KR20190108189A - 자스모네이트 화합물의 조성물 및 이의 용도 - Google Patents
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Abstract
Description
도 1: (A) LDE에서 MDJ의 크로마토그램; (B) LDE-전달된 MDJ(한 구체예, 리포좀-전달된 MDJ)의 주사 전자 현미경 이미지; (C) LDE-전달된 MDJ 및 아미노산의 주사 전자 현미경 이미지.
도 2: 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ(cyclodextrin-carried MDJ)(i.p.) 처리된 마우스 대장 종양에서 강력하고 균일하게 분포된 카스파제-3 발현.
도 3: MDJ-처리된(i.r.) 마우스에서 대장 암종의 상피에 피상적으로 제한되어 있는 이종 카스파제-3 발현.
도 4A-4O: (A) 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ-처리된 마우스(GT) 및 대조군(GC)에서 종양 부피의 변화에 대한 도식도. 주목할 것은 처리된 동물 모두 종양 부피에서 현저한 감소를 나타냈다(B 및 C). 실험 말기에 대표적인 종양들의 거시적 관점. 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ-처리된 동물 유래의 종양들은(B) 대조군 종양들(C)과 비교하여 좀 더 작았고, 창백하고 단단한 외부 층과 더 부드러운 핵을 나타냈다. 조직병리학에서 대조군(D)에서 보다 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ-처리된 동물 유래의 종양들에서 훨씬 더 큰 괴사(N) 지역이 나타난다(E). 주목할 것은 괴사 지점들이 과염색성 신생 슈도팰리세이드(hyper chromatic neoplastic pseudopalisades), 이른바 "포이-괴사 지역(poi-necrotic areas)"(PN)의 집결 부분에 의해 둘러싸여 있다는 것이다. 대조군 종양세포들은 소혈관들(검은색 화살표)이 가까이 동반된 세포들의 망상구조의 척수(networking cords)(뚜렷한 경계선)로 조직된다(F 및 H). 도 4G에 나타난 바와 같이, 이 공간 조직은 혈액 세포 유출(흰색 화살표) 및 미세-출혈 지점과 더불어(도 4I), 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ 처리된 동물들에서 심하게 분포되어 있다. CD34 양성 면역-염색된 세포들은 대조군 종양들의 스트로마에서 다수 존재하나(도 4J), GT 종양들은 CD34 염색된 세포들의 현저하고 통계적으로 유의한 수적 감소를 나타냈다(도 4K 및 4L). VEGF 면역-염색 결과, 대조군 종양들에서 종양 침습 전방 지역(IF)에서 혈관의 조직화된 망상구조가 나타났다(도 4M). GT 종양에서, IF 지역은 공간 조직의 현저한 붕괴와 더 작은 수의 양성 세포들을 나타냈다(도 4N). 정량 분석 결과, 그룹 GT에서 IF 및 PN 지역에서 VEGF 양성 세포의 수는 극적으로 감소한다(도 40). Mann-Whitney 테스트 (*p<0.01)
도 5A-5D: GT 및 CG 종양들에서 유전자 발현의 변화. 마이크로어레이 분석에서 밝혀진 바와 같이, 대조군 종양들과 비교하여, 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ 종양들에서 상향 및 하향-조절된 최초 유전자들의 목록. 또한, 두 그룹 간 적어도 2배 변화를 보여주는 유전자들의 발현 패턴을 보여준다.
도 6A-6E: 마이크로어레이 데이터의 도식도. 도 6A에서, 데이터 세트의 스캐터 플롯은 중심축(고유 벡터)을 따라 두 그룹 간의 유전자 분포를 보여준다. 분석된 유전자들은 색 디폴트로 나타낸 그들의 배수 변화 값을 포함하여 최소에서 최대 범위까지 분포되어 있다. 도 6B에서, 계층 클러스터링과 같이 클러스터링 알고리즘(K-Means)은 그들의 발현 프로파일의 유사도를 기반으로 병합된 가장 유사한 실체를 나타냈다. 단백질의 유전자 분류사를 보여주는 단백질의 관계는 Ingenuity 데이터베이스에 있다. 이들은 유색 심볼로 나타낸다(녹색 심볼은 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ 후 좀 더 작은 유도를 갖는 단백질을 가리키고, 붉은색 심볼은 좀 더 큰 유도를 갖는 단백질을 가리킨다). 색깔의 강도는 유도 크기에서의 그룹 간 차이를 가리킨다. 연관이 있는 단백질들은 속이 빈 심볼로 나타낸다. 소수의 유색 단백질들만 연관이 있는 단백질을 통해 직접적으로 또는 간접적으로 연결되어 있는 것은 아니다. 혈관신생에 관련된 인자들 중 어떤 것은 도 6C에서 그리고 일반 도면은 도 6D에서 도시될 수 있다. 도 6E에서 어떤 유전자 샘플의 경우 마이크로어레이 데이터와 qRP-PCR의 방법 간에 일치된 결과가 관찰될 수 있다.
