PL179342B1 - Sposób aktywacji surowców keratynowych przed hydrolizą enzymatyczną do celów kosmetycznych - Google Patents
Sposób aktywacji surowców keratynowych przed hydrolizą enzymatyczną do celów kosmetycznychInfo
- Publication number
- PL179342B1 PL179342B1 PL30783695A PL30783695A PL179342B1 PL 179342 B1 PL179342 B1 PL 179342B1 PL 30783695 A PL30783695 A PL 30783695A PL 30783695 A PL30783695 A PL 30783695A PL 179342 B1 PL179342 B1 PL 179342B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- enzymatic hydrolysis
- raw materials
- cosmetic purposes
- materials before
- cystine
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Sposób aktywacji surowców keratynowych przed hydrolizą enzymatyczną do celów kosmetycznych, znamienny tym, że przed traktowaniem enzymami proteolitycznymi surowiec poddaje się działaniu wodnych roztworów wodorotlenków alkalicznych o stężeniu nie przekraczającym 10%, wtemperaturze od )° do 40°C, przez czas nie dłuższy niż 8 godzin.
Description
Przedmiotem wynalazkuj est sposób aktywacji surowców keratynowych, takichj ak pierze, wełna, szczecina, włosy, sierść, poddawanych hydrolizie enzymatycznej.
Hydrolizaty keratyn budzą duże zainteresowanie w przemyśle kosmetycznym dzięki swemu pozytywnemu działaniu na włosy i skórę. Szczególnie cenione są hydrolizaty otrzymywane w drodze hydrolizy enzymatycznej, posiadające wysoką zawartość oligopeptydów przy bardzo niskiej zawartości wolnych aminokwasów, oraz wolne od zanieczyszczeń powodowanych przez ostre warunki reakcji, niezbędne przy hydrolizie chemicznej.
Wiadomo, że keratyny są białkami nie poddającymi się działaniu enzymów proteolitycznych bez degradacji wstępnej. Trawienie enzymatyczne może być skuteczne tylko wtedy, gdy wiązania dwusiarczkowe zostaną najpierw rozerwane metodami chemicznymi. Bez aktywacji wstępnej efektywność hydrolizy enzymatycznej jest tak mała, że w ciągu 11 dni traktowania pankreatyną można osiągnąć rozpuszczenie 14%o wełny, a po trzech tygodniach oddziaływania pronazy (enzym uważany za keratolityczny), można przeprowadzić do roztworu 12%o tego surowca. Hydrolizie ulegająprzy tym głównie te części łańcuchów białkowych, które zawierająnieznaczne ilości cystyny. Jak podają Peters i Bradbury (Advances in Protein Chemistry, Acad. Press 1973, str. 157) wydaje się niepodobieństwem, aby enzymy te były zdolne do shydrolizowania zauważalnej ilości keratyny gęsto powiązanej poprzecznie mostkami dwusiarczkowymi (np. jedno wiązanie na 10 reszt aminokwasowych).
Znanychjest wiele metod wstępnej degradacji surowców keratynowych. Wszystkie te metody sąjednak albo destruktywne w stosunku do aminokwasu cystyny, szczególnie cennego jeśli chodzi o kosmetykę włosów, albo trudne do kierowania - tak, że otrzymywane w wyniku hydrolizy produkty zawierają głównie wolne aminokwasy, a nie oligopeptydy.
I tak znane są procesy aktywacji wstępnej przez:
- hydrolizę przegrzanąparą wodną (Papadopoulos M. C. „Animal Feed Science and Technology, 16 (5) 1986); ten sposób traktowania powodował destrukcję cieplną szeregu wrażliwych aminokwasów, nie zapewniając jednocześnie wysokiej wydajności trawienia enzymatycznego,
- utlenianie, które nieodwracalnie przekształca cystynę w kwas cystynowy,
- traktowanie siarczynem - powodujące utworzenie S-sulfocysteiny,
- redukcję tiolami, w wyniku której poważna część cystyny zostaje przekształcona w lantioninę (z utratą siarki) i w mieszane dwusiarczki (opis patentowy japoński 82 109 797),
- hydrolizę wstępną kwasem solnym - otrzymane hydrolizaty zawierają głównie wolne aminokwasy, nawet przy stosowaniu niskich stężeń kwasu,
- wstępną hydrolizę alkaliczną, przy użyciu IV-rzędowych wodorotlenków amoniowych w podwyższonych temperaturach - połączoną z destrukcją szeregu aminokwasów, a zwłaszcza cystyny i z utworzeniem siarkowodoru, lantioniny i lizynoalaniny.
