JPS63148982A - オ−トクレ−ブ滅菌無血清培地による昆虫細胞の培養法 - Google Patents
オ−トクレ−ブ滅菌無血清培地による昆虫細胞の培養法Info
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- JPS63148982A JPS63148982A JP61294941A JP29494186A JPS63148982A JP S63148982 A JPS63148982 A JP S63148982A JP 61294941 A JP61294941 A JP 61294941A JP 29494186 A JP29494186 A JP 29494186A JP S63148982 A JPS63148982 A JP S63148982A
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、昆虫細胞、特にヨトウガ由来細胞を培養する
ための湿熱滅菌法、好ましくはオートクレーブ加熱法で
滅菌した無血清の昆虫細胞培養培地を用いて昆虫細胞を
培養する技術に関する。
ための湿熱滅菌法、好ましくはオートクレーブ加熱法で
滅菌した無血清の昆虫細胞培養培地を用いて昆虫細胞を
培養する技術に関する。
(従来の技術〕
昆虫細胞を用いて、昆虫ウィルスを生産すること、並び
にヒトインターフェロンの生産等の、動物細胞で生産す
る有用物質を免疫的に無関係の昆虫細胞を用いて生産す
ることが研究されている。
にヒトインターフェロンの生産等の、動物細胞で生産す
る有用物質を免疫的に無関係の昆虫細胞を用いて生産す
ることが研究されている。
一般に、昆虫細胞の培養に当っては、子牛おるいは牛胎
児等より得られる血清を培地成分として使用している。
児等より得られる血清を培地成分として使用している。
ところが、この血清は高価であるのみならず、品質の不
均一性、不安定性、大量入手の困難さから、血清を含有
しないでも昆虫細胞を培養できる培地の研究がなされて
いる。その結果、いくつかの無血清培地が開発された。
均一性、不安定性、大量入手の困難さから、血清を含有
しないでも昆虫細胞を培養できる培地の研究がなされて
いる。その結果、いくつかの無血清培地が開発された。
例えば、ショウジヨウバエ細胞用の培地(ジーエカリア
ニイー、カースタック、ケー、マラモロシュ編「インバ
ーチプレイド・ティッシュウ・カルチャー・アプリケイ
ジョン・イン・メディシン・バイオロジー・アンド・ア
プリカルチャーJ (Invertabra−te
Ti5st+e Cu1ture 、Applica
tions in Medicine。
ニイー、カースタック、ケー、マラモロシュ編「インバ
ーチプレイド・ティッシュウ・カルチャー・アプリケイ
ジョン・イン・メディシン・バイオロジー・アンド・ア
プリカルチャーJ (Invertabra−te
Ti5st+e Cu1ture 、Applica
tions in Medicine。
Biology and Agriculture、)
131−150頁、アカデミツク・プレス社 ニュー
ヨーク 1976年発行:ケイ、ディ、ディビス、ニー
、シャーン:「サイエンスJ (Science)
196巻438−440頁、1977年〕、力細胞用の
培地〔ニス、キタムラ等「ジャーナル・メディカル−I
ントモロジーj (J、Hed、Entom−01,)
10巻488−489頁、1973年〕、りんし目、双
し目昆虫細胞の培地としてミツハシ、マラモロシュ(M
itsuhashi and Maramorosch
)培地〔ジエイ、ミツハシ、ケイ、マラモロシュ「コン
トリビュート・ボイス・トンプソン・インステイチュー
トJ(Contrib、Boyce Thompso
n In5t、)22巻 435−460頁、196
4年〕より、血清を取除いた組成の培地等が使用されて
いる。
131−150頁、アカデミツク・プレス社 ニュー
ヨーク 1976年発行:ケイ、ディ、ディビス、ニー
、シャーン:「サイエンスJ (Science)
196巻438−440頁、1977年〕、力細胞用の
培地〔ニス、キタムラ等「ジャーナル・メディカル−I
ントモロジーj (J、Hed、Entom−01,)
10巻488−489頁、1973年〕、りんし目、双
