상세한 설명
본 공개의 개관
이 공개는 치료적 벡터 및 세포로의 치료적 벡터의 전달에 관한 것이다. 실시형태에서, 치료적 벡터는 PAH 서열 또는 그의 변이체, 및 간-특이적 인핸서를 포함한다. 실시형태에서, 치료적 벡터는 숙주 (즉, 내인성) PAH 단백질 발현을 조절하는 작은 RNA 를 또한 포함한다.
정의 및 해석
본원에서 달리 정의되지 않는 한, 본 공개와 관련하여 사용된 과학 및 기술 용어는 당업자에게 일반적으로 이해되는 의미를 가질 것이다. 또한, 문맥에서 달리 요구되지 않는 한, 단수형 용어는 복수형을 포함할 것이고, 복수형 용어는 단수형을 포함할 것이다. 일반적으로, 본원에 기재된 세포 및 조직 배양, 분자 생물학, 면역학, 미생물학, 유전학 및 단백질 및 핵산 화학 및 하이브리드화와 관련하여 사용된 명명법 및 이의 기법은 당업계에 잘 공지되어 있으며 통상적으로 사용되는 것들이다. 본 공개의 방법 및 기법은 일반적으로 당업계에 잘 공지된 종래의 방법에 따라, 그리고 달리 지시되지 않는 한 본 명세서 전반에 걸쳐 인용되고 논의된 다양한 일반적이고 보다 구체적인 참고문헌에 기재된 바와 같이 수행된다. 예를 들어, 다음을 참조한다: Sambrook J. & Russell D. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y. (2000); Ausubel et al., Short Protocols in Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Wiley, John & Sons, Inc. (2002); Harlow and Lane Using Antibodies: A Laboratory Manual; Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y. (1998); 및 Coligan et al., Short Protocols in Protein Science, Wiley, John & Sons, Inc. (2003). 임의의 효소 반응 또는 정제 기법은 당업계에서 일반적으로 달성되거나 본원에 기재된 바와 같이 제조사의 사양에 따라 수행된다. 본원에 기재된 분석 화학, 합성 유기 화학, 및 의학 및 제약 화학과 관련하여 사용된 명명법 및 이의 실험실 절차 및 기법은 당업계에 잘 공지되며 통상적으로 사용되는 것들이다.
상세한 설명 및 첨부된 청구범위에 사용되는 바와 같이, 단수형 형태는 문맥에서 명백하게 달리 나타내지 않는 한, 복수형 형태와 상호교환가능하게 사용되며 복수형 형태를 포함하는 것 뿐만 아니라 각각의 의미 내에 포함되는 것으로 의도된다. 또한, 본원에서 사용되는 바와 같이, "및/또는" 은 하나 이상의 열거된 항목의 임의의 및 모든 가능한 조합 뿐만 아니라 대안으로 해석될 때의 조합 부족 ("또는") 을 나타내며 포함한다.
모든 숫자 지정, 예를 들어 범위를 포함하는, pH, 온도, 시간, 농도 및 분자량은 0.1 씩 증가하여 (+) 또는 (-) 로 변동되는 근사치이다. 항상 명확하게 언급되지 않더라도, 모든 수치 지정은 용어 "약" 이 선행된다는 것이 이해된다. 용어 "약" 은 "X + 0.1" 또는 "X - 0.1" 와 같은 "X" 의 작은 증분에 더하여 정확한 값 "X" 를 또한 포함한다. 항상 명확하게 언급되지 않더라도, 본원에서 기재되는 시약은 단지 예시적이며 이들의 등가물이 당업계에 공지되어 있다는 것이 이해된다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "약" 은 당업자에 의해 이해될 것이며 사용되는 문맥에 따라서 어느 정도 가변적일 것이다. 사용되는 문맥을 고려했을 때 당업자에게 분명하지 않은 용어가 사용되는 경우, "약" 은 특정한 용어의 10% 까지를 더하거나 뺀 것을 의미할 것이다.
용어 활성제의 "투여" 또는 활성제를 "투여하는" 은 개인의 신체에 치료적으로 유용한 형태 및 치료적 유효량으로 도입될 수 있는 형태로 치료를 필요로 하는 대상체에게 활성제를 제공하는 것을 의미하는 것으로 이해되어야 한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "포함하는" 은 조성물 및 방법이 열거된 요소를 포함하지만 다른 것은 배제하지 않는다는 것을 의미하는 것으로 의도된다. 조성물 및 방법을 정의하는데 사용되는 경우 "~로 본질적으로 이루어지는" 은 조성물 또는 방법에 임의의 필수적인 중요한 다른 요소를 배제하는 것을 의미할 것이다. "~로 이루어지는" 은 청구된 조성물 및 실질적인 방법 단계에 대한 다른 구성성분의 미량 초과의 요소를 배제하는 것을 의미할 것이다. 이들 전환 용어 각각에 의해 정의되는 실시형태는 본 공개의 범주 내에 있다. 따라서, 방법 및 조성물이 추가의 단계 및 성분을 포함할 수 있거나 (포함하는), 대안적으로, 중요하지 않은 단계 또는 조성물을 포함하거나 (본질적으로 이루어지는), 또는 대안적으로, 오직 언급된 방법 단계 및 조성물을 의도하는 (이루어지는) 것으로 의도된다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "발현", "발현된" 또는 "인코딩하는" 은 폴리뉴클레오티드가 mRNA 로 전사되는 과정 및/또는 전사된 mRNA 가 이후 펩티드, 폴리펩티드 또는 단백질로 번역되는 과정을 지칭한다. 발현은 진핵생물 세포에서 mRNA 의 스플라이싱 또는 전사후 변형 또는 번역후 변형의 다른 형태를 포함할 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "아데노-연관 바이러스 벡터" 는 아데노-연관 바이러스의 담체 또는 수송체를 지칭한다. 용어 "아데노-연관 바이러스 벡터" 는 또한 본원에서 "AAV 벡터" 로서 지칭될 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "아데노-연관 바이러스" 는 숙주 세포 게놈 내로 통합될 수 있고 병원성이 아닌, 약한 면역 응답을 발생시키는 작은 바이러스를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "AAV/DJ" (또한 본원에서 "AAV-DJ" 로서 언급됨) 는 야생형 AAV 혈청형보다 더 높은 형질도입율 및 감염율을 매개하는, 상이한 AAV 혈청형으로부터 조작된 AAV 벡터의 혈청형이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "AAV2" (또한 본원에서 로서 언급됨 "AAV/2" 또는 "AAV-2") 는 자연적으로 존재하는 AAV 혈청형이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "AAV-Pro-hAAT-PAH" 는 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 PAH 서열을 포함하는 AAV 벡터를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 약어 "ApoE 인핸서" 는 Apolipo단백질 E 인핸서를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "유전 의약" 또는 "유전 의약들" 은 일반적으로 임상적 질환 또는 징후를 치료하기 위해 유전적 표적에 초점을 두는 치료제 및 치료 전략을 지칭한다. 용어 "유전 의약" 은 유전자 요법 등을 포함한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 약어 "hAAT" 는 hAAT 프로모터를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "hAAT-hPAH-3'UTR289" 는 또한 본원에서 U289 로서, 또는 일반적으로 이식유전자-발현되는 절두된 hPAH 3'UTR, 또는 일반적으로 절두된 3' UTR 로서 지칭될 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "간세포 핵 인자" 는 간에서 우세하게 발현되는 전사 인자를 지칭한다. 간세포 핵 인자의 유형은 간세포 핵 인자 1, 간세포 핵 인자 2, 간세포 핵 인자 3, 및 간세포 핵 인자 4 를 포함하나 그에 제한되지 않는다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 약어 "HNF" 는 간세포 핵 인자를 지칭한다. 따라서 HNF1 는 간세포 핵 인자 1 을 지칭하고, HNF2 는 간세포 핵 인자 2 를 지칭하고, HNF3 은 간세포 핵 인자 3 을 지칭하고, HNF4 는 간세포 핵 인자 4 를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 구절 "HNF 결합 자리" 는 HNF 전사 인자가 결합할 수 있는 DNA 의 영역을 지칭한다. 따라서, HNF1 결합 자리는 HNF1 이 결합할 수 있는 DNA 의 영역이고, HNF4 결합 자리는 HNF4 가 결합할 수 있는 DNA 의 영역이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "개체", "대상체" 및 "환자" 는 본원에서 상호교환가능하게 사용되며, 임의의 개별 포유동물 대상체, 예를 들어, 쥐, 돼지, 소, 개, 고양이, 말, 비인간 영장류 또는 인간 영장류를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 구절 "토끼 베타 글로빈 인트론" 는 RNA 성숙 동안 스플라이싱되지 않고, 단백질에 대해 코딩하지 않는 토끼 베타 글로빈 유전자 내의 핵산 분절을 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 구절 "인간 베타 글로빈 인트론" 은 RNA 성숙 동안 스플라이싱되지 않고, 단백질에 대해 코딩하지 않는 인간 베타 글로빈 유전자 내의 핵산 분절을 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "LV" 는 일반적으로 "렌티바이러스" 를 지칭한다. 비제한적 예로서, "LV-PAH" 에 대한 언급은 PAH 서열을 함유하고 PAH 를 발현하는 렌티바이러스에 대한 언급이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "LV-Pro-hAAT-PAH" 는 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 PAH 서열을 포함하는 렌티바이러스를 지칭한다. LV-Pro-hAAT-PAH 벡터는 또한 AGT323 벡터로 지칭된다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "LV-HNF-Pro-hAAT-PAH" 는 HNF 결합 자리, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 PAH 서열을 포함하는 렌티바이러스를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "LV-Pro-인트론-PAH" 는 프로트롬빈 인핸서, 인트론, 및 PAH 서열을 포함하는 렌티바이러스를 지칭하며, 인트론은 인간 베타 글로빈 인트론이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "LV-Pro-hAAT" 는 프로트롬빈 인핸서 및 hAAT 프로모터를 포함하는 렌티바이러스를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "LV-Pro-TBG-PAH" 는 프로트롬빈 인핸서, 티록신 결합 글로불린, 및 PAH 서열을 포함하는 렌티바이러스를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "LV-ApoE-hAAT-PAH-UTR" 는 아포지방단백질 E 인핸서, hAAT 프로모터, PAH 서열, 및 유전자의 미번역 영역을 포함하는 렌티바이러스를 지칭하며, 미번역 영역은 PAH 유전자의 3'UTR 이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "LV-Pro-hAAT-PAH-shPAH" 는 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, PAH 서열 및 shPAH 서열을 포함하는 렌티바이러스를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "패키징 세포주" 는 렌티바이러스 입자를 발현하는데 사용될 수 있는 임의의 세포주를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 2 개 이상의 핵산 또는 폴리펩티드 서열의 문맥에서 용어 "동일성 %" 는, 하기 기재된 서열 비교 알고리즘 중 하나 (예를 들어 BLASTP 및 BLASTN 또는 기타 숙련자가 이용가능한 기타 알고리즘) 또는 육안 검사에 의해 측정된 바와 같은, 최대 상응성을 위해 비교되고 정렬될 때 동일한 특정 백분율의 뉴클레오티드 또는 아미노산 잔기를 갖는 2 개 이상의 서열 또는 하위서열을 지칭한다. 적용에 따라, "동일성 %" 는 비교되는 서열의 부위에 걸쳐, 예를 들어, 기능적 도메인에 걸쳐 존재할 수 있거나, 대안적으로, 비교될 2 개 서열의 전체 길이에 걸쳐 존재한다. 서열 비교를 위해, 통상적으로 하나의 서열은 시험 서열을 그에 대해 비교하는 참조 서열로서 역할한다. 서열 비교 알고리즘을 사용하는 경우, 시험 및 참조 서열이 컴퓨터에 입력되고, 필요하다면 하위서열 좌표가 지정되며, 서열 알고리즘 프로그램 매개변수가 지정된다. 이후, 서열 비교 알고리즘은 지정된 프로그램 매개변수를 기반으로 하여, 참조 서열에 대한 시험 서열(들) 의 서열 동일성 % 를 계산한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "약학적으로 허용가능한" 은 타당한 의료적 판단의 범주 내에서, 과도한 독성, 자극, 알레르기 반응, 또는 기타 문제점 또는 합병증이 합당한 이익/위험 비에 비례하지 않으면서, 인간 및 동물의 조직, 기관 및/또는 체액과 접촉하여 사용하기에 적합한 이러한 화합물, 물질, 조성물 및/또는 투약 형태를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "약학적으로 허용가능한 담체" 는 생리적으로 양립가능한 임의의 및 모든 용매, 분산 매질, 코팅물, 항균 및 항진균제, 등장제 및 흡수 지연제 등을 지칭하며 포함한다. 조성물은 약학적으로 허용가능한 염, 예를 들어, 산 부가염 또는 염기 부가염을 포함할 수 있다 (예를 들어, Berge et al. (1977) J Pharm Sci 66:1-19 참조).
용어 "페닐알라닌 히드록실라아제" 는 또한 본원에서 PAH 로서 지칭될 수 있다. 용어 페닐알라닌 히드록실라아제는 뉴클레오티드 및 펩티드 서열 둘 모두를 포함하는 모든 야생형 및 변이체 PAH 서열을 포함한다. 제한 없이, 용어 페닐알라닌 히드록실라아제는 SEQ ID NOs: 1-4 에 대한 언급을 포함하고, 그와 적어도 약 80% 동일성을 갖는 변이체를 추가로 포함한다. 인간 PAH 는 또한 본원에서 hPAH 로서 지칭될 수 있다. 인간 PAH 는 또한 본원에서 hPAH 로서 지칭될 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "야생형 hPAH" 는 또한 본원에서 내인성 PAH 또는 "전장 PAH" 로서 지칭될 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 본원에서 "PKU" 로도 나타내는 용어 "페닐케톤뇨증" 은 페닐알라닌 히드록실라아제의 만성적 결핍 뿐만 아니라 경증 및 고전적 형태의 질환을 포함하여 이와 관련된 모든 증상을 지칭한다. 따라서, "페닐케톤뇨증" 의 치료는 PKU 와 관련된 모든 또는 일부 증상의 치료에 관한 것일 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "프로트롬빈 인핸서" 는 프로트롬빈 유전자의 전사를 초래하는, 단백질에 의해 결합될 수 있는 프로트롬빈 유전자 상의 영역이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 약어 "Pro" 는 프로트롬빈 인핸서를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, "작은 RNA" 는 일반적으로 약 200 개 이하의 뉴클레오티드 길이이며 침묵 또는 간섭 기능을 갖는 비-코딩 RNA 를 지칭한다. 다른 실시형태에서, 작은 RNA 는 약 175 개 이하의 뉴클레오티드, 약 150 개 이하의 뉴클레오티드, 약 125 개 이하의 뉴클레오티드, 약 100 개 이하의 뉴클레오티드, 또는 약 75 개 이하의 뉴클레오티드 길이이다. 이러한 RNA 는 microRNA (miRNA), 작은 간섭 RNA (siRNA), 이중가닥 RNA (dsRNA) 및 짧은 헤어핀 RNA (shRNA) 를 포함한다. 공개의 "작은 RNA" 는 일반적으로 표적 유전자 mRNA 의 파괴를 초래하는 경로를 통해 표적 유전자의 유전자 발현을 억제 또는 녹다운시킬 수 있어야 한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "shPAH" 는 PAH 를 표적화하는 작은 헤어핀 RNA 를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 약어 "lncRNA" 는 긴 비-코딩 RNA 를 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "SEQ ID NO" 는 용어 "서열 ID No" 와 동의어이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "티록신 결합 글로불린" 은 혈류에서 티로이드 호르몬을 운반하는 책임을 지는 수송 단백질이다. 본원에서 사용되는 바와 같이, 약어 "TBG" 는 티록신 결합 글로불린을 지칭한다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "치료적 유효량" 은 특정한 질병, 상해, 질환 또는 병상을 앓고 있는 환자에서 보이는 합병증의 증상, 진행 또는 개시를 치료하거나 예방하기 위한, 적합한 조성물, 및 적합한 투약 형태 중 본 공개의 활성제의 충분한 양을 지칭한다. 치료적 유효량은 환자의 병상의 상태 또는 이의 중증도, 및 치료하려는 대상체의 연령, 체중 등에 따라 가변적일 것이다. 치료적 유효량은 예를 들어 투여 경로, 대상체의 병상 뿐만 아니라 당업자에 의해 이해되는 기타 인자를 포함하는, 임의의 수많은 인자에 따라 가변적일 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "치료적 벡터" 는 비제한적으로, 렌티바이러스 벡터 또는 아데노-관련 바이러스 (AAV) 벡터에 대한 언급을 포함한다. 추가로, 렌티바이러스 벡터 시스템과 관련하여 본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "벡터" 는 용어 "플라스미드" 와 동의어이다. 예를 들어, 2-벡터 및 3-벡터 패키징 시스템을 포함하는 3-벡터 및 4-벡터 시스템은 또한, 3-플라스미드 및 4-플라스미드 시스템으로도 지칭될 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "치료" 또는 "치료하는" 은 일반적으로 치료하는 대상체의 자연적 과정을 변경시키려고 시도하는 중재술을 지칭하며, 예방을 위해 또는 임상 병리학 과정 동안 수행될 수 있다. 바람직한 효과는 비제한적으로, 질환의 발생 또는 재발의 예방, 증상의 완화, 질환의 임의의 직접적 또는 간접적 병리학적 결과의 저해, 감소 또는 억제, 질환 상태의 경감 또는 일시적 완화, 및 차도의 야기 또는 개선된 예후를 포함한다.
