JPS62262992A - 安定化されたnad(p)h−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素、その製法及びこれを含有する硝酸塩測定試薬 - Google Patents

安定化されたnad(p)h−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素、その製法及びこれを含有する硝酸塩測定試薬

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JPS62262992A
JPS62262992A JP62106496A JP10649687A JPS62262992A JP S62262992 A JPS62262992 A JP S62262992A JP 62106496 A JP62106496 A JP 62106496A JP 10649687 A JP10649687 A JP 10649687A JP S62262992 A JPS62262992 A JP S62262992A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 友業上の利用分野 本発明は、安定化されたNAD(P)H−依存性で可溶
性の同化型硝酸還元酵素その製法及びこれt含有る、硝
酸塩測定試薬に関る、。
従来の技術 硝酸塩の測定は、食品化学においては元素分析的課題に
属る、。食品中の硝酸塩−宮iを検査る、ために適用さ
れる多数の分析法が公知でおる(例えば1ハンドプーフ
・デル・レーベンスミツテルヒエミ−(Handbuc
h der Lebens−mittelchemie
 ) n / 2 ” (1967年)、スプリンガ−
(apringet )出版参照)。しかしながら全て
の公知分析法は極めて経費がかかシかつ煩雑な実施とい
う欠点を有る、。直接的実施法は屡々敏感で無く、かつ
ほとんど特異性が低い。従って実際には、ニトレートイ
オンを先ず還元し、引続き還元生成物音よυ高い特異性
を有る、方法により測定る、ように硝酸塩−測定上行な
う。硝酸塩の化学的測定に大事なことは、先ず還元剤で
亜硝酸塩に還元すべきことである。多数の常用の還元剤
のうち硝酸塩測定にはカドミウム−還元剤の使用だけが
奏効した。
しかしながらカドミウムの使用は極めて問題であると当
業者には考えられており、それというのもカドミウムは
少量ですでに毒性でありかつ又発ガン性であるからであ
る。
既に屡々カドミウム金他の還元剤によって代見る勢力が
なされた。しかしながらこハまで過当な他の還元剤は知
られていない。従って特異的な酵素的方法に大きな関心
がある。
硝酸塩を光度測定可能な反応で変換させる5稀の酵素が
公知である。
硝酸還元#素(N1trat−Reduktase )
 (E、C。
1.9.6.1 )はフェロチトクロムの存在で硝酸塩
を還元し、硝酸還元酵素(g、c、1.7.99.4 
) u硝酸塩−変換のために還元された受容体−例えは
メチルビオロifン(Methylviologen 
) t−心壁とる、;史に、硝酸塩t−NADH、NA
DPH及びNAD(P)Hの存在で還元る、もう3mの
酵素が公知である。
これらの全ての酵素は文献に詳細に記載されている。約
200の文献に種々の動物性、他物性及び微生物性起源
からの製造、積装のためのl要性が記載される。更に、
硝酸塩変換酵素での硝酸塩−測定を提案している2つの
刊行物がある。
アナリテイカル・ケミストリイ(Anal。
Chem、 ) 50巻、1319(1978年)には
硝酸還元酵素を用いる硝酸塩−還元が述べられている;
勿論生成した亜硝酸塩は亜硝酸−還元酵素(N:1tr
it−Reduktase )の使用によりt気化学的
に測定される。
アグリカルチユラル・アンド・ビオロジカル・ケミスト
リイ(Agr、 Biol、 Chem、 ) 47巻
、2427(1983年)でハマノ(Hamano )
等は、肉−及び魚製品中の硝酸塩−測定のために硝酸−
還元酵素(1,7,99,4) k使用し、この際生成
した亜硝酸塩は光分に特異的なジアゾ化−反応で測定さ
れる。