し目昆虫細胞の培地としてミツハシ、マラモロシュ(M
itsuhashi and Maramorosch
)培地〔ジエイ、ミツハシ、ケイ、マラモロシュ「コン
トリビュート・ボイス・トンプソン・インステイチュー
トJ(Contrib、Boyce Thompso
n In5t、)22巻 435−460頁、196
4年〕より、血清を取除いた組成の培地等が使用されて
いる。
これらの無血清培地の滅菌処理方法としては、濾過滅菌
が行われている。その方法は、滅菌したメンブレン・フ
ィルターを用いるのが通常である。
が行われている。その方法は、滅菌したメンブレン・フ
ィルターを用いるのが通常である。
培地調製後、直接に除菌用のフィルターに通すと、目づ
まりが著しく、効率的でない。したがって、前処理とし
て、調製直後の培地から高速遠心分離機で沈澱物を除去
し、段階的にポアサイズの異なるフィルターで濾過する
が、フィルター交換、各操作中での容器の準備等の操作
が繁雑である。また、濾過滅菌後の培地を各々の培養器
へ移す分注作業を無菌状態で行なう必要が必り、無菌操
作技術の熟練修得者が作業する必要がおる。特に大量の
培地の分注を、雑菌の混入なしに行なうことは高度の無
菌操作技術が必要とされる。大量培養にiJ′−3いて
は専用の無菌濾過装置を必要とし、設備投資および維持
管理費が大きくなる。
まりが著しく、効率的でない。したがって、前処理とし
て、調製直後の培地から高速遠心分離機で沈澱物を除去
し、段階的にポアサイズの異なるフィルターで濾過する
が、フィルター交換、各操作中での容器の準備等の操作
が繁雑である。また、濾過滅菌後の培地を各々の培養器
へ移す分注作業を無菌状態で行なう必要が必り、無菌操
作技術の熟練修得者が作業する必要がおる。特に大量の
培地の分注を、雑菌の混入なしに行なうことは高度の無
菌操作技術が必要とされる。大量培養にiJ′−3いて
は専用の無菌濾過装置を必要とし、設備投資および維持
管理費が大きくなる。
このような事情から、高度の無菌操作を必要とせず、特
定の技術修得者に限らず誰でも簡単な操作で調製できる
安価な培地を開発することが要望されている。本発明は
、このような要望に合致した昆虫細胞培養用の無血清培
地を用いる昆虫細胞の無血清培養法を提供することを目
的とする。
定の技術修得者に限らず誰でも簡単な操作で調製できる
安価な培地を開発することが要望されている。本発明は
、このような要望に合致した昆虫細胞培養用の無血清培
地を用いる昆虫細胞の無血清培養法を提供することを目
的とする。
C問題点を解決するための手段)
本発明者らは、このような事情にもとすき、かかる問題
点を解決すべく研究を行い、これまでのミツハシ、マラ
モロシュ(Hitsuhashi and Haram
−orosch)培地より血清をとりのぞいた培地をオ
ートクレーブ滅菌により無菌状態とし、この培地で昆虫
細胞を培養することが可能であることを認め、本発明に
いたった。すなわち、従来用いられていた昆虫細胞培養
用培地に代り、酵母粉末とアルブミン加水分解物(水解
物)を配合し、かっ血清成分を含まない培地は、熱処理
を行なうことによっても昆虫細胞の培養に必要な成分を
失うことなく、十分に昆虫細胞の増殖を行なわしめるこ
とを知見した。
点を解決すべく研究を行い、これまでのミツハシ、マラ
モロシュ(Hitsuhashi and Haram
−orosch)培地より血清をとりのぞいた培地をオ
ートクレーブ滅菌により無菌状態とし、この培地で昆虫
細胞を培養することが可能であることを認め、本発明に
いたった。すなわち、従来用いられていた昆虫細胞培養
用培地に代り、酵母粉末とアルブミン加水分解物(水解
物)を配合し、かっ血清成分を含まない培地は、熱処理
を行なうことによっても昆虫細胞の培養に必要な成分を
失うことなく、十分に昆虫細胞の増殖を行なわしめるこ
とを知見した。
従って、本発明によると、塩化ナトリウム、塩化カリウ
ム、リン酸二水素ナトリウム、#酸水素ナトリウム、塩
化マグネシウム、塩化カルシウム、糖類、酵母粉末およ
びアルブミン水解物を含有し、実質的に血清を含まない
培地を湿熱滅菌法により無菌状態とした培地で、昆虫細
胞を培養する方法が提供される。
ム、リン酸二水素ナトリウム、#酸水素ナトリウム、塩
化マグネシウム、塩化カルシウム、糖類、酵母粉末およ
