폴리케타이드 기원의 뎁사이드 및 뎁시돈 계열 화합물은 지의류 몸체(lichen thalli)의 피질 또는 수질층에 축적된다. 지의류 화학의 분류학적 및 생태학적 중요성과 약학적 잠재력에도 불구하고, 생합성 유전자와 지의류 물질을 연결하는 단일 유전적 증거는 없다. 따라서, 본 발명자들은 뎁사이드/뎁시돈 생산에 관여하는 생합성 유전자 클러스터(BGC)의 분류 및 식별을 위해 지의류 폴리케타이드 합성 효소(PKS, polyketide synthase)를 체계적으로 분석하였다. 클라도니아속(Cladonia)의 종간 PKS 다양성 및 관련된 남극 지의류 스테레오카울론 알피넘(Stereocaulon alpinum)에 대한 본 발명자들의 심층 분석은 45개의 BGC 패밀리를 식별하여, 지의류 PKS를 비-지의류화된 곰팡이에서 이전에 특성화된 15개의 PKS와 연결하였다. 이들 중에서, 본 발명자들은 아트라노린(뎁사이드)을 생산하는 지의류에서만 독점적으로 발견되는 고도로 합성된 BGC를 확인하였다. 추정 아트라노린 PKS(atr1 생성)의 이종 발현은 많은 지의류에서 전구체 화합물로서 발견되는 4-O-디메틸바르바트산(4-O-demethylbarbatic acid)을 생성하였으며, 이는 뎁사이드 형성을 위한 Atr1의 분자간 가교 활성을 나타낸다. 이종 숙주에 맞춤 효소를 계속 도입하면, 거대 지의류의 가장 흔한 피질 물질 중 하나인 아트라노린이 생성되었다. 곰팡이 PKS의 계통발생 분석은 Atr1이 뎁사이드 및 뎁시돈의 생합성에 관여할 가능성이 있는 두 개의 보존된 지의류-특이적 PKS 패밀리를 포함하는 새로운 PKS 계통군에 배치되는 것으로 나타났다. 본 발명에서 본 발명자들은 클라도니아속(Cladonia)의 PKS 패밀리의 포괄적인 카탈로그를 제공하고, 기능적으로 지의류의 생합성 유전자 클러스터를 특성화하여 다양한 지의류 물질의 유전학 및 화학적 진화를 연구하기 위한 초석을 확립하였다.
신규의 아트라노린 생합성 유전자
하나의 양태로서, 본 발명은 서열번호 1, 서열번호 3 및 서열번호 5로 이루어진 군으로부터 선택되는 1종 이상으로 이루어진, 아트라노린 생합성 유전자를 제공한다.
본 명세서에 사용된 용어 "아트라노린(atranorin)"은 화학식명이 3-하이드록시-4-메톡시카보닐-2,5-다이메틸페닐-3-포밀-2,4-다이하이드록시-6-메틸벤조에이트이며, 하기 [화학식 1]의 구조식을 가진다. 이러한 아트라노린은 지의체의 이차 대사산물로서 지의체로부터 유래될 수 있다. 상기 아트라노린은 폐암 전이 억제 효능을 갖는 것으로 보고된 바 있다.
[화학식 1]
본 발명의 아트라노린은 아트라노린의 유사체, 유도체를 포함하는 의미로 사용될 수 있다.
본 명세서에 사용된 용어 "지의체(thallus)"는 지의류 공생 조류 또는 시아노박테리아의 세포, 및 지의류 형성 곰팡이의 균사로 이루어지고, 분아, 열아 또는 영양번식을 위한 지의류의 영양체를 말한다.
본 명세서에 사용된 용어 "지의류(lichen)"는 곰팡이(fungi, mycobionts)와 조류(algae, photobionts)가 복합체가 되어 생활하는 공생생물로서 모양, 크기 및 색깔이 매우 다양하며 주로 바위, 수피 및 토양에서 서식한다. 이러한 지의류는 디디믹 산(didymic acid), 스트렙실린(strepsilin), 소듐 우스네이트(sodium usnate), 레카노릭 산(lecanoric acid), 프소로믹 산(psoromic acid) 등 1, 2차 대사산물들을 생성하여 항미생물(곰팡이, 세균, 바이러스), 제초제, 항암, 면역강화, 정신질환 개선 등에 우수한 생리활성을 가지므로 예로부터 동서양을 막론하고 전통적으로 식품 또는 약재의 원료로 사용되어 왔다.
본 발명에 있어서, 상기 아트라노린 생합성 유전자는 지의류로부터 유래된 2차 대사산물, 일례로 아트라노린 발현을 유도할 수 있는 유전자로, 서열번호 1, 서열번호 3 및 서열번호 5로 이루어진 군으로부터 선택되는 1종 이상으로 이루어질 수 있다. 상기 지의류는 이에 제한되지는 않으나, 스테레오카울론 알피넘(Stereocaulon alpinum)일 수 있다.
상기 서열번호 1로 표시되는 염기서열은 atr1 유전자(NCBI Genbank No. MZ277879.1)로, 서열번호 3으로 표시되는 염기서열은 atr2 유전자(NCBI Genbank No. MZ277878.1)로, 서열번호 5로 표시되는 염기서열은 atr3 유전자(NCBI Genbank No. MZ277877.1)로 각각 명명될 수 있다.
또한, 상기 서열번호 1로 표시되는 염기서열은 서열번호 2의 아미노산 서열로 이루어진 atr1 단백질(NCBI Genbank No. QXF68953.1)로 암호화될 수 있다. 상기 서열번호 3으로 표시되는 염기서열은 서열번호 4의 아미노산 서열로 이루어진 atr2 단백질(NCBI Genbank No. QXF68952.1)로 암호화될 수 있다. 상기 서열번호 5로 표시되는 염기서열은 서열번호 6의 아미노산 서열로 이루어진 atr3 단백질(NCBI Genbank No. QXF68951.1)로 암호화될 수 있다.
지의류 유래 대사산물 생산용 재조합 발현 벡터
다른 하나의 양태로서, 본 발명은 서열번호 1, 서열번호 3 및 서열번호 5로 이루어진 군으로부터 선택되는 1종 이상으로 이루어진 아트라노린 생합성 유전자를 포함하는, 지의류 유래의 대사산물 생산용 재조합 발현 벡터를 제공한다.
상기 "아트라노린 생합성 유전자"는 전술한 바와 같다.
본 명세서에 사용된 용어 "벡터(vector)"는 적합한 숙주 내에서 목적 단백질을 발현시킬 수 있도록 적합한 조절 서열에 작동 가능하게 연결된 특정 유전자를 함유하는 DNA 제조물로, 상기 조절 서열은 전사를 개시할 수 있는 프로모터, 그러한 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합부위를 코딩하는 서열, 및 전사 및 해독의 종결을 조절하는 서열을 포함한다. 벡터는 적당한 숙주세포 내로 형질전환 된 후, 숙주 게놈과 무관하게 복제되거나 기능할 수 있으며, 게놈 그 자체에 통합될 수 있다. 본 발명의 벡터는 당해 기술 분야에서 잘 알려진 유전자 재조합 기술을 이용하여 제조할 수 있으며, 부위-특이적 DNA 절단 및 연결은 당해 기술 분야에서 일반적으로 알려진 효소 등을 사용한다.
본 명세서에 사용된 용어 "발현 벡터"는 지의류 유래 아트라노린 생합성 유전자가 도입된 벡터로, 이종(heterologous)인 미생물 또는 숙주세포에서 자체적으로 발현시킬 수 없는 지의류 유래 대사산물을 인위적으로 발현시키기 위해, 지의류 유래 아트라노린 생합성 유전자를 이종 균주 내로 도입하여 지의류 유래 대사산물을 발현시킬 수 있는 재조합 발현 벡터를 의미한다.
구체적으로, 상기 도입된 아트라노린 생합성 유전자에 의해 지의류 유래의 2차 대사산물인 아트라노린(atranorin)을 비롯하여 4-O-디메틸바르바트산(4-O-demethylbarbatic acid), 프로아트라노린 I(proatranorin I), 프로아트라노린 II(proatranorin II), 프로아트라노린 III(Proatranorin III) 및 베오미세스산(baeomycesic acid) 등의 지의류 유래 대사산물을 이종 미생물 또는 숙주세포에서 발현시킬 수 있는 벡터를 의미한다. 본 발명에서 발현 벡터는 '벡터' 또는 '재조합 발현 벡터'와 혼용될 수 있다.
상기 발현 벡터는 바람직하게는 하나 이상의 선택성 마커를 포함할 수 있다. 상기 마커는 통상적으로 화학적인 방법으로 선택될 수 있는 특성을 갖는 핵산 서열로, 형질전환된 세포를 비 형질전환 세포로부터 구별할 수 있는 모든 유전자가 이에 해당된다. 그 예로는 앰피실린(ampicilin), 카나마이신(kanamycin), G418, 블레오마이신(Bleomycin), 하이그로마이신(hygromycin), 클로람페니콜(chloramphenicol), 아프라마이신(apramycin)과 같은 항생제 내성 유전자가 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 당업자에 의해 적절히 선택 가능하다.
본 발명의 일 구체예에서, 스테레오카울론 알피넘(Stereocaulon alpinum) 유래 아트라노린 생합성 유전자가 도입된 벡터는 이종(heterologous)인 병아리 콩 역병 곰팡이균 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei)에 형질전환되어 지의류 유래의 대사산물을 이종 발현시킬 수 있다.
아트라노린 생합성 유전자 함유 재조합 발현 벡터가 적재된 재조합 미생물
또 다른 하나의 양태로서, 본 발명은 상기 재조합 발현 벡터로 형질전환된 재조합 미생물을 제공한다.
상기 재조합 발현 벡터는 전술한 바와 같다.
본 명세서에 사용된 용어 "형질전환"은 외부로부터 주어진 DNA에 의하여 생물의 유전적인 성질이 변하는 것을 의미하며, 특히 본 발명에서는 특정 유전자, 즉 지의류 유래 아트라노린 생합성 유전자를 포함하는 벡터를 특정 이종 미생물 내에 도입하여 특정 이종 미생물 내에서 상기 유전자가 발현될 수 있도록 하는 것을 의미한다.
상기 재조합 발현 벡터는 특정 이종 미생물에 형질전환하여 재조합 미생물 균주를 제조하는데, 이때 상기 형질전환 방법은 공지된 기술이라면 특별히 이에 제한되지 않고 사용할 수 있다. 예를 들면 칼슘 클로라이드 방법 또는 전기천공법(Neumann, et al., EMBO J., 1:841, 1982)을 형질전환에 사용할 수 있다.
상기 특정 이종 미생물은 당업계에 널리 알려져 있는 미생물 또는 숙주세포라면 제한없이 사용할 수 있다. 본 발명의 지의류 유래 아트라노린 생합성 유전자의 도입 효율과 발현 효율이 높은 미생물 또는 숙주세포를 사용할 수 있는데, 예를 들면, 곰팡이, 박테리아, 효모를 포함할 수 있다.
구체적으로 상기 재조합 미생물은 곰팡이일 수 있고, 보다 구체적으로 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei)일 수 있다. 보다 더 구체적으로, 상기 재조합 미생물은 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)일 수 있다.
지의류 유래의 대사산물의 생산 방법
또 다른 하나의 양태로서, 본 발명은 상기 재조합 미생물을 배양하는 단계를 포함하는, 지의류 유래의 대사산물 생산 방법을 제공한다.
상기 재조합 미생물은 전술한 바와 같이 서열번호 1, 서열번호 3 및 서열번호 5로 이루어진 군으로부터 선택되는 1종 이상으로 이루어진 아트라노린 생합성 유전자를 포함하는, 지의류 유래의 대사산물 생산용 재조합 발현 벡터가 도입된 재조합 미생물일 수 있다.
상기 재조합 미생물은 이에 제한되지는 않으나, 4-O-디메틸바르바트산(4-O-demethylbarbatic acid), 프로아트라노린 I(proatranorin I), 프로아트라노린 II(proatranorin II), 프로아트라노린 III(Proatranorin III), 아트라노린(atranorin) 및 베오미세스산(baeomycesic acid)으로 이루어진 군으로부터 하나 이상 선택되는, 지의류 유래의 대사산물을 생산하는 것일 수 있다.
상기 지의류 유래의 대사산물 생산용 재조합 미생물의 배양 조건은 형질전환된 재조합 미생물 또는 숙주세포의 종류에 따라 달라질 수 있다. 상기 재조합 미생물 또는 숙주세포의 종류에 따라 당업자에게 공지된 조건에 따라, 즉, 통상의 온도 조건, 예컨대 25 내지 40℃ 및 pH 조건, 예컨대 pH 6 내지 8의 조건 하에서 배양될 수 있다. 이러한 조건 하에서 재조합 미생물 또는 숙주세포로부터 전술한 바와 같은 지의류 유래의 대사산물을 높은 수율로 대량 생산할 수 있다.
