JPS62262992A - 安定化されたnad(p)h−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素、その製法及びこれを含有する硝酸塩測定試薬 - Google Patents
安定化されたnad(p)h−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素、その製法及びこれを含有する硝酸塩測定試薬Info
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- JPS62262992A JPS62262992A JP62106496A JP10649687A JPS62262992A JP S62262992 A JPS62262992 A JP S62262992A JP 62106496 A JP62106496 A JP 62106496A JP 10649687 A JP10649687 A JP 10649687A JP S62262992 A JPS62262992 A JP S62262992A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
友業上の利用分野
本発明は、安定化されたNAD(P)H−依存性で可溶
性の同化型硝酸還元酵素その製法及びこれt含有る、硝
酸塩測定試薬に関る、。
性の同化型硝酸還元酵素その製法及びこれt含有る、硝
酸塩測定試薬に関る、。
従来の技術
硝酸塩の測定は、食品化学においては元素分析的課題に
属る、。食品中の硝酸塩−宮iを検査る、ために適用さ
れる多数の分析法が公知でおる(例えば1ハンドプーフ
・デル・レーベンスミツテルヒエミ−(Handbuc
h der Lebens−mittelchemie
) n / 2 ” (1967年)、スプリンガ−
(apringet )出版参照)。しかしながら全て
の公知分析法は極めて経費がかかシかつ煩雑な実施とい
う欠点を有る、。直接的実施法は屡々敏感で無く、かつ
ほとんど特異性が低い。従って実際には、ニトレートイ
オンを先ず還元し、引続き還元生成物音よυ高い特異性
を有る、方法により測定る、ように硝酸塩−測定上行な
う。硝酸塩の化学的測定に大事なことは、先ず還元剤で
亜硝酸塩に還元すべきことである。多数の常用の還元剤
のうち硝酸塩測定にはカドミウム−還元剤の使用だけが
奏効した。
属る、。食品中の硝酸塩−宮iを検査る、ために適用さ
れる多数の分析法が公知でおる(例えば1ハンドプーフ
・デル・レーベンスミツテルヒエミ−(Handbuc
h der Lebens−mittelchemie
) n / 2 ” (1967年)、スプリンガ−
(apringet )出版参照)。しかしながら全て
の公知分析法は極めて経費がかかシかつ煩雑な実施とい
う欠点を有る、。直接的実施法は屡々敏感で無く、かつ
ほとんど特異性が低い。従って実際には、ニトレートイ
オンを先ず還元し、引続き還元生成物音よυ高い特異性
を有る、方法により測定る、ように硝酸塩−測定上行な
う。硝酸塩の化学的測定に大事なことは、先ず還元剤で
亜硝酸塩に還元すべきことである。多数の常用の還元剤
のうち硝酸塩測定にはカドミウム−還元剤の使用だけが
奏効した。
しかしながらカドミウムの使用は極めて問題であると当
業者には考えられており、それというのもカドミウムは
少量ですでに毒性でありかつ又発ガン性であるからであ
る。
業者には考えられており、それというのもカドミウムは
少量ですでに毒性でありかつ又発ガン性であるからであ
る。
既に屡々カドミウム金他の還元剤によって代見る勢力が
なされた。しかしながらこハまで過当な他の還元剤は知
られていない。従って特異的な酵素的方法に大きな関心
がある。
なされた。しかしながらこハまで過当な他の還元剤は知
られていない。従って特異的な酵素的方法に大きな関心
がある。
硝酸塩を光度測定可能な反応で変換させる5稀の酵素が
公知である。
公知である。
硝酸還元#素(N1trat−Reduktase )
(E、C。
(E、C。
1.9.6.1 )はフェロチトクロムの存在で硝酸塩
を還元し、硝酸還元酵素(g、c、1.7.99.4
) u硝酸塩−変換のために還元された受容体−例えは
メチルビオロifン(Methylviologen
) t−心壁とる、;史に、硝酸塩t−NADH、NA
DPH及びNAD(P)Hの存在で還元る、もう3mの
酵素が公知である。
を還元し、硝酸還元酵素(g、c、1.7.99.4
) u硝酸塩−変換のために還元された受容体−例えは
メチルビオロifン(Methylviologen
) t−心壁とる、;史に、硝酸塩t−NADH、NA
DPH及びNAD(P)Hの存在で還元る、もう3mの
酵素が公知である。
これらの全ての酵素は文献に詳細に記載されている。約
200の文献に種々の動物性、他物性及び微生物性起源
からの製造、積装のためのl要性が記載される。更に、
硝酸塩変換酵素での硝酸塩−測定を提案している2つの
刊行物がある。
200の文献に種々の動物性、他物性及び微生物性起源
からの製造、積装のためのl要性が記載される。更に、
硝酸塩変換酵素での硝酸塩−測定を提案している2つの
刊行物がある。
アナリテイカル・ケミストリイ(Anal。
Chem、 ) 50巻、1319(1978年)には
硝酸還元酵素を用いる硝酸塩−還元が述べられている;
勿論生成した亜硝酸塩は亜硝酸−還元酵素(N:1tr
it−Reduktase )の使用によりt気化学的
に測定される。
硝酸還元酵素を用いる硝酸塩−還元が述べられている;
勿論生成した亜硝酸塩は亜硝酸−還元酵素(N:1tr
it−Reduktase )の使用によりt気化学的
に測定される。
アグリカルチユラル・アンド・ビオロジカル・ケミスト
