に従って%光動力的損傷を測定した。
結果を第X表に示す。
第X表 pHおよび処理のタイミングの影響 上記のデータは、a)植物をホイルに包まない場合にはpH3,5の溶剤の方が pH6の溶剤より好ましいこと(すなわち、ALAはプロトン付加された形にお いてよりよく浸透することを示しており、そしこのデータから、b)より高濃度 のALAの場合、強い除草剤活性を与えるに十分なテトラピロールが日光の存在 においてさえ蓄積されると考えられる。
例xn メタノール溶剤系 メタノールはPCh I ide合成における補助因子である〔レベイッ、シー 、ニー、およびピー、ニー、キャステルフランコ(P、A、Ca5telfra nco) 、プラントフィシオル、(Plant Physiol、)47 :  24〜32頁(1971年)〕。メタノールを利用できることが光動力的テト ラピロールの合成および蓄積における律速因子でないということを保証するため に、外因的メタノールを溶剤の系に加えた。
キュウリ実生を例■の場合と同じように発芽させ生育させた。6日齢の若い実生 を1容器当り10個体まで間引きし、各容器に表示のスプレー率で下記の除草剤 組成物A−Lの1つ0.25mj2をスプレーした。対照には溶剤だけをスプレ ーした。用いた溶剤はl+cβで3.5にpH11整した 0.45アセトン二 0.45メタノール:0.1ツイーン80:9水(v / v / v / v  )であった。植物を表示のように午前(a m)または午後Cpm)に処理し 、おおいをせずに1o日間温室内に放置し、その時点で例Iの方法に従って%光 動力的損傷を測定した。
結果を第XI表に示す。
ツイ′−ン80は0.5〜1%(V/V)で午前および午後のスプレーのいずれ においても最良の効果を示した。
例XrV ポリエチレングリコール溶J系 ポリエチレングリコール(PEG)はスプレー時に組織表面に薄い保護被膜を残 す。従って、かかる被膜が溶剤の蒸発を遅らせてALA+2.2 ’ −DPの 葉緑体へのよりよい転流を可能とするか否かを調べるために、ポリエチレングリ コールを溶剤に添加した。
例1の場合と同様にしてキュウリ実生を発芽させ生育させた。6日齢の若い実生 を1容器当り10個体まで間引いて、各容器に表示したスプレー率で下記の組成 物A−Lの1つ0.25mj!を表示の時間にスプレーした。対照には溶剤0. 25mNだけをスプレーした。溶剤は0.9PEG 6oo: o、iツイーン 80:9水(v/v/v) 、pH3,5であった。植物を、おおいをせずに温 室内に10日間置き、その時点で例■に従って%光動力的損傷を測定した。実験 Cおよび■においては、処理した植物を最初にホイルに包み例Iの場合と同様に して28℃で一夜間暗中でインキュベーションし、翌朝ホイルを取除いて他の植 物と一緒に温室内に置いた。
結果を第xm表に示す。
第xm表 PEGの溶剤系への影響 PEGは、水およびツイーン80を含有する配合物に混和した場合に好都合であ ると考えられる〔第x■表(E)および(J)を第χm表(B)および(H)と それぞれ比較されPEC,およびメ浸5仕2唾i剋糸 キュウリ実生を例■の場合と同様にして発芽させ生育させた。6日齢の若い実生 を1容器当り10個体まで間引き、各容器に除草剤組成物0.25m7!をスプ レーして以下に示した溶剤中80 gAIA+ 240g 2 、2 ’ −D P/ニーカーのスプレー率を与えた。溶剤はすべて稀)1c4を用いてpH3, 5に調整した。植物は表示のように午前または午後に処理し、おおいをせずに温 室内に10日間置き、その時点で例■の方法に従って%光動力的損傷を測定した 。
結果を第XIV表に示す。
第XIV表 溶剤中のPEGおよびメタノールの影響今ここに記載した配合物のいずれもこれ らの実験で用いた低A L A 濃度においてはPEGだけを含有する配合物よ りすぐれていないことが示された。しかしながら、午前のスプレーの方が午後の スプレーよりすぐれていることが証明された(A〜SをG−Lと比較されたい) 。
例XVT 高A L A 濃fにおけるPEGおよびメタノール溶j系キュウリ実生を例■ の場合と同様に発芽させ生育させた。
6日齢の若い実生を1容器当り10個体まで間引き、各容器に下記の除草剤組成 ThA−HHの1つ0.25rrlを表示の時間にスプレーして表示したスプレ ー率を与えた。対照は0.25mA溶剤だけで処理した。用いた溶剤はpH3, 5の0.7PEG:0.2メタノール:0.1ツイーン80:9水(v/v/v /v)であった。植物はおおいをせずに温室内に10日間置き、その時点で例■ に従って%光動力的損傷を測定した。実験0゜R、AAおよびDDでは、処理し た植物を最初にホイルに包み例Iの場合と同様にして28℃で一夜間暗中でイン キュベーションした後、翌朝ホイルを取除いて他の植物と一緒に置いた。
結果を第XV表に示す。
(a)高A L A ?M度においては、PEG+メタノール配合物は午後のス プレーより午前のスプレーの方が効果的であった; (b)午前のスプレーはメ タノールのみ(第xI表)またはPEGのみ(第xm表)を含有する配合物より 良好であった・ 例X■ エチレングリコールr剤二 キュウリ実生を例Iの場合と同様にして発芽させ生育させた。6日齢の実生を1 容器当り10個体まで間引いて、各容器に表示のスプレー率で下記の除草剤組成 物A−Dの1つ0.25m1をスプレーした。用いた?容器は0.45アセトン : 0.45エタノール:0.2ツイーン80:0.9エチレングリコール:1 8水(v/v/v/v/v) 、pH3,5であった。植物は午後に処理し、お おいをせずに温室内に10日間置き、その時点で例■の方法に従って%光動力的 損傷を測定した。