도 7A-7T: NFκB, TGFβ, HIF-1 및 COX-2 발현. 도 7A-7C는 그룹 GC와 비교하여, 그룹 GT에서 웨스턴-블랏팅에 따라 NFκB (P105 및 P50)의 두 서브-개체의 현저한 감소를 보여준다. 더욱이, 사우스웨스턴 조직화학 분석 결과, 핵으로의 NFκB 전사는 그룹 GB와 비교하여(도 7D), 그룹 GT에서 거의 사라짐을 확인하였다(도 7E). 유일한 예외는 H&E 염색에서 보인 혈관 손상이 있는 지역에서 그룹 GT에서만 혈관에서 현저하고 높게 NFκB 염색이 있다는 것이다(도 7F). 주목할 것은 혈관 수가 작을 때, 이는 WB 분석에 따라 NFκB의 전체적인 정량 분석에 영향을 주지는 않을 것이라는 것이다. TGFβ 면역-염색은 GT와 비교하여(도 7I), 그룹 GC에서 외형 측정에 의해 확인된 것(도 7J)을 검은색 화살표로 경계 표시한 대로 주로 PN 지역에서 훨씬 더 강하게 보였다(도 7H). 또한, HIF-1 면역-염색은 GT와 비교하여(도 7M 및 7N), 그룹 GC에서, 외형 측정(도 7O)과 웨스턴 블랏팅 분석(도 7P 및 7Q)에 의해 확인된 것과 같이 주로 PN 지역에서 훨씬 더 강하게 보였다(도 7K 및 7L). COX-2 염색은 척수(cords)에서 조직된 많은 세포들과 함께, GC 종양들의 침습 전방에서 더 높은 농도의 표식된 세포들을 보여주며(도 7R), 또한, 그룹 GT에서 사라진 조직의 두드러진 조직 파괴가 발견된다(도 7S). 외형 측정 결과 종양의 핵을 제외하고, 그룹 GT에서 COX-2의 IHC 발현이 감소함을 확인하였다(도 7T). Mann-Whitney 테스트 (*p<0.01).
도 8A-8T: 줄기세포 마커들(CD133, Oct4 및 MT) 및 세포사멸 마커들(Tunel 및 카스파제-3). 도 8A-8F는 두 줄기 세포 마커들, Oct4 및 CD 133에 대한 IHC 염색의 유사한 패턴을 보여준다. 면역-염색은 GT와 비교하여(각각 도 B 및 F/G), 외형 측정에 의해 확인된 대로(각각 도 C 및 H), 그룹 GC, 주로 PN 지역에서 훨씬 더 강하게 보였다(각각 도 A 및 D/E). MT 면역-염색은 GT와 비교하여(도 L/M), 외형 측정에 의해 확인된 대로, 그룹 GC, 주로 IF 지역에서 훨씬 더 강하게 보였다(도 I/J). MT 염색은 또한 그룹 GT에서 세포 척수(cords)와 혈관의 중요한 조직 파괴를 보여주었다. 두 TUNEL 및 카스파제-3 염색은 그룹 GC와 비교하여(각각 도 O 및 R), 외형 측정 분석에 의해 확인된 대로(도 Q 및 T), GT 그룹에서 평가된 세 지역 모두에서 더 높은 세포사멸 수준을 보여주었다(각각 도 P 및 S). Mann-Whitney 테스트 (*p<0.01)
도 9: 암 진행을 펌핑함에 있어서 종양 저산소증과 종양 신호전달 시스템을 전환함에 있어서 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ의 역할에 대한 제안 모델.