びアルブミン水解物を含有し、実質的に血清を含まない
培地を湿熱滅菌法により無菌状態とした培地で、昆虫細
胞を培養する方法が提供される。
本発明の方法で用いる培地は、ミツハシ・マラモロシュ
(Mitsuhashi and )laramoro
sch)培地より血清をとりのぞいた残余の成分、すな
わち塩化ナトリウム、塩化カリウム、リン酸二水素ナト
リウム、炭酸水素ナトリウム、塩化マグネシウム、塩化
カルシウム、糖類に酵母粉末およびアルブミン水解物を
加えて成る組成の培地を用い、従来の培地と同様に、i
)H値を、水酸化カリウム、塩酸等を用いて5,6〜7
.0の範囲に調製したのら、湿熱滅菌することによって
無菌の無血清培地として調製できる。
(Mitsuhashi and )laramoro
sch)培地より血清をとりのぞいた残余の成分、すな
わち塩化ナトリウム、塩化カリウム、リン酸二水素ナト
リウム、炭酸水素ナトリウム、塩化マグネシウム、塩化
カルシウム、糖類に酵母粉末およびアルブミン水解物を
加えて成る組成の培地を用い、従来の培地と同様に、i
)H値を、水酸化カリウム、塩酸等を用いて5,6〜7
.0の範囲に調製したのら、湿熱滅菌することによって
無菌の無血清培地として調製できる。
上記の成分のうち、塩化マグネシウムとしては、塩化マ
グネシウム無水物、塩化マグネシウム六水和物が使用で
きるが、塩化マグネシウム六水和物が好ましい。また塩
化カルシウムとしては、塩化カルシウム無水物、塩化カ
ルシウム二水和物、塩化カルシウム穴水和物が使用でき
るが、塩化カルシウムニ水和物が好ましい。
グネシウム無水物、塩化マグネシウム六水和物が使用で
きるが、塩化マグネシウム六水和物が好ましい。また塩
化カルシウムとしては、塩化カルシウム無水物、塩化カ
ルシウム二水和物、塩化カルシウム穴水和物が使用でき
るが、塩化カルシウムニ水和物が好ましい。
また、糖類としては、D−グルコース、フラクトースが
使用できるが、D−グルコースが好ましい。また、酵母
粉末としてはパン酵母粉末、ビール酵母粉末が使用でき
るが、パン酵母粉末が好ましい。またアルブミン水解物
としては、血清アルブミン水解物、ラクトアルブミン水
解物、卵白アルブミン水解物が使用できるが、ラクトア
ルブミン水解物が好ましい。
使用できるが、D−グルコースが好ましい。また、酵母
粉末としてはパン酵母粉末、ビール酵母粉末が使用でき
るが、パン酵母粉末が好ましい。またアルブミン水解物
としては、血清アルブミン水解物、ラクトアルブミン水
解物、卵白アルブミン水解物が使用できるが、ラクトア
ルブミン水解物が好ましい。
湿熱滅菌法としては、オートクレーブ滅菌法、間欠加熱
法が使用できるが、オートクレーブ滅菌法が好ましい。
法が使用できるが、オートクレーブ滅菌法が好ましい。
ざらには、滅菌操作の前、もしくは後の上記培地成分に
血清を加えることもできる。
血清を加えることもできる。
本発明の方法で使用される昆虫細胞培養用の無血清培地
の各成分は、いずれも市販品をそのまま使用できるから
、安価に安定して入手が可能であり、ざらに、高度な技
術の濾過滅菌操作にようないで、簡単なオートクレーブ
でスチーム滅菌法により目的を達成することができるの
で、無菌操作についての技術修得者でない誰でもが調製
できる。
の各成分は、いずれも市販品をそのまま使用できるから
、安価に安定して入手が可能であり、ざらに、高度な技
術の濾過滅菌操作にようないで、簡単なオートクレーブ
でスチーム滅菌法により目的を達成することができるの
で、無菌操作についての技術修得者でない誰でもが調製
できる。
本発明の方法で使用される無血清培地を調製するには、
これまでの昆虫細胞用無血清培地の常用成分として知ら
れている次の無機塩成分、すなわち、塩化ナトリウム(
6,0〜8.0’ii/Q、培地1Q当りの好適な添加
最:以下同じ)、塩化カリウム(0,1〜0.3g/Q
>、リン酸二ナトリウム(0,1〜0.4p/り)、炭
酸水素ナトリウム(0,1〜0,47/2)、塩化マグ
ネシウム六水和物(0,05〜0.2g/Q)及び塩化
カルシウムニ水和物(0,1〜0.3y#2)、並びに
D−グルコース(2,0〜8.09/Q)と、これらに
アルブミン水解物(3,O〜15.09/Q>及び酵母
粉末(1,0〜8.09/Q>を加えて成る組成の培地