結果を第XVI表に示す。
第xvi表 エチレングリコールベースの溶剤系 これらの予備的な結果は、エチレングリコールもALA+2.2’−DP除草剤 配合物の望ましい補助剤であるということを示している。
第■節 野外のスプレー系 温室配合物を特定の野外の環境へ移すことは簡単である。
例X■ 一生における広 の制′ 「クリーピングチャージ−(creepingcharley)J (?’yユ ヱ ヘデラセ(Glecoma Hederacea ) )およびオオバコ〔 プランタゴ ランセオラタ (■肛田鉦 1anceolata) )の侵入を 受けたケンタラキー・ブルーグラスとレフドフエスクとの野外の区画(0,25 %)をくいで囲った。
1985年5月22日〔第XI図(A)〕および119856644日第XI図 (B)〕に代表的な区画の写真をとって16日間にわたる広葉雑草の侵入の進行 を示した。
区画2に、0.1ツイーン80:9.9水(v / v )中525gALA+  390g 2.2 ’ −DP/ニーカーの用量率を与える、+8 u c  ttを用いてp)14.5に調整した10m1を1985年5月22日の午後遅 くにスプレーした。対照区画には溶剤だけをスプレーした。処理は1985年5 月30日に繰り返し行なった。第XI図(C)は1985年5月22日の対照区 画を示しており、侵入の程度を表わしている。第XI図(D)は1985年6月 4日の処理区画を示しており、処理区画におけるすべての広葉雑草の(例Iの方 法に従って計算して)95%の光動力的損傷を示している。ブルーグラスが損傷 を受けずに生き残っていることに注目されたい。
区画4に、0.7 P E G600: o、 2メタノール=0.1ツイーン 80:9水(V/V/V/V)中525gALA+ 390g 2 。
2’−DP/ニーカーの用量率を与える、H(Jを用いてpH3,5に調整した 1Qrrlを1985年6月1日の朝に1回だけスプレーした。対照区画には溶 剤だけを1回スプレーした。第XI図(E)は1985年6月9日の対照区画を 示している。第XI図(F)は1985年6月9日の処理区画を示しており、処 理区画におけるすべての広葉雑草の(例Iの方法に従って計算して)95%の光 動力的損傷を示している。再び、ブルーグラスが生き残っていることに注目され たい。
第1V節 土壌適用 例XIX 皿皇凶豊員主A人上人土1−1ニニ旦旦□□□豊込め例Iの場合と同様にしてキ ュウリ実生を発芽させ生育させた。6日齢の若い実生を1容器当り10個体まで 間引いた。
0.45アセトン? 0.45エタノール:0.1ツイーン8o:9水(v /  v / v / v )中20mMALA+15mM2.2’−DPを調製し そのpHをHC/を用いて3.5に調整した。表示した量のこの組成物を温室内 の8日齢の植物のバーミキュライトに午後遅くに加えた。対照植物は溶剤だけを 用いて処理した。植物はおおいをせずに温室内に1o日間置き、その時点で例I の方法に従って%光動力的損傷を測定した。
結果を第X■表および第X■図に示す。
第X■表 祖の取込み 第X■図は組成物A、B、CおよびDによって与えられた翌朝の損傷(A、B、 C,D)、およびすべての組成物によって与えられた2日後の(員傷(A’ 、 B’ 、C’ 、D’ 、E〜、J)を示している。
ALA+2.2 ’ −DPは植物が生育している培地に適用された場合根によ って取込まれ上方に転流され得るものと思われる。光動力的損傷は第X■図に示 すように胚軸において最も顕著であるように思われる。
第V節 出芽前スプレー 例XX 腫1影ト墓λ1v キュウリ種子を数個の各ガラス容器(深さ9 Cm X直径9cm)内のバーミ キュライトに植えた。種子に水をかけ、種々の量の0.45アセトン: 0.4 5エタノール:0.1ツイーン80:9水(v/v/v/v)中10mMA、L A+7.5mM2.2’−DP、pH3,0を表示のように加えた。対照は溶剤 だけで処理した。容器はおおいをせずに温室内に2週間置き、その時点で%発芽 を測定した。
結果を第X■表に示す。
第X■表 種子発芽 上記データから、極めて高濃度のALA+2.2 ’ −DPは出芽前除草剤と して作用し得るものと思われる。
第■節 ALA系と他の除草剤との相互作用 他の除草剤との相互作用は、以下に記載のように付加的、相乗的または培抗的の いずれかであることが見い出された。
例XXI 他の除4剤との相互作 キュウリ実生を例Iの場合と同様にして発芽させ生育させた。1容器当り10個 体まで間引いた6日齢の若い実生に表示のスプレー率で下記の除草剤組成物A  −Lの1つ0.25mAを午後遅くにスプレーした。対照には溶剤だけをスプレ ーした。溶剤はHClを用いてpH3,5に調整した0、45アセトン=0.4 5エタノール=0.1ツイーン80:9水(v/v/v/v)であった。植物は ホイルに1夜間包み、翌日ホイルを取除いて10日間温室内に置き、その時点で 例■の方法に従って光動力的損傷を測定した。
結果を第XIX表および第xm図に示す。
