KR102065112B1 - 높은 항원 선택성을 갖는 항체의 스크리닝 방법 - Google Patents

Abstract

일 구체예는 표적 특이적 항체의 선별 방법에 관한 것으로, 보다 구체적으로는 특정한 생리적 조건에서 구조적 변화를 일으키는 항원에 대한 항체를 선별하는 방법에 관한 것이다. 이 방법으로 선별된 항체는 특정 조건 및 구조적 변화에 의존적인 항원에 대해 높은 선택성을 갖는다

Description

높은 항원 선택성을 갖는 항체의 스크리닝 방법{A method to screen antibodies with high selectivity}

일 구체예는 항원에 대해 높은 선택성을 갖는 항체를 스크리닝하는 방법에 관한 것으로, 특정한 생리적 조건에서 변화되는 구조의 항원에 대한 항체를 선별함으로서, 높은 선택성을 갖는 항체를 스크리닝하는 방법에 관한 것이다.

항체는 항원과 결합함으로써 이들의 생물학적 활성을 개시한다. 항원과 결합하는 항체는 일반적으로 하나의 항원에 특이적이고 상기 결합은 대개 친화도가 높다. 항체는 B-림프구에 의해 생성된다. 혈액은 많은 상이한 항체들을 포함하고 있고, 각 항체는 B-세포의 클론으로부터 유래되며 항원에 대해 독특한 구조 및 특이성을 가진다.

한편, 아넥신은 20여년 전부터 리포코르틴, 칼팍틴, 엔도넥신 등으로 불리던 단백질을 10여년 전부터 통일시켜 부르기 시작한 단백질의 이름이다. 아넥신은 칼슘과 포스포리피드 (phospholipid)에 결합하며, 엔도넥신-폴드 (endonexin-fold)라고 불리는 'GXGTDE' 모티프를 포함하는 약 70개 아미노산 서열이 4번 반복 (8번 반복이 되는 경우도 존재)되는 독특한 보존된 도메인을 갖는다. 종래에 발표된 아넥신들은 상기 보존된 도메인을 포함하고 있으며, 상기 서열의 보존 여부로 아넥신 단백질인지 아닌지를 결정짓는다.

아넥신 단백질은 포유류에서 사상균에 이르기까지 다양한 생명체에 존재하는 것으로 알려져 있으며, 인간으로부터 아넥신 Ⅰ, Ⅱ, Ⅲ, Ⅳ, Ⅴ, Ⅵ, Ⅶ, Ⅷ 및 XIII 등이 보고되고 있다. 아넥신 단백질은 뼈의 구조 형성에 관여할 뿐만 아니라 막 트래피킹, 막투과 채널 활성, 포스포리파아제 A2의 억제, 응고 억제, 미토겐 시그널의 전달 및 세포-매트릭스 상호작용 조정 등 다양한 생물학적 현상에 관여하는 것으로 생각되어지고 있다. 또한, 이중 아넥신 A1은 암 조직에서도 발견되는 것으로 알려져 있다. 또한, 암세포에서 과발현되는 단백질을 이용한 항암제를 개발하기 위하여 연구가 이루어지고 있는 실정이다.

일반적으로, 특정 항원에 대해 항체를 선별하는 방법으로는 phage displayed antibody library를 이용한 screening이 흔히 이용된다. 그러나 항암 등 질병 타겟 단백질은 대부분 다양한 신호전달체계에 관여하며, 이 과정에서 주변 환경에 의존적으로 구조적 변화가 일어나는 항원의 경우 일반적인 library screening을 사용했을 때 높은 친화도를 갖는 우수한 항체를 선별하기 어렵다.

따라서, 이러한 문제를 해결하기 위하여 일 구체예에서 선택성이 높은 항체를 스크리닝하는 방법을 연구하였고, 높은 선택성을 갖는 항체를 선별하는 방법을 고안하였다.

일 구체예는 높은 선택성을 갖는 항원을 스크리닝하는 방법을 제공한다.

또 다른 구체예는 높은 선택성을 갖는 항원을 스크리닝하는 방법에 의해 수득된 항체를 제공한다.

일 양상은 높은 선택성을 갖는 항원을 스크리닝하는 방법에 대한 것이다.

일 구체예는 항원 단백질에 칼슘(Ca²⁺)를 첨가하는 단계; 및 항체 라이브러리(Ab library)를 상기 칼슘이 첨가된 항원 단백질에 결합시키는 단계를 포함하는 항체 스크리닝 방법을 제공한다.

