NO120932B - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- NO120932B NO120932B NO154981A NO15498164A NO120932B NO 120932 B NO120932 B NO 120932B NO 154981 A NO154981 A NO 154981A NO 15498164 A NO15498164 A NO 15498164A NO 120932 B NO120932 B NO 120932B
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- antibiotic
- agar
- culture
- growth
- approx
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P1/00—Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
- C12P1/06—Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using actinomycetales
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/001—Amines; Imines
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/005—Amino acids other than alpha- or beta amino acids, e.g. gamma amino acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
- C12P13/02—Amides, e.g. chloramphenicol or polyamides; Imides or polyimides; Urethanes, i.e. compounds comprising N-C=O structural element or polyurethanes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
- C12R2001/465—Streptomyces
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
- C12R2001/465—Streptomyces
- C12R2001/56—Streptomyces lavendulae
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Virology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Mycology (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Compounds Of Unknown Constitution (AREA)
Description
Fremgangsmåte ved fremstilling av antibiotikum 235A
Foreliggende oppfinnelse angår en fremgangsmåte ved fremstilling av
et nytt antibiotikum kalt "Antibiotikum 235A" (eller alternativt "Antibiotikum MSD 235"), og komponentene 235L og 235S derav.
Oppdagelsen av de bemerkelsesverdige terapeutiske egenskaper av peni-cillin frembrakte stor interesse på dette felt, hvilket har ført til fremstillingen av mange andre verdifulle antibiotika så som streptomycin, bacitracin, chlor-amphenicol, tetracyclin, erythromycin, novobiocin og lignende. Generelt sett er slike antibiotika særlig virksomme mot visse gram-positive bakterier. Andre er aktive mot gram-negative bakterier. Virksomheten av disse individuelle antibiotika er imidlertid vanligvis begrenset til noen få stammer av patogene mikroorganismer, og arbeidet har fortsatt på dette felt i et forsøk på å finne andre antibiotika som er effektive mot andre patogene mikroorganismer.
Skjønt noen av disse antibiotika har vist seg å være verdifulle ved be-handling av forskjellige sykdommer, har det vist seg at visse stammer av patogene mikroorganismer utvikler resistens overfor et spesielt antibiotikum og, som følge derav, er antibiotikumet ikke lengre virksomt mot disse spesi-elle stammer.
Manglene ved de kjente antibiotika har følgelig stimulert forskningen til å finne andre antibiotika som vil være virksomme mot et større område av patogene mikroorganismer og spesielt å finne antibiotika som vil være virk-> somme mot resistente stammer av patogene mikroorganismer.
Ved foreliggende oppfinnelse skaffes et nytt og nyttig antibiotikum som er meget effektivt til å hindre veksten av patogene bakterier, særlig de gram-negative bakterier.
Det nye antibiotiske materiale fremstilles ifølge foreliggende oppfinnelse ved å dyrke under kontrollerte betingelser stammer av en ny Streptomyces - art. Denne art er blitt betegnet som Streptomyces avidinii. En kultur av denne er deponert ved the Northern Utilization Research Branch of the U.S.D.A. under nummer NRRL 3077, søkerens nr. MA 833.
De morfologiske og kulturelle egenskaper av den antibiotikum 235A-produserende stamme av Streptomyces er angitt i den efterfølgende tabell.
Morfologi for kultur MA- 833:
Sporebærerne er lange, monopodialt forgrenede, som danner åpne til kompakte spiraler med mer enn 10 sporer. Sporene er ovale, 0,9 til 1, 2 micron brede og 1, 2 til 1, 7 micron lange.
Vegetative hyfer - 0,9 micron brede.
(Czapek-Dox agar - 970x)
Beskrivelse av dyrkningsegenskaper av
organismen som fremstiller antibiotikum.
235A
( inkubasjon 20 dager ved 28°C)
Tomatpasta - havregryn - agar- plater
Kultur MA-833 oppviser rikelige, flate, fløyelsaktige, hvite dotter, grått (5fe) luftmycel, bakside brun.
Czapek agar- plater
Kultur MA-833 oppviser tynn, spredende, farveløs til kremfarvet vekst, hvit (a) rød (5cb) luftmycel, intet oppløselig pigment, bakside hvit (b).
Til sammenligning viser Streptomyces lavendulae tynn, spredende, farveløs til kremfarvet vekst, bomullshvit -> yinfarvet-lavendel luftmycel, og intet oppløselig pigment.
Glycerol- asparagin- agar- plater
Kultur MA-833 oppviste intet oppløselig pigment.
Syntetisk agar ( Glucose- asparagin- agar)- plater
Kultur MA-833 oppviser rikelige, flate, fløyelsaktige, hvite dotter, grått (5fe) luftmycel, intet oppløselig pigment, baksiden grå (2ih).
Streptomyces lavendulae oppviser gulaktig vekst, og hvit med laven-delaktig luftmycel.
Potetkile
Kultur MA-833 oppviser rikelig, brun vekst, grått (2dc) luftmycel og brunlig sort oppløselig pigment.
Til sammenligning oppviser Streptomyces lavendulae tynn, rynket, krem til gul vekst, intet luftmycel og sort oppløselig pigment.
Eggalbumin- agar
Kulturen MA-833: vegetativ vekst - tynn, spredende, farveløs Luftmycel - grå-hvitt
Intet oppløselig pigment
Gjærekstrakt- dextrose- agar
Kulturen MA-833:vegetativ vekst - god, flat, kremfarvet Luftmycel - grått (5fe)
Intet oppløselig pigment
Syntetisk stivelseagar
Kulturen MA-833:vegetativ vekst - god, flat, farveløs til kremfarvet Luftmycel - rødt (5ec)
Intet oppløselig pigment
Ca- malat- agar
Kulturen MA-833: Luftmycel - sparsomt
Sporene få - gråfarvet
Intet oppløselig pigment
Farve uforandret
Calcium utnyttes ikke
Bennett1 s agar
Kulturen MA-833: Luftmycel - god vekst
Sporer mange - grå-lavendelfarvet
Intet oppløselig pigment
Bakside brun
Gelatinstikk ( oppløsning)
Kultur MA-833 oppviser kremfarvet vekst, grått luftmycel, brunt opp-
løselig pigment og oppløser gelatinmediet sakte.