を調製する。その後、pHを水酸化カリウム、塩酸等を
用いてpti5.6〜7.0の範囲に調整すればよい。
これまでの昆虫細胞用無血清培地の常用成分として知ら
れている次の無機塩成分、すなわち、塩化ナトリウム(
6,0〜8.0’ii/Q、培地1Q当りの好適な添加
最:以下同じ)、塩化カリウム(0,1〜0.3g/Q
>、リン酸二ナトリウム(0,1〜0.4p/り)、炭
酸水素ナトリウム(0,1〜0,47/2)、塩化マグ
ネシウム六水和物(0,05〜0.2g/Q)及び塩化
カルシウムニ水和物(0,1〜0.3y#2)、並びに
D−グルコース(2,0〜8.09/Q)と、これらに
アルブミン水解物(3,O〜15.09/Q>及び酵母
粉末(1,0〜8.09/Q>を加えて成る組成の培地
を調製する。その後、pHを水酸化カリウム、塩酸等を
用いてpti5.6〜7.0の範囲に調整すればよい。
これらの培地成分は、いずれも市販品をそのまま使用す
ればよい。
ればよい。
また、これ以外の成分、すなわち塩化マグネシウム無水
物、塩化カルシウム無水物、塩化カルシウム二水和物、
等も同様に使用することができる。
物、塩化カルシウム無水物、塩化カルシウム二水和物、
等も同様に使用することができる。
また、湿熱滅菌法として、オートクレーブ滅菌する方法
は、通常の方法、すなわち、1.0〜1.2気圧のスチ
ーム雰囲気下に、15〜30分間、110〜130℃で
加熱することから成る。このようにして、本発明で用い
る無菌状態の無血清培地を調製できる。
は、通常の方法、すなわち、1.0〜1.2気圧のスチ
ーム雰囲気下に、15〜30分間、110〜130℃で
加熱することから成る。このようにして、本発明で用い
る無菌状態の無血清培地を調製できる。
以下に実施例を挙げて本発明を詳述するが、これらは単
なる例示であって、本発明を制限するものではない。
なる例示であって、本発明を制限するものではない。
実施例 1
後記の表1の組成で各成分を含む無血清培地を調製し、
オートクレーブで加熱(120’Cl2O分)、滅菌し
た無菌培地の5dを、コーニング社製プラスチック・フ
ラスコ(25cm)に分注した。
オートクレーブで加熱(120’Cl2O分)、滅菌し
た無菌培地の5dを、コーニング社製プラスチック・フ
ラスコ(25cm)に分注した。
他方、あらかじめ、オートクレーブ滅菌した表1の培地
で4日間培養して得たヨトウガ脂肪体由来細胞の4種、
5ES−HaBr−1; 5ES−HaBr−2; 5
ES−)faBr−3; 5ES−HaBr−4と血球
由来細胞の2種NIAS−)1aBr−92; NIA
S−HaBr−93と、卵巣由来細胞の1種NIAS−
MaBr−32とを、それぞれ初発細胞濃度が2.0x
105個/m!!になるように接種した。
で4日間培養して得たヨトウガ脂肪体由来細胞の4種、
5ES−HaBr−1; 5ES−HaBr−2; 5
ES−)faBr−3; 5ES−HaBr−4と血球
由来細胞の2種NIAS−)1aBr−92; NIA
S−HaBr−93と、卵巣由来細胞の1種NIAS−
MaBr−32とを、それぞれ初発細胞濃度が2.0x
105個/m!!になるように接種した。
これらのフラスコを25℃に保温された細胞培養器の中
に静置して培養したところ、9日間の後の細胞数は、そ
れぞれ21.8x 10”個/rrd! : 18.1
X10 個/lrd! ; 21.7x 105個/
7: 16.4X10 個/ml+ 11.9X
’l o5個/d: 1B、5x10 個: 18
.3X 105個/mlまでに増加した。
に静置して培養したところ、9日間の後の細胞数は、そ
れぞれ21.8x 10”個/rrd! : 18.1
X10 個/lrd! ; 21.7x 105個/
7: 16.4X10 個/ml+ 11.9X
’l o5個/d: 1B、5x10 個: 18
.3X 105個/mlまでに増加した。
表 1
塩化ナトリウム 7゜Oc+/Qリ
ン酸二水素ナトリウム−水和物 0.2 9IQ炭酸水
素ナトリウム 0.12q/Q塩化カリウ
ム 0.2 gIQ塩化塩化マ
グネシウム和水和物 0.1 a/Q塩化塩化カル
シウム和水和物 0.2 g/QD−グルコース
4.Og、1ラクトアルブミン水
解物 6.5g/Qイーストレイト
