JPS6169724A - ヘパリン誘導体の利用 - Google Patents
ヘパリン誘導体の利用Info
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Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M1/00—Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
- A61M1/36—Other treatment of blood in a by-pass of the natural circulatory system, e.g. temperature adaptation, irradiation ; Extra-corporeal blood circuits
- A61M1/3687—Chemical treatment
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
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- A61M2202/04—Liquids
- A61M2202/0413—Blood
- A61M2202/0456—Lipoprotein
- A61M2202/046—Low-density lipoprotein
Landscapes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
髪!五Δ机堆立!
本発明はヘパリン誘導体に関する。
従来技術および間 点
脂肪代謝異常をとらなっている疾患または面漿11tf
f!1度が高まっている疾患は、それによって動脈硬化
症の早期発病の危険性を含んでいろ。面漿脂質が正常な
患者では、総コレステロールの約2/3はLDL(低比
重リポ蛋白)の形で輸送される。
f!1度が高まっている疾患は、それによって動脈硬化
症の早期発病の危険性を含んでいろ。面漿脂質が正常な
患者では、総コレステロールの約2/3はLDL(低比
重リポ蛋白)の形で輸送される。
今日までの知見から、l 90 n/dQより高いしD
L−コレステロール値は動脈硬化症のリスク範囲として
とり扱われる。特に家族性■型の高コレステロール血症
の場合は、遺伝的に生じるLDL−受容体欠損または脂
質代謝異常がLDL濃度を上昇させる原因となる。その
ため、β−リポ蛋白または低比重リポ蛋白(LDL)を
選択的に分離することにより直中コレステロール値の低
下をはかるべきである。
L−コレステロール値は動脈硬化症のリスク範囲として
とり扱われる。特に家族性■型の高コレステロール血症
の場合は、遺伝的に生じるLDL−受容体欠損または脂
質代謝異常がLDL濃度を上昇させる原因となる。その
ため、β−リポ蛋白または低比重リポ蛋白(LDL)を
選択的に分離することにより直中コレステロール値の低
下をはかるべきである。
゛西独公開特許第3135814号には、体外循環中の
ヒトのllu漿または血清に酸性pt−を値でヘパリン
を使用し、低比重リポ蛋白を沈澱させる方法が記載され
ている。この方法における欠点は、この治療処置に比較
的高いヘパリン0度が不可欠であるノーめ、出血の危険
性が高いことである。
ヒトのllu漿または血清に酸性pt−を値でヘパリン
を使用し、低比重リポ蛋白を沈澱させる方法が記載され
ている。この方法における欠点は、この治療処置に比較
的高いヘパリン0度が不可欠であるノーめ、出血の危険
性が高いことである。
そのうえ、比較的高価であり、また天然の産物として無
制限に使用できないヘパリンを各処置毎に大量に必要と
する。これらのことから、これに代わる好適なL D
L、沈澱剤に置き換えてこの処置を行うことが要望され
る。
制限に使用できないヘパリンを各処置毎に大量に必要と
する。これらのことから、これに代わる好適なL D
L、沈澱剤に置き換えてこの処置を行うことが要望され
る。
この発明の目的は、酸性pH区域でLDLを沈澱させる
治療原理をその上ま保持し、天然産のヘパリンを使用せ
ず、その代わり利用容易な合成または゛1−合成的に製
造し得ろ物質または物質群を沈il剤として使用するこ
とである。但し、最も本質的に望まれろ要件は、使用さ
れる物質の抗凝固作用がヘパリンと比べて明らかに低い
ことである。
治療原理をその上ま保持し、天然産のヘパリンを使用せ
ず、その代わり利用容易な合成または゛1−合成的に製
造し得ろ物質または物質群を沈il剤として使用するこ
とである。但し、最も本質的に望まれろ要件は、使用さ
れる物質の抗凝固作用がヘパリンと比べて明らかに低い
ことである。
ボリアニオノ性ヘパリン誘導体およびその池の酸性ムコ
多糖類(グリコサミノグリカン類)から成る重合体とポ
リアニオン性糖すルフェート順から成る重合体が、沈澱
のために添加しなければならない。例えば多価カチオン
のような補助剤を加えなくても、酸性pH区域で特異的
にLDLを沈綬させるのに好適であることが判明した。
多糖類(グリコサミノグリカン類)から成る重合体とポ
リアニオン性糖すルフェート順から成る重合体が、沈澱
のために添加しなければならない。例えば多価カチオン
のような補助剤を加えなくても、酸性pH区域で特異的
にLDLを沈綬させるのに好適であることが判明した。
問題点を解決するための手森
従ってこの発明は、
(a)緩和な反応条件でヘパリンを加水分解することに
より合成されるか、または (11)I和な反応条件で加水分解し、次いで遊離した
アミノ基をアンル化することによりヘパリンから合成さ
れるか、または (c)合成または半合成グリコサミノグリカンを硫酸化
することによって製造されるか、または(d)天然産ま
たは合成多糖類を硫酸化することによって製造される、 ヘパリン誘導体の利用に関するものであって、この場合
、血液凝固に関係し、ヘパリンに鋭敏に反応する試験体
系、例えばトロノビン時間、部分トロンボプラスチン時
間または薬局方に記載のベパリン試験法に適用して、ヘ
パリンほど高い活性は示さムいが凝固系に対し、1.0
1(国際学位)・N9”’ lより大きい測定可能な影
響を与えるヘパリン様作111を(f4゛ろ該ヘパリン
誘導体を、pH4,0〜58のW(で、全血清または血
漿から低比重リポ蛋白の選択的な体外沈澱に利用するこ
とから成る。
より合成されるか、または (11)I和な反応条件で加水分解し、次いで遊離した
アミノ基をアンル化することによりヘパリンから合成さ
れるか、または (c)合成または半合成グリコサミノグリカンを硫酸化
することによって製造されるか、または(d)天然産ま
たは合成多糖類を硫酸化することによって製造される、 ヘパリン誘導体の利用に関するものであって、この場合
、血液凝固に関係し、ヘパリンに鋭敏に反応する試験体
系、例えばトロノビン時間、部分トロンボプラスチン時
間または薬局方に記載のベパリン試験法に適用して、ヘ
パリンほど高い活性は示さムいが凝固系に対し、1.0
1(国際学位)・N9”’ lより大きい測定可能な影
響を与えるヘパリン様作111を(f4゛ろ該ヘパリン
誘導体を、pH4,0〜58のW(で、全血清または血
漿から低比重リポ蛋白の選択的な体外沈澱に利用するこ
とから成る。
(a)および(b)に)6げたヘパリン誘導体は、[ヘ
パリン誘導体とその製造方/F:わよび3れらを急白。
パリン誘導体とその製造方/F:わよび3れらを急白。
する脂肪代謝異常治療用医薬品Jと題する同時出願の特
許出願番号下3322518.8号の明細11Fに詳細
に記載されている。
許出願番号下3322518.8号の明細11Fに詳細
に記載されている。
天然産ヘパリンから加水分解により合成し1する(a)
に)トけたヘパリン誘導体は、ヘパリンおよび/上たは
その塩を、酸の0.2〜03モル水溶液−ζ、45〜7
0℃およびpH値l 5〜5.0で、90分〜30時間
注億深<コノトロールされた酸性加水分解を1fい、次
いてO′C430℃に冷却し、アルカリを加えてp11
14’iを60〜80にj、+4節ずろごとにL−て反
応を終結さU、反屹;生成物を水に対して透析し、そイ
1自体既知の方法にL−で乾燥することにより製造され
る。
に)トけたヘパリン誘導体は、ヘパリンおよび/上たは
その塩を、酸の0.2〜03モル水溶液−ζ、45〜7
0℃およびpH値l 5〜5.0で、90分〜30時間
注億深<コノトロールされた酸性加水分解を1fい、次
いてO′C430℃に冷却し、アルカリを加えてp11
14’iを60〜80にj、+4節ずろごとにL−て反
応を終結さU、反屹;生成物を水に対して透析し、そイ
1自体既知の方法にL−で乾燥することにより製造され
る。
これらの誘導体は、下記に示す諸特性値によ−て特徴付
けられる (a)外ill:白色、無定形の吸湿し易い物質(b)
遊離アミノ基有量=50〜400μモル・9−1(c)
ウロン酸/ヘキノサミノ含過比:097〜0(d)旋光
度 〔α〕I)−1=;35°〜: Ii O”(e)
凝固活性二1.0〜201E(国際単位)−Rr’(「
)メタクロマジー(setachromaX変色反応)
性色素効果〔ヘパリン(=1.O)との比較〕二010
〜0.90(トルイノノブルーで測定)(g)平均分子
虫:2000〜30000D(h)フラボバクテリウム
・ヘパリナム(F lavobacLerium h
eparinum)から調製されたヘバリナーゼ(EC
4,2,2,7)に対4−ろ基質適性(E Ignun
g als S ubsLraL):JJ性質飽和
時30℃、pH7、o)の反応速度の九7(科ヘパリン
(= 100%)との比較 10%〜100% +i)アンチト[lンヒン■(、〆\i’ ll+ )
に対ずろ結合性ヒト、γノチトロノヒノ■を結合させた
セファロース(S (!pha rose商は名)を用
いろアフィニティー・り【lマドグラフィーによる分離
で、製n 、1M $1−4として用いたヘパリンと比
較し、高い拮1゛讐視和ヤ1を何4′ろ成分(高親和性
ヘパリン)は全くたく、 −ツノ、親和性の低い側の成
分(低親和性ヘパリン)乙製造に用いたヘパリンより常
にIpない (k)Illスペクトル らとのヘパリンと比べてl
130−l 160cm−’の吸収帯の強度を増大 (+)”CNMrtスペクトル 97.81)I)11
および58 、7 ppmのノブナル強度を減少。ヘパ
リンと比べて、pl+依q性の921〜9y、spp請
および55〜56ppmの二つのノブナル強度を増大 (IN)’ll −NMI((4fl OMtlz)ヘ
パリンと比べ310 ppm (A −2a)のノブナ
ルに比し325ppm(八−2s)のノブナル強度を減
少(b)に挙げた遊離アミノ基をアシル化したヘパリン
誘導体は、ヘパリンおよび/またはその塩を、酸の0.