도 10: MDJ 연속 희석하여 96-웰 플레이트에서 내피세포(HUVEC, 2×105 cells/well)의 성장에 대한 MDJ의 효과. 주축, 속이 빈 심볼: MTT 환원에 의해 측정된 세포독성. 4반복에서 측정된 대조군을 제외하고, 각 점은 독립적인 2반복에서 수행된 4회 값의 평균을 나타낸다. 미처리 대조군에서 측정된 값은 그래프에서 해당 오차 막대로 표시된다. 두 번째 축, 속이 찬 심볼: 세포 배양에서 계산된 폴딩 시간. 각 점은 3회 독립적인 실험들의 평균을 나타낸다.
도 11: MDJ을 연속 희석하여 96-웰 플레이트에서 쥐 흑색종 세포(B16-F10, 1×104 cells/well)의 성장에 대한 MDJ의 효과. 주축, 속이 빈 심볼: MTT 환원에 의해 측정된 세포독성. 4반복에서 측정된 대조군을 제외하고, 각 점은 독립적인 2반복에서 수행된 4회 측정치의 평균을 나타낸다. 미처리 대조군에서 측정된 값은 그래프에서 해당 오차 막대로 표시된다. 두 번째 축, 속이 찬 심볼: 세포 배양에서 계산된 폴딩 시간. 각 점은 3회 독립적인 실험들의 평균을 나타낸다.
도 12: 제어 조건(A 및 C) 또는 1mM MDJ에 60시간 노출 후(B 및 D) RPMI 배지에서 유리 슬라이드 위에서 밀집(confluence)하여 자란 내피세포(A 및 B) 또는 쥐 흑색종 B16F10(C 및 D)의 대표도.
도 13: 시험관내에서 18시간 노출 후 HUVEC에서 세포 주기에 대한 MDJ의 효과. 각 테스트에서 사용된 농도는 그림에서 보이며, 세포 주기 측정은 프로피디움 아이오다이드(propidium iodide)로 간단히 표지한 후 BD FACScalibur 기기에서 수행하였다. 아크리딘 오렌지를 이용한 염색은 세포사멸 과정에 대한 대조군으로 제공된다.
도 14: 96-웰 플레이트에서 MTT 환원 분석에 의해 측정된, 24 저-밀도 평판(HUVEC, 1×104 cells/well)에서 내피세포의 생존능에 대한 MDJ의 효과. 각 점은 4회 독립적인 실험에서 수행된 8회 측정치의 평균을 나타내고, 실선은 비교를 위해 노출되지 않은 대조군의 측정치를 나타낸다. 미토콘드리아에 대한 효과는 미토트랙커 레드(mitotracker Red)로 염색하고, 공초점 현미경 관찰을 통해 확인하였으며, 4시간 노출 시 이미 관찰할 수 있다(도 15 참조).
도 15: 미토트랙커 레드 형광 공초점 현미경(80× 확대 (40× + 2×디지털 줌)으로 측정한, 24-웰 플레이트에서 25 mm 유리 커버 슬립에 저-밀도 평판(plating)하여 4시간 노출 후 내피세포의 미토콘드리아 활성에 대한 MDJ의 효과. 모든 측정들에 대해 눈금 파라미터들을 유지하였다. 미토콘드리아의 형광 염색에 상응하는 밝기 측정은 표시된 지역과 비교하여 정량하였고, 이는 저농도의 MDJ에 24시간 노출된 세포에서 수 또는 미토콘드리아 활성에서의 증가가 있음을 시사한다. 1mM과 같거나 더 큰 농도는 표시 강도/지역에서 감소를 초래한다.
도 16: 공초점 현미경에서 미토트랙커 레드 형광으로 측정한(40×배율), 24-웰 플레이트에서 25 mm 유리 커버 슬립에 저-밀도 평판하여 24시간 노출 후 내피세포의 미토콘드리아 활성에 대한 MDJ의 효과. 모든 측정들에 대해 눈금 파라미터들을 유지하였고, 각 점은 6회 독립 실험들의 평균값이다. MDJ는 그들 자신의 계란 알부민에서 용액에 투여될 때 계란에 의해 상당히 저항을 받았다.
도 17: 생체 내 생존 연구에서 MDJ의 독성. 수정란은 계란 자체에서 제거된 5mL의 알부민 부피에서 100, 50, 10, 5㎕/계란(n = 5)의 용량으로 MDJ에 노출되었다. 대조군은 MDJ 없이 비히클에 노출되었다. 도면 내 설명에 제시된 농도는 60mL/계란의 부피를 가정하여 계산한 것이다.