상기 재조합 미생물 또는 숙주세포는 전술한 바와 같이 지의류 유래 아트라노린 생합성 유전자의 도입 효율과 발현 효율이 높은 미생물 또는 숙주세포로서 당업계에 공지된 미생물 또는 숙주세포를 제한없이 사용할 수 있다. 구체적으로 상기 재조합 미생물은 곰팡이일 수 있고, 보다 구체적으로 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei)일 수 있다. 보다 더 구체적으로, 상기 재조합 미생물은 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)일 수 있다.
또한, 상기 재조합 미생물 또는 숙주세포의 배양(또는 발효)에 사용되는 배지는 특정한 미생물 균주 또는 숙주세포의 요구조건을 적절하게 만족시키는 것을 적절히 선택할 수 있다. 상기 배지는 다양한 탄소원, 질소원, 인원 및 미량원소 성분을 포함할 수 있다. 배지 내 탄소원으로는 글루코즈, 사카로즈, 락토즈, 프락토즈, 말토즈, 전분, 셀룰로즈와 같은 당 및 탄수화물, 대두유, 해바라기유, 피마자유, 코코넛유 등과 같은 오일 및 지방, 팔미트산, 스테아린산, 리놀레산과 같은 지방산, 글리세롤, 에탄올과 같은 알코올, 아세트산과 같은 유기산을 예시할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 이들 물질은 개별적으로 또는 혼합물로서 사용될 수 있다. 상기 탄소원은 글리세롤, 포도당 또는 이들의 조합일 수 있다. 배지 내 질소원으로는 펩톤, 효모 추출물, 육즙, 맥아 추출물, 옥수수 침지액, 대두밀 및 요소 또는 무기 화합물, 예를 들면 황산암모늄, 염화암모늄, 인산암모늄, 탄산암모늄 및 질산암모늄을 예시할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 질소원 또한 개별적으로 또는 혼합물로서 사용할 수 있다. 배지 내 인원으로는 인산이수소칼륨 또는 인산수소이칼륨 또는 상응하는 나트륨-함유 염을 예시할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 또한, 배양 배지는 성장에 필요한 황산마그네슘 또는 황산철과 같은 금속염을 포함하거나, 아미노산 및 비타민과 같은 필수 성장 물질을 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다. 상술된 원료들은 배양 과정에서 배양물에 적절한 방식에 의해 회분식으로 또는 연속식으로 첨가될 수 있다.
또한, 필요에 따라, 수산화나트륨, 수산화칼륨, 암모니아와 같은 기초 화합물 또는 인산 또는 황산과 같은 산 화합물을 적절한 방식으로 사용하여 배양물의 pH를 조절할 수 있다. 또한, 지방산 폴리글리콜 에스테르와 같은 소포제를 사용하여 기포 생성을 억제할 수 있다. 배양물의 온도는 통상 20℃ 내지 45℃, 또는 25℃ 내지 40℃를 유지할 수 있다. 배양은 원하는 대사산물, 예컨대 4-O-디메틸바르바트산, 프로아트라노린 I, 프로아트라노린 II, 프로아트라노린 III, 아트라노린 및 베오미세스산으로 이루어진 군으로부터 하나 이상 선택되는 지의류 유래의 2차 대사산물의 생산량이 최대로 얻어질 때까지 계속될 수 있다.
본 명세서에서 제공되는 지의류 유래의 대사산물의 생산 방법은, 상기한 배양 단계 이후에, 생산된 지의류 유래의 2차 대사산물을 회수 또는 분리하는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 재조합 균주 또는 이의 배양물로부터 생산된 지의류 유래의 2차 대사산물을 회수 또는 분리하는 방법은 당업계에 널리 알려져 있는 방법 중에서 선택될 수 있다. 예컨대, 4-O-디메틸바르바트산, 프로아트라노린 I, 프로아트라노린 II, 프로아트라노린 III, 아트라노린 또는 베오미세스산의 회수 방법의 예로서, 원심분리, 초음파파쇄, 여과, 이온교환 크로마토그래피, 고성능 액체 크로마토그래피(high performance liquid chromatography: HPLC), 가스 크로마토그래피(gas chromatography: GC) 등의 방법이 있으나, 이들 예에 한정되는 것은 아니다.
본 명세서에서 제공되는 지의류 유래의 대사산물은 전술한 아트라노린 생합성 유전자들 중 1종 이상을 선택적으로 도입하여 형질전환시킨 재조합 미생물로부터 생산될 수 있다(하기 [반응식 1] 참조).
[반응식 1]
본 발명의 일 구체예에서, 상기 서열번호 1의 염기서열로 이루어진 atr1 유전자가 도입된 재조합 미생물을 소정의 조건 하에서 배양함으로써 4-O-디메틸바르바트산을 생산할 수 있다. 이때, 재조합 미생물은 이에 제한되지는 않으나 식물 병원성 곰팡이 아스코키타 라비에이(As. rabiei)일 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 서열번호 1의 염기서열로 이루어진 atr1 유전자 및 서열번호 5의 염기서열로 이루어진 atr3 유전자가 도입된 재조합 미생물을 소정의 조건 하에서 배양함으로써 프로아트라노린 I을 생산할 수 있다. 이때, 재조합 미생물은 이에 제한되지는 않으나 식물 병원성 곰팡이 아스코키타 라비에이(As. rabiei)일 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 상기 서열번호 1의 염기서열로 이루어진 atr1 유전자 및 서열번호 3의 염기서열로 이루어진 atr2 유전자가 도입된 재조합 미생물을 소정의 조건 하에서 배양함으로써 프로아트라노린 II 및 프로아트라노린 III을 생산할 수 있다. 이때, 재조합 미생물은 이에 제한되지는 않으나 식물 병원성 곰팡이 아스코키타 라비에이(As. rabiei)일 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 상기 서열번호 1의 염기서열로 이루어진 atr1 유전자, 서열번호 3의 염기서열로 이루어진 atr2 유전자 및 서열번호 5의 염기서열로 이루어진 atr3 유전자가 도입된 재조합 미생물을 소정의 조건 하에서 배양함으로써 아트라노린을 생산할 수 있다. 이때, 재조합 미생물은 이에 제한되지는 않으나 식물 병원성 곰팡이 아스코키타 라비에이(As. rabiei)일 수 있다.
아트라노린 생산용 아스코키타 라비에이(
Ascochyta rabiei
) ATR-11 균주
또 다른 하나의 양태로서, 본 발명은 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)를 제공한다.
본 명세서에 사용된 용어 "아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei)"는 병아리 콩 역병을 유발하는 식물 병원성 곰팡이균으로, 전술한 지의류 유래의 아트라노린 생합성 유전자를 도입하는 데 사용된 이종의 숙주 미생물이다.
상기 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)는 국립농업과학원 농업미생물은행(KACC)에 2021년 5월 28일자로 기탁번호 KACC 83048BP로 기탁된 아라트라노린 생산용 균주이다.
구체적으로, 상기 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주는 전술한 서열번호 1, 서열번호 3 및 서열번호 5로 이루어진 군으로부터 선택되는 1종 이상으로 이루어진, 아트라노린 생합성 유전자가 도입된 균주로, 아트라노린을 생산할 수 있다. 상기 균주로부터 생산된 아트라노린은 약학 조성물, 식품 조성물, 건강기능식품, 사료 조성물 등에 다양하게 활용 및 산업화할 수 있다.
아스코키타 라비에이 ATR-11 균주를 이용한 아트라노린 생산 방법
또 다른 하나의 양태로서, 본 발명은 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)를 배양하는 단계를 포함하는, 아트라노린 생산 방법을 제공한다.
상기 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)는 전술한 바와 같다.
상기 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)의 배양 조건은 특별히 이에 제한되지 않으나,15 내지 25℃의 온도, 배양 시간 7일 내지 21일일 수 있고, 바람직하게는 18 내지 22℃의 온도, 배양 시간 14일 내지 18일일 수 있다.
또한, 상기 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)의 배양은 상기 균주가 효율적으로 이용할 수 있는 탄소원, 질소원, 무기염 등을 포함하는 천연 배지 또는 합성 배지를 사용할 수 있다. 사용될 수 있는 탄소원은 글루코오스, 프럭토오스, 수크로오스, 콩가루, 땅콩가루, 밀가루, 옥수수가루, 덱스트린, 콘밀, 과당 시럽과 같은 탄수화물; 녹말, 녹말의 가수분해물; 아세트산 및 프로피온산과 같은 유기산; 에탄올, 프로판올, 글리세롤과 같은 알코올; 콩기름, 올리브기름, 카놀라유, 땅콩기름, 생선기름 등의 기름류 등을 포함한다. 질소원은 암모니아; 염화암모늄, 암모늄설페이트, 암모늄아세테이트 및 암모늄포스페이트와 같은 무기산 또는 유기산의 암모늄염; 펩톤, 육추출물(meat extract), 이스트추출물, 옥수수 침지액, 카제인 가수분해물, 대두추출물, 대두가수분해물; 다양한 발효된 세포 및 이들의 분해물 등을 포함한다. 아미노산으로, 글루타민산나트륨, 메티오닌, 라이신, 루이신, 시스테인, 발린 등을 포함한다. 무기염은 포타슘디하이드로젠 포스페이트, 다이포타슘하이드로젠 포스페이트, 마그네슘 포스페이트, 마그네슘 설페이트, 소디엄 클로라이드, 망간 설페이트, 구리 설페이트, 칼슘 카보네이트 등을 포함한다.
상기 배지의 pH는 배양 중에서 바람직하게는 3.0 내지 9.0의 범위를 유지한다. 배지의 pH는 무기 또는 유기산, 알칼리 용액, 우레아, 칼슘 카보네이트, 암모니아 등으로 조절할 수 있다.
상기 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)를 배양한 후, 이로부터 아트라노린을 분리, 정제 및 회수하기 위해서는 공지의 다양한 방법을 이용할 수 있다. 예를 들면 균체를 원심분리를 통해 제거한 후, 염석, 에탄올 침전, 한외여과막, 겔 여과 크로마토그래피, 이온교환 칼럼 크로마토그래피 등의 공지된 적절한 방법이나 이들을 조합하여 분리 정제할 수 있다.
상기 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) ATR-11 균주(기탁번호: KACC83048BP)를 활용한 아트라노린의 생산은 실험실 규모에서 뿐만 아니라, 대규모 생산에도 적합하므로 상업적 활용에 용이하다.
상기 아트라노린은 이에 제한되지는 않으나, 지의류 스테레오카울론 알피넘(Stereocaulon alpinum)으로부터 유래한 아트라노린일 수 있다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명의 구성 및 효과를 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 계통 분석
게놈 시퀀싱된 29종의 지의류-형성 곰팡이(Lichen-forming fungi, LFF)와 내생 곰팡이(endophytic fungus)인 시아노데르멜라 아스테리스(Cyanodermella asteris)의 계통발생을 유추하기 위해 본 발명자들은 병합-기반 계통발생학 접근법을 추구하였다. LFF에 대한 배양, 게놈 시퀀싱 및 주석 절차는 하기 실시예 8에 설명되어 있다. 30개의 주석이 달린 게놈에서 추론된 단백질 서열의 단일-사본 오르토로그 클러스터(Single-copy ortholog cluster, SCO)는 인플레이션 계수가 2.5인 OrthoMCL(v2.0.9)을 사용하여 식별되었다. 393개의 SCO 각각에 대해, '자동' 설정과 함께 MAFFT(v7.310)를 사용하여 단백질 서열을 정렬하였으며, 매개변수: '-b4=5'과 함께 Gblock(v0.91b)을 사용하여 잘못 정렬된 영역에 대해 결과 393개의 다중 서열 정렬을 트리밍하였다. RAxML 프로그램(v82)은 각 다중 서열 정렬에 대해 100개의 최대 우도(likelihood) 트리를 계산하는 데 사용되었다. 병합-기반 트리를 생성하기 위해 두 개의 다중 위치 부트스트래핑 옵션(사이트 전용 리샘플링 및 유전자/사이트 리샘플링)이 있고 부트스트랩 옵션이 없는 ASTRAL-III(v5.7.4)를 사용하였다. 모든 트리는 동일한 토폴로지(topology)를 보여주었다.
