JPS6344880A - 新規凝集性酵母、その製造法およびこれを用いるアルコ−ル発酵法 - Google Patents
新規凝集性酵母、その製造法およびこれを用いるアルコ−ル発酵法Info
- Publication number
- JPS6344880A JPS6344880A JP61190318A JP19031886A JPS6344880A JP S6344880 A JPS6344880 A JP S6344880A JP 61190318 A JP61190318 A JP 61190318A JP 19031886 A JP19031886 A JP 19031886A JP S6344880 A JPS6344880 A JP S6344880A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- yeast
- medium
- saccharomyces
- alcoholic fermentation
- note
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、優れた凝集性を有する新規酵母、そのＩ！造
法およびこれを用いるアルコール発酵法に関するもので
ある。
法およびこれを用いるアルコール発酵法に関するもので
ある。
発明の背景
近年、石油代替エネルギーとして、石油化学によらずに
得られる発酵アルコールが注目されている。これはさと
うきびやこれから採った糖蜜、さらにはさつまいも５、
じゃがいも、とうもろこしなどのでん粉質またはセルロ
ース質を原料とし、これらを微生物の働きによって発酵
させることにより製造される。
得られる発酵アルコールが注目されている。これはさと
うきびやこれから採った糖蜜、さらにはさつまいも５、
じゃがいも、とうもろこしなどのでん粉質またはセルロ
ース質を原料とし、これらを微生物の働きによって発酵
させることにより製造される。
一般にアルコール発酵では、アルコールの生産性は発酵
槽内の菌体濃度に比例する。そこで発酵槽内の菌体濃度
を高める手段として、優れた凝集性を有する酵母を用い
ることが考えられる。すなわち、酵母が優れた凝集性を
有していると、酵母の沈降速度が速くなり、そのため固
液分離が迅速かつ容易になし得る。そして例えば回分発
酵においては、発酵液を単に静置するだけで菌体を沈降
堆積させることができ、発酵液と菌体の分離を容易に行
なって菌体を再使用に供することができる。また連続発
酵においては、小径の流動部とこれの上に連設された菌
体沈降用の大径の沈降部とこれに内装された菌体沈降部
材とを主体とした基型発酵槽を用いることにより、培地
の供給層が増大しても菌体を沈降させてその流出を防止
することができる。このように凝集性を有する酵母を用
いると、凝集性を有しない酵母を用いた一場合に比べて
多くの利点があり、そのため新規凝集性酵母が要望せら
れている。
槽内の菌体濃度に比例する。そこで発酵槽内の菌体濃度
を高める手段として、優れた凝集性を有する酵母を用い
ることが考えられる。すなわち、酵母が優れた凝集性を
有していると、酵母の沈降速度が速くなり、そのため固
液分離が迅速かつ容易になし得る。そして例えば回分発
酵においては、発酵液を単に静置するだけで菌体を沈降
堆積させることができ、発酵液と菌体の分離を容易に行
なって菌体を再使用に供することができる。また連続発
酵においては、小径の流動部とこれの上に連設された菌
体沈降用の大径の沈降部とこれに内装された菌体沈降部
材とを主体とした基型発酵槽を用いることにより、培地
の供給層が増大しても菌体を沈降させてその流出を防止
することができる。このように凝集性を有する酵母を用
いると、凝集性を有しない酵母を用いた一場合に比べて
多くの利点があり、そのため新規凝集性酵母が要望せら
れている。
従来技術およびその問題点
従来から、上記の要望にこたえるべく、凝集性酵母を取
得する試みがなされて来たが、従来の酵母は自然界から
得られた野生株であって、たとえば土壌を探査し特定の
土壌から分離した′ものであった。
得する試みがなされて来たが、従来の酵母は自然界から
得られた野生株であって、たとえば土壌を探査し特定の
土壌から分離した′ものであった。
しかしこのように自然界から所望の菌株を見つけ出して
分離する作業は、はなはだ煩わしいものであり、また所
望の菌株を採取できる確実性の乏しいものであった。
分離する作業は、はなはだ煩わしいものであり、また所
望の菌株を採取できる確実性の乏しいものであった。
本発明は上記のような実情からなされたものであって、
優れた凝集性を有しかつ実験室で得ることのできる新規
凝集性酵母を提供することを目的とする。
優れた凝集性を有しかつ実験室で得ることのできる新規
凝集性酵母を提供することを目的とする。
本発明者らは、先に、廃糖蜜によく成育できる酵母から
変異処理およびプロトプラスト融合法により、優れた凝
集性を有しかつアルコール発酵能を有する酵母（ＦＲＨ
１□ＶＭ２１’＞８１を造成した。しかしこの酵母を用
いて連続発酵を行ない、希釈率りを上げていくと、Ｄ＝
０゜５ｈ−１でやや凝集性が弱くなるきらいがあった。
変異処理およびプロトプラスト融合法により、優れた凝
集性を有しかつアルコール発酵能を有する酵母（ＦＲＨ
１□ＶＭ２１’＞８１を造成した。しかしこの酵母を用
いて連続発酵を行ない、希釈率りを上げていくと、Ｄ＝
０゜５ｈ−１でやや凝集性が弱くなるきらいがあった。
そこで著しい凝集性を有するタイプ・カルチャーである
酵母ＩＦＯ−１９５３と上記酵母（ＦＲＨ１□ｖ、２−
１ ）Ｓ４ とのプロトプラスト融合を行なったところ
、優れた凝集性と高いエタノール生産性を有する新規株
を取得し、発明を完成するに至った。
酵母ＩＦＯ−１９５３と上記酵母（ＦＲＨ１□ｖ、２−
１ ）Ｓ４ とのプロトプラスト融合を行なったところ
、優れた凝集性と高いエタノール生産性を有する新規株
を取得し、発明を完成するに至った。
問題点を解決するための手段