도 18: 계란 한 개당 노출되지 않은 대조군(C), l㎕(B), 5㎕(A)에 상응하는 CAM 모델 COSES에서 혈관신생에 대한 알부민 첨가된 MDJ의 효과. 흑색종 세포의 존재는 계란의 생존을 감소하였다. MDJ는 부분적으로 이 생존을 회복시켰다. 모델에서 CAM의 결과는 흑색종 덩어리가 활성 기질의 작용 하에서 용량 의존적 퇴화를 겪음을 확인해주는 것이다.
도 19: B16F10 쥐 흑색종, 1×104 cells/well를 접종한 계란에서 생체 내 생존 연구에서 MDJ의 독성. 수정란은 계란 자체에서 제거된 5mL의 알부민 부피에서 100, 50, 10, 5㎕/계란(n = 5)의 용량으로 MDJ에 노출되었다. 대조군은 MDJ 없이 비히클에 노출되었다. 도면 내 설명에 제시된 농도는 60mL/계란의 부피를 가정하여 계산한 것이다.
도 20: CAM의 지역에서 흑색종의 성장에 대한 알부민 투여된 MDJ의 효과. 모든 샘플들은 B16F10 쥐 흑색종, 1×104 cells/well로 접종된 것이다. A 및 B는 5×확대된 이미지이고, C 및 D는 10×확대된 이미지이다. A 및 C, 미처리 대조군, B 및 D는 5㎕의 MDJ의 일회량이 처리된 것이다. 종양 성장은 혈관과 밀접하게 연관되어 있다. 흑색종은 혈관신생을 유도하고 CAM의 주요 혈관 가까이에서 자랐다.
도 21: CAM 지역에서 흑색종의 성장에 대한 알부민 투여된 MDJ의 효과. 샘플은 B16F10 쥐 흑색종, 1×104 cells/well로 접종된 것이다. A: 명시야에서 확대경을 입체적으로 3차원 이미지로 디지털화한 것, B: 암시야에서 얻은 동일 영역의 이미지. 10× 배율.
도 22: 96-웰 배양 플레이트에서 내피세포(HUVEC, l×lO4 cells/well) 또는 쥐 흑색종(B16F10, 1×104 cells/well)의 성장에 대한 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ의 효과. 각 점은 독립 2반복에서 수행된 3회 측정치의 평균을 나타낸 것이다.
도 23: MTT 테스트에서 측정되고, 24시간 노출 후 96-웰 배양 플레이트에서 내피세포(HUVEC, l×104 cells/well) 또는 쥐 흑색종(B16F10, l×104 cells/well)의 생존능에 대한 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ의 효과. 각 점은 독립 2반복에서 수행된 3회 측정치의 평균을 나타낸 것이다.
도 24: 혈관신생의 CAM 모델에서 혈관 성장에 대한 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ의 효과. A 및 B: 염색 없이 새로운 물질에서 만들어진 현미경 사진. Jena 현미경, 평행 캐패시터가 있는 조명. 8× 확대. B 및 D: 염색 없이 새로운 물질에서 만들어진 현미경 사진, Jena 현미경, 평행 캐패시터가 있는 조명, 32× 확대. 독립적인 실험에서 얻은 샘플. A 및 C: 미처리 대조군. B 및 D: 용량은 1μΜ MDJ과 동량으로 CAM에 적용하였다.
도 25: 인큐베이션 8일째에 B16F10 쥐 흑색종, l×104 cells/well를 접종한 CAM에서 혈관신생 모델에서 혈관 성장에 대한 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ의 효과. 염색 없이 새로운 물질에서 얻은 현미경 사진. Jena 현미경에서, 평행 캐패시터가 있는 조명, 32× 확대. A: 미처리 대조군. B: 1μΜ MDJ과 동량으로, 인큐베이션 11일째에 CAM에 적용된 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ을 처리한 샘플.
도 26: 9개의 암 세포주: UACC62, MCF7, NCIADR, 7860, NC1460, PC03, OVCAR03, 및 HT29, K562에서 사이클로덱스트린-전달되는 MDJ(3-30 nm 크기 범위를 가짐)의 효과. X-축은 샘플의 총 부피를 기반으로 한 MDJ의 농도이다; 사용된 나노에멀젼에서 MDJ의 농도는 1 mM임.
도 27: 혈관신생 활성에 대한 나노전달체의 크기 효과; 나노전달체-전달된 MDJ의 농도는 1nM 내지 10-100mM이 되도록 사용됨.