Til sammenligning oppviser Streptomyces lavendulae krem til brunlig overflatevekst, intet luftmycel eller hvitt luftmycel, brunt oppløselig pigment og oppløser gelatinmediet sakte.
Hydrogensulfid produseres av både MA-833 og Streptomyces lavendulae. Ved vekst på stivelse-agar-plater hydrolyseres stivelse av MA-833.
På nitrit-agar bevirker hverken MA-833 eller Streptomyces lavendulae noen merkbar reduksjon av nitrater til nitriter.
Ovenstående beskrivelse av mikroorganismen som frembringer "Antibiotikum 235A", er tilstrekkelig til å klassifisere kulturen MA-833 som en ny art av Streptomyces som er gitt navnet Streptomyces avidinii i lys av kultur-ens uvanlige natur og av den iakttagelse at et biotinbindende middel, Streptavidin, kan fremstilles.
Kulturen MA-833 ble isolert fra jord funnet i Spania.
Ved å henføre denne stamme til en artsklassifikasjon, er de nøkler som anvendes, de som er beskrevet i Bergey's "Manual of Determinative Bacteriology", syvende utgave, og i en artikkel i "Applied Microbiology" 5, 52-79
(1958) "A Guide for the Classification of Streptomycetes According to Selected Groups" av Pridham, Hesseltine og Benedict.
Detaljerte sammenligninger ble foretatt mellom den 235A antibiotikum-produserende kultur og de data som er publisert i Bergey's "Manual" eller "The Actinomycetes", vol 2, "Classification, Identification and Descriptions of Genera and Species", S.A. Waksman (1961) for beslektede kulturer, valgt fra nøklene.
MA-833 produserer rikelig mørkt oppløselig pigment ved dyrkning på organisk media så som tomatpasta-agar, eller potet og produserer likeledes hydrogensulfid.
MA-833 frembringer sporebærere som slutter i sporekjeder som tid-lig i utviklingen av kulturen er bølget, og som utvikles ved videre inkubering^til en oppkveilet tilstand, og ender i en fast kveil som ofte gir utseende av eni ball. Kulturen faller derfor ifølge klassifikasjonen til Pridham, Hesseltine og Benedict i seksjonen "Spira". Ifølge Pridham, Hesseltine og Benedict er en sekundær klassifikasjon "serie" basert på farven av det sporeproduserende mycel. MA-833 tilhører den grå serie.
Kulturen MA-833 kjennetegnes ved dannelsen av spiralsporede kjeder, ved produksjon av et oppløselig brunt pigment og ved produksjon av hydrogensulfid.
På et komplekst medium, f. eks. tomatpasta-agar, vokser kulturen sterkt, og produserer tydelig gråfarvede sporer uten overtone i rødt eller la^-vendel. Gråfarvede sporer produseres også på kjemisk definerte media.
Et forsøk ble gjort på å klassifisere kulturen gjennom nøkkelen til art-ene av slekten Streptomyces publisert i Bergey's "Manual of Determinative Bacteriology", syvende utgave, idet man tok i betraktning de gråfarvede sporer i komplekst medium. Ingen kjente arter ble funnet hvortil MA-833 kunne henføres.
De 9 oppløselig pigmentdannende arter i seksjonen Spira, grå serie, anført i publikasjonen av Pridham, Hesseltine og Benedict som er beskrevet
i
i detalj i "The Actinomycetes", vol 2, ble overveiet nærmere. MA-833 kunne skilles fra de 9 kulturer på basis av følgende egenskaper: Streptomyces aureus kjennetegnes ved mangelen på luftmycel i organisk agar og ved lys oransjefarvet vekst på dextrose-asparagin-agar, Streptomyces collinus gir intet oppløselig pigment på potet og et karminrødt oppløselig pigment på dex-. trose-asparagin-agar, Streptomyces cyaneus gir blåfarvet vekst på en rekke medier og viser svak hydrolyse av stivelse, Streptomyces filipiensis gir et gulfarvet oppløselig pigment på både Czapek agar og glycerol-asparagin-agar, Streptomyces fimbriatus viser rik vekst på Czapek agar, et rødlig oppløselig pigment på gelatin og er et plantepatogen, Streptomyces griseochromogenes mangler spiralsporekjeder og produserer oransjefarvet vekst på Czapek agar, Streptomyces griseoruber gir rødligoransje vekst på Czapek agar, rødligoran-sje vekst og et gult oppløselig pigment på stivelse-agar, Streptomyces hawaii-ensis viser bare svak oppløsning av gelatin og svak hydrolyse av stivelse, og Streptomyces olivochromogenes kjennetegnes ved et oppløselig pigment på dextrose-asparagin-agar og langsom oppløsning av gelatin.
Ingen art av mikroorganisme er kjent hvis vesentlige kjennetegn stem-mer tilstrekkelig overens med MA-833. I lys av den karakteristiske sporefarv-ning på tomatpasta-agar, er det bestemt at denne distinkte type skal anerkjen-nes som en ny art og gies en ny artsbetegnelse. Navnet Streptomyces avidinii er blitt gitt i betraktning av den uvanlige natur av kulturen og den første er-kjennelse av at det biotinbindende middel, Streptavidin, kan fremstilles av en mikroorganisme.
Det nye antibiotikum 235A fremstilt ifølge foreliggende oppfinnelse inne holder minst to materialer, ett som er betegnet som materiale 235S og som har relativt lav molekylvekt. Det annet av de to materialer er betegnet som 235Li og har en relativt høy molekylvekt. Materialet 235L som også er kalt "Streptavidin", er et proteinlignende materiale. Det nye antibiotikum 235A
er uvanlig ved sin aktivitet, idet dets individuelle bestanddeler ikke har noen antibiotisk virkning overfor pantogene mikroorganismer i og for seg, unntatt når de bedømmes på spesielt fremstilte media, men er virksomme mot patb-gene mikroorganismer når blandinger av de to bestanddeler prøves mot patogene mikroorganismer. Det nye antibiotikum 235A inneholder således et synergistisk par av materialer betegnet som 235S og 235L, eller Streptavidin.