5.Oa!Q(ディフコ DifCO製) pH6,5±0.2 なあ、上記の表中のラクトアルブミン水解物は、ニュー
トリショナル・バイオケミカルズ・コーポレーション(
Nutiritional Biochemicals
Corp、)製でおる。
ン酸二水素ナトリウム−水和物 0.2 9IQ炭酸水
素ナトリウム 0.12q/Q塩化カリウ
ム 0.2 gIQ塩化塩化マ
グネシウム和水和物 0.1 a/Q塩化塩化カル
シウム和水和物 0.2 g/QD−グルコース
4.Og、1ラクトアルブミン水
解物 6.5g/Qイーストレイト
5.Oa!Q(ディフコ DifCO製) pH6,5±0.2 なあ、上記の表中のラクトアルブミン水解物は、ニュー
トリショナル・バイオケミカルズ・コーポレーション(
Nutiritional Biochemicals
Corp、)製でおる。
叉思f41 2
表1に示した組成の無血清培地を調製し、実施例1で用
いた滅菌法により滅菌した後、牛脂児血清(ディフコ
Difco製〉を血清濃度3%になるように無菌的に添
加して血清含有培地を調製した。
いた滅菌法により滅菌した後、牛脂児血清(ディフコ
Difco製〉を血清濃度3%になるように無菌的に添
加して血清含有培地を調製した。
この血清含有培地の5mlを、コーニング社製プラスチ
ック・フラスコ(25cIA)に分注した。他方、あら
かじめ、上記血清含有培地で4日間培養して得たヨトウ
ガ血球由来細胞NIAS−HaBr−93を、初発細胞
濃度が、2.OX 105個/dになるように接種した
。
ック・フラスコ(25cIA)に分注した。他方、あら
かじめ、上記血清含有培地で4日間培養して得たヨトウ
ガ血球由来細胞NIAS−HaBr−93を、初発細胞
濃度が、2.OX 105個/dになるように接種した
。
このフラスコを25℃に保温された細胞培養器の中に静
置して培養したところ、9日間の後の細胞数は18.2
X 10”個/dまでに増加した。
置して培養したところ、9日間の後の細胞数は18.2
X 10”個/dまでに増加した。
実施例 3
表1に示した組成の無血清培地を調製し、実施例1で用
いた滅菌法により滅菌し、内容1250m1のガラス製
スピンナーかくはん培養器に、10(Mづつ分注した。
いた滅菌法により滅菌し、内容1250m1のガラス製
スピンナーかくはん培養器に、10(Mづつ分注した。
あらかじめ、オートクレーブ滅菌した表1の培地で4日
間培養して得たヨトウガ血球由来細胞N IAS−)1
aBr−93を、初発細胞濃度が2.OX 105個/
dになるように接種した。
間培養して得たヨトウガ血球由来細胞N IAS−)1
aBr−93を、初発細胞濃度が2.OX 105個/
dになるように接種した。
25℃に保温された細胞培#L器の中で、かくはん数、
毎分60回でかくはんし、10日間培養した。培養後の
細胞数は、9.07 X 105個/dまで増加し、1
本のスピンナー培養器から9.07X107個の細胞が
無血清培養により取得された。
毎分60回でかくはんし、10日間培養した。培養後の
細胞数は、9.07 X 105個/dまで増加し、1
本のスピンナー培養器から9.07X107個の細胞が
無血清培養により取得された。
叉塵叢−1
表1に示した組成の無血清培地を調製し、実施例1で用
いた滅菌法により滅菌し、内容量250威のガラス製ス
ピンナーかくはん培養器に、100dづつ分注した。あ
らかじめ、オートクレーブ滅菌した表1の培地で4日間
培養して得たヨトウガ脂肪体由来細胞5ES−)1aB
r−1を、初発細胞濃度が2.Ox 10”個/dにな
るように接種した。
いた滅菌法により滅菌し、内容量250威のガラス製ス
ピンナーかくはん培養器に、100dづつ分注した。あ
らかじめ、オートクレーブ滅菌した表1の培地で4日間
培養して得たヨトウガ脂肪体由来細胞5ES−)1aB
r−1を、初発細胞濃度が2.Ox 10”個/dにな
るように接種した。
25℃に保温された細胞培養器の中で、かくはん数、毎
分60回でかくはんし、10日間培養した。培養後の細
胞数は、10.8X 10”個/dまで増加し、1本の
スピンナー培養器から1.08X108個の細胞が無血
清培養により取得された。
分60回でかくはんし、10日間培養した。培養後の細
胞数は、10.8X 10”個/dまで増加し、1本の
スピンナー培養器から1.08X108個の細胞が無血