本発明の第１のものは新規酵母すなわち優れた凝集性を
有する酵母サツカロマイセス（ＳａＣＣｈａｒｏｍｙｃ
ｅｓ）Ｓ １Ｘ １９５３− Ａ Ａ （微工研菌寄第
８８９５号）それ自体であり、また第２の発明は本発明
の酵母５ＩＸ１９５３ ＡＡの製造法であり、さらに
第３の発明は本発明の酵母５ＩＸ１９５３−ＡＡを用い
るアルコール発酵法である。
有する酵母サツカロマイセス（ＳａＣＣｈａｒｏｍｙｃ
ｅｓ）Ｓ １Ｘ １９５３− Ａ Ａ （微工研菌寄第
８８９５号）それ自体であり、また第２の発明は本発明
の酵母５ＩＸ１９５３ ＡＡの製造法であり、さらに
第３の発明は本発明の酵母５ＩＸ１９５３−ＡＡを用い
るアルコール発酵法である。
まず本発明の酵母Ｓｔ ｘ１９５３−ＡＡそれ自体につ
いて説明する。
いて説明する。
本明細書において、酵母の凝集性の程度（Ｄｅｇｒｅｅ
ｏｆ ｆｌｏｃｃｕｌａｔｉｏｎ）は、以下に示すギ
リランド・テスト（Ｇｉｌｌｉｌａｎｄ ｔｅｓｔ）
（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐ
ｌｉｅｄ Ｈｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙａｎｄ Ｂｉｏ
ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ第７巻、第２２７−２３４頁、１
９７９年）により求められたＤＦ値で表示される。すな
わち供試菌株をＹＰＤ培地（注１）で３０℃で１６時間
振盪培養した後、菌体の沈降速度、沈降菌体の容量およ
び硬さを肉眼観察により対照菌株と比較し、表１に示す
ＤＦ値Ｏから５の６段階で凝集の程度を表示する。
ｏｆ ｆｌｏｃｃｕｌａｔｉｏｎ）は、以下に示すギ
リランド・テスト（Ｇｉｌｌｉｌａｎｄ ｔｅｓｔ）
（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐ
ｌｉｅｄ Ｈｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙａｎｄ Ｂｉｏ
ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ第７巻、第２２７−２３４頁、１
９７９年）により求められたＤＦ値で表示される。すな
わち供試菌株をＹＰＤ培地（注１）で３０℃で１６時間
振盪培養した後、菌体の沈降速度、沈降菌体の容量およ
び硬さを肉眼観察により対照菌株と比較し、表１に示す
ＤＦ値Ｏから５の６段階で凝集の程度を表示する。
（以下余白）
表 １
本発明の酵母Ｓ１×１９５３ ＡＡは下記の菌学的性
質を有する。すなわちこの酵母は、・ＤＦ値５なる凝集
性を有し、液体培養では著しい沈降性を示す。
質を有する。すなわちこの酵母は、・ＤＦ値５なる凝集
性を有し、液体培養では著しい沈降性を示す。
・廃糖蜜（たとえば１５％の全糖分を含む廃糖蜜）を発
酵し、７〜９ｖｏ１％のエタノールを生成する。
酵し、７〜９ｖｏ１％のエタノールを生成する。
・寒天平板上で多少硬い集落を形成する。
・胞子形成能を有する。
本発明の酵母Ｓ１×１９５３ ＡＡはまた下記表２に
示すごとき諸性質（発酵性および資化性の有無、生理的
性質）を有する。
示すごとき諸性質（発酵性および資化性の有無、生理的
性質）を有する。
（以下余白）
表 ２
なお、サツカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ
）属に属する酵母は下記のような菌学的性質を有するこ
とが知られており（Ｊ、 Ｌｏｄｄｅｒ著［Ｔｈｅｖｅ
ａｓｔｓ、 Ａ ＴａＸＯｎＯｍｉＣ５ｔｕｄｙ 」第
２版、Ｎ０ｒｔｈ−ＨＯＩｌａｎｄ Ｐｕｂｌｉｓｈｉ
ｎｇ社発行、１９７０年）、本発明の酵母もこれらの性
質を有する。
）属に属する酵母は下記のような菌学的性質を有するこ
とが知られており（Ｊ、 Ｌｏｄｄｅｒ著［Ｔｈｅｖｅ
ａｓｔｓ、 Ａ ＴａＸＯｎＯｍｉＣ５ｔｕｄｙ 」第
２版、Ｎ０ｒｔｈ−ＨＯＩｌａｎｄ Ｐｕｂｌｉｓｈｉ
ｎｇ社発行、１９７０年）、本発明の酵母もこれらの性
質を有する。
すなわち、この属に属する酵母は、
・多極出芽によって増殖する。
・子のう胞子を形成する。
・硝酸塩を資化しない。
・真菌糸を欠くかまたはわずかじか形成しない。
・成熟子のうは容易に開裂しない。
・胞子の形状は球形ないし卵形である。
・グルコースをよく発酵する。
・麦芽汁培地に皮膜を形成しない。
本発明の酵母の培地としては、炭素源、窒素源、無機イ
オン、さらに必要ならば有機微量栄養素を含有する通常
の培地が使用できる。炭素源としてはグルコース、ガラ
クトース、フラクトース、シュークロース、スターチ加
水分解物、果汁、セルロース分解物などの炭水化物がよ
く用いられる。前培養培地としては、酵母エキス１ｑ１
ポリペプトン２０．グルコース２ｑ１蒸留水１００７ｆ
ｔ／よりなる培地がよく用いられる。
オン、さらに必要ならば有機微量栄養素を含有する通常
の培地が使用できる。炭素源としてはグルコース、ガラ
クトース、フラクトース、シュークロース、スターチ加
水分解物、果汁、セルロース分解物などの炭水化物がよ
く用いられる。前培養培地としては、酵母エキス１ｑ１
ポリペプトン２０．グルコース２ｑ１蒸留水１００７ｆ
ｔ／よりなる培地がよく用いられる。
この培地のｐＨは無調整で５．５である。
培養は温度２５〜４０℃好ましくは３０〜３７℃で、ｐ
）１３．０〜７．０好ましくはｐＨ３゜５〜６．０で行
なわれる。
）１３．０〜７．０好ましくはｐＨ３゜５〜６．０で行
なわれる。
つぎに、本発明の酵母の製造法について説明する。
本発明の酵母は、酵母サツカロマイセス・セルビシエ（
Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）
Ｉ Ｆ ０−１９５３の栄養要求性株（以下、これを
酵母Ｈ２−１９５３という）と酵母サツカロマイセス（
Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ） （Ｆ ＲＨ１７ＶＭ