NADH%NADPH又はNAD(P)Hの存在で硝酸
塩を還元る、ことができる酵素を硝酸塩測定のために使
用る、ことは従来成功していない。その理由は酵素の大
きな不安定性にあり、この場合特にi!1記の補酵素に
依り硝酸塩r還元る、ための酵素の特性は、この酵素が
他の、直接的でなく測定可能な還元剤を依然として利用
し得るとしても、極めて不安定でちゃ、通例は数時間以
内ですでに失なわれていく。しかし特に困難な点は、こ
の酵素が亜硝酸−還元酵素−活性も有し、これが生成し
友亜硝酸塩を更に還元させ、従って生成した亜硝酸塩の
測定に依る終点測定ができないことにある。既にZ、 
Pflanzenphy−sjol 、 BD 66巻
290〜293頁(1972年)に、ホウレンソウの葉
からの硝酸−還元酵素を用いる硝酸塩測定が記載されて
おり、この場合酸化されたNADH又は生成した亜硝酸
塩が測定可能であるはすだが、亜硝酸の測定が推奨され
、NADのそれは推奨されない。しかじなからこの方法
の追試は使用可能な結果を生じなかった。
発明が解決しようとる、問題点 従って本発明の課題は、従来記載された方法の欠点及び
困難な点を回避し、かつ硝酸−還元酵素によって還元さ
れる硝酸塩の尺度としてのNAD(P)HからNAD(
P)への変換の直接的測定がさ 短時間以内で隔い正Cで行なうことができる硝酸塩測定
法を得ることであった。史にもう1つの課題はこの方法
のための適当な酵素及び試薬を得ることであった。
問題点全解決る、ための手段 この問題の解決は、本発明に依9安定化されたNAD(
P)H−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素の使用に
依り成功し、この酵素は、ドデシの ル硫酸ナトリウムの存在fft気泳動の際の約9000
0Dの分子量及び35°Cで3週間後の60係よシ多い
残余活性全特徴とし、がっ、これは、トリス−酒石酸緩
衝液pH7〜8.5中の細砕化出発物質の懸濁液を製造
し、これに硝酸−還元酵素活性の10〜20%が生成沈
殿に移行る、よりなIoで可溶性のポリエチレンイミン
を添加し、沈殿を分離しかつ上澄液を常用の生化学的分
別法の後に前記の崩壊緩衝液(Aufschluβpu
ffers )中で後処理し、得られる酵素溶液を透析
しかつ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥る、ことによって
得られる。
本発明によシ使用される酵素E、C,1,6,6,2は
補酵素としてのNAD(P)Hでその還元酵素−活性の
5A際に改良された安定性を有し、かつ適当な緩衝液の
存在で凍結乾燥状態はかりでなく水溶液に再構成された
状態でも、障害性の亜硝酸−還元酵素作用が生じること
なく、硝酸塩測定に使用る、ことができる。
生物原料からの本発明による安定化されたNAD(P)
H−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素製剤の製造は
、細砕、中性〜弱アルカリ性媒体中の崩壊及び錯化剤及
びメルカプタンの存在での分別により行なわれ、これは
、トリス−酒石酸緩衝液(−7〜8.5)中の細砕出発
物質の懸濁液を製造し、これに硝酸−還元酵素活性の1
0〜20%が生成る、沈殿に移行る、ような倉で可俗性
の〆リエチレンイミンを添加し、沈殿を分離しかつ上演
液を常用の生化学的分別法の後に前記の分解緩衝液中で
後処理し、得られる#素浴液を透析しかつ両性イオン緩
衝液中で凍結乾燥る、ことよりなる。
所望の特性を得るためには、特殊な緩衝液の使用、俗解
相での酵素の定量的保留を生じさせない条件下での?リ
エチレンイミン分別、並びに得られる、富化された、安
定化酵素の両性イオンM!債液中での凍結乾燥がl要で
ある。
トリス−噛石酸會基礎とる、崩壊緩衝液は一1直7〜8
.5及び有利な濃度10〜100 ミIJモル/を含有
る、。p)i(m7.2〜8.0 ′t−有る、60〜
70ミリモルのトリス−酒石酸緩衝液准を有利に使用る
、。出発物質として、NAD(P)H−依存性の同化型
硝酸−還元酵素を含有る、自体公知の生物原料上使用る
、。糸状薗、特にクロカビ(Aspergillus 
