PL163719B1 - Sposób wytwarzania ksylitu PL PL PL PL - Google Patents

Sposób wytwarzania ksylitu PL PL PL PL

Info

Publication number
PL163719B1
PL163719B1 PL90283325A PL28332590A PL163719B1 PL 163719 B1 PL163719 B1 PL 163719B1 PL 90283325 A PL90283325 A PL 90283325A PL 28332590 A PL28332590 A PL 28332590A PL 163719 B1 PL163719 B1 PL 163719B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
xylitol
fermentation
xylose
solution
carried out
Prior art date
Application number
PL90283325A
Other languages
English (en)
Inventor
Heikki O Heikkila
Juha V Nurmi
Leena Rahkila
Marja Toyryla
Original Assignee
Cultor Oy
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=23147762&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=PL163719(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Cultor Oy filed Critical Cultor Oy
Publication of PL163719B1 publication Critical patent/PL163719B1/pl

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/18—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic polyhydric
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145—Fungi isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/165—Yeast isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/72—Candida
    • C12R2001/74—Candida tropicalis
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/80—Elimination or reduction of contamination by undersired ferments, e.g. aseptic cultivation
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/803—Physical recovery methods, e.g. chromatography, grinding
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215—Microorganisms
    • Y10S435/911—Microorganisms using fungi
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215—Microorganisms
    • Y10S435/911—Microorganisms using fungi
    • Y10S435/921—Candida
    • Y10S435/924—Candida tropicalis

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Seasonings (AREA)
  • Nitrogen Condensed Heterocyclic Rings (AREA)
  • Luminescent Compositions (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania ksylitu z wodnego roztworu ksylozy, znamienny tym, ze wodny roztwór ksylozy poddaje sie fermentacji przy uzyciu szczepu drozdzy z rodzaju Candida lub Debaryomyces, zdolnego do przeprowadzenia wolnej ksylozy w ksylit i wolnych heksoz obecnych w tym wodnym roztworze w etanol, przy czym fermentacje prowadzi sie przez okres czasu wystarczajacy dla otrzymania roztworu pofermentacyjnego zawierajacego ksylit, i wyodrebnia sie frakcje zawierajaca ksylit lub frakcje zawierajace ksylit droga rozdzielenia chromatograficznego tego roztworu pofermentacyjnego. RZECZPOSPOLITA POLSKA Urzad Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej P L 163719 B 1 PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania ksylitu.
Pięciowodorotlenowy alkohol ksylit jest alkoholem cukrowym otrzymywanym przez redukcję ksylozy /C5H10O5/. Ksylit jest pięciowęglowym alkoholem występującym w przyrodzie, przy czym jego słodycz i wartość kaloryczna /4 kcal/g/ są takie same jak analogiczne parametry cukru. Ksylit znajduje się w niewielkiej ilości w wielu owocach i warzywach, a ponadto powstaje w organizmie ludzkim w czasie zwykłego procesu przemiany materii. Znane są pewne działania ksylitu, użyteczne w medycynie, stomatologii i technice, które czynią zeń interesującą namiastkę cukru.
Ksylit ulega przemianie niezależnie od insuliny, toteż można go bezpiecznie podawać cukrzykom nie uzależnionym od insuliny. Ponadto stwierdzono, że ksylit opóźnia opróżnianie się żołądka i być może zmniejsza łaknienie, co może odgrywać ważną rolę w dietach odchudzających. . ...
Ksylit nie powoduje próchnicy, a być może działa nawet hamująco na próchnicę. W jamie ustnej sacharoza i inne węglowodany ulegają fermentacji pod działaniem Streptococcus mutant i innych bakterii, wytwarzając kwas, który obniża wartość pH, powoduje demineralizację emalii zębów i prowadzi do ubytków próchniczych. S. mutant i inne bakterie nie powodują jednak fermentacji ksylitu, a więc nie powstają z niego produkty fermentacji, które przyczyniałyby się do psucia się zębów. Prowadzone badania przyniosły nawet wyniki sugerujące, iż ksylit aktywnie hamuje tworzenie się nowych ognisk próchniczych, a ponadto może odwracać istniejące ubytki dzięki wywoływaniu ponownej mineralizacji.
Ksylit po spożyciu nie daje nieprzyjemnego posmaku właściwego innym słodzikom, a ze względu na dużą wartość energii niezbędnej dla rozpuszczenia 1 g ksylitu, powoduje w jamie ustniej przyjemne uczucie chłodu. .
Mimo tych zalet ksylitu jego zastosowanie na dużą skalę jest ograniczone stosunkowo wysokim kosztem tej substancji, wynikającym z trudności występujących przy jego produkcji na skalę przemysłową. Ksylit wytwarza się zazwyczaj z materiałów zawierających ksylan, a zwłaszcza hydrolizatów hemicelulozy. Hemicelulozy to duża grupa dobrze poznanych polisacharydów znajdujących się w ścianach komórkowych wszystkich roślin lądowych i wodnych. Hemicelulozy są utworzone z reszt cukrowych, między innymi D-ksylozy, D-mannozy, D-glukozy, D-galaktozy i L-arabinozy.
Zgodnie ze znanymi sposobami ksylit wytwarzano z materiału zawierającego ksylan drogą hydrolizy tego materiału, w wyniku której otrzymywano mieszaninę monosacharydów, w tym ksylozę. Ksylozę przeprowadzano w ksylit, na ogół w obecności katalizatora niklowego, takiego jak nikiel Raney’a. Sposoby wytwarzania ksylozy i/lub ksylitu z materiału zawierającego ksylan ujawniono między innymi w opisach patentowych Stanów Zjednoczonych Ameryki r 3 784 408, 4 066 711, 4 075 405, 4 008 285 i 3 586 537. Są to skomplikowane, wieloetapowe procesy, kosztowne i nieefektywne. Podstawowym problemem jest w tych znanych sposobach skuteczne i pełne oddzielenie ksylozy i/lub ksylitu od polioli i innych ubocznych produktów hydrolizy dla otrzymania ksylitu o dostatecznej czystości. W celu przezwyciężenia tego problemu zastosowano wieloetapowe operacje rozdzielania, w tym filtrację i rozdzielanie chromatograficzne. Ponadto stosowano inne metody oczyszczania, takie jak wytrącanie lignin kwasami, co z reguły przedłuża czas procesu i zwiększa koszt produkcji ksylitu na skalę przemysłową.
Wiadomo, że pewne drożdże wytwarzają reduktazę ksylozową, enzym katalizujący redukcję D-ksylozy do ksylitu, co stanowi pierwszy etap metabolizmu D-ksylozy. Badania w skali laboratoryjnej polegały na wykorzystywaniu komórek drożdży zdolnych do wywoływania
163 719 fermentacji D-ksylozy albo wolnych od komórek ekstraktów zawierających reduktazę ksylozową w procesie wytwarzania ksylitu z bogatego w D-ksylozę materiału wyjściowego. Informacje na ten temat znaleźć można w następujących pracach: Gong i inni, Quantitative Production of Xylitol from D-Xylose by a High Xylitol Producing Yeast Mutant Candida Tropicalis HXP2, Biotechnology Letters, Vol. 3, No.3, 125-130 /1981/; Kitpreechavanich V. i inni, Conversion of D-Hylose Into Xylitol by Xylose Reductase From Candida Pelliculosa Coupled with the Oxidoreductase System of Methanogen Strain HU, Biotechnology Letters, Vol. 10, 651-656 /1984/; McCracken i Gong, Fermentation of Cellulose and Hemicellulose Carbohydrates by Thermotolerant Yeasts, Biotechnology and Bioengineering Symp., No. 12, str. 91-102 /John Wiley and Sons, 1982/. .
Jakkolwiek istnieją szczepy drożdży zdolne do wytwarzania dużych ilości ksylitu w procesie fermentacji D-ksylozy, nie ujawniono nigdy pełnego sposobu wytwarzania ksylitu z przykładowo, hydrolizatów hemicelulozy z biomasy, zawierających obok ksylozy heksozy i inne zanieczyszczenia, nadającego się do stosowania w skali przemysłowej.
Nieoczekiwanie okazało się, że czysty ksylit można wytwarzać z dużą wydajnością z zawierającego ksylozę materiału wyjściowego dzięki zastosowaniu sposobu według wynalazku.
