PL193620B1 - Zastosowanie kompozycji obejmującej laktoperoksydazę, tiocyjanian (SCN<^>-<D>) i/lub jodek (I<^>-<D>), układ donorowy nadtlenku wodoru, w szczególności oksydazę glukozy i glukozę oraz podłoże olejowe - Google Patents
Zastosowanie kompozycji obejmującej laktoperoksydazę, tiocyjanian (SCN<^>-<D>) i/lub jodek (I<^>-<D>), układ donorowy nadtlenku wodoru, w szczególności oksydazę glukozy i glukozę oraz podłoże olejoweInfo
- