JPS62272917A - トウモロコシを再生する方法 - Google Patents
トウモロコシを再生する方法Info
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Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
- A01H4/00—Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Botany (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
3、発明の詳細な説明
[発明の背景]
(発明の分野)
本発明はトウモロコシの再生についての一般的な方法お
よびその方法によって生産される植物に関するものであ
る。さらに詳細に述べれば、本発明はトウモロコシの多
数の品種からトウモロコシ苗を再生するための組織およ
び細胞培養の使用に関するものである。
よびその方法によって生産される植物に関するものであ
る。さらに詳細に述べれば、本発明はトウモロコシの多
数の品種からトウモロコシ苗を再生するための組織およ
び細胞培養の使用に関するものである。
(先行技術の説明)
培養中の細胞からの植物再生は、体細胞交雑の応用、体
細胞クーロン変異による新品種の生産および新品種の生
産における遺伝学的技術の使用に際して必須である。ト
ウモロコンの数品種については組織培養から植物を再生
することができるが、同様の技術の使用では再生が達成
されなかった品種が多数ある。
細胞クーロン変異による新品種の生産および新品種の生
産における遺伝学的技術の使用に際して必須である。ト
ウモロコンの数品種については組織培養から植物を再生
することができるが、同様の技術の使用では再生が達成
されなかった品種が多数ある。
最近、植物細胞培養の成功が、植物の生長および発生の
制御における細胞と生物体の各役割に著しい影響をもた
らしている。この見方は、分離した植物細胞が生体外培
養によくなじむことが判明し、また完全な植物が体細胞
胚発生物から直接にまたは器官形成物から間接に、体細
胞組;褒から誘導される培養物から再生され得rこ時支
持された。
制御における細胞と生物体の各役割に著しい影響をもた
らしている。この見方は、分離した植物細胞が生体外培
養によくなじむことが判明し、また完全な植物が体細胞
胚発生物から直接にまたは器官形成物から間接に、体細
胞組;褒から誘導される培養物から再生され得rこ時支
持された。
一般的に、再生経路の選択は外部の要因、特に生長調節
因子の操作により実験的に決定される。ある植物種の初
期の研究は、オーキシンの減少が胚形成の開始を導くと
いうように、外因性オーキンン濃度が体細胞胚発生の制
御の主要な因子であることを示唆した、他の種では、一
定の平衡状態のオーキシンおよびサイトカイニンにさら
すことが器官形成(新芽、ついで根)の発生を導く。ト
ウモロコシの数種の遺伝学型はこれらの技術を用いて再
生されたが、トウモロコシの大部分の遺伝学型に対して
一般的に適用できる方法はなかった。多数の遺伝学型は
、先行技術を用いる培養がたとえ不可能でないとしても
、極めて困難であった。
因子の操作により実験的に決定される。ある植物種の初
期の研究は、オーキシンの減少が胚形成の開始を導くと
いうように、外因性オーキンン濃度が体細胞胚発生の制
御の主要な因子であることを示唆した、他の種では、一
定の平衡状態のオーキシンおよびサイトカイニンにさら
すことが器官形成(新芽、ついで根)の発生を導く。ト
ウモロコシの数種の遺伝学型はこれらの技術を用いて再
生されたが、トウモロコシの大部分の遺伝学型に対して
一般的に適用できる方法はなかった。多数の遺伝学型は
、先行技術を用いる培養がたとえ不可能でないとしても
、極めて困難であった。
トウモロコシの組織培養に対する標準方式になっている
方法は、グリーンら、クラブ・サイエンス(crop、
5ciencc)、第15巻、417頁(1975年
)により記述されている。本方法において、未分化胚は
MS無機塩類、シュドラウスのビタミンおよびアミノ酸
(グリシン、アスパラギン、ナイアシン、チアミン、ピ
リドキシンおよびパントテン酸)、2%蔗糖、0.8%
寒天および2.4−ジクロロフェノキシ酢酸(2,4−
D)、パラ−クロロフェノキシ酢酸(PCA)、アルフ
ァーナフタリン酢酸(NAA)、2−イソペンチルアデ
ニン(2−ip)またはそれらの混合物から選ばれたホ
ルモンから成るカルス生産培地上へ置かれた。苗は低い
ホルモン濃度をもった培地にカルスを継代培養すること
により再生された。有効であったホルモン濃度基2肩9
/Q2.4−D、並びに1所/(!2゜4−D1411
g/f2 NAAおよび0.05m?/f22−ipの
混合物であった。再生は次に0.25xg/Q2.4−
D、またはl巧/QNAAおよび0505*ti/Q
2−ipの混合物と含有する培地で実施された。全ての
培養は縫代前に3−4週間の間隔で明16時間/暗8時
間の周期で行われた。本参考文献はカルス誘導が試験さ
れた5つの遺伝学型の1つでは起こらなかったことを報
告している。
方法は、グリーンら、クラブ・サイエンス(crop、
5ciencc)、第15巻、417頁(1975年
)により記述されている。本方法において、未分化胚は
MS無機塩類、シュドラウスのビタミンおよびアミノ酸
(グリシン、アスパラギン、ナイアシン、チアミン、ピ
リドキシンおよびパントテン酸)、2%蔗糖、0.8%
寒天および2.4−ジクロロフェノキシ酢酸(2,4−
D)、パラ−クロロフェノキシ酢酸(PCA)、アルフ
ァーナフタリン酢酸(NAA)、2−イソペンチルアデ
ニン(2−ip)またはそれらの混合物から選ばれたホ
ルモンから成るカルス生産培地上へ置かれた。苗は低い
ホルモン濃度をもった培地にカルスを継代培養すること
により再生された。有効であったホルモン濃度基2肩9
/Q2.4−D、並びに1所/(!2゜4−D1411
g/f2 NAAおよび0.05m?/f22−ipの
混合物であった。再生は次に0.25xg/Q2.4−
D、またはl巧/QNAAおよび0505*ti/Q
2−ipの混合物と含有する培地で実施された。全ての
培養は縫代前に3−4週間の間隔で明16時間/暗8時
間の周期で行われた。本参考文献はカルス誘導が試験さ
れた5つの遺伝学型の1つでは起こらなかったことを報
告している。
同様の結果が他の研究者により報告されている。
フリリングら、メイデカ(Maydica)第21巻、
97頁(1976年)は、2まタハ519/(12、4
−D、2%蔗糖を含有し、イノ7トールを欠<RM培地
でカルス誘導し、ついで0〜0.1j!9/Q2゜4−
Dをもつ同一培地での再生することにより、トウモロコ
シの再生を得た。バシルら、セオレテイカル・アンド・
アプライド・ジエネティクス(Thcer、 Appl
、 Genex)第66巻、285頁(1983年)は
、3〜12%蔗糖および0.25〜2゜0tpg/Q2
.4−Dを含有しているMS培地を用いたとき、3週間
の培養後カルス形成および新芽形成を得た。高い蔗糖濃
度は胚発生カルスにもっとも有効であった。板形成は(
a)3%蔗糖をもち、1719/Qジベレリン酸(GA
3)をもつかまたはもたないMS培地または(b)2%
蔗糖をもつ1/2MS培地に継代後達成された。
97頁(1976年)は、2まタハ519/(12、4
−D、2%蔗糖を含有し、イノ7トールを欠<RM培地
でカルス誘導し、ついで0〜0.1j!9/Q2゜4−
Dをもつ同一培地での再生することにより、トウモロコ
シの再生を得た。バシルら、セオレテイカル・アンド・
アプライド・ジエネティクス(Thcer、 Appl
、 Genex)第66巻、285頁(1983年)は
、3〜12%蔗糖および0.25〜2゜0tpg/Q2
.4−Dを含有しているMS培地を用いたとき、3週間
の培養後カルス形成および新芽形成を得た。高い蔗糖濃
度は胚発生カルスにもっとも有効であった。板形成は(
a)3%蔗糖をもち、1719/Qジベレリン酸(GA
3)をもつかまたはもたないMS培地または(b)2%
蔗糖をもつ1/2MS培地に継代後達成された。
エダロら、メゾイカ(Maydica)第26巻、39
頁(1981年)は、2巧/122.4−Dをもつグリ
ーンら(前出)の培地を用いて、未分化のトウモロコノ
の胚からカルスの誘導を得た。培養は30日の継代によ
り、同一培地で維持されることができた。再生は2.4
−Dをもたない培地を用いて達成された。新芽は根形成
のため5119/QNAAの1jIj!重層のある培地
に継代培養された。苗を土壌に継代するのに先だって、
苗は2%、1%および最終的に0%の蔗糖をもつ培地を
一巡された。
頁(1981年)は、2巧/122.4−Dをもつグリ