"치료" 는 질환 상태를 대상으로 삼아서 그것과 싸우는 것, 즉, 질환 상태를 완화 또는 예방하는 것이 의도된다. 특정 치료는 따라서 대상이 되는 질환 상태 및 약물 요법 및 치료적 접근법의 현재 또는 미래의 상태에 따라 좌우된다. 치료는 연관 독성을 가질 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "절두된" 은 또한 본원에서 "단축된" 또는 "없이" 로 지칭될 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "UTR" 는 유전자의 코딩 영역의 5' 또는 3' 에 있는 유전자의 영역에 관한 것이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "3' UTR" 는 유전자의 코딩 영역의 3' 에 있는 "UTR" 이다.
본원에서 사용되는 바와 같이, 용어 "변이체" 는 또한 본원에서 유사체 또는 변이로서 지칭될 수 있다. 변이체는 뉴클레오티드 서열에 대한 임의의 치환, 결실, 또는 부가를 지칭한다.
비교를 위한 최적의 서열 정렬을 예를 들어 Smith & Waterman, Adv. Appl. Math. 2:482 (1981) 의 국부적 상동성 알고리즘에 의해, Needleman & Wunsch, J. Mol. Biol. 48:443 (1970) 의 상동성 정렬 알고리즘에 의해, Pearson & Lipman, Proc. Nat'l. Acad. Sci. USA 85:2444 (1988) 의 유사성 방법에 대한 검색에 의해, 이들 알고리즘의 컴퓨터화된 실행 (Wisconsin Genetics Software Package, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, Wis. 에서의 GAP, BESTFIT, FASTA 및 TFASTA) 에 의해, 또는 육안 검사에 의해 (일반적으로, 상기 Ausubel et al. 참조) 실시할 수 있다.
서열 동일성 % 및 서열 유사성을 측정하기에 적합한 알고리즘의 한 예는 BLAST 알고리즘이며 이는 Altschul et al., J. Mol. Biol. 215:403-410 (1990) 에 기재되어 있다. BLAST 분석을 수행하기 위한 소프트웨어는 국립생물정보센터 (National Center for Biotechnology Information) 웹사이트로부터 공개적으로 입수가능하다.
본 공개의 핵산 및 단백질 서열은 또한, 예를 들어, 관련된 서열을 확인하기 위해 공개적 데이터베이스에 대한 검색을 수행하기 위한 "질의 서열 (query sequence)" 로서 사용될 수 있다. 이러한 검색은 Altschul, et al. (1990) J. Mol. Biol. 215:403-10 의 NBLAST 및 XBLAST 프로그램 (version 2.0) 을 사용하여 수행될 수 있다. BLAST 뉴클레오티드 검색은 공개에서 제공된 핵산 분자와 상동인 뉴클레오티드 서열을 수득하기 위해 NBLAST 프로그램, 스코어 = 100, 단어 길이 = 12 로 수행될 수 있다. BLAST 단백질 검색은 공개의 단백질 분자와 상동인 아미노산 서열을 수득하기 위해 XBLAST 프로그램, 스코어 = 50, 단어 길이 = 3 으로 수행될 수 있다. 비교 목적을 위한 갭화된 정렬 (gapped alignment) 을 수득하기 위해, Gapped BLAST 를 Altschul et al., (1997) Nucleic Acids Res. 25(17):3389-3402 에서 기재된 바와 같이 이용할 수 있다. BLAST 및 Gapped BLAST 프로그램을 이용하는 경우, 각각의 프로그램 (예를 들어 XBLAST 및 NBLAST) 의 디폴트 매개변수를 사용할 수 있다. http://www.ncbi.nlm.nih.gov 를 참조한다.
본 공개의 양태 및 실시형태의 설명
본 공개의 양태에서, 바이러스 벡터는 치료적 카고 부분을 포함하며, 치료적 카고 부분은 PAH 서열 또는 그의 변이체, 프로모터, 및 간-특이적 인핸서를 포함하며, PAH 서열 또는 그의 변이체는 프로모터 및 간-특이적 인핸서 둘 모두에 의해 작동적으로 제어된다.
실시형태에서, 간-특이적 인핸서는 프로트롬빈 인핸서를 포함한다. 실시형태에서, 프로모터는 간-특이적 프로모터이다. 실시형태에서, 간-특이적 프로모터는 hAAT 프로모터를 포함한다. 실시형태에서, 치료적 카고 부분은 베타 글로빈 인트론을 추가로 포함한다. 실시형태에서, 치료적 카고 부분은 적어도 하나의 간세포 핵 인자 결합 자리를 추가로 포함한다. 실시형태에서, 적어도 하나의 간세포 핵 인자 결합 자리는 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 배치되어 있다. 실시형태에서, 적어도 하나의 간세포 핵 인자 결합 자리는 프로트롬빈 인핸서의 다운스트림에 배치되어 있다.
실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 PAH 서열 (LV-Pro-hAAT-PAH) 을 포함하는 렌티바이러스 벡터가 제공된다. 실시형태에서, HNF 결합 자리, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 PAH 서열 (LV-HNF-Pro-hAAT-PAH) 을 포함하는 렌티바이러스 벡터가 제공된다. 실시형태에서, HNF 결합 자리는 HNF1 또는 HNF1/4 결합 자리이다. 실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 인트론, 및 PAH 서열 (LV-Pro-인트론-PAH) 을 포함하는 렌티바이러스 벡터가 제공된다. 실시형태에서, 인트론은 토끼 글로빈 인트론이다. 실시형태에서, 인트론은 인간 글로빈 인트론이다. 실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서 및 hAAT 프로모터 (LV-Pro-hAAT) 를 포함하는 렌티바이러스 벡터가 제공된다. 실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서, 티록신 결합 글로불린, 및 PAH 서열 (LV-Pro-TBG-PAH) 을 포함하는 렌티바이러스 벡터가 제공된다. 실시형태에서, ApoE 인핸서, hAAT 프로모터, PAH 서열, 및 PAH 의 3'UTR (LV-ApoE-hAAT-PAH-UTR) 을 포함하는 렌티바이러스 벡터가 제공된다.
실시형태에서, PAH 서열 또는 그의 변이체는 절두되어 있다. 실시형태에서, 절두되어 있는 PAH 서열 또는 그의 변이체의 부분은 PAH 서열 또는 그의 변이체의 3' 미번역 영역 (UTR) 이다.
실시형태에서, 3'UTR 에서의 PAH 절두는 3'UTR 에 대한 특정 조절 RNA 의 결합을 방지한다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 lncRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 microRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 piRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 shRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 19 내지 25 뉴클레오티드 길이의 siRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 SEQ ID NOs: 13 또는 14 와 적어도 80%, 적어도 81%, 적어도 82%, 적어도 83%, 적어도 84%, 적어도 85%, 적어도 86%, 적어도 87%, 적어도 88%, 적어도 89%, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95% 또는 그보다 높은 퍼센트 동일성을 갖는 서열을 포함하는 작은 RNA 서열이다.
실시형태에서, PAH 서열은 SEQ ID NO: 1 을 포함한다. 실시형태에서, PAH 서열은 코돈 최적화된 PAH 서열 (SEQ ID NO: 2) 을 포함한다. 실시형태에서, PAH 서열 또는 그의 변이체는 절두된 3' UTR (289 개 뉴클레오티드) (SEQ ID NO: 4) 를 포함한다. 실시형태에서, PAH 서열 또는 그의 변이체는 5' UTR (897 개 뉴클레오티드) (SEQ ID NO: 3) 를 포함한다.
실시형태에서, PAH 서열 또는 그의 변이체는 SEQ ID NO: 1; SEQ ID NO: 2; SEQ ID NO: 3; 또는 SEQ ID NO: 4 와 적어도 80%, 적어도 81%, 적어도 82%, 적어도 83%, 적어도 84%, 적어도 85%, 적어도 86%, 적어도 87%, 적어도 88%, 적어도 89%, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95% 또는 그보다 높은 퍼센트 동일성을 갖는 서열을 포함한다.
실시형태에서, 변이체는 임의의 위에서 기재된 서열로 만들어질 수 있다. 실시형태에서, PAH 서열 또는 그의 변이체는 SEQ ID NO: 1; SEQ ID NO: 2; SEQ ID NO: 3; 또는 SEQ ID NO: 4 를 포함한다.
실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서는 SEQ ID NO: 5 와 적어도 80%, 또는 적어도 81%, 적어도 82%, 적어도 83%, 적어도 84%, 적어도 85%, 적어도 86%, 적어도 87%, 적어도 88%, 적어도 89%, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95% 또는 그보다 높은 퍼센트 동일성을 갖는 서열을 포함한다.
실시형태에서, 변이체는 위에서 기재된 서열로 만들어질 수 있다. 실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서의 서열은 SEQ ID NO: 5 를 포함한다.
실시형태에서, hAAT 프로모터의 서열은 SEQ ID NO: 6 을 포함한다. 실시형태에서, 베타 글로빈 인트론의 서열은 SEQ ID NOs: 7 또는 8 중 하나를 포함한다. 실시형태에서, 간세포 핵 인자 결합 자리의 서열은 SEQ ID NOs: 9-12 중 임의의 하나를 포함한다.
실시형태에서, 치료적 카고 부분은 적어도 하나의 예정된 상보적 mRNA 서열에 결합할 수 있는 적어도 하나의 작은 RNA 서열을 추가로 포함한다. 실시형태에서, 적어도 하나의 작은 RNA 서열은 전장 UTR 를 함유하는 상보적 mRNA 서열을 표적화한다. 실시형태에서, 적어도 하나의 예정된 상보적 mRNA 서열은 PAH mRNA 서열이다. 실시형태에서, 적어도 하나의 작은 RNA 서열은 shRNA 를 포함한다. 실시형태에서, 적어도 하나의 작은 RNA 서열은 제 1 프로모터의 제어 하에 있고, PAH 서열 또는 그의 변이체는 제 2 프로모터의 제어 하에 있다. 실시형태에서, 제 1 프로모터는 H1 프로모터를 포함한다. 실시형태에서, 제 2 프로모터는 간-특이적 프로모터를 포함한다. 실시형태에서, 간-특이적 프로모터는 hAAT 프로모터를 포함한다. 실시형태에서, 적어도 하나의 작은 RNA 서열은 SEQ ID NO: 13; 또는 SEQ ID NO: 14 와 적어도 80%, 적어도 81%, 적어도 82%, 적어도 83%, 적어도 84%, 적어도 85%, 적어도 86%, 적어도 87%, 적어도 88%, 적어도 89%, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95% 또는 그보다 높은 퍼센트 동일성을 갖는 서열을 포함한다.
실시형태에서, 변이체는 임의의 위에서 기재된 서열로 만들어질 수 있다. 실시형태에서, 적어도 하나의 작은 RNA 서열은 SEQ ID NO: 13; 또는 SEQ ID NO: 14 를 포함한다.
실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, PAH 서열, 및 내인성 PAH 를 표적화하는 shRNA (LV-Pro-hAAT-PAH-shPAH) 를 포함하는 렌티바이러스 벡터가 제공된다. 실시형태에서, shRNA 는 내인성 PAH 의 3'UTR 를 표적화한다. 실시형태에서, shPAH 를 SEQ ID NO: 13 을 포함한다. 실시형태에서, shPAH 는 SEQ ID NO: 14 를 포함한다.
본 공개의 양태에서, 표적 세포를 감염시킬 수 있는 렌티바이러스 입자는 표적 세포를 감염시키기 위해 최적화된 외피 단백질, 및 본원에서 개시되는 임의의 바이러스 벡터를 포함한다. 실시형태에서, 표적 세포는 간 세포, 근육 세포, 상피 세포, 내피 세포, 신경 세포, 신경내분비 세포, 내분비 세포, 림프구, 골수 세포, 고형 기관 내에 존재하는 세포, 또는 조혈 계통의 세포, 조혈 줄기 세포, 또는 전구체 조혈 줄기 세포이다.
본 공개의 양태에서, 대상체에서 PKU 을 치료하는 방법은 대상체에게 치료 유효량의 본원에서 개시되는 임의의 렌티바이러스 입자를 투여하는 것을 포함한다. 본 공개의 양태에서, 대상체에서 PKU 을 예방하는 방법은 대상체에게 치료 유효량의 본원에서 개시되는 임의의 렌티바이러스 입자를 투여하는 것을 포함한다. 본 공개의 또다른 양태에서, 대상체에서 PKU 을 치료하기 위한 치료 유효량의 본원에서 개시되는 임의의 렌티바이러스 입자의 용도가 개시되어 있다. 실시형태에서, 방법은 대상체에서 PKU 표현형과 상관관계가 있는 PKU 유전자형을 진단하는 것을 추가로 포함한다. 실시형태에서, 대상체는 자궁 내에 있다. 실시형태에서, 진단은 대상체의 태아기 스크리닝 동안 또는 부모의 유전적 스크리닝 후에 이루어진다. 실시형태에서, 진단은 시험관 내에서 이루어진다. 실시형태에서, 치료 유효량의 렌티바이러스 입자는 복수의 단일 용량의 렌티바이러스 입자를 포함한다. 실시형태에서, 치료 유효량의 렌티바이러스 입자는 단일 용량의 렌티바이러스 입자를 포함한다.
본 공개의 양태에서, PAH 의 돌연변이체 형태를 갖는 대상체를 외인성 PAH 를 포함하는 렌티바이러스 벡터의 치료 유효량으로 처리하는 것을 포함하는 대상체에서 PKU 을 치료하는 방법이 제공된다. 실시형태에서, 대상체는 포유동물이다. 실시형태에서, 포유동물은 인간이다. 실시형태에서, 포유동물은 설치류이다. 실시형태에서, 설치류는 마우스 또는 랫트이다. 실시형태에서, 포유동물은 돼지이다.
실시형태에서, 대상체는 렌티바이러스 벡터로 처리된다. 실시형태에서, 렌티바이러스 벡터는 PAH 서열 또는 그의 변이체를 포함한다. 실시형태에서, PAH 서열은 본원에서 기재되는 임의의 PAH 서열 또는 변이체이다.
실시형태에서, 렌티바이러스 벡터는 본원에서 기재되는 PAH 또는 변이체를 포함하는 임의의 렌티바이러스 벡터이다. 실시형태에서, PAH 를 포함하는 렌티바이러스 벡터는 도 1 및 2 에 도시된 바와 같은 PAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터이다. 실시형태에서, PAH 를 포함하는 렌티바이러스 벡터는 도 3 에 도시된 바와 같은 PAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터이다.
실시형태에서, 바이러스 벡터는 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 PAH 서열 (또한 본원에서 LV-Pro-hAAT-PAH 또는 AGT323 로서 언급됨) 을 포함한다. 실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서 서열은 본원에서 기재되는 임의의 프로트롬빈 서열 또는 변이체이다. 실시형태에서, hAAT 프로모터는 본원에서 기재되는 임의의 hAAT 프로모터 서열 또는 변이체이다. 실시형태에서, PAH 서열은 본원에서 기재되는 임의의 PAH 서열 또는 변이체이다.
실시형태에서, 렌티바이러스 벡터는 통합된 렌티바이러스 벡터로 구성된다. 실시형태에서, 통합된 렌티바이러스 벡터는 렌티바이러스 벡터 시스템에서 유래한다. 실시형태에서, 렌티바이러스 벡터 시스템은 rev 유전자 및 env 유전자를 인코딩하는 별개의 플라스미드를 포함한다. 실시형태에서, 통합된 렌티바이러스 벡터는 3-벡터 렌티바이러스 시스템에서 유래한다. 실시형태에서, 3-벡터 렌티바이러스 시스템은 도 1 에 예시되어 있다. 실시형태에서, 통합된 렌티바이러스 벡터는 4-벡터 렌티바이러스 시스템에서 유래한다. 실시형태에서, 4-벡터 렌티바이러스 벡터 시스템은 도 2 에 예시되어 있다.