Zgodnie z tym sposobem zasadniczo czysty ksylit wytwarza się z wodnego roztworu ksylozy, który może także zawierać heksozy, takie jak glukoza, a także inne zanieczyszczenia. Roztwór ten poddaje się fermentacji przy użyciu szczepu drożdży zdolnego do przemiany zasadniczo całej ilości wolnej ksylozy w ksylit oraz większości wolnych heksoz w etanol. Produkt pofermentacyjny oczyszcza się przez usunięcie komórek drożdży z roztworu drogą filtracji, wirowania lub inną odpowiednią techniką, etanol zaś usuwa się drogą odparowania lub destylacji. W wyniku rozdzielenia otrzymuje się bogatą w ksylit frakcję lub bogate w ksylit frakcje, z których można wykrystalizować czysty ksylit. W pewnych przypadkach prowadzi się obróbkę wstępną wodnego roztworu ksylozy. Obróbka taka może obejmować dodatkową hydrolizę i/lub etapy rozdzielania dla usunięcia składników, które mogą być toksyczne i/lub szkodliwe wobec drożdży stosowanych dla przeprowadzenia ksylozy w ksylit, a także innych zanieczyszczeń, które mogłyby oddziaływać szkodliwe w etapie fermentacji i przy rozdzielaniu. Taka obróbka wstępna może wykorzystywać chromatograficzne techniki rozdzielania.
Dzięki sposobowi według wynalazku unika się stosowania czasochłonnych i pracochłonnych operacji oddzielania ksylitu od heksytów i innych cukrów powstających w wyniku hydrolizy i uwodorniania, obecnych w bogatych w ksylit roztworach otrzymywanych w znanych sposobach wytwarzania ksylitu.
Do drożdży, które można stosować w sposobie według wynalazku należą, jakkolwiek nie wyłącznie, drożdże z rodzaju Candida, Pichia, Pachysolen i Debaryomyces. Korzystnie stosuje się Candida i Debaryomyces, a zwłaszcza Candida tropicalis i Debaryomyces hansanii. Dobrym przykładem jest szczep Candida tropicalis zdeponowany w American Type Culture Collection /ATCC/ pod numerem 9968.
Materiałami wyjściowymi odpowiednimi do stosowania w sposobie według wynalazku są prawie wszystkie materiały zawierające ksylan. Potencjalnymi materiałami wyjściowymi są drzewa strefy umiarkowanej, takie jak brzoza, buk, topola, olcha, itp., a także rośliny i składniki roślinne, takie jak zboża czy kukurydza oraz łuski z owsa, kolby kukurydzy, łodygi kukurydzy, skorupy orzecha, słoma, bogasa oraz łuski z bawełny. Gdy jako materiał wyjściowy stosuje się drewno, to jest ono przedtem korzystnie rozdrabniane i ma postać wiórków trocin, itp. Po poddaniu go hydrolizie lub obróbce parą wodną otrzymuje się materiał hemicelulozowy, który można zastosować w sposobie według wynalazku.
Odpowiednimi materiałymi wyjściowymi są także bogate w ksylan lub ksylozę uboczne produkty obróbki drewna. Przykładowo ciecz wyczerpana powstająca jako odciek w procesie produkcji pulpy drzewnej metodą siarczynową, zwana siarczynową cieczą wyczerpaną, zawiera nie rozpuszczone stałe składniki drewna, ligniny, heksozy i pentozy, w tym ksylozę, a więc jest właściwym materiałem wyjściowym do stosowania w sposobie według wynalazku. Można także stosować inne bogate w ksylen lub ksylozę produkty uboczne lub odpady z procesów przeróbki drewna i ścieru drzewnego.
163 719
W sposobie według wynalazku stosuje się wodny roztwór ksylozy, tak więc może być konieczna hydroliza materiału wyjściowego, prowadzona przy użyciu kwasów lub enzymów, dla rozszczepienia ksylanu do ksylozy. Metody hydrolizowania materiałów zawierających ksylan z wytworzeniem bogatego w ksylozę roztworu ujawniono w opisach patentowych Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 3 784 408 i 3 586 537.
Wyjściowy materiał można ewentualnie poddać przed fermentacją dodatkowej obróbce mającej na celu usunięcie wszelkich składników, które mogłyby działać toksycznie lub wywierać inny szkodliwy wpływ na drożdże. Konieczność prowadzenie takiej obróbki zależy od zastosowanego materiału wyjściowego i drożdży użytych do fermentacji. Wstępna obróbka może obejmować wtórną hydrolizę i/lub etapy rozdzielania. Stężenie ksylozy w wodnym roztworze poddawanym fermentacji zależy od rodzaju materiału wyjściowego, przy czym korzystnie wynosi ono około 50-300 g/litr.
W celu przeprowadzenia fermentacji stosuje się zgodnie z wynalazkiem szczep drożdży zdolny do przeprowadzenia ksylozy w ksylit, a większości obecnych w roztworze heksoz w etanol. Etanol można z łatwością odzyskać przez odparowanie, destylację lub przy użyciu innej znanej metody, dużo prościej i skuteczniej niż w przypadku oddzielania ksylozy i/lub ksylitu od innych cukrów.
Przykładem odpowiedniego szczepu drożdży jest Candida tropicalis ATCC 9968. Do innych odpowiednich szczepów należą drożdże z rodzaju Candida, Pichia, Pachysolen i Debaryomyces /patrz N. J.W. Kregr-van Rij, The Yeast. A Taxonomic study, 3 ed., Elsevier Science Publishers B. V., 1984/, zdolne do przeprowadzenia ksylozy w ksylit i heksoz w etanol.
Przed poddaniem bogatego w ksylozę roztworu fermentacji, można go poddać rozdzieleniu chromatograficznemu dla oddzielenia i usunięcia większych cząsteczek i substancji zjonizowanych, gdy stosuje się surowiec wyjściowy o niskiej czystości. Przykładowo chromatografia przed fermentacją może być korzystna w przypadku siarczynowych cieczy wyczerpanych.
Fermentację bogatego w ksylozę roztworu można prowadzić w większości dostępnych w handlu fermentatorów okresowych wyposażonych w urządzenia do napowietrzania, mieszania i kontroli pH, np. w aparacie Braun-Biostat /Model Ψ E/. Korzystna temperatura fermentacji wynosi około 20-40°C, a szczególnie około 30°C.
Komórki drożdży dodaje się do bogatego w ksylozę roztworu, przy czym z reguły wraz ze stężeniem drożdży wzrasta szybkość fermentacji. Optymalne stężenie drożdży zależy od rodzaju roztworu ksylozy, to znaczy jego właściwości i zawartości ksylozy w tym roztworze stwierdzono, że gdy stężenie ksylozy wynosi około 50-300 g/litr, to wówczas korzystne jest dodawanie około 0,1-10 g suchych drożdży na 1 litr/waga sucha/ substratu.
Fermentacji sprzyja dodanie substancji odżywczych, a trwa ona do chwili, gdy większość ksylozy ulegnie przemianie w ksylit i zasadniczo cala ilość heksoz ulegnie przemianie w etanol, zazwyczaj około 24-144 godzin, a korzystnie około 24-72 godzin. Sposób według wynalazku pozwala na uzyskanie przemiany ponad 90% ksylozy w ksylit.