상기 항체 스크리닝하는 방법을 상세하게 설명하면 다음과 같다.

먼저, 항원 단백질에 칼슘(Ca²⁺)를 첨가하는 단계를 포함한다.

항원으로 이용될 수 있는 단백질은 세포내에 존재하거나 세포막에 결합되는 모든 종류의 단백질이 이용될 수 있다. 상기 항원 단백질은 항암 및 면역 질환 등 질병 타겟 단백질이 될 수 있다. 상기 단백질은 다양한 신호전달체계에 관여하며, 신호 전달 중 업스트림 신호(upstream signal)에 의존적으로 구조적 변화가 일어나는 항원일 수 있다. 바람직하게는 상기 항원 단백질은 업스트림 신호에 의해 분비되는 칼슘 이온의 변화에 의해 구조가 변화되는 단백질일 수 있다. 상기 상기 항원 단백질은 전장 단백질 일 수도 있으나, N 말단 또는 C 말단 부분이 절단된 항원 단백질 일 수 있다.

이러한 단백질은 아넥신일 수 있으며, 특히 아넥신 A1(Annexin A1) 일 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다. 또한, 아넥신 A1을 비롯한 아넥신 패밀리(Annexin family) 및 칼모듈린(calmodulin), 트로포닌 C(troponin C), S100 단백질 등의 EF hand protein 및 protein kinase C 등의 C2 domain protein 등이 해당될 수 있다. 항원 단백질 아넥신 A1은 전장 단백질일 수 있으며, 서열번호 1의 서열을 갖는 폴리펩티드를 포함할 수 있다. 또한, 항원 단백질 아넥신 A1은 N 말단이 절단된 단백질 일 수 있다. 상기 절단된 아넥신 A1은 서열번호 2의 서열을 갖는 폴리펩티드를 포함할 수 있다.

또한, 첨가되는 칼슘 농도는 0.1 - 30 nM 일 수 있으며, 바람직하게는 1 - 3 nM 일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 칼슘 농도는 항원 단백질의 종류에 따라 당업자에 통상적인 지식에 비추어 적절히 조절될 수 있다.

이후, 항체 라이브러리(Ab library)를 상기 칼슘이 첨가된 항원 단백질에 결합시키는 단계를 포함한다.

이때 상기 항체 라이브러리는 파지 디스플레이 라이브러리(phage display library)인 것일 수 있다. 파지 디스플레이 라이브러리(파지 펩티드/항체 라이브러리, 파지 라이브러리 또는 펩티드/항체 라이브러리라고도 함)는 파지의 대형 군집(통상 10⁸ -10⁹)을 포함하며, 각 파지 입자는 상이한 펩티드 또는 폴리펩티드 서열을 디스플레이한다. 이들 펩티드 또는 폴리펩티드 단편은 다양한 길이로 작제될 수 있다. 상기 디스플레이된 펩티드 또는 폴리펩티드는 인간 항체의 중쇄 또는 경쇄로부터 유래할 수 있으나, 이에만 한정되는 것은 아니다.

파지 클론은 바이오패닝(biopanning)으로 알려져 있는 다단계 과정에 의하여 선택되고 동정된다. 바이오패닝은 파지 디스플레이 단백질 리간드 변이체(파지 디스플레이 라이브러리)를 표적화 함께 항온시키고, 세척 기법에 의하여 비결합된 파지를 제거하고, 결합된 파지를 특이적으로 용출시킴으로써 수행된다. 상기 용출된 파지는 추가의 결합 사이클을 행하기 전에 임의로 증폭되며, 임의의 증폭은 표적에 대하여 최상의 결합을 디스플레이하는 항체 단편을 보유하는 파지 클론을 위한 특이적 서열의 푸울을 농축시킨다. 몇 회의 주기 후에, 개개의 파지 클론은 특성화되고, 상기 클론에 의하여 디스플레이된 펩티드 또는 항체의 서열은 파지 비리온의 상응하는 DNA를 서열화함으로써 결정된다.

추가적으로, 항체 라이브러리를 음성 선택(negative selection)하는 단계를 더 포함할 수 있다.

상기 음성 선택하는 단계는 절단된 항원 단백질에 특이적으로 결합할 수 있는 항체를 선별하기 위한 것이다.