실시형태에서, 대상체는 아데노-연관 바이러스 (AAV) 벡터로 처리된다. 실시형태에서, AAV 벡터는 본원에서 개시되는 임의의 AAV 벡터를 포함한다. 실시형태에서, AAV 벡터는 PAH 서열 또는 그의 변이체를 포함한다. 실시형태에서, PAH 서열은 본원에서 기재되는 임의의 PAH 서열 또는 변이체이다.
실시형태에서, 주입은 피내 주입이다. 실시형태에서, 주입은 근육내 주입이다. 실시형태에서, 주입은 피하 주입이다. 실시형태에서, 주입은 정맥내 주입이다.
실시형태에서, 본원에서 기재되는 방법은 대상체를 렌티바이러스 입자로 처리하기에 앞서 통합된 렌티바이러스 벡터의 비역가 (specific titer) 를 생성하는 것을 추가로 포함한다. 비역가는 시험관 내에서 세포 표적 및 렌티바이러스 벡터 형질도입, 그에 뒤이어 형질도입된 세포의 빈도 및 세포 당 통합된 벡터 카피의 수를 측정하기 위한 형질도입된 세포로부터의 염색체 DNA 의 정량적 PCR 분석을 이용하는 시험 시스템에서 확인된다. 역가는 적당한 칼럼의 렌티바이러스 벡터를 적당한 수의 세포 내로 형질도입하여 초래될 통합된 카피의 수로서 표현된다. 실시형태에서, 역가는 1 x 105 내지 1 x 1015 개 통합된 벡터 카피, 예를 들어, 1 x 107 내지 1 x 1013 개 통합된 벡터 카피, 또는 1 x 109 내지 1 x 1011 개 통합된 벡터 카피이다. 실시형태에서, 역가는 1 x 1010 개 통합된 벡터 카피이다.
실시형태에서, 통합된 렌티바이러스 벡터의 비역가의 생성은 벡터 시스템을 하나 이상의 세포에 첨가하는 것을 포함한다. 실시형태에서, 하나 이상의 세포는 세포주이다. 실시형태에서, 세포주는 293T 세포주이다. 실시형태에서, 세포주는 HeLa 세포주이다. 실시형태에서, 세포주는 CHO 세포주이다. 실시형태에서, 세포주는 Hep3B 세포주이다. 당업자는 또한 다른 실시형태에서, 세포주가 당업계에 알려진 임의의 적합한 세포주일 수 있다는 것을 이해할 것이다.
실시형태에서, 방법은 PAH 를 포함하는 렌티바이러스 벡터의 주입 후에 혈액에서 Phe 의 수준을 측정하는 것을 추가로 포함한다.
본 공개의 양태에서, 인간 PAH 는 AAV-전달되는 발현 시스템을 사용하여 세포에서 발현된다. 실시형태에서 AAV-2 혈청형이 사용된다. 실시형태에서, AAV-DJ 혈청형이 사용된다. 실시형태에서, AAV 벡터는 GFP 를 함유한다. 실시형태에서, AAV 벡터는 임의의 혈청형을 나타낼 수 있거나 또는 재조합 DNA 또는 인간 간세포의 형질도입을 개선하기 위해 디자인된 다른 합성 접근법에 의해 생성될 수 있다.
실시형태에서, 인간 PAH 가 AAV 벡터 내로 도입된다. 실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서가 AAV 벡터 내로 도입된다. 실시형태에서, hAAT 프로모터가 AAV 벡터 내로 도입된다. 실시형태에서, 토끼 글로빈 인트론이 AAV 벡터 내로 도입된다. 실시형태에서, 인간 PAH, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 토끼 글로빈 인트론 중 어느 하나 또는 그 이상이 AAV 벡터 내로 도입된다. 실시형태에서 바이러스 벡터는 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 PAH 서열 (AAV-Pro-hAAT-PAH; AGT323) 을 포함한다.
실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서 서열은 본원에서 개시되는 임의의 프로트롬빈 서열 또는 변이체이다. 실시형태에서, PAH 서열은 본원에서 기재되는 임의의 PAH 서열 또는 변이체이다. 실시형태에서, hAAT 서열은 본원에서 개시되는 임의의 hAAT 서열 또는 변이체이다. 실시형태에서, 인트론 서열은 본원에서 개시되는 임의의 인트론 서열 또는 변이체이다.
본 공개의 양태에서, 렌티바이러스 벡터 요법은 돌연변이체 PAH 유전자를 갖는 대상체의 치료에서 사용된다. 실시형태에서, 대상체는 인간이다. 다른 실시형태에서, 본원에서 실험적으로 보여지는 바와 같이, 대상체는 Pah 돌연변이체 마우스 라인에서 유래하는 신생아 마우스이다. 실시형태에서, 돌연변이체 마우스 라인은 Pahenu1 이다. 실시형태에서, 돌연변이체 마우스 라인은 Pahenu2 이다. 실시형태에서, 돌연변이체 마우스 라인은 Pahenu3 이다.
실시형태에서, 렌티바이러스 벡터 내의 PAH 서열은 본원에서 기재되고 www.biopku.org 에서 발견되는 PAHvdb, BIODEF, BIOPKU, JAKE 또는 PNDdb 데이타베이스에서 열거된 것들을 포함하는 임의의 PAH 서열 또는 변이체이다.
실시형태에서, 렌티바이러스 벡터는 통합된 렌티바이러스 벡터로 구성된다. 실시형태에서, 통합된 렌티바이러스 벡터는 렌티바이러스 벡터 시스템에서 유래한다. 실시형태에서, 렌티바이러스 벡터 시스템은 rev 유전자 및 외피 유전자를 인코딩하는 별개의 플라스미드를 포함한다. 실시형태에서, 통합된 렌티바이러스 벡터는 3-벡터 렌티바이러스 시스템에서 유래한다. 실시형태에서, 3-벡터 렌티바이러스 시스템은 도 1 에 예시되어 있다. 실시형태에서, 통합된 렌티바이러스 벡터는 4-벡터 렌티바이러스 시스템에서 유래한다. 실시형태에서, 4-벡터 렌티바이러스 벡터 시스템은 도 2 에 예시되어 있다.
본 공개의 양태에서, shRNA 및 PAH 를 함유하는 세포에서 렌티바이러스의 발현은 내인성 PAH 의 발현을 억제하지만, 렌티바이러스 벡터로부터 발현되는 외인성 PAH 의 발현은 억제하지 않는다.
실시형태에서, shRNA 및 PAH 를 함유하는 렌티바이러스는 본원에서 기재되는 바와 같이 대상체에서 생체 내에서 (in vivo) 발현된다. 실시형태에서, 대상체는 포유동물이다. 실시형태에서, 포유동물은 인간이다.
실시형태에서, shRNA 및 PAH 를 함유하는 렌티바이러스는 시험관 내에서 또는 생체 내에서 발현된다. 실시형태에서, 렌티바이러스는 시험관 내에서, 예를 들어 세포주에서 발현된다. 실시형태에서, 세포주는 본원에서 기재되는 임의의 세포주 또는 당업자에게 공지된 세포주이다. 실시형태에서, 세포주는 Hep3B 세포주이다.
실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, PAH 서열, 및 내인성 PAH 를 표적화하는 shRNA (임의로 본원에서 LV-Pro-hAAT-PAH-shPAH 로서 언급됨) 을 포함하는 렌티바이러스 벡터가 제공된다. 실시형태에서, shRNA 는 내인성 PAH 의 3'UTR 를 표적화한다.
실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서 서열은 본원에서 개시되는 임의의 프로트롬빈 서열 또는 변이체를 포함한다. 실시형태에서, hAAT 프로모터는 본원에서 개시되는 임의의 hAAT 프로모터 서열 또는 변이체를 포함한다. 실시형태에서, PAH 서열은 본원에서 기재되는 임의의 PAH 서열 또는 변이체를 포함한다. 실시형태에서, 렌티바이러스 벡터의 shRNA 서열은 SEQ ID NO: 13 을 포함한다. 실시형태에서, 렌티바이러스 벡터의 shRNA 서열은 SEQ ID NO: 14 를 포함한다.
본원에서 기재되는 본 발명의 다른 양태 및 이점은, 본 발명의 양태를 예로서 설명하는, 첨부된 도면과 함께 고려하여 하기 상세한 설명으로부터 명백해질 것이다.
페닐케톤뇨증
PKU 는 PAH 의 돌연변이 및/또는 PAH 보조인자 (즉, BH4) 의 합성 또는 재생 결함에 의해 유발된다고 여겨진다. 특히, 몇몇 PAH 돌연변이는 소포체에서의 단백질 폴딩에 영향을 미치는 것으로 나타났으며, 이는 효소 촉매 활성을 약화시키거나 크게 철폐시키는 단백질 구조에서의 미스센스 돌연변이 (63%) 및 작은 결실 (13%) 로 인한 가속화된 분해 및/또는 응집을 초래한다. PAH 의 기능성에 영향을 줄 수 있는 수많은 돌연변이가 존재하므로, PKU 를 치료하기 위한 효과적인 치료적 접근방식은 비정상 PAH 및/또는 대체 PAH 가 투여될 수 있는 방식을 다루는 것이 필요할 수 있다.
일반적으로, 3 가지 주요 표현형 군은 진단시 측정된 Phe 수준, Phe 에 대한 식이 내성 및 치료요법에 대한 잠재적 반응성을 기반으로 하여 PKU 에서 분류된다. 이들 군은 고전적 PKU (Phe > 1200 μM), 비정형 또는 경증 PKU (Phe 가 600 - 1200 μM 임) 및 영구적인 경증 고페닐알라닌혈증 (HPA, Phe 120 - 600 μM) 을 포함한다.
PKU 의 검출은 보편적 신생아 스크리닝 (NBS) 에 의존한다. 힐 스틱으로부터 수집한 1 점적의 혈액을 USA 의 모든 50 개 주에서 의무적이고 대부분의 개발도상국에서 통상적으로 사용되는 스크린에서 페닐알라닌 수준에 대해 검사한다.
유전 의약
유전 의약은 질환 치료 또는 예방의 목적으로 숙주 세포에 유전적 구축물을 전달하는데 사용되는 바이러스 벡터에 대한 언급을 포함한다.
유전적 구축물은 비제한적으로, 존재하는 결함을 교정하거나 보완하기 위한 기능적 유전자 또는 유전자의 일부, 조절 단백질을 인코딩하는 DNA 서열, 안티센스, 짧은 헤어핀 RNA, 짧은 상동성 RNA, 긴 비-코딩 RNA, 작은 간섭 RNA 또는 기타의 것들을 포함하는 조절 RNA 분자를 인코딩하는 DNA 서열, 및 질환 상태를 변경하기 위해 중요한 세포 인자에 대해 경쟁하도록 디자인된 RNA 또는 단백질을 인코딩하는 디코이 서열 (decoy sequence) 을 포함할 수 있다. 유전 의약은 특징 질환의 치료 또는 완화를 제공하기 위해 이러한 치료적 유전적 구축물을 표적 세포에 전달하는 것을 포함한다.
기능적 PAH 유전자를 간에 생체내 전달함으로써, PAH 활성이 재구성될 수 있어, 혈액 내 Phe 의 정상적인 청소를 초래하여 따라서 식이 제한 또는 빈번한 효소 대체 치료요법에 대한 필요성을 제거한다. 이러한 치료적 접근방식의 효과는 내인성 PAH 에 대한 shRNA 의 표적화에 의해 개선될 수 있다. 본 공개의 하나의 양태에서, 기능적 PAH 유전자 또는 이의 변이체는, 태아가 PKU 유전자형에 대한 위험성이 있는 것으로 확인된 경우 자궁 내에 전달될 수 있다. 실시형태에서, 진단 단계는 태아가 PKU 표현형에 대한 위험성이 있는지 여부를 결정하기 위해 실행될 수 있다. 진단 단계에서 태아가 PKU 표현형에 대한 위험성이 있는 것으로 결정되는 경우, 태아는 본원에 상세히 나타낸 유전 의약로 치료될 수 있다. 치료는 자궁 내에서 또는 시험관 내에서 이루어질 수 있다.
치료적 벡터
본원의 다양한 양태 및 실시형태에 따른 렌티바이러스 비리온 (입자) 은 비리온 (바이러스 입자) 를 생성하기 위해 필요한 바이러스 단백질을 인코딩하는 벡터 시스템에 의해 발현된다. 다양한 실시형태에서, 프로모터에 작동가능하게 연결된, 렌티바이러스 pol 단백질을 인코딩하는 핵산 서열을 함유하는 하나의 벡터가 역전사 및 통합을 위해 제공된다. 또 다른 실시형태에서, pol 단백질은 다수의 벡터에 의해 발현된다. 다른 실시형태에서, 프로모터에 작동가능하게 연결된, 바이러스 캡시드를 형성하기 위한 렌티바이러스 Gag 단백질을 인코딩하는 핵산 서열을 함유하는 벡터가 제공된다. 실시형태에서, 이러한 gag 핵산 서열은 적어도 일부의 pol 핵산 서열 외에 별개의 벡터 상에 존재한다.
야생형 복귀 돌연변이체 (revertant) 를 수득하는 가능성을 더 최소화하기 위해, 입자 생성에 사용되는 본원의 벡터에 수많은 변형이 이루어질 수 있다. 이들은 비제한적으로, LTR 의 U3 부위의 결실, tat 결실 및 매트릭스 (MA) 결실을 포함한다. 실시형태에서, gag, pol 및 env 벡터(들)는 렌티바이러스 패키징 서열로 지칭되는, 렌티바이러스 RNA 를 패키징하는 렌티바이러스 게놈으로부터의 뉴클레오티드를 함유하지 않는다.
입자를 형성하는 벡터(들)는 바람직하게는 외피 단백질을 발현하는 렌티바이러스 게놈으로부터의 핵산 서열을 함유하지 않는다. 바람직하게는, 프로모터에 작동가능하게 연결된 외피 단백질을 인코딩하는 핵산 서열을 함유하는 별개의 벡터가 사용된다. 이러한 env 벡터는 또한 렌티바이러스 패키징 서열을 함유하지 않는다. 한 실시형태에서 env 핵산 서열은 렌티바이러스 외피 단백질을 인코딩한다.
또다른 실시형태에서 외피 단백질은 렌티바이러스로부터가 아니라 상이한 바이러스로부터 유래된다. 생성된 입자는 위형 입자 (pseudotyped particle) 로 지칭된다. 외피 단백질을 적절히 선택함으로써 사실상 임의의 세포를 "감염" 시킬 수 있다. 예를 들어, 인플루엔자 바이러스, VSV-G 또는 인간 및 비-인간 랩도바이러스 단리물로부터의 유사한 외피 단백질, 알파 바이러스 (셈리키 삼림열바이러스, 신드비스 바이러스), 아레나바이러스 (림프구성 맥락수막염 바이러스), 플라비바이러스 (진드기 매개 뇌염 바이러스, 뎅기 바이러스, C 형 간염 바이러스, GB 바이러스), 랍도바이러스 (수포성 구내염 바이러스, 광견병 바이러스), 파라믹소바이러스 (볼거리 또는 홍역) 및 오르토믹소바이러스 (인플루엔자 바이러스) 의 것과 같은 세포내이입성 구획을 표적으로 하는 외피 단백질을 인코딩하는 env 유전자를 사용할 수 있다. 바람직하게 사용될 수 있는 다른 외피 단백질은 고양이 백혈병 바이러스 및 고양이 내인성 레트로바이러스, 몰로니 백혈병 바이러스 예컨대 MLV-E, MLV-A, 긴팔 원숭이 백혈병 바이러스 GALV, 및 개코 원숭이 내인성 레트로바이러스로부터의 것들을 포함한다. 이들 후자의 외피 단백질은 숙주 세포가 일차 세포인 경우에 특히 바람직하다. 원하는 숙주 세포에 따라 다른 외피 단백질이 선택될 수 있다.