Po fermentacji, a przed oddzieleniem ksylitu roztwór poddaje się klarowaniu. W procesie fermentacji okresowej komórki drożdżowe usuwa się po zakończeniu fermentacji. Można to przeprowadzić drogą odwirowania, filtracji, itp. Po usunięciu komórek drożdżowych z przejrzystego roztworu można usunąć etanol przez odparowanie, destylację lub inną dogodną metodą.
Po usunięciu komórek drożdżowych /i ewentualnie etanolu/ wzbogaca się roztwór w ksylit przez rozdzielenie chromatograficzne. Takie rozdzielanie prowadzi się korzystnie w kolumnie wypełnionej sulfonowaną żywicą polistyrenową usieciowaną dwuwinylobenzenem w postaci soli metalu alkalicznego/ metalu ziem alkalicznych. Sposób nadający się do prowadzenia takiej operacji w dużej skali opisano w opisie patentowym Stanów Zjedn. Ameryki nr 3 928 193.
Rozdzielanie chromatograficzne można także prowadzić metodą ciągłą, w procesie z symulowanym ruchem złoża /opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 2 985 589/, również na sulfonowanej żywicy poliestrowej usieciowanej dwuwinylobenzenem.
Z bogatych w ksylit frakcji uzyskanych w procesie rozdzielania chromatograficznego można wykrystalizować ksylit z użyciem wysokowydajnej techniki krystalizacji obejmującej chłodzenie i doprowadzenie do wrzenia. Gdy prowadzi się krystalizację przez ochłodzenie, bogatą w ksylit frakcję zaszczepia się kryształami ksylitu o średniej średnicy około 30 μm, po
163 719 czym powoli obniża się temperaturę roztworu. Powstałe kryształy, których średnica korzystnie wynosi około 250-600 μm, wyodrębnia się przez odwirowanie i przemywa się wodą. W ten sposób otrzymuje się zasadniczo czysty, krystaliczny ksylit.
Sposób według wynalazku ilustrują następujące przykłady.
Przykład I. Wytwarzanie ksylitu z siarczynowej cieczy wyczerpanej.
Ksylit wytworzono z siarczynowej cieczy wyczerpanej drogą fermentacji z użyciem drożdży Debaryomyces hansenii w postaci szczepu zdolnego do przemiany ksylozy w ksylit i większości heksoz w etanol. Fermentacji poddano porcję cieczy otrzymanej jako produkt uboczny w procesie wytwarzania ścieru brzozowego. Ciecz tę poddano obróbce wstępnej /patrz opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 631 129/ dla otrzymania frakcji bogatej w ksylozę. Analiza tej frakcji metodą chromatografii gazowo-cieczowej wykazała następujący jej skład i właściwości:
Substancja sucha pH 7 Wapń /Ca2+/
Sód /Na+
Węglowodany:
ksyloza arabinoza ramnoza glukoza mannoza galaktoza
30,4% wagowych 2,5
2% w przeliczeniu na substancję suchą, określaną dalej skrótem s.s/
0,1% s.s.
39,3% s.s.
1,0% s.s.
1,2% s.s.
2,5% s.s.
0,1% s.s.
2,0% s.s.
Frakcję tę zobojętniono tlenkiem wapniowym do pH około 6,2 /10 g CaO/litr frakcji/, a następnie rozcieńczono ją do uzyskania stężenia ksylozy 51 g/litr roztworu. Fermentację prowadzono w wytrząsanych kolbach /200 ml/ w około 25°C przez około 48 godzin. Dodano około 1,7x 108 komórek drożdży na 1 ml frakcji, przy czym ilość ta była właściwa dla poddawanego fermentacji roztworu, co stwierdzono przez zbadanie bogatego w ksylozę roztworu po początkowej fazie wzrostu i dodanie drożdży do wyżej podanej ilości. Komórki drożdży odwirowano po 48 godzinach i przejrzysty roztwór poddano rozdzieleniu chromatograficznemu dla oddzielenia ksylitu powstałego podczas fermentacji w następujących warunkach:
Substancja sucha pH
Węglowodany:
ksylit ksyloza glukoza arabinoza
Octan wapniowy
Kolumna:
średnica wysokość
Żywica
Prędkość przepływu Temperatura Objętość wsadu
24,0% wagowych
5,9
24,7 % s.s.
0,3% s.s.
2,1% s.s.
0,6% s.s.
2,5% s.s.
cm
200 cm
Zerolit 255, jonowymienna żywica polistyrenowa sieciowana dwuwinylobenzenem w postaci wapniowej, średnica cząstek 0,32 mm, zawartość dwuwinylobenzenu 3,5% ml/mmuę
65°C
500 ml
163 719
Profil elucji z kolumny przedstawiono na fig. 1 rysunku.
Pobierano próbki eluatu i analizowano je pod kątem zawartości substancji suchej i składu, przy czym eluat podzielono na trzy frakcje.
Tabela 1
Badany parametr Frakcja nr 1 Frakcja nr 2 Frakcja nr 3
Ilość substancji suchej (g) 134 10 58
Stężenie (g/litr) 12 10 16
Zawartość ksylitu (% s.s.) 0,7 40,0 79,0
Skład bogatej w ksylit frakcji, podanej następnie krystalizacji był następujący:
Substancja sucha 20 g/litr
Ksylit 86,6% s.s.
Inne 13,4% SsS.
Ksylit wyodrębniono z tej frakcji stosując krystalizację przez ochłodzenie. Roztwór odparowano do uzyskania zawartości substancji suchej 86,5% i umieszczono go w krystalizatorze wyposażonym w urządzenia do oziębiania i mieszania. Początkowa temperatura wynosiła 65°C, a pH roztworu około 5,3. Roztwór zaszczepiono kryształami ksylitu o średnicy około 30 pm w postaci zawiesiny w izopropanolu. Temperaturę obniżono w ciągu 3 godzin z około 65°C do około 50°. W tych warunkach kryształy ksylitu wzrastały osiągając średnicę 250 pm. Kryształy odwirowano i przemyto wodą. Otrzymano ksylitol o czystości ponad 99%.
Przykład Π. Wytwarzanie ksylitu z parowanego drewna brzozowego.
Materiałem wyjściowym był hydrolizat po procesie wytwarzania ścieru z parowanego drewna brzozowego, poddany wtórnej hydrolizie dla rozszczepienia ksylanu do wolnej ksylozy. Zastosowano parametry hydrolizy podane w Enzymatic hydrolysis of steam- pretreated lignocellulosic material, Poutanen K. i Puls J., Proc. 3rd Eur. Congr. Biotechnol. - Monachium, 1984, Vol. II, str 217-222. Powstały bogaty w ksylozę roztwór miał następujący skład:
Składnik Stężenie /g/litr/ ksyloza 76 glukoza 3,6 ramnoza 1,3 mannoza 2,1 galaktoza 2,4 arabinoza 0,8
Całkowita zawartość substancji suchej w roztworze wynosiła 15 % wagowych.