リイ(Agr、 Biol、 Chem、 ) 47巻
、2427(1983年)でハマノ(Hamano )
等は、肉−及び魚製品中の硝酸塩−測定のために硝酸−
還元酵素(1,7,99,4) k使用し、この際生成
した亜硝酸塩は光分に特異的なジアゾ化−反応で測定さ
れる。
リイ(Agr、 Biol、 Chem、 ) 47巻
、2427(1983年)でハマノ(Hamano )
等は、肉−及び魚製品中の硝酸塩−測定のために硝酸−
還元酵素(1,7,99,4) k使用し、この際生成
した亜硝酸塩は光分に特異的なジアゾ化−反応で測定さ
れる。
NADH%NADPH又はNAD(P)Hの存在で硝酸
塩を還元る、ことができる酵素を硝酸塩測定のために使
用る、ことは従来成功していない。その理由は酵素の大
きな不安定性にあり、この場合特にi!1記の補酵素に
依り硝酸塩r還元る、ための酵素の特性は、この酵素が
他の、直接的でなく測定可能な還元剤を依然として利用
し得るとしても、極めて不安定でちゃ、通例は数時間以
内ですでに失なわれていく。しかし特に困難な点は、こ
の酵素が亜硝酸−還元酵素−活性も有し、これが生成し
友亜硝酸塩を更に還元させ、従って生成した亜硝酸塩の
測定に依る終点測定ができないことにある。既にZ、
Pflanzenphy−sjol 、 BD 66巻
290〜293頁(1972年)に、ホウレンソウの葉
からの硝酸−還元酵素を用いる硝酸塩測定が記載されて
おり、この場合酸化されたNADH又は生成した亜硝酸
塩が測定可能であるはすだが、亜硝酸の測定が推奨され
、NADのそれは推奨されない。しかじなからこの方法
の追試は使用可能な結果を生じなかった。
塩を還元る、ことができる酵素を硝酸塩測定のために使
用る、ことは従来成功していない。その理由は酵素の大
きな不安定性にあり、この場合特にi!1記の補酵素に
依り硝酸塩r還元る、ための酵素の特性は、この酵素が
他の、直接的でなく測定可能な還元剤を依然として利用
し得るとしても、極めて不安定でちゃ、通例は数時間以
内ですでに失なわれていく。しかし特に困難な点は、こ
の酵素が亜硝酸−還元酵素−活性も有し、これが生成し
友亜硝酸塩を更に還元させ、従って生成した亜硝酸塩の
測定に依る終点測定ができないことにある。既にZ、
Pflanzenphy−sjol 、 BD 66巻
290〜293頁(1972年)に、ホウレンソウの葉
からの硝酸−還元酵素を用いる硝酸塩測定が記載されて
おり、この場合酸化されたNADH又は生成した亜硝酸
塩が測定可能であるはすだが、亜硝酸の測定が推奨され
、NADのそれは推奨されない。しかじなからこの方法
の追試は使用可能な結果を生じなかった。
発明が解決しようとる、問題点
従って本発明の課題は、従来記載された方法の欠点及び
困難な点を回避し、かつ硝酸−還元酵素によって還元さ
れる硝酸塩の尺度としてのNAD(P)HからNAD(
P)への変換の直接的測定がさ 短時間以内で隔い正Cで行なうことができる硝酸塩測定
法を得ることであった。史にもう1つの課題はこの方法
のための適当な酵素及び試薬を得ることであった。
困難な点を回避し、かつ硝酸−還元酵素によって還元さ
れる硝酸塩の尺度としてのNAD(P)HからNAD(
P)への変換の直接的測定がさ 短時間以内で隔い正Cで行なうことができる硝酸塩測定
法を得ることであった。史にもう1つの課題はこの方法
のための適当な酵素及び試薬を得ることであった。
問題点全解決る、ための手段
この問題の解決は、本発明に依9安定化されたNAD(
P)H−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素の使用に
依り成功し、この酵素は、ドデシの ル硫酸ナトリウムの存在fft気泳動の際の約9000
0Dの分子量及び35°Cで3週間後の60係よシ多い
残余活性全特徴とし、がっ、これは、トリス−酒石酸緩
衝液pH7〜8.5中の細砕化出発物質の懸濁液を製造
し、これに硝酸−還元酵素活性の10〜20%が生成沈
殿に移行る、よりなIoで可溶性のポリエチレンイミン
を添加し、沈殿を分離しかつ上澄液を常用の生化学的分
別法の後に前記の崩壊緩衝液(Aufschluβpu
ffers )中で後処理し、得られる酵素溶液を透析
しかつ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥る、ことによって
得られる。
P)H−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素の使用に
依り成功し、この酵素は、ドデシの ル硫酸ナトリウムの存在fft気泳動の際の約9000
0Dの分子量及び35°Cで3週間後の60係よシ多い
残余活性全特徴とし、がっ、これは、トリス−酒石酸緩
衝液pH7〜8.5中の細砕化出発物質の懸濁液を製造
し、これに硝酸−還元酵素活性の10〜20%が生成沈
殿に移行る、よりなIoで可溶性のポリエチレンイミン
を添加し、沈殿を分離しかつ上澄液を常用の生化学的分
別法の後に前記の崩壊緩衝液(Aufschluβpu
ffers )中で後処理し、得られる酵素溶液を透析
しかつ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥る、ことによって
得られる。
本発明によシ使用される酵素E、C,1,6,6,2は
補酵素としてのNAD(P)Hでその還元酵素−活性の
5A際に改良された安定性を有し、かつ適当な緩衝液の
存在で凍結乾燥状態はかりでなく水溶液に再構成された
状態でも、障害性の亜硝酸−還元酵素作用が生じること
なく、硝酸塩測定に使用る、ことができる。
補酵素としてのNAD(P)Hでその還元酵素−活性の
5A際に改良された安定性を有し、かつ適当な緩衝液の
存在で凍結乾燥状態はかりでなく水溶液に再構成された
