JPS619227A - Tissue culture of buttercup plant - Google Patents

Tissue culture of buttercup plant

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JPS619227A
JPS619227A JP12746784A JP12746784A JPS619227A JP S619227 A JPS619227 A JP S619227A JP 12746784 A JP12746784 A JP 12746784A JP 12746784 A JP12746784 A JP 12746784A JP S619227 A JPS619227 A JP S619227A
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JP
Japan
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liquid medium
tissue culture
concentration
μmol
culture
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JP12746784A
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Japanese (ja)
Inventor
平塚 純造
加藤 ゆきみ
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SEITAI KINO RYO KAGAKUHIN
SEITAI KINOU RIYOU KAGAKUHIN SHINSEIZOU GIJUTSU KENKIYUU KUMIAI
Original Assignee
SEITAI KINO RYO KAGAKUHIN
SEITAI KINOU RIYOU KAGAKUHIN SHINSEIZOU GIJUTSU KENKIYUU KUMIAI
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Publication date
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  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
(57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 〔発明の分野〕 本発明はキンポウゲ科植物の組織培養方法。[Detailed description of the invention] [Field of invention] The present invention is a method for tissue culture of Ranunculaceae plants.

に関する。Regarding.

〔産業上の利用分野〕[Industrial application field]

キンポウゲ科植物、例えば、オウレン類の根茎には、ベ
ルベリン等のインキノリン系アルカロイドが含有されて
おり、このアルカロイド類は例えば健胃系、染料などに
利用されその需要はウゲ科植物からベルベリン等のイソ
キノリン系アルカロイドを直接採取する方法は、該キン
ポウゲ科植物の生育等が自然環境や天候に左右されまた
該植物の収集にも時間と手間がかかるため、有利な方法
とは言えない。そこでこれに代わる方法として、例えば
、生薬学雑誌65巻15〜21頁(1981年)、及び
フィトケミストリー(phytochemtstry)
14巻1209〜1210頁(1975年)等に記載さ
れているように、キンポウゲ科植物の組織培養方法がい
くつか提案されている。しかしこれら従来公知の組織培
養方法においても、該方法によって得られる培養細胞か
ら生産源れる目的物のイソキノリン系アルカロイドの収
量は低いという欠点がある。かかる背景のもとに、本発
明者等はキンポウゲ科植物を液体培地を用いて組織培養
する従来公知の方法を改良して、ベルベリン等のインキ
ノリン系アルカロイド【効率よく生産する方法について
鋭意検討また結果、下記方法を採用すればベルベリン等
のインキノリン系アルカロイドを多量に含有する培養細
胞が得られることを見出し、本発明を完成するに物を液
体培地を用いて組織培養するに当たって、該液体培地に
含まれる銅イオンの濃度を0.2μモル/13以上とす
ることを特徴とするキンポウゲ科植物の組織培養方法、
が提供される。
The rhizomes of plants belonging to the Ranunculaceae family, for example, the rhizomes of the Ranunculaceae family, contain inquinoline alkaloids such as berberine, and these alkaloids are used, for example, as stomachic agents and dyes. The method of directly collecting isoquinoline alkaloids cannot be said to be an advantageous method because the growth of the Ranunculaceae plants depends on the natural environment and weather, and it takes time and effort to collect the plants. Therefore, as an alternative method, for example, the Journal of Crude Pharmacology, Vol. 65, pp. 15-21 (1981) and Phytochemistry
As described in Vol. 14, pp. 1209-1210 (1975), several tissue culture methods for Ranunculaceae plants have been proposed. However, these conventional tissue culture methods also have the drawback that the yield of the target isoquinoline alkaloid produced from the cultured cells obtained by the method is low. Based on this background, the present inventors improved the conventionally known method of tissue culturing Ranunculaceae plants using a liquid medium, and conducted intensive studies on methods for efficiently producing inquinoline alkaloids such as berberine. As a result, it was discovered that cultured cells containing a large amount of inquinoline alkaloids such as berberine could be obtained by employing the following method. A method for tissue culture of Ranunculaceae plants, characterized in that the concentration of copper ions contained in is 0.2 μmol/13 or more,
is provided.

本発明の方法において用いられるキンポウゲ科植物とし
ては、例えば、オウレン(coptisコaponic
a Makino)、セリバオウレン(C,japon
ika  Makino  var、dussect、
aNakai)、キクバオウv ン(G、japoni
kaMakino  var 、japoniKa)、
コセIJ バ、t ウレン(C0japonixa M
aKino  Var。
As the Ranunculaceae plant used in the method of the present invention, for example, Coptis coponic
a Makino), Seriba ouren (C, japon)
ika Makino var, dussect,
aNakai), Kikubaoun (G, japoni)
kaMakino var, japoniKa),
Kose IJ Ba,t Uren (C0japonixa M
aKino Var.

major 5ataKeパパイカオウV ン(C。major 5ataKe Papaikaou V (C.

quinquefolia  Miq、)おjびミツバ
オウレy(c、trifolia 5alisb、)等
ノコブチイス属の植物、7キカラーr ツ(Thali
ctrumminus L、var hypoleuc
um Miq、)等のサリクトラム属の植物、クサント
リザ属の植物およびヒドラスチス属の植物を挙げられる
quinquefolia Miq, ) and trifolia 5alisb (c, trifolia 5alisb, ), etc.
ctrumminus L, var hypoleuc
um Miq, ), plants of the genus Salictorum, plants of the genus Xanthorrhiza, and plants of the genus Hydrastis.

本発明ではこれら植物の中では特にセリバオウレンを用
いることが好ましい。
In the present invention, among these plants, it is particularly preferable to use Seriba orensis.

本発明のキンポウゲ科植物の組織培養に用いられる液体
培地としては、従来から知られている植物の組織培養に
使用されている液体培地に2いて、特定濃度の銅イオン
を官有させたことを特徴とする液体培地が使用される。
The liquid medium used for the tissue culture of Ranunculaceae plants of the present invention is the same as the liquid medium used for conventionally known plant tissue culture, but is made by adding a specific concentration of copper ions. A characterized liquid medium is used.

すなわち、本発明の液体培地を調製するに当たっては銅
イオンの濃度を0.2μモル/1以上とすることが必要
であり、この中でも特に銅イオンの濃度を0.2μモル
/lないし50,0μモル/lの範囲に調整することが
本発・明の方法にとって好ましい。そして本発明の方法
においては、銅イオン濃度全0.2μモル/1以上に保
持する限り、該液体培地中の銅イオン以外の他の培地成
分を、必要に応じて、広い濃度範囲で変化させて使用す
ることができる。ここで、キンポウゲ科植物の組織培養
に当たっての銅イオンの効果につい7.66よ1.ヶゆ
つ、。つ6,7゜ニオ    )0.2μモル/1未満
にした場合には該組織培養によって得られる来会化の培
養細胞塊(以後、これをカルスということがあるンに@
まれるベルベリン等のインキノリン系アルカロイドの生
成量が減少し、また銅イオンの濃度を50.0μモル/
/1以上に高くしても該アルカロイドの生成量がわずか
に減少する。このことから液体培地中の銅イオンの#贋
を本発明の前記濃度範囲にすることが好ましい。
That is, when preparing the liquid culture medium of the present invention, it is necessary to set the concentration of copper ions to 0.2 μmol/l or more, and in particular, the concentration of copper ions must be set between 0.2 μmol/l and 50.0 μmol/l. It is preferable for the method of the present invention to adjust the amount to a range of mol/l. In the method of the present invention, as long as the total copper ion concentration is maintained at 0.2 μmol/1 or more, medium components other than copper ions in the liquid medium can be varied over a wide range of concentrations as necessary. can be used. Here, regarding the effects of copper ions on tissue culture of Ranunculaceae plants, 7.66 and 1. Kayutsu. When the concentration is less than 0.2 μmol/1, the cultured cell mass obtained by the tissue culture (hereinafter referred to as callus)
The production amount of inquinoline alkaloids such as berberine decreased, and the concentration of copper ions was reduced to 50.0 μmol/
Even if it is increased to /1 or more, the amount of the alkaloid produced is slightly reduced. From this, it is preferable that the concentration of copper ions in the liquid medium be within the above concentration range of the present invention.

本発明で使用される液体培地は、銅イオンを言む無機成
分および炭素源を必須成分とし、これに植物ホルモン類
、ビタミン類およびアミノ酸類から選けれる少なくとも
1種類以上の成分を添加した培地であり、更に必要に応
じてこれ以外の他の成分も併用使用することができる。
The liquid medium used in the present invention has an inorganic component such as copper ions and a carbon source as essential components, and a medium containing at least one component selected from plant hormones, vitamins, and amino acids. Furthermore, other components may be used in combination as necessary.