Antibiotikum 235S virker som et relativt lavmolekylært materiale som kan skilles i minst tre bestanddeler, betegnet som 235S^, 235S£ og 2353^ved papirkromatografiske fremgangsmåter.
Ved således å anvende følgende oppløsningsmiddelsystemer for utvikling av kromatogrammene, bestemmes Rf verdiene av de tre individuelle bestanddeler under anvendelse av et preparat av antibiotikum 235S isolert fra fermenteringsbuljong ved ionebyttefremgangsmåter. Oppløsningsmiddelsystem I er n-butylalkohol mettet med vandig 0.25M dinatriumhydrogenfosfat puffer oppløsning (pH9, 3). Oppløsningsmiddelsystem II er n-butylalkohol mettet med 0, IN ammoniumhydroxydoppløsning. I begge tilfelle blir papiret først mettet med den vandige puffer eller den vandige ammoniakkoppløsning før påføring av prøven på papiret. Utviklingstiden er 6 til 17 timer. Resultatene er som følger.
Hver av de lavmolekylære bestanddeler av antibiotikum 235S kjennetegnes ved egenskapen av at de hindrer den intracellulære syntese av biotin av gram-negative mikroorganismer.
Antibiotikum 235S^er erholdt i krystallinsk form ved metoder beskrevet i det efterfølgende. Antibiotikum 235S.J gir reaksjoner som er karakteristisk for primære aminer og er oppløselig i vann, lavere alkanoler, så som metha-nol, ethanol, isopropanol, n-butanol, og i vandige acetonoppløsninger. Antibiotikum 235S.J kan krystalliseres fra alkaliske vandige oppløsninger ved tilsetning av aceton; Det krystallinske antibiotikum 235S^fremstilt på denne måte, har et smeltepunkt på ca. 217°C.
Antibiotikum 235S-J er en optisk aktiv forbindelse med en dreining på
'! ^ = +8,5° (C, 2 i 0, IN saltsyre) og
£sj ^ - +9, 5° (C, 2 i 3, 5N saltsyre).
En oppløsning av antibiotikum 235S^oppviser intet oberserverbart maksimum i det ultrafiolette absorpsjonsområdet.
Den infrarøde absorpsjon av en prøve krystallinsk antibiotikum 235S^suspendert i en mineralolje (NUJOL) ble tatt på et Baird Associates Model 12B infrarødt spectrofotometer under anvendelse av et natriumkloridprisme og viste en rekke karkateristiske topper, hvorav de mest betydningsfulle var ved følgende bølgelengder, uttrykt i mikron: 3,04, 3, 7 - 4, 8 og 6 - 6, 6. Det infrarøde spektrum er illustrert i figur 1. Det bør merkes at det infrarøde absorpsjons spektrum er et mål på absorpsjonen av antibiotikum 235S^i krystallinsk form fremstilt ved sakte tilsetning av aceton til en vandig ammoniak-kalsk oppløsning av antibiotikum 235S.J. Skjønt bare en krystallinsk form er erholdt, eksisterer mange materialer som polymorfe modifikasjoner i hvilket tilfelle det infrarøde absorpsjons spektrum kan oppvise mindre forskjeller mellom de forskjellige krystallinske former.
Antibiotikum 235S^inneholder elementene carbon, hydrogen, nitrogen og oxygen. Det følgende er en analyse av den elementære sammensetning erholdt på en prøve av krystallinsk 2353^:
Antibiotikum 235Sj er et primært amin som danner salter ved omsetning med syrer. Ved omsetning med sterke uorganiske syrer, såsom saltsyre, svovelsyre, hydrogenbromid og fosforsyre, dannes således de tilsvarende aminsalter. Ved omsetning med organiske syrer dannes likeledes saltet av antibiotikum 235S^og den organiske syre.
Den basiske natur av antibiotikum 235S^ er også en kjennetegnende
egenskap på den nye forbindelse. Når således en prøve av antibiotikum 235S^titreres potensiometrisk med 0, IN saltsyre, iakttas to basiske bindingsgrup-per. Den første binding inntrer ved en pH på ca. 5, 5. Den annen binding inntrer ved en pH på ca. 8, 5. Denne titrering indikerer en PH^^P^ ca* 5 og en molekylvekt på 373. ;Antibiotikum 235S^gir en negativ reaksjon ved Biuret-prøven. Ved ;hydrolyse med 6N saltsyre under tilbakeløp er hydrolyseproduktet en oi -aminosyre som har en Rf-verdi på 0,52 ved påpirkromatografi under anvendelse ;av et oppløsningsmiddelsystem bestående av 100 deler butanol, 12 deler is-eddik og 100 deler vann og ninhydrin-reagens for å bestemme aminosyre-flekken på kromatogrammet. Denne aminosyre har et smeltepunkt på 240 - 241°C. ;Antibiotikum 235S£ på den annen side, gir en positiv Biuret-prøve, hvilket indikerer nærvær av en amid-binding. Ved hydrolyse med 6N-saltsyre under tilbakeløp fåes en blanding av aminosyrer, hvorav en gir en Rf-verdi på 0,52 under anvendelse av papirkromatografisk bestemmelse som anvendt for hydrolyseproduktet av antibiotikum 235S^. ;En osmometer-bestemmelse av molekylvekten av antibiotikum 235S^gir en verdi på 322 som, tatt sammen med mikroanalysedata, indikerer en molekylformel som følger: C^H^gN^O^. I lys av det forhold at molekylvekten, bestemt ved osmometeret, er et mål på en sammenbindende egenskap av molekylet, antas den å være en mere pålitelig metode for bestemmelse av molekylvekten enn titreringen som er utsatt for feil i det tilfelle at små mengder av sterkt sure eller basiske forurensninger er tilstede. ;Antibiotisk materiale 235L, det annet av det synergistiske par av antibiotika innbefattet i antibiotikum 235A, har også vært fremstilt i krystallinsk form ved de nedenfor beskrevne metoder. En oppløsning av antibiotikum 235L oppviser et enkelt maksimum i det ultrafiolette absorpsjonsområdet ved 282 millimikron (E^%°47). Smelteområdet for antibiotikumet er fra 220 - 230°C under spaltning. ;Antibiotikum 235.L inneholder elementene carbon, hydrogen, nitrogen, svovel og oxygen. Det følgende er en analyse av elementær sammensetningen erholdt på en prøve krystallinsk antibiotikum 235L: ;