실시예 2: 생합성 유전자 클러스터 패밀리 분석
30종의 게놈에서 BGC 식별을 위해, 게놈 어셈블리 및 주석 파일은 '--최소' 매개변수 설정으로 antiSMASH 프로그램(v5.0+)에 의해 처리되었다. 6종의 클라도니아속(Cladonia spp.) 및 남극 지의류 스테레오카울론 알피넘(Stereocaulon alpinum, S. alpinum)에서 발견된 BGC의 유전적 복제 제거를 위해 본 발명자들은 MIBiG 데이터베이스(v1.4)를 참조하여 BiG-SCAPE 프로그램을 사용하였다. 하나 이상의 반복 유형 I PKS를 포함하는 BGC를 분석하기 위해, 반복 유형 I PKS(PF00109 및 PF02801)와 관련된 Pfam 도메인만 포함하도록 구성 파일 'domain_whitelisttxt'를 수정하고 선택적 인수 -믹스' 및 '-- 하이브리드-오프'로 BiG-SCAPE 프로그램을 실행하였다. 도메인 유형의 자카드(Jaccard) 인덱스, 도메인 시퀀스 유사성 및 도메인 인접성 인덱스를 기반으로 BiG-SCAPE 프로그램은 더 작은 값이 더 큰 BGC 유사성을 나타내는 클러스터의 페어별 조합 간의 유사성 매트릭스를 계산하였다. 본 발명자들은 0.3-0.8의 엣지-길이 컷오프(edge-length cutoff)를 0.1 단계로 사용하여 BGC 네트워크를 평가하였고, 6종의 클라도니아속(Cladonia spp.) 및 S. alpinum에서 GCF의 대표로서 0.5의 컷오프(cutoff) 값을 사용하는 네트워크를 고려하였다. PKS 패밀리에 대한 개별 네트워크는 Python package NetworkX (v2.5)를 사용하여 시각화되었으며, BiG-SCAPE에 의해 계산된 BGC 쌍 간의 유사도 제곱으로 엣지-너비에 가중치가 부여되었다. 본 발명자들은 지의류 물질 생산을 담당하는 PKS 패밀리를 포함하는 BGC의 다중-위치, 대략 최대-우도, 계통수를 생성하는 CORASON 프로그램을 사용하였다. PKS23 패밀리의 경우 C. 랑기페리나(C. rangiferina)의 OMT(Crg06815)를 쿼리 유전자로 사용하여 30개의 시퀀싱된 종에서 검출된 총 1,527개의 BGC에서 상동성 BGC를 검색하였다. PKS1 패밀리의 경우 C. 랑기페리나(C. rangiferina)의 GAL4 유형 전사 인자(유전자 ID: Crg07068)를 쿼리 유전자로 사용하였다.
실시예 3: 곰팡이 NR-PKS의 계통발생 분석
반복 유형 I PKS의 KS 도메인은 진화적으로 보존된 것으로 간주되어, 전체 PKS의 유사성에 대한 프록시 역할을 할 수 있다. 본 발명자들은 6종의 클라도니아속(Cladonia spp.) 및 S. alpinum의 게놈에서 총 242개의 PKS를 확인하였으며, 그 중 4개의 PKS(Cgr01615, Cgr03964, Cgr08611 및 Cmt10189)에 KS 도메인이 누락되었다. KS 도메인 서열은 온라인 도구인 NaPDoS를 사용하여 238개의 PKS에서 추출하고 MUSCLE(v3.8.31)을 사용하여 정렬하였다. 클러스터링 분석을 위해, BuddySuite 프로그램의 AlignBuddy 기능을 사용하여 선택적 인수인 '-pi'를 사용하여 238개 PKS의 KS 도메인에 대한 전체-대-전체(all-versus-all) 유사성 매트릭스를 계산하였다. R package Superheat를 사용하여 k-평균값에 의해 클러스터링된 KS 도메인의 유사도 백분율을 보여주는 히트맵이 생성되었다. 곰팡이 NR351 PKS 계통발생의 경우, 본 발명자들은 6종의 클라도니아속(Cladonia spp.) 및 S. alpinum에서 발견된 103개의 NR-PKS의 KS 및 PT 도메인의 연결된 단백질 서열과 지의류가 없는 곰팡이의 알려진 화합물에 연결된 82개의 NR-PKS를 사용하였다. 본 발명자들은 처음에 6종의 클라도니아속(Cladonia spp.) 및 S. alpinum에서 106개의 NR-PKS를 확인하였으며, 여기에는 현재 게놈 어셈블리(유사유전자)에서 전체 서열을 안정적으로 정의할 수 없는 7개의 NR-PKS가 포함된다. 이러한 부분 PKS 중, 3개의 NR-PKS(Cbo04702, Cma06590 및 Cmt06606)는 KS 또는 PT 도메인이 없었고, 계통발생 분석에서 제외되었다. 지의류 NR-PKS의 PT 도메인은 이전에 특성화된 PKS의 도메인과 정렬하여 식별되었다. 페니실리움 엑스판숨(Penicillium expansum)에서 파툴린(UniProtKB: A0A075TRC0) 생합성을 담당하는 6-메틸살릴산 합성 효소(6-methylsalicylic acid synthase, 6MSAS)는 곰팡이 NR-PKS 계통발생에 대한 외부 그룹으로 설정되었다. 또한, 4개의 클라도니아속(Cladonia spp.)에서 발견된 4개의 6MSAS가 분석에 포함되었다(Cbo07291, Cgr05254, Cmt10005 및 Cuc03485). KS 및 PT 도메인의 단백질 서열은 MAFFT(v7.310)를 사용하여 '자동' 설정으로 정렬하고, 각 도메인의 거짓된 서열 또는 잘못 정렬된 영역은 'gappyout' 매개변수로 trimA1 프로그램(v1.2)을 사용하여 트리밍하였다. KS 및 PT 도메인에 대한 결과 다중 서열 정렬이 FASconCAT-G(v1.04)와 연결되었다. 연결된 서열에서 RAxML(v8.2)을 사용하여 매개변수 설정이 '-m PROTGAMMAWAG'인 사이트의 대체율에 대한 감마 분포를 사용하여 최대-우도 트리를 계산하였다. 노드 지원은 1,000개의 부트스트랩 복제에 의해 평가되었다. 최종 트리는 6MSAS 아웃그룹에 뿌리를 두고 iTOL(v5.7)로 주석을 달았다.
실시예 4: 아스코키타 라비에이(
Ascochyta rabiei
)에서 "클린 숙주"의 생성
분할-마커 전략을 사용하여 솔라나피론-마이너스 돌연변이체("클린 숙주")를 생성하였다. sol1의 다운스트림 영역(1,208 bp) 및 sol3의 업스트림 영역(1,459 bp)은 각각 L5/L3 및 R5/R3 프라이머 쌍을 사용하여 As. rabiei 분리주 AR628의 gDNA로부터 증폭되었다. 하이그로마이신 포스포트랜스퍼라제 유전자(hph) 카세트는 프라이머 쌍 HYG5/HYG3을 사용하여 pCB1004 플라스미드로부터 증폭되었다. L3 및 R5 프라이머는 각각 hph 카세트의 3' 및 5' 말단에 상보적인 27개의 ntlong 오버행 서열을 가지므로, 증폭된 sol1 다운스트림 및 sol3 업스트림 영역이 중첩 확장 PCR에 의해 hph 카세트에 융합될 수 있다. 마지막으로, N5/HY-R 및 YG-F/N3 프라이머 쌍을 사용하여 융합된 구성에서 분할 마커 구성을 증폭하였다. 분할 마커 구성물은 Hallen-Adams 등에 기술된 바와 같이 폴리에틸렌 글리콜-매개 유전자 변형에 의해 As. rabiei의 원형질체에 도입되었다. 유전자 교체에 사용된 프라이머는 하기 표 1에 나열되어 있다.
본 발명에 사용된 프라이머 정보를 하기 표 1에 정리하여 나타내었다.
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프라이머
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서열 (5'-3')
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서열번호
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설명
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| Sol1PpDS33_fwd |
AGATCTCGGCACGTTTTGATCGCAAAG |
7 |
pDS33으로 sol1 프로모터 클로닝 |
| Sol1PpDS33_rev |
AAGCTTAGTAATATCTGGCGATGAAGCGTCAG |
8 |
pDS33으로 sol1 프로모터 클로닝 |
| Inf_Sta046440_fwd |
CAGATATTACTAAGCTCATGGCGTCTAACCATGAGGAG |
9 |
pDS35로 PKS23 클로닝 |
| Inf_Sta046440_rev |
GTAACGTTAAGTGGATCCTTACAACTAAAGCTCTCAATCAACCC |
10 |
pDS35로 PKS23 클로닝 |
| Sta046440_check1F |
GGACGATGAGAACGTCCTAG |
11 |
PKS23 시퀀싱 |
| Sta046440_check2F |
CGAGTCAGGTGATCCAGTG |
12 |
PKS23 시퀀싱 |
| Sta046440_check3F |
CCAATCATACTGAGCGCTG |
13 |
PKS23 시퀀싱 |
| Sta046440_check4F |
CACATGTCTGTGGCTTGAG |
14 |
PKS23 시퀀싱 |
| Sta046440_check5F |
CAACTCCGGTGATGATTG |
15 |
PKS23 시퀀싱 |
| Sta046440_check6F |
CAACCCTTCCACATATTGAG |
16 |
PKS23 시퀀싱 |
| pII99_sol5_fwd |
GAATTCAGAGCGACAGTGAAAGC |
17 |
pII99로 sol5 프로모터 클로닝 |
| pII99_sol5_rev |
AGATCTAGCTAGCTTGGCGTGATGTCAGTCAATGCTG |
18 |
pII99로 sol5 프로모터 클로닝 |
| pII99_tef1a_fwd |
GAATTCCAGCCGAGACAGCAGAATCAC |
19 |
pII99로 tef1α 프로모터 클로닝 |
| pII99_tef1a_rev |
AGATCTAGCTAGCGTGTTATGTTTTGTGGAATATAAAAGGG |
20 |
pII99로 tef1α 프로모터 클로닝 |
| Inf95_Sta04642_fwd |
ATCACGCCAAGCTAGCACGATGACTTCCGTTGATACAATG |
21 |
pII95로 atr3 클로닝 |
| Inf98_Sta04642_fwd |
AAACATAACACGCTAGCACGATGACTTCCGTTGATACAATG |
22 |
pII98로 atr3 클로닝 |
| Inf99_Sta04642_rev |
GGAGACCGGCAGATCCCGTCACATGTCCGTCATAATAAC |
23 |
pII95 및 pII98로 atr3 클로닝 |
| Inf98_Sta04643_fwd |
AAACATAACACGCTAGAACCATGGCTCTCCTAGACACAATTG |
24 |
pII95로 atr2 클로닝 |
| Inf95_Sta04643_fwd |
ATCACGCCAAGCTAGAACCATGGCTCTCCTAGACACAATTG |
25 |
pII98로 atr2 클로닝 |
| Inf99_Sta04643_rev |
GGAGACCGGCAGATCGAGGAGCAAAGGAACAAGGAACAG |
26 |
pII95 및 pII98로 atr2 클로닝 |
| pII99_MK5 |
CGTCAAGAGACCTACGAGACTG |
27 |
플라스미드 tef1α::atr2/pII98에서 nptII를 ble로 교체 |
| pII99_MK3 |
GCTATACTTCTAGGTCTTGGAAGAG |
28 |
플라스미드 tef1α::atr2/pII98에서 nptII를 ble로 교체 |
| Inf_BLE_pII99_fwd |
GTAGGTCTCTTGACGCATTAAGACCTCAGCGCTAGTGG |
29 |
플라스미드 tef1α::atr2/pII98에서 nptII를 ble로 교체 |
| Inf_BLE_pII99_rev |
GACCTAGAAGTATAGCGGTGTTACGGAGCATTCACTAGG |
30 |
플라스미드 tef1α::atr2/pII98에서 nptII를 ble로 교체 |
| L5 |
GAGGTCTTCACACCACAAGTTCG |
31 |
"클린 숙주" 생성 |
| L3 |
GGCAAAGGAATAGAGTAGATGCCGACCGGGCTCTTGCGTAGTGGTACAGATG |
32 |
"클린 숙주" 생성 |
| R5 |
GTTGACCTCCACTAGCTCCAGCCAAGCGAATAGGTAACAAAGCCAGCCGAG |
33 |
"클린 숙주" 생성 |
| R3 |
GAGAATTGCGGCGCAGGATGTTC |
34 |
"클린 숙주" 생성 |
| N5 |
CTGACTTTCTTCTTGCAGCCCTGC |
35 |
"클린 숙주" 생성 |
| N3 |
CTAACGATGTCGTTAGTCGCCTTG |
36 |
"클린 숙주" 생성 |
| HYG-F |
GCTTGGCTGGAGCTAGTGGAG |
37 |
"클린 숙주" 생성 |
| HYG-R |
CGGTCGGCATCTACTCTATTCCTT |
38 |
"클린 숙주" 생성 |
| YG-F |
CGATGTAGGAGGGCGTGGATATGTC |
39 |
"클린 숙주" 생성 |
| HY-R |
TGTAGTGTATTGACCGATTCCTTGCG |
40 |
"클린 숙주" 생성 |
| P1_fwd |
GGACGATGAGAACGTCCTAG |
41 |
RT-PCR 분석 |
| P1_rev |
GAGAGTTCCTCATGCTCGTC |
42 |
RT-PCR 분석 |
| P2_fwd |
CATCGACGACACGGAGATACTG |
43 |
RT-PCR 분석 |
| P2_rev |
GACCGTGAGATTCTTTGAAGAGG |
44 |
RT-PCR 분석 |
| Actin1_fwd |
CAATGGTTCGGGTATGTGCAAG |
45 |
RT-PCR 분석 |
| Actin1_rev |
GAAGAGCGAAACCCTCGTAGAT |
46 |
RT-PCR 분석 |
실시예 5:
atr1
및 RT-PCR 분석의 이종(Heterologous) 발현
"클린 숙주"에서 외래 유전자의 효율적인 발현을 위해, sol1 유전자 프로모터(pDS35), sol5 유전자 프로모터(pII95) 또는 번역 연장 인자 1 알파 유전자 프로모터(pII98)를 운반하는 발현 벡터를 구성하였다. 그 다음, atr1, atr2 및 atr3 유전자를 발현 벡터에 개별적으로 클로닝하였다. 발현 벡터 구성 및 클로닝 절차에 대한 자세한 내용은 실시예 9 및 10에 기술되어 있다. atr1의 이종 발현을 위해, sol1::atr1/pDS35 플라스미드(5-10 μg)를 사용하여 "클린 숙주"를 형질전환하였다. 추정 형질전환체를 100 μg/ml의 노르세오트리신 설페이트 (clonNAT; GoldBio)를 함유하는 감자 덱스트로스 한천(PDA; BD Biosciences)에서 계대배양하였다. Sta04644-T16 및 Sta04644-T25로 명명된 2개의 형질전환체는 선택제에 내성을 보였고, RNA 추출을 위해 나일론 멤브레인으로 덮인 PDA에서 계대배양하였다. 배양 2주 후, PDA에서 자라는 균사체를 나일론 멤브레인으로부터 편날 면도날로 긁어내어 총 RNA를 추출하였다. 제조업체의 지침에 따라 TRIzol 시약(Thermo Fisher Scientific)을 사용하여 추가 추출 단계와 함께, 액체 질소에서 분쇄된 균사로부터 총 RNA를 추출하였다. 추가 추출 단계는 1회의 페놀(pH 4.6)-클로로포름-이소아밀 알코올(25:24:1) 추출에 뒤이어 초기 TRIzol-클로로포름 상 분리 후 1회의 클로로포름 추출 단계 RNA 펠렛을 88 μL의 뉴클레아제가 없는 물에 용해시키고, DNase 처리로 게놈 DNA를 절단하여 수행하였다(Qiagen). 이후, RNA Clean & Concentrator (Zymo research)를 사용하여 RNA 샘플을 농축하였다. 본 발명자들은 RT-PCR 분석에서 4개의 인트론으로 atr1의 발현과 인트론 접합을 확인하였다. 두 개의 프라이머 세트가 설계되었다: (i) atr1 코딩 서열의 5' 영역에 위치한 첫 번째 인트론의 측면 영역을 증폭하고, (ii) atr1 코딩 서열의 3' 영역에서 두 번째, 세 번째 및 네 번째(마지막) 인트론을 포함하는 영역을 증폭하였다. OneStep RT-PCR 키트(Qiagen)를 사용하여, 200 나노그램의 총 RNA를 역전사하고 atr1 및 액틴1(양성 대조군)을 증폭하였다. RT-PCR 분석 및 플라스미드 구성에 사용된 프라이머는 상기 표 1에 나열되어 있다.