該液体培地の無機成分として(ハ、銅以外に窒素、リン
、カリウム、カルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、
マンガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、ナトリウ
ム、ヨウ素およびコバルト等の元素を含む無機塩を挙げ
ることができ、具体的には硝酸カリウム、硝酸ナトリウ
ム、硝酸アンモニウム、リン酸1カリウム、リン酸2ナ
トリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、硫酸マグネ
シウム、硫酸ナトリウム、硫酸第1鉄、硫酸第2鉄、硫
酸マンガン、硫酸銅、モリブデン酸ナトリウム、三酸化
モリブデン、ヨウ化カリウム、硫酸亜鉛、ホウ酸、塩化
コバルト等の化合物を例示できる。
Inorganic components of the liquid medium (c) In addition to copper, nitrogen, phosphorus, potassium, calcium, magnesium, sulfur, iron,
Mention may be made of inorganic salts containing elements such as manganese, zinc, boron, molybdenum, chlorine, sodium, iodine and cobalt, specifically potassium nitrate, sodium nitrate, ammonium nitrate, monopotassium phosphate, disodium phosphate, chloride. Compounds such as potassium, calcium chloride, magnesium sulfate, sodium sulfate, ferrous sulfate, ferric sulfate, manganese sulfate, copper sulfate, sodium molybdate, molybdenum trioxide, potassium iodide, zinc sulfate, boric acid, cobalt chloride, etc. can be exemplified.

該液体培地の炭素源としては、ショ糖等の炭水化物とそ
の誘導体、脂肪酸等のM機酸およびエタノール等の1級
アルコールなどを例示できる。
Examples of carbon sources for the liquid medium include carbohydrates such as sucrose and their derivatives, M organic acids such as fatty acids, and primary alcohols such as ethanol.

該液体培地の植物ホルモンとしでに、イントル酢酸(I
AA)、ナフタレン酢酸(NAA)、P−クロロフェノ
キシイソ酪酸および2.4−ジクロロフェノキシ酢酸(
2,4−D)等のオーキシン類およびカイネチン、ゼア
チンおよびベンジルアデニン等のサイトカイニン類を例
示できる。
The liquid medium also contains intoluacetic acid (I) as a plant hormone.
AA), naphthaleneacetic acid (NAA), P-chlorophenoxyisobutyric acid and 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (
Examples include auxins such as 2,4-D) and cytokinins such as kinetin, zeatin and benzyladenine.

該液体培地のビタミン類としては、ビオチン、チアミン
(ビタミンB1)、ピリドキシン(ビタミンB−)、ピ
リドキサール、ピリドキサミン、パントテン酸カルシウ
ム、アスコルビン酸(ビタミンC)、イノシトール、ニ
コチン酸、ニコチン酸アミドおよびリボフラビン(ビタ
ミンB。
The vitamins in the liquid medium include biotin, thiamine (vitamin B1), pyridoxine (vitamin B-), pyridoxal, pyridoxamine, calcium pantothenate, ascorbic acid (vitamin C), inositol, nicotinic acid, nicotinamide, and riboflavin ( Vitamin B.

)などを例示できる。), etc.

該液体培地のアミノ酸類としては、例えばグリシン、ア
ラニン、グルタミン酸、シスナインおよびリジンなどを
例示できる。
Examples of amino acids in the liquid medium include glycine, alanine, glutamic acid, cis9ine, and lysine.

本発明の前記液体培地は、通常は、前記無機成分を約0
.1μモル/lないし約100mモル/β程度、前記炭
素源を約’Ig/1.ないし約1oo&H程度、前記植
物ホルモン類を約0.01μモル/lないし約20μモ
ル/A程度および前記ビタミン類と前記アミノ酸類ヲそ
れぞれ約0.1嘘/bないし約150my/β程匿含ま
せて使用される。
The liquid medium of the present invention usually contains about 0 of the inorganic components.
.. About 1 μmol/l to about 100 mmol/β, the carbon source is about 'Ig/1. to about 1OO&H, the plant hormones about 0.01 μmol/l to about 20 μmol/A, and the vitamins and amino acids about 0.1 μmol/b to about 150 my/β, respectively. used.