ーンら(前出)の培地を用いて、未分化のトウモロコノ
の胚からカルスの誘導を得た。培養は30日の継代によ
り、同一培地で維持されることができた。再生は2.4
−Dをもたない培地を用いて達成された。新芽は根形成
のため5119/QNAAの1jIj!重層のある培地
に継代培養された。苗を土壌に継代するのに先だって、
苗は2%、1%および最終的に0%の蔗糖をもつ培地を
一巡された。
2.4−Dによるカルス誘導の同一系列を使用してのト
ウモロコシ植物の再生および2.4−Dを用いないかま
たは低濃度での再生がルーら、セオレティカル・アンド
・アプライド・ジュネティクス(Theor、 App
l、 Ganex)第62巻、109頁(1982年)
;ハイバードら、プロシージンゲス・オブ・ナショナル
・アカデミ−・オブ・サイエンスズ・USA(Prc、
Natl、 Acad、 Sci、 USA)第79
巻、559頁(1982年);ゲゲンバら、プロシージ
ンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエ
ンスズ・USA(Prc。
ウモロコシ植物の再生および2.4−Dを用いないかま
たは低濃度での再生がルーら、セオレティカル・アンド
・アプライド・ジュネティクス(Theor、 App
l、 Ganex)第62巻、109頁(1982年)
;ハイバードら、プロシージンゲス・オブ・ナショナル
・アカデミ−・オブ・サイエンスズ・USA(Prc、
Natl、 Acad、 Sci、 USA)第79
巻、559頁(1982年);ゲゲンバら、プロシージ
ンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエ
ンスズ・USA(Prc。
Natl、 Acad、 Sci、 USA)第74巻
、5113頁(1977年)およびグリーンら、クラブ
・サイエンス(crop S cience)第14
巻、54頁(1974年)らにより示されている。後者
の参考文献はまたカルス誘導に対する遺伝学型の影響を
論証している。
、5113頁(1977年)およびグリーンら、クラブ
・サイエンス(crop S cience)第14
巻、54頁(1974年)らにより示されている。後者
の参考文献はまたカルス誘導に対する遺伝学型の影響を
論証している。
この先行技術のどれもまだ、組織および細胞培養からト
ウモロコシ:ゼア・メイズ(Z ea a+ays)
の大部分の遺伝学型の再生の方法を記述していない。こ
れらの先行技術方法により、再生されることができない
かまたは低頻度でかろうじて再生されることができる培
養物の例は、B73、A632、A619、CMl 0
5、B37、B84、B14、Mol?およびR168
を包含する。本発明は高頻度、高生長率でトウモロコシ
の培養物の再生について、広範に一般的に応用し得る最
初の方法である。
ウモロコシ:ゼア・メイズ(Z ea a+ays)
の大部分の遺伝学型の再生の方法を記述していない。こ
れらの先行技術方法により、再生されることができない
かまたは低頻度でかろうじて再生されることができる培
養物の例は、B73、A632、A619、CMl 0
5、B37、B84、B14、Mol?およびR168
を包含する。本発明は高頻度、高生長率でトウモロコシ
の培養物の再生について、広範に一般的に応用し得る最
初の方法である。
ダンカンら、プランタ(P 1anta)第165巻、
322頁(1985年)は本発明に従うと、トウモロコ
シの多数の栽培変種がカルス誘導培地中にホルモンとし
てジカムバ(dicaIIba: 3,6−ジクロロ−
2−メトオキシ安息香酸)を用いて再生されることがで
きることを論証している。ダンカンらはこれらの結果を
得るため、無機塩およびビタミンの種々の組合せの培地
を利用した。
322頁(1985年)は本発明に従うと、トウモロコ
シの多数の栽培変種がカルス誘導培地中にホルモンとし
てジカムバ(dicaIIba: 3,6−ジクロロ−
2−メトオキシ安息香酸)を用いて再生されることがで
きることを論証している。ダンカンらはこれらの結果を
得るため、無機塩およびビタミンの種々の組合せの培地
を利用した。
トウモロコシ植物および種子が末法により生産される。
末法から生じろトウモロコシ植物は、体細胞クーロン変
異の結果として、元の植物材料と異なることがある。こ
の経路は、別の変異をもたらすための種々の選択方法の
使用を可能にするという点でら有用である。生産される
植物は従来法による繁殖プログラムに用いることができ
る。
異の結果として、元の植物材料と異なることがある。こ
の経路は、別の変異をもたらすための種々の選択方法の
使用を可能にするという点でら有用である。生産される
植物は従来法による繁殖プログラムに用いることができ
る。
[発明の要旨コ
本発明の方法は、トウモロコシ植物の組織から誘導培地
上で、カルス形成を誘導し、カルスを維持し、再生培地
上で新芽および根を形成し、および所望により成熟培地
上で苗を成熟さ仕る段階を含んでいる。
上で、カルス形成を誘導し、カルスを維持し、再生培地
上で新芽および根を形成し、および所望により成熟培地
上で苗を成熟さ仕る段階を含んでいる。
さらに詳細にいえば、末法は
(a)カルス形成を確保するのに十分な量の無機塩類、
ビタミン類、蔗糖およびホルモンを含む第一培地上でト
ウモロコシ植物から得られる組織を培養し、 (b)カルス維持を確保するのに十分な量の無機塩類、
ビタミン類、蔗糖およびホルモンを含む第二培地上でカ
ルスを継代培養し、 (c)新芽形成および根形成を確保するのに十分な曵の
無機塩類、ビタミン類、蔗糖および所望によりホルモン
を含む第三培地上でカルス継代培養し、 (d)所望により、余分の根形成を含めて苗の成熟を確
保するのに十分な量の無機塩類、ビタミン類、蔗糖およ
び所望によりホルモンを含む第四培地上で上記の新芽を
継代培養し、それにより植物を得る段階を含んでいる。
ビタミン類、蔗糖およびホルモンを含む第一培地上でト
ウモロコシ植物から得られる組織を培養し、 (b)カルス維持を確保するのに十分な量の無機塩類、
ビタミン類、蔗糖およびホルモンを含む第二培地上でカ
ルスを継代培養し、 (c)新芽形成および根形成を確保するのに十分な曵の
無機塩類、ビタミン類、蔗糖および所望によりホルモン
を含む第三培地上でカルス継代培養し、 (d)所望により、余分の根形成を含めて苗の成熟を確
保するのに十分な量の無機塩類、ビタミン類、蔗糖およ
び所望によりホルモンを含む第四培地上で上記の新芽を
継代培養し、それにより植物を得る段階を含んでいる。
組織の供給源は、好ましくはゼア・メイズ(Zca
mays)の栽培変種からの未分化胚である。
mays)の栽培変種からの未分化胚である。
培地は、好ましくはN6無機塩および改良されたMSビ
タミンを含有する。好ましいホルモンは第一、第二およ
び第三培地中では3.6−ジクロロ−2−メトキシ安息
香酸(ジカムノりまたは3−アミノ−2,5−ジクロロ
安息香酸(クロラムベン)および第四培地中ではジカム
バ、クロラムベンま1こはジカムバまたはクロラムベン
および2.4−Dの混合物である。
タミンを含有する。好ましいホルモンは第一、第二およ
び第三培地中では3.6−ジクロロ−2−メトキシ安息
香酸(ジカムノりまたは3−アミノ−2,5−ジクロロ
安息香酸(クロラムベン)および第四培地中ではジカム
バ、クロラムベンま1こはジカムバまたはクロラムベン
および2.4−Dの混合物である。
[実施態様の説明]
本発明は細胞または組織培養により、トウモロコシ、ゼ
ア・メイズ(Z ca a+ays)を再生する方法
である。本法により、土壌に植え、成熟するまで生育さ
れ得る再生トウモロコシ苗が得られる。本発明はまた、
本法により得られるトウモロコシ植物およびこれらの植
物から得られる種子も含む。
ア・メイズ(Z ca a+ays)を再生する方法
である。本法により、土壌に植え、成熟するまで生育さ
れ得る再生トウモロコシ苗が得られる。本発明はまた、
本法により得られるトウモロコシ植物およびこれらの植
物から得られる種子も含む。
一般的に、方法は(a)カルスを生成するために培地で
トウモロコシ植物組織を培養し、(b)カルスを維持す
るために培地でカルスを培養し、(c)新芽および根を
生産するために培地でカルスを培養し、(d)所望によ
り、移植用の苗を成熟させるために培地で根をもった新
芽を培養することから成る。苗が発育した後、それらは
土壌で生育させることができる。
トウモロコシ植物組織を培養し、(b)カルスを維持す
るために培地でカルスを培養し、(c)新芽および根を
生産するために培地でカルスを培養し、(d)所望によ
り、移植用の苗を成熟させるために培地で根をもった新
芽を培養することから成る。苗が発育した後、それらは