본원에서 제공된 바와 같은 렌티바이러스 벡터 시스템은 전형적으로 gag, pol 또는 rev 유전자 중 적어도 하나를 포함하는 적어도 하나의 헬퍼 플라스미드를 포함한다. 각각의 gag, pol 및 rev 유전자는 개별 플라스미드 상에 제공될 수 있거나, 하나 이상의 유전자가 동일한 플라스미드 상에 함께 제공될 수 있다. 한 실시형태에서, gag, pol 및 rev 유전자는 동일한 플라스미드 상에 제공된다 (예를 들어, 도 1). 또다른 실시형태에서, gag 및 pol 유전자는 제 1 플라스미드 상에 제공되며 rev 유전자는 제 2 플라스미드 상에 제공된다 (예를 들어, 도 2). 따라서, 3-벡터 및 4-벡터 시스템 둘 모두가 본원에 기재된 바와 같은 렌티바이러스를 생성하는데 사용될 수 있다. 실시형태에서, 치료적 벡터, 적어도 하나의 외피 플라스미드 및 적어도 하나의 헬퍼 플라스미드는 패키징 세포, 예를 들어, 패키징 세포주에 트랜스펙션된다. 패키징 세포주의 비제한적인 예는 293T/17 HEK 세포주이다. 치료적 벡터, 외피 플라스미드 및 적어도 하나의 헬퍼 플라스미드가 패키징 세포주에 트랜스펙션되는 경우, 렌티바이러스 입자가 궁극적으로 생성된다.
또다른 양태에서, 렌티바이러스 입자를 발현시키기 위한 렌티바이러스 벡터 시스템이 개시되어 있다. 시스템은 본원에서 기재되는 렌티바이러스 벡터; 세포를 감염시키기 위해 최적화된 외피 단백질을 발현시키기 위한 외피 플라스미드; 및 gag, pol, 및 rev 유전자를 발현시키기 위한 적어도 하나의 헬퍼 플라스미드를 포함하며, 렌티바이러스 벡터, 외피 플라스미드, 및 적어도 하나의 헬퍼 플라스미드가 패키징 세포주 내로 트랜스펙션될 때, 패키징 세포주에 의해 렌티바이러스 입자가 생산되며, 렌티바이러스 입자는 PAH 의 생산을 저해할 수 있고/있거나 내인성 PAH 의 발현을 저해할 수 있다.
또다른 양태에서, 또한 본원에서 치료적 벡터로서 언급되는, 렌티바이러스 벡터는 하기 요소를 포함한다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/5' LTR) (SEQ ID NOs: 15-16), Psi 서열 (RNA 패키징 자리) (SEQ ID NO: 17), RRE (Rev-응답 요소) (SEQ ID NO: 18), cPPT (폴리퓨린 구역 (tract)) (SEQ ID NO: 19), 항 알파 트립신 프로모터 (hAAT) (SEQ ID NO: 6), 페닐알라닌 히드록실라아제 (PAH) (SEQ ID NOs: 1-4, 우드척 전사후 조절 요소 (Woodchuck Post-Transcriptional Regulatory Element) (WPRE) (SEQ ID NOs: 20), 및 ΔU3 3' LTR (SEQ ID NO: 21). 실시형태에서, 또한 본원에서 치료적 벡터로서 언급되는, 렌티바이러스 벡터는 하기 요소를 포함한다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/5' LTR) (SEQ ID NOs: 15-16), Psi 서열 (RNA 패키징 자리) (SEQ ID NO: 17), RRE (Rev-응답 요소) (SEQ ID NO: 18), cPPT (폴리퓨린 구역) (SEQ ID NO: 19), H1 프로모터 (SEQ ID NO: 22), PAH shRNA (SEQ ID NOs: 1-4), 항 알파 트립신 프로모터 (hAAT) (SEQ ID NO: 6), PAH shRNA (SEQ ID NOs: 1-4), 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE) (SEQ ID NO: 20), 및 ΔU3 3' LTR (SEQ ID NO: 21). 실시형태에서, 치환, 결실, 부가, 또는 돌연변이에 의한 서열 변이는 본원에서 서열 레퍼런스를 변형시키는데 사용될 수 있다.
또다른 양태에서, 헬퍼 플라스미드는 하기 요소를 포함한다: CMV 인핸서/닭 베타 액틴 인핸서 (SEQ ID NO: 23); HIV 성분 gag (SEQ ID NO: 24); HIV 성분 pol (SEQ ID NO: 25); HIV Int (SEQ ID NO: 26); HIV RRE (SEQ ID NO: 27); 및 HIV Rev (SEQ ID NO: 28). 또다른 양태에서, 헬퍼 플라스미드는 gag 및 pol 유전자를 발현하기 위한 제 1 헬퍼 플라스미드, 및 rev 유전자를 발현하기 위한 제 2 및 별개의 플라스미드를 포함하도록 변형될 수 있다. 실시형태에서, 치환, 결실, 부가, 또는 돌연변이에 의한 서열 변이는 본원에서 서열 레퍼런스를 변형시키는데 사용될 수 있다.
또다른 양태에서, 외피 플라스미드는 하기 요소를 포함한다: RNA 폴리머라아제 II 프로모터 (CMV) (SEQ ID NO: 29) 및 수포성 구내염 바이러스 G 당단백질 (VSV-G) (SEQ ID NO: 30). 실시형태에서, 치환, 결실, 부가, 또는 돌연변이에 의한 서열 변이는 본원에서 서열 레퍼런스를 변형시키는데 사용될 수 있다.
다양한 양태에서, 렌티바이러스 패키징에 사용된 플라스미드는 벡터 기능의 상실 없이 다양한 요소의 치환, 부가, 결실 또는 돌연변이에 의해 변형된다. 예를 들어, 비제한적으로, 하기 요소는 패키징 시스템을 포함하는 플라스미드 내의 유사한 요소를 대체할 수 있다: 신장 인자-1 (EF-1), 포스포글리세레이트 키나아제 (PGK) 및 유비퀴틴 C (UbC) 프로모터는 CMV 또는 CAG 프로모터를 대체할 수 있다. SV40 poly A 및 bGH poly A 는 토끼 베타 글로빈 poly A 를 대체할 수 있다. 헬퍼 플라스미드 내 HIV 서열은 상이한 HIV 균주 또는 클레이드로부터 구축될 수 있다. VSV-G 당단백질은 HERV-W 를 포함하는 인간 내인성 레트로바이러스, 개코 원숭이 내인성 레트로바이러스 BaEV, 고양이 내인성 바이러스 (RD114), 긴팔 원숭이 백혈병 바이러스 (GALV), 광견병 바이러스 (FUG), 림프구성 맥락 뇌막염 바이러스 (LCMV), 인플루엔자 A 조류 흑사병 바이러스 (FPV), 로스 리버 알파바이러스 (RRV), 쥐 백혈병 바이러스 10A1 (MLV) 또는 에볼라 바이러스 (EboV) 로부터의 멤브레인 당단백질로 치환될 수 있다.
다양한 렌티바이러스 패키징 시스템은 상업적으로 구입할 수 있으며 (예를 들어 OriGene Technologies, Inc., Rockville, MD 로부터의 Lenti-vpak 패키징 키트), 또한 본원에 기재된 바와 같이 디자인될 수 있다. 더욱이, 렌티바이러스 입자의 생성 효율을 포함하여 임의의 수의 관련 인자를 개선하기 위해 렌티바이러스 패키징 시스템의 양태를 치환하거나 변형시키는 것은 당업자의 기술 내에 있다.
또다른 양태에서, 아데노-관련 바이러스 (AAV) 벡터가 또한 사용될 수 있다. 실시형태에서, AAV 벡터는 AAV-DJ 혈청형이다. 실시형태에서, AAV 벡터는 혈청형 1-11 중 임의의 혈청형이다. 실시형태에서, AAV 혈청형은 AAV-2 이다. 실시형태에서, AAV 벡터는 인간 간세포의 최적 형질도입을 위해 조작된 비-천연 유형이다.
AAV 벡터 구축.
본 공개의 양태에서, PAH 코딩 서열 (SEQ ID NOs: 1-4) 및 프로트롬빈 인핸서 (SEQ ID NO: 5) 와 hAAT 프로모터 (SEQ ID NO: 6) 를 pAAV 플라스미드 (Cell Biolabs, San Diego, CA) 내로 삽입한다. PAH 코딩 서열과 측면 EcoRI 및 SalI 제한 자리는 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성된다. pAAV 플라스미드 및 PAH 서열을 EcoRI 및 SalI 효소로 소화시키고 함께 결찰시킨다. PAH 서열의 삽입을 서열분석에 의해 확인한다. 다음으로, 프로트롬빈 인핸서 및 hAAT 프로모터와 측면 MluI 및 EcoRI 제한 자리는 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성된다. PAH 코딩 서열 및 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 서열을 함유하는 pAAV 플라스미드를 MluI 및 EcoRI 효소로 소화시키고 함께 결찰시킨다. 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터의 삽입을 서열분석에 의해 확인한다.
나아가, PAH 를 발현시키기 위한 대표적인 AAV 플라스미드 시스템은 AAV 헬퍼 플라스미드, AAV 플라스미드, 및 AAV Rev/Cap 플라스미드를 포함할 수 있다. AAV 헬퍼 플라스미드는 좌측 ITR (SEQ ID NO: 31), 프로트롬빈 인핸서 (SEQ ID NO: 5), 인간 항 알파 트립신 프로모터 (SEQ ID NO: 6), PAH 요소 (SEQ ID NOs: 1-4), PolyA 요소 (SEQ ID NO: 32), 및 우측 ITR (SEQ ID NO: 33) 를 함유할 수 있다. AAV 플라스미드는 적합한 프로모터 요소 (SEQ ID NO: 23 또는 SEQ ID NO: 29), E2A 요소 (SEQ ID NO: 34), E4 요소 (SEQ ID NO: 35), VA RNA 요소 (SEQ ID NO: 36), 및 PolyA 요소 (SEQ ID NO: 32) 를 함유할 수 있다. AAV Rep/Cap 플라스미드는 적합한 프로모터 요소, Rep 요소 (SEQ ID NO: 37), Cap 요소 (SEQ ID NO: 38), 및 PolyA 요소 (SEQ ID NO: 32) 를 함유할 수 있다.
실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서 및 PAH 서열을 포함하는 AAV/DJ 플라스미드가 제공된다 (AAV/DJ-Pro-PAH). 실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서, 인트론, 및 PAH 서열을 포함하는 AAV/DJ 플라스미드가 제공된다 (AAV/DJ-Pro-인트론-PAH). 실시형태에서, 인트론은 인간 베타 글로빈 인트론이다. 실시형태에서, 인트론은 토끼 베타 글로빈 인트론이다. 실시형태에서, GFP 를 포함하는 AAV/DJ 플라스미드가 제공된다 (AAV/DJ-GFP).
실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서 및 PAH 서열을 포함하는 AAV2 플라스미드가 제공된다 (AAV2-Pro-PAH). 실시형태에서, 프로트롬빈 인핸서, 인트론, 및 PAH 서열을 포함하는 AAV2 플라스미드가 제공된다 (AAV2-Pro-인트론-PAH). 실시형태에서, 인트론은 인간 베타 글로빈 인트론이다. 실시형태에서, 인트론은 토끼 베타 글로빈 인트론이다. 실시형태에서, GFP 를 포함하는 AAV2 가 제공된다 (AAV2-GFP).
실시형태에서, 본원에서 개시되는 임의의 AAV 벡터는 조절 RNA 를 발현하는 서열을 함유할 수 있다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 lncRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 microRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 piRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 shRNA 이다. 실시형태에서, 조절 RNA 는 SEQ ID NOs: 13 또는 14 와 적어도 80%, 적어도 81%, 적어도 82%, 적어도 83%, 적어도 84%, 적어도 85%, 적어도 86%, 적어도 87%, 적어도 88%, 적어도 89%, 적어도 90%, 적어도 91%, 적어도 92%, 적어도 93%, 적어도 94%, 적어도 95% 또는 그보다 높은 퍼센트 동일성을 갖는 서열을 포함하는 작은 RNA 서열이다.
AAV 입자의 생산. AAV-PAH 플라스미드는 플라스미드 pAAV-RC2 (Cell Biolabs) 및 pHelper (Cell Biolabs) 와 조합된다. pAAV-RC2 플라스미드는 Rep 및 AAV-2 캡시드 유전자를 함유하고, pHelper 는 아데노바이러스 E2A, E4, 및 VA 유전자를 함유한다. AAV 캡시드는 또한 AAV-8 (SEQ ID NO: 39) 또는 AAV-DJ (SEQ ID NO: 40) 서열로 이루어질 수 있다. AAV 입자를 생산하기 위해서, 이들 플라스미드는 1:1:1 (pAAV-PAH: pAAV-RC2: pHelper) 비로 293T 세포 내로 트랜스펙션된다. 150 ㎜ 디쉬 (BD Falcon) 에서 세포의 트랜스펙션을 위해, 10 ㎍ 의 각각의 플라스미드를 1 ㎖ 의 DMEM 중에 함께 첨가한다. 또다른 튜브에서, 60 ㎕ 의 트랜스펙션 시약 PEI (1 ㎍/㎖) (Polysciences) 를 1 ㎖ 의 DMEM 에 첨가한다. 2 개의 튜브를 함께 혼합하여 15 분 동안 인큐베이션한다. 그런 다음, 트랜스펙션 혼합물을 세포에 첨가하고, 세포를 3 일 후 수집한다. 세포를 드라이 아이스/이소프로판올 중 동결/해동 용해 (lysis) 에 의해 용해한다. 벤조나아제 뉴클레아제 (Sigma) 를 37℃ 에서 30 분 동안 세포 용해물에 첨가한다. 그런 다음, 세포 용해물을 4℃ 에서 15 분 동안 12,000 rpm 에서 원심분리에 의해 펠렛한다. 상청액을 수집한 다음, 표적 세포에 첨가한다.
투약량 및 투약 형태
개시된 벡터 시스템은 개시된 벡터의 에피솜 유지 및 관심 유전자 또는 서열의 단기간, 중간 기간 또는 장기간 발현을 가능하게 한다. 따라서, 용량 용법은 치료되는 병상 및 투여 방법을 기반으로 가변적일 수 있다.
실시형태에서, 벡터 조성물은 가변적 용량으로 이를 필요로 하는 대상체에게 투여될 수 있다. 특히, 대상체는 약 ≥ 106 감염 용량 (여기서 1 용량이 1 표적 세포를 형질도입시키는데 평균적으로 필요함) 이 투여될 수 있다. 보다 특히, 대상체는 약 ≥ 107, 약 ≥ 108, 약 ≥ 109, 약 ≥ 1010, 약 ≥ 1011, 또는 약 ≥ 1012 감염 용량/체중 ㎏, 또는 이들 값 사이의 임의 수의 용량을 투여받을 수 있다. 용량의 상한치는 각각의 질환 징후에 대해 결정될 것이며, 각각의 개별 제품 또는 제품 로트에 대한 독성/안전성 프로파일에 따라 좌우될 것이다.
부가적으로, 본 공개의 벡터 조성물은 1 일 1 회 또는 2 회와 같이 주기적으로, 또는 임의의 다른 적합한 시간으로 투여될 수 있다. 예를 들어, 벡터 조성물은 이를 필요로 하는 대상체에게 1 주에 1 회, 2 주에 1 회, 3 주에 1 회, 1 개월에 1 회, 2 개월마다, 3 개월마다, 6 개월마다, 9 개월마다, 1 년에 1 회, 18 개월마다, 2 년마다, 30 개월마다, 또는 3 년마다 투여될 수 있다.
실시형태에서, 개시된 벡터 조성물은 약학적 조성물로서 투여된다. 실시형태에서, 약학적 조성물은 임상 적용을 위한 코, 폐, 경구, 국소 또는 비경구 투약 형태를 비제한적으로 포함하는 광범위한 투약 형태로 제형화될 수 있다. 각각의 투약 형태는 다양한 가용화제, 붕해제, 계면활성제, 충전제, 증점제, 결합제, 희석제 예컨대 습윤제 또는 다른 약학적으로 허용가능한 부형제를 포함할 수 있다. 약학적 조성물은 또한 주입, 흡입, 주입 또는 피내 노출을 위해 제형화될 수 있다. 예를 들어, 주입가능 제형은 적합한 pH 및 등장성에서 수성 또는 비-수성 용액 중에 개시된 벡터를 포함할 수 있다.
개시된 벡터 조성물은 대상체에게 유도 주입으로 간 내로 직접 주입을 통해 투여될 수 있다. 일부 실시형태에서, 벡터는 동맥 또는 정맥 순환을 통해 전신 투여될 수 있다. 일부 실시형태에서, 벡터 조성물은 유도 삽관을 통해 비장 또는 췌장을 포함하는 간을 바로 둘러싼 조직에 투여될 수 있다. 일부 실시형태에서, 벡터 조성물은 문맥 또는 문맥동 내로 주입에 의해 전달될 수 있고, 탯줄 정맥 내로 주입에 의해 전달될 수 있다.