도 28: 9개의 암세포주: UACC62, MCF7, NCIADR, 7860, NC1460, PC03, OVCAR03, 및 HT29, K562에서 콩 포스파티딜콜린 리포좀-전달된 MDJ(리포좀 크기: 50-120nm)의 효과. X-축은 샘플의 총 부피를 기반으로 한 MDJ의 농도임; 나노에멀젼에서 MDJ의 농도는 1mM임.
도 29: 미토트랙커 레드 형광 공초점 현미경에 의해 측정되고, 복합체와 세포들의 인큐베이션 8시간(하단 세 개의 패널) 후 UACC-62 세포의 미토콘드리아 활성에 대한 MDJ-콩 포스파티딜 리포좀의 효과. MDJ 농도는 10-3M이고, 복합체의 크기는 25nm 내지 200nm 범위임.
도 30: MTT 테스트에 의해 측정되고, 24시간 노출 후, 내피세포(HUVEC) 또는 쥐 흑색종(B16F10)의 생존능에 대한 MDJ-콩 포스파티딜 리포좀 나노전달체 복합체의 효과.
도 31: 나노에멀젼에서 MDJ 농도가 10-3M이 되도록 하여, MDJ-PAMAM 나노전달체 복합체의 항-혈관신생 효과. 상단 패널은 쥐 흑색종 (B16F10)의 종양 덩어리 형성과 종양이 자라도록 하기 위해 영양을 제공하는 새로운 혈관망의 형성을 명확하게 보여주나, 하단 패널에서는 복합체 처리 시 혈관망이 형성되지 않았다.
도 32: 샘플에서 MDJ 농도가 10-3M이 되도록 하여, UACC-62 세포에서 MDJ-LDE 나노전달체 복합체의 항-혈관신생 효과.
도 33: 샘플에서 MDJ 농도가 10-4M이 되도록 하여, UACC-62 세포에서 MDJ-콩 포스파티딜콜린 리포좀 나노전달체 복합체의 항-혈관신생 효과.
도 34: 백혈병 세포에 대한 MDJ-LDE 마이크로전달체 복합체(10㎛의 크기, MDJ 농도는 10-3 내지 10-1M이 됨)에 의해 활성화된 대식세포의 효과. A: 대식세포(어두운)에 의해 포집된 암세포(밝은)의 현미경 사진; B: 대식세포 내부에 소화되는 암세포의 현미경 사진.
도 35: 저 용량에서 나노전달체-MDJ의 생체 내 혈관신생 효과: 상단 2개의 이미지는 10μΜ의 MDJ 농도이고, 하단 3개의 이미지는 100nM의 MDJ 농도임.
도 36: 30μΜ의 농도에서 MDJ 및 나노전달체-MDJ의 생체 내 혈관신생 효과.
도 37: 암세포에 대한 자스모네이트 작용의 경로{Flescher, Cancer Lett. 2007; 245(1-2):1-10. 참조).
도 38: A: 물(대조군); B: 비어있는 나노입자; 및 C: MDJ를 전달하는 나노입자를 24시간 처리한 후 Jurkat 세포주(백혈병, ATCC® 번호: TIB-156™)의 역상 현미경 사진. 도 38C에서, 24시간 처리 후 거의 모든 세포들이 죽는다.
도 39: A: 물(대조군); B: 비어있는 나노입자; 및 C: MDJ를 전달하는 나노입자를 24시간 처리한 후 전립선암 세포주 VCaP(ATCC® 번호: CRL-2876™)의 역상 현미경 사진. 도 39C에서, 24시간 처리 후 거의 모든 세포들이 죽는다.
도 40: A: 물(대조군); B: 비어있는 나노입자; 및 C: MDJ를 전달하는 나노입자를 24시간 처리한 후 유방암 세포주 HCC38(ATCC® 번호: CRL-2314™)의 역상 현미경 사진. 도 40C에서, 24시간 처리 후 거의 모든 세포들이 죽는다.
도 41: A: 물(대조군); B: 비어있는 나노입자; 및 C: MDJ를 전달하는 나노입자를 24시간 처리한 후 전립선 암종 세포주 22Rvl(ATCC® 번호: CRL-2505™)의 역상 현미경 사진. 도 41C에서, 24시간 처리 후 60-70%의 세포들이 죽는다.
도 42: A: 물(대조군); B: 비어있는 나노입자; 및 C: MDJ를 전달하는 나노입자를 24시간 처리한 후 대식세포의 역상 현미경 사진.