２−１） Ｓ、（微工研菌寄第７７９４号）の栄養要求
性株（以下、これを酵ｍ Ｓ ＋ という）とをプロト
プラスト融合させ、得られた融合菌体を培養することに
より製造される。
Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）
Ｉ Ｆ ０−１９５３の栄養要求性株（以下、これを
酵母Ｈ２−１９５３という）と酵母サツカロマイセス（
Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ） （Ｆ ＲＨ１７ＶＭ
２−１） Ｓ、（微工研菌寄第７７９４号）の栄養要求
性株（以下、これを酵ｍ Ｓ ＋ という）とをプロト
プラスト融合させ、得られた融合菌体を培養することに
より製造される。
酵母）−１２−１９５３および酵母Ｓｔ はいずれもＤ
Ｆ値５の凝集性を有する。
Ｆ値５の凝集性を有する。
プロトプラスト融合は常法によって行なわれる。通常は
細胞数１０７〜１０８個／ｒＩＪＩの濃度の各菌体懸濁
液を調製し、これら懸濁液を好ましくは等量混合した後
、酵母細胞壁溶解酵素を含むプロトプラスト調製液で混
合物を処理するか、または各菌体懸濁液を同調製液で処
理した後これらを混合する。
細胞数１０７〜１０８個／ｒＩＪＩの濃度の各菌体懸濁
液を調製し、これら懸濁液を好ましくは等量混合した後
、酵母細胞壁溶解酵素を含むプロトプラスト調製液で混
合物を処理するか、または各菌体懸濁液を同調製液で処
理した後これらを混合する。
酵母１−１２−１９５３および酵母Ｓ１は、後述する実
施例で実証されたように、それぞれ酵母ＩＦＯ−１９５
３および酵母（ＦＲＨ１□ＶＭ２−１）Ｓｌを胞子形成
処理し、得られた胞子を変異処理し、得られた変異胞子
を培養することにより、再現性よく取得せられる。
施例で実証されたように、それぞれ酵母ＩＦＯ−１９５
３および酵母（ＦＲＨ１□ＶＭ２−１）Ｓｌを胞子形成
処理し、得られた胞子を変異処理し、得られた変異胞子
を培養することにより、再現性よく取得せられる。
胞子形成処理は常法に従ってなされる。通常は酵母をＹ
ＰＤ寒天培地（注２）で培養した後、胞子形成寒天培地
（注３）に塗抹する方法がとられる。また単独胞子由来
の細胞を得るにシよ、酵母細胞壁溶解用の溶菌酵素を用
いて子のうを溶解した後、マイクロマニブユレータを用
いて胞子を分離する方法、または同じく溶菌酵素で子の
うを溶解した後、超音波処理により胞子を分散させ、胞
子を栄養寒天培地で培養する方法がとられる。
ＰＤ寒天培地（注２）で培養した後、胞子形成寒天培地
（注３）に塗抹する方法がとられる。また単独胞子由来
の細胞を得るにシよ、酵母細胞壁溶解用の溶菌酵素を用
いて子のうを溶解した後、マイクロマニブユレータを用
いて胞子を分離する方法、または同じく溶菌酵素で子の
うを溶解した後、超音波処理により胞子を分散させ、胞
子を栄養寒天培地で培養する方法がとられる。
変異処理は、胞子形成処理により得られた胞子または子
のうに公知の突然変異処理、たとえば紫外線、Ｘ線、γ
線を照射する物理的方法、エチルメタンスルホネート、
Ｎ−メチル−Ｎ′−二トローＮ−ニトロソグアニジン、
４−ニトロキノリン−Ｎ−オキサイドなどの変異誘起剤
を接触した後に選択培地に生育する化学的方法のいずれ
によっても行なわれるが、エチルメタンスルホネートを
用いる方法が特に好ましい。
のうに公知の突然変異処理、たとえば紫外線、Ｘ線、γ
線を照射する物理的方法、エチルメタンスルホネート、
Ｎ−メチル−Ｎ′−二トローＮ−ニトロソグアニジン、
４−ニトロキノリン−Ｎ−オキサイドなどの変異誘起剤
を接触した後に選択培地に生育する化学的方法のいずれ
によっても行なわれるが、エチルメタンスルホネートを
用いる方法が特に好ましい。
上記一連の製造過程において、培地および培養条件は、
前述した酵母自体の培地および培養条件と同じである。
前述した酵母自体の培地および培養条件と同じである。
つぎに本発明の酵母の原料酵母の製造法について説明す
る。
る。
（Ｆ ＲＨＩ３ Ｖ ８２ １ ） Ｓ ＋は、酵母サ
ツカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ） Ｆ
Ｒ旧７ＶＭ２−１（微工研菌寄第７７９２号）を胞子
形成処理し、得られた胞子を培養することにより製造さ
れる。
ツカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ） Ｆ
Ｒ旧７ＶＭ２−１（微工研菌寄第７７９２号）を胞子
形成処理し、得られた胞子を培養することにより製造さ
れる。
この胞子形成処理も前述と同じ手法で行なわれる。
酵母ＦＲＨ１□■Ｈ２−１は、凝集性を有する酵母サツ
カロマイセス・セルビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅ
ｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ） ＲＭ −１７（微工研菌
寄第７７７０号）と、凝集性を有しない酵母サツカロマ
イセス・セルビシエ（ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃ
ｅｒｅｖｉｓｉａｅ） ＶＭ −２（微工研菌寄第７７
８８号）とをプロトプラスト融合処理し、得られた融合
菌体を培養しすることにより製造される。このプロトプ
ラスト融合も前述と同じ手法で行なわれる。
カロマイセス・セルビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅ
ｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ） ＲＭ −１７（微工研菌
寄第７７７０号）と、凝集性を有しない酵母サツカロマ
イセス・セルビシエ（ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃ
ｅｒｅｖｉｓｉａｅ） ＶＭ −２（微工研菌寄第７７