2〜03モル水溶液で、45〜70℃およびpH1、5
〜50の範囲で、90分〜30時間注意深くコントロー
ルされた酸性加水分解を行い、次いて30℃〜θ℃に冷
却し、アルカリを加えてpH6,0〜80の範囲に調節
することにより反応を終結し、反応生成物を水に対して
透析し、それ自体既知の方法に従って乾燥し、得られた
反応生成物の遊離アミノ基をそれ自体既知の方法に従っ
てアシル化することによって得られる。
けられる (a)外ill:白色、無定形の吸湿し易い物質(b)
遊離アミノ基有量=50〜400μモル・9−1(c)
ウロン酸/ヘキノサミノ含過比:097〜0(d)旋光
度 〔α〕I)−1=;35°〜: Ii O”(e)
凝固活性二1.0〜201E(国際単位)−Rr’(「
)メタクロマジー(setachromaX変色反応)
性色素効果〔ヘパリン(=1.O)との比較〕二010
〜0.90(トルイノノブルーで測定)(g)平均分子
虫:2000〜30000D(h)フラボバクテリウム
・ヘパリナム(F lavobacLerium h
eparinum)から調製されたヘバリナーゼ(EC
4,2,2,7)に対4−ろ基質適性(E Ignun
g als S ubsLraL):JJ性質飽和
時30℃、pH7、o)の反応速度の九7(科ヘパリン
(= 100%)との比較 10%〜100% +i)アンチト[lンヒン■(、〆\i’ ll+ )
に対ずろ結合性ヒト、γノチトロノヒノ■を結合させた
セファロース(S (!pha rose商は名)を用
いろアフィニティー・り【lマドグラフィーによる分離
で、製n 、1M $1−4として用いたヘパリンと比
較し、高い拮1゛讐視和ヤ1を何4′ろ成分(高親和性
ヘパリン)は全くたく、 −ツノ、親和性の低い側の成
分(低親和性ヘパリン)乙製造に用いたヘパリンより常
にIpない (k)Illスペクトル らとのヘパリンと比べてl
130−l 160cm−’の吸収帯の強度を増大 (+)”CNMrtスペクトル 97.81)I)11
および58 、7 ppmのノブナル強度を減少。ヘパ
リンと比べて、pl+依q性の921〜9y、spp請
および55〜56ppmの二つのノブナル強度を増大 (IN)’ll −NMI((4fl OMtlz)ヘ
パリンと比べ310 ppm (A −2a)のノブナ
ルに比し325ppm(八−2s)のノブナル強度を減
少(b)に挙げた遊離アミノ基をアシル化したヘパリン
誘導体は、ヘパリンおよび/またはその塩を、酸の0.
2〜03モル水溶液で、45〜70℃およびpH1、5
〜50の範囲で、90分〜30時間注意深くコントロー
ルされた酸性加水分解を行い、次いて30℃〜θ℃に冷
却し、アルカリを加えてpH6,0〜80の範囲に調節
することにより反応を終結し、反応生成物を水に対して
透析し、それ自体既知の方法に従って乾燥し、得られた
反応生成物の遊離アミノ基をそれ自体既知の方法に従っ
てアシル化することによって得られる。
これらのアンル化誘導体は、下記に示す特性値によって
特徴付けられる (a)外観白色の吸湿し易い物質 (b)遊離アミノ基含有量2〜IOμモル・g−1(c
)ウロン酸/ヘキソサミン含量比・097〜0(d)旋
光度:+30’〜+60″ (e)凝固活性 10−201 E−n−’(r)メタ
クロマノー性色木効果〔ヘパリン(−1,0)、11:
力比中り]lt1、 l 11−11.90()ルrツ
ノブルーーζ1lll定) (y、>・+を均分F’112000−30000DC
h )−、rう十バクテリウム・ヘバリナム(F 1a
vobacL−t:rilIm h+1pXIrin
ui)から、グ4製されたへぺり→゛−ゼ1>C,I
、2.2.7)に対する基質適性基′t1飽和時(30
°C,p117.0)の反応速度の原nヘパリン(・1
00%)との比較、10%〜l tl 0% (1)γノ子l・【ノ/ヒノ111(△’l’ III
)にχ1tろ結合性ヒト、アノヂトし1ノヒノ111
を結合さUたセファ0−ス(S +:phXIrnsc
商標名)を用いろアフィニテC−・クロマトグラフィー
による分離て、’J’J Q 原11として用いたヘパ
リンと比べて、高い結合tU和性を(T tろ成分(高
親和性ヘパリン)は全くなく、一方、親和性の低い側の
成分(低現01性t\バリン)乙原料に使用したヘパリ
ンより畠に少ない (k)’II−NMRスペクトル(400MHz):3
.25ppm、;よび3.40ppmに、はぼ回し強度
のノブナル と記の合成または半合成のグリコサミノグリカンを硫酸
化することにより、または天然産または合成多糖類を硫
酸化することによって製造し得るヘパリン誘導体はそれ
自体既知の方法によって製造される。それらは、例えば
下記の物質のようなしのであって、大部分は商業的に人
手し得る。
特徴付けられる (a)外観白色の吸湿し易い物質 (b)遊離アミノ基含有量2〜IOμモル・g−1(c
)ウロン酸/ヘキソサミン含量比・097〜0(d)旋
光度:+30’〜+60″ (e)凝固活性 10−201 E−n−’(r)メタ
クロマノー性色木効果〔ヘパリン(−1,0)、11:
力比中り]lt1、 l 11−11.90()ルrツ
ノブルーーζ1lll定) (y、>・+を均分F’112000−30000DC
h )−、rう十バクテリウム・ヘバリナム(F 1a
vobacL−t:rilIm h+1pXIrin
ui)から、グ4製されたへぺり→゛−ゼ1>C,I
、2.2.7)に対する基質適性基′t1飽和時(30
°C,p117.0)の反応速度の原nヘパリン(・1
00%)との比較、10%〜l tl 0% (1)γノ子l・【ノ/ヒノ111(△’l’ III
)にχ1tろ結合性ヒト、アノヂトし1ノヒノ111
を結合さUたセファ0−ス(S +:phXIrnsc
商標名)を用いろアフィニテC−・クロマトグラフィー
による分離て、’J’J Q 原11として用いたヘパ
リンと比べて、高い結合tU和性を(T tろ成分(高
親和性ヘパリン)は全くなく、一方、親和性の低い側の
成分(低現01性t\バリン)乙原料に使用したヘパリ
ンより畠に少ない (k)’II−NMRスペクトル(400MHz):3
.25ppm、;よび3.40ppmに、はぼ回し強度
のノブナル と記の合成または半合成のグリコサミノグリカンを硫酸
化することにより、または天然産または合成多糖類を硫
酸化することによって製造し得るヘパリン誘導体はそれ
自体既知の方法によって製造される。それらは、例えば
下記の物質のようなしのであって、大部分は商業的に人
手し得る。
1、サメの軟骨から得られたコンドロイチン硫酸ナトリ
ウム塩〔購入先、カルビオヒエム・ベージング、コルプ
、う、ノヨラ(calbiochem −Behrin
g Corp、 La Jolla))。
ウム塩〔購入先、カルビオヒエム・ベージング、コルプ
、う、ノヨラ(calbiochem −Behrin
g Corp、 La Jolla))。
28ウノの靭帯のコンドロイチン硫酸ナトリウム塩〔購
入先:セルバ、ハイデルベルク(Serva。
入先:セルバ、ハイデルベルク(Serva。
Heidelberg) )。
3、ブタの粘膜のヘパリン硫酸ナトリウム塩〔購入先:
カルビオヒエムーベーリング・コルプ・う・ノヨラ(c
albiochcm−Bchring Corp、、
LaJof la ) :?Ja方法・カス(r1、
Ca5u )ら、フγルマコロノカル・リサーチ・コ
ムニケーノタン(Pharmaco1、 I’tes、
Commui、 )、11巻、27リ頁(1979年
)〕。
カルビオヒエムーベーリング・コルプ・う・ノヨラ(c
albiochcm−Bchring Corp、、
LaJof la ) :?Ja方法・カス(r1、
Ca5u )ら、フγルマコロノカル・リサーチ・コ
ムニケーノタン(Pharmaco1、 I’tes、
Commui、 )、11巻、27リ頁(1979年
)〕。
1.ブタの粘膜から調製されたデルマタノ硫酸ナトリウ
ム塩〔購入先・カルピオヒエム・べ−リ/グ・コルブ・
う・ノヨラ(calbiochem−■el+ring
Corp、、 1、a 、Iolla);!IJ
進方法:カス(11,Ca5u)ら、フ1ルマコロノカ
ル・リサーチーコムニケーノ3ン(Pharaaco1