도 43: 아연, 칼슘 또는 아미노산이 결합된 A-14와 접촉시킨 경우, 혈관의 파편화를 보여주는 이미지. 아연-결합된 A-14는 칼슘- 또는 아미노산-결합된 A-14와 비교하여 혈관 파편화에 대해 가장 유의적인 효과를 입증하였다. 1: 알라닌 결합된 A-14; 2: 은(argentine) 결합된 A-14; 0.5: 아연 결합된 A-14; 5: 칼슘 결합된 A-14 및 c: 대조군. 전달체는 리포좀이다.
도 44: 좌측 이미지: 거대한 양의 혈관, 혈관신생이 종양 세포 주변에 형성됨. 성장을 위해, 종양은 더 많은 양의 영양분과 산소가 요구됨. 그러한 요구로 인해, 혈관 복합체는 VEGF(Vascular Endothelial Grow Factor)가 종양에 의해 방출된 후 종양 내부/쪽으로 형성된다. 우측 이미지: 아미노산이 결합된 A-14를 처리한 후 대부분의 혈관 복합체가 사라졌다. 이 현상을 항-혈관신생으로 명명하며, 이들 혈관의 붕괴는 종양이 그것의 성장에 요구되는 영양분과 산소를 제공받지 못하도록 한다. 전달체는 리포좀이다.
도 45: 아미노산-결합된 A-14에 의해 내피세포의 붕괴를 보여주는 이미지. 전달체는 리포좀이다.
도 46: 아연-결합된 A-14에 의해 유방암에서 혈관 주변 항-혈관신생 효과를 보여주는 이미지. 전달체는 리포좀이다.
Claims (26)
- 약제학적으로 허용가능한 용매 및 메틸 다이하이드로자스모네이트(MDJ)를 함유하는 다수의 나노전달체 또는 마이크로전달체를 포함하는 약제학적 조성물:
상기 나노전달체 또는 마이크로전달체는 사이클로덱스트린 또는 덴드리머로 형성되거나 인지질층에 의해 둘러싸인 콜레스테릴 에스터 코어를 포함하는 합성 나노에멀젼 입자(LDEs)이며;
상기 나노전달체는 1 나노미터(nm) 내지 500 nm의 크기 범위를 가지고; 또는
상기 마이크로전달체는 1 마이크론 내지 100 마이크론의 크기 범위를 가지며;
상기 약제학적 조성물은 1nM 내지 1 M의 MDJ 농도를 가진다.
- 제 1 항에 있어서,
상기 나노전달체는 사이클로덱스트린으로 형성되고, 3 nm 내지 100 nm의 크기 범위를 가지는 약제학적 조성물.
- 제 2 항에 있어서,
상기 사이클로덱스트린 나노전달체는 3.5 nm 내지 11 nm의 크기 범위를 가지는 약제학적 조성물.
- 제 2 항에 있어서,
상기 사이클로덱스트린 나노전달체는 50 nm 내지 100 nm의 크기 범위를 가지는 약제학적 조성물.
- 제 1 항에 있어서,
상기 나노전달체는 LDEs이고, 30 nm 내지 500 nm의 크기 범위를 가지는 약제학적 조성물.
- 제 5 항에 있어서,
상기 LDEs는 50 nm 내지 110 nm의 크기 범위를 가지는 약제학적 조성물.
- 제 1 항에 있어서,
상기 나노전달체는 덴드리머로 형성되고, 2 nm 내지 500 nm의 크기 범위를 가지는 약제학적 조성물.
- 제 7 항에 있어서,
상기 덴드리머는 폴리아미도아민(PAMAM)인 약제학적 조성물.
- 제 1 항 내지 제 8 항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 MDJ의 농도는 1nM 내지 100 μM의 범위인 약제학적 조성물.
- 제 1 항 내지 제 8 항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 MDJ의 농도는 10μM 내지 100 mM의 범위인 약제학적 조성물.
- 제 1 항 내지 제 8 항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 MDJ의 농도는 100 mM 내지 1 M의 범위인 약제학적 조성물.
- 제 1 항 내지 제 8 항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 나노전달체 또는 마이크로전달체는 추가로 2-아미노에틸 다이하이드로젠 포스페이트, 3,7-다이메틸-2,6-옥타디엔알, 메틸 살릭실레이트 또는 아브시스산을 포함하는 약제학적 조성물.