상기 음성 선택하는 단계는 항체 라이브러리를 항원 전장 단백질과 결합시키는 단계; 및 항원 전장 단백질과 결합한 후보 항체를 항체 라이브러리에서 제거하는 단계를 포함할 수 있다.

상기 항원 단백질은 타겟이 되는 항원 단백질이며, 아넥신 뿐 아니라 칼슘 이온의 변화에 의해 구조가 변화되는 단백질일 수 있다.

또한, 상기 처리된 칼슘의 농도는 0.1 - 30 nM 일 수 있다.

상기 음성 선택을 통해서 항체 라이브러리는 항원 단백질의 전장 단백질에 결합력이 있는 펩티드 또는 항체가 제거된 것으로서, 절단된 항원 단백질에만 특이적으로 선택성을 띄게 된다.

일 양상은 높은 선택성을 띄는 항체 또는 항체 단편에 대한 것이다.

일 구체예는 상기의 스크리닝에 의해 수득된 항체 라이브러리로부터 수득된 항체 또는 항체 단편일 수 있다.

명세서에서 사용된 용어 "항체"는 가장 광범위한 의미로 사용되고, 구체적으로는 모노클로날 항체, 폴리클로날 항체, 이량체, 다량체, 다중-특이적 항체 (예: 이중-특이적 항체), 및 목적하는 생물학적 활성을 나타내는 항체 단편이 포함된다. 항체는 뮤린, 인간, 인간화, 키메라, 또는 기타 종으로부터 유래된 것일 수 있다. 항체는 특이적 항원을 인식하고 이와 결합할 수 있는 면역계에 의해 생성된 단백질이다.

항체에는 완전한 길이 면역글로불린 분자 또는 완전한 길이 면역글로불린의 면역학적 활성 부분, 즉 관심있는 표적 항원 (이러한 표적에는 암 세포, 또는 자가면역 질환과 연관된 자가면역 항체를 생성시키는 세포가 포함되지만, 이에 제한되지 않는다) 또는 그의 일부와 면역특이적으로 결합하는 항원 결합 부위를 함유하는 분자가 포함된다.

명세서에서 사용된 용어, "항체 단편"은 완전한 길이 항체의 일부, 일반적으로 그의 항원 결합성 또는 가변 영역을 포함한다. 항체 단편의 예에는 Fab, Fab', F(ab')2, 및 Fv 단편; 디아바디(diabody); 선형 항체; Fab 발현 라이브러리에 의해 생성된 단편, 항-개체특이형 (항-Id) 항체, CDR (상보성 결정 영역), 및 암 세포 항원, 바이러스성 항원 또는 미생물성 항원과 면역특이적으로 결합하는 상기 항체의 에피토프-결합성 단편; 단일 쇄 항체 분자; 및 항체 단편으로부터 형성된 다중-특이적 항체가 포함된다.

또한, 상기 항체는 아넥신 A1에 특이적으로 결합하는 것인 항체일 수 있다. 특히 음성 선택을 거쳐 선별된 항체의 경우에는 전장 단백질과는 결합하지 않고, 절단 단백질과만 특이적으로 결합하게 된다.

일 구체예는 상기의 항체를 포함하는 암 또는 염증질환 등의 질병 진단 키트를 제공한다.

명세서에서 사용된 용어 "암" 및 "암성"은 포유동물에서 조절되지 않는 세포 성장을 전형적인 특징으로 하는 생리적 상태를 의미하거나 그러한 생리적 상태를 설명하는 것이다. "종양"은 하나 이상의 암성 세포를 포함한다. 암의 예로는 암종, 림프종, 모세포종, 육종 및 백혈병 또는 림프성 악성 종양 등이 있으나 이것으로 제한되지 않는다. 이러한 암의 보다 특별한 예로는 편평 세포암 (예, 상피성 편평 세포 암), 폐암, 예를 들어 소세포(small-cell) 폐암, 비-소세포 폐암 ("NSCLC"), 폐의 선암 및 폐의 편평 암종, 복막암, 간세포성 암, 위암, 예를 들어 위장관암, 췌장암, 교모세포종, 자궁경부암, 난소암, 간암(liver cancer), 방광암, 간세포암(hepatoma), 유방암, 대장암, 직장암, 직장결장암, 자궁내막 또는 자궁 암종, 타액선 암종, 신장암, 전립선 암, 외음부암, 갑상선암, 간 암종, 항문 암종, 음경 암종 뿐만이 아니라 두경부암 등이 있다.