Carbohydratinnholdet av 235L-molekylet målt ved orcinolmetoden i-følge Weimer, H. E. og Moshim, J. R. i Arch. Biochem. & Biophys. 92, 97 ;(1952) er null. Når den modifiserte Molisch-test /"bische Z. , Mikrochemie 7, 33 (1929J7 anvendes, finnes 235Li-molekylet å inneholde mindre enn 1,0% hex-ose.<!>;Den relativt store molekylvekt av antibiotikum 235L indikeres av det forhold at det ikke er dialyserbart gjennom en cellofanmembran. Bestemmelsen av molekylvekten ved ultrasentrifugering indikerer en molekylvekt på ca. 60.000. ;\ Når det underkastes skive-elektroforese-fremgangsmåten på 7,5% polyacrylamid-gel i henhold til den metode som er beskrevet av Reisfeld et al. i Nature 195, 281 (1962), spaltes antibiotikum 235L, i bånd i et karakteristisk mønster. 7,5% polyacrylamid-gelen suspenderes i en kolonne med pH 8, 7 fosfatpuffer og 0,01 ml av en oppløsning av Streptavidin påføres på top-pen av kolonnen. Elektroforesen får foregå i en time ved 5 milliamperes og 100 volt. Behandlingen utføres også med avidin, et tidligere kjent protein av omtrent samme molekylvekt. Båndene som utvikles ved elektroforesebehand-lingen, farves med bromfenolblått. Båndene som fåes ved elektroforese av Antibiotikum 235L (Streptavidin) viser nærværet av større mengder av to proteiner og mindre mengder av to forskjellige proteiner som beveger seg intimt sammen mot anoden. Det mønster som fremkalles ved elektroforesen av avidin viser seks sterkt adskilte bånd av hvilke bare to mindre bestanddeler lig-ger i området for antibiotikum 235L. ;Antibiotikum 235L synes å være protein-lignende eller en polypeptid-type-forbiridelse da sur hydrolyse ved forhøyede temperaturen gir hydrolyse-produkter som gir en positiv prøve med ninhydrinreagenser, hvilket indikerer spaltning av amidbindinger. Antibiotikum 235L har bare en begrenset oppløse-lighet i vann på mindre enn ca. 1 mg/ml. Oppløseligheten i vann kan imidlertid økes opp til ca. 10 mg/ml ved tilsetning av forskjellige mengder natrium-klorid til oppløsningen. ;Antibiotikum 235A er virksom til å hindre veksten av gram-negative mikroorganismer. Skjønt de enkelte bestanddeler av antibiotikum 235A, d. v. s. antibiotikum 235S og 235L, når de prøves alene i konvensjonelle bedømmelses-systemer, er ineffektive til å hindre veksten av patogene mikroorganismer, virker kombinasjonen av de to som antibiotikum 235A synergistisk. Antibiotikum 235A, som en blanding av like deler av 235S og 235L, er således effek-, tiv til å hindre veksten av Salmonella typhosa 2866, Salmonella schottmuelleri MI, Escherichia coli W og Shigella sonnei 1832. - Antibiotikum 235A er et relativt ugiftig stoff. Ved anvendelse av mus som forsøksdyr kan så mye som 500 mg/kg av 235S-bestanddelen og 400 mg/ kg av 235L-bestanddelen tolereres når de injiseres intraperitonalt i musen uten noen som helst iakttagbare giftvirkninger. ;Det nye antibiotikum 235A, er nyttig som et middel for å hindre veksten av gram-negative patogene organismer. Det er også nyttig til å erholde rene kulturer av mikroorganismer hvor en påvirkelig organisme kan skilles fra en resistent. Når antibiotikum 235A spaltes i sine enkelte bestanddeler, 235S og 235L, kan de individuelle bestanddeler anvendes som hjelpemidler i søkingen etter andre lignende materialer. 235S virker således som en inhibi- tor på veksten av mikroorganismer i media som ikke inneholder eksogent biotin, men er fullstendig uvirksom for å hindre veksten av mikroorganismer i systemer inneholdende biotin-virksomme forbindelser. På denne måte kan antibiotikum 235S^ anvendes ved mikrobiologiske bestemmelsessystem-er for å prøve på nærvær av biotin eller biotin-virksomme materialer. ;Antibiotikum 235L virker på den annen side som et biotin-kompleks - dannende middel, og tillater således antibiotikum 235S å virke som en inhi-bitor på veksten av patogene mikroorganismer. Antibiotikum 235L er således et effektivt laboratoriemiddel som kan anvendes for å under søke; ukjente prøv-er av mikroorganismer på deres evne til å produsere antibiotika som virker hovedsakelig ved å inhibitere biotinsyntesen ved forskjellige patogene mikroorganismer. ;Den antibiotiske virksomhet av antibiotikum 235A bestemmes ved agar-diffusjonsmetoden eller rørfortynningsbestemmelsesmetoden, under anvendelse av Escherichia coli voksende i et naturlig medium. Bestemmelsen av 235A kompliseres av det forhold at det består av et materiale med høy molekylvekt som diffunderer sakte og materialer av lav molekylvekt som diffunderer hurtig. Som følge av dette måler de vanlige agar-diffusjonsbestemmel-ser bare mengden av den langsomt-diffunderende bestanddel som er tilstede, da den hurtig-diffunderende bestanddel ikke selv er aktiv ved vanlige bestem-melser. Når først de to typer av bestanddeler