第XIX表 他の除草剤 ’ Glyphosate MON−0573、モンサント社(Monsant  Co、) 、ミズーり州セントルイス在 2R−25788、ストーファーケミカルズ社(Stauffer Chemi cals)、コネチカット州つェストボート在 3セトキシジン(Sethoxydin)、BAS 90520H,BASF/ 日本曹達、西ドイツ 第xm図は処理された植物に与えられた5日後の損傷を示している。
第■節 ALA系とポルフィリン症誘発剤との相互作用ポルフィリン症は人体の種々の組 織における光動力的テトラピロールの蓄積をもたらす代謝機能障害である。種々 の治療に日常的に用いられているある種の薬剤は感受性の高い患者にポルフィリ ン症の発作を誘発する疑いがあると見られている。かかる薬剤がALAの促進剤 および/または誘導物質として作用し得るかどうかを調べるために、その薬剤を ALAと一緒にしてその潜在的な除草剤的有効性を調べた。
例xxn ポルフィリン症填 1 キュウリ実生を例Iと同様にして発芽させ生育させた。1容器当り10個体まで 間引いた6日齢の若い実生に表示のスプレー率で下記の除草剤組成物A−Xの1 つ0.25m1を午後遅くにスプレーした。対照には溶剤だけをスプレーした。
溶剤はHCIでp)13.5に調整した0゜45アセトン: 0.45エタノー ル:0.1ツイーン80:9水(v / v / v / v )であった。植 物は1夜間ホイルに包み、翌日ホイルを取除いて温室内に10日間置き、その時 点で例Iの方法に従って光動力的損傷を測定した。
結果を第XX表に示す。
第XX表 ポルフィリン症誘発剤 ’ Equanil” 、ウィエスラブス(Wyeth Labs)、ベンジベ ニ了州フィラデルフィア在 ” Aldomet” 、マークシャープルドーム(Merck 5harp  & Dohme)、ペンシルへニア州つェストポイント在 3種々の供給源、例えばミズーリ州セントルイス在のシグマケミカル社(Sig ma Chemical Co、)から入手できる’ Doriden” 、ユ ーエスヴイーディヴエローブメント社(USVDevelopment Cor p、)、プエルトリコ、マナティ(Manati)在5PermarinT′、 アイアーストラブス(Ayerst Labs) 、ニューヨーク州ニューヨー ク在 6[ErgomarT″、パークーデイヴイス(Parke−Davis) 、 ニューシャーシー州モリスプレンズ(Morris Plains)在7Dil antin” 、パークーデイヴイス’ Granticin” 、ホフマンー ラロシェ(Hoffman−LaRoche)、ニュージャージ州ナソトリー( Nutleい在90rinase” 、アップジョン社(Up John Co 、)、ミシガン州力うマズー(Ka lamazoo)在概して、試験した薬剤 はいずれもALAの有意な誘導物質または促進剤でないことが証明された。
これらの例は、本発明の新規な除草剤の概念を示すに役立つものである。本除草 剤の光動力的作用様式は次の2つの主たる点で他の既知の除草剤の作用様式とは 異なっている: (a)その作用様式は生きている若い植物によるテトラピロー ルの生合成および蓄積に依存しており、そして(b)蓄積したテトラピロールは 植物を光感受性にして続く光への暴露後、晴れた日には約数時間以内に感受性の 強い植物の死をもたらす極めて損傷性の光動力的効果を生ずる。
δ−アミルプリン酸はすべての生きている細胞に存在する天然の代謝物である; それは生物圏の天然成分であり容易に生物分解し得るものである。ALA暗代謝 (dark−metabolism)の生成物、すなわちChl生合成経路のテ トラピロール中間体についても同様のことが言え、そのテトラピロール中間体は 植物を光に暴露した後極めて迅速に消失することが証明されている。従って、本 発明の光動力的除草剤組成物および方法は環境に悪影響を与えないように思われ る。
本発明の精神および範囲内の組成物および適用の別の例は前述の記載を考慮すれ ば当業者に明らかであろう。従って、記載の請求の範囲から明らかな限定のみが これらの例に付加されるべきである。
く0QOL1.l瞑i LL 4+″5cjciuj− B光のdすp、I Fig、8 国際調査報告 1.111齢山−^−一に一軸哨H・、PCT/US85101356m+1− ImIA−一〇wllc p(T/g5$5/Q13561m□a′□I A1 ull″b/us8s1013561′l′Ml″amA””””−’D(”1 M<Q</n11<g

Claims (50)

    【特許請求の範囲】
  1. 1.δ−アミノレブリン酸、δ−アミノレブリン酸の誘導物質、δ−アミノレブ リン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤、およびジビニルテトラピロ ールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤からなる群より選ばれた1種 またはそれ以上の化合物を含有する除草剤組成物。
  2. 2.δ−アミノレブリン酸を含有する請求の範囲第1項記載の組成物。
  3. 3.δ−アミノレブリン酸の誘導物質、δ−アミノレブリン酸の光動力的テトラ ピロールへの転換の促進剤、およびジビニルテトラピロールのモノビニルテトラ ピロールへの転換の抑制剤からなる群より選ばれた1種またはそれ以上の化合物 をさらに含有する請求の範囲第2項記載の組成物。