、 1ies、 Co55un。
ム塩〔購入先・カルピオヒエム・べ−リ/グ・コルブ・
う・ノヨラ(calbiochem−■el+ring
Corp、、 1、a 、Iolla);!IJ
進方法:カス(11,Ca5u)ら、フ1ルマコロノカ
ル・リサーチーコムニケーノ3ン(Pharaaco1
、 1ies、 Co55un。
)、z6.279′r1(1979年)〕。
5 ベントサンポリ硫酸ナトリウム、平均分子1約20
00(5P54 (商標名)、購入先、ベネ・ヒエミ
ー、ミュンヘン(Bene Chemie。
00(5P54 (商標名)、購入先、ベネ・ヒエミ
ー、ミュンヘン(Bene Chemie。
M unchcn) )。
6、ムコポリサツカリドポリ硫酸エステル〔アルテパロ
ン(A rteparon;商標名)、購入先:ルイト
ボルドーベルク、ミュンヘン(LuiLpold−We
rk。
ン(A rteparon;商標名)、購入先:ルイト
ボルドーベルク、ミュンヘン(LuiLpold−We
rk。
Munchen) )。
7 ペントザンボリ硫酸ナトリウム、平均分子l140
00(トロンボシト(Throg+bocid;商標名
)、購入先・ベネ・ヒエミー、ミュンヘン(BeneC
hemie、 Munchen) )。
00(トロンボシト(Throg+bocid;商標名
)、購入先・ベネ・ヒエミー、ミュンヘン(BeneC
hemie、 Munchen) )。
8、ヘパリノイド、バイエル500011+)13−E
ごのヘパリノイドは医薬品バヨリン(Hayolin
、商標名)リニメント、パイロファルム(Bayro−
1)hars)およびランニール(Lasonil;商
標名)、バイエル−レバークーゼノ(L3aycr
Lcvr+rkuscn)に含有されている。
ごのヘパリノイドは医薬品バヨリン(Hayolin
、商標名)リニメント、パイロファルム(Bayro−
1)hars)およびランニール(Lasonil;商
標名)、バイエル−レバークーゼノ(L3aycr
Lcvr+rkuscn)に含有されている。
9、アテロイト(Ateroid;商標名)から得られ
たムコポリサツカリド硫酸エステル〔購入先・ドクトル
・レンチュラー、ラウファイム(D「。
たムコポリサツカリド硫酸エステル〔購入先・ドクトル
・レンチュラー、ラウファイム(D「。
RenLschler、 Laupheim))。
10、キト−サンを用いて製造したヘパリン誘導体〔合
成法、ウォルフロム(M、 I、、 Wolrros)
ら、ツヤ−ナル・アメリカン・ケミカル・ソサイエティ
(Journal American Che
mical 5ociety)、81巻、1764
頁以下、(1959年)〕。
成法、ウォルフロム(M、 I、、 Wolrros)
ら、ツヤ−ナル・アメリカン・ケミカル・ソサイエティ
(Journal American Che
mical 5ociety)、81巻、1764
頁以下、(1959年)〕。
12 キンランを用いて製造したヘパリノイド〔合成
法ヴイ・エム・ドクター(V、 M、 Doctor)
、ヴイ・サウルズ(V、 5auls)、トロンボシト
・リサーチ(Throsbos、 Res、 )、30
巻、573〜578頁、(1983年))。
法ヴイ・エム・ドクター(V、 M、 Doctor)
、ヴイ・サウルズ(V、 5auls)、トロンボシト
・リサーチ(Throsbos、 Res、 )、30
巻、573〜578頁、(1983年))。
13、デキストランを用いて製造したヘパリノイド(デ
キストラン硫酸)〔合成法・レヶッッ(c、rt。
キストラン硫酸)〔合成法・レヶッッ(c、rt。
1tcckeLts)、バイオケミカル・ジャーナル(
B 1o−ches、 、J 、 )、51巻、129
〜133頁(1952年))、 14、アルギン酸を用いて?J遺したヘパリノイド〔合
成法、ラーム(0’、 Lars)ら、カーボハイドレ
ート、リサーチ(carbohydrate Re5
each)、73巻、332〜336頁(1979年)
〕。
B 1o−ches、 、J 、 )、51巻、129
〜133頁(1952年))、 14、アルギン酸を用いて?J遺したヘパリノイド〔合
成法、ラーム(0’、 Lars)ら、カーボハイドレ
ート、リサーチ(carbohydrate Re5
each)、73巻、332〜336頁(1979年)
〕。
+5.セルロースtc酸を用いて製造したヘパリノイド
〔合成法キンドネス(G 、 K 1ndness)ら
、プリティフノユ・ツヤ−ナル・オブ・ファーマン−(
Br、 J 、 Pharac、 )、68巻、645
〜649頁(1980年)〕。
〔合成法キンドネス(G 、 K 1ndness)ら
、プリティフノユ・ツヤ−ナル・オブ・ファーマン−(
Br、 J 、 Pharac、 )、68巻、645
〜649頁(1980年)〕。
16、スルホン化したN−カルボキンメチルキト−サン
を用いて製造したヘパリノイド〔合成法:ムッザレリ(
R,A、 A、 Muzzarelli)、ポリマー・
サイエンス・アンド・チクガロジー(PolymerS
cience and Technology)、
23巻、359〜374頁(1983年)〕。または 17、合成ヘパリノイド〔合成法オカダ(MOkada
)ら、マクロモレクラ−・ヒエミー(〜1akroso
1. Cbc饋、)、180巻、813〜817員(1
979年)およびコモダ(H、K oaoda)、マク
ロモレクラ−・ヒエミー(MAkrosol 、 G
hcm、 )、l818.2305〜2314頁(+
980<1))、。
を用いて製造したヘパリノイド〔合成法:ムッザレリ(
R,A、 A、 Muzzarelli)、ポリマー・
サイエンス・アンド・チクガロジー(PolymerS
cience and Technology)、
23巻、359〜374頁(1983年)〕。または 17、合成ヘパリノイド〔合成法オカダ(MOkada
)ら、マクロモレクラ−・ヒエミー(〜1akroso
1. Cbc饋、)、180巻、813〜817員(1
979年)およびコモダ(H、K oaoda)、マク
ロモレクラ−・ヒエミー(MAkrosol 、 G
hcm、 )、l818.2305〜2314頁(+
980<1))、。
例示的に示したヘパリン誘導体は、所望により既知の溶
解補助剤、安定剤および/またはベノノルアルコールの
ような防腐剤を添加し、滅菌した水溶液の形にするかま
たは固体として長年にわたり変化することなく、完全な
活性を保持しつつ貯蔵することができる。これは同様に
、滅菌濾過または、例えば105〜121℃で30分間
、蒸気または加ハ滅菌するような既知のTX段によって
滅菌することができる。
解補助剤、安定剤および/またはベノノルアルコールの
ような防腐剤を添加し、滅菌した水溶液の形にするかま
たは固体として長年にわたり変化することなく、完全な
活性を保持しつつ貯蔵することができる。これは同様に
、滅菌濾過または、例えば105〜121℃で30分間
、蒸気または加ハ滅菌するような既知のTX段によって
滅菌することができる。
これらのヘパリン誘導体は抗凝固活性が低いので、特に
溶液の形で静脈内に適用するのに好適である。これらは
またp Hを50〜8.0とし、浸透圧を調節すること
により、体外沈澱用の医堕品として堤供される。これら
はpHbi 4 、0〜58の範囲でしDし沈澱能を示
すので、低比重リポ蛋白(LIJL、)を全面または面
柴から選択的に沈澱させるにはpH値40〜5.8の範
囲で使用ず4ことか好ましい。
溶液の形で静脈内に適用するのに好適である。これらは
またp Hを50〜8.0とし、浸透圧を調節すること
により、体外沈澱用の医堕品として堤供される。これら
はpHbi 4 、0〜58の範囲でしDし沈澱能を示
すので、低比重リポ蛋白(LIJL、)を全面または面
柴から選択的に沈澱させるにはpH値40〜5.8の範
囲で使用ず4ことか好ましい。
これらのヘパリン誘導体をこの発明に掲げる低比重リポ
蛋白の選択的な沈澱用として利Illするには、治療的
領域だけでなく診断用検査の領域にも好適に使用できる
。
蛋白の選択的な沈澱用として利Illするには、治療的