er adskilt, er det mulig å frem-stille bestemmelsesplater ved tilsetning av en tilstrekkelig mengde, 90 jf/ml, av forbindelsen av høy molekylvekt til prøven slik at dens diffusjon ikke vil begrense virksomheten av de små bestanddeler. Agar-diffusjonsmetoden ut-føres som følger: En kolbe inneholdende 150 ml av et bestemmelsesmedium bestående av kjøttekstrakt 0,3%, pepton 0,5%, gjærekstrakt 0,2%, agar 1,5% og vann opptil volumet, steriliseres i autoklav i tyve minutter ved 120UC under 1, 27 kg/cm^. Det flytende agar som holdes ved 45-50°C inokuleres med 5 ml av en over natten ved 37°C holdt næringsbuljongkultur av Escherichia coli W som er innstilt på en celle-tetthet av 60 på et Lumetron kolorimeter under anvendelse av et 600 millimikron filter. Fem ml av den podede agar pipetter-es så over i en standard 90 mm steril plast-petriskål og får lov til å størkne. Etter størkning kjøles skålen inntil anvendelse i løpet av de følgende 24 timer. ;Ved utførelse av prøven blir en standard 12, 7 mm papirskive gjennom-bløtt med antibiotikumoppløsningen og derpå banket tørr på papirhåndkle og anbrakt på overflaten av en Escherichia coli W-podet agarplate. Platene in- ^ kuberes ved 25° i 18 - 24 timer. Den antibiotiske aktivitet bestemmes så ved å-måle sonen av inhibéring rundt skiven i mm. ;Rørfortynningsbestemmelsen utføres som følger: En oppløsning fremstilles ved å tilsette 32 g "Difco" fenol-rødt bul-jongbase og 20 g dextrose til 1000 ml destillert vann. To ml av oppløsningen tilsettes til et reagensrør. Ni andre reagensrør inneholdende hver to ml av ovenstående oppløsning fortynnet med to ml vann fremstilles også. To ml av antibiotikumoppløsningen tilsettes til det første rør og blandes. To ml av den erholdte oppløsning overføres så til det annet rør og blandes. To ml fra dette annet rør overføres til det tredje rør og blandes. Denne fremgangsmåte gjentas til det tiende rør fra hvilket to ml av den dannede oppløsning fjernes og kastes. Til hvert av de ti rør tilsettes en dråpe "Lumetron 60" inokulat fremstilt som beskrevet ovenfor fra en 5 ml serologisk pipette. Rørene in-kuberes så i et vannbad ved 37° i ca. to timer inntil kontrollrøret (et med næringsmedia av halv styrke, men uten antibiotikum) har slått over fra sin opprindelige røde farve til fullstendig gult. 10-rørs serien undersøkes så og det rør med den høyeste fortynning som fremdeles er rødfarvet, betraktes å inneholde den minimale inhiberende konsentrasjon (MIC) av antibiotikumet. ;Nærværet av antibiotikum 235JL kan bestemmes ved rutine agar-diffu-sjonsmetoder under anvendelse av E. coli forutsatt at tilstrekkelig antibiotikum 235S er inkorporert i agaren. På grunn av den store molekylvekt og tilsvarende lave forandring ved fortynning, mangler denne metode presisjon. Ved regulær næringsagar har nærvær av 0,6 mg/ml antibiotikum 235S vist seg å gi tilfredsstillende resultater. ;Mengden av antibiotikum 235Li kan bestemmes noe mere nøyaktig ;ved anvendelse av standard rørfortynningsbestemmelse med E. coli under tilsetning av et overskudd av antibiotikum 235S (100 Jf<*>) til bestemmelses-mediet. Resultatet uttrykkes som ^f/ml som kreves for minimal inhiberings-konsentrasjon (MIC).
Antibiotikum 235S kan bestemmes kvantitativt på agar-diffusjonsplater under anvendelse av E. coli. Hvis næringsagar anvendes, er 90 f antibiotikum 235L per ml agar tilfredsstillende. Hvis et syntetisk næringsmedium anvendes, kreves intet antibiotikum 235L.
I sistnevnte tilfelle inhiberes virksomheten hvis biotin inkorporeres i agaren. Denne metode anvendes for å bekrefte produksjonen av antibiotika av 235-typen av kulturer erholdt ved undersøkelsesprogrammer.
Antibiotikum 235S kan også bestemmes ved rørfortynningsmetdder i nærvær av et overskudd av antibiotikum 235L.
Ved rørfortynningsbestemmelse er den minimale inhiberingskonsen-trasjon for antibiotikumbestanddelene 0,5 IT /ml for antibiotikum 235L, 25</"/ ml for antibiotikum 235S^ og 31 J^/ ml for antibiotikum 235S^.
Fremstillingen av det nye antibiotikum 235A utføres ved submers aerob fermentering av stammer av Streptomyces avidinii i passende vandige media. Vandige media så som de som er nyttige ved fremstilling av andre kjente antibiotika, er i almindelighet egnet for fremstilling av antibiotikum 235A. Slike media inneholder kilder for carbon og nitrogen som er assimilerbart av mikroorganismen og visse uorganiske salter som er viktige for den hurtige vekst av mikroorganismene. Dessuten inneholder fermenterings-mediet spor av metaller som er nødvendige for veksten av mikroorganismen som vanligvis er tilstede i komplekse kilder for carbon og nitrogen i mediet.
I almindelighet er carbohydrater, såsom sukkere, for eksempel dextrose, sucrose, dextrin og lignende, passende kilder for assimilerbart carbon. Den nøyaktige mengde av carbonkilde vil delvis avhenge av de andre bestanddeler i mediet, men det viser seg i almindelighet at en mengde carbohydrat mellom ca. 1 og 6 vektprocent beregnet på mediet, er tilfredsstillende. Disse car-bonkilder kan anvendes enkeltvis eller flere slike kilder kan forenes i mediet.