状態でも、障害性の亜硝酸−還元酵素作用が生じること
なく、硝酸塩測定に使用る、ことができる。
生物原料からの本発明による安定化されたNAD(P)
H−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素製剤の製造は
、細砕、中性〜弱アルカリ性媒体中の崩壊及び錯化剤及
びメルカプタンの存在での分別により行なわれ、これは
、トリス−酒石酸緩衝液(−7〜8.5)中の細砕出発
物質の懸濁液を製造し、これに硝酸−還元酵素活性の1
0〜20%が生成る、沈殿に移行る、ような倉で可俗性
の〆リエチレンイミンを添加し、沈殿を分離しかつ上演
液を常用の生化学的分別法の後に前記の分解緩衝液中で
後処理し、得られる#素浴液を透析しかつ両性イオン緩
衝液中で凍結乾燥る、ことよりなる。
H−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素製剤の製造は
、細砕、中性〜弱アルカリ性媒体中の崩壊及び錯化剤及
びメルカプタンの存在での分別により行なわれ、これは
、トリス−酒石酸緩衝液(−7〜8.5)中の細砕出発
物質の懸濁液を製造し、これに硝酸−還元酵素活性の1
0〜20%が生成る、沈殿に移行る、ような倉で可俗性
の〆リエチレンイミンを添加し、沈殿を分離しかつ上演
液を常用の生化学的分別法の後に前記の分解緩衝液中で
後処理し、得られる#素浴液を透析しかつ両性イオン緩
衝液中で凍結乾燥る、ことよりなる。
所望の特性を得るためには、特殊な緩衝液の使用、俗解
相での酵素の定量的保留を生じさせない条件下での?リ
エチレンイミン分別、並びに得られる、富化された、安
定化酵素の両性イオンM!債液中での凍結乾燥がl要で
ある。
相での酵素の定量的保留を生じさせない条件下での?リ
エチレンイミン分別、並びに得られる、富化された、安
定化酵素の両性イオンM!債液中での凍結乾燥がl要で
ある。
トリス−噛石酸會基礎とる、崩壊緩衝液は一1直7〜8
.5及び有利な濃度10〜100 ミIJモル/を含有
る、。p)i(m7.2〜8.0 ′t−有る、60〜
70ミリモルのトリス−酒石酸緩衝液准を有利に使用る
、。出発物質として、NAD(P)H−依存性の同化型
硝酸−還元酵素を含有る、自体公知の生物原料上使用る
、。糸状薗、特にクロカビ(Aspergillus
Niger )から有利に出発る、。
.5及び有利な濃度10〜100 ミIJモル/を含有
る、。p)i(m7.2〜8.0 ′t−有る、60〜
70ミリモルのトリス−酒石酸緩衝液准を有利に使用る
、。出発物質として、NAD(P)H−依存性の同化型
硝酸−還元酵素を含有る、自体公知の生物原料上使用る
、。糸状薗、特にクロカビ(Aspergillus
Niger )から有利に出発る、。
アスペルギルス・sp (Aspergillus s
p、 DSM1729)又はアスペルギルス・ニドウラ
ンス(Aspergjllu6 N1dulans #
DSM 63358 )は出発vlJIxとして特に
有利である。
p、 DSM1729)又はアスペルギルス・ニドウラ
ンス(Aspergjllu6 N1dulans #
DSM 63358 )は出発vlJIxとして特に
有利である。
使用る、緩衝液にプロテアーゼ阻害剤を殊に添加し、こ
の場合当業者に公知のプロテアーゼ阻害剤を使用る、こ
とができる。プロテアーゼ阻害剤としてベンズアミジン
又は/及びPMSF七有利に使用る、。史に緩衝液に殊
に糖又は糖アルコールを添加し、この場合la度は20
%(G/V)までであって良い。糖として蔗糖及び糖ア
ルコールとしてグリセリンを有利に使用る、が、他の抛
、例えはマンノース等、又は糖アルコール、例えはへキ
シット、ペンチット等全使用る、こともできる。
の場合当業者に公知のプロテアーゼ阻害剤を使用る、こ
とができる。プロテアーゼ阻害剤としてベンズアミジン
又は/及びPMSF七有利に使用る、。史に緩衝液に殊
に糖又は糖アルコールを添加し、この場合la度は20
%(G/V)までであって良い。糖として蔗糖及び糖ア
ルコールとしてグリセリンを有利に使用る、が、他の抛
、例えはマンノース等、又は糖アルコール、例えはへキ
シット、ペンチット等全使用る、こともできる。
酵素の精製の場合には、常法で錯化剤、例えはEDTA
及びメルカプタン、例えはグルタチオン又はメルカプト
エタノールの存在で作条る、。
及びメルカプタン、例えはグルタチオン又はメルカプト
エタノールの存在で作条る、。
FAD (D添加も有利であると実証された。
常用の生化学的分別法、例えは%Fpmアンモニウムー
分別法、又換体−クロマトグラフイー又は/及び分子−
一分別法による補装のためにこれ自体勿任意の1沃で使
用る、ことがでさる・しかしこの場合、常に前記のよう
な崩謙緩憤赦の存在で作条る、ことが2に要である。殊
に、なお少tの硝酸還元酵素活性が浴叡中に残貿る、、
すなわち全ての酵素活性が9.撲体に粘合式れないよう
な倉の、弱アルカリ性の陰イオン又換体?!−ポリエチ
レンイオン沈殿の上澄液に添加し、次いで交換体をイオ
ン濃度の上昇により俗離る、。過当な弱アルカリ性の陰
イオン交換体は例えば適当な支持材料、例えはアガロー
ス、セルロース等に結合された、ジエチルアミノエタノ
ール−、i!に有る、ものである。
分別法、又換体−クロマトグラフイー又は/及び分子−
一分別法による補装のためにこれ自体勿任意の1沃で使
用る、ことがでさる・しかしこの場合、常に前記のよう
な崩謙緩憤赦の存在で作条る、ことが2に要である。殊
に、なお少tの硝酸還元酵素活性が浴叡中に残貿る、、
すなわち全ての酵素活性が9.撲体に粘合式れないよう
な倉の、弱アルカリ性の陰イオン又換体?!−ポリエチ
レンイオン沈殿の上澄液に添加し、次いで交換体をイオ
ン濃度の上昇により俗離る、。過当な弱アルカリ性の陰