領域だけでなく診断用検査の領域にも好適に使用できる
。
全面または面漿からしDLを選択的に体外沈澱さける方
法と装置が西独公開特許第31358+4シ」に示され
ている。ごの方法においては天然産ヘパリンが沈澱剤と
して記載されている。この発明に掲げるヘパリン誘導体
はLDLの沈澱に使用する場合、これらの抗凝固性活性
がヘパリンと比べて著しく低いというに1点を存する。
法と装置が西独公開特許第31358+4シ」に示され
ている。ごの方法においては天然産ヘパリンが沈澱剤と
して記載されている。この発明に掲げるヘパリン誘導体
はLDLの沈澱に使用する場合、これらの抗凝固性活性
がヘパリンと比べて著しく低いというに1点を存する。
天然産ヘパリンと同等のしDL沈澱反応を生じる一方で
、その抗凝固性活性が低いことにより、ヘパリン誘導体
を使用して患者を処置する場合に出血の危険を生しるこ
とがない。
、その抗凝固性活性が低いことにより、ヘパリン誘導体
を使用して患者を処置する場合に出血の危険を生しるこ
とがない。
以Fに実m例を示して、この発明を更に詳細に説明する
。
。
次表の表−目よ、先に挙げノこヘパリン誘導体υノ1−
17および天然産l\バリンナトリウ12で、西独公開
特許第3135814号に示された装置を用いる方によ
りしDL沈澱実験を実施して得られた抗凝固性活性とそ
の叶2範囲を示したものである。沈澱実験に際しては、
実施例4Cに例示した如く、面記化合物の0.939・
I!−’の量をアセテートバッファー(pII4.85
)中に加えて行った。
17および天然産l\バリンナトリウ12で、西独公開
特許第3135814号に示された装置を用いる方によ
りしDL沈澱実験を実施して得られた抗凝固性活性とそ
の叶2範囲を示したものである。沈澱実験に際しては、
実施例4Cに例示した如く、面記化合物の0.939・
I!−’の量をアセテートバッファー(pII4.85
)中に加えて行った。
表−夏に示しkpH値は、少なくとらL D Lの50
%を沈澱させるpH範囲を掲げている。
%を沈澱させるpH範囲を掲げている。
また抗凝固性活性は第XX版米国薬局方(USp xx
)に記載の試験法、または、例えばタイエン(Teie
n)ら〔トロンボ−シス・リサーチ(Throab。
)に記載の試験法、または、例えばタイエン(Teie
n)ら〔トロンボ−シス・リサーチ(Throab。
Res、)、8巻、413頁(1976年)およびトロ
ンボ−シス、リサーチ(Throab、 Rcs、 )
、10巻、399頁(1977年)〕により記載されて
いる色素原性基質試験法により測定を行った。
ンボ−シス、リサーチ(Throab、 Rcs、 )
、10巻、399頁(1977年)〕により記載されて
いる色素原性基質試験法により測定を行った。
この表から、凝固活性が1.01E−s+9−’または
それ以上のヘパリン誘導体は、化学構造の如何にかかわ
らすL D L沈澱剤として好適であることが判明した
。凝固活性が1.01E−ay−’より低い物質、例え
ば!、2.8および9(実施例3参照)は、沈澱剤とし
て好適ではなかった。
それ以上のヘパリン誘導体は、化学構造の如何にかかわ
らすL D L沈澱剤として好適であることが判明した
。凝固活性が1.01E−ay−’より低い物質、例え
ば!、2.8および9(実施例3参照)は、沈澱剤とし
て好適ではなかった。
」二l LDL−沈澱反応試験成績
2 〈053 4.2
−5.5 54 4.2−5.5
125 4.5−5.8 17,66
4.6−5.8 22−357 4
.4−5.8 15.98 充分な沈澱物を
得られず 0439 0
.37510 5.0−5.8*5.6 11 4.2−5.8 5212 4
.2−5.8 2313 4.2−5.8
1414 4.2−5.8 2
.815 4.2−5.8 2016
4.2−5.8 2717 4.2−5
.8 6ヘバリノーNa (対 照)4.5−5.8 155*沈澱剤 2
、09/Qを使用 !膚ア1に の明細書に提供しノー−・連のヘパリン様物質のヒト血
漿におけろ低比重リポ蛋白(LDL)の沈澱能を検討し
た。これらの物質を、酢酸でpH4,85にj、11節
した0 2モル酢酸ナトリウム緩衝液に0.93w/Q
の濃度で溶解した。ヒト[[[L漿500μQを、試験
物質を含有する酢酸ナトリウム緩衝液6500μQと混
合した。10分間、室温または37 ”Cで放置後、0
.47zmのフィルターで濾別士るかまたは庵心分離し
、上raに自まれろコレステ〔l−ル濃度を調べた。ヘ
パリン誘導体によって沈澱したL l) L−コレステ
ロール濃度は、予め知られている総コレステロール含量
から上清のコレステロール値を差し引くことによって算
出した。
−5.5 54 4.2−5.5
125 4.5−5.8 17,66
4.6−5.8 22−357 4
.4−5.8 15.98 充分な沈澱物を
得られず 0439 0
.37510 5.0−5.8*5.6 11 4.2−5.8 5212 4
.2−5.8 2313 4.2−5.8
1414 4.2−5.8 2
.815 4.2−5.8 2016
4.2−5.8 2717 4.2−5
.8 6ヘバリノーNa (対 照)4.5−5.8 155*沈澱剤 2
、09/Qを使用 !膚ア1に の明細書に提供しノー−・連のヘパリン様物質のヒト血
漿におけろ低比重リポ蛋白(LDL)の沈澱能を検討し
た。これらの物質を、酢酸でpH4,85にj、11節
した0 2モル酢酸ナトリウム緩衝液に0.93w/Q
の濃度で溶解した。ヒト[[[L漿500μQを、試験
物質を含有する酢酸ナトリウム緩衝液6500μQと混
合した。10分間、室温または37 ”Cで放置後、0
.47zmのフィルターで濾別士るかまたは庵心分離し
、上raに自まれろコレステ〔l−ル濃度を調べた。ヘ
パリン誘導体によって沈澱したL l) L−コレステ
ロール濃度は、予め知られている総コレステロール含量
から上清のコレステロール値を差し引くことによって算
出した。
以ドの図面において、沈澱したし1)シーコレステロー
ルは、いずれら(沈澱したt、 o L)/(L 。
ルは、いずれら(沈澱したt、 o L)/(L 。
1、分析値)の商として表セか、または1−清中のコレ
ステロール含量として直接肩9/dQで縦座標に示し/
二。L I) L コレステロールの分1lit直は
、ウイーラノト(I1、 Wicl+Ind)、ザイデ
ル(D 、 S eidel)〔ツヤ−ナル・オブ・リ
ビツド・リサーチ(、ILipid、 Res、 )2
4巻、904−909頁(1983年)〕によるヘパリ
ン・ノドレート溶液を用いる分析的L D L試験法に
よって測定した。
ステロール含量として直接肩9/dQで縦座標に示し/
二。L I) L コレステロールの分1lit直は
、ウイーラノト(I1、 Wicl+Ind)、ザイデ
ル(D 、 S eidel)〔ツヤ−ナル・オブ・リ
ビツド・リサーチ(、ILipid、 Res、 )2
4巻、904−909頁(1983年)〕によるヘパリ
ン・ノドレート溶液を用いる分析的L D L試験法に
よって測定した。
商が1であるということは、オなわらI、I)I、コレ
ステロールが定量的に沈澱したことを意味する。
ステロールが定量的に沈澱したことを意味する。
酢酸ナトリウム緩衝液中のlI値の調節に要する酢酸所
要量を変化さ0・ることにより、pH1−17を4.0
〜5.4の範囲で調節した。ヘパリン誘導体の酢酸ナト
リウム緩衝液溶液(0,93y/fり同量のヒト血漿を
混合してtl14DI−たpl−1値を、添付図面のv
A座標にとり、第1図では表に挙げた生成物5によるL
DL−沈澱のpHによる変化を示した。
要量を変化さ0・ることにより、pH1−17を4.0
〜5.4の範囲で調節した。ヘパリン誘導体の酢酸ナト
リウム緩衝液溶液(0,93y/fり同量のヒト血漿を
混合してtl14DI−たpl−1値を、添付図面のv
A座標にとり、第1図では表に挙げた生成物5によるL
DL−沈澱のpHによる変化を示した。
第2図は、酢酸ナトリウム緩衝液(pH4,85)中に
溶存している生成物5の量の増加にとらなって上清中の
コレステロールmが減少することを示している。