Roztwór poddano fermentacji z użyciem drożdży Candida tropicalis /ATCC 9968/. Wartość pH roztworu doprowadzono do 6 za pomocą 25% NaOH, po czym roztwór zaszczepiono 3g/litr ekstraktu drożdży i dodano 3 g/litr ekstraktu słodu i 5 g/litr peptonu jako składniki odżywcze. Inokulum przygotowano hodując drożdże w 5% roztworze ksylozy, w obecności takich samych składników odżywczych. Podczas fermentacji temperatura wynosiła około 30°C. Proces fermentacji prowadzono w fermentatorze Braun Biostat /Model E/ wyposażonym w urządzenie do napowietrzania /0,18 litra/minutę/, mieszadło /200 obrotów/ minutę/ i pH-metr /25% NaOH/ dla utrzymania wartości pH 6. Objętość robocza fermentatora wynosiła 8 litrów, a objętość całkowita 10 litrów. Pienienie powstrzymywano dzięki zastosowaniu antyspieniacza Mazu 6000. Wyniki analizy próbek z fermentatora podano w tabeli 2. Skład próbek badano metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej.
163 719
Tabela 2
Czas (godziny) Ilość drożdży (g/litr) Ilość ksylozy (g/litr) Ilość ksylitu (g/litr) Etanol (g/litr)
0 1,2 75,8 0,0 0,0
24 1,4 66,5 4,8 3,7
48 2,0 55,2 14,1 6,9
72 2,6 37,3 29,4 7,7
96 2,8 18,7 54,2 7,6
120 nie badano 9,4 61,9 8,5
144 nie badano 3,0 52,7 6,7
Po uzyskaniu bogatych w ksylit frakcji drogą chromatografii wykrystalizowano ksylit jak w przykładzie I. Otrzymano produkt o czystości 99%.
Przykład III. Wytwarzanie ksylitu z parowanego drewna brzozowego Zastosowano wtórny hydrolizat otrzymany w procesie wytwarzania ścieru z parowanego drewna brzozowego.
Roztwór miał następujący skład:
Składnik ksyloza glukoza ramnoza mannoza galaktoza arabinoza
Zawartość /g/litr/ 110,0
3,,1
3,5
3.4
1.5
1.6
Całkowite stężenie substancji suchej wynosiło 15% wagowych.
Przed fermentacją roztwór poddano procesowi rozdzielania chromatograficznego dla usunięcia większości dużych cząsteczek i substancji zjonizowanych. Rozdzielanie przeprowadzono w kolumnie wypełnionej Amberlite BH-1 sulfonowana żywica polistyrenowa sieciowana dwuwinylobenzenem/ w postaci sodowej.
Zawartość dwuwinylobenzenu /DWB/ wynosiła 5,5%.
Warunki procesu były następujące:
temperatura 65°C prędkość przepływu; 0,04 m3/godzmę wsad: 18 ltrrów roztworu zztęęonngo do stężenia 31,2% wagowych średnica cząstek żywicy: 0,40 mm średnica kolumny: 0,225 m wysokość kolumny: 5,0 m
Rezultaty operacji rozdzielania chromatograficznego przedstawiono na fig. 2 rysunku. Próbki pobierano co 5 minut. Całkowity czas cyklu wynosił 170 minut. Skład roztworu wprowadzanego do kolumny chromatograficznej był następujący:
arabinoza 0,6% s.s.
ramnoza 0,5% s.s.
ksyloza 37,8% s.s.
mannoza 1,2% s.s.
galaktoza 1,6% s.s.
glukoza 1,6% s.s.
inne 53,7% s.s.
163 719
Eluat podzielono na 5 frakcji. Frakcję nr 2 odrzucono, zaś frakcję nr 4 poddano fermentacji. Pozostałe frakcje zawrócono do kolumny dla zwiększenia wydajności procesu rozdzielania. Reakcje nr 1, 2, 3, 4 i 5 odbierano po czasie odpowiednio 15, 100, 115, 140 i 155 minut /czas zakończenia odbierania danej frakcji/. Skład frakcji przedstawiono w tabeli 3.
Tabela 3
Składnik Zawartość składnika (% s.s.)
Frakcja nr
1 2 3 4 5
Arabinoza 1,3 0,1 0,2 1,0 2,1
Ramnoza 0,0 0,0 1,2 0,9 0,0
Ksyloza 24,8 3,4 57,6 71,2 46,6
Mannoza 0,8 0,1 1,9 2,2 1,6
Galaktoza 0,8 0,1 2,0 2,0 1,4
Glukoza 0,5 0,5 4,7 1,9 0,7
Inne 71,9 95,8 32,3 20,3 47,6
Fermentację prowadzono z użyciem drożdży Candida tropicalis, tak jak w przykładzie II. Wyniki procesu przedstawiono graficznie na fig. 3. Przy stężeniu ksylozy 100 g/litr otrzymano ksylit w stężeniu 90 g/litr. Jako składnik odżywczy w roztworze do fermentacji zastosowano ekstrakt drożdży /Gistex/ w stężeniu 15 g/litr. Inokulum wzrosło w hydrolizacie rozcieńczonym wodą /1:10/, zawierającym 3% glukozy i 3% ekstraktu z drożdży.
Z roztworu bogatego w ksylit wyodrębniono ksylit drogą chromatograficzną na kolumnie w skali pilotowej o następującej charakterystyce:
Kolumna:
wysokość 4,5 m, średnica 0,225 m
Żywica: sulfonowy poiistyren sieciowimy
5,5% DWB, postać sodowa, średnica cząstek 0,37 mm
Prędkość przepływu: 0,03 m3/godzinę
Temperatura: 65°C
Roztwór wsadowy: 24 kg roztworu o stężeniu 24% wagowych /5,76 kg substancji suchej/
Skład:
ksylit 64,0 s.s.
ksyloza 2,0% s.s.
arabinoza + mannoza 1,4% s.s.
galaktoza + ramnoza 1,2% s.s.
glukoza 0,4% s.s.
mannit 0,9% s.s.
inne 30,1% s.s.
163 719
Wyniki rozdzielenia przedstawiono graficznie na fig. 4. Odebrano 5 frakcji. Frakcję nr 4 stanowiła frakcja zawierająca ksylit, z której wykrystalizowano go jak w -przykładzie I. Skład frakcji nr 1, 2, 3, 4 i 5, odebranych po czasie odpowiednio 10,100, 105, 155 i 165 minut/czas zakończenia odbierania frakcji/ przedstawiono w tabeli 4.
Tabela 4
Składnik Zawartość składnika (%s.s.)
Frakcja nr
1 2 3 4 5
Ksylit 8,7 4,9 56,3 85,0 55,6
Ksyloza 0,2 2,0 4,4 2,0 0,4
Arabinoza+mannoza 3,6 0,5 1,4 1,7 4,2
Galaktoza+ramnoza 0,3 0,6 3,8 1.4 0,5
Glukoza 0,0 0,1 1,9 0,4 0,0
Mannit 0,2 0,2 2,0 1,1 0,7
Inne 87,1 81,8 30,2 8,5 38,5
Przykład IV. Krystalizacja ksylitu z roztworu pofermentacyjnego
Ksylit poddano krystalizacji z bogatego w ksylit roztworu otrzymanego drogą chromatograficznego rozdzielenia roztworu pofermentacyjnego. Roztwór zawierający 82,5% ksylitu /s.s/ odparowano w 65°C do stężenia 92%. 2200 g odparowanego roztworu zaszczepiono kryształami ksylitu o rozmiarach 0,04 mm. Dość tych kryształów wynosiła 0,03%. Temperaturę roztworu obniżono do 45°C w ciągu 55 godzin według następującego programu:
T = T1- /t: t1/2 x /T1- T2/ gdzie T = temperatura roztworu w °C
T1 = temperatura w chwili szczepienia/65°C/
T2 = temperatura końcowa /45°C/ t = okres czasu po zaszczepieniu /godziny/ t1 = całkowity czas krystalizacji /55 godzin/
Krystalizację prowadzono w pionowym krystalizatorze wyposażonym w mieszadło. Kryształy odwirowano z roztworu /5 minut, 2000 g/ i przemyto wodą. Średni rozmiar kryształów wynosił 0,37 mm, zaś czystość produktu według analizy metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej wynosiła 99,4%.
163 719
- ogołem
-o- ksylit
--4-- galaktoza glukoza —f— inne arabinoza ramnoza mannoza
FIG. 2
Czas (godziny) o— drożdże (s.s.) o--· ksyloza a— ksylit etanol
FIG. 3
163 719
KEY:
- ogolęm —o— ksylit —0- kyloza arabinoza mannoza galaktoza glukoza mannit inne
FIG.
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 10 000 zł