イオン交換体は例えば適当な支持材料、例えはアガロー
ス、セルロース等に結合された、ジエチルアミノエタノ
ール−、i!に有る、ものである。
クロマトグラフィーによる富化のために特に芳香族で置
換された、網状化アガロースが適当であると実証され、
従って本発明の範囲ではこの極の富化段階が有利である
。フェニルセファロースを介る、積装が特に有利でおる
。
換された、網状化アガロースが適当であると実証され、
従って本発明の範囲ではこの極の富化段階が有利である
。フェニルセファロースを介る、積装が特に有利でおる
。
更に不純物の除去のためには、陰イオン交換体処理又は
/及びクロマトグラフィーの前又は後に酵素に+#L酸
アンモニウムの絡加により沈殿させ、次いでそれ以降の
処理のため沈殿を再び崩墓緩@液に俗解る、ことが有利
である。
/及びクロマトグラフィーの前又は後に酵素に+#L酸
アンモニウムの絡加により沈殿させ、次いでそれ以降の
処理のため沈殿を再び崩墓緩@液に俗解る、ことが有利
である。
本発明による#累の収得のために使用る、ことができる
他の富化段階は、チトクロム含有アガロースデルでの例
えはアフイニテイクロマトグラフイであり、例えは馬の
心;減からのチトクロムCtセファロースCL6BR1
色配位子、例えはブルー−セファロース又はFAD−セ
ファロースに結合した。しかしながらフェニルセファロ
ースでの精製が特に有利である。
他の富化段階は、チトクロム含有アガロースデルでの例
えはアフイニテイクロマトグラフイであり、例えは馬の
心;減からのチトクロムCtセファロースCL6BR1
色配位子、例えはブルー−セファロース又はFAD−セ
ファロースに結合した。しかしながらフェニルセファロ
ースでの精製が特に有利である。
本発明の方法に有利に使用る、糸状菌からの酵素は目お
状態で約200000の分子輩を有し、FAD及びモリ
ブデンを有し、かつ硝酸塩に対る、KM約3.2 X
10−’ M’に有る、。分子賃の測定はrル濾過によ
シ行なわれる。
状態で約200000の分子輩を有し、FAD及びモリ
ブデンを有し、かつ硝酸塩に対る、KM約3.2 X
10−’ M’に有る、。分子賃の測定はrル濾過によ
シ行なわれる。
両性イオン緩@液としては本発明の範囲ではC)OOD
−緩衝液が有利である。GOOD−緩衝液としては再び
HIljPES−緩衝液が特に有利である。
−緩衝液が有利である。GOOD−緩衝液としては再び
HIljPES−緩衝液が特に有利である。
凍結乾燥の実施のために酵素を1例えは(iilC酸ア
ンモニウム添加により沈殿させ、次いで両性イオン緩衝
液に入れるか、又は崩壊緩衝徹中の酵素の爵液を両性イ
オン緩衝液に対して透析る、。
ンモニウム添加により沈殿させ、次いで両性イオン緩衝
液に入れるか、又は崩壊緩衝徹中の酵素の爵液を両性イ
オン緩衝液に対して透析る、。
両性イオン緩@液は有利に0.01〜0.2モルの纜度
で、特に有利に0.02〜0.1七ル濃度で使用る、。
で、特に有利に0.02〜0.1七ル濃度で使用る、。
′これは有利に少l°の錯化剤、例えばgDTA O−
1”’−50mM s少量のFAD 、特に1〜60μ
M及び有利に0.5〜1QmMの濃度のスル7ヒドリル
ー化合物會含有し、かつ適当な塩基、例えは苛性ソーダ
溶液で一値6.5〜9、殊に7〜8に調整る、。
1”’−50mM s少量のFAD 、特に1〜60μ
M及び有利に0.5〜1QmMの濃度のスル7ヒドリル
ー化合物會含有し、かつ適当な塩基、例えは苛性ソーダ
溶液で一値6.5〜9、殊に7〜8に調整る、。
本発明による酵素は一最適値約7.5を有し、基質特異
性は硝酸塩に対して100係、亜硝酸塩に対して0.1
2%、NAD/P/Hに対して100係及びNADHに
対して13%である。
性は硝酸塩に対して100係、亜硝酸塩に対して0.1
2%、NAD/P/Hに対して100係及びNADHに
対して13%である。
阻害剤は10−’M以上における亜硝酸塩(生&物阻吾
)、Mn”、Fe”、Cu”、Fe”(EDTAの不在
で)、CN−及びアジドである。
)、Mn”、Fe”、Cu”、Fe”(EDTAの不在
で)、CN−及びアジドである。
硝酸塩測定のために使用る、ために、凍結乾燥状態で存
在しかつ例えは評しく ii+配し′fcような両性イ
オン緩衝液を含有る、本発明による硝酸−還元酵素t%
−値6.5〜9七Mる、窒素複素環緩備敵中に浴解し、
従って再構成状態では両社イオン緩衝液並びに窒素複素
環緩衝g、勿含有る、。
在しかつ例えは評しく ii+配し′fcような両性イ
オン緩衝液を含有る、本発明による硝酸−還元酵素t%
−値6.5〜9七Mる、窒素複素環緩備敵中に浴解し、
従って再構成状態では両社イオン緩衝液並びに窒素複素
環緩衝g、勿含有る、。
従って俗解形の本発明による硝酸塩測定用試薬は、前に
定義したような硝酸−還元酵素、NAD(P)H、両性
イオン緩衝液−7〜9及び窒素複素環縫Y# ’Q p
H6,5〜9の含量を特徴とる、。
定義したような硝酸−還元酵素、NAD(P)H、両性
イオン緩衝液−7〜9及び窒素複素環縫Y# ’Q p
H6,5〜9の含量を特徴とる、。
硝酸塩測定の実施のために、単に再構成された試薬を硝
酸塩富有の試料に添加し、NAD(P)Hの酸化全還元
された補酵素の減少又は酸化された補酵素の増加の測定
によシ測定る、。窒累複素塊緩衝液としては、イミ、ダ
ゾール緩衝液、ぎラゾール緩衝液又はピリジン緩mmが
有利であシ、この場合イミダゾール緩衝液が特に有利で
ある。
酸塩富有の試料に添加し、NAD(P)Hの酸化全還元
された補酵素の減少又は酸化された補酵素の増加の測定
によシ測定る、。窒累複素塊緩衝液としては、イミ、ダ
ゾール緩衝液、ぎラゾール緩衝液又はピリジン緩mmが
有利であシ、この場合イミダゾール緩衝液が特に有利で