또한, 상기 키트는 하나 이상의 반응 시약을 갖는 포장단위를 포함하는 키트 형태로 제공될 수 있다. 또한 상기 키트는 하나 이상의 하기의 품목을 포함할 수 있다: 완충액, 사용설명서, 및 양성 또는 음성 대조군. 키트는 본 명세서에 기술된 방법을 수행하기 위해 적절한 비율로 혼합된 반응 시약들의 용기들을 포함할 수 있다. 반응 시약 용기들은 바람직하게는 상기 방법을 수행할 때 측정하는 단계를 생략할 수 있도록 단위 수량의 반응 시약을 포함한다.

일 구체예에 따른 항체 스크리닝의 방법은 특정한 생리적 조건에서 구조적 변화를 일으키는 항원에 대한 항체를 선별하는 방법에 관한 것이다. 구체적으로 이온 상태, 특히 칼슘에 의한 구조변화 뿐 아니라, 세포막에 결합되는 상태에서 항원 단백질의 말단이 일정 부분 절단되어 야기되는 구조변화를 모두 고려하였다. 이 방법으로 선별된 항체는 특정 조건 및 구조적 변화에 의존적인 항원에 대해 높은 선택성을 갖으므로, 항체를 이용한 진단 또는 치료에 효과적으로 이용될 수 있다.

도 1은 정제된 아넥신 A1을 나타낸 것이며, 왼쪽의 컬럼은 아넥신 A1의 전장 단백질을 오른쪽의 컬럼은 아넥신 A1의 절단된 형태를 도시한 것이다.
도 2는 두번째 스크리닝(Round 2) 과정에서 항원과 항체 라이브러리의 결합력을 측정한 결과를 도시한 것이다. 이때 항원은 전장 아넥신 단백질 및 절단된 아넥신 단백질이다.
도 3은 세번째 스크리닝(Round 3) 과정에서 항원과 항체 라이브러리의 결합력을 측정한 결과를 도시한 것이다. 이때 항원은 전장 아넥신 단백질 및 절단된 아넥신 단백질이다.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 자명하다.

<실시예 1> 아넥신 단백질 및 절단된 아넥신 단백질의 수득

전장 아넥신 및 절단된 아넥신의 아미노산 서열(서열번호 1, 2)에 따라 E.coli에서의 단백질 발현을 위한 유전자를 합성하였다(제노텍). 합성된 벡터를 E.coli에 형질전환시켜 밤새 배양 후, 발현된 아넥신 단백질 말단의 His tag을 이용하여 친화성 정제(affinity purification)를 수행하였다. 정제된 전장 및 절단된 아넥신 단백질은 폴리아크릴아미드 겔에 전기영동하여 순도 및 크기를 확인하였다(도 3).

<실시예　2> 항 ANX A1 항체 선별

생체 내에 존재하는 두 가지 형태(WT, Processed)의 Annexin A1(ANX A1) 항원 중, processed form의 ANX A1에 대한 특이적인 항체를 선별하고자 하였으므로, 전장 아넥신 단백질로 음성 선택한 후 절단된 아넥신 단백질에 결합하는 항체를 바이오패닝(biopanning)으로 선별하였다.

전장 아넥신 단백질에 biotinylation kit(Pierce)을 이용해 비오틴을 부착한 후, 스트렙타비딘이 코팅된 자성 비드(Invitrogen)에 결합시켰다. 비드와 결합된 단백질에 항체 라이브러리를 결합시켜 음성 선택(negative selection)으로 binder를 제외한 library를 취했다. 마찬가지로 비오틴을 부착한 절단된 ㅇ아넥신 A1(processed ANX A1)을 자성 비드와 결합시키고, 음성 선택한 항체 library를 2mM CaCl₂ 첨가 조건에서 결합시켜 절단된 ANX A1에 특이적으로 결합하는 항체를 얻었다. 이 과정을 round 3까지 반복하여 비특이적인 결합이 제거된 항체 풀을 강화시켰다.