土壌で生育させることができる。
カルスの形成開始に用いることが好ましい植物組織は、
未分化胚である。未分化胚は受粉倹約10日で穂軸から
分離されるが、そのとき、胚は1.5〜2.011II
の長さである。穂軸を採取し、表面を殺菌する。未分化
胚は各校から分離される。胚は、以下第一培地と称され
るカルス誘導培地上に胚の軸柱が培地と接触するように
、すなわち杯盤側が上にあるように置く。
未分化胚である。未分化胚は受粉倹約10日で穂軸から
分離されるが、そのとき、胚は1.5〜2.011II
の長さである。穂軸を採取し、表面を殺菌する。未分化
胚は各校から分離される。胚は、以下第一培地と称され
るカルス誘導培地上に胚の軸柱が培地と接触するように
、すなわち杯盤側が上にあるように置く。
第一培地は無機塩、ビタミンおよび蔗糖から成っている
。無機塩は多量要素(成分)および微量要素(成分)か
ら成りでいる。第一培地に用いられる多量要素は次の化
合物の組合せであり得る:硫酸マグネシウム、塩化カル
シウム、燐酸−カリウム、硝酸カリウム−硝酸アンモニ
ウムおよび硫酸アンモニウム。第一培地に含有される微
量要素はニホウ素、硫酸マンガン、硫酸亜鉛、ヨウ化カ
リウム、硫酸鉄(n)、エチレンジアミン四酢酸(ED
TA)ジナトリウム芝エチレンジアミン四酢酸第二鉄塩
、モリブデン(■)酸ナトリウム、硫酸銅(II)およ
び塩化コバルトの組合せである。無機塩のいくつかの組
合せは、それらがカルス誘導に悪影響がない限りは用い
ることができる。無機塩の組合せの例はMS、改良され
たMS、N6、改良されたN6、ヘルレル(I)ell
er)、ニチェ(N 1tsh)およびニチェ、B5お
よびホワイト(White)、およびそれらによる組合
せを包括することがこれらに限定しない。
。無機塩は多量要素(成分)および微量要素(成分)か
ら成りでいる。第一培地に用いられる多量要素は次の化
合物の組合せであり得る:硫酸マグネシウム、塩化カル
シウム、燐酸−カリウム、硝酸カリウム−硝酸アンモニ
ウムおよび硫酸アンモニウム。第一培地に含有される微
量要素はニホウ素、硫酸マンガン、硫酸亜鉛、ヨウ化カ
リウム、硫酸鉄(n)、エチレンジアミン四酢酸(ED
TA)ジナトリウム芝エチレンジアミン四酢酸第二鉄塩
、モリブデン(■)酸ナトリウム、硫酸銅(II)およ
び塩化コバルトの組合せである。無機塩のいくつかの組
合せは、それらがカルス誘導に悪影響がない限りは用い
ることができる。無機塩の組合せの例はMS、改良され
たMS、N6、改良されたN6、ヘルレル(I)ell
er)、ニチェ(N 1tsh)およびニチェ、B5お
よびホワイト(White)、およびそれらによる組合
せを包括することがこれらに限定しない。
無機塩の組合せのある例はダンカンら(前掲)に発表さ
れている。
れている。
多量要素および微量要素の1つの好ましい組合せはN6
塩である。これらの塩類の1リツトルは次のものから調
製される二 I85Rg硫酸マグネシウム7水化物、1
66mg塩化カルシウム2水化物、400tg燐酸−カ
リウム、28309硝酸カリウム、463319硫酸ア
ンモニウム、1 、619ホウ酸、3.31硫酸マンガ
ン!水化物、1.519硫酸亜鉛7水化物、0 、8
mgヨウ化カリウム、27.8!Ig硫酸鉄(■)7水
化物および37.3mgエチレンジアミン四酢酸ジナト
リウム。
塩である。これらの塩類の1リツトルは次のものから調
製される二 I85Rg硫酸マグネシウム7水化物、1
66mg塩化カルシウム2水化物、400tg燐酸−カ
リウム、28309硝酸カリウム、463319硫酸ア
ンモニウム、1 、619ホウ酸、3.31硫酸マンガ
ン!水化物、1.519硫酸亜鉛7水化物、0 、8
mgヨウ化カリウム、27.8!Ig硫酸鉄(■)7水
化物および37.3mgエチレンジアミン四酢酸ジナト
リウム。
さらに好ましくは、多量要素および微量要素の他の組合
せは改良されたN6塩類である。これらの塩類は先に記
述された塩類と同一であるが、さらに、培地1リットル
当り、0.25myモリブデン(Vl)酸ナトリウム2
水化物、0.025x9硫酸銅(■)5水化物および0
.0251g塩化コバルト6水化物を含有している。
せは改良されたN6塩類である。これらの塩類は先に記
述された塩類と同一であるが、さらに、培地1リットル
当り、0.25myモリブデン(Vl)酸ナトリウム2
水化物、0.025x9硫酸銅(■)5水化物および0
.0251g塩化コバルト6水化物を含有している。
多量要素および微量要素の他の好ましい組合せは、培地
lリットル当り次のものから成っているMS塩である:
370m9硫酸マグネシウム7水化物、440j+9塩
化カルシウム2水化物、170所燐酸−カリウム、19
00xy硝酸カリウム、1650次9硝酸アンモニウム
、6 、2 m9ホウ酸、15゜6罪硫酸マンガン1水
化物、8 、6 mg硫酸亜鉛7水化物、0.83肩9
ヨウ化カリウム、27.8次9硫酸鉄(n)7水化物、
37.3319エチレンジアミン四酢酸ジナトリウム、
0.25i9モリブデン(■)酸ナトリウム2水化物、
0.025.yり硫酸銅(I[)5水化物および0.0
25o塩化コバルト6水化物。
lリットル当り次のものから成っているMS塩である:
370m9硫酸マグネシウム7水化物、440j+9塩
化カルシウム2水化物、170所燐酸−カリウム、19
00xy硝酸カリウム、1650次9硝酸アンモニウム
、6 、2 m9ホウ酸、15゜6罪硫酸マンガン1水
化物、8 、6 mg硫酸亜鉛7水化物、0.83肩9
ヨウ化カリウム、27.8次9硫酸鉄(n)7水化物、
37.3319エチレンジアミン四酢酸ジナトリウム、
0.25i9モリブデン(■)酸ナトリウム2水化物、
0.025.yり硫酸銅(I[)5水化物および0.0
25o塩化コバルト6水化物。
以下、“N6:多量/B5微量”と称する多量要素およ
び微量要素の他の好ましい組合せは、1851g硫酸マ
グネレウム7水化物、166xy塩化カルシウム2水化
物、400vy燐酸−カリウム、2838mg硝酸カリ
ウム、463j9硫酸アンモニウム、3.79ポウ酸、
10.711?硫酸マンガン1水化物、2.+19硫酸
亜鉛7水化物、0.75y1gヨウ化カリウム、0.2
51119モリブデン(VI)酸ナトリウム2水化物、
0.0251硫酸銅(■)5水化物、0.025屑9塩
化コバルト6水化物および43巧エチレンジアミン四酢
酸ナトリウム第二鉄塩から成っている。
び微量要素の他の好ましい組合せは、1851g硫酸マ
グネレウム7水化物、166xy塩化カルシウム2水化
物、400vy燐酸−カリウム、2838mg硝酸カリ
ウム、463j9硫酸アンモニウム、3.79ポウ酸、
10.711?硫酸マンガン1水化物、2.+19硫酸
亜鉛7水化物、0.75y1gヨウ化カリウム、0.2
51119モリブデン(VI)酸ナトリウム2水化物、
0.0251硫酸銅(■)5水化物、0.025屑9塩
化コバルト6水化物および43巧エチレンジアミン四酢
酸ナトリウム第二鉄塩から成っている。
第一培地は、またビタミンを含有する。次のビタミンの
組合せを使用することができる: ミオイノシトール、
ニコチン酸、アミノ安息香酸、ジアノコバラミン、ピリ
ドキシン、葉酸、チアミン、コリン、リボフラビン、ビ
オチンおよびパントテン酸。
組合せを使用することができる: ミオイノシトール、
ニコチン酸、アミノ安息香酸、ジアノコバラミン、ピリ
ドキシン、葉酸、チアミン、コリン、リボフラビン、ビ
オチンおよびパントテン酸。
ビタミンの好ましい組合せは、第一培地1リットル当り
l10ORミオイノシトール、0.5屑9ニコチン酸、
2j19グリシン、0 、5 tttg塩酸ピリドキシ
ンおよび0 、119塩酸チアミンおよび0.25uパ
ントテン酸カリウムから成っている。
l10ORミオイノシトール、0.5屑9ニコチン酸、
2j19グリシン、0 、5 tttg塩酸ピリドキシ
ンおよび0 、119塩酸チアミンおよび0.25uパ
ントテン酸カリウムから成っている。
ビタミンの他の好ましい組合せは、RTビタミンである
。この組合せは培地1リットル当り0゜75μM塩酸コ
リン、0.■3μM3μフラビン、0.41μMD−ビ
オチン、0.11μM葉酸、1.62μMニコチン酸、
0.30μM塩酸チアミン、’0.21μMパントテン
酸カルシウム、0.97μM塩酸ピリドキシン、0.1
0μMジアノコバラミンおよび0.36μMパラアミノ
安息香酸から成っている。
。この組合せは培地1リットル当り0゜75μM塩酸コ
リン、0.■3μM3μフラビン、0.41μMD−ビ
オチン、0.11μM葉酸、1.62μMニコチン酸、
0.30μM塩酸チアミン、’0.21μMパントテン
酸カルシウム、0.97μM塩酸ピリドキシン、0.1
0μMジアノコバラミンおよび0.36μMパラアミノ