８８号）とをプロトプラスト融合処理し、得られた融合
菌体を培養しすることにより製造される。このプロトプ
ラスト融合も前述と同じ手法で行なわれる。
酵母ＲＭ−１７は、財団法人発酵研究所の保存菌である
酵母サツカロマイセス・セルビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏ
ｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ） Ｉ Ｆ Ｏ−０
２２４を胞子形成処理し、得られた胞子を変異処理し、
変異胞子を培養することにより製造され、また酵母ＶＭ
−２は凝集性を有しない酵母サツ力ロ’？イセス・セル
ビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓ
ｉａｅ） ＥＹ −１（微工研菌寄第７７９３号）をや
はり胞子形成処理し、得られた胞子を変異処理し、変異
胞子を培養することにより製造される。この胞子形成処
理および変異処理も前述と同じ手法で行なわれる。
酵母サツカロマイセス・セルビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏ
ｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ） Ｉ Ｆ Ｏ−０
２２４を胞子形成処理し、得られた胞子を変異処理し、
変異胞子を培養することにより製造され、また酵母ＶＭ
−２は凝集性を有しない酵母サツ力ロ’？イセス・セル
ビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓ
ｉａｅ） ＥＹ −１（微工研菌寄第７７９３号）をや
はり胞子形成処理し、得られた胞子を変異処理し、変異
胞子を培養することにより製造される。この胞子形成処
理および変異処理も前述と同じ手法で行なわれる。
発明の効果
この発明は以上のとおり構成されているので、本発明の
凝集性酵母を用いてアルコール発酵を行なうことにより
、回分発酵においても連続発酵においてもアルコール発
酵槽内の菌体濃度を高く維持して、エタノールの生産性
を大幅に向上することができる。
凝集性酵母を用いてアルコール発酵を行なうことにより
、回分発酵においても連続発酵においてもアルコール発
酵槽内の菌体濃度を高く維持して、エタノールの生産性
を大幅に向上することができる。
実 施 例
つぎにこの発明について当業者が再現できるように説明
する。
する。
■ 製造例
（ａ） 酵母Ｓ、の調製
凝集性を有する（Ｆ ＲＨ１７ＶＭ２１） Ｓ＋をＹＰ
Ｄ寒天培地（注２）で温度３０℃で２４時間培養し、つ
いでこれを胞子形成用寒天培地（注３）に塗抹し、温度
３０℃で３〜５日間培養を行なった。こうして胞子を形
成した。
Ｄ寒天培地（注２）で温度３０℃で２４時間培養し、つ
いでこれを胞子形成用寒天培地（注３）に塗抹し、温度
３０℃で３〜５日間培養を行なった。こうして胞子を形
成した。
ついで胞子数が１０’個／ｒｏ１１．になるように、子
のうを無菌水１ｍｌに懸濁させ、集菌後リン酸緩衝液（
注４）で洗浄した。ついで子のうを溶菌酵素溶液（注５
）２１１ＩＩ中で３０℃で１時間振盪して、子のうを溶
解させた。ついで集菌後、遊離した胞子を無菌水１ｗ／
で洗浄してリン酸緩衝液３瀝に懸濁させた。
のうを無菌水１ｍｌに懸濁させ、集菌後リン酸緩衝液（
注４）で洗浄した。ついで子のうを溶菌酵素溶液（注５
）２１１ＩＩ中で３０℃で１時間振盪して、子のうを溶
解させた。ついで集菌後、遊離した胞子を無菌水１ｗ／
で洗浄してリン酸緩衝液３瀝に懸濁させた。
この懸濁液に変異誘起剤としてエチルメタンスルホネー
トを０．１ｗ！添加し、懸濁液を３０℃で２時間振盪し
た。こうして胞子を変異処理した。ついで集菌後、変異
胞子をリン酸緩衝液０．２ｗ！に懸濁させ、懸濁液に５
％チオ硫酸ナトリウム水溶液３ＩＩＩを添加して、懸濁
液を３０℃で１０分間振盪した。こうして変異誘起剤を
中和した。
トを０．１ｗ！添加し、懸濁液を３０℃で２時間振盪し
た。こうして胞子を変異処理した。ついで集菌後、変異
胞子をリン酸緩衝液０．２ｗ！に懸濁させ、懸濁液に５
％チオ硫酸ナトリウム水溶液３ＩＩＩを添加して、懸濁
液を３０℃で１０分間振盪した。こうして変異誘起剤を
中和した。
集菌後、変異胞子をリン酸緩衝液１バで２回洗浄して同
緩衝液５Ｎに懸濁させ、懸濁液を氷冷下に３分間超音波
処理することにより変異胞子を懸濁液中に分散させた。
緩衝液５Ｎに懸濁させ、懸濁液を氷冷下に３分間超音波
処理することにより変異胞子を懸濁液中に分散させた。
ついで集菌後、懸濁液を無菌水で濃度１／１０５〜１／
１０”に希釈し、希釈懸濁液０．１ｍｌをＹＰＤ寒天培
地（注２）に塗抹して３０℃で４８時間培養し、単独胞
子由来の集落を得た。
１０”に希釈し、希釈懸濁液０．１ｍｌをＹＰＤ寒天培
地（注２）に塗抹して３０℃で４８時間培養し、単独胞
子由来の集落を得た。
こうして得られた集落のプレートをマスタープレートと
してレプリカ法により変異株の検出を行なった。すなわ
ち、殺菌したベルベット布地を用いて、前記マスタープ
レートの集落を最小培地（注６）にレプリカし、同培地
で３０℃で４日間培養し、最小培地で増殖できない菌株
を栄養要求性変異株としてマスタープレートがら釣菌し
た。
してレプリカ法により変異株の検出を行なった。すなわ
ち、殺菌したベルベット布地を用いて、前記マスタープ
レートの集落を最小培地（注６）にレプリカし、同培地
で３０℃で４日間培養し、最小培地で増殖できない菌株
を栄養要求性変異株としてマスタープレートがら釣菌し
た。
その結果、栄養要求性株Ｓ１を得た。得られた酵母Ｓ１
の凝集性は（ＦＲ，１□ＶＭ，、−１） Ｓ、のそれに
比べて低下していなかった。
の凝集性は（ＦＲ，１□ＶＭ，、−１） Ｓ、のそれに
比べて低下していなかった。
（ｂ） 酵母１−ＩＺ−１９５３の調製凝集性を有す
るＩＦＯ−１９５３を、酵母Ｓ、の調製の場合と同じ手