溶存している生成物5の量の増加にとらなって上清中の
コレステロールmが減少することを示している。
実施例2
アルテパロノ(A rLeparon商標名)を使用し
て実11桓例1の方法に従い1. l) 1、沈澱試験
を実施した。
て実11桓例1の方法に従い1. l) 1、沈澱試験
を実施した。
アセテートバブファー中に溶存しているアルテベaノの
:IIにより変化するLDL沈澱の測定結果を、ヘパリ
ンと比較して第3図に示した。また、第4図にはアルテ
パロンによるLDL沈澱fflのpHによる変化を示し
、一方、業5図にはヘパリンによるしDL沈澱量のI)
11による変化を示した。
:IIにより変化するLDL沈澱の測定結果を、ヘパリ
ンと比較して第3図に示した。また、第4図にはアルテ
パロンによるLDL沈澱fflのpHによる変化を示し
、一方、業5図にはヘパリンによるしDL沈澱量のI)
11による変化を示した。
実施例3
実施例1および2と同様の方法を用い、ウノの靭シ17
のコツトロイチン硫酸をしDL沈纜剤として使用した。
のコツトロイチン硫酸をしDL沈纜剤として使用した。
;IN定した結果を、アセテートバブファーにk”:
I’1−1−ているコツトロイチン硫酸量によるL])
シ沈澱+1の変化として第6図に示し、同時にヘパリン
による変化を比較として示した。この結果から、コノド
ロイヂノFdt酸では、血漿中のしDし金白i’itを
苔しく低下させないため(約40%)、コツトロイチン
硫酸はこの条件下てLDL沈澱剤として(車用し得ない
ことか判明した二 次に小」゛実施例4は、先に(a)を乙−て示したヘバ
リン誘稈体の製造方法よjよびそのしDL沈澱剤として
の応用について記載してい71.。
I’1−1−ているコツトロイチン硫酸量によるL])
シ沈澱+1の変化として第6図に示し、同時にヘパリン
による変化を比較として示した。この結果から、コノド
ロイヂノFdt酸では、血漿中のしDし金白i’itを
苔しく低下させないため(約40%)、コツトロイチン
硫酸はこの条件下てLDL沈澱剤として(車用し得ない
ことか判明した二 次に小」゛実施例4は、先に(a)を乙−て示したヘバ
リン誘稈体の製造方法よjよびそのしDL沈澱剤として
の応用について記載してい71.。
実施例4
A ヘパリン誘導体のVJm
平均分子量15000Dのヘパリン30gを発熱性物質
を含まない蒸留水480IIQに溶解し、これを反応容
器中で予め70℃に加熱したIN−塩酸24f1+(と
混合した。反応混合物の温度を70℃に保った。pH値
は約I Oであった。80分間加水分解したのら、水浴
で冷却して反応を停止し、5N−苛性ソーダ液30z(
!を加えてpl−16,8〜7に調節した。反応生成物
は発熱性物質を含量しない蒸留水で透析し、噴霧乾燥し
た。1.91E/Qの凝固活性を示す白色吸湿性の生成
物25gをi−トた。その活性は第XX版米国薬局方に
記載の方法で試験し、国際単位で表した。比較のため3
国際車位のヘパリン標早品を対照とした。
を含まない蒸留水480IIQに溶解し、これを反応容
器中で予め70℃に加熱したIN−塩酸24f1+(と
混合した。反応混合物の温度を70℃に保った。pH値
は約I Oであった。80分間加水分解したのら、水浴
で冷却して反応を停止し、5N−苛性ソーダ液30z(
!を加えてpl−16,8〜7に調節した。反応生成物
は発熱性物質を含量しない蒸留水で透析し、噴霧乾燥し
た。1.91E/Qの凝固活性を示す白色吸湿性の生成
物25gをi−トた。その活性は第XX版米国薬局方に
記載の方法で試験し、国際単位で表した。比較のため3
国際車位のヘパリン標早品を対照とした。
B、Aによる生成物の特性値測定
生成物のウロノ酸含量はビック−(T 、 B 1kL
er)ら〔アナリティカル・バイオケミストリー(An
a−1yticalBiocheIN、)、4巻、33
0頁(1962年)〕の方法により測定した。グルタロ
ン酸う′7トノを+fI4品として使用した。この生成
物は282%のウロン酸含量を示した。ヘキソサミノ桔
の含Iλは、バースト(R,E、 l−1ursL)ら
〔アナリテでカル・バイオケミストリー(Analyt
ical Rioch+!s、 )、+s6.88頁(
,1981年)〕の方法により光学的な方法で測定した
。ウロン酸とへキソサミン基の含量比は098であった
。
er)ら〔アナリティカル・バイオケミストリー(An
a−1yticalBiocheIN、)、4巻、33
0頁(1962年)〕の方法により測定した。グルタロ
ン酸う′7トノを+fI4品として使用した。この生成
物は282%のウロン酸含量を示した。ヘキソサミノ桔
の含Iλは、バースト(R,E、 l−1ursL)ら
〔アナリテでカル・バイオケミストリー(Analyt
ical Rioch+!s、 )、+s6.88頁(
,1981年)〕の方法により光学的な方法で測定した
。ウロン酸とへキソサミン基の含量比は098であった
。
生成物のN−アセチル基金含量は、アルカリ性で加水分
解したのら、遊離したアセテートを滴定4〜ろことによ
り83%(W/W)の値を得た。
解したのら、遊離したアセテートを滴定4〜ろことによ
り83%(W/W)の値を得た。
遊離アミノ基の相対的含イf量は、2.4.6−ドリニ
ト(2ヘンゼン 1 スルホン酸を使用するサタケ(K
、 S aLake)ら〔ツヤ−ナル・オブ・バイオ
ケミストリー(,1、B iochem、 )、47巻
、654rt(19[i 11 ’i))の方法により
測定した。比較物質として、畠にクリ7ノをIIいた。
ト(2ヘンゼン 1 スルホン酸を使用するサタケ(K
、 S aLake)ら〔ツヤ−ナル・オブ・バイオ
ケミストリー(,1、B iochem、 )、47巻
、654rt(19[i 11 ’i))の方法により
測定した。比較物質として、畠にクリ7ノをIIいた。
商業的に人手しi−tろヘパリンの遊離アミノ基な4量
はIO〜50μモル・9−1の範囲であるのに対し、実
施例4Aてi!られノニ生成物の場合はI 29 It
モル・y−1の値を示した。
はIO〜50μモル・9−1の範囲であるのに対し、実
施例4Aてi!られノニ生成物の場合はI 29 It
モル・y−1の値を示した。
ノルバート(S i I l+erL) (パイAケミ
カル・バイオフィンカル・リサーチ・コムニケーノヨノ
(Bioches、 Biophys、 Res、 C
om5un、 )第69S1第570頁(1976年)
〕の方法によるメタクロマノー色素効果、すなわち塩基
性色素(例えば、トルイノンブルー)によってU V
/ Fir視スペクトルのメタクロマジー変色を生じる
ヘパリンおよびその誘導体の性質を、ヘパリンと実施例
へ4の生成物で検討した。ヘパリンでは最大のメタクロ
マジー効果が測定できたが、加水分解物では明らかに効
果が減少した。両者の直線勾配(メタクロマジー効果の
濃度による変化)の比はl(ヘパリン)0.65であっ
た。
カル・バイオフィンカル・リサーチ・コムニケーノヨノ
(Bioches、 Biophys、 Res、 C
om5un、 )第69S1第570頁(1976年)
〕の方法によるメタクロマノー色素効果、すなわち塩基
性色素(例えば、トルイノンブルー)によってU V
/ Fir視スペクトルのメタクロマジー変色を生じる
ヘパリンおよびその誘導体の性質を、ヘパリンと実施例
へ4の生成物で検討した。ヘパリンでは最大のメタクロ
マジー効果が測定できたが、加水分解物では明らかに効
果が減少した。両者の直線勾配(メタクロマジー効果の
濃度による変化)の比はl(ヘパリン)0.65であっ
た。
フラボバクテリウム・ヘパリナム(F 1avobac
rerius heparinua)から調製された
ヘパリナーゼ(EC,4,2,2,7)のヘパリンおよ
びその誘導体を基質とする反応速度は、各基質の構造に
よって鋭敏に変化する。検討すべき誘導体とヘパリンと
の構造的な相aの程度は、ヘパリンとその誘導体括質に
対するヘバリ+−ゼ活性の比に逆比例オろ。
rerius heparinua)から調製された
ヘパリナーゼ(EC,4,2,2,7)のヘパリンおよ
びその誘導体を基質とする反応速度は、各基質の構造に
よって鋭敏に変化する。検討すべき誘導体とヘパリンと