清培養により取得された。
大思輿−二
表1に示した組成の無血清培地を調製し、実施例1で用
いた滅菌法により滅菌し、内容量1.3Qのガラス製ス
ピンナーかくはん培養器に、500d分注づつした。あ
らかじめ、オートクレーブ滅菌した表1の培地で4日間
培養して得たヨトウガ由来細胞N IAS−MaBr−
93を、初発細胞濃度が1.0×10”個/mlG、:
なるように接種した。25°Cに保温された細胞培養器
の中で、かくはん数、毎分40回でかくはんし、12日
間培養した。培養後の細胞数は、8.87 X 1Q5
個/dまで増加し、1本のスピンナー培養器から4.4
4 X ’l Q8個の細胞が無血清培養により取得さ
れた。
いた滅菌法により滅菌し、内容量1.3Qのガラス製ス
ピンナーかくはん培養器に、500d分注づつした。あ
らかじめ、オートクレーブ滅菌した表1の培地で4日間
培養して得たヨトウガ由来細胞N IAS−MaBr−
93を、初発細胞濃度が1.0×10”個/mlG、:
なるように接種した。25°Cに保温された細胞培養器
の中で、かくはん数、毎分40回でかくはんし、12日
間培養した。培養後の細胞数は、8.87 X 1Q5
個/dまで増加し、1本のスピンナー培養器から4.4
4 X ’l Q8個の細胞が無血清培養により取得さ
れた。
実施例 6
表1に示した組成の無血清培地を調製し、実施例1で用
いた滅菌法により滅菌し、内容ff15Qのガラス製ミ
ニジャー培養器に、3Q分づつ注した。
いた滅菌法により滅菌し、内容ff15Qのガラス製ミ
ニジャー培養器に、3Q分づつ注した。
必らかしめ、オートクレーブ滅菌した表1の培地で4日
間培養して得たヨトウガ由来細胞NIAS−HaBr−
93を、初発細胞濃度が1.0X10”個/dになるよ
うに接種した。25°Cに保温して、かくはん数、毎分
150回でかくはんし、16日間培養した。培養後の細
胞数は、3.83 X 105個/dまで増加し、1基
のミニジャー培養器から1.15 Xi 09個の細胞
が無血清培養により取得された。
間培養して得たヨトウガ由来細胞NIAS−HaBr−
93を、初発細胞濃度が1.0X10”個/dになるよ
うに接種した。25°Cに保温して、かくはん数、毎分
150回でかくはんし、16日間培養した。培養後の細
胞数は、3.83 X 105個/dまで増加し、1基
のミニジャー培養器から1.15 Xi 09個の細胞
が無血清培養により取得された。
本発明によれば、次のような作用効果がもたらされる。
まず第1に、培地の無菌処理方法として、これまでの濾
過滅菌によらないで湿熱滅菌法、例えばオートクレーブ
滅菌が可能となった。したがって、濾過殺菌法の高度な
無菌操作を必要とせず、大向培養においても専用の濾過
装置を必要としない。
過滅菌によらないで湿熱滅菌法、例えばオートクレーブ
滅菌が可能となった。したがって、濾過殺菌法の高度な
無菌操作を必要とせず、大向培養においても専用の濾過
装置を必要としない。
その結果、本発明では、特定の技術修得者に限らず誰で
も簡単な操作でかつ安価に調製される無菌の無血清培地
で昆虫細胞の培養をすることができる。
も簡単な操作でかつ安価に調製される無菌の無血清培地
で昆虫細胞の培養をすることができる。
第2に、本発明の方法で使用する培地の成分は高価な血
清を用いる従来の培地と比べると、すべて市販品で入手
が容易で安価な原料を用いればよく、培地調製が楊めて
容易である。
清を用いる従来の培地と比べると、すべて市販品で入手
が容易で安価な原料を用いればよく、培地調製が楊めて
容易である。
第3に、本発明で使用する無血清培地によれば、昆虫細
胞の増殖を、昆虫細胞の種類によって多少の違いがある
が、当初の接種濃度の約3.8〜11倍にも進めること
ができる。このことは実施例1〜実施例6に示したとお
りである。
胞の増殖を、昆虫細胞の種類によって多少の違いがある
が、当初の接種濃度の約3.8〜11倍にも進めること
ができる。このことは実施例1〜実施例6に示したとお
りである。
Claims (1)
- 塩化ナトリウム、塩化カリウム、リン酸二水素ナトリウ
ム、炭酸水素ナトリウム、塩化マグネシウム、塩化カル
シウム、糖類、酵母粉末およびアルブミン水解物を含有
し、実質的に血清を含まない培地を湿熱滅菌法により無