Forskjellige nitrogenkilder så som kasein-hydrolysater, aminosyrer, for eksempel asparagin, glycin, arginin, oppsluttet soyabønnemel, soyabønne-mel, drank og lignende, assimileres lett av de antibiotikum 235A-produser-ende mikroorganismer og kan anvendes i fermenteringsmedia for fremstilling av dette antibiotikum. I almindelighet er organiske kilder for nitrogen, særlig soyabønnemel, meget tilfredsstillende ved fremstillingen av det nye antibiotikum. De forskjellige organiske og uorganiske kilder for nitrogen kan anvendes alene eller i kombinasjon, i mengder fra ca. 0,2 til ca. 6 vektprocent beregnet på det vandige medium.
Det etterfølgende er eksempler på media som er egnet for dyrkning
av Streptomyces avidinii MA 833.
oppløst i vann. Oppløsningens pH innstilles på 7,0. oppløst i vann. Oppløsningens pH innstilles på 7,0.
Oppløsningens pH innstilles på 7,2.
Oppløsningens pH innstilles på 7,0. r
Etter avslutningen av fermenteringen utvinnes antibiotikumet fra fermenteringsvæsken ved å bringe den filtrerte buljong i kontakt med en sterkt sur kationbytteharpiks. Et typisk eksempel på kationbytteharpiksen som anvendes ved utvinning av antibiotikum 235A, er "DOWEX 50 X 2" som inneholder en styren-divinyl-benzen copolymer med sulfonsyregrupper sub-stituert i hele harpiksmassen. Ved å bringe fermenteringsbuljongen i kontakt med kationbytteharpiksen, absorberes hovedmengden av antibiotikum 235S (bestanddelen med lav molekylvekt) på harpiksen sammen med en mindre mengde antibiotikum 235L. Hovedmengden av antibiotikum 235L passerer i-gjennem harpiksen og utvinnes fra avløpet ved fremgangsmåter som er beskrevet nedenfor.
Avløpet fra harpiksen inneholder antibiotikum 235L, som utvinnes i
rå form ved felning med ammoniumsulfat. Det rå antibiotikum 235L renses videre ved fornyet felning fra vandig oppløsning under anvendelse av enten aceton eller ethanol som felningsmiddel. Det rå precipitat kan også alternativt renses ved dialyse av en vandig oppløsning av det rå materiale etterfulgt av felning av det delvis rensede antibiotikum 235L fra dialyseresten under anvendelse av aceton som felningsmidlet. Antibiotikum 235L isoleres også fra dialyseresiduet ved kromatografi over en "Sephadex G25"-kolonne for å fjerne gjenværende salt og omkromatograferes så under anvendelse av diethylaminoethylcellulose som adsorberingsmiddel. Antibiotikum 235L utvinnes fra avløpet fra diethylamino-ethylcellulose-kolonnen ved delvis fordampning og avkjøling for å krystallisere det antibiotiske materiale.
Antibiotikum 235S utvinnes fra ionebytteharpiks-adsorbatet ved eluef-ing av harpiksen med fortynnet ammoniakk. Ammoniakkeluatet fra harpiksen inneholdende rått antibiotikum 235S blandet med en mindre mengde antibiotikum 235L, renses videre ifølge en fremgangsmåte ved fornyet adsorpsjon på "DOWEX W 50 X"-ionebytteharpiks. Ved eluering av det readsorberte antibiotikum 235S fra harpiksen med fortynnet ammoniakk, fåes krystallinsk antibiotikum 235S ved å konsentrere utvalgte fraksjoner og krystallisere fra vann/ acetonblandinger ved alkalisk pH.
Alternativt kan "DOWEX W 50 X"-eluatet inneholdende antibiotikum 235S renses videre ved ekstraksjon med butylalkohol og readsorpsjon av ekstraktet på "DOWEX W 50 X"-harpiks. Krystallinsk materiale fåes så fra de utvalgte fraksjoner av eluatet ved konsentrasjon.
EKSEMPEL 1
Et fermenteringsmedium med følgende sammensetning ble fremstilt
og pH innstilt på 7,0:
oppløst i vann.
Ca. 3. 785 1 av et vandig medium av ovenstående sammensetning ble sterilisert og inokulert med et negativt inokulat av en kultur av Streptomyces avidinii MA 833. Det negative inokulat ble fremstilt på følgende måte. Et sterilt vandig medium ble inokulert med det lyofiliserte innhold av et rør med levedyktig Streptomyces avidiniii MA 833, idet sammensetningen av mediet bestod av 1% gjærekstrakt og 1% dextrose i vann. Agar skråkulturer ble fremstilt fra denne suspensjon av mikroorganismer og etter utvikling i fire til fem dager ved 28°C ble de utviklede sporer skrapet over i en suspensjon av sterilt vandig medium bestående av 0, 1% gjærekstrakt, 1% dextrose, 0,5% "Bacto Pepton" og 0,3% kjøttekstrakt. Den således fremstilte sporesuspen-sjon ble så tilsatt til en 2-liter Erlenmeyer-kolbe med ribber, som inneholdt 500 ml sterilt vandig medium Nr. 2. Det inokulerte medium ble så inkubert ved 28°C på en roterende rystemaskin i ca. 24 timer, i løpet av hvilken tid en sterk vegetativ vekst av kulturen fant sted.
Den vegetative kultur fremstilt på ovenstående vis ble så tilsatt til
et fermenteringskar inneholdende ca. 114 til 151 liter av et sterilt medium av sammensetning angitt som medium Nr. 2 ovenfor. Det inokulerte medium ble så inkubert ved 28°C i ca. 48 timer i løpet av hvilken tid mediet ble om-rørt kraftig og luftet for å få en sterk vegetativ vekst av kulturen.
Ca. 8,4% av den vegetative kultur fremstilt på denne måte ble tilsatt til 354 1 av et sterilt medium med sammensetning som angitt som medium Nr. 2 ovenfor, og det inokulerte medium ble inkubert ved 28°C i ca. 36 timer i løpet av hvilken tid mediet ble omrørt og luftet kraftig.