Claims (24)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania ksylitu z wodnego roztworu ksylozy, znamienny tym, że wodny roztwór ksylozy poddaje się fermentacji przy użyciu szczepu drożdży z rodzaju Candida lub Debaryomyces, zdolnego do przeprowadzenia wolnej ksylozy w ksylit i wolnych heksoz obecnych w tym wodnym roztworze w etanol, przy czym fermentację prowadzi się przez okres czasu wystarczający dla otrzymania roztworu pofermentacyjnego zawierającego ksylit, i wyodrębnia się frakcję zawierającą ksylit lub frakcje zawierające ksylit drogą rozdzielenia chromatograficznego tego roztworu pofermentacyjnego.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się szczep Candida tropicalis
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że stosuje się candida tropicalis ATCC
    9968.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się szczep Debaryomyces hansenii.
  5. 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że z frakcji zawierającej ksylit lub frakcji zawierających ksylit wyodrębnia się ksylit.
  6. 6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że ksylit wyodrębnia się drogą krystalizacji.
  7. 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym że fermentację prowadzi się w temperaturze około 30°C przez około 24-72 godziny.
  8. 8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że fermentację prowadzi się przez około 48 godzin.
  9. 9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że komórki drożdży usuwa się przez odwirowanie po fermentacji, a przed rozdzieleniem chromatograficznym.
  10. 10. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że komórki drożdży usuwa się przez odfiltrowanie po fermentacji, a przed rozdzieleniem chromatograficznym.
  11. 11. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że rozdzielanie chromatograficzne prowadzi się w kolumnie wypełnionej żywicą kationowymienną.
  12. 12. Sposób według zastrz. 11, znamienny tym, że stosuje się żywicę o sulfonowanym szkielecie polistyrenowym usieciowaną dwuwinylobenzenem.
  13. 13. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że w procesie rozdzielania chromatograficznego stosuje się wodę jako eluent.
  14. 14. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako wodny roztwór ksylozy stosuje się hydrolizat chemicelulozowy.
  15. 15. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako wodny roztwór ksylozy stosuje się wzbogaconą w ksylozę frakcję siarczynowej cieczy wyczerpanej.
  16. 16. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że po fermentacji etanol usuwa się przez odparowanie lub oddestylowanie.
  17. 17. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że fermentacji poddaje się wodny roztwór ksylozy, w którym stężenie ksylozy wynosi 50-300 g/litr.
  18. 18. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że fermentację prowadzi się przy wartości pH 3-9.
  19. 19. Sposób według zastrz. 18, znamienny tym, że fermentacje prowadzi się przy około pH 5-7.
  20. 20. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że fermentację prowadzi się w temperaturze około 10-45°C.
  21. 21. Sposób według zastrz. 20, znamienny tym, że fermentację prowadzi się w temperaturze około 25-35°C.
  22. 22. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że podczas fermentacji dostarcza się ograniczoną ilość tlenu.
    163 719
  23. 23. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się wodny roztwór ksylozy, z którego usunięto składniki toksyczne wobec drożdży stosowanych do fermentacji lub inne zanieczyszczenia.
  24. 24. Sposób według zastrz. 23, znamienny tym, że te składniki i/lub zanieczyszczenia usuwa się przez oddzielenie chromatograficzne.
PL90283325A 1989-01-17 1990-01-17 Sposób wytwarzania ksylitu PL PL PL PL PL163719B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US29779189A 1989-01-17 1989-01-17