の構造的な相aの程度は、ヘパリンとその誘導体括質に
対するヘバリ+−ゼ活性の比に逆比例オろ。
該活性はリンカ=(A 、 L ink++r) (メ
ソーノズ・イ/・エノザ(モ〔1ノー(McLl+od
s in l’:nzy*ology)、28在、(1
982年)およびP C′I’特許/US81 01
fl 81号〕により記載されているF配力条件により
測定した。ヘパリナーゼは、ヒドロキノラパタ(トホス
ホセルロースを用いたクロマト々′ラフイーによ−、て
フラボバクテリウム・ヘパ11ナム(F lavoba
ctcrium heparinum)から分離しノ
ー、、ヘヘリン!/二(まヘパリンaQ体(25mg・
70−’)の20μQとヘパリナーゼ溶液20μQに0
25M−酢酸ナトリウム溶液および0025M−酢酸カ
ルノウム溶液から成る緩衝混合液(pH7,0>2.5
aσをIN+えた。酵素反応は30℃で行い、232n
mの吸光度の変化を定期的に記録した。ヘパリンの時間
/反応曲線の勾配を100%とした。
ソーノズ・イ/・エノザ(モ〔1ノー(McLl+od
s in l’:nzy*ology)、28在、(1
982年)およびP C′I’特許/US81 01
fl 81号〕により記載されているF配力条件により
測定した。ヘパリナーゼは、ヒドロキノラパタ(トホス
ホセルロースを用いたクロマト々′ラフイーによ−、て
フラボバクテリウム・ヘパ11ナム(F lavoba
ctcrium heparinum)から分離しノ
ー、、ヘヘリン!/二(まヘパリンaQ体(25mg・
70−’)の20μQとヘパリナーゼ溶液20μQに0
25M−酢酸ナトリウム溶液および0025M−酢酸カ
ルノウム溶液から成る緩衝混合液(pH7,0>2.5
aσをIN+えた。酵素反応は30℃で行い、232n
mの吸光度の変化を定期的に記録した。ヘパリンの時間
/反応曲線の勾配を100%とした。
r・備試験を行い、括質飽和状態で反応が行なわれろご
よを確認した。実施例4Aの一生成物ては、へペリンの
5・1%の反応速度が得られた。
よを確認した。実施例4Aの一生成物ては、へペリンの
5・1%の反応速度が得られた。
乙とのヘパリンの比旋光度は509°の1こ均値を示し
た。実施例4Aの生成物では〔α〕D=425°の比旋
光度が得られた。
た。実施例4Aの生成物では〔α〕D=425°の比旋
光度が得られた。
実施例4Aで得られた加水分解物の分子rItまたは分
子量分布は、原料に使用しlニヘパリンと変わらない。
子量分布は、原料に使用しlニヘパリンと変わらない。
その平均分子!Jkはl 5 (+ 001)てめ−I
f二。
f二。
実施例4Aの生成物はアノチトロンヒノ1■結合性をも
とのヘパリンと比較した。ヘーク(M。
とのヘパリンと比較した。ヘーク(M。
Hoock)ら(FEBSレター(F E B S
Letter)、66巻、90頁(1976年)〕の方
法に従い、セファロース413 (S epharos
e413 商標名)にJ” rK結合的に結合している
ヒト、アンチトロンビン■を用いてアフィニティクロマ
トグラフィーを実施した。商業的に入手し得るヘパリン
では、明瞭に区別し得るアンチトロンビン1■に結合し
た3本のヘパリンフラクンヨノ結合帯(非結合性画分、
低結合性画分、高結合性画分)が得られた。これに対し
て実施例4Aの生成物では、アンチト〔lノヒノ■に対
し全く結合しないか、またはわずかに少部分の低結合性
画分があるだけであった。この発明の生成物のアンチト
ロンヒン11−セファa−スニ対するアフィニテfウロ
マトグラフf−の溶離図を第7[211に、士た製造に
使用したヘパリンのアフイニティクロマトグラフィーの
溶離図を第8図に示し几。(セファロースに結合させた
アンチトロンビン■に吋・1−ろアフイニティクロマト
グラフィーの条件: ItJiM I : 11 、115モル トリス・バ
ブファー、005モルNaCCMif&:(llII
7 、5 )f!′#液2:0.05モル トリス・バ
ブファー、25モルNaC0溶液(pl+ 7 、5
))溶離a:(1)W衝i& l (30mQ)(2)
緩衝液I(30+σ)(緩衝液2C30RQ’)(直線
的製電勾配) 流速:l5zf!・hl 試料らt:1.0*(1:3xy−xQI(溶出tろ試
料は2z(14”つ採取した)実施例4Aの生成物の硫
黄含イイ咀は、製造原料ヘパリンか11.5%(W/W
であるのに対し98%であっfこ。
Letter)、66巻、90頁(1976年)〕の方
法に従い、セファロース413 (S epharos
e413 商標名)にJ” rK結合的に結合している
ヒト、アンチトロンビン■を用いてアフィニティクロマ
トグラフィーを実施した。商業的に入手し得るヘパリン
では、明瞭に区別し得るアンチトロンビン1■に結合し
た3本のヘパリンフラクンヨノ結合帯(非結合性画分、
低結合性画分、高結合性画分)が得られた。これに対し
て実施例4Aの生成物では、アンチト〔lノヒノ■に対
し全く結合しないか、またはわずかに少部分の低結合性
画分があるだけであった。この発明の生成物のアンチト
ロンヒン11−セファa−スニ対するアフィニテfウロ
マトグラフf−の溶離図を第7[211に、士た製造に
使用したヘパリンのアフイニティクロマトグラフィーの
溶離図を第8図に示し几。(セファロースに結合させた
アンチトロンビン■に吋・1−ろアフイニティクロマト
グラフィーの条件: ItJiM I : 11 、115モル トリス・バ
ブファー、005モルNaCCMif&:(llII
7 、5 )f!′#液2:0.05モル トリス・バ
ブファー、25モルNaC0溶液(pl+ 7 、5
))溶離a:(1)W衝i& l (30mQ)(2)
緩衝液I(30+σ)(緩衝液2C30RQ’)(直線
的製電勾配) 流速:l5zf!・hl 試料らt:1.0*(1:3xy−xQI(溶出tろ試
料は2z(14”つ採取した)実施例4Aの生成物の硫
黄含イイ咀は、製造原料ヘパリンか11.5%(W/W
であるのに対し98%であっfこ。
酸による加水分解の進行は、ヘパリンに鋭敏である凝固
試験、活性化部分トロノボプラスチン時間(ap〕”1
’ )によって追跡した。 ・定時間海に反応混合液か
ら試料0 、8 xQをとり、51M−炭酸水素ナトリ
ウムの09%NaCQ溶液で中和し、同し緩衝液を用い
て1001に昂択した。この原液の18M部を、更に0
9%NaCσで4容+、i 11;に品択した。この昂
釈溶液50μeをヒト・ノドレート血漿950μQと、
昆合し、パトロムヂン(PaLhrolltin;商標
名)試薬〔ベーリングベルケ(r3ehringver
ke)、マールブルグ(Marburg) )を使用し
て試験した。
試験、活性化部分トロノボプラスチン時間(ap〕”1
’ )によって追跡した。 ・定時間海に反応混合液か
ら試料0 、8 xQをとり、51M−炭酸水素ナトリ
ウムの09%NaCQ溶液で中和し、同し緩衝液を用い
て1001に昂択した。この原液の18M部を、更に0
9%NaCσで4容+、i 11;に品択した。この昂
釈溶液50μeをヒト・ノドレート血漿950μQと、
昆合し、パトロムヂン(PaLhrolltin;商標
名)試薬〔ベーリングベルケ(r3ehringver
ke)、マールブルグ(Marburg) )を使用し
て試験した。
測定には球体凝固計KC4(アメルング旺(F irm
aAaelung GsbH)、レムゴ(1、cmg
o) )を使用した。表−2に、測定した凝固時間(4
回の測定値の平均値:抄)の時間的変化と、4回の測定
値から計算した標準偏差値(S)および変動係数(Vk
)を示す。
aAaelung GsbH)、レムゴ(1、cmg
o) )を使用した。表−2に、測定した凝固時間(4
回の測定値の平均値:抄)の時間的変化と、4回の測定
値から計算した標準偏差値(S)および変動係数(Vk
)を示す。
C,Ll)L・沈澱反応への応用
実施例4Aで製造した生成物のヒト血常にわけろ低圧用
リポ蛋白(LDL)沈澱能を調べf為実施例4Aによる
生成物を、酢酸でpH4,85に調節した0、2M−酢
酸ナトリウム緩衝液に0939/Qの濃度で溶解した。
リポ蛋白(LDL)沈澱能を調べf為実施例4Aによる