<실시예　3> 선별된 항체의 결합력 확인

바이오패닝으로 선별한 항체 라이브러리의 항원 결합력을 확인하기 위하여 ELISA법을 이용한 항원 결합력 테스트를 실시하였다. 개별 파지 클론(phage clone)이 감염된 E.coli를 밤새 배양한 후, 20 % 수크로스 용액을 사용하여 파지 디스플레이된 항체(phage-displayed antibody)가 포함되어 있는 세포질 분획(periplasmic fraction)을 분리하였다. 이 세포질 분획을 각각 전장 아넥신 및 절단된 아넥신이 코팅되어 있는 96-웰 immunoplate(Nunc)에 결합시킨 후, 항체 말단에 tagging되어 있는 HA tag을 검출할 수 있는 2차 항체(secondary antibody) (Santa Cruz)와 결합시켰다. 2차 항체는 HRP conjugation된 것을 사용하여 ELISA를 수행하였고, 바이오패닝의 round2 및 round 3 output에서 모두 절단된 아넥신에 대한 특이적인 결합력을 확인하였다 (도 2,3).

<110> Samsung Electronics Co. Ltd <120> A method to screen antibodies with high selectivity <130> PN097268 <160> 2 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 346 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> Annexin A1 protein <400> 1 Met Ala Met Val Ser Glu Phe Leu Lys Gln Ala Trp Phe Ile Glu Asn 1 5 10 15 Glu Glu Gln Glu Tyr Val Gln Thr Val Lys Ser Ser Lys Gly Gly Pro 20 25 30 Gly Ser Ala Val Ser Pro Tyr Pro Thr Phe Asn Pro Ser Ser Asp Val 35 40 45 Ala Ala Leu His Lys Ala Ile Met Val Lys Gly Val Asp Glu Ala Thr 50 55 60 Ile Ile Asp Ile Leu Thr Lys Arg Asn Asn Ala Gln Arg Gln Gln Ile 65 70 75 80 Lys Ala Ala Tyr Leu Gln Glu Thr Gly Lys Pro Leu Asp Glu Thr Leu 85 90 95 Lys Lys Ala Leu Thr Gly His Leu Glu Glu Val Val Leu Ala Leu Leu 100 105 110 Lys Thr Pro Ala Gln Phe Asp Ala Asp Glu Leu Arg Ala Ala Met Lys 115 120 125 Gly Leu Gly Thr Asp Glu Asp Thr Leu Ile Glu Ile Leu Ala Ser Arg 130 135 140 Thr Asn Lys Glu Ile Arg Asp Ile Asn Arg Val Tyr Arg Glu Glu Leu 145 150 155 160 Lys Arg Asp Leu Ala Lys Asp Ile Thr Ser Asp Thr Ser Gly Asp Phe 165 170 175 Arg Asn Ala Leu Leu Ser Leu Ala Lys Gly Asp Arg Ser Glu Asp Phe 180 185 190 Gly Val Asn Glu Asp Leu Ala Asp Ser Asp Ala Arg Ala Leu Tyr Glu 195 200 205 Ala Gly Glu Arg Arg Lys Gly Thr Asp Val Asn Val Phe Asn Thr Ile 210 215 220 Leu Thr Thr Arg Ser Tyr Pro Gln Leu Arg Arg Val Phe Gln Lys Tyr 225 230 235 240 Thr Lys Tyr Ser Lys His Asp Met Asn Lys Val Leu Asp Leu Glu Leu 245 250 255 Lys Gly Asp Ile Glu Lys Cys Leu Thr Ala Ile Val Lys Cys Ala Thr 260 265 270 Ser Lys Pro Ala Phe Phe Ala Glu Lys Leu His Gln Ala Met Lys Gly 275 280 285 Val Gly Thr Arg His Lys Ala Leu Ile Arg Ile Met Val Ser Arg Ser 290 295 300 Glu Ile Asp Met Asn Asp Ile Lys Ala Phe Tyr Gln Lys Met Tyr Gly 305 310 315 320 Ile Ser Leu Cys Gln Ala Ile Leu Asp Glu Thr Lys Gly Asp Tyr Glu 325 330 335 Lys Ile Leu Val Ala Leu Cys Gly Gly Asn 340 345 <210> 2 <211> 316 <212> PRT <213> Artificial Sequence <220> <223> truncated Annexin A1 protein <400> 2 Gly Pro Gly Ser Ala Val Ser Pro Tyr Pro Thr Phe Asn Pro Ser Ser 1 5 10 15 Asp Val Ala Ala Leu His Lys Ala Ile Met Val Lys Gly Val Asp Glu 20 25 30 Ala Thr Ile Ile Asp Ile Leu Thr Lys Arg Asn Asn Ala Gln Arg Gln 35 40 45 Gln Ile Lys Ala Ala Tyr Leu Gln Glu Thr Gly Lys Pro Leu Asp Glu 50 55 60 Thr Leu Lys Lys Ala Leu Thr Gly His Leu Glu Glu Val Val Leu Ala 65 70 75 80 Leu Leu Lys Thr Pro Ala Gln Phe Asp Ala Asp Glu Leu Arg Ala Ala 85 90 95 Met Lys Gly Leu Gly Thr Asp Glu Asp Thr Leu Ile Glu Ile Leu Ala 100 105 110 Ser Arg Thr Asn Lys Glu Ile Arg Asp Ile Asn Arg Val Tyr Arg Glu 115 120 125 Glu Leu Lys Arg Asp Leu Ala Lys Asp Ile Thr Ser Asp Thr Ser Gly 130 135 140 Asp Phe Arg Asn Ala Leu Leu Ser Leu Ala Lys Gly Asp Arg Ser Glu 145 150 155 160 Asp Phe Gly Val Asn Glu Asp Leu Ala Asp Ser Asp Ala Arg Ala Leu 165 170 175 Tyr Glu Ala Gly Glu Arg Arg Lys Gly Thr Asp Val Asn Val Phe Asn 180 185 190 Thr Ile Leu Thr Thr Arg Ser Tyr Pro Gln Leu Arg Arg Val Phe Gln 195 200 205 Lys Tyr Thr Lys Tyr Ser Lys His Asp Met Asn Lys Val Leu Asp Leu 210 215 220 Glu Leu Lys Gly Asp Ile Glu Lys Cys Leu Thr Ala Ile Val Lys Cys 225 230 235 240 Ala Thr Ser Lys Pro Ala Phe Phe Ala Glu Lys Leu His Gln Ala Met 245 250 255 Lys Gly Val Gly Thr Arg His Lys Ala Leu Ile Arg Ile Met Val Ser 260 265 270 Arg Ser Glu Ile Asp Met Asn Asp Ile Lys Ala Phe Tyr Gln Lys Met 275 280 285 Tyr Gly Ile Ser Leu Cys Gln Ala Ile Leu Asp Glu Thr Lys Gly Asp 290 295 300 Tyr Glu Lys Ile Leu Val Ala Leu Cys Gly Gly Asn 305 310 315