本発明の方法においては、液体培地中の銅イオンを前記
濃度範囲に保持しながらかつ該培地中の前記他成分の濃
度を調整することにより、カルス中のベルベリン等のイ
ンキノリン系アルカロイドの生成量を更に増大させるこ
とが可能である。例えばマンガンイオンの濃度’rIU
Oμモル/l以下にすることによって該アルカロイは前
記液体培地を用いて組織培養される。この場合の組織培
養の方法について以下詳述する。
In the method of the present invention, the amount of inquinoline alkaloids such as berberine produced in callus is controlled by maintaining copper ions in the liquid medium within the above concentration range and adjusting the concentrations of the other components in the medium. It is possible to further increase the For example, the concentration of manganese ions 'rIU
By controlling the concentration to 0 μmol/l or less, the alkaloid can be cultured in tissue using the liquid medium. The tissue culture method in this case will be described in detail below.

先ずキンポウゲ科に属する植物の植物体、例えば、根、
生長点、葉、菫、果実、種子等から採取された組織片を
、例えば、新植物組織培養(朝食書店1979版)、2
1頁に記載されている寒天で固めた、リンスマイヤース
クーグの培地(RM−1965)上に置床して、10〜
35℃で7〜60日間程夏培養することによって該組織
片の一部をカルス化させる。このようにして得られるキ
ンポウゲ科植物のカルスを、通常知られている方法によ
って継代培養すると、カルスの生育速度が漸次高まる。
First, the plant body of a plant belonging to the Ranunculaceae family, for example, the roots,
Tissue pieces collected from growing points, leaves, violets, fruits, seeds, etc., are subjected to, for example, New Plant Tissue Culture (Breakfast Shoten 1979 Edition), 2
Place the plate on Rinsmeyer Skoog's medium (RM-1965) hardened with agar described on page 1,
A part of the tissue piece is formed into a callus by culturing at 35° C. for about 7 to 60 days. When the thus obtained callus of the Ranunculaceae plant is subcultured by a commonly known method, the growth rate of the callus gradually increases.

次にこのカルスを増殖に適した液体培地、例えば、新植
物組織培養(朝食書店1979年版)、21頁に記載さ
れているリンスマイヤースクーグの液体培地(以後これ
を液体培地Aと呼ぶことがある)に移して更に増殖させ
ると培養細胞の生育速度は更に高められ安定化した培養
細胞が得られる。
Next, this callus is grown in a liquid medium suitable for propagation, such as the Linsmeyer-Skoog liquid medium (hereinafter referred to as liquid medium A) described in New Plant Tissue Culture (Breakfast Shoten 1979 edition), page 21. When the cultured cells are transferred to a certain type of culture medium and further propagated, the growth rate of the cultured cells is further increased and stabilized cultured cells can be obtained.

本発明の方法では、このようにして得られる安定化した
培養細胞を本発明の前記液体培地(以後これを液体培地
Bと呼ぶことがある)に添加して更に培養が行われる。
In the method of the present invention, the thus obtained stabilized cultured cells are added to the liquid medium of the present invention (hereinafter sometimes referred to as liquid medium B) and further culture is performed.

本発明の方法において、前記の安定化した培養細胞を前
記液体培地B中で培養する際の該培養細胞の初期濃度と
しては、該濃度を広い範囲で変えることができるが、通
常は、本発明の前記液体培地Bの11に対して該培養細
胞を新鮮なときの重量で表示して約1ないし約200g
程度、好ましくは約10ないし約40g程度添加するの
が望ましい。
In the method of the present invention, when culturing the stabilized cultured cells in the liquid medium B, the initial concentration of the cultured cells can be varied within a wide range; About 1 to about 200 g of the cultured cells expressed as fresh weight for 11 of the liquid medium B of
It is desirable to add about 10 to about 40 g, preferably about 10 to about 40 g.

゛本発明の組織培養における培養温度としては、通常は
、約10ないし約35℃、この中でも特に約23ないし
約28℃が好適であり、該温度を約10℃未満にすると
培養細胞の増殖速度は小さく、また該温度を55℃以上
にしたときも同様に培養細胞の増殖速度は小さくなる。
゛The culture temperature in the tissue culture of the present invention is usually about 10 to about 35°C, particularly preferably about 23 to about 28°C, and when the temperature is less than about 10°C, the growth rate of the cultured cells increases. is small, and when the temperature is raised to 55°C or higher, the growth rate of cultured cells similarly becomes small.