개시된 벡터 조성물은 임의의 약학적으로 허용가능한 방법, 예컨대 비내, 구강, 설하, 경구, 직장, 안구, 비경구 (정맥내, 피부내, 근육내, 피하, 복강내), 폐, 질내, 국부 투여, 국소 투여, 난절 이후 국소 투여, 점막 투여를 사용하여, 에어로졸을 통해, 반고체 매질 예컨대 아가로오스 또는 젤라틴에서, 또는 구강 또는 코 스프레이 제형을 통해 투여될 수 있다.
또한, 개시된 벡터 조성물은 임의의 약학적으로 허용가능한 투약 형태, 예컨대 고체 투약 형태, 정제, 알약, 로젠지, 캡슐, 액체 분산액, 겔, 에어로졸, 폐 에어로졸, 코 에어로졸, 연고, 크림, 반고체 투약 형태, 용액, 에멀젼 및 현탁액으로 제형화될 수 있다. 또한, 약학적 조성물은 제어 방출 제형, 지속 방출 제형, 즉시 방출 제형 또는 이의 임의 조합일 수 있다. 또한, 약학적 조성물은 경피 전달 시스템일 수 있다.
실시형태에서, 약학적 조성물은 경구 투여용 고체 투약 형태로 제형화될 수 있고, 고체 투약 형태는 분말, 과립, 캡슐, 정제 또는 알약일 수 있다. 실시형태에서, 고체 투약 형태는 하나 이상의 부형제 예컨대 칼슘 카르보네이트, 전분, 수크로오스, 락토오스, 미세결정질 셀룰로오스 또는 젤라틴을 포함할 수 있다. 또한, 고체 투약 형태는 부형제에 추가로, 윤활제 예컨대 탈크 또는 마그네슘 스테아레이트를 포함할 수 있다. 일부 실시형태에서, 경구 투약 형태는 즉시 방출 또는 변형 방출 형태일 수 있다. 변형 방출 투약 형태는 제어 또는 연장 방출, 장 방출 등을 포함한다. 변형 방출 투약 형태에서 사용되는 부형제는 일반적으로 당업자에게 공지되어 있다.
실시형태에서, 약학적 조성물은 설하 또는 구강 투약 형태로서 제형화될 수 있다. 이러한 투약 형태는 혀 아래에 투여되는 설하 정제 또는 용액 조성물 및 뺨과 잇몸 사이에 놓여지는 구강 정제를 포함한다.
실시형태에서, 약학적 조성물은 코 투약 형태로서 제형화될 수 있다. 본 공개의 이러한 투약 형태는 코 전달을 위한 용액, 현탁액 및 겔 조성물을 포함한다.
실시형태에서, 약학적 조성물은 경구 투여용 액체 투약 형태, 예컨대 현탁액, 에멀젼 또는 시럽으로 제형화될 수 있다. 실시형태에서, 액체 투약 형태는 통용되는 단순한 희석제 예컨대 물 및 액체 파라핀에 추가로, 다양한 부형제 예컨대 보습제, 감미제, 방향제 또는 보존제를 포함할 수 있다. 실시형태에서, 조성물은 소아과 환자에게 투여하기 적합하도록 제형화될 수 있다.
실시형태에서, 약학적 조성물은 비경구 투여용 투약 형태, 예컨대 멸균 수용액, 현탁액, 에멀젼, 비-수용액 또는 좌제로 제형화될 수 있다. 실시형태에서, 용액 또는 현탁액은 프로필렌글리콜, 폴리에틸렌글리콜, 식물성 오일 예컨대 올리브 오일 또는 주입가능 에스테르 예컨대 에틸 올레에이트를 포함할 수 있다.
약학적 조성물의 투약량은 환자의 체중, 연령, 성별, 투여 시기 및 방식, 배설률, 및 질환의 중증도에 따라 가변적일 수 있다.
실시형태에서, PKU 의 치료는 바늘, 또는 혈관내 삽관을 사용하여 간 내로 개시된 벡터 구축물의 유도 직접 주입에 의해 달성된다. 실시형태에서, 벡터 조성물은 정맥 또는 동맥 삽관 또는 주입, 피내 전달, 근육내 전달 또는 간 근처의 배수 기관 내로의 주입에 의해 뇌척수액, 혈액 또는 림프 순환에 투여된다.
하기 실시예는 본 발명의 양태를 예시하기 위해 제공된다. 그러나, 본 발명은 이들 실시예에서 기재되는 특정 조건또는 세부사항에 제한되지 않는다고 이해될 것이다. 본원에서 참조하는 모든 인쇄된 공개물은 명확하게 참조로 통합된다.
실시예
실시예 1. 렌티바이러스 벡터 시스템의 개발
렌티바이러스 벡터 시스템을 도 1 (원형화된 형태) 에서 요약한 바와 같이 개발했다. 렌티바이러스 입자를 293T/17 HEK 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA 로부터 구입) 에서 생성시킨 후, 치료적 벡터, 외피 플라스미드 및 헬퍼 플라스미드로 트랜스펙션했다. 기능적 바이러스 입자를 생성한 293T/17 HEK 세포의 트랜스펙션에는 시약 폴리(에틸렌이민) (PEI) 을 이용하여 플라스미드 DNA 흡수 효율을 증가시켰다. 플라스미드 및 DNA 를 초기에 3:1 의 비 (PEI 대 DNA 의 질량비) 로, 혈청 없는 배양 배지에서 별도로 첨가했다. 2-3 일 후, 세포 배지를 수집하고 렌티바이러스 입자를 고속 원심분리 및/또는 여과에 의해 정제한 후, 음이온 교환 크로마토그래피를 수행했다. 렌티바이러스 입자의 농도는 형질도입 단위/㎖ (TU/㎖) 로 표현될 수 있다. TU 의 결정은 배양액 (p24 단백질이 렌티바이러스 입자에 통합됨) 중 HIV p24 수준을 측정함으로써, 정량 PCR 에 의해 형질도입된 세포 당 바이러스 DNA 카피수를 측정함으로써, 또는 세포를 감염시키고 광을 사용하여 (벡터가 루시퍼라아제 또는 형광 단백질 마커를 인코딩하는 경우) 달성되었다.
상기 언급한 바와 같이, 3-벡터 시스템 (즉, 2-벡터 렌티바이러스 패키징 시스템을 포함함) 은 렌티바이러스 입자의 생성을 위해 디자인되었다. 3-벡터 시스템의 개략도를 도 1 에 나타낸다. 간략하게, 도 1 을 참조하면, 최상부 벡터는 헬퍼 플라스미드이며, 이러한 경우, 이는 Rev 를 포함한다. 도 1 의 중앙에 나타나는 벡터는 외피 플라스미드이다. 최하부 벡터는 본원에 기재된 바와 같은 치료용 벡터이다.
도 1 을 참조하면, 헬퍼 + Rev 플라스미드는 CMV 인핸서와 닭 베타 액틴 프로모터 (SEQ ID NO: 23); 닭 베타 액틴 인트론 (SEQ ID NO: 41); HIV Gag (SEQ ID NO: 24); HIV Pol (SEQ ID NO: 25); HIV 인테그라아제 (SEQ ID NO: 26); HIV RRE (SEQ ID NO: 27); HIV Rev (SEQ ID NO: 28); 및 토끼 베타 글로빈 poly A (SEQ ID NO: 42) 를 포함한다.
외피 플라스미드는 CMV 프로모터 (SEQ ID NO: 29); 베타 글로빈 인트론 (SEQ ID NO: 7 또는 8); VSV-G 외피 당단백질 (SEQ ID NO: 30); 및 토끼 베타 글로빈 poly A (SEQ ID NO: 42) 를 포함한다.
헬퍼 (+ Rev) 및 외피 플라스미드로 이루어지는 2-벡터 렌티바이러스 패키징 시스템을 포함하는 3-벡터 시스템의 합성이 개시되어 있다.
물질 및 방법:
헬퍼 플라스미드의 구축: Gag, Pol, 및 인테그라아제 유전자를 함유하는 pNL4-3 HIV 플라스미드 (NIH Aids Reagent Program) 로부터 DNA 단편의 초기 PCR 증폭에 의해 헬퍼 플라스미드를 구축했다. 프라이머는, pCDNA3 플라스미드 (Invitrogen) 에서의 동일한 자리에 삽입하는데 사용될 수 있는 EcoRI 및 NotI 제한 자리가 있는 단편을 증폭하도록 디자인되었다. 정방향 프라이머는 (5'-TAAGCAGAATTCATGAATTTGCCAGGAAGAT-3') (SEQ ID NO: 43) 이었고, 역방향 프라이머는 (5'-CCATACAATGAATGGACACTAGGCGGCCGCACGAAT-3') (SEQ ID NO: 44) 이었다.
Gag, Pol, 인테그라아제 단편에 대한 서열은 다음과 같았다:
다음으로, RRE, Rev, 및 토끼 베타 글로빈 poly A 서열과 XbaI 및 XmaI 측면 (flanking) 제한 자리를 함유하는 DNA 단편은 Eurofins Genomics 에 의해 합성되었다. DNA 단편을 그 후 플라스미드 내로 XbaI 및 XmaI 제한 자리에서 삽입했다. DNA 서열은 다음과 같았다:
마지막으로, pCDNA3.1 의 CMV 프로모터를 CAG 프로모터 (CMV 인핸서, 닭 베타 액틴 프로모터 + 닭 베타 액틴 인트론 서열) 로 대체했다. CAG 인핸서/프로모터/인트론 서열과 MluI 및 EcoRI 측면 제한 자리를 함유하는 DNA 단편은 Eurofins Genomics 에 의해 합성되었다. DNA 단편을 그 후 플라스미드 내로 MluI 및 EcoRI 제한 자리에서 삽입했다. DNA 서열 다음과 같았다:
VSV-G 외피 플라스미드의 구축:
수포성 구내염 인디아나 바이러스 당단백질 (VSV-G) 서열과 측면 EcoRI 제한 자리는 Eurofins Genomics 에 의해 합성되었다. DNA 단편을 그 후 pCDNA3.1 플라스미드 (Invitrogen) 내로 EcoRI 제한 자리에서 삽입하고, CMV 특이적 프라이머를 사용하여 서열분석에 의해 올바른 배향을 확인했다.
DNA 서열은 다음과 같았다:
3-벡터 렌티바이러스 패키징 시스템을 포함하는 4-벡터 시스템을 또한 본원에서 기재되는 방법 및 물질을 사용하여 디자인 및 생산했다. 4-벡터 시스템의 도해가 도 2 에서 보여진다. 간략히, 도 2 를 참조하면, 최상부 벡터는 헬퍼 플라스미드이며, 이는, 이 경우에, Rev 를 포함하지 않는다. 제 2 벡터는 별개의 Rev 플라스미드이다. 제 3 벡터는 외피 플라스미드이다. 최하부 벡터는 본원에서 기재되는 치료적 벡터이다.
도 2 를 참조하면, 헬퍼 플라스미드는 CMV 인핸서 및 닭 베타 액틴 프로모터 (SEQ ID NO: 23); 닭 베타 액틴 인트론 (SEQ ID NO: 41); HIV Gag (SEQ ID NO: 24); HIV Pol (SEQ ID NO: 25); HIV 인테그라아제 (SEQ ID NO: 26); HIV RRE (SEQ ID NO: 27); 및 토끼 베타 글로빈 poly A (SEQ ID NO: 42) 를 포함한다.
Rev 플라스미드는 RSV 프로모터 및 HIV Rev (SEQ ID NO: 48); 및 토끼 베타 글로빈 poly A (SEQ ID NO: 42) 를 포함한다.
외피 플라스미드는 CMV 프로모터 (SEQ ID NO: 29); 베타 글로빈 인트론 (SEQ ID NO: 7 또는 8); VSV-G 외피 당단백질 (SEQ ID NO: 30); 및 토끼 베타 글로빈 poly A (SEQ ID NO: 42) 를 포함한다.
하나의 양태에서, PAH 를 발현하는 치료적 렌티바이러스 벡터는 도 3 의 벡터 A 에서 보여지는 요소 전부를 포함한다. 또다른 양태에서, PAH 를 발현하는 치료적 렌티바이러스 벡터는 도 3 의 벡터 B 에서 보여지는 요소 전부를 포함한다. 또다른 양태에서, PAH 를 발현하는 치료적 렌티바이러스 벡터는 도 3 의 벡터 C 에서 보여지는 요소 전부를 포함한다. 또다른 양태에서, PAH 를 발현하는 치료적 렌티바이러스 벡터는 도 3 의 벡터 D 에서 보여지는 요소 전부를 포함한다. 또다른 양태에서, PAH 를 발현하는 치료적 렌티바이러스 벡터는 도 3 의 벡터 E 에서 보여지는 요소 전부를 포함한다. 또다른 양태에서, PAH 를 발현하는 치료적 렌티바이러스 벡터는 도 3 의 벡터 F 에서 보여지는 요소 전부를 포함한다. 또다른 양태에서, PAH 를 발현하는 치료적 렌티바이러스 벡터는 도 3 의 벡터 G 에서 보여지는 요소 전부를 포함한다. 또다른 양태에서, PAH 를 발현하는 치료적 렌티바이러스 벡터는 도 3 의 벡터 H 에서 보여지는 요소 전부를 포함한다.
헬퍼, Rev, 및 외피 플라스미드로 이루어지는 3-벡터 렌티바이러스 패키징 시스템을 포함하는 4-벡터 시스템의 합성이 개시되어 있다.
물질 및 방법:
Rev 가 없는 헬퍼 플라스미드의 구축:
RRE 및 토끼 베타 글로빈 poly A 서열을 함유하는 DNA 단편을 삽입하여, Rev 가 없는 헬퍼 플라스미드를 구축했다. 이 서열과 측면 XbaI 및 XmaI 제한 자리는 Eurofins Genomics 에 의해 합성되었다. RRE/토끼 poly A 베타 글로빈 서열을 그 후 헬퍼 플라스미드 내로 XbaI 및 XmaI 제한 자리에서 삽입했다.
DNA 서열은 다음과 같다:
Rev 플라스미드의 구축:
RSV 프로모터 및 HIV Rev 서열은 단일 DNA 단편으로서 측면 MfeI 및 XbaI 제한 자리와 Eurofins Genomics 에 의해 합성되었다. DNA 단편을 그 후 pCDNA3.1 플라스미드 (Invitrogen) 내로 MfeI 및 XbaI 제한 자리에서 삽입했으며, CMV 프로모터는 RSV 프로모터로 대체되어 있다. DNA 서열 다음과 같았다:
패키징 시스템에서 사용되는 플라스미드는 유사한 요소로 변형될 수 있고, 인트론 서열은 벡터 기능의 상실 없이 잠재적으로 제거될 수 있다. 예를 들어, 하기 요소는 패키징 시스템에서 유사한 요소를 대체할 수 있다:
프로모터: 신장 인자-1 (EF-1) (SEQ ID NO: 49), 포스포글리세레이트 키나아제 (PGK) (SEQ ID NO: 50), 및 유비퀴틴 C (UbC) (SEQ ID NO: 51) 는 CMV (SEQ ID NO: 29) 또는 CMV 인핸서/닭 베타 액틴 프로모터 (SEQ ID NO: 23) 를 대체할 수 있다. 이들 서열은 또한 부가, 치환, 결실 또는 돌연변이에 의해 추가로 달라질 수 있다.
Poly A 서열: SV40 poly A (SEQ ID NO: 52) 및 bGH poly A (SEQ ID NO: 53) 는 토끼 베타 글로빈 poly A (SEQ ID NO: 42) 를 대체할 수 있다. 이들 서열은 또한 부가, 치환, 결실 또는 돌연변이에 의해 추가로 달라질 수 있다.
HIV Gag, Pol, 및 인테그라아제 서열: 헬퍼 플라스미드에서의 HIV 서열은 상이한 HIV 균주 또는 클레이드로부터 구축될 수 있다. 예를 들어, Bal 균주으로부터의 HIV Gag (SEQ ID NO: 24); HIV Pol (SEQ ID NO: 25); 및 HIV Int (SEQ ID NO: 26) 는 본원에서 개요서술되는 헬퍼/헬퍼 + Rev 플라스미드에 함유된 gag, pol, 및 int 서열과 상호교환될 수 있다. 이들 서열은 또한 부가, 치환, 결실 또는 돌연변이에 의해 추가로 달라질 수 있다.