法で胞子形成および変−１７＝ 異処理し、栄養要求性株Ｈ２−１９５３を得た。
るＩＦＯ−１９５３を、酵母Ｓ、の調製の場合と同じ手
法で胞子形成および変−１７＝ 異処理し、栄養要求性株Ｈ２−１９５３を得た。
（ｃ） 酵母Ｓ、と酵母Ｈ２−１９５３のプロトプラ
スト融合 酵ｆｆ１ｓ＋をＹＰＤ培地１０がで３０℃で１６時間振
盪培養し、集菌後混合物１がで洗浄した。
スト融合 酵ｆｆ１ｓ＋をＹＰＤ培地１０がで３０℃で１６時間振
盪培養し、集菌後混合物１がで洗浄した。
ついでこれをプロトプラスト調製液（注７）約２１１／
ｌに懸濁させ、懸濁液を３０℃で１時間振盪し、集菌後
混合物（注８）１暦で２回洗浄を行なった。
ｌに懸濁させ、懸濁液を３０℃で１時間振盪し、集菌後
混合物（注８）１暦で２回洗浄を行なった。
酵母Ｈ２−１９５３についても上記と同じ操作で処理を
行なった。
行なった。
ついでこうして得られた酵母ｓ１の処理菌体と酵母Ｈ２
−１９５３の処理菌体とを同量（細胞数１０８個１ｍｌ
ずつ）とって混合し、集菌後混合物を等張渡０．１暦に
懸濁させ、懸濁液にポリエチレングリコール水溶液（注
９）２Ｎを添加した。この懸濁液を３０’Ｃで１５分間
静置してプロトプラスト融合を完結した。ついで集菌後
、菌体を等張渡１ｗｌに懸濁し、懸濁液を２０℃で１５
分間静置した。ついで懸濁液を等張渡で淵−１只
− 度１／１０〜１／１０２に希釈し、希釈懸濁液を、最小
培地（注６）に塗抹し、重層用培地（注１０）を重層し
た。この状態で３０℃で４日間培養を行ない、凝集性（
ＤＦ値＝５）を有する融合株を分離し、この株を酵母Ｓ
１×１９５３−Ａとした。
−１９５３の処理菌体とを同量（細胞数１０８個１ｍｌ
ずつ）とって混合し、集菌後混合物を等張渡０．１暦に
懸濁させ、懸濁液にポリエチレングリコール水溶液（注
９）２Ｎを添加した。この懸濁液を３０’Ｃで１５分間
静置してプロトプラスト融合を完結した。ついで集菌後
、菌体を等張渡１ｗｌに懸濁し、懸濁液を２０℃で１５
分間静置した。ついで懸濁液を等張渡で淵−１只
− 度１／１０〜１／１０２に希釈し、希釈懸濁液を、最小
培地（注６）に塗抹し、重層用培地（注１０）を重層し
た。この状態で３０℃で４日間培養を行ない、凝集性（
ＤＦ値＝５）を有する融合株を分離し、この株を酵母Ｓ
１×１９５３−Ａとした。
なお、プロトプラスト融合に用いた両親株Ｓ、とＨ２−
１９５３は上記最小培地に生育できなかった。
１９５３は上記最小培地に生育できなかった。
（ｄ） 酵母Ｓ１×１９５３’Ａ株の廃糖蜜培地での
馴養 融合株であるＳ、ｘ１９５３−Ａ株をＹＰＤ培地培地１
００エｅ度３０℃で１６時間振盪培養し、前培養液を得
た。ついでフィリピン産廃糖蜜４１８９／Ｉに硫酸アン
モニウム４．１８ｇ／ｌとピロ亜硫酸カリウム０．２ｇ
／ｌとを混合溶解しさらに硫酸でｐｌ−１４，５に調整
して得た培地１１に、前記前培養液を植菌した。これを
２４時間撹拌培養した後、５分間静置し、３００ｄを残
して培養液を引き抜き、新しい培地を加えて１１とし、
培養を再開した。こうして１０回回分培養を続けた後、
得られた酵母をＳ１×１９５３ ＡＡ（微工研菌奇第
８８９５号）とした。
馴養 融合株であるＳ、ｘ１９５３−Ａ株をＹＰＤ培地培地１
００エｅ度３０℃で１６時間振盪培養し、前培養液を得
た。ついでフィリピン産廃糖蜜４１８９／Ｉに硫酸アン
モニウム４．１８ｇ／ｌとピロ亜硫酸カリウム０．２ｇ
／ｌとを混合溶解しさらに硫酸でｐｌ−１４，５に調整
して得た培地１１に、前記前培養液を植菌した。これを
２４時間撹拌培養した後、５分間静置し、３００ｄを残
して培養液を引き抜き、新しい培地を加えて１１とし、
培養を再開した。こうして１０回回分培養を続けた後、
得られた酵母をＳ１×１９５３ ＡＡ（微工研菌奇第
８８９５号）とした。
■ 凝集性およびアルコール発酵能の測定酵母ＩＦＯ−
１９５３、ＦＲＭ１□ＶＭ２−１）Ｓ＋ 、Ｓ＋および
Ｓ’＋ Ｘ １９５３−ＡＡについて、それぞれ凝集性
の程度を示すＤＦ値およびアルコール発酵能を測定した
。
１９５３、ＦＲＭ１□ＶＭ２−１）Ｓ＋ 、Ｓ＋および
Ｓ’＋ Ｘ １９５３−ＡＡについて、それぞれ凝集性
の程度を示すＤＦ値およびアルコール発酵能を測定した
。
ＤＦ値゛は前述した方法で求めた。
またアルコール発酵能は下記の方法で求めた。
すなわちフィリピン産廃糖蜜４７５ｑ／ｌに硫酸アンモ
ニウム４．７５ａ／１とピロ亜硫酸カリウムｏ、 ２ａ
／ｌｉを混合溶解した後、硫酸でｐＨを４．５に調整し
て得た培地１１に、前培養液を加え、これをミニジャー
・ファーメンタ−（東京理科器械社製Ｍ−１００型）で
温度３５℃で回分培養を行ない、１４４時間後のエタノ
ール生成量をガスクロマトグラフィーにより測定した。
ニウム４．７５ａ／１とピロ亜硫酸カリウムｏ、 ２ａ
／ｌｉを混合溶解した後、硫酸でｐＨを４．５に調整し
て得た培地１１に、前培養液を加え、これをミニジャー
・ファーメンタ−（東京理科器械社製Ｍ−１００型）で
温度３５℃で回分培養を行ない、１４４時間後のエタノ
ール生成量をガスクロマトグラフィーにより測定した。
＝ ２０−
ａｔ！Ｉ定結果は下記表３のとおりである。
−２１−、。
表 ３
■ 使用例（アルコール連続発酵）
酵母Ｓ、ｘ１９５３−ＡＡを用いてつきの操作によりア
ルコール連続発酵を行ない、そのアルコール発酵能を調
べた。
ルコール連続発酵を行ない、そのアルコール発酵能を調
べた。
発酵装置として、第１図に示すアルコール発酵装置を用
いた。これは実容積７００ｍのガラス製流動層型発酵槽
（１）を主体とし、温度制御およびＩ）Ｈ制御できるよ
うに構成されている。
いた。これは実容積７００ｍのガラス製流動層型発酵槽
（１）を主体とし、温度制御およびＩ）Ｈ制御できるよ
うに構成されている。
そして発酵原料はポンプ（２）によって同槽（１）の底
部に供給され、反応液はポンプ（３）で同槽の頂部から
底部に戻され、槽頂の菌体法、 隆部（４）から流出す
るようになっている。
部に供給され、反応液はポンプ（３）で同槽の頂部から
底部に戻され、槽頂の菌体法、 隆部（４）から流出す