Niger )から有利に出発る、。
アスペルギルス・sp (Aspergillus s
p、 DSM1729)又はアスペルギルス・ニドウラ
ンス(Aspergjllu6 N1dulans #
 DSM 63358 )は出発vlJIxとして特に
有利である。
使用る、緩衝液にプロテアーゼ阻害剤を殊に添加し、こ
の場合当業者に公知のプロテアーゼ阻害剤を使用る、こ
とができる。プロテアーゼ阻害剤としてベンズアミジン
又は/及びPMSF七有利に使用る、。史に緩衝液に殊
に糖又は糖アルコールを添加し、この場合la度は20
%(G/V)までであって良い。糖として蔗糖及び糖ア
ルコールとしてグリセリンを有利に使用る、が、他の抛
、例えはマンノース等、又は糖アルコール、例えはへキ
シット、ペンチット等全使用る、こともできる。
酵素の精製の場合には、常法で錯化剤、例えはEDTA
及びメルカプタン、例えはグルタチオン又はメルカプト
エタノールの存在で作条る、。
FAD (D添加も有利であると実証された。
常用の生化学的分別法、例えは%Fpmアンモニウムー
分別法、又換体−クロマトグラフイー又は/及び分子−
一分別法による補装のためにこれ自体勿任意の1沃で使
用る、ことがでさる・しかしこの場合、常に前記のよう
な崩謙緩憤赦の存在で作条る、ことが2に要である。殊
に、なお少tの硝酸還元酵素活性が浴叡中に残貿る、、
すなわち全ての酵素活性が9.撲体に粘合式れないよう
な倉の、弱アルカリ性の陰イオン又換体?!−ポリエチ
レンイオン沈殿の上澄液に添加し、次いで交換体をイオ
ン濃度の上昇により俗離る、。過当な弱アルカリ性の陰
イオン交換体は例えば適当な支持材料、例えはアガロー
ス、セルロース等に結合された、ジエチルアミノエタノ
ール−、i!に有る、ものである。
クロマトグラフィーによる富化のために特に芳香族で置
換された、網状化アガロースが適当であると実証され、
従って本発明の範囲ではこの極の富化段階が有利である
。フェニルセファロースを介る、積装が特に有利でおる
。
更に不純物の除去のためには、陰イオン交換体処理又は
/及びクロマトグラフィーの前又は後に酵素に+#L酸
アンモニウムの絡加により沈殿させ、次いでそれ以降の
処理のため沈殿を再び崩墓緩@液に俗解る、ことが有利
である。
本発明による#累の収得のために使用る、ことができる
他の富化段階は、チトクロム含有アガロースデルでの例
えはアフイニテイクロマトグラフイであり、例えは馬の
心;減からのチトクロムCtセファロースCL6BR1
色配位子、例えはブルー−セファロース又はFAD−セ
ファロースに結合した。しかしながらフェニルセファロ
ースでの精製が特に有利である。
本発明の方法に有利に使用る、糸状菌からの酵素は目お
状態で約200000の分子輩を有し、FAD及びモリ
ブデンを有し、かつ硝酸塩に対る、KM約3.2 X 
10−’ M’に有る、。分子賃の測定はrル濾過によ
シ行なわれる。
両性イオン緩@液としては本発明の範囲ではC)OOD
−緩衝液が有利である。GOOD−緩衝液としては再び
HIljPES−緩衝液が特に有利である。
凍結乾燥の実施のために酵素を1例えは(iilC酸ア
ンモニウム添加により沈殿させ、次いで両性イオン緩衝
液に入れるか、又は崩壊緩衝徹中の酵素の爵液を両性イ
オン緩衝液に対して透析る、。
両性イオン緩@液は有利に0.01〜0.2モルの纜度
で、特に有利に0.02〜0.1七ル濃度で使用る、。
′これは有利に少l°の錯化剤、例えばgDTA O−
1”’−50mM s少量のFAD 、特に1〜60μ
M及び有利に0.5〜1QmMの濃度のスル7ヒドリル
ー化合物會含有し、かつ適当な塩基、例えは苛性ソーダ
溶液で一値6.5〜9、殊に7〜8に調整る、。
本発明による酵素は一最適値約7.5を有し、基質特異
性は硝酸塩に対して100係、亜硝酸塩に対して0.1
2%、NAD/P/Hに対して100係及びNADHに
対して13%である。
阻害剤は10−’M以上における亜硝酸塩(生&物阻吾
)、Mn”、Fe”、Cu”、Fe”(EDTAの不在
で)、CN−及びアジドである。
硝酸塩測定のために使用る、ために、凍結乾燥状態で存
在しかつ例えは評しく ii+配し′fcような両性イ