Antibiotikum-innholdet av fermenteringsbrygget ble fulgt ved agar-diffusjonsbestemmelser eller rørfortynningsbestemmelsesmetoden under anvendelse av organismen Escherichia coli som beskrevet ovenfor. Når anti-biotikumaktiviteten nådde en topp i løpet av ca. 24 til ca. 60 timer, ble fermenteringen avsluttet og fermenteringsbrygget tatt ut av fermenteringskaret.
Ca. 454 liter av fermenteringsbrygget fremstilt på den ovenfor beskrevne måte, ble filtrert og cellene kastet. Filtratet inneholdende det anti-iiotisk aktive materiale, ble innstilt på pH 5 og perkolert gjennom en kolonne inneholdende 8 liter "DOWEX W 50 X" i natrium-cyklusen ved en hastighet på ca. 800 ml/min. Etter adsorpsjon av det antibiotiske materiale på harpiksen, ble harpiksen vasket med vann og eluert under anvendelse av 0, 5N ammoniumhydroxyd ved en elueringshastighet på 250 ml/min. Hovedmengden av det antibiotisk aktive materiale ble samlet i ca. fire 2-liter fraksjoner eluat inneholdende en større mengde antibiotikum 235S og en mindre mengde antibiotikum 235L.
Den annen og tredje fraksjon ble forenet og pH innstilt på 7, 5, og derpå inndampet til et volum på ca. 440 ml. Ca. 90 ml. av dette "DOWEX
W 50 X"-konsentrerte eluat ble dialysert i en cellofanpose under anvendelse av tre 1-liter volum vann som dialysevæske. Dialysatene ble så forenet og inndampet til ca. 80 ml. Hverken dialysatkonsentratet eller dialyseresiduet hadde noen antibiotisk aktivitet målt mot Escherichia coli ved rør-fortynningsbestemmelsen, men ved gjenforening av residuet og dialysatet hadde den erholdte kombinasjon antibiotisk virkning ved samme Escherichia coli-rørfortynningsbestemmelse.
EKSEMPEL 2
Seksti ml "DOWEX W 50X"-konsentrert eluat, fremstilt som beskrevet i eksempel 1, ble kromatografert på en 1-liter "Sephadex 25"-kolonne, idet utviklingsmidlet for kromatogrammet var destillert vann. De første 360 ml avløpsvæske ble kastet, hvoretter 27 fraksjoner hver på 25 ml ble oppsamlet. Ingen antibiotisk virkning fantes i noen av de oppsamlede fraksjoner bestemt ved Escherichia coli-agar-plate-bestemmelse.
To eluatkonsentrater ble fremstilt ved å forene fraksjoner 1-9, og fraksjoner 17-20. Fraksjoner 1-9 ble konsentrert til 20 ml og inneholdt konsentrert oppløsning av antibiotikum 235L som igjen ble utvunnet ved lyofilisering. Fraksjonene 17-20 ble inndampet til 10 ml og det delvis rensede antibiotikum 235S ble utvunnet i fast form ved lyofilisering av konsentratet.
Ovenstående kromatografiske forsøk ble gjentatt under anvendelse av 60 ml av samme "DOWEX W 50 X"-konsentrerte eluat som utgangsmateriale. Eluatfraksjoner 8 og 9 fra kromatograferingskolonnen ble forenet og konsentrert. Ved henstand krystalliserte antibiotikum 235L fra oppløsningen og ble utvunnet ved filtrering.
EKSEMPEL 3
3761 liter filtrert fermenteringsbrygg fremstilt som beskrevet i eksempel 1 ble ført gjennom "DOWEX W 50X"-harpiks og harpiks-adsorbatet eluert med 0, 5N ammoniumhydroxydoppløsning. En 2, 6 liter fraksjon av eluatet (l/l6 av totalvolumet) ble innstilt på pH 9 under anvendelse av vandig
hatriumhydroxydoppløsning og ekstrahert med tre 6-liter porsjoner n-butylalkohol. n-butylalkohol-ekstraktet ble fortynnet med vann og inndampet i va-kuum til et volum på 2800 ml. En liter av n-butylalkohol-konsentratet ble inndampet videre til et volum på 40 ml og kromatografert over en 2-?liter "Sephadex 25" (dextran) kromatograferingskolonne. Avløpene fra kolonnen
med høyt innhold av faste stoffer ble innstilt på pH 3,8 og adsorbert på 50 ml "DOWEX W 50 X 2"-harpiks med en hastighet på 1 ml/min. Det erholdte har-piksadsorbat ble eluert med 0,2N ammoniumhydroxydoppløsning og ammoni)-akkalske eluatfraksjoner på 25 ml i volum ble oppsamlet. Fraksjoner nr. 11
og 12 som utgjorde tilsammen 50 ml, ble inndampet til ca. halvt volum og fortynnet med 96 ml aceton for å bevirke krystallisasjon. Krystallene erholdt på denne måte, var antibiotikum 235S^i praktisk talt ren form.
Harpikseluatfraksjoner nr. 6-10 ble forenet og konsentrert til ca.
20 ml, og 120 ml aceton tilsatt for å bevirke krystallisasjon. De dannede
1, 2 g krystaller viste seg å bestå av en blanding av antibiotikum 235S^og antibiotikum 235S^ i et forhold på ca. 9:1.
EKSEMPEL 4
Ca. 3785 liter filtrert fermenteringsbrygg fremstilt ved fremgangs-
måte beskrevet i eksempel 1, ble ført gjennom ca. 80 liter "DOWEX W 50 X 2"-harpiks. Avløpet fra harpikskolonneadsorpsjonen ble behandlet med ammoniumsulfat i en mengde av 500 g ammonium sulfat per liter avløp og det dannede bunnfall skilt fra ved filtrering. Bunnfallet ble oppløst i ca. 34 liter vann og dialysert i cellofanpose i ca. 24 timer. Residuet fra dialysen ble fortynnet med 1, 5 volum aceton for å felle et rått materiale inneholdende antibiotikum 235L. Det rå bunnfall ble oppløst i vann, gjenutfelt med ethylalkohol og tørret.