실시예 6: 아트라노린을 생산하는 이종 숙주의 생성
atr1-발현 균주(Sta04644-T25)에 맞춤 효소를 도입하기 위해, 4개의 생성된 플라스미드(sol5::atr2/pII95, tef1α::atr2/pII98, sol5::atr3/pII95 및 tef1α::atr3/pII98)를 Sta04644-T25 균주로 개별적으로 형질전환시키고, 추정 형질전환체를 200 μg/ml의 G418 디설페이트(Sigma-Aldrich)를 함유하는 PDA 상에서 계대배양하였다. 대사산물 식별을 위해 G418 디설페이트에 내성이 있는 형질전환체를 선택하였다. sol1:: atr1/pDS35 및 sol5:: atr3/pII95를 모두 보유하는 균주를 아트라노린-생산 균주의 생성에 사용하였고, 이는 아트라노린의 직접적인 전구체인 화합물 2(프로아트라노린 I)의 가장 큰 생산을 나타내었다. G418 디설페이트에 내성을 부여하는 네오마이신 포스포트랜스퍼라제 II 유전자(nptII) 카세트가 이미 화합물 2를 생성하는 균주에 통합되었기 때문에, 본 발명자들은 tef1α::atr2/pII98 플라스미드의 nptII 카세트를 블레오마이신 내성 단백질 유전자(ble)로 교체하였으며, tef1α::atr2/pII98 플라스미드는 프라이머 쌍 'Inf_BLE_pII99_fwd' 및 'Inf_BLE_pII99_rev'를 사용하여 증폭되었고, ble는 pAC1750에서 증폭되었다. 이후, In-Fusion HD 클로닝 키트(Takara)를 사용하여 두 PCR 산물을 융합하였다. 생성된 플라스미드를 균주 생산 화합물 2로 형질전환하고, 추정 형질전환체를 200 μg/ml의 제오신(ThermoFisher Scientific에서 유통하는 블레오마이신 패밀리의 구성원)을 함유하는 PDA에서 계대배양하였다. 아트라노린을 생산하는 형질전환체를 선별하기 위해, 제오신 내성 형질전환체의 화학적 프로파일을 게놈 염기서열 LFF가 원래 분리된 S. alpinum 바우처 표본(국립수목원 등록번호: KHL0017342)과 비교하였다. HPLC, LC-MS/MS 및 배양 추출물 및 정제된 화합물에 대한 NMR 분광 분석에 대한 자세한 방법론은 실시예 11 내지 13에 자세히 기술되어 있다.
실시예 7: 데이터 유효성
이 전체 게놈 샷건 프로젝트는 C. 보레알리스(C. borealis), 파멜리아 cf. 스쿼로사(Parmelia cf. squarrosa) 및 S. 알피넘(S. alpinum)에 대해 각각 JAFEKC000000000, JAEUBB000000000 및 JAEUBA000000000 (바이오프로젝트: PRJNA693578, PRJNA693575, 및 PRJNA693574) 수탁하에 DDBJ/ENA/GenBank에 기탁되었다. LC-MS/MS 원 데이터는 MSV000087081이라는 등록번호로 MassIVE 데이터베이스(http://massive.ucsd.edu)에 기탁되었다.
실시예 8: 게놈 시퀀싱 및 주석
LFF는 남극 대륙 킹 조지 섬(S62˚13'51" W58˚46'32")에서 채집한 C. 보레알리스(C. borealis) 및 S. 알피넘(S. alpinum)과 한국 덕유산(N35˚51'24" E127˚44'54")에서 채집한 파멜리아 cf. 스쿼로사(Parmelia cf. squarrosa)에서 분리되었다. LFF는 맥아 추출물 한천 배지(BD Biosciences)에서 3-6개월 동안 배양되었다. 표준 페놀/클로로포름 추출 방법을 사용하여 게놈 DNA를 추출하고, Illumina HiSeq2000 또는 NovaSeq6000 기기에서 시퀀싱하여 150개의 뉴클레오티드 페어드-엔드 리드를 생성하였다. Illumina 어댑터를 트리밍하고 판독 품질을 평가하였으며, 콘티그(contig)를 Macrogen Inc.(Seoul, South Korea)에서 조립하였다. NCBI 데이터베이스에서 검색된 게놈 어셈블리는 GenSAS (v.6.0) 주석 파이프라인을 사용하여 주석을 달았다. 간단히 말해서, DNA 소스를 'Fungi'로 설정하여 RepeatModeler (v1.0.11) 및 RepeatMasker (v4.0.7) (www.repeatmasker.org)를 사용하여 복잡성이 낮은 영역과 반복을 마스킹하였다. ab initio 유전자 예측이 하기 도구를 사용하여 수행된 마스킹된 컨센서스 시퀀스가 생성되었다: (i) Augustus (v3.3.1), A. 니둘란스(A. nidulans)를 트레이닝된 유기체로 선택, (ii) GeneMarkES (v4.33), (iii) 인간 및 기타 척추동물에 대한 매개변수 설정을 사용하는 Genscan (v1.0) 및 (iv) GlimmerM (v2.5.1), 아스페르길루스(Aspergillus)를 트레이닝된 유기체로 선택. 상동성-기반 예측의 경우, (v) BLAST+ (v2.7.1) 및 (vi) DIAMOND (v0.9.22)를 사용하여 곰팡이(Fungi)에 대한 NCBI 참조 전사체 및 단백질 데이터베이스를 각각 검색하였다. EVidenceModeler (v06-25-2012)를 사용한 컨센서스 유전자 모델 예측의 경우, 전술한 독립형 유전자 예측에 다음과 같이 가중치를 부여하였다: (i)-5, (ii)-10, (iii)-1, (iv)-1, (v)-5 및 (vi)-5. 게놈 주석은 Ascomycota_odb9 데이터 세트를 사용하여 BUSCO (v5b)로 평가되었다.
실시예 9: PKS 발현을 위한 발현 벡터 구성
pDS23 플라스미드는 선택 마커로 노르세오트리신 아세틸트랜스퍼라제(nourseothricin acetyltransferase, nat) 유전자 카세트 및 아스페르길루스 니둘란스(Aspergillus nidulans)에서 파생된 글리세르알데히드-3-인산디히드로게나아제(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase) 유전자(G3PD)의 구성적 프로모터의 제어 하에 향상된 녹색 형광 단백질(eGFP)을 전달한다. pDS23에서 G3PD 프로모터를 다중 복제 부위로 대체하기 위해, 플라스미드를 AvrII 및 HindIII 제한 효소와 여러 제한 효소 부위(NheI, AatII, SacI, PmeI, BglII 및 SacII)는 플라스미드의 AvrII와 HindIII 부위 사이에 클로닝되었다. 생성된 플라스미드를 pDS33으로 명명하였다. As. rabiei의 고유 프로모터를 운반하는 발현 벡터를 생성하기 위해, As. rabiei 분리물 AR628의 gDNA에서 증폭된 sol1 (솔라나피론 합성 효소 인코딩) 유전자 프로모터를 포함하는 1,270-bp DNA 단편을 BglII 및 HindIII로 미리 절단된 pDS33에 클로닝하여 pDS35 플라스미드를 생성하였다. atr1의 코딩 서열(Sta04644)은 프라이머 쌍 'Inf_Sta046440_fwd' 및 'Inf_Sta046440_rev' (7,829 bp)로 증폭되었으며, In-Fusion HD 클로닝 키트(Takara)를 사용하여 eGFP 대신 HindIII 및 BamHI로 선형화된 pDS35에 클로닝하여 플라스미드 sol1::atr1/pDS35를 생성하였다.
실시예 10: 효소 발현 맞춤을 위한 발현 벡터 구축
pII99 플라스미드는 선택 마커로서 네오마이신 포스포트랜스퍼라제 II 유전자(nptII) 카세트를 운반한다. sol5의 프로모터(솔라나피론 생합성의 마지막 단계를 촉매하는 디엘스-알더레이즈(Diels-Alderase)를 인코딩함)를 운반하는 발현 벡터를 생성하기 위해, As. rabiei AR628 균주의 gDNA로부터 증폭된 sol5 프로모터를 포함하는 579-bp DNA 단편이 EcoRI 및 BglII로 미리 절단된 pII99에 클로닝하여 pII95 플라스미드를 생성하였다. 추가 제한 효소 부위를 도입하기 위해, sol5 프로모터 증폭을 위한 역방향 프라이머가 NheI 부위를 갖도록 설계되었다(상기 표 1 참조). pII95 플라스미드를 NheI 및 BglII로 절단하고, S. 알피넘(S. alpinum)의 gDNA로부터 증폭된 atr3 (Sta04642) 또는 atr2 (Sta04643)의 PCR 산물을 미리 절단된(precut) 플라스미드에 융합하여, 플라스미드 sol5::atr3/pII95 및 sol5::atr2/pII95를 생성하였다. 유사하게, A. 니둘란스(A. nidulans)로부터 유래된 번역 연장 인자 1 알파 유전자(translation elongation factor 1 alpha gene, tef1α)의 구성적 프로모터를 운반하는 발현 벡터를 생성하기 위해, 플라스미드 pII98은 pAC1750 플라스미드로부터 증폭된 tef1α 프로모터를 포함하는 880-bp DNA 단편을 pII99로 클로닝하여 생성되었으며, 코딩 서열과 atr3 및 atr2의 종결자 영역은 NheI 및 BglII로 미리 절단된 pII98에 개별적으로 융합되어 플라스미드 tef1α::atr3/pII98 및 tef1α::atr2/pII98을 생성하였다.