ある。
有利なPHfl!Lは7.0〜7.8であり、かつ再構
成浴性試桑中の有利な緩衝液製置は20〜50ミリモル
/lである。
成浴性試桑中の有利な緩衝液製置は20〜50ミリモル
/lである。
本発明による試薬はその他の成分として殊にスーパーオ
キシドジスムターゼ(SOD ) を有利に10〜10
00単位/溶解試薬継の童で含有る、。丈に殊に崩墓緩
爾准のために前記した若干の又は全てのti加物をそこ
に記載した甘で含有る、。
キシドジスムターゼ(SOD ) を有利に10〜10
00単位/溶解試薬継の童で含有る、。丈に殊に崩墓緩
爾准のために前記した若干の又は全てのti加物をそこ
に記載した甘で含有る、。
実施例
本発明を次の実施例につき詳説る、二
側 1
A)崩壊
アスペルギルスsp、 DSM 1729の濾別した生
@貨(Bj、omass ) 9 kg k、EDTA
5 mM 、 FA−D5μM1 メルカプトエタノ
ール2mMt−含有る、0、05 M )リス/酒石酸
緩衝准(pH7.5 )よシなる氷冷緩衝液50を中に
入れる。懸濁液を均質化し、高圧分散(600バール)
に依り崩壊る、。崩壊生物量に、グリセリン10%、R
vlSF10μ&/液体を及びベンズアミシン15μg
/液体tに添加し、−値t−1Mトリスー塩基で7.5
に調整る、。
@貨(Bj、omass ) 9 kg k、EDTA
5 mM 、 FA−D5μM1 メルカプトエタノ
ール2mMt−含有る、0、05 M )リス/酒石酸
緩衝准(pH7.5 )よシなる氷冷緩衝液50を中に
入れる。懸濁液を均質化し、高圧分散(600バール)
に依り崩壊る、。崩壊生物量に、グリセリン10%、R
vlSF10μ&/液体を及びベンズアミシン15μg
/液体tに添加し、−値t−1Mトリスー塩基で7.5
に調整る、。
容ftニア0t
SU活性: 75 KU
SA約0.120/〜
B)ボリミンーp−分離
A工程からの液体に、撹拌下で予備試験(1%のボリミ
ンP−醗&p87.0そのっど4%、6係、8係、10
%を用いて〕後に、活性の85係が上澄液中に残留る、
ような量のボリミンPを加える。15分間の攪拌後に沈
殿を捨て、濾液に液体1を当りPMSF 7 m9及び
ベンズアミジン15rn9’を加、tル。
ンP−醗&p87.0そのっど4%、6係、8係、10
%を用いて〕後に、活性の85係が上澄液中に残留る、
ような量のボリミンPを加える。15分間の攪拌後に沈
殿を捨て、濾液に液体1を当りPMSF 7 m9及び
ベンズアミジン15rn9’を加、tル。
容itニア0t
SU活性: 70 KU
C) DEAE−セファデックス−パッチB工程の濾
液に予備試験(2%、3%、4%)後に、活性の10%
以上が上澄液中に残留る、ような量のDEAE−セファ
デックスを混入攪拌る、。父換体t−a別し、gD’r
A 5 mM %FAD 574M及びメルカプトエタ
ノール2mM+含有fるトリス/酒石酸−緩衝液(pH
7.5)3tで洗浄る、。俗離は洗浄緩衝液にNaCL
Q、5 Mの添加によシ行なう(合計3X3tで)。
液に予備試験(2%、3%、4%)後に、活性の10%
以上が上澄液中に残留る、ような量のDEAE−セファ
デックスを混入攪拌る、。父換体t−a別し、gD’r
A 5 mM %FAD 574M及びメルカプトエタ
ノール2mM+含有fるトリス/酒石酸−緩衝液(pH
7.5)3tで洗浄る、。俗離は洗浄緩衝液にNaCL
Q、5 Mの添加によシ行なう(合計3X3tで)。
溶離物を一緒にし、1を当りPMSF 7119及びベ
ンズアミジン151n9’?加えかつ冷却放置る、。
ンズアミジン151n9’?加えかつ冷却放置る、。
容量:約91 8U活性: 35 KUD) ftL
酸アンモニウム−沈殿 り工程の溶離物に予備試験後(2,0M、 2.2M、
2.4M)に固体の硫酸アンモニウム全1活性の5%以
下が上澄液に残留る、まで加える。
酸アンモニウム−沈殿 り工程の溶離物に予備試験後(2,0M、 2.2M、
2.4M)に固体の硫酸アンモニウム全1活性の5%以
下が上澄液に残留る、まで加える。
沈殿を遠心分離し、澄明(blan’k )な上澄液を
捨てる。
捨てる。
E)フェニルセファロース−クロマトグラフィD工程の
As−沈殿に、EDTA 5 mM 、 FAD 5M
M、メルカプトエタノール2mM、グリセリン10%v
/v及び硫酸アンモニウムIMt−含有る、トリス/酒
石酸緩衝液(0,05M ) (p87.5)1t′に
入れ、1を当、り PMSF 7Ing及びベンズアミ
ジン15M9t−加え、場合による濁りを遠心分離で除
去る、。
As−沈殿に、EDTA 5 mM 、 FAD 5M
M、メルカプトエタノール2mM、グリセリン10%v
/v及び硫酸アンモニウムIMt−含有る、トリス/酒
石酸緩衝液(0,05M ) (p87.5)1t′に
入れ、1を当、り PMSF 7Ing及びベンズアミ
ジン15M9t−加え、場合による濁りを遠心分離で除
去る、。
容量:1.4t
SU活性: 45 KU
SA1.7U/IIIg
酵素浴液上フェニルセファロースーカラム2を上で展開
させる( EDTA 5 mM %FAD AM 、メ
ルカプトエタノール2mM、グリセリン10%(v/v
)及び硫酸アンモニウム1冨t−含有し、トリス/酒
石酸緩衝液(p87.5 ) 0.05 Mで平衡させ
たカラム10X28cIn)。洗浄を前記の緩衝液3t
で行なう。
させる( EDTA 5 mM %FAD AM 、メ
ルカプトエタノール2mM、グリセリン10%(v/v
)及び硫酸アンモニウム1冨t−含有し、トリス/酒
石酸緩衝液(p87.5 ) 0.05 Mで平衡させ
たカラム10X28cIn)。洗浄を前記の緩衝液3t
で行なう。
次のものよりなる勾配溶液:
A:洗浄緩衝液と同様であるが、硫酸アンモニウム0.