- 제 1 항 내지 제 8 항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 약제학적으로 허용가능한 용매는 물, 알콜 또는 이의 혼합물인 약제학적 조성물.
- 제 1 항 내지 제 8 항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 나노전달체 또는 마이크로전달체는 추가로 비-자스모네이트 화합물을 포함하는 약제학적 조성물.
- 약제학적으로 허용가능한 용매 및 자스모네이트 화합물을 함유하는 다수의 나노전달체 또는 마이크로전달체를 포함하는 약제학적 조성물:
상기 나노전달체 또는 마이크로전달체는 사이클로덱스트린 또는 덴드리머로 형성되거나 인지질층에 의해 둘러싸인 콜레스테릴 에스터 코어를 포함하는 합성 나노에멀젼 입자(LDEs)이며;
상기 나노전달체는 1 나노미터(nm) 내지 500 nm의 크기 범위를 가지고; 또는
상기 마이크로전달체는 1 마이크론 내지 50 마이크론의 크기 범위를 가지며;
상기 약제학적 조성물은 1nM 내지 1 M의 자스모네이트 화합물 농도를 가진다.
- 제 15 항에 있어서,
상기 자스모네이트 화합물은 자스몬산, 7-이소-자스몬산, 9,10-다이하이드로자스몬산, 9,10-다이하이드로-이소자스몬산, 2,3-다이디하이드로자스몬산, 3,4-다이디하이드로자스몬산, 3,7-다이디하이드로자스몬산, 4,5-다이디하이드로자스몬산, 4,5-다이디하이드로-7-이소자스몬산, 쿠쿠르브산(cucurbic acid), 6-에피-쿠쿠르브산, 6-에피-쿠쿠르브산-락톤, 12-하이드록시-자스몬산, 12-하이드록시-자스몬산-락톤, 11-하이드록시-자스몬산, 8-하이드록시-자스몬산, 호모-자스몬산, 다이호모-자스몬산, 11-하이드록시-다이호모-자스몬산, 8-하이드록시-다이호모-자스몬산, 투베론산, 투베론산-O-β-글루코피라노사이드, 쿠쿠르브산-O-β-글루코피라노사이드, 5,6-다이디하이드로-자스몬산, 6,7-다이디하이드로-자스몬산, 7,8-다이디하이드로-자스몬산, 시스-자스몬, 다이하이드로자스몬 및 이의 저급 알킬 에스터로 이루어진 군으로부터 선택된 약제학적 조성물.
- 제 15 항에 있어서,
상기 자스모네이트 화합물은 메틸 자스모네이트이고, 1 nM 내지 1 μM의 농도를 가지는 약제학적 조성물.
- 제 15 항에 있어서,
상기 자스모네이트 화합물은 메틸 자스모네이트이고, 1 μM 내지 100 mM의 농도를 가지는 약제학적 조성물.
- 제 15 항에 있어서,
상기 나노전달체 또는 마이크로전달체는 추가로 비-자스모네이트 화합물을 포함하는 약제학적 조성물.
- 제 1 항 내지 제 8 항 중 어느 한 항의 약제학적 조성물의 유효량 투여를 포함하는 신생혈관 생성과 관련된 질환을 치료하는 방법.
- 제 20 항에 있어서,
상기 신생혈관 생성과 관련된 질환은 암인 방법.
- 제 21 항에 있어서,
상기 암은 백혈병, 대장암, 유방암, 전립선암, 췌장암, 간암, 피부암, 난소암, 흑색종 또는 육종인 방법.
- 제 20 항에 있어서,
상기 신생혈관 생성과 관련된 질환은 염증 질환인 방법.
- 제 23 항에 있어서,
상기 염증 질환은 염증성 장 질환인 방법.
- 제 1 항 내지 제 8 항 중 어느 한 항의 약제학적 조성물의 유효량 투여를 포함하는 NF-κB 관련 장애를 치료하는 방법.
- 제 25 항에 있어서,
상기 NF-κB 관련 장애는 바이러스, 세균 또는 곰팡이 감염인 방법.
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Legal Events
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Comment text: Divisional Application for International Patent Patent event code: PA01041R01D Patent event date: 20190911 Application number text: 1020147010217 Filing date: 20140416 |
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Patent event date: 20200701 Comment text: Decision to Refuse Application Patent event code: PE06012S01D Patent event date: 20191018 Comment text: Notification of reason for refusal Patent event code: PE06011S01I |