安息香酸から成っている。
さらに、他の好ましい組合せはN6ビタミンである。こ
の組合せは培地lリボフラビン当り11149塩酸チア
ミン、0.5 mg塩酸ピリドキシンおよび0.10μ
Mニコチン酸から成っている。
の組合せは培地lリボフラビン当り11149塩酸チア
ミン、0.5 mg塩酸ピリドキシンおよび0.10μ
Mニコチン酸から成っている。
多量要素、微量要素およびビタミンの好ましい組合せは
次表に要約される。
次表に要約される。
カルス誘導に用いられる培地の一覧表
BCDE
多量要素 N6 N6 MS N6
N6微遣要素 改良型N6N6 MS 85
N6第−培地は1.5〜12%蔗糖、好ましくは9%
を含有している。蔗糖の若干分をマンニトールで置換す
ることは可能である。寒天またはゲルライトT〜I(G
elrite T M)[商標、ケルコ・コマーシャ
ール・デベロブメント、P、O,ボックス23076、
サンディエゴ、カリフォルニアコのよう戸ケル化剤ら培
地に含有している。0.18%の層間でゲルライトTM
を使用することが好ましい。
N6微遣要素 改良型N6N6 MS 85
N6第−培地は1.5〜12%蔗糖、好ましくは9%
を含有している。蔗糖の若干分をマンニトールで置換す
ることは可能である。寒天またはゲルライトT〜I(G
elrite T M)[商標、ケルコ・コマーシャ
ール・デベロブメント、P、O,ボックス23076、
サンディエゴ、カリフォルニアコのよう戸ケル化剤ら培
地に含有している。0.18%の層間でゲルライトTM
を使用することが好ましい。
培地はpH5,5〜6.0であり、pH5、8が好まし
い。培地の所望による成分はエヂレンジアミン四酢酸ノ
ナトリウム鉄塩、し−プロリン、カゼイン酵素水解物、
カザミノ酸、グルコース、硝酸カリウムおよび塩酸チア
ミンを含む。
い。培地の所望による成分はエヂレンジアミン四酢酸ノ
ナトリウム鉄塩、し−プロリン、カゼイン酵素水解物、
カザミノ酸、グルコース、硝酸カリウムおよび塩酸チア
ミンを含む。
上記の化合物のほかに、第一培地はまたホルモンら含有
している。この明細書では、ホルモンとは、植物また植
物組織に調節効果がある任意の天然ま1こは合成化合物
を意味する。植物ホルモンはオーキシンおよびサイトキ
ニンを包含している。
している。この明細書では、ホルモンとは、植物また植
物組織に調節効果がある任意の天然ま1こは合成化合物
を意味する。植物ホルモンはオーキシンおよびサイトキ
ニンを包含している。
、本発明において、カルス誘導に有用であるホルモンは
式(1)のらのであることが見出された。
式(1)のらのであることが見出された。
(式中、R,およびR1は同じ基で、F、Cl、Brお
よび■から成る群から選ばれ、R3はN Ht、NO3
,0H1ClおよびHから成る群から選ばれ、R4はC
l、OCH3およびHから成る群から選ばれる。好まし
くは、R1およびR5は両基とらClまたはBrである
ごとである) 存在するホルモンの量はカルス形成を確保するのに十分
な量である。一般的に、5〜60μM、好ましくは5〜
30μMで十分である。第一培地のホルモンとして5〜
30μMクロラムベン(すなイつち、R1およびR8が
Cl、R,がNHI、R4がHである)を使用すること
がもつとも好ましい。
よび■から成る群から選ばれ、R3はN Ht、NO3
,0H1ClおよびHから成る群から選ばれ、R4はC
l、OCH3およびHから成る群から選ばれる。好まし
くは、R1およびR5は両基とらClまたはBrである
ごとである) 存在するホルモンの量はカルス形成を確保するのに十分
な量である。一般的に、5〜60μM、好ましくは5〜
30μMで十分である。第一培地のホルモンとして5〜
30μMクロラムベン(すなイつち、R1およびR8が
Cl、R,がNHI、R4がHである)を使用すること
がもつとも好ましい。
アブシジン酸の使用が2〜3%蔗糖におけるカルス誘導
の頻度を増大することがまた見出されている。0.1〜
2.0μM好ましくは0.1〜1,08Mを用いること
かできる。培地はビタミンおよびホルモンを除いた全て
の成分を加圧滅菌により滅菌する。ビタミンおよびホル
モンは加圧滅菌した培地への添加に先立って、微孔性膜
濾過により滅菌される。
の頻度を増大することがまた見出されている。0.1〜
2.0μM好ましくは0.1〜1,08Mを用いること
かできる。培地はビタミンおよびホルモンを除いた全て
の成分を加圧滅菌により滅菌する。ビタミンおよびホル
モンは加圧滅菌した培地への添加に先立って、微孔性膜
濾過により滅菌される。
クロラムベンをホルモンとして用いると80〜10O%
の開始頻度が次の遺伝子型に可能であることが見出され
ている。A188、A632、A619、B14、B3
7、B68、B73、B84、B79、C103,0M
105、B98、Mo17、MS71.R168、Va
26、Va59、Wf9、W64A、Wl17およびW
182Bn。
の開始頻度が次の遺伝子型に可能であることが見出され
ている。A188、A632、A619、B14、B3
7、B68、B73、B84、B79、C103,0M
105、B98、Mo17、MS71.R168、Va
26、Va59、Wf9、W64A、Wl17およびW
182Bn。
未分化胚を第−培地上に置き、2〜4週間好ましくは2
〜3週間1日当り16時間の光周期で拡散光により培養
する。この期間に、胚は脱分化およびカルス形成を受け
る。第一培地における未分化胚の培養後、以下、第二培
地と称する維持培地上にカルスを移し継代培養する。カ
ルスは4〜8週間拡散光下に第二培地で継代培養する。
〜3週間1日当り16時間の光周期で拡散光により培養
する。この期間に、胚は脱分化およびカルス形成を受け
る。第一培地における未分化胚の培養後、以下、第二培
地と称する維持培地上にカルスを移し継代培養する。カ
ルスは4〜8週間拡散光下に第二培地で継代培養する。
所望により、カルスより長期間第二培地で維持すること
ができる。2〜4週間後カルスは新鮮な第二培地に移す
。形成した根はすべてのカルスの各継代の際に除去され
る。
ができる。2〜4週間後カルスは新鮮な第二培地に移す
。形成した根はすべてのカルスの各継代の際に除去され
る。
第二培地はカルスを維持するのに十分な量の無機塩、ビ
タミン、蔗糖およびホルモンから成っている。無機塩、
ビタミンおよびホルモンは第一培地で述べたものから選
ぶことができる。第二培地に使用する無機塩、ビタミン
およびホルモンは第一培地と同じものであってもまたは
異なったらのてあってら韮いが、同じ培地を用いるのが
好ましい。第一培地の場合と同様に、1培地の機能に悪
影響がない無機塩類は用いることができる。蔗糖の濃度
は1.5〜6%で、好まし、くけ3%である。
タミン、蔗糖およびホルモンから成っている。無機塩、
ビタミンおよびホルモンは第一培地で述べたものから選
ぶことができる。第二培地に使用する無機塩、ビタミン
およびホルモンは第一培地と同じものであってもまたは
異なったらのてあってら韮いが、同じ培地を用いるのが
好ましい。第一培地の場合と同様に、1培地の機能に悪
影響がない無機塩類は用いることができる。蔗糖の濃度
は1.5〜6%で、好まし、くけ3%である。
ホルモンは第一培地で使用したしのと同じ一般式(1)
のものである。好ましくは、ホルモンはクロラムベンお
よびジカムバ(すなわち、R1およびR3かC1l!、
R2かHSR,がOCH3のものである)。
のものである。好ましくは、ホルモンはクロラムベンお
よびジカムバ(すなわち、R1およびR3かC1l!、
R2かHSR,がOCH3のものである)。
一般に、5〜15μM1好ましくは5〜!0μMで十分
である。最も好ましくは、クロラムベンは5〜10μM
の量で使用され、5μMが最適である。ゲルライトTM
は培地を固化するために用いられる。0.18%の濃度
が十分である。培地は、5.5〜6.0のpHをもって
おり、5.8が好ましい。培地は先に記述したよう(ζ
滅菌される。
である。最も好ましくは、クロラムベンは5〜10μM
の量で使用され、5μMが最適である。ゲルライトTM
は培地を固化するために用いられる。0.18%の濃度
が十分である。培地は、5.5〜6.0のpHをもって
おり、5.8が好ましい。培地は先に記述したよう(ζ
滅菌される。
維持のための蔗糖濃度は、直ちにまたは段階的に所望の
レベルに低めることができる。たとえば、9%蔗糖を含
有する第一培地からのカルスは3%蔗糖を含有する第二
培地に継代することができる。
レベルに低めることができる。たとえば、9%蔗糖を含
有する第一培地からのカルスは3%蔗糖を含有する第二
培地に継代することができる。
別法として、カルスを先ず6%蔗糖を含有する第二培地
に継代し、2〜4週間培養し、次いで3%蔗糖を含んで