외피: VSV-G 당단백질은 고양이 내인성 바이러스 (RD114) (SEQ ID NO: 54), 긴팔 원숭이 백혈병 바이러스 (GALV) (SEQ ID NO: 55), 광견병 바이러스 (FUG) (SEQ ID NO: 56), 림프구성 맥락 뇌막염 바이러스 (LCMV) (SEQ ID NO: 57), 인플루엔자 A 조류 흑사병 바이러스 (FPV) (SEQ ID NO: 58), 로스 리버 알파바이러스 (RRV) (SEQ ID NO: 59), 쥐 백혈병 바이러스 10A1 (MLV) (SEQ ID NO: 60), 또는 에볼라 바이러스 (EboV) (SEQ ID NO: 61) 로부터의 막 당단백질로 치환될 수 있다. 이들 외피에 관한 서열은 본원에서 서열 부분에서 식별된다. 추가로, 이들 서열은 또한 부가, 치환, 결실 또는 돌연변이에 의해 추가로 달라질 수 있다.
요약하면, 3-벡터 vs. 4-벡터 시스템이 비교될 수 있고, 다음과 같이 대비될 수 있다. 3-벡터 렌티바이러스 벡터 시스템은 다음을 포함한다: 1. 헬퍼 플라스미드: HIV Gag, Pol, 인테그라아제, RRE, 및 Rev; 2. 외피 플라스미드: VSV-G 외피; 및 3. 치료적 벡터: RSV, 5'LTR, Psi 패키징 신호, RRE, cPPT, 프로트롬빈 인핸서, 알파 1 항-트립신 프로모터, 페닐알라닌 히드록실라아제, WPRE, 및 3'델타 LTR. 4-벡터 렌티바이러스 벡터 시스템은 다음을 포함한다: 1. 헬퍼 플라스미드: HIV Gag, Pol, 인테그라아제, 및 RRE; 2. Rev 플라스미드: Rev; 3. 외피 플라스미드: VSV-G 외피; 및 4. 치료적 벡터: RSV, 5'LTR, Psi 패키징 신호, RRE, cPPT, 프로트롬빈 인핸서, 알파 1 항-트립신 프로모터, 페닐알라닌 히드록실라아제, WPRE, 및 3'델타 LTR. 상기 요소에 상응하는 서열은 본원에서 서열 목록 부분에서 식별된다.
실시예 2. 치료적 벡터
예시적 치료적 벡터를, 예를 들어, 도 3 에서 보여지는 바와 같이 디자인 및 개발했다.
첫째로 도 3 의 벡터 A 를 참조하면, 좌측에서 우측으로, 핵심 유전적 요소는 다음과 같다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/LTR), Psi 서열 (RNA 패키징 자리), RRE (Rev-응답 요소), cPPT (폴리퓨린 구역), 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 본원에서 상세히 기재되는, PAH 서열 및 그의 변이체를 포함하는 PAH 서열, 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE), 및 U3 영역에 결실이 있는 LTR.
다음으로 도 3 의 벡터 B 를 참조하면, 좌측에서 우측으로, 핵심 유전적 요소는 다음과 같다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/LTR), Psi 서열 (RNA 패키징 자리), RRE (Rev-응답 요소), cPPT (폴리퓨린 구역), 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 HNF1 (간세포 핵 인자) 결합 자리, hAAT 프로모터, 본원에서 상세히 기재되는, PAH 서열 및 그의 변이체를 포함하는 PAH 서열, 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE), 및 U3 영역에 결실이 있는 LTR.
다음으로 도 3 의 벡터 C 를 참조하면, 좌측에서 우측으로, 핵심 유전적 요소는 다음과 같다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/LTR), Psi 서열 (RNA 패키징 자리), RRE (Rev-응답 요소), cPPT (폴리퓨린 구역), 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 HNF1/4 (간세포 핵 인자) 결합 자리, hAAT 프로모터, 본원에서 상세히 기재되는, PAH 서열 및 그의 변이체를 포함하는 PAH 서열, 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE), 및 U3 영역에 결실이 있는 LTR.
다음으로 도 3 의 벡터 D 를 참조하면, 좌측에서 우측으로, 핵심 유전적 요소는 다음과 같다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/LTR), Psi 서열 (RNA 패키징 자리), RRE (Rev-응답 요소), cPPT (폴리퓨린 구역), 프로트롬빈 인핸서, HNF1 (간세포 핵 인자), hAAT 프로모터, 본원에서 상세히 기재되는, PAH 서열 및 그의 변이체를 포함하는 PAH 서열, 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE), 및 U3 영역에 결실이 있는 LTR.
다음으로 도 3 의 벡터 E 를 참조하면, 좌측에서 우측으로, 핵심 유전적 요소는 다음과 같다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/LTR), Psi 서열 (RNA 패키징 자리), RRE (Rev-응답 요소), cPPT (폴리퓨린 구역), 프로트롬빈 인핸서, HNF1/4 (간세포 핵 인자), hAAT 프로모터, 본원에서 상세히 기재되는, PAH 서열 및 그의 변이체를 포함하는 PAH 서열, 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE), 및 U3 영역에 결실이 있는 LTR.
다음으로 도 3 의 벡터 F 를 참조하면, 좌측에서 우측으로, 핵심 유전적 요소는 다음과 같다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/LTR), Psi 서열 (RNA 패키징 자리), RRE (Rev-응답 요소), cPPT (폴리퓨린 구역), 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 다섯 개의 HNF1 (간세포 핵 인자) 결합 자리, hAAT 프로모터, 본원에서 상세히 기재되는, PAH 서열 및 그의 변이체를 포함하는 PAH 서열, 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE), 및 U3 영역에 결실이 있는 LTR.
다음으로 도 3 의 벡터 G 를 참조하면, 좌측에서 우측으로, 핵심 유전적 요소는 다음과 같다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/LTR), Psi 서열 (RNA 패키징 자리), RRE (Rev-응답 요소), cPPT (폴리퓨린 구역), 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 세 개의 HNF1/HNF4 (간세포 핵 인자) 결합 자리, hAAT 프로모터, 본원에서 상세히 기재되는, PAH 서열 및 그의 변이체를 포함하는 PAH 서열, 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE), 및 U3 영역에 결실이 있는 LTR.
첫째로 도 3 의 벡터 H 를 참조하면, 좌측에서 우측으로, 핵심 유전적 요소는 다음과 같다: 하이브리드 5' 장 말단 반복부 (RSV/LTR), Psi 서열 (RNA 패키징 자리), RRE (Rev-응답 요소), cPPT (폴리퓨린 구역), 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 토끼 베타 글로빈 인트론, 본원에서 상세히 기재되는, PAH 서열 및 그의 변이체를 포함하는 PAH 서열, 우드척 전사후 조절 요소 (WPRE), 및 U3 영역에 결실이 있는 LTR.
도 3 에 일반적으로 나타낸 벡터를 생산하기 위해서, 본원에서 기재되는 바와 같고 그 외에는 당업자에게 이해되는 바와 같은 방법 및 물질을 이용했다.
저해성 RNA 디자인: 호모 사피엔스 (Homo sapiens) 페닐알라닌 히드록실라아제 (PAH) (NM_000277.1) mRNA 의 서열을 사용하여 인간 세포에서 PAH 수준을 녹다운시키는 잠재적 shRNA 후보에 대해 검색했다. 잠재적 RNA shRNA 서열을 siRNA 또는 shRNA 디자인 프로그램에 의해 선별된 후보로부터 예컨대 Broad Institute (portals.broadinstitute.org/gpp/public/) 에 의해 관리되는 GPP 웹 포털 또는 Thermo Scientific (https://rnaidesigner.thermofisher.com/rnaiexpress/) 의 BLOCK-iT RNAi Designer 로부터 선택했다. 개별 선별된 shRNA 서열을 렌티바이러스 벡터 내로 shRNA 발현을 조절하기 위한 RNA 폴리머라아제 III 프로모터 H1 (SEQ ID NO: 22) 의 바로 3 프라임에 삽입했다. 이들 렌티바이러스 shRNA 구축물을 사용하여 세포를 형질도입하고 특이적 mRNA 수준의 변화를 측정했다.
벡터 구축: PAH shRNA 에 관해, BamHI 및 EcoRI 제한 자리를 함유하는 올리고뉴클레오티드 서열을 Eurofins MWG Operon 에 의해 합성했다. 중첩하는 센스 및 안티센스 올리고뉴클레오티드 서열을 혼합하고 70 ℃ 로부터 실온으로의 냉각 동안 어닐링했다. 렌티바이러스 벡터를 제한 효소 BamHI 및 EcoRI 로 1 시간 동안 37 ℃ 에서 소화시켰다. 소화된 렌티바이러스 벡터를 아가로스 겔 전기영동에 의해 정제하고, ThermoFisher 로부터의 DNA 겔 추출 키트를 사용하여 겔로부터 추출했다. DNA 농도를 확인하고, 벡터 대 올리고 (3:1 비) 를 혼합하고, 어닐링되게 두고, 결찰시켰다. 결찰 반응을 T4 DNA 리가아제로 30 분 동안 실온에서 수행했다. 2.5 ㎕ 의 결찰 믹스를 25 ㎕ 의 STBL3 적격 박테리아 세포에 첨가했다. 형질전환을 42 ℃ 에서 열충격 후에 수행했다. 박테리아 세포를 암피실린을 함유하는 아가 플레이트 상에 스프레딩하고, 약물-내성 콜로니 (암피실린-내성 플라스미드의 존재를 시사함) 를 회수하고, LB 브로쓰에서 증식시켰다. 올리고 서열의 삽입을 체크하기 위해서, 수확된 박테리아 배양물로부터 Thermo Scientific DNA 미니 프렙 키트로 플라스미드 DNA 를 추출했다. shRNA 발현을 조절하기 위해 사용되는 프로모터에 대한 특이적 프라이머를 사용하여 DNA 서열분석에 의해 렌티바이러스 벡터 내의 shRNA 서열의 삽입을 확인했다. 하기 표적 서열을 사용하여, 예시적 shRNA 서열이 PAH 를 녹다운시키는지를 확인했다.
PAH shRNA 서열 #1:
PAH shRNA 서열 #2:
실시예 3. 간- 특이적 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터
Hepa1-6 마우스 간종양 세포를 간-특이적 프로트롬빈 인핸서 (SEQ ID NO: 5), 및 인간 알파-1 항-트립신 프로모터 (SEQ ID NO: 6) 를 함유하는 렌티바이러스 벡터로 형질도입했다. 결과로서 얻어지는 DNA 서열은 다음과 같다:
이들 감염에 관한 결과는 본원에서 추가의 실시예에서 상세히 기재된다.
실시예 4. hAAT 프로모터와 프로트롬빈 인핸서 및 간세포 핵 인자 (HNF) 결합 자리
Hepa1-6 마우스 간종양 세포를 간-특이적 프로트롬빈 인핸서 (SEQ ID NO: 5), 인간 알파-1 항-트립신 프로모터 (SEQ ID NO: 6), 및 하나 이상의 간세포 핵 인자 (HNF) 결합 자리를 함유하는 렌티바이러스 벡터로 형질도입했다. 다섯 개의 HNF1 결합 자리 (밑줄진 서체로 표시됨) 를 포함하는 결과적인 DNA 서열은 다음과 같았다:
세 개의 HNF1/HNF4 결합 자리 (HNF1 밑줄진 서체로 표시됨; HNF4 굵은 서체로 표시됨) 를 포함하는 결과적인 DNA 서열은 다음과 같다:
이들 벡터로부터의 PAH 의 발현은 본원의 추가의 실시예에서 상세히 기술된다.
실시예 5. PAH 에 관한 물질 및 방법
호모 사피엔스 (Homo sapiens) 페닐알라닌 히드록실라아제 (hPAH) mRNA (Gen Bank: NM_000277.1) 의 서열을 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 유전자의 원위 및 근위 말단에 위치하는 EcoRI 및 SalI 제한 효소 자리로 화학적으로 합성했다. EcoRI 및 SalI 제한 효소로 처리된 hPAH 를 ApoE (NM_000001.11, U35114.1) 또는 프로트롬빈 (AF478696.1) 및 hAAT (HG98385.1) 좌위 제어 영역의 부분을 포함하는 하이브리드 프로모터의 제어 하에 pCDH 렌티바이러스 플라스미드 (System Biosciences, Palo Alto, CA) 내로 결찰시켰다. 부가적으로, 3' 미번역 영역 (UTR) 의 289 개 뉴클레오티드를 포함하는 인간 PAH 를 합성했다.
렌티바이러스 벡터 및 hPAH 서열을 제한 효소 BamHI 및 EcoRI (NEB, Ipswich, MA) 로 두 시간 동안 37 ℃ 에서 소화시켰다. 소화된 렌티바이러스 벡터를 아가로스 겔 전기영동에 의해 정제하고, ThermoFisher (Waltham, MA) 로부터의 DNA 겔 추출 키트를 사용하여 겔로부터 추출했다. DNA 농도를 확인하고, 그 후 3:1 의 인서트 대 벡터 비를 사용하여 PAH 서열 (hPAH) 와 혼합했다. 혼합물을 T4 DNA 리가아제 (NEB) 로 30 분 동안 실온에서 결찰시켰다. 2.5 ㎕ 의 결찰 믹스를 25 ㎕ 의 STBL3 적격 박테리아 세포 (ThermoFisher) 에 첨가했다. 형질전환을 열충격에 의해 42 ℃ 에서 수행했다. 박테리아 세포를 암피실린을 함유하는 아가 플레이트 상에 스트리킹하고, 그 후 콜로니를 LB 브로쓰에서 증식시켰다. PAH 서열의 삽입을 체크하기 위해서, 수확된 박테리아 배양물로부터 ThermoFisher DNA 미니 프렙 키트로 플라스미드 DNA 를 추출했다. 렌티바이러스 벡터 (LV) 내의 PAH 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 다음으로, ClaI 및 EcoRI 제한 자리가 있는 ApoE 인핸서/hAAT 프로모터 또는 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 서열은 Eurofins Genomics 에 의해 합성되었다. PAH 코딩 서열 및 하이브리드 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터를 ClaI 및 EcoRI 효소로 소화시키고, 함께 결찰시켰다. 하이브리드 프로모터를 함유하는 플라스미드를 DNA 서열분석에 의해 확인했다. hPAH 및 하이브리드 프로모터 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터를 그 후 사용하여, 형질도입된 세포에서 PAH 를 발현하는 능력에 관해 시험하기 위해서 렌티바이러스 입자를 포장했다. 포유동물 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입했다. 3 일 후에 세포를 수집하고, 단백질을 면역블롯에 의해 PAH 발현에 관해 분석했다.
hPAH 서열의 변형:
ApoE 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 조절되는 세포 발현 수준을 개선하기 위해 hPAH 서열의 여러 변형을 통합시켰다. 첫째로, hPAH 3' 미번역 영역 (UTR) 의 289 개 뉴클레오티드를 PAH 코딩 영역 후에 및 mRNA 말단 전에 삽입했다. 이는 LV-ApoE/hAAT-hPAH-UTR 를 생성했다.
다음으로, 간-특이적 ApoE 인핸서를 간-특이적 프로트롬빈 인핸서로 교환했다. PAH 의 발현을 ApoE 또는 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 조합과 hPAH 코딩 서열 및 UTR 의 289 개 뉴클레오티드로 분석했다. 다음으로, PAH 의 발현을 UTR 영역의 부재 하에 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 hPAH 코딩 서열로 평가했다. 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터의 조합은 ApoE 인핸서/hAAT 프로모터 조합에서는 요구되었던 UTR 영역의 필요를 제거했다. 그러므로, 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 조합은 UTR 영역의 요구 없이 간-특이적 방식으로 높은 수준의 PAH 발현을 조절할 수 있다. 이러한 hPAH 유전자를 조절하는 간-특이적 조절 요소에 대한 이해의 중요한 진전은 간 조직에서의 특이적 발현을 위한 구축물의 생성을 허용하는 한편 여전히 hPAH 의 높은 수준 생산을 달성한다. 이식유전자 발현을 간 세포로 제한하는 것은 페닐케톤뇨증을 위한 유전 의약에서 벡터 안전성 및 표적 특이성을 위한 중요한 고려이다.