Ponadto znane jest z francuskiego opisu patentowego nr 2 492 282 traktowanie surowców keratynowych:
179 342
- rozpuszczalnikami polarnymi takimi jak dwumetyloformamid (kilka godzin w temperaturze 120 -140 st. C - wydajność następującej po tym hydrolizy enzymatycznej około 16%), lub metanol (około 20 godzin w temperaturze wrzenia - wydajność hydrolizy enzymatycznej około 14%),
- kwasem mrówkowym o stężeniu przekraczającym 90% w temperaturze około 90 st. C (wydajność hydrolizy enzymatycznej około 14%),
- nasyconym roztworem wodnym bromku litu w temperaturze wrzenia przez kilka godzin - wydajność hydrolizy od 13 do 75%.
Zgodnie z informacjami podanymi w wyżej cytowanym francuskim opisie patentowym, oddziaływanie wszystkich wymienionych środków powoduje przerwanie wiązań między pakietami włókien keratyny, ułatwiając tym samym hydrolizę enzymatycznąbez strat któregokolwiek aminokwasu. Niedogodnością tego rozwiązania jest konieczność wielogodzinnego poddawania substratu wysokiej temperaturze. Występują ponadto rozmaite wady - zależnie od stosowanego medium. Traktowanie naturalnej keratyny rozpuszczalnikami takimi jak metanol okazało się w toku naszych prób mało skuteczne, działanie nasyconym roztworem bromku litu - kosztowne, a użycie stężonego kwasu mrówkowego - faktycznie stanowiące wstępnąhydrolizę kwaśną w trakcie której około 20% surowca ulega rozpuszczeniu, jest szczególnie uciążliwe ze ' względu na drażniące działanie oparów.
Znany jest z opisu patentowego· US nr 4511653 sposób hydrolizy enzymatycznej kolagenów po uprzedniej degradacji ługiem. Kolageny, należące także do białek, są związkami o innym składzie chemicznym oraz innej budowie przestrzennej niż keratyny. Aminokwasem wyróżniającym kolageny spośród innych białek jest hydroksyprolina, która nie występuje w keratynach. Natomiast składnikiem decydującym o -Właściwościach i budowie przestrzennej keratyn jest cystyna, która nie występuje w kolagenach. W przypadku kolagenów usieciowanie przestrzenne włókien zależy od wiązań kowalencyjnych między poszczególnymi łańcuchami białkowymi. Struktura keratyn opiera się zaś na pochodzących z cystyny mostkach siarczkowych (-S-S-) stanowiących poprzeczne wiązania- między łańcuchami peptydowymi.
Z opisu patentowego PL nr 140977 znany jest sposób degradacji surowca keratynowego przy użyciu kwasów lub alkaliów o stężeniu do 20%, w temperaturze 20-80°C, w czasie 0,5-3 godzin, w celu otrzymania materiałówjonowymiennych. Warunki trawieniaj ak wynika z przykładów są w opisanym sposobie na tyle ostre, że niemożliwejest zachowanie w nierozpuszczonej części surowca ważnych aminokwasów takich jak cystyna w postaci niezmienionej.
Zachowanie cystyny w postaci niezmienionej w produkcie kosmetycznym jest szczególnie ważne w kosmetyce włosów. Do niedawna unikano hydrolizy alkalicznej keratyn przy otrzymywaniu produktów przeznaczonych do celów kosmetycznych w przekonaniu iż w roztworach alkalicznych grupy -SH- i -S-S- cystyny i cysteiny są częściowo przekształcane w tioetery (lantionina), a częściowo degradowane z wytworzeniem H2S. Faktyczne prowadzenie degradacji keratyn wyłącznie ługiem powoduje poważne obniżenie wartości produktu.