  4. 4.δ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の誘導物質1種またはそ れ以上を含有する請求の範囲第3項記載の組成物。
  5. 5.δ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロー ルへの転換の促進剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第3項記載の組成 物。
  6. 6.δ−アミノレブリン酸およびジビニルテトラピロールのモノビニルテトラピ ロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第3項記載の 組成物。
  7. 7.δ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の誘導物質1種またはそ れ以上およびδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤 1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第3項記載の組成物。
  8. 8.δ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の誘導物質1種またはそ れ以上およびジビニルテトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑 制剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第3項記載の組成物。
  9. 9.δ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロー ルへの転換の促進剤1種またはそれ以上およびジビニルテトラピロールのモノビ ニルテトラピロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲 第3項記載の組成物。
  10. 10.δ−アミノレブリン酸の誘導物質1種またはそれ以上を含有する請求の範 囲第1項記載の組成物。
  11. 11.δ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤1種ま たはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第10項記載の組成物。
  12. 12.ジピニルテトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤1 種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第10項記載の組成物。
  13. 13.δ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤1種ま たはそれ以上およびジビニルテトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転 換の抑制剤1種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第10項記載の組 成物。
  14. 14.δ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤1種ま たはそれ以上を含有する請求の範囲第1項記載の組成物。
  15. 15.ジビニルテトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤1 種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第14項記載の組成物。
  16. 16.1種またはそれ以上の下記の物質:担体、溶剤、緩衝剤、湿潤剤、分散助 剤、脱泡剤、吐剤、悪臭物質、浸透剤、界面活性剤、乳化剤およびアジェバント 、および1種またはそれ以上の他の既知の除草剤をさらに含有する請求の範囲第 1項記載の組成物。
  17. 17.生きている植物に光動力的テトラピロールの蓄積を誘導する方法であって 、前記植物に、δ−アミノレブリン酸、δ−アミノレブリン酸の誘導物質、δ− アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤、およびジビニル テトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤からなる群より選 ばれた1種またはそれ以上の化合物を含有する組成物を接触させることを含む、 光動力的テトラピロールの蓄積を誘導する方法。
  18. 18.前記組成物がδ−アミノレブリン酸を含有する請求の範囲第17項記載の 方法。
  19. 19.前記組成物がδ−アミノレブリン酸の誘導物質、δ−アミノレブリン酸の 光動力的テトラピロールへの転換の促進剤、およびジビニルテトラピロールのモ ノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤からなる群より選ばれた1種またはそ れ以上の化合物をさらに含有する請求の範囲第18項記載の方法。