5 M k含有る、緩衝液21゜B:洗浄緩衝液と同様
であるが、&tLrHアンモニウム5 mM ’に含有
る、緩衝液21゜で俗離させる。
5 M k含有る、緩衝液21゜B:洗浄緩衝液と同様
であるが、&tLrHアンモニウム5 mM ’に含有
る、緩衝液21゜で俗離させる。
5U/αよりも大きい活性を有る、溶離物を一緒にし、
1を当りPMSF 71Kl及びベンズアミジン15■
を混合る、。
1を当りPMSF 71Kl及びベンズアミジン15■
を混合る、。
容量: 2.51
SU活!:: 36 KU
SA4U/■
F)硫酸アンモニウム−濃縮及び透析
E工程からの浴陥物を固体の硫酸アンモニウムで2.4
M 1で沈殿させ、遠心分離し、澄明な上澄液を捨て
る。沈殿を、EDTA 5 mM%FAD 5MM1
メルカプトエタノール2mM及びグリセリン10%を含
有る、トリス/酒石酸緩衝液(PH1,5) 0.05
M (25ON)中に入れ、1を当りPMBF 71
n9及びベンズアミジン15■を混合る、。
M 1で沈殿させ、遠心分離し、澄明な上澄液を捨て
る。沈殿を、EDTA 5 mM%FAD 5MM1
メルカプトエタノール2mM及びグリセリン10%を含
有る、トリス/酒石酸緩衝液(PH1,5) 0.05
M (25ON)中に入れ、1を当りPMBF 71
n9及びベンズアミジン15■を混合る、。
G)透析
F工程からの溶液を、gDTA 5 mM 、 FAD
5MM1 メルカプトエタノール2 mM k含有る
、0、05 M HEPE8緩衝液pH7,5(I
N NaOHでV@整る、)5X5Lに対して透析る
、。
5MM1 メルカプトエタノール2 mM k含有る
、0、05 M HEPE8緩衝液pH7,5(I
N NaOHでV@整る、)5X5Lに対して透析る
、。
透析物を透析緩@液で60U/ruに希釈し、FAD
95 IM及びG8H2mM f加え、酵素maiII
Lt轟クフィコル8り1ng’に混合る、。IM)リス
−塩基で一値を7.5に調整し、諸過して細菌を少なく
し、凍結乾燥る、。
95 IM及びG8H2mM f加え、酵素maiII
Lt轟クフィコル8り1ng’に混合る、。IM)リス
−塩基で一値を7.5に調整し、諸過して細菌を少なく
し、凍結乾燥る、。
収ia−:i結乾燥物約50g
5U活!:25KU−出発の30%
(蛋白’J[1,9)
活性:0.5U/凍結乾燥物呼
比活性:10U/蛋白質〜
異質活性: NADPH−酸化酵素0.7%NADPH
−依存性ADH0,8係 亜硝酸還元酵素0.2% 貯*ニー20°C 例 2 硝酸塩測定 試験条件: 波長: (Hg) 335 nm、 (Hg) 33
4 nm。
−依存性ADH0,8係 亜硝酸還元酵素0.2% 貯*ニー20°C 例 2 硝酸塩測定 試験条件: 波長: (Hg) 335 nm、 (Hg) 33
4 nm。
339 nm ;層厚1 cm ;試験f2.75d;
濾度:20〜25°C;空気に対して測定。
濾度:20〜25°C;空気に対して測定。
測定:
混合;約6分間室温で放置;Elの測定試料及びブラン
ク値の吸光度差(El −E2 )を計算る、。
ク値の吸光度差(El −E2 )を計算る、。
ΔE(硝酸塩) = (EI E2 ) (E
x試料 −E2)ブランク値 計算 硝酸塩について: C−試料溶液中の硝酸塩のI!kW<9/1)V−試験
1t(m)(この場合:2.75Iu)MG−分子f(
この場合−硝酸塩−62,000F1モル) ΔE−吸光度、前記参照 を−次における吸光係数: 6ろ4 ” (T(g)−6−181X mm0
l−1K而−1339rlm = 6−3 1
X mmol−1XcIrL−1335nm (Hg)
−3,51X mmol−1XcIn−”d−キュベ
ツトの層厚(この場合: 1 an )V−試料容!(
この場合: 0.05N)〔硝酸塩y/試料#叡t〕 例 6 硝酸塩測定 試験条件: 波長: (Hg) 335 nm −(Hg) 334
nm s 339nm;層厚1 an ;試験量2.