Claims (14)

1. 칼슘(Ca²⁺) 첨가에 의해 구조가 변화되는 항원 단백질에 칼슘을 첨가하는 단계; 및
   항체 라이브러리(Ab library)를 상기 칼슘이 첨가된 항원 단백질에 결합시키는 단계를 포함하는 항체 스크리닝 방법.
2. 청구항 1에 있어서, 상기 항원 단백질은 아넥신(Annexin), 칼모듈린(calmodulin), EF 핸드 단백질(EF hand protein) 및 C2 도메인 단백질(C2 domain protein)으로 구성된 군으로부터 선택된 어느 하나인 것인 항체 스크리닝 방법.
3. 청구항 1에 있어서, 첨가된 칼슘 농도는 0.1 nM 내지 30 nM 인 것인 항체 스크리닝 방법.
4. 청구항 2에 있어서, 상기 아넥신(Annexin)은 아넥신 A1(Annexin A1) 단백질인 것인 항체 스크리닝 방법.
5. 청구항 4에 있어서, 상기 아넥신 A1 단백질의 서열은 서열번호 1인 것인 항체 스크리닝 방법.
6. 청구항 1에 있어서, 상기 항원 단백질의 N 말단 또는 C 말단이 절단된 것인 항체 스크리닝 방법.
7. 청구항 2에 있어서, 상기 아넥신은 N 말단이 절단된 것인 항체 스크리닝 방법.
8. 청구항 7에 있어서, 상기 N 말단이 절단된 아넥신 단백질의 서열은 서열번호 2인 것인 항체 스크리닝 방법.
9. 청구항 1에 있어서, 상기 항체 라이브러리는 파지 디스플레이 라이브러리(phage display library)인 것인 항체 스크리닝 방법.
10. 청구항 1에 있어서, 항체 라이브러리를 음성 선택(negative selection)하는 단계를 더 포함하는 것인 항체 스크리닝 방법.
11. 청구항 10에 있어서, 상기 음성 선택하는 단계는 항체 라이브러리를 아넥신 전장 단백질과 결합시키는 단계; 및 아넥신 전장 단백질과 결합한 후보 펩티드는 항체 라이브러리에서 제거하는 단계를 포함하는 것인 항체 스크리닝 방법.
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