Podczas prowadzonych przez nas badań nieoczekiwanie okazało się, że działając alkaliami w szczególnie łagodnych warunkach można uwrażliwić keratyny na działanie enzymów proteolitycznych przy równoczesnym zachowaniu bez zmian znacznej części aminokwasów siarkowych - w postępowaniu trwającym stosunkowo krótko, przebiegającym w niskich temperaturach i nie powodujących zagrożeń dla obsługi.
W sposobie według wynalazku do aktywacji surowców keratynowych zastosowano rozcieńczone roztwory wodorotlenków metali alkalicznych w niskich temperaturach. Stwierdzono mianowicie, że aktywację można uzyskać poddając surowiec działaniu wodnych roztworów wodorotlenku sodowego bądź potasowego o stężeniu nie przekraczającym 10%, w temperaturze od 5 do 40°C przez czas nie dłuższy niż 8 godzin. Aktywacja tajest tym skuteczniejsza im dalej zostanie posunięty proces hydrolizy wstępnej. Ustalono, że wprawdzie w tej niewielkiej części surowca, która przejdzie do roztworu w trakcie hydrolizy wstępnej należy spodziewać się degradacj i takich aminokwasówj ak cystyna, to j ednak nierozpuszczona część zaktywowanego surow4
179 342 ca nie traci na wartości, zachowując ważne aminokwasy w postaci niezmienionej, a produktem hydrolizy enzymatycznej następującej po aktywacji są oligopeptydy.
Przykład I. 200 g świńskiej szczeciny odpadowej, pranej i oczyszczonej z naskórka traktowano 4% wodnym roztworem wodorotlenku sodowego przez 1 godzinę i 1) minut, utrzymując temperaturę 33°C. Następnie roztwór wodorotlenku usunięto, a złoże szczeciny wypłukano wodą do uzyskania pH = 7,0.
Próbkę szczeciny wysuszono i oznaczono w niej zawartość cystyny, przy czym stwierdzono, że stanowi ona 7)% cystyny obecnej w surowcu nie traktowanym. Oznaczono również całkowitą zawartość azotu w alkalicznym hydrolizacie, na podstawie której to analizy oszacowano, że do roztworu zostało przeprowadzone 8,6)% białek szczeciny.
Doprowadzone do odpowiedniego pH złoże szczeciny poddano enzymatycznej hydrolizie kolejno pepsynąi pankreatyną, co spowodowało przeprowadzenie do roztworu 67,3% szczeciny. Przeciętny ciężar cząsteczkowy pochodnych białkowych w hydrolizacie otrzymanym przy użyciu pepsyny wynosił 9)8, a w hydrolizacie uzyskanym przez działanie pankreatyną-1374.
Przykład II. 200 g pierza kurzego, mytego i suszonego, poddawano działaniu 2% wodnego roztworu wodorotlenku potasowego w temperaturze 18°C przez 1,) godziny. Następnie ług usunięto, a pierze odmyto wodą do pH 6,). Próbkę pierza wysuszono i oznaczono w niej zawartość cystyny, stwierdzając, że stanowi ona 69% cystyny obecnej w pierzu nietraktowanym. Złoże pierza poddano hydrolizie kolejno pankreatyną i pepsyną przeprowadzając do roztworu )2% surowca.
Przykład III. 180 g świńskiej szczeciny odpadowej, pranej i suszonej, aktywowano przy użyciu 3% wodorotlenku sodowego przez 2 godziny w temperaturze 3 )°C. Po odmyciu złoża surowca do neutralnego pH i analizie próbek traktowanej szczeciny oraz alkalicznego hydrolizatu stwierdzono, że aktywowana w ten sposób szczecina zawiera 74,)% cystyny obecnej w szczecinie surowej, a do roztworu przeszło 3,6)% białek szczeciny. Następnie hydrolizowano złoże kolejno pepsynąi pankreatynąosiągając przeprowadzenie do roztworu 43,2% surowca. Przeciętny ciężar cząsteczkowy pochodnych białkowych w hydrolizacie uzyskanym przy użyciu pepsyny wynosił 863, a w hydrolizacie po traktowaniu pankreatyną - 620.
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 60 egz.
Cena 2,00 zł.