실시예 11: HPLC 분석 및 대사산물 정제
대사산물 추출 및 프로파일링을 위해, 형질전환체를 2-3주 동안 PDA에서 성장시키고 곰팡이 콜로니를 포함하는 전체 한천을 페트리 접시에서 잘라내고 50 ml 팔콘 튜브에 10 ml의 에틸 아세테이트에 담그었다. 30분 동안 초음파 처리한 후, 용액 1 ml의 분취량을 1.5 ml 미세원심분리 튜브로 옮기고, 증발 건조시키고, 100 ul의 메탄올로 재구성하고, 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC) 분석을 수행하였다. S. 알피넘(S. alpinum) 바우처 표본(20-30 mg) 조각을 2 ml 미세원심분리기 튜브에서 300 μl의 아세톤에 담그었다. 30분 동안 초음파 처리한 후, 샘플을 HPLC에 주입하기 전에 0.4 mm 주사기 멤브레인을 통해 여과하였다. Prominence Modular LC-20A HPLC 기기(Shimadzu)를 사용하여 형질전환체의 화학적 프로파일링을 수행하였다. 샘플은 YMC-Pack ODS-A (컬럼 크기, 150×4.6 mm; 입자 크기, 5 μm; 기공 크기, 12 nm; 40℃)를 사용하고, 254 nm에서 포토다이오드 어레이 검출기(SPD-M20A, 범위 180-700 nm)를 사용하여 분석하였다. 이동상은 펌프 A의 경우 증류수/트리플루오로아세트산(99.9:0.1, v/v)과 펌프 B의 경우 메탄올/트리플루오로아세트산(99.9:0.1, v/v)으로 구성되었다. HPLC 분석은 1.0 ml/분: 0-30분, 20-100%; 30-40분, 100%; 40-52분, 펌프 B의 20% 유속에서 구배 프로그램을 사용하여 수행되었다. 본 발명자들은 지의류 표본에서 발견되는 대사산물을 식별하기 위해 HPLC 분석을 위해 지의류 물질 데이터베이스를 사용하였다. 구조적 식별을 위해, 화합물을 주요 대사산물로 생산하는 형질전환체의 배양 추출물에서 화합물 1, 2 및 4를 정제하였다. 20개의 PDA 배양물을 에틸 아세테이트로 3회 추출하였다. 배양 추출물을 회전 증발 농축기(Buchi)에서 증발 건조시키고, 메탄올로 재구성하고, 분취용 HPLC에 적용하였다. 254 nm에서 UV 모니터링과 함께 Kromasil C18-컬럼(250×10 mm, 5 μm, 10 nm; 40℃)을 사용하여 2.2 ml/분의 유속으로 HPLC에서 분리가 이루어졌다. 화합물 1을 66% 아세토니트릴을 사용하여 정제하였다(tR = 9.86분; 9.5 mg); 2는 85% 아세토니트릴을 사용하여 정제되었다(tR = 9.77분; 6.2 mg); 4를 80% 아세토니트릴을 사용하여 정제하였다(tR = 9.60분; 2.1 mg). 용매를 0.1% 트리플루오로아세트산으로 완충하였다. 정제된 화합물을 NMR 분광 분석에 적용하였다.
실시예 12: 생성물 식별을 위한 LC-MS/MS 분석
배양 추출물을 메탄올로 20배 희석하고, 022 μm PTFE 필터로 여과하였다. LC-MS 분석은 Waters VION IMS QTOF 질량 분석기(Waters Co.)에 연결된 Waters Acquity I-Class UPLC 시스템에서 수행되었으며, 이는 전자분무 이온화 인터페이스가 장착되어 있다. 이동상은 물 중 0.1% 포름산(펌프 A) 및 아세토니트릴(펌프 B)로 구성되었다. 0.3 ml/분의 일정한 유속에서 단계적 구배 방법을 사용하여 펌프 B의 20-100%(0-9분), 3분 세척 및 3분 재생 조건으로 컬럼을 용리하였다. 주입 부피는 2 μl이었다. 컬럼 온도 및 샘플 오거나이저를 각각 40℃ 및 20℃로 유지하였다. 탠덤 MS 분석은 m/z 50-1500 Da 범위의 음이온 모드 및 0.2초의 수집 시간을 갖는 데이터-독립 수집(MSE)에서 수행되었다. 전구체 이온의 검출을 위한 낮은 충돌 에너지는 6 eV로 설정되었고, 단편화를 위한 높은 충돌 에너지는 20-40 eV로 설정되었다. 이온화 조건은 다음과 같이 설정되었다: 모세관 전압은 2.5kV이고, 콘 전압은 40V이고, 소스 온도는 100℃이고, 탈용매 온도는 250℃이고, 콘 가스 유량은 0 l/h이고, 탈용매 가스 유량은 800 l/h이었다. 네블라이저 및 보조 가스는 고순도 질소를 사용하였고, 충돌 가스는 아르곤을 사용하였다. m/z 554.2615에서 류신 엔케팔린의 [M-H]- 이온은 질량 정확도 및 재현성을 보장하기 위해 잠금 질량으로 사용되었다. 형질전환체에서 검출된 주요 화합물의 MS/MS 스펙트럼 데이터 매칭은 MS-DIAL을 사용한 전처리 후 GNPS의 기능 기반-분자 네트워킹 워크플로에 의해 수행되었다.
실시예 13: NMR 분광 데이터 요약
실시예 13-1: 4-O-데메틸바르바트산(화합물 1)
1H NMR (400 MHz, CD3COCD3): δ H 11.65 (s, OH), 6.73 (s, 1H), 6.47 (s, 1H), 2.68 (s, 3H), 2.63 (s, 3H), 2.12 (각각 s, 3H x 2); 13C NMR (100 MHz, CD3COCD3): δ C 170.4, 164.0, 163.3, 160.6, 153.0, 140.9, 140.7, 116.7, 116.6, 111.3, 109.6, 109.2, 103.6, 23.8, 23.1, 8.6, 7.3; 카르복실기에 대한 13C NMR 신호는 관찰되지 않았거나 탄소 핵의 긴 이완 시간으로 인해 매우 낮은 강도일 수 있으며, 공개된 데이터에서 카르복실기의 δC는 174.1이었다. 1H NMR 및 13C NMR 데이터는 공개된 데이터와 비슷하였다. HRESIMS m/z 3450972 [M-H]-(C18H17O7에 대한 계산치, 345.0974); MS/MS 스펙트럼은 GNPS 스펙트럼 라이브러리에 보관되어 있다.
실시예 13-2: 프로아트라노린 I(화합물 2)
1H NMR (400 MHz, CDCl3): δ H 11.90(s, OH), 11.70(s, OH), 6.50(s, 1H), 6.29(s, 1H), 3.96(s, 3H), 2.60(s, 3H), 2.52(s, 3H), 2.12(s, 3H), 2.07(s, 3H); 13C NMR (100 MHz, CDCl3): δ C 172.4, 170.3, 164.2, 162.9, 159.0, 152.6, 140.7, 139.8, 117.0, 116.4, 111.2, 110.1, 109.0, 104.2, 52.3, 24.6, 24.1, 9.4, 7.7; 1H NMR (400 MHz, CDCl3) 데이터는 공개된 데이터와 비슷하였다. 13C NMR (100 MHz, CDCl3) 데이터는 화합물 2에 하나 이상의 산소-메틸 탄소(δ C 52.3)가 있다는 점을 제외하고는 4-O-데메틸바르바트산 데이터와 비슷하였다. HRESIMS m/z 3591132 [M-H]- (C19H19O7에 대한 계산치, 359.1131); MS/MS 스펙트럼은 GNPS 스펙트럼 라이브러리에 보관되어 있다.
실시예 13-3: 프로아트라노린 III (화합물 4)
1H NMR (400 MHz, CDCl3): δ H 12.54 (s, OH), 12.45 (s, OH),11.77(s, OH), 10.35(s, CHO), 6.54(s, 1H), 6.40(s, 1H), 2.68(s, 3H), 2.59(s, 3H), 2.08(s, 3H); 1H NMR (400 MHz, CDCl3) 데이터는 프로아트라노린 III (화합물 4)의 카르복실기에서 메틸기(δH 3.99)가 누락된 것을 제외하고는 아트라노린(화합물 5)의 공개된 데이터와 비슷하였다. HRESIMS m/z 3590771 [M-H]- (C18H15O8에 대한 계산치, 359.0767); MS/MS 스펙트럼은 GNPS 스펙트럼 라이브러리에 보관되어 있다.
실시예 14: 클라도니아속(
Cladonia
) PKS 패밀리 및 유전적 복제 제거에 대한 주석
실시예 14-1: 클라도니아속(
Cladonia
spp.)의 PKS 패밀리
Big-SCAPE 프로그램을 사용하여, 적어도 하나의 반복적인 I형 PKS 유전자를 포함하는 45개의 유전자 클러스터 패밀리(GCF)가 확인되었다. PKS1, PKS2, PKS4, PKS5, PKS15 및 PKS16 패밀리의 생합성 유전자 클러스터(BGC)는 6종의 클라도니아(Cladonia) 종과 S. alpinum에서 보존되었고, PKS3 및 PKS10 패밀리의 BGC는 6개의 클라도니아 종에서 보존되었다. 이전에, Timsina 등은 클로도니아 클로로피아(Cladonia chlorophaea) 종 복합체(PKS1, PKS2, PKS3, PKS5, PKS7, PKS10, PKS11, PKS12, PKS13, PKS14, PKS15, PKS16 및 MSAS)의 종에서 보존된 13개의 PKS 패밀리를 확인하였다. 본 발명자들은 또한 유전자 클러스터 네트워크 분석에서 이러한 PKS 패밀리를 식별하였다(도 2의 A). 그러나, 본 발명자들은 6종의 클라도니아(Cladonia) 종의 게놈에서 PKS12 상동체를 검출하는데 실패하였으며, PKS12 패밀리가 원래 확인된 C. 그레이(C. grayi) 게놈에서도 마찬가지였다. 유전자 주석이 불완전하고 단편화되어 antiSMASH 프로그램이 세가지 PKS, 즉 Cma06514(PKS3), Cgr07347(PKS10) 및 Cuc08442(PKS19)를 포함하는 BGC를 검출하지 못했기 때문에, 3개의 PKS가 수동으로 검출되어 각 PKS 패밀리에 연결된다.
실시예 15: 클라도니아 생합성 유전자 클러스터(BGC)의 유전적 복제 제거
6개의 클라도니아 속(Cladonia spp.) 및 S. alpinum의 알려지지 않은 생합성 유전자 클러스터를 다른 곰팡이의 알려진 화합물에 연결하기 위해, Big-SCAPE 프로그램에 의해 예측된 GCF는 MIBiG(Minimal Information about a Biosynthetic Gene cluster) 데이터베이스(v.1.4)에 기탁된 이전에 특성화된 BGC와 결합되었다. 그 결과, 8개의 GCF 및 7개의 싱글톤(singleton) BGC가 비-지의류화된(non-lichenized) 곰팡이에서 발견되는 알려진 BGC와 연결되었다(도 2의 A). 계통 발생학적으로 먼 종의 이러한 보존된 생합성 유전자 클러스터(BGC)는 지의류 및 비-지의류화된 곰팡이 사이의 생합성 경로의 공유 조상을 제시하였다. 그럼에도 불구하고, 이러한 보존된 BGC는 높은 수준의 유전자 함량 변이를 나타내어 화학적 다양성으로 이어질 수 있는 분기 경로를 제시하였다. MIBiG 데이터베이스에 3개의 지의류 BGC가 나열되어 있다. 구체적으로, C. uncialis의 PKS8, C. uncialis의 PKS14 및 C. grayi의 PKS16에 대한 BGC는 도 2의 A에서 빨간색 점선으로 표시되어 있다.
실시예 15-1: PKS8
C. uncialis에서 메틸플로로아세토페논 합성 효소(methylphloroacetophenone synthase, MPAS)로도 알려진 PKS8은 계통발생 분석 및 유전자 발현 연구를 기반으로 하여 우스닉산의 생합성에 관여하는 것으로 알려져 있다. PKS8/MPAS 패밀리의 GCF는 C. 보레알리스(C. borealis), C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera), C. 랑기페리나(C. rangiferina) 및 C. 운시알리스(C. uncialis)에 의해 공유되었다. 그러나, 이 4가지 클라도니아(Cladonia) 종 중에서 우스닉산은 C. 랑기페리나(C. rangiferina)에서 검출되지 않았다.