オン緩衝液を含有る、本発明による硝酸−還元酵素t%
−値6.5〜9七Mる、窒素複素環緩備敵中に浴解し、
従って再構成状態では両社イオン緩衝液並びに窒素複素
環緩衝g、勿含有る、。
従って俗解形の本発明による硝酸塩測定用試薬は、前に
定義したような硝酸−還元酵素、NAD(P)H、両性
イオン緩衝液−7〜9及び窒素複素環縫Y# ’Q p
H6,5〜9の含量を特徴とる、。
硝酸塩測定の実施のために、単に再構成された試薬を硝
酸塩富有の試料に添加し、NAD(P)Hの酸化全還元
された補酵素の減少又は酸化された補酵素の増加の測定
によシ測定る、。窒累複素塊緩衝液としては、イミ、ダ
ゾール緩衝液、ぎラゾール緩衝液又はピリジン緩mmが
有利であシ、この場合イミダゾール緩衝液が特に有利で
ある。
有利なPHfl!Lは7.0〜7.8であり、かつ再構
成浴性試桑中の有利な緩衝液製置は20〜50ミリモル
/lである。
本発明による試薬はその他の成分として殊にスーパーオ
キシドジスムターゼ(SOD ) を有利に10〜10
00単位/溶解試薬継の童で含有る、。丈に殊に崩墓緩
爾准のために前記した若干の又は全てのti加物をそこ
に記載した甘で含有る、。
実施例 本発明を次の実施例につき詳説る、二 側  1 A)崩壊 アスペルギルスsp、 DSM 1729の濾別した生
@貨(Bj、omass ) 9 kg k、EDTA
 5 mM 、 FA−D5μM1 メルカプトエタノ
ール2mMt−含有る、0、05 M )リス/酒石酸
緩衝准(pH7.5 )よシなる氷冷緩衝液50を中に
入れる。懸濁液を均質化し、高圧分散(600バール)
に依り崩壊る、。崩壊生物量に、グリセリン10%、R
vlSF10μ&/液体を及びベンズアミシン15μg
/液体tに添加し、−値t−1Mトリスー塩基で7.5
に調整る、。
容ftニア0t SU活性: 75 KU SA約0.120/〜 B)ボリミンーp−分離 A工程からの液体に、撹拌下で予備試験(1%のボリミ
ンP−醗&p87.0そのっど4%、6係、8係、10
%を用いて〕後に、活性の85係が上澄液中に残留る、
ような量のボリミンPを加える。15分間の攪拌後に沈
殿を捨て、濾液に液体1を当りPMSF 7 m9及び
ベンズアミジン15rn9’を加、tル。
容itニア0t SU活性: 70 KU C)  DEAE−セファデックス−パッチB工程の濾
液に予備試験(2%、3%、4%)後に、活性の10%
以上が上澄液中に残留る、ような量のDEAE−セファ
デックスを混入攪拌る、。父換体t−a別し、gD’r
A 5 mM %FAD 574M及びメルカプトエタ
ノール2mM+含有fるトリス/酒石酸−緩衝液(pH
7.5)3tで洗浄る、。俗離は洗浄緩衝液にNaCL
 Q、5 Mの添加によシ行なう(合計3X3tで)。
溶離物を一緒にし、1を当りPMSF 7119及びベ
ンズアミジン151n9’?加えかつ冷却放置る、。
容量:約91  8U活性: 35 KUD) ftL
酸アンモニウム−沈殿 り工程の溶離物に予備試験後(2,0M、 2.2M、
2.4M)に固体の硫酸アンモニウム全1活性の5%以
下が上澄液に残留る、まで加える。
沈殿を遠心分離し、澄明(blan’k )な上澄液を
捨てる。
E)フェニルセファロース−クロマトグラフィD工程の
As−沈殿に、EDTA 5 mM 、 FAD 5M
M、メルカプトエタノール2mM、グリセリン10%v
/v及び硫酸アンモニウムIMt−含有る、トリス/酒
石酸緩衝液(0,05M ) (p87.5)1t′に
入れ、1を当、り PMSF 7Ing及びベンズアミ
ジン15M9t−加え、場合による濁りを遠心分離で除
去る、。
容量:1.4t SU活性: 45 KU SA1.7U/IIIg 酵素浴液上フェニルセファロースーカラム2を上で展開
させる( EDTA 5 mM %FAD AM 、メ
ルカプトエタノール2mM、グリセリン10%(v/v
 )及び硫酸アンモニウム1冨t−含有し、トリス/酒
石酸緩衝液(p87.5 ) 0.05 Mで平衡させ
たカラム10X28cIn)。洗浄を前記の緩衝液3t
で行なう。
次のものよりなる勾配溶液: A:洗浄緩衝液と同様であるが、硫酸アンモニウム0.