いる第二培地に継代することができろ。
に継代し、2〜4週間培養し、次いで3%蔗糖を含んで
いる第二培地に継代することができろ。
組織の成長を緩慢にするために、第二培地にアブシジン
酸を添加することがまた好ましい場合がある。このこと
ばカルスの長期間の維持に好ましい。アブシジン酸を用
いる場合、0.1〜2.0μM1好ましくは0」〜l、
0μMで用いる。
酸を添加することがまた好ましい場合がある。このこと
ばカルスの長期間の維持に好ましい。アブシジン酸を用
いる場合、0.1〜2.0μM1好ましくは0」〜l、
0μMで用いる。
第二培地におけるカルスの培養後、以下第三培地と称す
る再生培地にカルスを移し、散乱光で培養する。第三培
地は第一培地と同じまたは異なった無機塩類およびでビ
タミンを含有することができる。好ましくは、同じ培地
が使用される。第一培地におけると同様に、培地の機能
に悪影響がない無機塩の種々の組合せが利用される。加
えるに、この培地は新芽形成を確保するためにホルモン
を含有することができる。第一培地および第二培地に使
用されるのと同じ一般式(I)のホルモンが、単独また
は2.4−Dとの混合で新芽および板形成を推進するの
に有用であることが見出されている。2.4−Dは板形
成を推進するために添加することができる。一般的に、
θ〜5μM1好ましくはlμMの式(1)のホルモンが
単独または0〜0.1μM、2.4−Dとの混合物で用
いられる。
る再生培地にカルスを移し、散乱光で培養する。第三培
地は第一培地と同じまたは異なった無機塩類およびでビ
タミンを含有することができる。好ましくは、同じ培地
が使用される。第一培地におけると同様に、培地の機能
に悪影響がない無機塩の種々の組合せが利用される。加
えるに、この培地は新芽形成を確保するためにホルモン
を含有することができる。第一培地および第二培地に使
用されるのと同じ一般式(I)のホルモンが、単独また
は2.4−Dとの混合で新芽および板形成を推進するの
に有用であることが見出されている。2.4−Dは板形
成を推進するために添加することができる。一般的に、
θ〜5μM1好ましくはlμMの式(1)のホルモンが
単独または0〜0.1μM、2.4−Dとの混合物で用
いられる。
ホルモンを存在させる場合には、クロラムベンを使用す
ることが好ましい。 : 第三培地が1.5〜6%蔗糖、、好ましくは3%、およ
び第一培地と同じゲル化物質の量を含有し、同じpHで
あることが好ましい:。この培地はまた、先に述べたの
と同じ加圧滅菌および膜濾過により滅菌される。
ることが好ましい。 : 第三培地が1.5〜6%蔗糖、、好ましくは3%、およ
び第一培地と同じゲル化物質の量を含有し、同じpHで
あることが好ましい:。この培地はまた、先に述べたの
と同じ加圧滅菌および膜濾過により滅菌される。
第三培地における植物再生の効果を高めるため、維持さ
れているカルスを第三培地に継代する1〜2週間前に高
濃度の蔗糖をもう新鮮な第二培地に先ず継代することが
好ましい。:たとえば、カルスが3%蔗糖をもつ第二培
地において維持されている場合、カルスは第三培地に継
代される前に、6%蔗糖をもつ新鮮な第二培地に先ず継
代することができる。
れているカルスを第三培地に継代する1〜2週間前に高
濃度の蔗糖をもう新鮮な第二培地に先ず継代することが
好ましい。:たとえば、カルスが3%蔗糖をもつ第二培
地において維持されている場合、カルスは第三培地に継
代される前に、6%蔗糖をもつ新鮮な第二培地に先ず継
代することができる。
一旦新芽および根が形成しさえすれば、新芽および根は
土壌に継代することができるが、また所望により以下第
四培地と称する維持培地に継代し、拡散光で培養するこ
とができる。第四培地は、1〜3%、好ましくは2%蔗
糖を含有することを除いて第三培地と同一である。この
培地にはホルモンを用いないことが好ましい。ホルモン
を用いるとすれば、0〜1.08Mの式(1)のホルモ
ンおよび好ましくはθ〜0.1μM、2.4−Dと混合
するかまたはしないジカムバまたはクロラムベンを使用
することができる。
土壌に継代することができるが、また所望により以下第
四培地と称する維持培地に継代し、拡散光で培養するこ
とができる。第四培地は、1〜3%、好ましくは2%蔗
糖を含有することを除いて第三培地と同一である。この
培地にはホルモンを用いないことが好ましい。ホルモン
を用いるとすれば、0〜1.08Mの式(1)のホルモ
ンおよび好ましくはθ〜0.1μM、2.4−Dと混合
するかまたはしないジカムバまたはクロラムベンを使用
することができる。
根が形成した後、苗は土壌に継代される準備をする。十
分株化した根をもつ新芽は試験管から移 ′され、ゲル
ライトTMは洗い落とされる。植物は植木鉢用の土壌2
に対してヒル石1の割合の土壌に継代され、高湿度の部
屋で湿気を保たれる。植物は次いで大きな鉢に移植され
る。
分株化した根をもつ新芽は試験管から移 ′され、ゲル
ライトTMは洗い落とされる。植物は植木鉢用の土壌2
に対してヒル石1の割合の土壌に継代され、高湿度の部
屋で湿気を保たれる。植物は次いで大きな鉢に移植され
る。
本法はトウモロコシの多数の栽培変種の組織から苗を再
生するのに有用である。本法は先行技術の方法が植物を
再生するのに成功していない苗を再生するのに殊に有用
である。これらの栽培変種の例はB73、A632、C
Ml 05、B37、B84、B14、Mo17、R1
68を包含する。
生するのに有用である。本法は先行技術の方法が植物を
再生するのに成功していない苗を再生するのに殊に有用
である。これらの栽培変種の例はB73、A632、C
Ml 05、B37、B84、B14、Mo17、R1
68を包含する。
これらの栽培変種に加えて、本法は以前に先行技術によ
り再生されている栽培変種を再生するのにも有用である
。これらの栽培変種の例はMS71、A188、PA9
1.A641SWl 17を包含かる。
り再生されている栽培変種を再生するのにも有用である
。これらの栽培変種の例はMS71、A188、PA9
1.A641SWl 17を包含かる。
トウモロコシの各種の栽培変種の再生についての先行技
術系のもつ第一の障害はカルス形成を誘導するのに無力
であることである。一般的にカルスがトウモロコシ組織
から誘導されることができるならば、カルスはついで植
物を再生する段階に付することかできた。すなわち、カ
ルス形成を誘導する技術はトウモロコシの数種の栽培変
種の再生に制限を加える段階である。本発明はカルス形
成および植物再生を包含する方法を開示する。この植物
再生の方法は、一旦カルス組織が形成されたならば、全
てのトウモロコシ栽培変種に適用できる。したがって、
次に示す実施例において、一般的方法をB73、B37
、A619、A632、Mo17およびMS71を含め
たトウモロコシの数種の栽培変種について示した。各栽
培変種のカルスはB73からのカルスと同じ一般的外見
を示す。植物はここで記述された方法に従って、これら
の栽培変種の各々から得られることができる。
術系のもつ第一の障害はカルス形成を誘導するのに無力
であることである。一般的にカルスがトウモロコシ組織
から誘導されることができるならば、カルスはついで植
物を再生する段階に付することかできた。すなわち、カ
ルス形成を誘導する技術はトウモロコシの数種の栽培変
種の再生に制限を加える段階である。本発明はカルス形
成および植物再生を包含する方法を開示する。この植物
再生の方法は、一旦カルス組織が形成されたならば、全
てのトウモロコシ栽培変種に適用できる。したがって、
次に示す実施例において、一般的方法をB73、B37
、A619、A632、Mo17およびMS71を含め
たトウモロコシの数種の栽培変種について示した。各栽
培変種のカルスはB73からのカルスと同じ一般的外見
を示す。植物はここで記述された方法に従って、これら
の栽培変種の各々から得られることができる。
以下、本発明をさらに次の実施例によって説明するが、
これらは本発明を制限するものではない。
これらは本発明を制限するものではない。
これらの実施例において、照明下の培養は特に断らなけ
れば、25℃で1日当り16時間の光周期をもつ拡散光
での培養を指す。8時間の暗段階の間、温度は特に断ら
なければ25℃である。
れば、25℃で1日当り16時間の光周期をもつ拡散光
での培養を指す。8時間の暗段階の間、温度は特に断ら
なければ25℃である。
実施例1
溶液の調製
次の原液または溶液は、以下さらに詳細に記述される培
地作製用に調製した。
地作製用に調製した。
!、無機塩
A、燐酸−カリウム
200X原液は蒸留イオン交換水1003112中に8
9燐酸二カ・功ムを溶解して調製した。
9燐酸二カ・功ムを溶解して調製した。
B、他の無機塩
10x原液は蒸留イオン交換水3600m12中に7.