실시예 15-2: PKS14
C. uncialis (BGC0001489)에서 발견된 추정 6-하이드록시멜레인 BGC(6-hydroxymellein BGC)는 C. borealis 및 C. grayi에서 PKS14 BGC와 함께 GCF를 형성하였다. 6-하이드록시멜레인 BGC의 유전자 구성원의 역할은 테레인(terrein) 생합성 경로를 기반으로 잠정적으로 지정되었으며, 여기서 terA 및 terB는 A. terreus에서 6-하이드록시멜레인을 생합성하기 위해 협력한다. 본 발명자들의 네트워크 분석에서, 테레인 BGC(MIBiG accession: BGC0000161)는 3개의 클라도니아 종의 6-하이드록시멜레인 BGC와 연결되지 않았으며, 아마도 이들 사이에서 관찰된 유전자 함량 변화 때문일 수 있다: A. terreus의 테레인 BGC의 11개 유전자 구성원 중 3개의 유전자(terA, terB 및 terD)만이 3개의 클라도니아 종의 6-하이드록시멜레인 BGC에 보존되었다.
실시예 15-3: PKS13 및 PKS15
6개의 클라도니아 속(Cladonia spp.)에 보존된 PKS15 패밀리의 BGC 및 S. alpinum은 다양한 곰팡이에서 멜라닌 생성을 담당하는 1,3,6,8-테트라히드록시나프탈렌(T4HN) 합성 효소를 포함하여 이전에 특성화된 많은 BGC에 연결되었다. 간결함을 위해, 도 2의 A는 PKS15 패밀리의 BGC에 연결된 T4HN 합성 효소(BGC0001257)를 포함하는 하나의 BGC만 보여주었다. 본 발명자들은 PKS13 BGC가 T4HN 합성 효소를 함유하는 알려진 BGC에도 연결되어 있음을 확인하였다. 6개의 클라도니아 속 및S. alpinum에 보존된 PKS15 패밀리와 달리, PKS13 패밀리는 클라도니아 속 및 S. alpinum에서 발견되지 않았으며, Exophiala lecanii-corni에서 멜라닌 생성을 담당하는 ElcPKS1과 51-54% 단백질 서열 동일성을 보여주었다(도 5). ElcPKS1 및 PKS13 패밀리는 PKS15 패밀리 및 기타 기존 T4HN과 구별되는 고도로 지원되는 계통군(99%의 부트스트랩 값)을 형성하였으며, 이는 일부 클라도니아 종이 다른 기원의 멜라닌 PKS의 두 복사본을 가지고 있음을 나타낸다.
실시예 15-4: PKS16
C. grayi (BGC0001266)에서 발견된 추정 회색조 BGC는 6개의 클라도니아 속 및 S. alpinum에서 보존된다. PKS16 BGC는 C. grayi에서 발견되는 오르셀린산(orsellinic acid)으로부터 유래된 그레이아닉산(뎁시돈)을 생산하기 위해 제안되었다.
실시예 15-5: PKS17
C. 보레알리스(C. borealis), C. 마실렌타(C. macilenta) 및 C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera)가 공유하는 PKS17 패밀리의 GCF는 다양한 곰팡이가 생산하는 안트라퀴논인 에모딘의 생합성을 위한 BGC(BGC0001583)에 연결되었다. 에모딘 생합성에 필요하고 충분한 4가지 핵심 효소(NRPKS, 메탈로-β-락타마제, 디카르복실라제 및 안트론 옥시게나제) 외에도, 사이토크롬 P450 모노옥시게나제를 포함한 몇 가지 맞춤 효소가 상동 클라도니아 BGC에서 발견되었다. P450 모노옥시게나제는 클라도스포리움 풀범(Cladosporium fulvum)에서 2개의 에모딘 유도체의 커플링을 매개하는 ClaM과 39% 서열 동일성을 보여 P450 효소가 스카이린의 생합성에 관여할 수 있음을 시사한다. 흥미롭게도, 에모딘 생합성을 위한 4개의 핵심 유전자를 보유하고 있는 또 다른 BGC가 PKS17 BGC와 배열이 다르지만 C. 마실렌타(C. macilenta)의 게놈에서 발견되었다. 추정되는 에모딘 생합성을 위한 C. 마실렌타의 두 번째 BGC는 C. 운시알리스(C. uncialis)의 PKS18 BGC와 GCF를 형성하였으며, 이는 페스탈로티옵시스 픽시(Pestalotiopsis fici)에서 발견되는 에모딘 유도체인 페스테산(pestheic acid)의 BGC와 상동성이다.
실시예 15-6: PKS34
C. 마실렌타(C. macilenta) 및 C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera)가 공유하는 PKS34 계열의 GCF는 푸사리움 푸지쿠로이(Fusarium fujikuroi)가 생산하는 적색 균사체 색소인 푸사루빈(fusarubin)의 생합성을 위한 BGC(BGC0001242)와 연결되었다. 그러나, BGC 내용은 매우 다양하였다. 푸사루빈 BGC에서 fsr1(NR-PKS 인코딩), fsr4(알코올 탈수소효소 인코딩) 및 fsr5(단쇄 탈수소효소 인코딩)의 추정 상동체만 PKS34 BGC에서 찾을 수 있었다.
실시예 15-7: PKS37
페니실리움 엑스판숨(Penicillium expansum)의 파툴린 BGC(BGC0000120)는 C. 보레알리스(C. borealis), C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera) 및 C. 운시알리스(C. uncialis)가 공유하는 PKS37 패밀리의 GCF에 연결되었다. 파툴린 BGC의 15개 유전자 구성원 중, patF-patO와 상동성인 10개의 유전자는 파툴린의 직접적인 전구체인 네오파툴린의 생합성에 필요한 3개의 클라도니아 속(C. 보레알리스의 patF 제외)에서 찾을 수 있다. 네오파툴린의 파툴린으로의 최종 전환을 담당하는 patD 및 patE의 상동체는 클라도니아 게놈에 없었다. 대신, 발견된 다른 맞춤 효소는 C. 메타코랄리페라 및 C. 운시알리스에서 에피머라제, C. 보레알리스 및 C. 운시알리스에서 타우D유사 디옥시게나제(TauDlike dioxygenase), C. 운시알리스에서 두 개의 단쇄 탈수소효소이었다.
실시예 16: MIBiG 데이터베이스에 연결된 싱글톤 BGC
이전에 특성화된 여러 BGC가 단일 종(싱글톤 BGC)에서 발견된 BGC에 연결되었다. 이러한 싱글톤 BGC는 비-지의류화된 곰팡이에서 발견되는 상응하는 BGC에 대해 유전자 함량 변화가 거의 없고 서열 유사성이 높은 경향이 있어 이러한 BGC가 지의류에 최근 도입되었음을 시사한다. 비-지의류화된 곰팡이로부터 수평으로 옮겨졌을 가능성이 있는 BGC는 다음과 같다: C. 마실렌타의 BGC에 연결된 소르비실린 BGC(BGC0001404), C. 그레이(C. grayi)의 BGC에 연결된 테레산 BGC(BGC0000160), C. 랑기페리나(C. rangiferina)의 BGC에 연결된 하이포테마이신 BGC(BGC0000076), C. 운시알리스의 BGC에 연결된 쿠르부팔리데스(curvupallides) BGC (BGC0001563), 및 S. 알피넘(S. alpinum)의 BGC에 연결된 데푸데신 BGC(BGC0000046). 모나스코루브린(monascorubrin) BGC(BGC0000099) 및 베타에논(betaenone) BGC(BGC0001264)는 본 발명자들의 네트워크 분석 뿐만 아니라 C. 운시알리스 PKS의 상동성 매핑에 대한 초기 연구에서 C. 운시알리스의 BGC에도 연결되었다.
실시예 17: 클라도니아속(
Cladonia
) PKS 패밀리의 상동성 매핑에 대한 주석
실시예 17-1: 보존된 지의류 PKS 패밀리의 상동성 매핑
유전자 클러스터 네트워크 분석에서 많은 지의류 BGC가 높은 우도를 가진 알려진 화합물로 귀속되었지만, 높은 유전자 함량 변이로 인해 비-지의류화된 곰팡이에서 이전에 특성화된 BGC와 연결되지 않은 더 상동성인 BGC가 있을 수 있다. 따라서, 본 발명자들은 NCBI 비중복 단백질 서열 데이터베이스에 대해 45개의 PKS 패밀리에 대한 BLAST 검색을 수행하여 알려진 화합물이 있는 PKS 유전자와 상동성인 클라도니아속(Cladonia) PKS 패밀리를 식별하였다.
실시예 17-2: PKS4
PKS4 패밀리는 6개의 클라도니아 속 및 S. alpinum에 보존된 R-PKS 효소를 인코딩한다. PKS4 패밀리는 지의류화 및 비-지의류화된 곰팡이에서 찾을 수 있으며, 물리적으로 연관된 유형 III PKS와 공-진화(co-evolution)를 겪은 것으로 보인다.
실시예 17-3: PKS5
PKS5 패밀리는 글라레아 로조엔시스(Glarea lozoyensis)에서 제노로조에논(xenolozoyenone) PKS와 높은 서열 유사성을 나타내는 PKS-NRPS 하이브리드 효소를 인코딩하는 6개의 클라도니아 속 및 S. alpinum에서 보존되었다(단백질 서열 수준에서 56%). PKS5 패밀리의 상동체는 다양한 곰팡이에서 찾을 수 있다. 흥미롭게도, G. lozoyensis에서 제노로조에논 생합성을 위한 R-PKS 및 NRPS 효소를 인코딩하는 두 개의 직렬 유전자는 동일한 프로모터의 제어 하에 하나의 디시스트로닉(dicistronic) mRNA로 공동 전사된다. 따라서, 지의류의 PKS5 패밀리가 R-PKS 및 NRPS 효소에 대한 두 개의 개별 폴리펩티드 또는 PKS-NRPS 하이브리드 효소에 대한 단일 펩티드를 코딩하는지 여부를 조사해야 한다.
실시예 17-4: PKS9
PKS9 패밀리는 C. 보레알리스(C. borealis), C. 마실렌타(C. macilenta), C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera) 및 C. 운시알리스(C. uncialis)에 의해 공유되었으며, 이는 이전의 상동성 매핑 연구에서 기술한 바와 같이 페니실리움 브레비콤팍툼(Penicillium brevicompactum)의 5-메킬오르셀린산(5-methylorsellinic acid)으로부터 유래된 마이코페놀산(mycophenolic acid)의 생합성을 담당하는 NR-PKS(MpaC)와 유사하다 (44% 단백질 서열 동일성). 또한, PKS9 패밀리는 아스페르길루스(Aspergillus) 및 페니실리움(Penicillium) 종의 3,5-디메틸오르셀린산 유래 메로테르페노이드의 생합성에 관여하는 NR-PKS(AdrD, AndM, AusA, NvfA, PrhL 및 Trt4)에 대해 43-45% 단백질 서열 동일성을 나타내었다. 그러나, 클라도니아속(Cladonia) 게놈의 PKS9 BGC에는 테르펜 생합성과 관련된 생합성 유전자, 예컨대 프레닐전달효소(prenyltransferase) 및 테르펜 시클라아제(terpene cyclase)가 부족하였다.
실시예 17-5: PKS18
C. 마실렌타(C. macilenta) 및 C. 운시알리스(C. uncialis)에서 공유하는 PKS18 패밀리는 이전 상동성 매핑 연구에서 기술한 바와 같이 페스탈로티옵시스 픽시(Pestalotiopsis fici)에서 에모딘 유도체인 페스테산의 생합성에 관여하는 NR-PKS(PtaA)에 대해 64-68% 단백질 서열 동일성을 보여주었다.
실시예 17-6: PKS21
보라색 색소 비루로퀴논(biruloquinone)은 엽상 지의류(foliose lichen) 파멜리아 비룰라에(Parmelia birulae)에서 처음 발견되었다. 비루로퀴논은 자연계의 클라도니아 종에서 발견되지 않았지만, 본 발명자들은 이전에 무균 배양에서 비루로퀴논을 생산하는 C. 마실렌타(C. macilenta)에서 분리된 게놈-시퀀싱된 균체(mycobiont)의 화학적 변이체를 확인하였다. 본 발명자들은 비루로퀴논 생성자와 비-생성자 사이의 전체-전사체 비교에 의해 비루로퀴논의 생합성에 PKS21 패밀리를 잠정적으로 지정하였다.