るようになっている。
５’ＯＯｄ坂ロフラスコにおいてＹＰＤ培地（注１）Ｉ
ＯＣ）ｄを調整し、これを温度１２１℃で１０分間殺菌
した後、ＹＰＤ寒天斜面培地（注２）に保存した酵母Ｓ
唱Ｘ１９５３−ＡＡ株を１白菌耳植菌し、３０℃で１夜
培養した。
ＯＣ）ｄを調整し、これを温度１２１℃で１０分間殺菌
した後、ＹＰＤ寒天斜面培地（注２）に保存した酵母Ｓ
唱Ｘ１９５３−ＡＡ株を１白菌耳植菌し、３０℃で１夜
培養した。
こうして活性な酵母Ｓ１×１９５３ＡＡの前培養液を得
た。
た。
フィリピン産廃糖蜜培地（注目）６００ｄが入っている
発酵槽（１）に上記前培養液１００ｄを入れ、発酵温度
３０℃で８時間回分培養を行なった。ついで連続発酵用
廃糖蜜培地（注１２）を水道水で希釈し、希釈液を発酵
槽（１）に流量３５ｄ／時（希釈率−０，０５時−１）
で連続的に供給し、培地の供給量を徐々に増加していっ
て連続発酵を行なった。
発酵槽（１）に上記前培養液１００ｄを入れ、発酵温度
３０℃で８時間回分培養を行なった。ついで連続発酵用
廃糖蜜培地（注１２）を水道水で希釈し、希釈液を発酵
槽（１）に流量３５ｄ／時（希釈率−０，０５時−１）
で連続的に供給し、培地の供給量を徐々に増加していっ
て連続発酵を行なった。
その結果、培地供給量を３５０ｍ１！／時（希釈率−０
，２５時−１）に増加しても、本酵母の優れた凝集性に
より、構内に直径１〜４ｍｍのフロックが形成された。
，２５時−１）に増加しても、本酵母の優れた凝集性に
より、構内に直径１〜４ｍｍのフロックが形成された。
また産生アルコールは６４９／Ｉという高い濃度で得ら
れ、アルコール生産性（注１３）は第２図に示すように
希釈率０゜５層時で３２ｇ／ｌ・時という高い値に達し
た。
れ、アルコール生産性（注１３）は第２図に示すように
希釈率０゜５層時で３２ｇ／ｌ・時という高い値に達し
た。
■ 比較例
酵母としてＳ１×１９５３−ＡＡの代わりに前記酵母Ｅ
Ｙ＝１を用い、その他の事項を上記使用例と同じにして
、上記操作を繰返した。
Ｙ＝１を用い、その他の事項を上記使用例と同じにして
、上記操作を繰返した。
その結果、培地供給量が７０ｄ／時（希釈率＝０．１時
−１）を超えると、アルコール生産性（注１３）は第２
図に示すように４ｏ／ｌ・時から急激に低下した。
−１）を超えると、アルコール生産性（注１３）は第２
図に示すように４ｏ／ｌ・時から急激に低下した。
■ 培地および試薬
培地および試薬はそれぞれつきのとおりである。
（注１） ＹＰＤ培地
酵母エキス １０ｇ／ｌ
ポリペプトン ２０ｇ／／
グルコース ２０ｇ／／
（注２） ＹＰＤ寒天培地
酵母エキス １０ｇ／／
ポリペプトン ２０ｇ／／
グルコース ２０ｗ／１
寒天 ２０ｇ／／
（注３） 胞子形成用培地
酢酸ナトリウム ５ｇ／ｌ
寒天 ２０ｃｉ／１
（注４） リン酸緩衝液
０．１Ｍリン酸緩衝液
ｐＩ−１＝７．５
（注５） 溶菌酵素溶液
０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７，５）にザイモリアーゼ
２０Ｔ（生化学工業社製）を０．０５％溶かした溶液２
がと、２−メルカプトエタノール１．４μｌとの混合液 （注６） 最小培地 Ｄｉｆｃｏ−Ｙｅａｓｔ Ｎｉｔｒｏｇｅｎ Ｂａ５ｅ
ＷｌｏＡｍｉｎｏ ａｃｉｄ（Ｄｉｆｃｏ社製）６．
７ｇ／／グルコース ２０ｃｉ／１寒天
２０ｇ／ｌ（注７） プロトプ
ラスト調製液 １．５Ｍ塩化カリウム０．８層と、２／１５Ｍリン酸緩
衝液（ｐＨ７，５＞１．ＯＮと、２−メルカプトエタノ
ール１．４μｌと、ザイモリアーゼ２０Ｔ（生化学工業
社製）を０．１Ｍリン緩衝液（ｐＨ７，５）に０．２５
％溶かした溶液０．２ｍｌとの混合液 （注８） 等張液 ０．６Ｍ塩化カリウム水溶液 （注９） ポリエチレングリコール水溶液塩化カルシ
ウム ５．６９／１ ポリエチレングリコール （Ｐ Ｅ Ｇ −５ｏｌｏ） ３００ ｇ／ １
（注１０） 重層用培地 グルコース ２０９／Ｉ Ｄ１ｆｃｏ−Ｙｅａｓｔ Ｎｉｔｒｏｇｅｎ Ｂａ５ｅ
ＷｌｏＡｍｉｎｏ ａｃｉｄ（Ｄｉｆｃｏ社製）、６
．７９／１Ｄｉｆｃｏ−Ｂａｃｔ Ａｇａｒ（Ｄｉｆｃ
ｏ社製）（注目） フィリピン産廃糖蜜培地フィリ
ピン産廃糖蜜 １９０ｏ＃ 硫酸アンモニウム １．９（＋／／ピロ亜硫酸カ
リウム ０．２（＋／ｌ消泡剤
０．５ａ／／よりなる混合液を硫酸でｐＨ４，５に調整
したもの （注１２） 連続発酵用廃糖蜜培地フィリピン産廃
糖蜜 ７００ｏ／／硫酸アンモニウム ３．
！Ｍ／１ピロ亜硫酸カリウム １．２０／ｌ消泡剤
１．０（＋／／よりなる混合液を硫
酸でｐＨ４，５に調整したもの （注１３） アルコール生産性 培養液１１当り１時間に生産されるア ルコールの重量（ｇ）
２０Ｔ（生化学工業社製）を０．０５％溶かした溶液２
がと、２−メルカプトエタノール１．４μｌとの混合液 （注６） 最小培地 Ｄｉｆｃｏ−Ｙｅａｓｔ Ｎｉｔｒｏｇｅｎ Ｂａ５ｅ
ＷｌｏＡｍｉｎｏ ａｃｉｄ（Ｄｉｆｃｏ社製）６．
７ｇ／／グルコース ２０ｃｉ／１寒天
２０ｇ／ｌ（注７） プロトプ
ラスト調製液 １．５Ｍ塩化カリウム０．８層と、２／１５Ｍリン酸緩
衝液（ｐＨ７，５＞１．ＯＮと、２−メルカプトエタノ
ール１．４μｌと、ザイモリアーゼ２０Ｔ（生化学工業
社製）を０．１Ｍリン緩衝液（ｐＨ７，５）に０．２５
％溶かした溶液０．２ｍｌとの混合液 （注８） 等張液 ０．６Ｍ塩化カリウム水溶液 （注９） ポリエチレングリコール水溶液塩化カルシ
ウム ５．６９／１ ポリエチレングリコール （Ｐ Ｅ Ｇ −５ｏｌｏ） ３００ ｇ／ １
（注１０） 重層用培地 グルコース ２０９／Ｉ Ｄ１ｆｃｏ−Ｙｅａｓｔ Ｎｉｔｒｏｇｅｎ Ｂａ５ｅ
ＷｌｏＡｍｉｎｏ ａｃｉｄ（Ｄｉｆｃｏ社製）、６
．７９／１Ｄｉｆｃｏ−Ｂａｃｔ Ａｇａｒ（Ｄｉｆｃ
ｏ社製）（注目） フィリピン産廃糖蜜培地フィリ
ピン産廃糖蜜 １９０ｏ＃ 硫酸アンモニウム １．９（＋／／ピロ亜硫酸カ
リウム ０．２（＋／ｌ消泡剤
０．５ａ／／よりなる混合液を硫酸でｐＨ４，５に調整