Ca. 50 g av det faste materiale fremstilt på denne måte, ble suspendert i|
vann, sentrifugert og den ovenstående oppløsning ble kromatografert over 5,5
liter "Sephadex 25" under anvendelse av destillert vann som fremkallings-
middel. Ca. 1550 ml oppløsning inneholdende praktisk talt rent antibiotikum 235L ble oppsamlet og frysetørret. Et gram av de faste stoffer fremstilt på
denne måte, ble oppløst i 25 ml vann og den vandige oppløsning ført igjennom 15 ml diethylaminoethylcellulose. Det forenede avløp ble konsentrert til ca. 15 ml og avkjølt hvorpå praktisk talt rene krystaller av antibiotikum 235L med et smeltepunkt på 225-229°C ble erholdt.
Claims (2)
1. Fremgangsmåte ved fremstilling av Antibiotikum 235A og komponen- .tene 235L og 235S derav,karakterisert vedat en mikroorganisme av arten Streptomyces avidinii dyrkes i et vandig næringsmedium og antibiotikumet utvinnes fra dette og eventuelt skilles i sine komponenter 235L og 235S.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1,karakterisert vedat der som mikroorganisme anvendes Streptomyces avidinii NRRL. 3077.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US31347763A | 1963-10-03 | 1963-10-03 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| NO120932B true NO120932B (no) | 1970-12-28 |
Family
ID=23215844
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| NO154981A NO120932B (no) | 1963-10-03 | 1964-10-02 |
Country Status (12)
| Country | Link |
|---|---|
| BE (1) | BE653769A (no) |
| BR (1) | BR6463065D0 (no) |
| CH (1) | CH461707A (no) |
| DE (1) | DE1232315B (no) |
| DK (1) | DK130354B (no) |
| ES (1) | ES304651A1 (no) |
| FR (2) | FR1604510A (no) |
| GB (1) | GB1077999A (no) |
| IL (1) | IL22095A (no) |
| NL (1) | NL151435B (no) |
| NO (1) | NO120932B (no) |
| SE (1) | SE310634B (no) |
-
1964
- 1964-09-17 IL IL22095A patent/IL22095A/xx unknown
- 1964-09-24 GB GB39011/64A patent/GB1077999A/en not_active Expired
- 1964-09-25 DE DEM62568A patent/DE1232315B/de active Pending
- 1964-09-30 BR BR163065/64A patent/BR6463065D0/pt unknown
- 1964-09-30 BE BE653769D patent/BE653769A/xx unknown
- 1964-10-01 NL NL646411441A patent/NL151435B/xx unknown
- 1964-10-02 NO NO154981A patent/NO120932B/no unknown
- 1964-10-02 SE SE11883/64A patent/SE310634B/xx unknown
- 1964-10-02 FR FR1604510D patent/FR1604510A/fr not_active Expired
- 1964-10-02 CH CH1282664A patent/CH461707A/de unknown
- 1964-10-03 ES ES0304651A patent/ES304651A1/es not_active Expired
- 1964-10-03 DK DK489264AA patent/DK130354B/da unknown
- 1964-12-31 FR FR651A patent/FR4116M/fr not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE1232315B (de) | 1967-01-12 |
| NL6411441A (no) | 1965-04-05 |
| DK130354C (no) | 1975-07-07 |
| BR6463065D0 (pt) | 1973-08-07 |
| NL151435B (nl) | 1976-11-15 |
| DK130354B (da) | 1975-02-10 |
| FR4116M (no) | 1966-04-25 |
| CH461707A (de) | 1968-08-31 |
| FR1604510A (en) | 1971-11-29 |
| SE310634B (no) | 1969-05-12 |
| GB1077999A (en) | 1967-08-02 |
| IL22095A (en) | 1968-02-26 |
| ES304651A1 (es) | 1965-03-01 |
| BE653769A (no) | 1965-03-30 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Nomoto et al. | A proteolytic enzyme of Streptomyces griseus: I. Purification of a protease of Streptomyces griseus | |
| NO118145B (no) | ||
| US3691279A (en) | Antibiotic nebramycin and preparation thereof | |
| Rivett et al. | Streptolin, a New Antibiotic from a Species of Streptomyces1 | |
| MIYAIRI et al. | STUDIES ON THIOPEPTIN ANTIBIOTICS I. CHARACTERISTICS OF THIOPEPTIN B | |
| US3224945A (en) | Process for the production of ergot alkaloids | |
| DE2340005A1 (de) | Beta-lactamaseinhibitoren und verfahren zu ihrer herstellung | |
| US3674774A (en) | Pyrazomycin and process for production thereof | |
| US4870172A (en) | Bisucaberin | |
| US3853709A (en) | Process for preparing nebramycin factors ii and vii | |
| US3334022A (en) | Neocarzinostatin produced by streptomyces carzinost aticus var. neocarzinostaticus | |
| US3018220A (en) | Hygromycin b, its production and treatment of intestinal parasites | |
| US3851054A (en) | Antibiotic 235a and process for preparation | |
| US3265732A (en) | Novel 5alpha, 6-anhydrotetracyclines | |
| NO116283B (no) | ||
| US3154475A (en) | Process for the production of pristinamycin | |
| US3089827A (en) | Process for preparing zygomycins | |
| US2914525A (en) | Nucleocidin and the process of obtaining the same | |
| US3082153A (en) | Antibiotic siomycin and a method of producing same | |
| US3201323A (en) | Production of glutamic acid | |
| US3868450A (en) | Process for producing an anti-virus substance for plants | |
| US3839558A (en) | Antibiotics a28695a and a28695b and a process for production thereof | |
| US3142618A (en) | Antifungal antibiotic humidin and process of preparation | |
| US3859170A (en) | Method of producing antimicrobial agent m-141 and its salts | |
| US3032470A (en) | Polyaminohygrostreptin and production thereof |