실시예 6. Hepa1-6 세포 및 293T 세포에서 프로트롬빈 인핸서의 변이의 존재 하에 및 3' UTR 영역의 존재 또는 부재 하에 hPAH 의 렌티바이러스-전달되는 발현
이 실시예는 ApoE 인핸서와 비교하여 프로트롬빈 인핸서와의 조합으로 hAAT 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터로 Hepa1-6 암종 세포 및 293T 인간 배아 신장 세포에서 인간 PAH 의 발현이 증가된다는 것을 보여주며, 이는 도 4A 및 4B 각각에서 보여지는 바와 같다. 프로트롬빈 인핸서가 hAAT 프로모터와 조합될 때 3' UTR 은 hPAH 발현에 요구되지 않는다. 3' UTR 은 프로트롬빈 함유 벡터에서 PAH 발현을 실제로 감소시키며, 이는 도 4A 및 4B 각각에서 보여지는 바와 같다. 이 실시예는 또한 프로트롬빈 인핸서와의 조합으로 간세포 핵 인자 1 및 4 (HNF1/4) 결합 자리를 발현하는 렌티바이러스 벡터가 Hepa1-6 세포 및 293T 세포에서 PAH 단백질의 수준을 증가시킨다는 것을 보여주며, 이는 도 4A 및 4B 각각에서 보여지는 바와 같다.
인간 PAH, 프로트롬빈 및 ApoE 인핸서, 및 hAAT 프로모터를 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성하고, 렌티바이러스 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 그 후 확인된 hPAH 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 Hepa1-6 마우스 간암 세포 또는 293T 인간 배아 신장 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA) 를 형질도입했다. 렌티바이러스 벡터는 인간 PAH 유전자를 그것의 3' UTR 의 존재 또는 부재 하에 통합시켰다. 게다가, 이들 구축물에서의 hPAH 발현은 간 특이적 프로트롬빈 또는 ApoE 인핸서를 함유하는 hAAT 프로모터에 의해 추진되었다. 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입하고, 3 일 후에 단백질을 면역블롯에 의해 hPAH 발현에 관해 분석했다. 인간 PAH 의 상대 발현을 항-PAH 항체 (Abcam, Cambridge, MA) 를 사용하여 면역블롯에 의해 검출하고, 항-베타 액틴 항체 (SigmaMillipore, Billerica, MA) 를 로딩 대조군에 사용했다.
도 4A 및 4B 에서 보여지는 바와 같이, 여섯 개의 군이 비교된다: Hepa 1-6 세포 또는 293T 세포 단독을 포함하는 대조군 (레인 1), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 2), 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 있는 5X HNF1 결합 자리를 함유하는 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 3), 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 3X HNF1 및 3X HNF4 결합 자리를 함유하는 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 4), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 3' UTR 의 존재 하에 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 5), 및 ApoE 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 3' UTR 의 존재 하에 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 6). 도 4A 및 4B 는 ApoE 인핸서와 비교하여 프로트롬빈 인핸서가 hAAT 프로모터와 조합될 때 Hepa1-6 암종 세포 및 293T 세포 둘 모두에서 PAH 의 발현이 증가된다는 것을 입증한다. 부가적으로, 프로트롬빈 인핸서가 벡터에 포함될 때 PAH 3' UTR 가 hPAH 발현에 요구되지 않는다.
실시예 7. Hepa1-6 세포에서 인트론 서열, 코돈 최적화된 PAH 서열, 및 HNF-1 또는 HNF1/4 결합 자리를 함유하는 프로트롬빈 인핸서에 의한 hPAH 의 렌티바이러스-전달되는 발현
이 실시예는 프로트롬빈 인핸서 및 토끼 베타 글로빈 인트론 서열과의 조합으로 hAAT 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터에 의해 Hepa1-6 암종 세포에서 인간 PAH 의 발현이 증가된다는 것을 보여주며, 이는 도 5A 에서 보여지는 바와 같다. 인트론 서열이 역방향으로 삽입되어 있을 때 hPAH 는 발현되지 않는다. 도 5B 에서, 이는 코돈-최적화된 버전의 hPAH 코딩 서열이 비-최적화된 hPAH 코딩 영역 서열보다 더 적게 발현된다는 것을 보여준다. 이 실시예는 또한 프로트롬빈 인핸서와의 조합으로 간세포 핵 인자-1 및 -4 (HNF1 및 HNF1/4) 결합 자리를 발현하는 렌티바이러스 벡터가 Hepa1-6 세포에서 hPAH 단백질의 수준을 증가시킨다는 것을 보여주며, 이는 도 5C 에서 보여지는 바와 같다.
인간 PAH (최적화된 및 비-최적화된), 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 토끼 베타 글로빈 서열을 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성하고, 렌티바이러스 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 그 후 확인된 hPAH 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 Hepa1-6 마우스 간암 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA) 를 형질도입했다. 렌티바이러스 벡터는 인간 PAH 유전자를 토끼 베타 글로빈 인트론의 존재 또는 부재 하에 통합시켰다. 게다가, 이들 구축물에서의 hPAH 발현은 프로트롬빈 인핸서의 업스트림 또는 다운스트림에 HNF1 또는 HNF1/4 결합 자리의 존재 하에 간-특이적 프로트롬빈 인핸서를 함유하는 hAAT 프로모터에 의해 추진되었다. 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입하고, 3 일 후에 단백질을 면역블롯에 의해 PAH 발현에 관해 분석했다. 인간 PAH 의 상대 발현을 항-PAH 항체 (Abcam, Cambridge, MA) 를 사용하여 면역블롯에 의해 검출하고, 항-베타 액틴 항체 (SigmaMillipore, Billerica, MA) 를 로딩 대조군에 사용했다.
도 5A 에서 보여지는 바와 같이, 네 개의 군이 비교된다: Hepa 1-6 세포 단독을 포함하는 대조군 (레인 1), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 2), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하고 정방향으로 토끼 베타 글로빈 인트론을 함유하는 렌티바이러스 벡터 (레인 3), 및 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하고 역방향으로 토끼 베타 글로빈 인트론을 함유하는 렌티바이러스 벡터 (레인 4). 도 5B 에서 보여지는 바와 같이, 세 개의 군이 비교된다: Hepa 1-6 세포 단독을 포함하는 대조군 (레인 1), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 오직 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 2 및 3), 및 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코돈-최적화된 서열을 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 4). 도 5C 에서 보여지는 바와 같이, 여섯 개의 군이 비교된다: Hepa 1-6 세포 단독을 포함하는 대조군 (레인 1), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 오직 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 2 및 3), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하고 토끼 베타 글로빈 인트론을 함유하는 렌티바이러스 벡터 (레인 4), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 HNF1 결합 자리에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 5), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 프로트롬빈 인핸서의 다운스트림에 HNF1 결합 자리에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 6), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 HNF1/4 결합 자리에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 7), 및 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 프로트롬빈 인핸서의 다운스트림에 HNF1/4 결합 자리에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 8). 도 5A-5C 는 토끼 베타 글로빈 인트론 서열이 hPAH 코딩 서열의 업스트림에 첨가되었을 때 Hepa1-6 암종 세포에서 hPAH 의 발현이 증가된다는 것을 입증한다. 부가적으로, 코돈-최적화된 hPAH 코딩 서열은 비-최적화된 서열보다 더 적게 발현된다. 마지막으로, 오직 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터와 비교하여, 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 HNF1 또는 HNF1/4 결합 자리의 부가는 hPAH 의 발현을 증가시키지만 프로트롬빈 인핸서의 다운스트림에 HNF1 또는 HNF1/4 결합 자리의 부가는 hPAH 의 발현을 증가시키지 않는다.
실시예 8. Hepa1-6 세포에서 hAAT 프로모터 및 HNF-1 및 HNF-1/4 결합 자리를 함유하는 프로트롬빈 인핸서에 의한 hPAH 의 렌티바이러스-전달되는 발현 RNA
도 6 에서 보여지는 바와 같이, 이 실시예는 프로트롬빈 인핸서 및 HNF1 및 HNF1/4 에 대한 결합 자리와의 조합으로 hAAT 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터로 감염 다중도 (MOI) 1 및 5 로 형질도입된 Hepa1-6 암종 세포에서 인간 PAH RNA 의 발현이 증가된다는 것을 보여준다.
인간 PAH, 프로트롬빈 인핸서, 및 hAAT 프로모터를 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성하고, 렌티바이러스 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 그 후 확인된 hPAH 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 Hepa1-6 마우스 간암 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA) 를 형질도입했다. 렌티바이러스 벡터는 인간 PAH 유전자를 통합시켰다. 게다가, 이들 구축물에서의 hPAH 발현은 HNF1 또는 HNF1/4 결합 자리의 업스트림에 간-특이적 프로트롬빈 인핸서를 함유하는 hAAT 프로모터에 의해 추진되었다. 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입하고, 3 일 후에 RNA 를 RNeasy 키트 (Qiagen, Germantown, MD) 로 추출하고, TaqMan 프로브 (5'-TCGTGAAAGCTCATGGACAGTGGC-3') (SEQ ID NO: 66) 및 프라이머 세트 Fwd: 5'- AGATCTTGAGGCATGACATTGG-3' (SEQ ID NO: 67) 및 Rev: 5'-GTCCAGCTCTTGAATGGTTCTT-3' (SEQ ID NO: 68) 를 이용하여 qPCR 분석에 의해 hPAH 에 관해 분석했다. 총 RNA (100 ng) 를 액틴 프로브 (5'-AGCGGGAAATCGTGCGTGAC-3') (SEQ ID NO: 69) 및 프라이머 세트 (Fwd: 5'-GGACCTGACTGACTACCTCAT-3' (SEQ ID NO: 70) 및 Rev: 5'- CGTAGCACAGCTTCTCCTTAAT-3') (SEQ ID NO: 71) 로 정규화시켰다.
도 6 에서 보여지는 바와 같이, 네 개의 군이 비교된다: Hepa 1-6 세포 단독을 포함하는 대조군 (막대 1), 1 MOI (막대 2) 및 5 MOI (막대 5) 에서 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터, MOI (막대 3) 및 5 MOI (막대 6) 에서 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 HNF1 결합 자리에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터, 및 1 MOI (막대 4) 및 5 MOI (막대 7) 에서 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 HNF1/4 결합 자리에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터. 도 6 은 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하는 벡터로 PAH RNA 의 발현이 1 내지 4.7 pg (1-5 MOI) 로 증가된다는 것을 입증한다. HNF1 결합 자리가 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 포함되어 있을 때 2.3 으로부터 10.7 pg (1-5 MOI) 로의 증가 및 HNF1/4 결합 자리가 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 삽입되어 있을 때 3 으로부터 17.8 pg (1-5 MOI) 로의 증가가 존재한다.
실시예 9. Hepa1-6 세포에서 프로트롬빈 인핸서 및 hAAT 또는 티록신 결합 글로불린 (TBG) 프로모터에 의한 hPAH 의 렌티바이러스-전달되는 발현
이 실시예는 TBG 프로모터 (SEQ ID NO: 62) 와 비교하여 hAAT 프로모터와의 조합으로 프로트롬빈 인핸서를 함유하는 렌티바이러스 벡터에 의해 Hepa1-6 암종 세포에서 인간 PAH 의 발현이 증가된다는 것을 보여주며, 이는 도 7 에서 보여지는 바와 같다.
인간 PAH, 프로트롬빈 인핸서, 및 hAAT 및 TBG 프로모터를 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성하고, 렌티바이러스 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 그 후 확인된 hPAH 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 Hepa1-6 마우스 간암 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA) 를 형질도입했다. 렌티바이러스 벡터는 인간 PAH 유전자를 통합시켰다. 게다가, 이들 구축물에서의 hPAH 발현은 간-특이적 hAAT 또는 TBG 프로모터에 의해 추진되었다. 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입하고, 3 일 후에 단백질을 면역블롯에 의해 PAH 발현에 관해 분석했다. 인간 PAH 의 상대 발현을 항-PAH 항체 (Abcam, Cambridge, MA) 를 사용하여 면역블롯에 의해 검출하고, 항-베타 액틴 항체 (SigmaMillipore, Billerica, MA) 를 로딩 대조군에 사용했다.
도 7 에서 보여지는 바와 같이, 네 개의 군이 비교된다: 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 1), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하고 토끼 베타 글로빈 인트론을 함유하는 렌티바이러스 벡터 (레인 2), 오직 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하는 대조군 (레인 3), 및 프로트롬빈 인핸서/TBG 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 4). 도 7 은 TBG 프로모터와 비교하여 프로트롬빈 인핸서가 hAAT 프로모터와 조합될 때 Hepa1-6 암종 세포에서 PAH 의 발현이 상당히 증가된다는 것을 입증한다.
실시예 10. Hepa1-6 세포 또는 Hep3B 세포에서 PAH 유전자의 업스트림에 있는 토끼 또는 인간 베타 글로빈 인트론 서열에 의한 hPAH 의 렌티바이러스-전달되는 발현.
이 실시예는 hAAT 프로모터 및 토끼 또는 인간 베타 글로빈 인트론과의 조합으로 프로트롬빈 인핸서를 함유하는 렌티바이러스 벡터에 의해 Hepa1-6 및 Hep3B 암종 세포에서 인간 PAH 의 발현이 인간 베타 글로빈 인트론에 의해 증가되지 않는다는 것을 보여주며, 이는 도 8A 및 8B 에서 보여지는 바와 같다.
인간 PAH, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 토끼 또는 인간 베타 글로빈 인트론을 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성하고, 렌티바이러스 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 그 후 확인된 hPAH 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 Hepa1-6 마우스 간암 세포 또는 Hep3B 인간 간세포 암종 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA) 를 형질도입했다. 렌티바이러스 벡터는 인간 PAH 유전자를 통합시켰다. 게다가, 이들 구축물에서의 hPAH 발현은 간-특이적 hAAT 프로모터 및 토끼 또는 인간 베타 글로빈 인트론에 의해 추진되었다. 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입하고, 3 일 후에 단백질을 면역블롯에 의해 PAH 발현에 관해 분석했다. 인간 PAH 의 상대 발현을 항-PAH 항체 (Abcam, Cambridge, MA) 를 사용하여 면역블롯에 의해 검출하고, 항-베타 액틴 항체 (SigmaMillipore, Billerica, MA) 를 로딩 대조군에 사용했다.
도 8A 및 8B 에서 보여지는 바와 같이, 네 개의 군이 비교된다: 렌티바이러스 없음 (레인 1), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 2), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 토끼 베타 글로빈 인트론 서열에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 3), 및 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 인간 베타 글로빈 인트론에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 4). 도 8A 및 8B 는 프로트롬빈 인핸서 및 hAAT 프로모터에 의해 Hepa1-6 및 Hep3B 암종 세포에서 PAH 의 발현이 증가된다는 것을 입증한다. 토끼 베타 글로빈 인트론의 부가는 Hepa1-6 세포에서 발현을 개선하지만 Hep3B 세포에서는 발현을 개선하지 않는다. 인간 베타 글로빈 인트론은 Hepa1-6 또는 Hep3B 세포에서 발현을 개선하지 않는다.
실시예 11. 일차 인간 간세포에서 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의한 hPAH 의 렌티바이러스-전달되는 발현
이 실시예는 hAAT 프로모터와의 조합으로 프로트롬빈 인핸서를 함유하는 렌티바이러스 벡터에 의해 일차 인간 간세포에서 인간 PAH 의 발현이 상당히 증가된다는 것을 보여주며, 이는 도 9 에서 보여지는 바와 같다.
인간 PAH, 프로트롬빈 및 ApoE 인핸서, 및 hAAT 프로모터를 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성하고, 렌티바이러스 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 그 후 확인된 hPAH 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 일차 인간 간세포 (Triangle Research Labs, North Carolina) 를 형질도입했다. 렌티바이러스 벡터는 인간 PAH 의 코딩 서열 또는 코딩 서열 및 3' UTR 를 통합시켰다. 게다가, 이들 구축물에서의 hPAH 발현은 간-특이적 프로트롬빈 또는 ApoE 인핸서 및 hAAT 프로모터에 의해 추진되었다. 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입하고, 4 일 후에 단백질을 면역블롯에 의해 PAH 발현에 관해 분석했다. 인간 PAH 의 상대 발현을 항-PAH 항체 (Abcam, Cambridge, MA) 를 사용하여 면역블롯에 의해 검출하고, 항-베타 액틴 항체 (SigmaMillipore, Billerica, MA) 를 로딩 대조군에 사용했다.
도 9 에서 보여지는 바와 같이, 다섯 개의 군이 비교된다: 오직 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하는 대조군 (레인 1), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 2), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 있는 5X HNF1 결합 자리에 의해 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 3), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하고 토끼 베타 글로빈 인트론을 함유하는 렌티바이러스 벡터 (레인 4), 및 ApoE/hAAT 프로모터에 의해 3' UTR 를 함유하는 hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터 (레인 5). 도 9 는 ApoE 인핸서와 비교하여 프로트롬빈 인핸서가 hAAT 프로모터와 조합될 때 일차 인간 간세포에서 PAH 의 발현이 증가된다는 것을 입증한다. 또한, hPAH 코딩 서열의 업스트림에 토끼 베타 글로빈 인트론 서열의 포함은 hPAH 발현을 향상시킨다.