Claims (1)
- Zastrzeżenie patentoweSposób aktywacji surowców keratynowych przed hydrolizą enzymatyczną do celów kosmetycznych, znamienny tym, że przed traktowaniem enzymami proteolitycznymi surowiec poddaje się działaniu wodnych roztworów wodorotlenków alkalicznych o stężeniu nie przekraczającym 10%, w temperaturze od 5° do 40°C, przez czas nie dłuższy niż 8 godzin.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL30783695A PL179342B1 (pl) | 1995-03-24 | 1995-03-24 | Sposób aktywacji surowców keratynowych przed hydrolizą enzymatyczną do celów kosmetycznych |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL30783695A PL179342B1 (pl) | 1995-03-24 | 1995-03-24 | Sposób aktywacji surowców keratynowych przed hydrolizą enzymatyczną do celów kosmetycznych |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL307836A1 PL307836A1 (en) | 1996-09-30 |
| PL179342B1 true PL179342B1 (pl) | 2000-08-31 |
Family
ID=20064689
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL30783695A PL179342B1 (pl) | 1995-03-24 | 1995-03-24 | Sposób aktywacji surowców keratynowych przed hydrolizą enzymatyczną do celów kosmetycznych |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL179342B1 (pl) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2012078060A2 (en) | 2010-12-06 | 2012-06-14 | Instytut Medycyny Doświadczalnej I Klinicznej Pan | Peptide preparations and peptides with antitumour activity |
-
1995
- 1995-03-24 PL PL30783695A patent/PL179342B1/pl not_active IP Right Cessation
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2012078060A2 (en) | 2010-12-06 | 2012-06-14 | Instytut Medycyny Doświadczalnej I Klinicznej Pan | Peptide preparations and peptides with antitumour activity |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL307836A1 (en) | 1996-09-30 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4948876A (en) | Keratin polymer containing S-sulphocysteine residues, process for its preparation and the compositions containing it | |
| US5763583A (en) | Process for producing solubilized protein | |
| US3842848A (en) | Keratin polypeptide hydrolyzates as hair treating agents | |
| KR100923326B1 (ko) | 케라틴 유도체의 제조방법 | |
| EP0052441B1 (en) | Hair rinse composition | |
| US2447860A (en) | Method of dispersing keratin proteins and the composition resulting therefrom | |
| JPH0591893A (ja) | ケラチンの加水分解方法 | |
| JP2004534137A (ja) | ケラチン系製品およびその製造方法 | |
| JPH06116300A (ja) | ケラチンフラグメントおよびその製造方法 | |
| DE2705669A1 (de) | Verfahren zur herstellung von wasserloeslichen hydrolyseprodukten aus keratinhaltigen rohstoffen | |
| JP2527120B2 (ja) | 硬ケラチン物質粉末の製造方法 | |
| CN113307860A (zh) | 基于生物酶解作用从制革回收牛毛中提取角蛋白的方法 | |
| JPH0721061B2 (ja) | 水溶性ケラチン蛋白質の製造方法 | |
| JPH07126296A (ja) | 可溶化蛋白質 | |
| US4835803A (en) | Process for producing a shape-memorizing wool and animal hair | |
| PL179342B1 (pl) | Sposób aktywacji surowców keratynowych przed hydrolizą enzymatyczną do celów kosmetycznych | |
| JPS6027680B2 (ja) | ケラチン加水分解物の製造方法 | |
| GB2061956A (en) | Process for the preparation of keratin hydrolysates | |
| JP2005068059A (ja) | パーマネントセット用毛髪処理剤及びそれを用いた毛髪処理方法 | |
| JPH08165298A (ja) | 可溶性蛋白質の製造法 | |
| KR100425507B1 (ko) | 인모성 가발사와 이의 제조방법 | |
| JP3459367B2 (ja) | パーマネントウェーブ用剤、羊毛改質剤、羊毛仕上剤、パーマネントウェーブ用エンドペーパー及びパーマネントウェーブの処理方法 | |
| JPS60243011A (ja) | パ−マネントウエ−ブ用第1剤 | |
| Howitt | CHEMICAL ATTACK OF TEXTILE FIBRES. PART II. PROTEIN FIBRES:(A) WOOL | |
| JPS5988413A (ja) | ヘア−リンス組成物 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20110324 |