  20. 20.前記組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の誘導物 質1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第19項記載の方法。
  21. 21.前記組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の光動力 的テトラピロールへの転換の促進剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第 19項記載の方法。
  22. 22.前記組成物がδ−アミノレブリン酸およびジビニルテトラピロールのモノ ビニルテトラピロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を含有する請求の範 囲第19項記載の方法。
  23. 23.前記組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の誘導物 質1種またはそれ以上およびδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへ の転換の促進剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第19項記載の方法。
  24. 24.前記組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の誘導物 質1種またはそれ以上およびジピニルテトラピロールのモノビニルテトラピロー ルへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第19項記載の方 法。
  25. 25.前記組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノレブリン酸の光動力 的テトラピロールへの転換の促進剤1種またはそれ以上およびジビニルテトラピ ロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を含有 する請求の範囲第19項記載の方法。
  26. 26.前記組成物がδ−アミノレブリン酸の誘導物質1種またはそれ以上を含有 する請求の範囲第17項記載の方法。
  27. 27.前記組成物がδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の 促進剤1種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第26項記載の方法。
  28. 28.前記組成物がジピニルテトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転 換の抑制剤1種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第26項記載の方 法。
  29. 29.前記組成物がδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の 促進剤1種またはそれ以上およびジビニルテトラヒロールのモノビニルテトラピ ロールの転換の抑制剤1種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第26 項記載の方法。
  30. 30.前記組成物がδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の 促進剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第17項記載の方法。
  31. 31.前記組成物がジピニルテトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転 換の抑制剤1種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第30項記載の方 法。
  32. 32.前記組成物が1種またはそれ以上の下記の物質:担体、溶剤、緩衝剤、湿 潤剤、分散助剤、脱泡剤、吐剤、悪臭物質、浸透剤、界面活性剤、乳化剤および アジェバント、および1種またはそれ以上の他の既知の除草剤をさらに含有する 請求の範囲第17項記載の方法。
  33. 33.次の工程: (a)植物に、δ−アミノレブリン酸、δ−アミノレブリン酸の誘導物質、δ− アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤、およびジビニル テトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤からなる群より選 ばれた1種またはそれ以上の化合物を含有する組成物を接触させ、そして (b)工程(a)で処理した植物を光に暴露する、を含んでなる植物を枯死させ る方法。
  34. 34.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸を含有する請求の 範囲第33項記載の方法。