したもの （注１２） 連続発酵用廃糖蜜培地フィリピン産廃
糖蜜 ７００ｏ／／硫酸アンモニウム ３．
！Ｍ／１ピロ亜硫酸カリウム １．２０／ｌ消泡剤
１．０（＋／／よりなる混合液を硫
酸でｐＨ４，５に調整したもの （注１３） アルコール生産性 培養液１１当り１時間に生産されるア ルコールの重量（ｇ）
第１図は連続発酵のフローシート、第２図は希釈率とア
ルコール生産性の関係を示すグラフである。 以 上
ルコール生産性の関係を示すグラフである。 以 上
Claims (4)
- （１）優れた凝集性を有する酵母サッカロマイセス（Ｓ
ａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）Ｓ＿１×１９５３−ＡＡ（
微工研菌寄第８８９５号）。 - （２）凝集性がＤＦ値で表わして５である特許請求の範
囲第１項記載の酵母。 - （３）酵母サッカロマイセス・セルビシエ（Ｓａｃｃｈ
ａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）ＩＦＯ−１
９５３の栄養要求性株と酵母サッカロマイセス（Ｓａｃ
ｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）（ＦＲ＿Ｍ＿１＿７Ｖ＿Ｍ＿２
−１）Ｓ＿１（微工研菌寄第７７９４号）の栄養要求性
株とをプロトプラスト融合させ、得られた融合菌体を培
養し、優れた凝集性を有する酵母サッカロマイセス（Ｓ
ａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）Ｓ＿１×１９５３−ＡＡ（
微工研菌寄第８８９５号）を得ることを特徴とする凝集
性酵母の製造法。 - （４）優れた凝集性を有する酵母サッカロマイセス（Ｓ
ａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）Ｓ＿１×１９５３−ＡＡ（
微工研菌寄第８８９５号）を用いることを特徴とするア
ルコール発酵法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61190318A JPS6344880A (ja) | 1986-08-12 | 1986-08-12 | 新規凝集性酵母、その製造法およびこれを用いるアルコ−ル発酵法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61190318A JPS6344880A (ja) | 1986-08-12 | 1986-08-12 | 新規凝集性酵母、その製造法およびこれを用いるアルコ−ル発酵法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6344880A true JPS6344880A (ja) | 1988-02-25 |
Family
ID=16256176
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61190318A Pending JPS6344880A (ja) | 1986-08-12 | 1986-08-12 | 新規凝集性酵母、その製造法およびこれを用いるアルコ−ル発酵法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6344880A (ja) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1041153A1 (en) * | 1997-12-22 | 2000-10-04 | Quinta dos Ingleses, Agro-Industria, Lda. | Cheese whey treatment and valorisation process with continuous ethanolic fermentation |
| WO2001002534A1 (en) * | 1999-06-30 | 2001-01-11 | Sapporo Breweries Limited | Process for producing fermentation product |
| JP2007202517A (ja) * | 2006-02-03 | 2007-08-16 | Mitsui Eng & Shipbuild Co Ltd | バイオマス原料からのエタノール製造方法及び製造装置 |
| JP2008271953A (ja) * | 2007-03-30 | 2008-11-13 | Mitsui Eng & Shipbuild Co Ltd | アルコール連続生産方法 |
| EP2143801A4 (en) * | 2007-03-30 | 2013-06-19 | Mitsui Shipbuilding Eng | PROCESS FOR PRODUCING CONTINUOUS ALCOHOL |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS61108377A (ja) * | 1984-10-31 | 1986-05-27 | Hitachi Zosen Corp | 安定かつ優れた凝集性を有する酵母の製造法 |
| JPS61108376A (ja) * | 1984-10-31 | 1986-05-27 | Hitachi Zosen Corp | 凝集性と発酵能を備えた酵母の製造法 |
-
1986
- 1986-08-12 JP JP61190318A patent/JPS6344880A/ja active Pending
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS61108377A (ja) * | 1984-10-31 | 1986-05-27 | Hitachi Zosen Corp | 安定かつ優れた凝集性を有する酵母の製造法 |