生成物を、酢酸でpH4,85に調節した0、2M−酢
酸ナトリウム緩衝液に0939/Qの濃度で溶解した。
ヒト血漿500 Bσを実施例4の生成物を食付してい
るアセテ−ドパ1フアー500μQと混合した。室温で
10分放置後、Ol1μmのフィルターで濾別4゛るか
、11二は」仝8分離し、上t+1中のコレステロール
0度を測定したウヘバリン誘導体で沈澱させたL D
L コレステロール濃度は、予め得られている総コレス
テロール含量から上清中のコレステロール値を差し引く
ことにより算出した。
るアセテ−ドパ1フアー500μQと混合した。室温で
10分放置後、Ol1μmのフィルターで濾別4゛るか
、11二は」仝8分離し、上t+1中のコレステロール
0度を測定したウヘバリン誘導体で沈澱させたL D
L コレステロール濃度は、予め得られている総コレス
テロール含量から上清中のコレステロール値を差し引く
ことにより算出した。
以下の図面では、LDL・コレステロールの沈iIi槍
は(LDLの沈殿量)/(L D L、の分析値)の商
をもって縦座標に表した。LDL−コレステロールの分
析値は、ヘパリン・ントレートを用いる分析的LDL試
験法を用いて求めた〔ウィーラノト(H,Wielan
d)およびザイデル(D 、 S eidel) )
、ツヤ−ナル・オブ・リピヅド・リサーチ(J。
は(LDLの沈殿量)/(L D L、の分析値)の商
をもって縦座標に表した。LDL−コレステロールの分
析値は、ヘパリン・ントレートを用いる分析的LDL試
験法を用いて求めた〔ウィーラノト(H,Wielan
d)およびザイデル(D 、 S eidel) )
、ツヤ−ナル・オブ・リピヅド・リサーチ(J。
1 i1+id、 Res、 )2−16. 904
頁(1983年)〕。
頁(1983年)〕。
商がIでめろことは、しすし−コレステロールか定量的
に沈澱したことを章味する。
に沈澱したことを章味する。
酢酸ナトリウム緩衝液の1ull値調節に要する酢酸所
要量を変化させろことにより、ptl値を4.0〜54
の範囲で:Al7iシた。ヘパリン誘導体の酢酸ナトリ
ウム緩衝液溶液(0,93g/lりと、同容t1のヒト
血漿を混合したのち、そのplI値を調節し、以下にこ
れを図面のtill座標に表した。第9図は実施例4A
で製造した生成物で沈澱させたLDI、沈澱OpH値に
よる変化を示す。第1θ図は、実施例4Aの生成物の酢
酸ナトリウム緩衝液(pH485)中に溶存する量によ
って、上清中のコレステロールが減少することを示して
いる。
要量を変化させろことにより、ptl値を4.0〜54
の範囲で:Al7iシた。ヘパリン誘導体の酢酸ナトリ
ウム緩衝液溶液(0,93g/lりと、同容t1のヒト
血漿を混合したのち、そのplI値を調節し、以下にこ
れを図面のtill座標に表した。第9図は実施例4A
で製造した生成物で沈澱させたLDI、沈澱OpH値に
よる変化を示す。第1θ図は、実施例4Aの生成物の酢
酸ナトリウム緩衝液(pH485)中に溶存する量によ
って、上清中のコレステロールが減少することを示して
いる。
次に示す実施例5および6に、先に(b)に記載したヘ
パリン誘導体の製造およびLDL沈澱反応におけるその
利用について記載する。
パリン誘導体の製造およびLDL沈澱反応におけるその
利用について記載する。
実施例5
八、ヘパリン誘導体の製造:
実施例4Aに示す方法により製造したヘパリン加水分解
物を、次の段階で無水醋酸と反応させた。
物を、次の段階で無水醋酸と反応させた。
この処置は、加水分解段階で遊離されたアミノ基を公知
の方法によってアセチル化することを目的としている。
の方法によってアセチル化することを目的としている。
凝固活性5.711E/Ifg(tJsr’XX)のヘ
パリン加水分解物(実施例1)2.59を水2791ρ
に溶解し、これにメタノール30112および炭酸ナト
リウム1.5yを加えた。この溶液を水冷しつつ、これ
に無水酢酸6IIIQ、を3θ分間かけて滴下した。
パリン加水分解物(実施例1)2.59を水2791ρ
に溶解し、これにメタノール30112および炭酸ナト
リウム1.5yを加えた。この溶液を水冷しつつ、これ
に無水酢酸6IIIQ、を3θ分間かけて滴下した。
この場合、3M−NatCO3溶液を用いて9[(値を
7.0〜7.5に維持した。水浴中で更に2時間攪拌を
続けたあと、次いで水に対して2日間透析を行った。得
られた生成物は常法によりエタノールで沈澱させ、真空
乾燥器中で60℃で一夜乾燥した。白色の吸湿し易い生
成物(収t2.I?)は!691 E/19(U S
P X X)(7)凝固活性を示した。
7.0〜7.5に維持した。水浴中で更に2時間攪拌を
続けたあと、次いで水に対して2日間透析を行った。得
られた生成物は常法によりエタノールで沈澱させ、真空
乾燥器中で60℃で一夜乾燥した。白色の吸湿し易い生
成物(収t2.I?)は!691 E/19(U S
P X X)(7)凝固活性を示した。
B、Aによる生成物の特性値決定。
この生成物の400 MHz −’H−NMRスペクト
ルを第11図に示す。スペクトル(50n・xQ −1
Dy”+内部規準:HI)0.’l″MSに対する化学
ノット δ−・l 、 Hpp−〕はヘパリノと比へて
N−アセチルングナルの高いピークを示した。この生成
物は、そのスペクトルから明らかなように、なお若干の
エタノールを不純物として含aしている(1.18pp
m、3.59 ppg+)。遊離アミノ屑の含aF1は
、出発物質の145μモル/gに対して4.4μモル/
9に低下した。ヘパリナーゼによる分解速度は、出発物
質の53%(ヘパリン=I00%)に対してアセデル化
生成物では45%に変化した。
ルを第11図に示す。スペクトル(50n・xQ −1
Dy”+内部規準:HI)0.’l″MSに対する化学
ノット δ−・l 、 Hpp−〕はヘパリノと比へて
N−アセチルングナルの高いピークを示した。この生成
物は、そのスペクトルから明らかなように、なお若干の
エタノールを不純物として含aしている(1.18pp
m、3.59 ppg+)。遊離アミノ屑の含aF1は
、出発物質の145μモル/gに対して4.4μモル/
9に低下した。ヘパリナーゼによる分解速度は、出発物
質の53%(ヘパリン=I00%)に対してアセデル化
生成物では45%に変化した。
比旋光度は〔α〕背=+51’から+445゜に変化し
た。ヘパリンを100%とするトルイノノブルーで測定
したメタクロマノー効果は、出発物質の85%に対して
82%に変化した。
た。ヘパリンを100%とするトルイノノブルーで測定
したメタクロマノー効果は、出発物質の85%に対して
82%に変化した。
C,LI)L沈澱反応への応用。
実施例4Cに記載した方法を用いて、得られた生成物の
ヒト血漿におけるLDL沈澱能を検討した。712図に
、L D L沈澱反応のpHによる変化を示した。
ヒト血漿におけるLDL沈澱能を検討した。712図に
、L D L沈澱反応のpHによる変化を示した。
実施例q
実施例4Aに示す、方、生りより製造したヘパリン+1
1水 Uた。この処置は、加水分解段階でJ離されたアミノ括
を公知の方法によってザクノニル化4−ることを目的と
している。
1水 Uた。この処置は、加水分解段階でJ離されたアミノ括
を公知の方法によってザクノニル化4−ることを目的と
している。
凝固活性5 、 7 1 1 E/zR(U S P
X X)ノヘバリン加水分解物(実施例4A)2gを水
24x(lに溶解し、室温で無水コハク酸600zyを
少qずつ加えた。5N−NaOHを用いてpl−1値を
8 0に4(持した。添加終了後、溶液を叶【7 5に
調節し、2日間水に対して透析した。生成物をエタノー
ルで沈澱させ、分離した沈澱物を真空乾燥器中で一夜6
0℃で乾燥した。
X X)ノヘバリン加水分解物(実施例4A)2gを水
24x(lに溶解し、室温で無水コハク酸600zyを
少qずつ加えた。5N−NaOHを用いてpl−1値を
8 0に4(持した。添加終了後、溶液を叶【7 5に
調節し、2日間水に対して透析した。生成物をエタノー
ルで沈澱させ、分離した沈澱物を真空乾燥器中で一夜6
0℃で乾燥した。
白色の生成物は、1 8.8 1 E/zy(USpX