실시예 12. Hepa1-6 세포에서 렌티바이러스-전달되는 hPAH 의 효소적 활성
이 실시예는 Hepa1-6 세포에서 hPAH 가 발현될 때 세포 배지 및 세포 용해물에서 페닐알라닌 (Phe) 수준의 감소에 의해 나타나는 바와 같이 렌티바이러스-전달되는 인간 PAH 가 효소적으로 활성이라는 것을 보여주며, 이는 도 10A 및 10C, 및 10B, 각각에서 보여지는 바와 같다. Hepa1-6 세포에서 PAH 활성에 보조인자 BH4 의 전구체, 세피아프테린이 요구되었다.
인간 PAH, 프로트롬빈 및 ApoE 인핸서, hAAT 프로모터, 및 토끼 베타 글로빈 인트론을 합성하고, 렌티바이러스 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 그 후 확인된 hPAH 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하여 Hepa1-6 마우스 간암 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA) 를 형질도입했다. 렌티바이러스 벡터는 인간 PAH 의 코딩 서열을 통합시켰다. 게다가, 이들 구축물에서의 hPAH 발현은 간-특이적 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 포함된 토끼 베타 글로빈 인트론 서열에 의해 추진되었다. 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입하고, 4 일 후에 페닐알라닌 어세이 키트 (SigmaMillipore, Billerica, MA) 를 사용하여 세포 배지 또는 세포 용해물로부터 페닐알라닌 수준을 측정했다.
도 10A 및 10B 에서 보여지는 바와 같이, 도 10A 에서 세포 배지로부터 또는 도 10B 에서 세포 용해물로부터 네 개의 군이 비교된다: 세피아프테린의 부재 하에 (막대 1) 또는 세피아프테린의 존재 하에 (막대 3) 오직 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하는 대조군, 세피아프테린의 부재 하에 (막대 2) 또는 세피아프테린의 존재 하에 (막대 4) 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하고 토끼 베타 글로빈 인트론 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터. 도 10C 에서 보여지는 바와 같이, 세포 배지로부터 열 개의 군이 비교된다: 세피아프테린의 부재 하에 (막대 1) 또는 세피아프테린의 존재 하에 (막대 6) 오직 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터를 함유하는 렌티바이러스 벡터를 사용하는 대조군, 세피아프테린의 부재 하에 (막대 2) 또는 세피아프테린의 존재 하에 (막대 7) 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터, 세피아프테린의 부재 하에 (막대 3) 또는 세피아프테린의 존재 하에 (막대 8) 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 있는 5X HNF1 결합 자리에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터, 세피아프테린의 부재 하에 (막대 4) 또는 세피아프테린의 존재 하에 (막대 9) 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 의 코딩 영역을 발현하고 토끼 베타 글로빈 인트론 서열을 함유하는 렌티바이러스 벡터, 세피아프테린의 부재 하에 (막대 5) 또는 세피아프테린의 존재 하에 (막대 10) ApoE 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 3' UTR 를 포함하는 hPAH 의 코딩 영역을 발현하는 렌티바이러스 벡터. 도 10A 및 10B 는 세피아프테린의 존재 하에 Hepa1-6 세포에서 hPAH 가 효소적으로 활성이라는 것을 보여준다. hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터로 형질도입된 Hepa1-6 세포에서 세포 배지 페닐알라닌 수준에서 38% 감소가 있었으며, 이는 도 10A 에서 보여지는 바와 같다. 세포 용해물에서, hPAH 를 발현하는 렌티바이러스 벡터로 형질도입된 Hepa1-6 세포에서 페닐알라닌 수준에서 88% 감소가 있었으며, 이는 도 10B 에서 보여지는 바와 같다. 도 10C 는 상이한 간-특이적 프로모터 요소를 함유하는 벡터에서 hPAH 가 효소적으로 활성이라는 것을 보여준다. 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 hPAH 를 함유하는 벡터에 의해 Phe 수준에서 41% 감소, 프로트롬빈 인핸서의 업스트림에 있는 5X HNF1 결합 자리/hAAT 프로모터 및 hPAH 를 함유하는 벡터에 의해 Phe 수준에서 43% 감소, 토끼 베타 글로빈 인트론 및 hPAH 를 포함하는 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터를 함유하는 벡터에 의해 Phe 수준에서 48% 감소, 및 3' UTR 를 포함하는 ApoE 인핸서/hAAT 프로모터 및 hPAH 를 함유하는 벡터에 의해 Phe 수준에서 36% 감소가 있었다.
실시예 13. PAH 돌연변이체 마우스의 혈액에서 렌티바이러스 전달되는 PAH 는 혈액 페닐알라닌 수준을 감소시킨다
이 실시예는 Pahenu2 돌연변이체 마우스의 혈액에서 렌티바이러스-전달되는 PAH 가 페닐알라닌 수준을 감소시킨다는 것을 보여준다. Pahenu2 돌연변이체 마우스는 전문이 본원에 참조로 포함되는 Shedlovsky et al. (Mouse Models of Human Phenylketonuria, Genetics 134: 1205-1210 (August, 1993)) 에서 기술 및 특성분석되어 있다. Pahenu2 돌연변이체 마우스 (n=4) 에게 꼬리 정맥을 통해 150 ㎕ 부피의 LV-Pro-hAAT-PAH (AGT323) 벡터를 주입했다. 대조군 처리된 동물에게 꼬리 정맥을 통해 렌티바이러스 벡터를 함유하지 않는 식염수를 주입했다. 형질도입된 293T 세포에서 통합된 벡터 카피수의 qPCR 검출에 의해 확인되는 LV-Pro-hAAT-PAH (AGT323) 의 역가는 1x1010 이었다. 주입시에, 마우스는 6-8 주령이었다. 벡터 주입 전에 (T=0) 및 주입 후 제 1 주 및 제 2 주에 혈액을 수집했다.
페닐알라닌 수준의 측정을 위해, 얼굴 정맥을 통해 혈액을 수집했다. 랜싯을 사용하여 뺨에 구멍을 내고, 400 ㎕ 의 전혈을 혈청 튜브에 수집했다. 혈액을 1 시간 동안 정치시키고, 그 후 튜브를 원심분리했다. 혈장/혈청이 상층에서 분리되고, 수집되었다. 혈장을 그 후 임상 아미노산 분석기 장비에서 분석하기 전까지 동결시켰다.
LV-Pro-hAAT-PAH (AGT323) 벡터의 도입은 주입 후 제 1 주 및 제 2 주 둘 모두에서 혈액 페닐알라닌 수준의 감소를 야기했다. 표 1 및 도 11 에서 보여지는 바와 같이, 1-주 및 2-주 시점에 혈액 페닐알라닌의 평균 마이크로-몰 수준은 각각 1674.7 및 1890 이었다. 이는 ~2400 내지 ~2500 의 대조군 처리된 마우스의 평균 마이크로-몰 혈액 페닐알라닌 수준과 비교된다 (표 1 및 도 11).
게다가, LV-Pro-hAAT-PAH (AGT 323) 벡터의 도입은 간 세포의 유전자 변형을 초래했다. 부검 동안 수집된 간에 대한 벡터 카피수 연구는 이들 연구에서 렌티바이러스 벡터 카피수가 세포 당 대략 0.2 였다는 것을 보여줬다. 도 12 에서 보여지는 바와 같이, 간에서의 증가하는 벡터 카피수와 페닐알라닌의 감소하는 수준 사이에 대략 선형 관계가 존재한다 (피어슨 적률 상관계수 = -0.326).
≥ 20% 의 혈액 페닐알라닌 수준의 감소는 페닐케톤뇨증 질환이 있는 인간 환자에게 치료적 유익을 제공할 것이며, 그들의 진단을 고전적 PKU 으로부터 경도 페닐알란혈증으로 잠재적으로 이동시킨다.
표 1
어린 enu2 마우스에서 AGT323 의 꼬리 정맥 주입에 의한 혈액 페닐알라닌 억제
실시예 14. HEK293T 세포에서 DJ 또는 AAV2 혈청형에 의한 hPAH 의 AAV-전달되는 발현
이 실시예는 토끼 베타 글로빈 인트론을 포함하거나 포함하지 않고 hAAT 프로모터와의 조합으로 프로트롬빈 인핸서를 함유하는 AAV 벡터에 의해 HEK293T 세포에서 인간 PAH 가 발현된다는 것을 보여준다.
인간 PAH, 프로트롬빈 인핸서, hAAT 프로모터, 및 토끼 베타 글로빈 인트론을 Eurofins Genomics (Louisville, KY) 에 의해 합성하고, AAV 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. 확인된 hPAH 서열을 함유하는 AAV 벡터를 그 후 사용하여 HEK293T 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA) 를 형질도입했다. AAV 벡터는 본원에서 개시되는 인간 PAH 유전자를 통합시켰다. 게다가, 이들 구축물에서의 hPAH 발현은 간-특이적 hAAT 프로모터 및 토끼 베타 글로빈 인트론에 의해 추진되었다. 세포를 AAV 입자로 형질도입하고, 3 일 후에, 단백질 또는 RNA 를 면역블롯 또는 qPCR 에 의해 PAH 발현에 관해 분석했다. 인간 PAH 단백질의 발현을 항-PAH 항체 (Abcam, Cambridge, MA) 를 사용하여 면역블롯에 의해 검출하고, 항-베타 액틴 항체 (MilliporeSigma, Billerica, MA) 를 로딩 대조군에 사용했다. TaqMan Fam-라벨링된 프로브 (SEQ ID NO: 66) 및 PAH 프라이머 (Fwd: SEQ ID NO: 67; Rev: SEQ ID NO: 68) 를 사용하여 qPCR 에 의해 PAH RNA 발현을 검출했다.
도 13A 는 여섯 개의 그룹의 비교를 보여준다: AAV/DJ-GFP 벡터 (레인 1), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하는 AAV/DJ 벡터 (레인 2), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 토끼 베타 글로빈 인트론 서열에 의해 hPAH 를 발현하는 AAV/DJ 벡터 (레인 3), AAV2-GFP 벡터 (레인 4), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터에 의해 hPAH 를 발현하는 AAV2 벡터 (레인 5), 프로트롬빈 인핸서/hAAT 프로모터 및 토끼 베타 글로빈 인트론 서열에 의해 hPAH 를 발현하는 AAV2 벡터 (레인 6).
도 13B 및 13C 는 도 13A 에서의 PAH 밴드의 증가된 노출 후의 블롯을 보여준다. 밴드 밀도가 정량적 이미지화에 의해 분석될 범위 내로 오도록 노출을 증가시켰다. AAV/DJ 혈청형 벡터에 의한 처리를 보여주는 블롯에 상대적으로 AAV/2 혈청형 벡터에 의한 처리를 보여주는 블롯에서 원래의 밴드 강도는 훨씬 더 낮았다. 그 결과, PAH 단백질의 정량적 측정을 하기 위해서, AAV/DJ 혈청형 블롯에 상대적으로 AAV/2 혈청형 블롯에서 더 긴 노출 시간이 필요했다.
정량적 이미지화의 결과는 토끼 베타 글로빈 인트론을 포함하는 AAV/DJ 벡터 또는 토끼 베타 글로빈 인트론을 결여하는 AAV/DJ 벡터를 사용하여 PAH 단백질 발현이 2-배 만큼 증가되었다는 거을 보여줬다 (도 13B; 밴드 아래의 숫자는 상대 배수 증가를 보여준다). 토끼 베타 글로빈 인트론을 함유하는 AAV/2 벡터의 사용은 PAH 의 발현을 억제했지만, 토끼 베타 글로빈 인트론을 함유하지 않는 AAV2 벡터의 사용은 PAH 의 50-배 증가를 초래했다 (도 13C; 밴드 아래의 숫자는 상대 배수 증가를 보여준다). AAV 혈청형 사이의 PAH 발현의 비교는 AAV2 PAH 벡터를 사용하는 경우에 상대적으로 AAV/DJ PAH 벡터의 사용이 PAH 단백질의 더 높은 발현을 초래한다는 것을 밝혔다.
도 13D 는 AAV2 PAH 벡터와 비교하여 AAV/DJ PAH 벡터에서 PAH RNA 발현이 더 높고, 토끼 베타 글로빈 인트론의 존재 및 부재 하에 유사한 발현이 존재한다는 것을 입증한다.
실시예 15. 신생아 enu2/enu2 마우스에서 PKU 에 관한 렌티바이러스 벡터 요법
신생아 enu2/enu2 마우스 (생후 제 3 일) 를 간 내로 직접 주입을 통해 10 ㎕ 의 벡터 스톡 LV-Pro-hAAT-PAH 으로 처리했다. 미치료 동물은 벡터를 함유하지 않는 식염수를 받았다 (가짜 대조군). 최종 용량 ~5 x 106 형질도입 단위/마우스 (~109 형질도입 단위/kg) 의 경우에, 벡터 스톡은 대략 5 x 108 형질도입 단위 (transducing unit)/mL 멸균 식염수 (HEK293 세포에서 측정됨) 였다.
표 2 및 도 14 에서 보여지는 바와 같이, 미치료 enu2/enu2 마우스 (2063 +/- 185) 에 상대적으로 LV-Pro-hAAT-PAH 처리된 enu2/enu2 마우스 (1390 +/- 127) 에서 혈액 페닐알라닌 수준의 마이크로-몰 농도가 유의하게 감소되었다.
표 2
실시예 16. PAH 유전자의 3'UTR 을 표적화하는 shPAH 의 발현은 Hep3B 세포에서 LV-H1-shPAH-프로트롬빈-hAAT-hPAH 에 의한 PAH 발현을 억제하지 않는다
이 실시예는 shPAH 가 Hep3B 세포에서 렌티바이러스 벡터, LV-Pro-hAAT-PAH-shPAH 서열 # 1 (SEQ ID NO: 13) 로부터, 또는 렌티바이러스 벡터, LV-Pro-hAAT-PAH-shPAH 서열 # 2 (SEQ ID NO: 14) 로부터 PAH 발현을 억제하지 않는다는 것을 보여준다.
본원에서 개시되는 인간 PAH 를 합성하고, PAH shRNA 서열 #1 (SEQ ID NO: 13) 또는 PAH shRNA 서열 #2 (SEQ ID NO: 14) 을 함유하는 렌티바이러스 벡터 내로 삽입했다. 서열의 삽입을 DNA 서열분석에 의해 확인했다. PAH 를 단독으로 또는 PAH shRNA 서열 #1 (SEQ ID NO: 13) 또는 PAH shRNA 서열 #2 (SEQ ID NO: 14) 과의 조합으로 함유하는 렌티바이러스 벡터를 그 후 사용하여 인간 Hep3B 세포 (American Type Culture Collection, Manassas, VA 로부터 구입) 를 형질도입했다. 세포에 렌티바이러스 입자를 형질도입하고, 3 일 후에 단백질을 웨스턴 블롯에 의해 PAH 발현에 관해 분석했다. 인간 PAH 의 상대 발현을 항-PAH 항체 (Abcam) 및 로딩 대조군 베타-액틴를 사용하여 면역블롯에 의해 검출했다. hPAH 발현은 프로트롬빈 인핸서 및 hAAT 프로모터에 의해 추진되었다. 렌티바이러스 벡터는, 다양한 경우에, 인간 PAH 유전자 및 PAH shRNA 서열 #1 (SEQ ID NO: 13) 또는 PAH shRNA 서열 #2 (SEQ ID NO: 14) 를 통합시켰다. shPAH-2 발현을 조절하기 위해 사용되는 프로모터에 상보적인 프라이머를 사용하여 DNA 서열분석에 의해 렌티바이러스 벡터 (LV) 내의 shRNA 서열의 삽입을 확인했다. 이 경우에, H1 프로모터를 사용하여 PAH shRNA 발현을 조절했다. shPAH-(PAH shRNA 서열 #1 (SEQ ID NO: 13) 또는 PAH shRNA 서열 # 2 (SEQ ID NO: 14))-에 대한 표적 서열은 LV-PAH 벡터에 존재하지 않는 PAH 3'UTR 에 있다.
도 15 에서 보여지는 바와 같이, 렌티바이러스에서 유래하는 PAH 의 발현은 PAH shRNA 서열 #1 (SEQ ID NO: 13) 또는 PAH shRNA 서열 # 2 (SEQ ID NO: 14) 로 억제되지 않는다.
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