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL163719B1 true PL163719B1 (pl) 1994-04-29

Family

ID=23147762

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL90283325A PL163719B1 (pl) 1989-01-17 1990-01-17 Sposób wytwarzania ksylitu PL PL PL PL

Country Status (18)

Country Link
US (1) US5081026A (pl)
EP (1) EP0454702B1 (pl)
JP (1) JP2947609B2 (pl)
AT (1) ATE136588T1 (pl)
AU (1) AU651061B2 (pl)
BR (1) BR9007009A (pl)
CA (1) CA2046595C (pl)
CS (1) CS24090A3 (pl)
DE (1) DE69026499T2 (pl)
DK (1) DK0454702T3 (pl)
ES (1) ES2088425T3 (pl)
FI (1) FI106265B (pl)
NO (1) NO300851B1 (pl)
PL (1) PL163719B1 (pl)
RU (1) RU2108388C1 (pl)
SK (1) SK281607B6 (pl)
WO (1) WO1990008193A1 (pl)
ZA (1) ZA90254B (pl)

Families Citing this family (48)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FI86440C (fi) 1990-01-15 1992-08-25 Cultor Oy Foerfarande foer samtidig framstaellning av xylitol och etanol.
US7109005B2 (en) * 1990-01-15 2006-09-19 Danisco Sweeteners Oy Process for the simultaneous production of xylitol and ethanol
FI913197A0 (fi) 1991-07-01 1991-07-01 Xyrofin Oy Nya jaeststammar med reducerad foermaoga att metabolisera xylitol, foerfarande foer bildande av dessa och deras anvaendning vid framstaellning av xylitol.
US7226761B2 (en) 1992-11-05 2007-06-05 Danisco Sweeteners Oy Manufacture of five-carbon sugars and sugar alcohols
US20080038779A1 (en) * 1992-11-05 2008-02-14 Danisco Sweeteners Oy Manufacture of Five-Carbon Sugars and Sugar Alcohols
EP0672161B1 (en) * 1992-11-05 1999-09-22 Xyrofin Oy Recombinant method and host for manufacture of xylitol
US6723540B1 (en) 1992-11-05 2004-04-20 Xyrofin Oy Manufacture of xylitol using recombinant microbial hosts
US6663780B2 (en) 1993-01-26 2003-12-16 Danisco Finland Oy Method for the fractionation of molasses
FI96225C (fi) 1993-01-26 1996-05-27 Cultor Oy Menetelmä melassin fraktioimiseksi
FI932108A7 (fi) * 1993-05-10 1994-11-11 Xyrofin Oy Menetelmä sulfiittikeittoliemen fraktioimiseksi
FR2720406B1 (fr) * 1994-05-27 1996-08-14 Agronomique Inst Nat Rech Composition de microorganismes et procédé pour la production de xylitol.
US5795398A (en) 1994-09-30 1998-08-18 Cultor Ltd. Fractionation method of sucrose-containing solutions
KR0153091B1 (ko) * 1995-10-27 1998-10-15 담철곤 산소분압의 조절을 이용한 자일리톨의 생물공학적 제조방법
US6224776B1 (en) 1996-05-24 2001-05-01 Cultor Corporation Method for fractionating a solution
KR100199819B1 (ko) * 1997-03-21 1999-06-15 정기련 천연으로부터 분리한 신균주 캔디다 트롭피칼리스에 의한 자일리톨의 제조방법
EP1075795B1 (en) * 1999-08-10 2003-04-09 Ajinomoto Co., Inc. Process for producing xylitol of high purity
FI117465B (fi) 2000-02-03 2006-10-31 Danisco Sweeteners Oy Menetelmä pureskeltavien ytimien kovapinnoittamiseksi
US6365732B1 (en) * 2000-07-10 2002-04-02 Sweet Beet Incorporated Process for obtaining stereoisomers from biomass
US6894199B2 (en) 2001-04-27 2005-05-17 Danisco Sweeteners Oy Process for the production of xylitol
FI20010977L (fi) 2001-05-09 2002-11-10 Danisco Sweeteners Oy Kromatografinen erotusmenetelmä
US20040138445A1 (en) * 2001-07-10 2004-07-15 Thorre Doug Van Process for obtaining bio-functional fractions from biomass
FI20011889A7 (fi) 2001-09-26 2003-03-27 Xyrofin Oy Menetelmä ksylitolin valmistamiseksi
BR0301678A (pt) * 2003-06-10 2005-03-22 Getec Guanabara Quimica Ind S Processo para a produção de xilose cristalina a partir de bagaço de cana-de-açucar, xilose cristalina de elevada pureza produzida através do referido processo, processo para a produção de xilitol cristalino a partir da xilose e xilitol cristalino de elevada pureza assim obtido
US7812153B2 (en) * 2004-03-11 2010-10-12 Rayonier Products And Financial Services Company Process for manufacturing high purity xylose
US7598374B2 (en) * 2004-03-26 2009-10-06 Purdue Research Foundation Processes for the production of xylitol
CA2567366A1 (en) * 2004-05-19 2005-12-01 Biotechnology Research And Development Corporation Methods for production of xylitol in microorganisms
ES2275437B1 (es) * 2005-11-22 2008-03-01 Universidad De Vigo Proceso para la purificacion de xilitol contenido en medios fermentados obtenidos por bioconversion de hidrolizados de biomasa vegetal.
KR101108789B1 (ko) * 2007-02-09 2012-03-13 씨제이제일제당 (주) 열대과일 바이오매스 부산물로부터 제조된 자일로스와아라비노스를 포함하는 가수분해 당화액을 이용한자일리톨의 제조방법
WO2010078930A2 (en) * 2008-12-17 2010-07-15 Borregaard Industries Limited, Norge Lignocellulosic biomass conversion
CN101857886B (zh) * 2009-04-09 2012-12-26 华北制药康欣有限公司 一种木糖醇联产l-阿拉伯糖的制备方法
BR112012032999B1 (pt) 2010-06-26 2022-11-29 Virdia, Llc Hidrolisado lignocelulósico e métodos de hidrólise ácida e desacidificação para gerar misturas de açúcar a partir de lignocelulose
IL206678A0 (en) 2010-06-28 2010-12-30 Hcl Cleantech Ltd A method for the production of fermentable sugars
IL207945A0 (en) 2010-09-02 2010-12-30 Robert Jansen Method for the production of carbohydrates
GB2524906B8 (en) 2011-04-07 2016-12-07 Virdia Ltd Lignocellulose conversion processes and products
US9617608B2 (en) 2011-10-10 2017-04-11 Virdia, Inc. Sugar compositions
EP2862890A1 (en) * 2012-05-03 2015-04-22 Virdia Ltd. Method for the extraction of lignin from biomass
US20150159180A1 (en) 2012-07-16 2015-06-11 Council Of Scientific & Industrial Research Process for production of crystalline xylitol using pichia caribbica and its application for quorum sensing inhibition
PL2890799T4 (pl) * 2012-08-28 2021-11-02 Privi Biotechnologies Pvt. Ltd. Selektywna mikrobialna produkcja ksylitolu z cukru na bazie biomasy stream z wzbogaconym komponentem pentozowym
US9850512B2 (en) 2013-03-15 2017-12-26 The Research Foundation For The State University Of New York Hydrolysis of cellulosic fines in primary clarified sludge of paper mills and the addition of a surfactant to increase the yield
US9951363B2 (en) 2014-03-14 2018-04-24 The Research Foundation for the State University of New York College of Environmental Science and Forestry Enzymatic hydrolysis of old corrugated cardboard (OCC) fines from recycled linerboard mill waste rejects
EP2957640B1 (en) 2014-06-18 2018-03-14 Roquette Freres Production of xylitol from glucose by a recombinant strain
US11078548B2 (en) 2015-01-07 2021-08-03 Virdia, Llc Method for producing xylitol by fermentation
CN107849620B (zh) 2015-05-27 2022-01-11 威尔迪亚有限责任公司 用于处理木质纤维素材料的综合方法
CN108883400B (zh) * 2016-02-19 2021-09-17 洲际大品牌有限责任公司 由生物质源形成多值料流的方法
CA3047840A1 (en) 2016-12-21 2018-06-28 Creatus Biosciences Inc. Method and organism expressing metschnikowia xylose transporters for increased xylose uptake
MX2019007406A (es) 2016-12-21 2019-12-16 Creatus Biosciences Inc Especie de metschnikowia productora de xilitol.
CN108676819A (zh) * 2018-05-21 2018-10-19 山东绿爱糖果股份有限公司 一种酶解复合物理活化改性的木糖醇及其制造方法
CN108676820A (zh) * 2018-05-21 2018-10-19 山东绿爱糖果股份有限公司 一种采用酶与微生物方法制造的活性木糖醇及其制造方法