77財:温度:20〜25°C;空気に対して測定。
x試料 −E2)ブランク値 計算 硝酸塩について: C−試料溶液中の硝酸塩のI!kW<9/1)V−試験
1t(m)(この場合:2.75Iu)MG−分子f(
この場合−硝酸塩−62,000F1モル) ΔE−吸光度、前記参照 を−次における吸光係数: 6ろ4 ” (T(g)−6−181X mm0
l−1K而−1339rlm = 6−3 1
X mmol−1XcIrL−1335nm (Hg)
−3,51X mmol−1XcIn−”d−キュベ
ツトの層厚(この場合: 1 an )V−試料容!(
この場合: 0.05N)〔硝酸塩y/試料#叡t〕 例 6 硝酸塩測定 試験条件: 波長: (Hg) 335 nm −(Hg) 334
nm s 339nm;層厚1 an ;試験量2.
77財:温度:20〜25°C;空気に対して測定。
測定
混合;約6分間室温で放置;Elの測定。
混合;約30〜40分間室温で放置;E2測定。
試料及びブランク値の吸光反差(EIE2)を計算る、
。
。
7E(硝酸塩どけI E2)試料−(BIB2)ブラン
ク値計算 硝酸塩について: C−試料#4液中の硝酸塩の製置(11/l )V−試
験量(M)(この場合: 2.77紅)MG−分子量(
この場合:硝は塩−62,00、@1モル) ΔE−吸光度差、前記参照 1−次におけるNADPHの吸光係数:334 nm
(Hg) = 6−18 1 x mmol−1X3−
↓339 nm = 6.3 1X mmol−
IXcrIL″″1335 nm (Hg) −3−5
1X mmol−”X3−1d−キュベツトの層厚(こ
の場合: 1 an )■=試料容1(この場合: 0
.05成)2.77 x 62.00 x 1g
3.435〔硝酸塩g/試料溶液t〕
ク値計算 硝酸塩について: C−試料#4液中の硝酸塩の製置(11/l )V−試
験量(M)(この場合: 2.77紅)MG−分子量(
この場合:硝は塩−62,00、@1モル) ΔE−吸光度差、前記参照 1−次におけるNADPHの吸光係数:334 nm
(Hg) = 6−18 1 x mmol−1X3−
↓339 nm = 6.3 1X mmol−
IXcrIL″″1335 nm (Hg) −3−5
1X mmol−”X3−1d−キュベツトの層厚(こ
の場合: 1 an )■=試料容1(この場合: 0
.05成)2.77 x 62.00 x 1g
3.435〔硝酸塩g/試料溶液t〕
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、トリス−酒石酸緩衝液(pH7〜8.5)中の細砕
した出発物質の懸濁液を製造し、これに可溶性のポリエ
チレンイミンを、硝酸還元酵素活性の10〜20%が生
成する沈殿に移行するような量で添加し、この沈殿を分
離し、かつ上澄液を常用の生化学的分別法の後に前記の
崩壊緩衝液中で後処理し、得られる酵素溶液を透析し、
かつ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥させることにより得
られ、ドデシル硫酸ナトリウムの存在での電気泳動で約
90000Dの分子量及び35℃で3週間後に60%よ
りも多い残余活性を特徴とする安定化されたNAD(P
)H−依存性で、可溶性の同化型硝酸還元酵素。 2、ドデシル硫酸ナトリウムの存在での電気泳動で約9
0000Dの分子量及び35℃で3週間後に60%より
も多い残余活性を有する安定化されたNAD(P)H−
依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素を、生物原料から
、細砕、中性〜弱アルカリ性媒体中での崩壊及び錯化剤
及びメルカプタンの存在での分別により製造するために
、トリス−酒石酸緩衝液(pH7〜8.5)中の細砕し
た出発物質の懸濁液を製造し、これに可溶性のポリエチ
レンイミンを、硝酸還元酵素活性の10〜20%が生成
する沈殿に移行するような量で添加し、この沈殿を分離
し、かつ上澄液を常用の生化学的分別法の後に前記の崩
壊緩衝液中で後処理し、得られる酵素溶液を透析し、か
つ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥させることを特徴とす
る、安定化されたNAD(P)H−依存性で可溶性の同
化型硝酸還元酵素の製法。 3、緩衝液にプロテアーゼ阻害剤を添加する、特許請求
の範囲第2項記載の方法。 4、緩衝液にFADを添加する、特許請求の範囲第2項
または第3項記載の方法。 5、緩衝液に糖又は糖アルコールを添加する、特許請求
の範囲第2項記載の方法。 6、ポリエチレンイミン沈殿の上澄液に弱アルカリ性陰
イオン交換体を、硝酸還元酵素活性がなお溶液中に残留
するだけ添加し、次いで交換体を高めたイオン濃度で溶
離させる、特許請求の範囲第2項から第5項までのいず
れか1項に記載の方法。 7、酵素溶液を芳香族で置換された網状化アガロースの
クロマトグラフィーにかける、特許請求の範囲第2項か
ら第6項までのいずれか1項に記載の方法。 8、陰イオン交換体処理又は/及びクロマトグラフィー
の前又は後に、酵素を硫酸アンモニウムで沈殿させ、次
いで再び崩壊緩衝液中に溶かす、特許請求の範囲第2項
から第7項までのいずれか1項に記載の方法。 9、トリス−酒石酸緩衝液(pH7〜8.5)中の細砕
した出発物質の懸濁液を製造し、これに可溶性のポリエ
チレンイミンを、硝酸還元酵素活性の10〜20%が生
成する沈殿に移行するような量で添加し、この沈殿を分
離し、かつ上澄液を常用の生化学的分別法の後に前記の
崩壊緩衝液中で後処理し、得られる酵素溶液を透析し、
かつ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥させることにより得
られた、ドデシル硫酸ナトリウムの存在する電気泳動で
約90000Dの分子量及び35℃で3週間後に 60%よりも多い残余活性を有する安定化されたNAD
(P)H−依存性で、可溶性の同化型硝酸還元酵素、N
AD(P)H、両性イオン緩衝液pH7〜9、窒素複素
環緩衝液pH6.5〜9を含有する硝酸塩測定試薬。 10、両イオン緩衝液はGOOD−緩衝液である、特許
請求の範囲第9項記載の試薬。 11、窒素複素環緩衝液は、イミダゾール緩衝液、ピラ
ゾール緩衝液又はピリジン緩衝液である、特許請求の範
囲第9項又は第10項記載の試薬。 12、pH値は7.0〜7.8であり、かつ再構成され
、溶解された試薬中の緩衝液濃度は20〜50ミリモル
である、特許請求の範囲第9項から第11項までのいず
れか1項に記載の試薬。 13、スーパーオキシドジスムターゼを含有する、特許
請求の範囲第9項から第12項までのいずれか1項に記
載の試薬。 14、プロテアーゼ阻害剤、FAD及び糖又は糖アルコ
ールから選択した添加物少なくとも1種を含有する、特
許請求の範囲第9項から第 13項までのいずれか1項に記載の試薬。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE19863614838 DE3614838A1 (de) | 1986-05-02 | 1986-05-02 | Stabilisierte nad(p)h-abhaengige loesliche nitratreduktase verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung |
| DE3614838.5 | 1986-05-02 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62262992A true JPS62262992A (ja) | 1987-11-16 |
| JPH0475757B2 JPH0475757B2 (ja) | 1992-12-01 |
Family
ID=6299993
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP62106496A Granted JPS62262992A (ja) | 1986-05-02 | 1987-05-01 | 安定化されたnad(p)h−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素、その製法及びこれを含有する硝酸塩測定試薬 |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0244771B1 (ja) |