실시예 17-7: PKS22
나프타자린 유도체인 적색 색소 크리스타자린은 원래 C. 크리스타텔라(C. cristatella)의 균체 배양에서 확인되었다. 본 발명자들은 게놈-시퀀싱된 C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera)에서 분리된 균체에서 크리스타자린 생산을 위한 최적의 배양 조건을 설정하고, PKS23이 C. 메타코랄리페라의 크리스타자린-유도 조건에서 고도로 상향조절된다는 관찰에 기초하여 PKS22 패밀리를 크리스타자린의 생합성으로 귀속시킨다.
실시예 17-8: PKS24
PKS24 패밀리는 C. 보레알리스(C. borealis), C. 마실렌타(C. macilenta), C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera) 및 S. 알피넘(S. alpinum)에 의해 공유되었다. C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera)의 PKS24 BGC는 단편화된 PKS24 유전자를 가진 다른 3종의 BGC와 약간 달랐다. PKS24 패밀리는 FgPKS14와 46-48% 단백질 서열 동일성을 보여주는, 푸사리움 그라미네아룸(Fusarium graminearum)에서 오르셀린산 생합성에 관여하는 FgPKS14와 함께 100% 부트스트랩에 의해 최대로 지지되는 단일계통 계통군을 형성하였다(도 5).
실시예 17-9: PKS30
PKS30 패밀리는 A. 니둘란스(A. nidulans)가 생산하는 나프토피론(naphthopyrone)인 분생포자 황색 색소(일명 YWA1)의 생합성을 담당하는 NR-PKS(wA)와 52-53%의 단백질 서열 동일성을 보여주었다. C. 보레알리스(C. borealis), C. 마실렌타(C. macilenta), C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera) 및 C. 운시알리스(C. uncialis)에 보존된 PKS30 BGC는 C. 운시알리스에서 색소가 검출되지는 않았지만 적색 자낭반(apothecial) 색소인 로도클라돈산(rhodocladonic acid)의 생합성에 관여할 가능성이 있다. C. 보레알리스(C. borealis), C. 마실렌타(C. macilenta) 및 C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera)라는 세 가지 적색 자낭반 색소 생성자가 공유하는 두 개의 GCF(PKS21 및 PKS30 패밀리)만 있었다. PKS21 및 PKS30 패밀리는 각각 NR-PKS 그룹 III 및 IV에 속하며, 이는 나프토피론-유래 화합물의 생합성에 관여하는 NR-PKS를 포함한다(도 5). PKS21 패밀리가 비루로퀴논(페난트렌퀴논)의 생합성에 잠정적으로 지정되었기 때문에, PKS30 패밀리는 세 개의 적색 자낭반 색소 생성자가 공유하는 마지막으로 남은 나프토피론 PKS이다. 이러한 추정적 지정은 PKS30 BGC에 있는 O-메틸트랜스퍼라제 및 2개의 모노옥시게나제와 같은 로도클라돈산의 생합성에 필요한 효소의 존재에 의해 강화되었다. 나프토피론 전구체로부터 로도클라돈산에 대한 제안된 생합성 경로는 하기 나타낸 바와 같다.
실시예 17-10: PkeA
C. 보레알리스(C. borealis) 및 C. 메타코랄리페라(C. metacorallifera)가 공유하는 BGC에는 A. 니둘란스(A. nidulans)에서 펠리논(felinone)의 생합성을 담당하는 PKeA(DbaI으로도 알려짐)에 대해 63-65% 단백질 서열 동일성을 나타내는 NR-PKS가 포함되었다. 본 발명자들은 PkeA/DbaI와 상동성인 NR-PKS에 대한 PKS 패밀리 번호를 지정하지 않았으며, 이는 그룹 VII에 속하는 다른 클라도니아속(Cladonia) NR-PKS(예를 들어, C. 마실렌타(C. macilenta)의 소르비실린 BGC)와 같이 클라도니아속(Cladonia)의 특정 계통에 특이적일 수 있다.
실시예 18: 지의류의 대사 잠재력
LFF의 진화적 관계를 조사하고 게놈-인코딩된 대사 잠재력을 비교하기 위해, 8개의 게놈을 사용하여 393개의 단일 복사본 이종 상동 유전자의 병합-기반 트리를 재구성하였으며, 본 발명자들은 2020년 9월 현재 NCBI 데이터베이스 및 JGI 웹사이트에서 사용할 수 있는 시퀀싱된 22개의 게놈 어셈블리를 가지고 있다. 시퀀싱된 종의 대다수(30개 중 26개)는 접시지의강(Lecanoromycetes)에 속하며, 4개의 LFF는 접시지의강 외부에 배치되었다: 아르토니아 라디아타(Arthonia radiata) (아르토니아강), 엔도카폰 푸실룸(Endocarpon pusillum) (유로티오미세테스), 스클레로포라 산귀니아(Sclerophora sanguinea) (코니오사이보마이세테스(Coniocybomycetes)) 및 비리도텔리움 비렌스(Viridothelium virens) (도티데오마이세테스(Dothideomycetes)). 알렉토리아 사르멘토사(Alectoria sarmentosa) 및 세트라도니아 리니어리스(Cetradonia linearis)의 게놈을 제외하고 BUSCO 분석에 의해 평가된 게놈의 완성도는 91% 이상이었다(도 1). 멸종 위기에 처한 지의류 세트라도니아 리니어리스(Ce. linearis) 및 스클레로포라 산귀니아(Sc. sanguinea)의 게놈은 20 Mbp보다 짧다(도 1). 이러한 두 종을 제외하고, 모든 게놈은 7,927-14,537개의 오픈 리딩 프레임(open reading frame)을 포함하는 26.3-56.1 Mbp 크기였다(도 1). 30종의 게놈-인코딩된 대사 가능성은 antiSMASH를 사용하여 BGC에 대한 게놈을 마이닝하여 조사되었다. 시퀀싱된 LFF의 대사 잠재력은 16-108의 BGC 수로 매우 가변적이었다(도 1); 파멜리아속(Parmelia sp.) KoLRI021559는 가장 큰 BGC 다양성을 보인 반면, 세트라도니아 리니어리스(Ce. linearis) 및 스클레로포라 산귀니아(Sc. sanguinea)의 게놈은 수축된 게놈 크기에 기인할 수 있는 가장 작은 BGC 세트를 보유하였다. 특히, 6개의 클라도니아속(Cladonia) 게놈은 52-65개의 BGC를 보유하고 유사한 수의 PKS를 인코딩한다; 평균 16개의 NR-PKS 및 20개의 환원형 PKS(R-PKS)(도 1). 6개의 클라도니아속(Cladonia spp.) 폴리케타이드 기원의 독특한 SM 세트를 생산하여(표 2 및 도 6 참조), 종간(inter-species) PKS 유전자 다양성을 연구하고 비교 분석을 통해 지의류의 피질 또는 수질 물질의 생합성을 담당하는 BGC를 식별하는 데 이상적이다.
하기 표 2에 30종의 게놈-염기서열 분석에서 보고된 지의류 물질을 정리하여 나타내었다.
|
종(speices)
|
지의류 물질(Lichen substances)
|
클라도니아 마실렌타 (Cladonia macilenta) |
바르바트산(barbatic acid), 디디믹산(didymic acid) |
클라도니아 메타코랄리페라 (Cladonia metacorallifera) |
탐놀산(thamnolic acid), 우스닉산(usnic acid), 디디믹산(didymic acid) |
클라도니아 보레알리스 (Cladonia borealis) |
바르바트산(barbatic acid), 우스닉산(usnic acid) |
클라도니아 운시알리스 (Cladonia uncialis) |
스쿼민산(squamatic acid), 우스닉산(usnic acid) |
클라도니아 랑기페리나 (Cladonia rangiferina) |
아트라노린(atranorin), 푸마프로토세트라르산(fumaprotocetraric acid) |
클라도니아 그레이이 (Cladonia grayi) |
그레이아닉산(grayanic acid), 푸마프로토세트라르산(fumaprotocetraric acid) |
세트라도니아 리니어리스 (Cetradonia linearis) |
- |
스테레오카울론 알피늄 (Stereocaulon alpinum) |
로바르산(lobaric acid), 아트라노린(atranorin), 스틱트산(stictic acid) |
레타리아 루피나 (Letharia lupina) |
아트라노린(atranorin), 노르스틱트산(norstictic acid) |
레타리아 컬럼비아나 (Letharia columbiana) |
아트라노린(atranorin)
|
슈데베르니아 푸르푸라시아 (Pseudevernia furfuracea) |
올리베토르산(olivetoric acid), 피소드산(physodic acid), 아트라노린(atranorin)/클로로아트라노린(chloroatranorin) |
알렉토리아 사르멘토사 (Alectoria sarmentosa) |
알렉토론산(alectoronic acid), 우스닉산(usnic acid) |
에버니아 프루나스트리 (Evernia prunastri) |
레카노르산(lecanoric acid)/에베른산(evernic acid), 피소드산(physodic acid), 아트라노린(atranorin)/클로로아트라노린(chloroatranorin), 살라진산(salazinic acid), 우스닉산(usnic acid) |
파멜리아속 KoRLI021559 (Parmelia sp. KoRLI021559) |
아트라노린(atranorin)/클로로아트라노린(chloroatranorin), 살라진산(salazinic acid) |
우스네아 플로리다 (Usnea florida) |
탐놀산(thamnolic acid), 노르스틱트산(norstictic acid)/살라진산(salazinic acid), 우스닉산(usnic acid) |
우스네아 하코넨시스 (Usnea hakonensis) |
우스닉산(usnic acid)
|
라말리나 인터미디아 (Ramalina intermedia) |
석화산(sekikaic acid), 아트라노린(atranorin), 우스닉산(usnic acid) |
라말리나 페루비아나 (Ramalina peruviana) |
석화산(sekikaic acid), 우스닉산(usnic acid) |
크산토리아 파리에티나 (Xanthoria parietina) |
파리에틴(parietin)/팔라시놀(fallacinol)/파리에틴산(parietinic acid)/에모딘(emodin) |
크산토리아 엘레간스 (Xanthoria elegans) |
파리에틴(parietin)
|
기알로레키아 플레이버베센스 (Gyalolechia flavorubescens) |
파리에틴(parietin)/팔라시놀(fallacinol)/프라길린(fragilin)/에모딘(emodin) |
로바리아 풀모나리아 (Lobaria pulmonaria) |
기로포르산(gyrophoric acid), 아트라노린(atranorin), 노르스틱산(norstictic acid)/살라진산(salazinic acid) |
엄빌리카리아 퍼스투라타 (Umbilicaria pustulata) |
레카노르산(lecanoric acid)/기로포르산(gyrophoric acid)/움빌리카르산(umbilicaric acid), 스카이린(skyrin) |
엄빌리카리아 히스패니카 (Umbilicaria hispanica) |
레카노르산(lecanoric acid)/기로포르산(gyrophoric acid)/움빌리카르산(umbilicaric acid), 스카이린(skyrin) |
엄빌리카리아 무엘렌베르기 (Umbilicaria muehlenbergii) |
레카노르산(lecanoric acid)/기로포르산(gyrophoric acid) |
| 시아노더멜라 아스테리스 (Cyanodermella asteris) |
스카이린(skyrin) |
| 스클레로포라 산귀니아 (Sclerophora sanguinea) |
- |
아르소니아 라디아타 (Arthonia radiata) |
검출되지 않음 |
| 비리도텔리움 비렌스 (Viridothelium virens) |
리헥산톤(lichexanthone)
|
엔도카폰 푸실룸 (Endocarpon pusillum) |
- |
실시예 19: 클라도니아속(
Cladonia
) PKS의 유전적 복제 제거(dereplication)
지의류 폴리케타이드, 즉 뎁사이드 및 뎁시돈 계열 화합물의 생합성에 관여하는 PKS 유전자를 검색하기 위해, 본 발명자들은 6개의 클라도니아속(Cladonia spp.)과 관련 남극 지의류 S. 알피넘(S. alpinum)에서 적어도 하나의 PKS를 보유하는 226개의 BGC에 초점을 맞추었으며, 이로부터 총 242개의 PKS가 확인되었다. 본 발명자들은 먼저 각 PKS의 보존된 케토신타제(KS) 도메인에 대한 클러스터링 분석을 수행하고, 상동성 관계를 암시하는 많은 클러스터를 식별하였다. 클로도니아 클로로피아(Cladonia chlorophaea) 종 복합체에 대한 이전 연구에서 설명된 12개의 PKS 패밀리도 클러스터링 분석에서 검출되었으며, 이는 PKS 유전자의 상당 부분이 클라도니아속에 보존되어 있음을 나타낸다. 그러나, 이들의 생성물에 대해서는 알려진 바가 거의 없다. 따라서, 본 발명자들은 BGC 다양성을 서열 유사성 네트워크에 매핑하는 Big-SCAPE 프로그램을 사용하여 BGC를 비-지의류화된 곰팡이의 알려진 화합물에 연결하였다. 네트워크 분석은 BGC의 세 가지 속성을 그래픽으로 요약하는 데 사용되었다: (i) 네트워크와 관련된 PKS 생성물 (번호), (ii) 네트워크를 통한 종 분포 (노드), 및 (iii) BGC 쌍 간의 유사성 정도 (가장자리)(도 2의 A). 유전자 클러스터 네트워크에 의해 묘사된 바와 같이, 적어도 하나의 PKS 유전자를 보유하는 BGC는 45개의 유전자 클러스터 패밀리(GCF)로 그룹화되었다. 8개의 GCF 및 7개의 종별 BGC(빨간색으로 표시됨)는 MIBiG 데이터베이스에 기탁된 이전에 특성화된 BGC와 결합되었다. 도 2의 B는 클라도니아속(Cladonia) PKS 패밀리와 연결된 시그니처 SM을 나타내는 클라도니아속 PKS 패밀리의 계통 분포를 요약하였다.