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3619369A (en) * 1968-10-31 1971-11-09 Noda Inst For Scientific Res Process for producing xylitol by fermentation
US3627636A (en) * 1969-10-02 1971-12-14 Hoffmann La Roche Manufacture of xylitol
US3784408A (en) * 1970-09-16 1974-01-08 Hoffmann La Roche Process for producing xylose
US4066711A (en) * 1976-03-15 1978-01-03 Suomen Sokeri Osakeyhtio (Finnish Sugar Company) Method for recovering xylitol
US4096036A (en) * 1976-06-15 1978-06-20 Standard Brands Incorporated Method for the separation of water soluble polyols
US4368268A (en) * 1981-05-15 1983-01-11 Purdue Research Foundation Direct fermentation of D-xylose to ethanol by a xylose-fermenting yeast mutant
JPS60145095A (ja) * 1984-01-10 1985-07-31 Jujo Paper Co Ltd 固定化微生物によるキシリト−ルの製造法
FI76377C (fi) * 1987-01-15 1989-05-10 Farmos Oy Mikrobiologisk framstaellningsmetod.
JPS6463291A (en) * 1987-09-03 1989-03-09 Matsushita Electric Industrial Co Ltd Heat cooking apparatus
DE3825040A1 (de) * 1988-07-20 1990-01-25 Schering Ag, 13353 Berlin 5- oder 6-ring- enthaltende makrocyclische polyaza-verbindungen, verfahren zu ihrer herstellung und diese enthaltende pharmazeutische mittel

Also Published As

Publication number Publication date
ZA90254B (en) 1990-11-28
US5081026A (en) 1992-01-14
RU2108388C1 (ru) 1998-04-10
FI106265B (fi) 2000-12-29
SK281607B6 (sk) 2001-05-10
DE69026499T2 (de) 1996-09-19
JPH04503750A (ja) 1992-07-09
EP0454702A1 (en) 1991-11-06
ES2088425T3 (es) 1996-08-16
NO912798D0 (no) 1991-07-17
EP0454702B1 (en) 1996-04-10
DK0454702T3 (da) 1996-05-06
JP2947609B2 (ja) 1999-09-13
CS24090A3 (en) 1992-01-15
DE69026499D1 (de) 1996-05-15
ATE136588T1 (de) 1996-04-15
CA2046595A1 (en) 1990-07-18
CA2046595C (en) 1999-03-23
BR9007009A (pt) 1991-11-12
FI913376A0 (fi) 1991-07-11
AU4836690A (en) 1990-08-13
NO300851B1 (no) 1997-08-04
WO1990008193A1 (en) 1990-07-26
NO912798L (no) 1991-07-17
AU651061B2 (en) 1994-07-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5081026A (en) Method for the production of xylitol
US6846657B2 (en) Process for the simultaneous production of xylitol and ethanol
US7109005B2 (en) Process for the simultaneous production of xylitol and ethanol
CA2065548C (en) Two-stage dilute acid prehydrolysis of biomass
Cao et al. Ethanol production from corn cob pretreated by the ammonia steeping process using genetically engineered yeast
Dominguez et al. Production of xylitol from D-xylose by Debaryomyces hansenii
EP0143490B1 (en) Process for the preparation of oligosaccharides-containing products from biomass, oligosaccharides-containing products and their use
US20220090156A1 (en) Methods and Systems For Saccharification of Biomass
Jain et al. A review on different modes and methods for yielding a pentose sugar: xylitol
Subroto et al. Chemical and biotechnological methods for the production of xylitol: a review
EP2836602B1 (en) Methods and systems for saccharification of biomass
Parajó et al. Xylitol from wood: study of some operational strategies
JPH0358715B2 (pl)
RU2109058C1 (ru) Способ получения спирта из гемицеллюлозных гидролизатов растительного сырья
KR0180986B1 (ko) 옥수수 속대의 가수분해물질로부터 미생물 발효에 의한 자일리톨의 제조방법
Du et al. Optimization of L-Arabinose and Single-Cell Protein Production from Corn Husks Hydrolysate