409硫酸マグネシウム7水化物、6.649塩化カル
シウム2水化物、113.29硝酸カリウム、18゜5
2g硫酸アンモニウム、64肩9ホウ酸、132M9−
水酸化硫酸マンガン、60次9硫酸亜鉛7水化物、33
.2tttgヨウ化カリウム、10319モリブデン酸
(VI)ナトリウム2水化物、10zg硫酸銅(■)5
水化物および1 、 Otttg塩化コバルト6水化物
を溶解して調製した。1.112g硫酸鉄(II)7水
化物および1.4929エチレンジアミン四酢酸ジナト
リウムを加熱により蒸留イオン交換水200m(l中に
別個に溶解し、次に攪拌によりゆっくり混合した。この
混合物は次いで塩の残りに添加した。基原液は100m
(/量づつに分割し、使用するまで冷凍した。
409硫酸マグネシウム7水化物、6.649塩化カル
シウム2水化物、113.29硝酸カリウム、18゜5
2g硫酸アンモニウム、64肩9ホウ酸、132M9−
水酸化硫酸マンガン、60次9硫酸亜鉛7水化物、33
.2tttgヨウ化カリウム、10319モリブデン酸
(VI)ナトリウム2水化物、10zg硫酸銅(■)5
水化物および1 、 Otttg塩化コバルト6水化物
を溶解して調製した。1.112g硫酸鉄(II)7水
化物および1.4929エチレンジアミン四酢酸ジナト
リウムを加熱により蒸留イオン交換水200m(l中に
別個に溶解し、次に攪拌によりゆっくり混合した。この
混合物は次いで塩の残りに添加した。基原液は100m
(/量づつに分割し、使用するまで冷凍した。
2、ビタミン
ビタミンの100+[原液は、蒸留イオン交換水100
zi7中に109ミオイノシトール、50巧ニコチン酸
、200r9グリシン、5019塩酸ピリドキシン、1
00R9塩酸チアミンおよび25μgパントテン酸カル
シウムを溶解して調製し、原液を調製するために、蒸留
イオン交換水で10倍に希釈した。100JII2アリ
コートを作り使用するまで暗容器に凍結した。
zi7中に109ミオイノシトール、50巧ニコチン酸
、200r9グリシン、5019塩酸ピリドキシン、1
00R9塩酸チアミンおよび25μgパントテン酸カル
シウムを溶解して調製し、原液を調製するために、蒸留
イオン交換水で10倍に希釈した。100JII2アリ
コートを作り使用するまで暗容器に凍結した。
3、ホルモン
A、ジカムバA
1119/IIQ原液は、ベルシコル・ケミカルズ(V
elsicol Chenifcals)から得た0、
21R(ジカムバを蒸留イオン交換水で100m12に
希釈することにより調製した。この溶液は冷蔵庫に貯蔵
した。
elsicol Chenifcals)から得た0、
21R(ジカムバを蒸留イオン交換水で100m12に
希釈することにより調製した。この溶液は冷蔵庫に貯蔵
した。
B、2.4−D
0 、5 mM原液ハ0 、5〜1 、 OR(11、
5N +、: OHに11.05192.4−Dを溶解
して調製し、蒸留イオン交換水で100m12に希釈し
た。pHは1.ON HClで5 、8 t::調製し
、溶液は冷蔵庫に貯蔵した。
5N +、: OHに11.05192.4−Dを溶解
して調製し、蒸留イオン交換水で100m12に希釈し
た。pHは1.ON HClで5 、8 t::調製し
、溶液は冷蔵庫に貯蔵した。
C,クロラムベン
0.55mM原液はクロラムベン10.30戻りを用い
て2.4−Dで記述したように調製した。
て2.4−Dで記述したように調製した。
D、ジカムバ、B
0.55μM原液はジカムバ11.05mgを用い□
て2,4−Drm己述したように調製した。
E、その他1
ここで記述した他のホルモンのそれぞれの0゜5a+M
原液は、+ルモンの適量を用いて2.4−Dで記述した
のと同様に調製した。
原液は、+ルモンの適量を用いて2.4−Dで記述した
のと同様に調製した。
実施例2 ′
培地の調製・
1、第一培地またはカルス誘導培地
第一培地は蒸留イオン交換水800zQに蔗糖および1
0X原Q100m(を添加するこ°とにより調製した。
0X原Q100m(を添加するこ°とにより調製した。
次いで、200!硫酸−カリウム原液′5zQを添加し
、容量を蒸留イオン交換水で1f2にした。pHは1.
ON KOHで5.95に調製した。
、容量を蒸留イオン交換水で1f2にした。pHは1.
ON KOHで5.95に調製した。
p)(は加圧滅菌の間に通常起こる約0.15の低下に
対する補正のために高めに調製し、ゲルライトTM1.
8gを添加し、混合物を(15ボンド/平方インチ)で
15分間加圧滅菌した。100Xビタミン原液10TI
QおよびジカムバA原液2M&は、0.2μMゲルマン
・フィルターを通して濾過により滅菌し、ついで冷却し
つつある培地に加え、その後、ベトリ皿または試験管に
分法した。
対する補正のために高めに調製し、ゲルライトTM1.
8gを添加し、混合物を(15ボンド/平方インチ)で
15分間加圧滅菌した。100Xビタミン原液10TI
QおよびジカムバA原液2M&は、0.2μMゲルマン
・フィルターを通して濾過により滅菌し、ついで冷却し
つつある培地に加え、その後、ベトリ皿または試験管に
分法した。
ジカムバの種々の濃度をもつ第一培地を調製するために
原液の適量を用いた。たとえば、3mg/Qジカムバを
もつ第一培地を調製するため、ジヵムバ原液3i&を用
いるが、または10μMを望むならば、ジカムバB原液
20rtr(lを用いる。
原液の適量を用いた。たとえば、3mg/Qジカムバを
もつ第一培地を調製するため、ジヵムバ原液3i&を用
いるが、または10μMを望むならば、ジカムバB原液
20rtr(lを用いる。
種々のホルモンをもつ第一培地を調製するため、ホルモ
ン原液の適量を用いた。たとえば、10μMクロラムベ
ンをもつ第一培地を調製するため、クロラムベン原液2
0rttQを用いた。
ン原液の適量を用いた。たとえば、10μMクロラムベ
ンをもつ第一培地を調製するため、クロラムベン原液2
0rttQを用いた。
2、第二培地または維持培地
第二培地は、ジカムバA原液1g(を用いる以外は、第
一培地て記述したのと同様に調製した。ジカムバの他の
濃度をもつ第二培地は、先に記述したように調製した。
一培地て記述したのと同様に調製した。ジカムバの他の
濃度をもつ第二培地は、先に記述したように調製した。
種々のホルモンをもつ第二培地は先に記述したのと類似
の方法で調製した。
の方法で調製した。
3、第三培地または再生培地
第三培地は、・(a)ジカムバ原液0 、13112を
使用し、(b)2.4−D原液0 、2 mQを200
x燐酸−カリウムの添加後、:培地に添加したことを除
いて、第一培地で先に記述したように調製した。ホルモ
ンの種々の濃度をもち、種々のホルモンを含有するか、
または単独でジカムバまたはクロラムベンまたはジカム
バおよびクロラムベンの混合物を含有する第三培地を調
製するために、原液の適量を先に記述されたように添加
した。
使用し、(b)2.4−D原液0 、2 mQを200
x燐酸−カリウムの添加後、:培地に添加したことを除
いて、第一培地で先に記述したように調製した。ホルモ
ンの種々の濃度をもち、種々のホルモンを含有するか、
または単独でジカムバまたはクロラムベンまたはジカム
バおよびクロラムベンの混合物を含有する第三培地を調
製するために、原液の適量を先に記述されたように添加
した。
4 第四培地または成熟培地
第四培地は、(a)蔗11209、(b)ジカムバ原液
0 、1 x(lを使用したことを除いて、第一培地で
先に記述したように調製した。2.4−Dと共に式(1
)のホルモンをもつ第四培地は第三培地と類似の方法で
調製じた。
0 、1 x(lを使用したことを除いて、第一培地で
先に記述したように調製した。2.4−Dと共に式(1
)のホルモンをもつ第四培地は第三培地と類似の方法で
調製じた。
χ1鯉11
トウモロコシの再生
未分化胚を受粉後10〜11日のトウモロコシ、ゼア・
メイズL(Zea mays L)、 R73、R
37、A632、A619、Mo17またはMS71の
穂軸から分離した。各穂軸を採集し、表面を30%クロ
ロクス(商標、C1orox)[クロロクス・カンパニ
ー、オークランド、カリフォルニアコ漂白剤(1,6%
次亜塩素酸ナトリウム)およびリチノクス(商標、Li
qUinOX耳アルコックス・インコーポレイテッド、
、853プロトウェイ、ニューヨーク、ニューヨーク]
洗浄剤を含有する溶液で15分間殺菌した。穂軸を無菌
イオン交換水で4時間水洗した。未分化胚は、メスで各
校の頂端を薄切りすることおよび胚乳をすくうことによ
り分離した、ついで、未分化胚を取り出し、ペトリ皿に
入れた第一培地上に胚軸が培地と接触するように置いた
。すなわち、杯盤側が上であった。第一培地は2xq/
Qジカムバまたは2w9/(lクロラムベンを使用して
、府の実施例に記述したように調製した。ベトリ皿を照
明下に置き、4週間培養した。
メイズL(Zea mays L)、 R73、R
37、A632、A619、Mo17またはMS71の
穂軸から分離した。各穂軸を採集し、表面を30%クロ
ロクス(商標、C1orox)[クロロクス・カンパニ
ー、オークランド、カリフォルニアコ漂白剤(1,6%
次亜塩素酸ナトリウム)およびリチノクス(商標、Li
qUinOX耳アルコックス・インコーポレイテッド、
、853プロトウェイ、ニューヨーク、ニューヨーク]
洗浄剤を含有する溶液で15分間殺菌した。穂軸を無菌
イオン交換水で4時間水洗した。未分化胚は、メスで各
校の頂端を薄切りすることおよび胚乳をすくうことによ
り分離した、ついで、未分化胚を取り出し、ペトリ皿に
入れた第一培地上に胚軸が培地と接触するように置いた
。すなわち、杯盤側が上であった。第一培地は2xq/
Qジカムバまたは2w9/(lクロラムベンを使用して
、府の実施例に記述したように調製した。ベトリ皿を照
明下に置き、4週間培養した。
4週間後、各カルスを第二培地に継代したが、第二培地
は23!9/(!ジカムバまたは2所/σクロラムベン
を使用して先の実施例に記述したように調製しペトリ皿
に入れた。カルスは3週間後新鮮な培地に継代すること
により照明下6週間この培地で培養した。各継代におい
て形成した根はいずれも各カルスから除去した。
は23!9/(!ジカムバまたは2所/σクロラムベン
を使用して先の実施例に記述したように調製しペトリ皿
に入れた。カルスは3週間後新鮮な培地に継代すること
により照明下6週間この培地で培養した。各継代におい
て形成した根はいずれも各カルスから除去した。
各カルスを次に第三培地に継代した。第三培地は0.1
m9/(lのジカムバまたはクロラムベンおよび0.1
μM2.4−Dを用いて、実施例2に記述したように調
製した。カルスは5日間照明下第三培地上で培養した。
m9/(lのジカムバまたはクロラムベンおよび0.1
μM2.4−Dを用いて、実施例2に記述したように調
製した。カルスは5日間照明下第三培地上で培養した。
カルスは分化して新芽および根を形成した。
根をもつ新芽は次に培養管に入れた第四培地に継代し、
第四培地は0.1mg/Qのジカムバまたはクロラムベ
ンを用いて先に記述したように調製した。根をもつ新芽
は1〜2週間照明下で培養したが、その間にさらに根が
生成した。
第四培地は0.1mg/Qのジカムバまたはクロラムベ
ンを用いて先に記述したように調製した。根をもつ新芽
は1〜2週間照明下で培養したが、その間にさらに根が
生成した。