| JP (1) | JPS62262992A (ja) |
| AT (1) | ATE84068T1 (ja) |
| DE (2) | DE3614838A1 (ja) |
| ES (1) | ES2044862T3 (ja) |
| GR (1) | GR3007473T3 (ja) |
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| JPH04267878A (ja) * | 1991-02-21 | 1992-09-24 | Amano Pharmaceut Co Ltd | 酵素の安定化方法 |
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|---|---|---|---|---|
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| DE4004900A1 (de) * | 1990-02-16 | 1991-08-22 | Merck Patent Gmbh | Nitratreduktase aus hefen, ihre herstellung und verwendung |
| DE59005286D1 (de) * | 1990-10-04 | 1994-05-11 | Kallies Import Export Vertrieb | Stabilisiertes Thrombin, seine Herstellung und seine Verwendung als Thrombinzeitreagens. |
| AU659645B2 (en) | 1991-06-26 | 1995-05-25 | Inhale Therapeutic Systems | Storage of materials |
| US6290991B1 (en) | 1994-12-02 | 2001-09-18 | Quandrant Holdings Cambridge Limited | Solid dose delivery vehicle and methods of making same |
| US11515021B2 (en) | 2019-10-03 | 2022-11-29 | Rom Technologies, Inc. | Method and system to analytically optimize telehealth practice-based billing processes and revenue while enabling regulatory compliance |
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| US11282599B2 (en) | 2019-10-03 | 2022-03-22 | Rom Technologies, Inc. | System and method for use of telemedicine-enabled rehabilitative hardware and for encouragement of rehabilitative compliance through patient-based virtual shared sessions |
| US11282604B2 (en) | 2019-10-03 | 2022-03-22 | Rom Technologies, Inc. | Method and system for use of telemedicine-enabled rehabilitative equipment for prediction of secondary disease |
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| US11282608B2 (en) | 2019-10-03 | 2022-03-22 | Rom Technologies, Inc. | Method and system for using artificial intelligence and machine learning to provide recommendations to a healthcare provider in or near real-time during a telemedicine session |
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Family Cites Families (2)
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| DE1930059C3 (de) * | 1969-06-13 | 1975-11-13 | Boehringer Mannheim Gmbh | Stabilisiertes Nicotinamid-adenindinucleotid oder bzw. und Nicotinamld-adenin-dinucleotidphosphat |
| NL7103489A (ja) * | 1970-03-18 | 1971-09-21 |
-
1986
- 1986-05-02 DE DE19863614838 patent/DE3614838A1/de not_active Withdrawn
-
1987
- 1987-04-30 AT AT87106305T patent/ATE84068T1/de not_active IP Right Cessation
- 1987-04-30 ES ES87106305T patent/ES2044862T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1987-04-30 EP EP87106305A patent/EP0244771B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1987-04-30 DE DE8787106305T patent/DE3783265D1/de not_active Expired - Fee Related
- 1987-05-01 JP JP62106496A patent/JPS62262992A/ja active Granted
-
1993
- 1993-03-26 GR GR920402868T patent/GR3007473T3/el unknown
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS60259185A (ja) * | 1980-02-05 | 1985-12-21 | ベ−リンガ−・マンハイム・ゲゼルシヤフト・ミツト・ベシユレンクテル・ハフツング | グリセリンオキシダ−ゼの取得法 |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH04267878A (ja) * | 1991-02-21 | 1992-09-24 | Amano Pharmaceut Co Ltd | 酵素の安定化方法 |
Also Published As
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|---|---|
| ES2044862T3 (es) | 1994-01-16 |
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| JPH0475757B2 (ja) | 1992-12-01 |
| DE3783265D1 (de) | 1993-02-11 |
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| EP0244771A2 (de) | 1987-11-11 |
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