| JPS61108376A (ja) * | 1984-10-31 | 1986-05-27 | Hitachi Zosen Corp | 凝集性と発酵能を備えた酵母の製造法 |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1041153A1 (en) * | 1997-12-22 | 2000-10-04 | Quinta dos Ingleses, Agro-Industria, Lda. | Cheese whey treatment and valorisation process with continuous ethanolic fermentation |
| WO2001002534A1 (en) * | 1999-06-30 | 2001-01-11 | Sapporo Breweries Limited | Process for producing fermentation product |
| US7022354B1 (en) | 1999-06-30 | 2006-04-04 | Sapporo Breweries Limited | Process for producing fermentation product |
| JP2007202517A (ja) * | 2006-02-03 | 2007-08-16 | Mitsui Eng & Shipbuild Co Ltd | バイオマス原料からのエタノール製造方法及び製造装置 |
| JP2008271953A (ja) * | 2007-03-30 | 2008-11-13 | Mitsui Eng & Shipbuild Co Ltd | アルコール連続生産方法 |
| EP2143801A4 (en) * | 2007-03-30 | 2013-06-19 | Mitsui Shipbuilding Eng | PROCESS FOR PRODUCING CONTINUOUS ALCOHOL |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Ishizuka et al. | Breeding of a mutant of Aureobasidium sp. with high erythritol production | |
| Dung et al. | Functionality of selected strains of moulds and yeasts from Vietnamese rice wine starters | |
| Laluce et al. | Development of rapidly fermenting strains of Saccharomyces diastaticus for direct conversion of starch and dextrins to ethanol | |
| US4403034A (en) | Ethanol Production | |
| Wickerham et al. | Starch hydrolysis and fermentation by the yeast Endomycopsis fibuliger | |
| Wilson et al. | Schwanniomyces: SCP and ethanol from starch | |
| Laplace et al. | Alcoholic glucose and xylose fermentations by the coculture process: compatibility and typing of associated strains | |
| Barnett | Introduction: a historical survey of the study of yeasts | |
| IL22367A (en) | Production of amyloglucosidase | |
| JPS6344880A (ja) | 新規凝集性酵母、その製造法およびこれを用いるアルコ−ル発酵法 | |
| Bosch et al. | A simple descriptive model of filamentous fungi spore germination | |
| Tingle et al. | Germination of yeast spores lacking mitochondrial deoxyribonucleic acid | |
| JPS63500772A (ja) | イ−スト細胞溶解酵素系の製造方法 | |
| Dooms et al. | Polyol synthesis and taxonomic characters in the genus Moniliella | |
| McClary et al. | Structural differentiation of obligately aerobic and facultatively anaerobic yeasts | |
| JPS61108384A (ja) | 新規凝集性酵母 | |
| US3418211A (en) | Process of producing glucamylase and an alcohol product | |
| JPS61108382A (ja) | 新規凝集性酵母 | |
| JPH0259717B2 (ja) | ||
| JPS61108381A (ja) | 新規凝集性酵母 | |
| JPH0116476B2 (ja) | ||
| RU2001097C1 (ru) | Штамм дрожжей SACCHAROMYCES CEREVISIAE дл получени спирта | |
| JP4393028B2 (ja) | 新規酵母及びその利用 | |
| JPS61108378A (ja) | 新規凝集性酵母 | |
| JPH0121758B2 (ja) |