苗は温室中の土壌に継代した。十分株化された根をもつ
新芽は試験管から移し、ゲルライトTMを十分に水道水
で洗い落とした。苗を植木鉢用の土壌2にヒル石1の割
合で含有している植木鉢に入れた。植木鉢は高湿度の箱
に入れ、5日間保湿した。ついで箱のフタを取り除いた
。さらに3日後、植物を約30センチ(12インチ)径
の鉢に移植した。植物は1週間当り2〜3回給水し、2
週間毎に施肥した。植物がジカムバまたはクロラムベン
を使用している各再生系からの栽培変種から得られた。
新芽は試験管から移し、ゲルライトTMを十分に水道水
で洗い落とした。苗を植木鉢用の土壌2にヒル石1の割
合で含有している植木鉢に入れた。植木鉢は高湿度の箱
に入れ、5日間保湿した。ついで箱のフタを取り除いた
。さらに3日後、植物を約30センチ(12インチ)径
の鉢に移植した。植物は1週間当り2〜3回給水し、2
週間毎に施肥した。植物がジカムバまたはクロラムベン
を使用している各再生系からの栽培変種から得られた。
実施例4
トウモロコシの再生
未分化胚をトウモロコシの次の栽培変種から分離し、蔗
糖が3%または9%であった点以外は、実施例3に記述
したように第一培地上に置いた。
糖が3%または9%であった点以外は、実施例3に記述
したように第一培地上に置いた。
ゼア・メイズL、 (Zea maysL、 )A6
32、A619.0M105、R37、R84、B10
、Mo17、R168、MS71およびW117゜カル
スが得られ、各栽培変種とも実施例3のカルスと同じか
またはよりよい一般的外観を示した。
32、A619.0M105、R37、R84、B10
、Mo17、R168、MS71およびW117゜カル
スが得られ、各栽培変種とも実施例3のカルスと同じか
またはよりよい一般的外観を示した。
実施例3の一般的方法に従って、植物が栽培変種A63
2、A619、R37、R84、Mo17、MS71お
よびA641について得られた。植物は他の栽培変種に
ついても同じ一般的方法により得られろことができた。
2、A619、R37、R84、Mo17、MS71お
よびA641について得られた。植物は他の栽培変種に
ついても同じ一般的方法により得られろことができた。
実施例5
トウモロコシの再生
未分化胚を実施例3に記述したようにゼア・メイズL、
(Zea maysL、 )B 37同じMS71
から分離した。胚は10μMクロラムベンまたは10μ
Mジカムバおよび(a)3%、(b)6%。(c)9%
または(d)12%の蔗糖を含有している第一培地上に
置いた。カルスは3%蔗糖での837を除いて、各例と
も実施例3のカルスと同じ一般的外観を示した。9%ま
たは12%蔗糖をもつ第一培地はカルス誘導に特によい
ことが見出された。実施例3の一般的方法に従って、植
物はクロラムベンまたはジカムバを使用して各栽培変種
について得られた。
(Zea maysL、 )B 37同じMS71
から分離した。胚は10μMクロラムベンまたは10μ
Mジカムバおよび(a)3%、(b)6%。(c)9%
または(d)12%の蔗糖を含有している第一培地上に
置いた。カルスは3%蔗糖での837を除いて、各例と
も実施例3のカルスと同じ一般的外観を示した。9%ま
たは12%蔗糖をもつ第一培地はカルス誘導に特によい
ことが見出された。実施例3の一般的方法に従って、植
物はクロラムベンまたはジカムバを使用して各栽培変種
について得られた。
実施例6
トウモロコシの再生
未分化胚を実施例3および実施例4に示したトウモロコ
シ栽培変種から実施例3で記述した上うに分離した。胚
を108Mクロラムベンまたは10μMジカムバおよび
9%または3%の蔗糖を含有している第−培地上に置い
た。カルスは3%蔗糖での837を除いて各栽培変種に
ついて得られ、実施例3のカルスと同じ一般的外観を示
した。実施例3の一般的方法に従って、植物がクロラム
ベンまたはジカムバを使用して得られた。
シ栽培変種から実施例3で記述した上うに分離した。胚
を108Mクロラムベンまたは10μMジカムバおよび
9%または3%の蔗糖を含有している第−培地上に置い
た。カルスは3%蔗糖での837を除いて各栽培変種に
ついて得られ、実施例3のカルスと同じ一般的外観を示
した。実施例3の一般的方法に従って、植物がクロラム
ベンまたはジカムバを使用して得られた。
実施例7
トウモロコシの再生
実施例3〜6の方法に従って、カルスをホルモンの下記
量(μM)を含有している培地でのゼア・メイズ(Ze
a mays)B 73、Pa7およびMS71培養
物の未分化胚から創生した: ホルモン 873 837 M871
2.5ジクロロ安息香酸 5−15 5−15
t。
量(μM)を含有している培地でのゼア・メイズ(Ze
a mays)B 73、Pa7およびMS71培養
物の未分化胚から創生した: ホルモン 873 837 M871
2.5ジクロロ安息香酸 5−15 5−15
t。
2.5ジブロモ安息香酸 to to t
。
。
3−アミノ−2,4−5−605−605−60ジクロ
ロ安息香酸 3−ニトロ−2,5−5−155−1510−20ジク
ロロ安息香酸 2.3.5−トリクロロ 5−15 5−15
10安息香酸 2−メトキシ−3,6−5−605−605−60ジク
ロロ安息香酸 3−ニトロ−2,5−ジクロロ安息香酸の存在下でのB
73およびB37栽培変種を除いて、カルスが上記ホル
モンの濃度で各栽培変種について得られた。実施例3の
一般的方法に従って、植物が各栽培変種について得られ
た。
ロ安息香酸 3−ニトロ−2,5−5−155−1510−20ジク
ロロ安息香酸 2.3.5−トリクロロ 5−15 5−15
10安息香酸 2−メトキシ−3,6−5−605−605−60ジク
ロロ安息香酸 3−ニトロ−2,5−ジクロロ安息香酸の存在下でのB
73およびB37栽培変種を除いて、カルスが上記ホル
モンの濃度で各栽培変種について得られた。実施例3の
一般的方法に従って、植物が各栽培変種について得られ
た。
X鬼氏l
トウモロコシの再生
実施例3〜6の方法に従って、カルスをゼア・メイズ(
Zea l1lays)B 73、Pa4、Mo17
、A619、MS71およびPa91の未分化胚から創
生し、植物が改良型N6無機塩の代りにMS無機塩を含
有した培地において再生された。 ”実施例9 トウモロコシの再生 実施例3〜6の方法に従って、カルスをゼア・メイズ(
Zea ll1ays)B 73、Pa4、Mo17
、A619、MS71.C103、Pa7、Pa91お
よび0h43の未分化胚から創生し、植物が改良型N6
無機塩の代りにN6無機塩を含有した培地において再生
された。
Zea l1lays)B 73、Pa4、Mo17
、A619、MS71およびPa91の未分化胚から創
生し、植物が改良型N6無機塩の代りにMS無機塩を含
有した培地において再生された。 ”実施例9 トウモロコシの再生 実施例3〜6の方法に従って、カルスをゼア・メイズ(
Zea ll1ays)B 73、Pa4、Mo17
、A619、MS71.C103、Pa7、Pa91お
よび0h43の未分化胚から創生し、植物が改良型N6
無機塩の代りにN6無機塩を含有した培地において再生
された。
以上発明を特別な具体例に基づいて記載したが、発明を
さらに修正することが可能であることはいうまでもない
。本発明は本発明の原理な基づくあらゆる変形、用途お
よび適応を包含することを意図するものであり、当技術
範囲内の既知および常用実施形態を越えないようなあら
ゆる変更方法を包含するものである。
さらに修正することが可能であることはいうまでもない
。本発明は本発明の原理な基づくあらゆる変形、用途お
よび適応を包含することを意図するものであり、当技術
範囲内の既知および常用実施形態を越えないようなあら
ゆる変更方法を包含するものである。
特許出願人 サンジエン・チクノロシーズ・インコーホ
レイテッド
レイテッド
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)下記の段階を含む細胞または組織からトウモロコ
シ苗を再生する方法。 (a)カルス形成のため、無機塩類、ビタミン類、蔗糖
および(i)式( I )のホルモン ▲数式、化学式、表等があります▼( I ) (式中、R_1およびR_2は同一基で、F、Cl、B
rおよびIから成る群から選ばれ、R_2はNH_2、
NO_3、OH、ClおよびHから成る群から選ばれ、
R_4はCl、OCH_3およびHから成る群から選ば
れる)および(ii)式( I )のホルモンおよびアブ
シジン酸の混合物から成る群から選ばれるホルモンを含
む第一培地でトウモロコシ植物から得た組織を培養し、 (b)カルス維持のため、無機塩類、ビタミン類、蔗糖
および(i)式( I )のホルモンおよび(ii)式(
I )のホルモンおよびアブシジン酸の混合物から成る
群から選ばれるホルモンを含む第二培地で上記のカルス
を継代培養し、 (c)新芽および根を形成して植物を得るため、無機塩
類、ビタミン類および蔗糖を含む第三培地で上記のカル
スを継代培養すること。 (2)R_1およびR_3が同一基で、ClおよびBr
から選ばれる特許請求の範囲第1項記載の方法。 (3)組織が未分化胚から得られる特許請求の範囲第1
項または第2項記載の方法。 (4)新芽および根が無機塩類、ビタミン類および蔗糖
を含む第四培地で継代培養される特許請求の範囲第1〜
3項のいずれか1項記載の方法。 (5)第三培地がさらに(i)式( I )のホルモンお
よび(ii)式( I )のホルモンおよび2,4−D(
2,4−ジクロロフェノキシ酢酸)の混合物から成る群
から選ばれるホルモンを含む特許請求の範囲第1〜3項
のいずれか1項記載の方法。 (6)第四培地がさらに(i)式( I )のホルモンお
よび(ii)式( I )のホルモンおよび2,4−Dの
混合物から成る群から選ばれるホルモンを含む前述の特
許請求の範囲第4項または第5項記載の方法。 (7)培地中の上記のホルモンの濃度が (1)第一培地中では5〜10μMの式( I )のホル
モン、または5〜10μMの式( I )のホルモンおよ
び0.1〜1.0μMのアブシジン酸の混合物 (2)第二培地中では5〜15μMの式( I )のホル
モン、または5〜15μMの式( I )のホルモンおよ
び0.1〜1.0μMのアブシジン酸の混合物 である特許請求の範囲第1〜6項のいずれか1項記載の
方法。 (8)培地中のホルモンの濃度が (1)第一培地中では5〜15μMの式( I )のホル
モン、または5〜15μMの式( I )のホルモンおよ
び0.1〜1.0μMのアブシジン酸の混合物 (2)第二培地中では5〜10μMの式( I )のホル
モン、または5〜15μMの式( I )のホルモンおよ
び0.1〜1.0μMのアブシジン酸の混合物 (3)第三培地中では約0.1〜5.0μMの式( I
)のホルモン、または約5〜15μMの式( I )のホ
ルモンおよび約0.1μMの2,4−Dの混合物 である特許請求の範囲第1〜7項のいずれか1項記載の
方法。 (9)培地中のホルモンの濃度が (1)第一培地中では5〜15μMの式( I )のホル
モン、または5〜15μMの式( I )のホルモンおよ
び0.1〜1.0μMのアブシジン酸の混合物 (2)第二培地中では5〜10μMの式( I )のホル
モン、または5〜15μMの式( I )のホルモンおよ
び0.1〜1.0μMのアブシジン酸の混合物 (3)第四培地中、約0.1〜1.0μMの式( I )