5 M k含有る、緩衝液21゜B:洗浄緩衝液と同様
であるが、&tLrHアンモニウム5 mM ’に含有
る、緩衝液21゜で俗離させる。
5U/αよりも大きい活性を有る、溶離物を一緒にし、
1を当りPMSF 71Kl及びベンズアミジン15■
を混合る、。
容量: 2.51 SU活!:: 36 KU SA4U/■ F)硫酸アンモニウム−濃縮及び透析 E工程からの浴陥物を固体の硫酸アンモニウムで2.4
 M 1で沈殿させ、遠心分離し、澄明な上澄液を捨て
る。沈殿を、EDTA 5 mM%FAD 5MM1 
メルカプトエタノール2mM及びグリセリン10%を含
有る、トリス/酒石酸緩衝液(PH1,5) 0.05
 M (25ON)中に入れ、1を当りPMBF 71
n9及びベンズアミジン15■を混合る、。
G)透析 F工程からの溶液を、gDTA 5 mM 、 FAD
 5MM1 メルカプトエタノール2 mM k含有る
、0、05 M  HEPE8緩衝液pH7,5(I 
N  NaOHでV@整る、)5X5Lに対して透析る
、。
透析物を透析緩@液で60U/ruに希釈し、FAD 
95 IM及びG8H2mM f加え、酵素maiII
Lt轟クフィコル8り1ng’に混合る、。IM)リス
−塩基で一値を7.5に調整し、諸過して細菌を少なく
し、凍結乾燥る、。
収ia−:i結乾燥物約50g 5U活!:25KU−出発の30% (蛋白’J[1,9) 活性:0.5U/凍結乾燥物呼 比活性:10U/蛋白質〜 異質活性: NADPH−酸化酵素0.7%NADPH
−依存性ADH0,8係 亜硝酸還元酵素0.2% 貯*ニー20°C 例  2 硝酸塩測定 試験条件: 波長: (Hg) 335 nm、  (Hg) 33
4 nm。
339 nm ;層厚1 cm ;試験f2.75d;
濾度:20〜25°C;空気に対して測定。
測定: 混合;約6分間室温で放置;Elの測定試料及びブラン
ク値の吸光度差(El −E2 )を計算る、。
ΔE(硝酸塩) = (EI  E2 )    (E
x試料 −E2)ブランク値 計算 硝酸塩について: C−試料溶液中の硝酸塩のI!kW<9/1)V−試験
1t(m)(この場合:2.75Iu)MG−分子f(
この場合−硝酸塩−62,000F1モル) ΔE−吸光度、前記参照 を−次における吸光係数: 6ろ4  ”  (T(g)−6−181X  mm0
l−1K而−1339rlm    = 6−3 1 
X mmol−1XcIrL−1335nm (Hg)
 −3,51X mmol−1XcIn−”d−キュベ
ツトの層厚(この場合: 1 an )V−試料容!(
この場合: 0.05N)〔硝酸塩y/試料#叡t〕 例  6 硝酸塩測定 試験条件: 波長: (Hg) 335 nm −(Hg) 334
 nm s 339nm;層厚1 an ;試験量2.
77財:温度:20〜25°C;空気に対して測定。
測定 混合;約6分間室温で放置;Elの測定。
混合;約30〜40分間室温で放置;E2測定。
試料及びブランク値の吸光反差(EIE2)を計算る、
。
7E(硝酸塩どけI E2)試料−(BIB2)ブラン
ク値計算 硝酸塩について: C−試料#4液中の硝酸塩の製置(11/l )V−試
験量(M)(この場合: 2.77紅)MG−分子量(
この場合:硝は塩−62,00、@1モル) ΔE−吸光度差、前記参照 1−次におけるNADPHの吸光係数:334 nm 
(Hg) = 6−18 1 x mmol−1X3−
↓339 nm    = 6.3 1X mmol−
IXcrIL″″1335 nm (Hg) −3−5
1X mmol−”X3−1d−キュベツトの層厚(こ
の場合: 1 an )■=試料容1(この場合: 0
.05成)2.77  x  62.00 x 1g 
   3.435〔硝酸塩g/試料溶液t〕

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1、トリス−酒石酸緩衝液(pH7〜8.5)中の細砕
    した出発物質の懸濁液を製造し、これに可溶性のポリエ
    チレンイミンを、硝酸還元酵素活性の10〜20%が生
    成する沈殿に移行するような量で添加し、この沈殿を分
    離し、かつ上澄液を常用の生化学的分別法の後に前記の
    崩壊緩衝液中で後処理し、得られる酵素溶液を透析し、
    かつ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥させることにより得
    られ、ドデシル硫酸ナトリウムの存在での電気泳動で約
    90000Dの分子量及び35℃で3週間後に60%よ