  35. 35.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸の誘導物質、δ− アミノレブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤、およびジビニル テトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤からなる群より選 ばれた1種またはそれ以上の化合物をさらに含有する請求の範囲第34項記載の 方法。
  36. 36.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノ レブリン酸の誘導物質1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第35項記載の 方法。
  37. 37.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノ レブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤1種またはそれ以上を含 有する請求の範囲第35項記載の方法。
  38. 38.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸およびジビニルテ トラピロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上 を含有する請求の範囲第35項記載の方法。
  39. 39.前記工程(a)における組成物かδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノ レブリン酸の誘導物質1種またはそれ以上およびδ−アミノレブリン酸の光動力 的テトラピロールへの転換の促進剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第 35項記載の方法。
  40. 40.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノ レブリン酸の誘導物質1種またはそれ以上およびジビニルテトラピロールのモノ ビニルテトラピロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を含有する請求の範 囲第35項記載の方法。
  41. 41.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸およびδ−アミノ レブリン酸の光動力的テトラピロールへの転換の促進剤1種またはそれ以上およ びジビニルテトラピロールのモノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤1種ま たはそれ以上を含有する請求の範囲第35項記載の方法。
  42. 42.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸の誘導物質1種ま たはそれ以上を含有する請求の範囲第33項記載の方法。
  43. 43.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラ ピロールへの転換の促進剤1種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範囲第 42項記載の方法。
  44. 44.前記工程(a)における組成物がジビニルテトラピロールのモノビニルテ トラビロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範 囲第42項記載の方法。
  45. 45.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラ ピロールへの転換の促進剤1種またはそれ以上およびジビニルテトラピロールの モノビニルテトラピロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を追加的に含有 する請求の範囲第42項記載の方法。
  46. 46.前記工程(a)における組成物がδ−アミノレブリン酸の光動力的テトラ ピロールへの転換の促進剤1種またはそれ以上を含有する請求の範囲第33項記 載の方法。
  47. 47.前記工程(a)における組成物がジビニルテトラピロールのモノビニルテ トラピロールへの転換の抑制剤1種またはそれ以上を追加的に含有する請求の範 囲第46項記載の方法。
  48. 48.請求の範囲第17項記載の組成物が1種またはそれ以上の下記の物質:担 体、溶剤、緩衝剤、湿潤剤、分散助剤、脱泡剤、吐剤、悪臭物質、浸透剤、界面 活性剤、乳化剤およびアジェバント、および1種またはそれ以上の他の既知の除 草剤をさらに含有する請求の範囲第33項記載の方法。
  49. 49.前記工程(a)の処理植物を、工程(b)において光への暴露前約1〜8 時間にわたって暗所に暴露する請求の範囲第33項記載の方法。
  50. 50.前記植物を工程(b)において自然光の形の光に約1〜14日間の期間に わたって暴露する請求の範囲第33項記載の方法。
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