菌状態とした培地で、昆虫細胞を培養する方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61294941A JPH067791B2 (ja) | 1986-12-12 | 1986-12-12 | オ−トクレ−ブ滅菌無血清培地による昆虫細胞の培養法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61294941A JPH067791B2 (ja) | 1986-12-12 | 1986-12-12 | オ−トクレ−ブ滅菌無血清培地による昆虫細胞の培養法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS63148982A true JPS63148982A (ja) | 1988-06-21 |
| JPH067791B2 JPH067791B2 (ja) | 1994-02-02 |
Family
ID=17814257
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61294941A Expired - Lifetime JPH067791B2 (ja) | 1986-12-12 | 1986-12-12 | オ−トクレ−ブ滅菌無血清培地による昆虫細胞の培養法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH067791B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7572632B2 (en) | 1997-02-14 | 2009-08-11 | Life Technologies Corporation | Dry powder cells and cell culture reagents and methods of production thereof |
| EP2970916B1 (en) | 2013-03-13 | 2021-04-14 | Merck Sharp & Dohme Corp. | Adapted lepidopteran insect cells for the production of recombinant proteins |
-
1986
- 1986-12-12 JP JP61294941A patent/JPH067791B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7572632B2 (en) | 1997-02-14 | 2009-08-11 | Life Technologies Corporation | Dry powder cells and cell culture reagents and methods of production thereof |
| JP2010233580A (ja) * | 1997-02-14 | 2010-10-21 | Life Technologies Corp | 乾燥粉末細胞および細胞培養試薬ならびにこれらの生成方法 |
| JP2014054267A (ja) * | 1997-02-14 | 2014-03-27 | Life Technologies Corp | 乾燥粉末細胞および細胞培養試薬ならびにこれらの生成方法 |
| JP2016152821A (ja) * | 1997-02-14 | 2016-08-25 | ライフ テクノロジーズ コーポレーション | 乾燥粉末細胞および細胞培養試薬ならびにこれらの生成方法 |
| EP2970916B1 (en) | 2013-03-13 | 2021-04-14 | Merck Sharp & Dohme Corp. | Adapted lepidopteran insect cells for the production of recombinant proteins |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH067791B2 (ja) | 1994-02-02 |
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