X)の凝固活性を示した。
X)の凝固活性を示した。
生成物の4 0 0 MHz − ’H − NMRス
ペクトルを第13図に示した(50a+y・i9−’D
tO:内部規準:HDO:TMSに対するδ−4 、
8 ppm)。生成物の出発物質およびヘパリンと比較
した諸物性を下記の表−3に示す。しDし沈澱反応のp
l.Iによる変化は第14図に示した経過をたどる。沈
澱反応は実施例・ICに示した条件で実施した。
ペクトルを第13図に示した(50a+y・i9−’D
tO:内部規準:HDO:TMSに対するδ−4 、
8 ppm)。生成物の出発物質およびヘパリンと比較
した諸物性を下記の表−3に示す。しDし沈澱反応のp
l.Iによる変化は第14図に示した経過をたどる。沈
澱反応は実施例・ICに示した条件で実施した。
N−3N サクノニル化した加水分解物と天然産ヘパ
リンおよびザクンニル化+iiiのヘパリン加水分解物
との諸物性の比較 ノンブルー) 発明の効果 本発明はヘパリン誘導体を用いることにより、動脈便化
症の原因となる低比重リポ蛋白を全aI【清上たは血漿
から選択的に体外に沈澱させることができろ。
リンおよびザクンニル化+iiiのヘパリン加水分解物
との諸物性の比較 ノンブルー) 発明の効果 本発明はヘパリン誘導体を用いることにより、動脈便化
症の原因となる低比重リポ蛋白を全aI【清上たは血漿
から選択的に体外に沈澱させることができろ。
第[図および第2図は、それぞれ5P54によろl I
) 1.沈澱のpH値による変化およびアセテート・<
ノー、1アー中に溶存しているSF’54の屯によっ
て変化する上t#中のコレステロール量をI\パリリン
比較して示している。 第3図は、アセテートバッファーに溶fjLでいるアル
テパロンの…によって変化ずろ上清中のフレステ[1−
ルqをl\パリリン比較して示している。。 第4図はアルテパロンによる1、 l) 1.沈澱の1
111値による変化を示し、第5図はヘパリン・ナトリ
ウムによるしDし沈殿の9H値による変化を示す。 第6図は、ウノの靭帯のコンドロイチン硫酸のアセテー
トバッファー中の溶存量によって変化する上滑中のコレ
ステロール量をヘパリンの場合と比較して示している。 第7図および第8図は、それぞれヘパリン加水分解物お
よびヘパリンのヒト、アンチトロンビン■を結合させた
セファロース4Bによるアフィニティクロマトグラフィ
ーの溶離図を示す。 第9図および第1O図は、それぞれヘパリン加水分解物
(実施例4A)によるLDし沈澱のpH1による変化と
、アセテート・バッファー中に溶存するヘパリン加水分
解物量によって変化する上清中のコレステロール量の変
化を示す。 第1t図は、ヘパリン加水分解物をアセチル化した反応
生成物(実施例5A)の400MHz−’HNMRスペ
クトルを示す。 第12図は、ヘパリン加水分解物をアセチル化した反応
生成物(実施例5A)のL D L沈澱のpH値による
変化を示す。 第13図は、ヘパリン加水分解物をサクノニル化した反
応生成物(実施例6A)の400MHz’H−NMRを
示す。 第14図は、ヘパリン加水分解物をサクノニル化した反
応生成物(実施例6A)のしDL沈澱のpI4値による
変化を示す。 特許出願人 インターメデイカット・ゲゼルノヤフト・
ミツト・ヘノユレンクテル ・ハフツノグ 代 理 人 弁理士 青 山 葆 ほか2名第1図 第2図 アセテートバッフy− 第3図 アセテートバヮ7ア− 第4図 第5図
) 1.沈澱のpH値による変化およびアセテート・<
ノー、1アー中に溶存しているSF’54の屯によっ
て変化する上t#中のコレステロール量をI\パリリン
比較して示している。 第3図は、アセテートバッファーに溶fjLでいるアル
テパロンの…によって変化ずろ上清中のフレステ[1−
ルqをl\パリリン比較して示している。。 第4図はアルテパロンによる1、 l) 1.沈澱の1
111値による変化を示し、第5図はヘパリン・ナトリ
ウムによるしDし沈殿の9H値による変化を示す。 第6図は、ウノの靭帯のコンドロイチン硫酸のアセテー
トバッファー中の溶存量によって変化する上滑中のコレ
ステロール量をヘパリンの場合と比較して示している。 第7図および第8図は、それぞれヘパリン加水分解物お
よびヘパリンのヒト、アンチトロンビン■を結合させた
セファロース4Bによるアフィニティクロマトグラフィ
ーの溶離図を示す。 第9図および第1O図は、それぞれヘパリン加水分解物
(実施例4A)によるLDし沈澱のpH1による変化と
、アセテート・バッファー中に溶存するヘパリン加水分
解物量によって変化する上清中のコレステロール量の変
化を示す。 第1t図は、ヘパリン加水分解物をアセチル化した反応
生成物(実施例5A)の400MHz−’HNMRスペ
クトルを示す。 第12図は、ヘパリン加水分解物をアセチル化した反応
生成物(実施例5A)のL D L沈澱のpH値による
変化を示す。 第13図は、ヘパリン加水分解物をサクノニル化した反
応生成物(実施例6A)の400MHz’H−NMRを
示す。 第14図は、ヘパリン加水分解物をサクノニル化した反
応生成物(実施例6A)のしDL沈澱のpI4値による
変化を示す。 特許出願人 インターメデイカット・ゲゼルノヤフト・
ミツト・ヘノユレンクテル ・ハフツノグ 代 理 人 弁理士 青 山 葆 ほか2名第1図 第2図 アセテートバッフy− 第3図 アセテートバヮ7ア− 第4図 第5図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、(a)緩和な反応条件でヘパリンを加水分解するこ
とにより合成されるか、または (b)緩和な反応条件で加水分解し、次いで遊離したア
ミノ基をアシル化することによりヘパリンから合成され
るか、または (c)合成または半合成グリコサミノグリカンを硫酸化
することによって製造されるか、または(d)天然産ま
たは合成多糖類を硫酸化することによって製造され、 血液凝固に関係し、ヘパリンに鋭敏に反応する試験体系
、例えばトロンビン時間、部分トロンボプラスチン時間
または薬局方に記載のヘパリン試験法に適用して、ヘパ
リンほど高い活性を示さないが、凝固系に対し1.01
E・mg^−^1の測定可能な影響を与えるヘパリン様
作用を有するヘパリン誘導体を、pH4.0〜5.8の
値で、全血清または血漿から低比重リポ蛋白を選択的に
体外沈殿させるヘパリン誘導体の利用。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE19843422407 DE3422407A1 (de) | 1984-06-16 | 1984-06-16 | Verwendung von heparinderivaten zur selektiven extrakorporalen praezipitation von low-density-lipoproteinen aus vollserum oder plasma |
| DE3422407.6 | 1984-06-16 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6169724A true JPS6169724A (ja) | 1986-04-10 |
Family
ID=6238513
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60133892A Pending JPS6169724A (ja) | 1984-06-16 | 1985-06-17 | ヘパリン誘導体の利用 |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4908354A (ja) |
| EP (1) | EP0166324A3 (ja) |
| JP (1) | JPS6169724A (ja) |
| DE (1) | DE3422407A1 (ja) |
| ES (1) | ES8702152A1 (ja) |
| ZA (1) | ZA854508B (ja) |
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