のホルモン、または約0.1〜1.0μMの式( I )
のホルモンおよび約0.1μMの2,4−Dの混合物 である特許請求の範囲第1〜8項のいずれか1項記載の
方法。 (10)培地中のホルモンの濃度が (1)第一培地中では5〜15μMの式( I )のホル
モン、または5〜15μMの式( I )のホルモンおよ
び0.1〜1.0μMのアブシジン酸の混合物 (2)第二培地中では5〜10μMの式( I )のホル
モン、または5〜15μMの式( I )のホルモンおよ
び0.1〜1.0μMのアブシジン酸の混合物 (3)第三培地中では約0.1〜5.0μMの式( I
)のホルモン、または約0.1〜5.0μMの式( I
)のホルモンおよび約0.1μMのアブシジン酸の混合
物 (4)第四培地中では約0.1〜1.0μMの式( I
)のホルモン、または約0.1〜1.0μMの式( I
)のホルモン、および約0.1μMのアブシジン酸の混
合物 である特許請求の範囲第1〜9項のいずれか1項記載の
方法。 (11)蔗糖の濃度が (1)第一培地中では1.5〜12% (2)第二培地中および第三培地中では1.5〜6% である特許請求の範囲第1〜10項のいずれか1項記載
の方法。 (12)蔗糖の濃度が (1)第一培地中では1.5〜12% (2)第二培地中および第三培地中では1.5〜6% (3)第四培地中では1〜3% である特許請求の範囲第1〜11項のいずれか1項記載
の方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US06/865,431 US4830966A (en) | 1984-09-07 | 1986-05-21 | Process for regenerating corn |
| US865431 | 1997-05-29 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62272917A true JPS62272917A (ja) | 1987-11-27 |
Family
ID=25345500
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP62015039A Pending JPS62272917A (ja) | 1986-05-21 | 1987-01-22 | トウモロコシを再生する方法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4830966A (ja) |
| EP (1) | EP0246527A3 (ja) |
| JP (1) | JPS62272917A (ja) |
| AU (1) | AU594408B2 (ja) |
| CA (1) | CA1270648A (ja) |
Families Citing this family (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4665030A (en) * | 1984-09-07 | 1987-05-12 | Sungene Technologies Corporation | Process for regenerating corn |
| US5350689A (en) * | 1987-05-20 | 1994-09-27 | Ciba-Geigy Corporation | Zea mays plants and transgenic Zea mays plants regenerated from protoplasts or protoplast-derived cells |
| US5059745A (en) * | 1989-12-04 | 1991-10-22 | Holden's Foundation Seeds, Inc. | Inbred corn line LH195 |
| US6946587B1 (en) * | 1990-01-22 | 2005-09-20 | Dekalb Genetics Corporation | Method for preparing fertile transgenic corn plants |
| US5484956A (en) * | 1990-01-22 | 1996-01-16 | Dekalb Genetics Corporation | Fertile transgenic Zea mays plant comprising heterologous DNA encoding Bacillus thuringiensis endotoxin |
| ATE223148T1 (de) * | 1990-06-23 | 2002-09-15 | Aventis Cropscience Gmbh | Verbesserte genotypen von zea mays (l.) mit der veranlagung zur langfristigen, höchst effizienten pflanzenregeneration |
| US5767367A (en) * | 1990-06-23 | 1998-06-16 | Hoechst Aktiengesellschaft | Zea mays (L.) with capability of long term, highly efficient plant regeneration including fertile transgenic maize plants having a heterologous gene, and their preparation |
| US6403865B1 (en) | 1990-08-24 | 2002-06-11 | Syngenta Investment Corp. | Method of producing transgenic maize using direct transformation of commercially important genotypes |
| UA48104C2 (uk) * | 1991-10-04 | 2002-08-15 | Новартіс Аг | Фрагмент днк, який містить послідовність,що кодує інсектицидний протеїн, оптимізовану для кукурудзи,фрагмент днк, який забезпечує направлену бажану для серцевини стебла експресію зв'язаного з нею структурного гена в рослині, фрагмент днк, який забезпечує специфічну для пилку експресію зв`язаного з нею структурного гена в рослині, рекомбінантна молекула днк, спосіб одержання оптимізованої для кукурудзи кодуючої послідовності інсектицидного протеїну, спосіб захисту рослин кукурудзи щонайменше від однієї комахи-шкідника |
| US5320961A (en) * | 1992-11-16 | 1994-06-14 | Board Of Trustees Operating Michigan State University | Method for asexual in vitro propagation of fertile corn plants |
| ES2256856T3 (es) * | 1995-04-06 | 2006-07-16 | Seminis Vegetable Seeds, Inc. | Proceso de seccion de celulas transgenicas. |
| US6420630B1 (en) * | 1998-12-01 | 2002-07-16 | Stine Biotechnology | Methods for tissue culturing and transforming elite inbreds of Zea mays L. |
| US7460252B2 (en) * | 2003-01-13 | 2008-12-02 | Axiohm Transaction Solutions, Inc. | Graphical printing system and method using text triggers |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4583320A (en) * | 1982-10-12 | 1986-04-22 | Plant Genetics, Inc. | Delivery system for meristematic tissue |
| JPS59132823A (ja) * | 1983-01-20 | 1984-07-31 | 広島大学長 | 苗条原基による有用一年生植物の多年生化大量増殖法 |
| US4665030A (en) * | 1984-09-07 | 1987-05-12 | Sungene Technologies Corporation | Process for regenerating corn |
| US4806483A (en) * | 1986-08-18 | 1989-02-21 | Sungene Technologies Corporation | Process for regenerating corn |
-
1986
- 1986-05-21 US US06/865,431 patent/US4830966A/en not_active Expired - Lifetime
- 1986-12-15 CA CA000525352A patent/CA1270648A/en not_active Expired - Fee Related
- 1986-12-23 AU AU66900/86A patent/AU594408B2/en not_active Ceased
-
1987
- 1987-01-22 JP JP62015039A patent/JPS62272917A/ja active Pending
- 1987-05-11 EP EP87106795A patent/EP0246527A3/en not_active Withdrawn
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US4830966A (en) | 1989-05-16 |
| AU6690086A (en) | 1987-11-26 |
| CA1270648A (en) | 1990-06-26 |
| AU594408B2 (en) | 1990-03-08 |
| EP0246527A3 (en) | 1989-07-26 |
| EP0246527A2 (en) | 1987-11-25 |
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