本発明の組織培養を行うに当たっては、光は必ずしも必
要ではないが、光の照射はベルベリン等のアルカロイド
の生成を妨げない。
Although light is not necessarily necessary for performing the tissue culture of the present invention, irradiation with light does not interfere with the production of alkaloids such as berberine.

本発明の方法におい′ては、培養終了後に培養細胞をデ
カンテーションあるいは一過等の方法によって液体培地
Bから分離し、次に該培養細胞から目的とするベルベリ
ン等のイソキノリン系のアルカロイドを従来から知られ
ている天然品のオウレン、オウバク等に適用されている
抽出等の方法によって分離することができる。このよう
にして得られる該アルカロイドは必要に応じて更に再結
晶等の方法によって純度を高めることができる。
In the method of the present invention, after the culture is completed, the cultured cells are separated from the liquid medium B by a method such as decantation or passing, and then the target isoquinoline alkaloid such as berberine is extracted from the cultured cells in a conventional manner. It can be separated by a method such as extraction, which is applied to known natural products such as Oren and Oriental. The purity of the alkaloid thus obtained can be further increased by a method such as recrystallization, if necessary.

〔発明の効果〕〔Effect of the invention〕

本発明の方法は、液体培地を用いるのでタンク等を利用
した大量培養が可能であり、更に培養細胞の増殖が速や
かで、かつベルベリン等のアルカロイドを確実に大量生
産することができる工業上有利な方法である。
Since the method of the present invention uses a liquid medium, it is possible to perform mass culture using a tank or the like, and furthermore, the method of the present invention is industrially advantageous because the cultured cells can rapidly proliferate and alkaloids such as berberine can be reliably mass-produced. It's a method.

〔発明の実施例〕[Embodiments of the invention]

以下、本発明を実施例によって更に詳しく説明する。 Hereinafter, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples.

実施例1〜4 組織培養の培地成分が第1表に示す組成を有するリンス
マイヤー・スクーグの液体培地(前記した液体培地Aに
相当)を寒天で固めた固体培地(寒天1重11に、前も
って2%アンチホルミン溶液あるいは70%エタノール
溶液等で滅菌処理したセリバオウレン(Ooptis 
japonica Makinnvar、 disse
cta Nakai )の葉の一部を置床し、25°C
で暗所にて静置培養してセリバオウレンのカルスを得た
。次にCの七すバオウレンヵルスを、上記と同様の条件
で、リンスマイヤー・スクーグの液体培地(上記液体培
地A)で14日毎に植えつぎ、ロータリーシェーカー上
で旋回培養(振幅25mm、 1100rp )L、て
、セリバオウレンの培養細胞の生育速度を速め、安定化
したセリバオウレン培養細胞を得た。
Examples 1 to 4 A Linsmeyer-Skoog liquid medium (corresponding to the above-mentioned liquid medium A) whose tissue culture medium components have the composition shown in Table 1 was prepared using a solid medium solidified with agar (1 layer of agar 11) Ooptis sterilized with 2% antiformin solution or 70% ethanol solution, etc.
japonica Makinnvar, disse
cta Nakai) leaves were placed on a bed at 25°C.
A callus of Seriba aurifolia was obtained by static culture in a dark place. Next, under the same conditions as above, C. chinensis callus was planted every 14 days in a Linsmeyer-Skoog liquid medium (liquid medium A above), and cultured with rotation on a rotary shaker (amplitude 25 mm, 1100 rpm). As a result, the growth rate of the cultured cells of Seriba ouren was increased and stabilized cultured cells of Seriba ouren were obtained.

一方、これとは別に先の液体培地Aにおいて銅イオンの
濃度= 0.5μモル/β、1.Oμモル/#、5.0
μモル/βおよび1U、0μモル/6とそれぞれ変えた
以外は液体培地Aと同一成分組成の液体培地(部J6己
した不光明の液体培地Bに相当する)をそれぞれ4′種
類調製した。次にこの4種類の液体培地の20mA1、
それぞれ別個の内容41100 myのエルレンマイヤ
ーフラスコに取り、こitらを120℃で10分間保持
して滅耐処理ケ施したそれぞれの液体培地に、先添加し
て、25℃で1.4日間ロークリープニーカー上で旋回
培養(振幅25 mm、1tJOrpm)L40℃で1
夜風乾したのちその重量(乾燥型蓋)を測定し、液体培
地1当たりに換算した培       2μ等ケ用いて
抽出し、高速液体クロマトグラフィーを用いて、標準品
と比較定量することによって測定した。
On the other hand, separately from this, in the liquid medium A, the concentration of copper ions = 0.5 μmol/β, 1. Oμmol/#, 5.0
Four types of liquid media (corresponding to the opaque liquid medium B with part J6) having the same composition as liquid medium A except that μmol/β, 1 U, and 0 μmol/6 were respectively prepared were prepared. Next, 20mA1 of these four types of liquid media,
The contents of each sample were placed in a 41,100 ml Erlenmeyer flask, added to each liquid medium that had been sterilized by holding at 120°C for 10 minutes, and incubated at 25°C for 1.4 days. Incubate with rotation on a low creep kneeker (amplitude 25 mm, 1tJOrpm) at 40°C.
After air-drying at night, its weight (dry lid) was measured, extracted using 2μ of culture medium per liquid medium, and quantitatively determined by comparing with a standard product using high-performance liquid chromatography.