    りも多い残余活性を特徴とする安定化されたNAD(P
    )H−依存性で、可溶性の同化型硝酸還元酵素。 2、ドデシル硫酸ナトリウムの存在での電気泳動で約9
    0000Dの分子量及び35℃で3週間後に60%より
    も多い残余活性を有する安定化されたNAD(P)H−
    依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素を、生物原料から
    、細砕、中性〜弱アルカリ性媒体中での崩壊及び錯化剤
    及びメルカプタンの存在での分別により製造するために
    、トリス−酒石酸緩衝液(pH7〜8.5)中の細砕し
    た出発物質の懸濁液を製造し、これに可溶性のポリエチ
    レンイミンを、硝酸還元酵素活性の10〜20%が生成
    する沈殿に移行するような量で添加し、この沈殿を分離
    し、かつ上澄液を常用の生化学的分別法の後に前記の崩
    壊緩衝液中で後処理し、得られる酵素溶液を透析し、か
    つ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥させることを特徴とす
    る、安定化されたNAD(P)H−依存性で可溶性の同
    化型硝酸還元酵素の製法。 3、緩衝液にプロテアーゼ阻害剤を添加する、特許請求
    の範囲第2項記載の方法。 4、緩衝液にFADを添加する、特許請求の範囲第2項
    または第3項記載の方法。 5、緩衝液に糖又は糖アルコールを添加する、特許請求
    の範囲第2項記載の方法。 6、ポリエチレンイミン沈殿の上澄液に弱アルカリ性陰
    イオン交換体を、硝酸還元酵素活性がなお溶液中に残留
    するだけ添加し、次いで交換体を高めたイオン濃度で溶
    離させる、特許請求の範囲第2項から第5項までのいず
    れか1項に記載の方法。 7、酵素溶液を芳香族で置換された網状化アガロースの
    クロマトグラフィーにかける、特許請求の範囲第2項か
    ら第6項までのいずれか1項に記載の方法。 8、陰イオン交換体処理又は/及びクロマトグラフィー
    の前又は後に、酵素を硫酸アンモニウムで沈殿させ、次
    いで再び崩壊緩衝液中に溶かす、特許請求の範囲第2項
    から第7項までのいずれか1項に記載の方法。 9、トリス−酒石酸緩衝液(pH7〜8.5)中の細砕
    した出発物質の懸濁液を製造し、これに可溶性のポリエ
    チレンイミンを、硝酸還元酵素活性の10〜20%が生
    成する沈殿に移行するような量で添加し、この沈殿を分
    離し、かつ上澄液を常用の生化学的分別法の後に前記の
    崩壊緩衝液中で後処理し、得られる酵素溶液を透析し、
    かつ両性イオン緩衝液中で凍結乾燥させることにより得
    られた、ドデシル硫酸ナトリウムの存在する電気泳動で
    約90000Dの分子量及び35℃で3週間後に 60%よりも多い残余活性を有する安定化されたNAD
    (P)H−依存性で、可溶性の同化型硝酸還元酵素、N
    AD(P)H、両性イオン緩衝液pH7〜9、窒素複素
    環緩衝液pH6.5〜9を含有する硝酸塩測定試薬。 10、両イオン緩衝液はGOOD−緩衝液である、特許
    請求の範囲第9項記載の試薬。 11、窒素複素環緩衝液は、イミダゾール緩衝液、ピラ
    ゾール緩衝液又はピリジン緩衝液である、特許請求の範
    囲第9項又は第10項記載の試薬。 12、pH値は7.0〜7.8であり、かつ再構成され
    、溶解された試薬中の緩衝液濃度は20〜50ミリモル
    である、特許請求の範囲第9項から第11項までのいず
    れか1項に記載の試薬。 13、スーパーオキシドジスムターゼを含有する、特許
    請求の範囲第9項から第12項までのいずれか1項に記
    載の試薬。 14、プロテアーゼ阻害剤、FAD及び糖又は糖アルコ
    ールから選択した添加物少なくとも1種を含有する、特
    許請求の範囲第9項から第 13項までのいずれか1項に記載の試薬。
JP62106496A 1986-05-02 1987-05-01 安定化されたnad(p)h−依存性で可溶性の同化型硝酸還元酵素、その製法及びこれを含有する硝酸塩測定試薬 Granted JPS62262992A (ja)

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ATE84068T1 (de) 1993-01-15
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