실시예 20: 추정되는 아트라노린 BGC의 식별
6개의 클라도니아속(Cladonia spp.) 및 S. 알피넘(S. alpinum)의 유전자 클러스터 네트워크 분석 결과 45개의 GCF 중 PKS23 패밀리가 아트라노린의 생합성에 관여할 수 있음이 밝혀졌으며, 이느 두 아트라노린 생성자인 C. 랑기페리나(C. rangiferina) 및 S. 알피넘(S. alpinum)이 공유하는 유일한 GCF이기 때문에 다양한 거대 지의류의 주요 피질 물질이다 (도 2). 아트라노린은 다른 뎁사이드 및 뎁시돈 계열 화합물에서 거의 발견되지 않는 3MOA 모이어티 내에 메톡시카르보닐기를 갖는 구조가 독특하다. C. 랑기페리나(C. rangiferina)의 PKS23 BGC에서 O-메틸트랜스퍼라제(OMT)를 사용한 BLAST 검색은 테레토닌 (메로테르페노이드)의 생합성 동안 아스페르길루스 테레우스(A. terreus)의 3,5-디메틸오르셀린산 모이어티 내에서 메톡시카르보닐 그룹의 형성을 매개하는 OMT인 Trt5(UniProtKB: Q0C8A3)와 37% 단백질 서열 동일성을 보여주었다 (표 3).
하기 표 3에 클라도니아 랑기페리나의 PKS23 생합성 유전자 클러스터 정보를 정리하여 나타내었다.
| ORFa
|
크기 (aa)
|
BLASTP 동족체(homolog)b |
동일성(%) |
보존된 도메인 (Conserved domain) |
E-값 |
| 06811 |
744 |
MFS 단당류 수송체 |
71 |
당 수송체 (Pfam00083) |
1e-105 |
| 06812 |
306 |
수송 제어 단백질(export control protein) CHS7-유사 |
68 |
키틴 합성 효소 III 촉매 소단위 (Pfam12271) |
1e-131 |
| 06813 |
495 |
TFIIH 복합체 p47 서브유닛 |
58 |
TFIIH 복합체 소단위 Ssl1-유사 (Pfam04056) |
1e-82 |
|
06814
|
549 |
MFS 다제 수송체 ( atr4 ) |
50 |
주요 촉진자 슈퍼패밀리 (Pfam07690) |
9e-31 |
|
06815
|
346 |
Trt5, O-메틸트랜스퍼라제( atr3 ) |
37 |
SAM-의존성 메틸트랜스퍼라제 (Pfam08241) |
1e-04 |
|
06816
|
508 |
시토크롬 P450 모노옥시게나제 ( atr2 ) |
43 |
시토크롬 P450 (Pfam00067) |
3e-57 |
|
06817
|
2,513 |
비환원성 폴리케타이드 합성 효소 ( atr1 ) |
44 |
SAT-KS-AT-PT-ACP-MT-TE |
|
| 06818 |
472 |
가상 단백질 |
33 |
인산전이효소 패밀리 (Pfam01636) |
4e-08 |
| 06819 |
2,377 |
환원성 폴리케타이드 합성 효소(R-PKS) |
40 |
KS-AT-DH-ER-KR-ACP |
|
| 06820 |
184 |
가상 단백질 |
40 |
미지 기능의 도메인, DUF3237 (Pfam11578) |
5e-22 |
| 06821 |
301 |
가상 단백질 |
34 |
미지 기능의 도메인, DUF2306 (Pfam10067) |
2e-09 |
| 06822 |
236 |
가상 단백질 |
28 |
검출되지 않음 |
|
| 06823 |
356 |
가상 단백질 |
32 |
검출되지 않음 |
|
| 06824 |
565 |
추정 디메틸아닐린 모노옥시게나제 |
41 |
플라빈-결합 모노옥시게나제-유사 (Pfam00743) |
3e-14 |
aORF: C. 랑기페리나(C. rangiferina) 오픈 리딩 프레임(open reading frame). 합성 핵심 유전자는 볼드체로 강조 표시됨.
bBLAST 검색의 경우, 4개의 아스페르길루스(Aspergillus) 종에 대한 NCBI 비중복 단백질 서열 데이터베이스가 사용됨: 아스페르길루스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus; taxid 746128), A. 니둘란스(A. nidulans; taxid 162425), A. 니제르(A. niger; taxid 5061) 및 A. 테레우스(A. terreus; taxid 33178).
아트라노린을 생산하는 다른 지의류에서 보존된 PKS23 BGC의 존재를 조사하기 위해, 본 발명자들은 GCF 내 및 전체에서 BGC의 보존 및 변이를 연구하는 데 유용한 CORASON 파이프라인을 채택하였다. C. 랑기페리나(C. rangiferina)의 PKS23 BGC에서 OMT의 단백질 서열을 30개의 게놈에서 검출된 총 1,527개의 BGC에 대해 질의하였다. 본 발명자들은 각각 상당한 히트(>33% 단백질 서열 동일성)를 나타내는 OMT를 포함하는 15개의 BGC를 확인하였다(도 3). 15개의 BGC 중 7개의 BGC에는 4개의 합성 핵심 유전자가 포함되어 있다: PKS23(atr1 합성), 시토크롬 P450 모노옥시게나제(atr2), OMT(atr3) 및 수송체(atr4)(도 3 및 표 3). 이러한 합성 BGC는 30개의 시퀀싱된 종 중에서 아트라노린을 생성하는 지의류에서만 독점적으로 발견되었다(표 2 참조).
실시예 21: 아트라노린 생합성 경로의 재구성
아스퍼질러스 니둘란스(A. nidulans) 및 아스퍼질러스 오리제(A. oryzae)와 같은 잘 확립된 이종 숙주에서 지의류 PKS 유전자의 이종 발현을 위한 힘든 노력에도 불구하고, 시도는 아직 알려지지 않은 이유로 성공하지 못하였다. 따라서, 본 발명자들은 식물 병원성 곰팡이 아스코키타 라비에이(Ascochyta rabiei) (도티데오마이세테스(Dothideomycetes))를 사용하여 새로운 이종 발현 시스템을 구축하기 시작하였다. 추정되는 아트라노린 BGC에서 세 가지 생합성 유전자의 화학적 구조 및 예측된 기능을 기반으로 아트라노린에 대한 폴리케타이드 경로를 구상할 수 있었다(도 4의 A). 개별 유전자의 역할을 조사하기 위해, 먼저 본 발명자들은 야생형 아스코키타 라비에이(As. rabiei)에서 솔라나피론의 생합성을 위한 BGC를 제거하여 상당한 대사산물 생산을 보이지 않는 "클린 숙주"를 생성하였다(도 4의 B). 그런 다음 S. 알피넘(S. alpinum) gDNA에서 복제된 atr1을 "클린 숙주"에 도입하였다. atr1의 발현 및 올바른 인트론 스플라이싱은 RT-PCR 분석에 의해 확인되었다(도 7 참조). LC-MS/MS 및 NMR 분석은 알려진 지의류 뎁사이드, 4-O-데메틸바르바트산(4-O-demethylbarbatic acid, 화합물 1)이 atr1을 발현하는 균주에 의해 생성되었음을 나타내었고 (도 4의 B 및 도 4의 C 참조), 이는 2개의 3MOA 단위가 Atr1 자체에 의해 뎁사이드로 결합되었음을 시사한다.
화합물 1로부터 아트라노린의 생합성은 2개의 3MOA 단위 각각 내에서 메틸기의 산화 및 카르복실기의 메틸화를 필요로 하기 때문에(도 4의 A), 본 발명자들은 atr2 및 atr3을 코딩하는 유전자를 atr1 발현 균주에 개별적으로 도입하였다. atr3과 atr1의 동시-발현은 화합물 1의 7'-O-메틸화된 유사체, 프로아트라노린 I(proatranorin I) (화합물 2)를 산출하였으며, 이는 아스페르길루스 테레우스(A. terreus)의 Trt5와 마찬가지로 Atr3이 실제로 카르복실 메틸라제임을 나타낸다(도 4의 B 및 도 4의 C 참조). LC-MS/MS 분석은 atr1과 atr2의 동시-발현으로 화합물 3 및 4가 생성되었으며, 각각 화합물 1의 하이드록실화 유사체(프로아트라노린 II) 및 추가로 산화된 알데히드(프로아트라노린 III)로 주석이 달린 것으로 나타났다 (도 4의 B 및 도 4의 C 참조). 분리된 프로아트라노린 III(화합물 4)에 대한 NMR 분석은 Atr2에 의한 산화가 화합물 1의 C-9에서 발생함을 확인하였다. 마지막으로 atr1, atr2 및 atr3의 세 가지 유전자를 발현하는 균주를 생성하였다. 아트라노린(화합물 5)의 생성은 MS/MS 스펙트럼을 지의류 데이터베이스에서 아트라노린의 참조 스펙트럼과 일치시켜 확인하였다. 이는 또한 각각 피질 및 수질 물질로서 아트라노린(화합물 5)과 로바릭산(lobaric acid)을 생산하는 시퀀싱된 S. 알피넘(S. alpinum)에 대한 실제 바우처 표본과 화학적 프로파일을 비교하여 확인되었다(도 4의 B 및 도 4의 C). 흥미롭게도, 화합물 6의 MS/MS 스펙트럼 매칭은 자연에서 S. alpinum에서 보고되지 않은 또 다른 지의류 뎁사이드인 베오미세스산(baeomycesic acid)임을 확인하였으며, 이는 Atr3이 이종 숙주에서 이완된 기질 특이성을 나타냄을 시사한다.
실시예 22: 지의류 물질의 생합성을 담당하는 PKS의 새로운 계통발생 분기군
곰팡이 NR-PKS와 아트라노린 생산을 담당하는 Atr1의 진화적 관계를 연구하기 위해, 본 발명자들은 6종의 클라도니아속(Cladonia spp.) 및 S. alpinum에서 발견된 103개의 NR-PKS와 비-지의류화된 곰팡이의 알려진 화합물에 연결된 82개의 NR-PKS의 보존된 KS 및 생성물 주형 (PT) 도메인의 연결된 시퀀스의 계통발생 트리를 재구성하였다. 곰팡이 NR-PKS는 이전의 계통발생학적 분석에서 지금까지 크게 8개 그룹(그룹 I-VIII)으로 분류되었다. 본 발명에서, 본 발명자들은 PKS23 패밀리 뿐만 아니라 PKS1 및 PKS2 패밀리를 포함하는 100% 부트스트랩이 지원하는 새로운 NR-PKS 그룹(그룹 IX)을 확인하였다(도 5). PKS1 패밀리는 이전에 C. 랑기페리나(C. rangiferina)에서 3MOA-유래 지의류 물질을 생합성하기 위해 제안되었다. 그룹 IX의 지의류 NR-PKS의 경우, S. alpinum의 PKS2를 제외한 모든 것은 폴리케타이드 중간체의 메틸화와 관련된 C-메틸트랜스퍼라제(cMT) 도메인을 보유하였다. 흥미롭게도, 새로 확인된 그룹 IX에는 비-지의류화된 곰팡이에서 이전에 특성화된 3개의 NR-PKS인 AscC, StbA 및 TmPKS12가 포함되었다(도 5). 이러한 NR-PKS에는 cMT 도메인이 없으며, 오르셀린산을 생성하는 것으로 알려져 있다. 또한, 그룹 IX에 대한 그룹 VIII 기저에는 버섯-형성 곰팡이(주름균강(Agaricomycetes)) 및 푸사리움 그라미네아룸(Fusarium graminearum)의 오르셀린산-유래 화합물과 연결된 여러 NR-PKS가 포함되어 있다는 점에 주목해야 하며(도 5 참조), 이는 PKS1 및 PKS2 패밀리가 PKS23 패밀리와 같이 메틸화된 형태의 오르셀린산에서 유래된 지의류 물질의 생합성에 관여할 가능성이 있음을 나타낸다.