この結果を第2表に示した。The results are shown in Table 2.

比較例1 冥施例1〜3で使用した液体培地Bの培地成分において
、銅イオンの濃度全0,1モル/lとした以外は、実施
例1〜3と同様にして行つfC6表中記載の成分の残り
は水 表中Mはモル/lを示す 実施例5〜7 実施例1〜4のセリバオウレンをアキカラマツ(’I’
halictrum m1nus L、 ’Var、 
hypoleucumutg、)に代え、また該実施例
の液体培地Bの銅イオン濃度を0.1μモル/L0.5
モル/l。
Comparative Example 1 In the culture medium components of liquid medium B used in Examples 1 to 3, the total concentration of copper ions was set to 0.1 mol/l. The rest of the components listed are in the water surface. M indicates mol/l. Examples 5 to 7.
halictrum m1nus L, 'Var,
), and the copper ion concentration of liquid medium B of this example was 0.1 μmol/L0.5.
Mol/l.

1、Qμモル/lと代えた以外は該実施例と同様の方法
によって組織培養を行いアキカラマツ培養細胞と培養液
を含む培養混合物を得た。
1. Tissue culture was carried out in the same manner as in the example except that Qμmol/l was used to obtain a culture mixture containing cultured Japanese larch cells and a culture solution.

培養後のアキカラマツ培養細胞はp過により採取した。After culturing, the cultured Japanese larch cells were collected by p-filtration.

また、培養液にはベルベリンが一部培養細胞から放出さ
れて溶解しているが、このベルベリンは培養液をイオン
交換樹脂(AmberliteXAD−2)に通すこと
によって分離捕集した。
In addition, some berberine was released from the cultured cells and dissolved in the culture solution, but this berberine was separated and collected by passing the culture solution through an ion exchange resin (AmberliteXAD-2).

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] キンポウゲ科植物を液体培地を用いて組織培養するに当
って、該液体培地に含まれる銅イオンの濃度を0.2μ
モル/l以上とすることを特徴とするキンポウゲ科植物
の組織培養方法。
When tissue culturing Ranunculaceae plants using a liquid medium, the concentration of copper ions contained in the liquid medium is set to 0.2μ.
A method for culturing tissue of Ranunculaceae plants, characterized in that the concentration is mol/l or more.
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6317775A (en) * 1986-07-04 1988-01-25 Kiyounan Kogyo Kk Pick finding device for yarn end
JPH03206824A (en) * 1990-01-08 1991-09-10 Nippon F D Kk Production of glaucidium palmatum sieb. et zucc.
JPH0397464U (en) * 1990-09-14 1991-10-07
JP2002541139A (en) * 1999-04-05 2002-12-03 シティ・オブ・ホープ Novel inhibitors of late glycation end product (AGE) formation
JP2010227033A (en) * 2009-03-27 2010-10-14 Japan Health Science Foundation Method for producing plant transformant and plant transformant

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6317775A (en) * 1986-07-04 1988-01-25 Kiyounan Kogyo Kk Pick finding device for yarn end
JPH03206824A (en) * 1990-01-08 1991-09-10 Nippon F D Kk Production of glaucidium palmatum sieb. et zucc.
JPH0397464U (en) * 1990-09-14 1991-10-07
JP2002541139A (en) * 1999-04-05 2002-12-03 シティ・オブ・ホープ Novel inhibitors of late glycation end product (AGE) formation
JP2010227033A (en) * 2009-03-27 2010-10-14 Japan Health Science Foundation Method for producing plant transformant and plant transformant

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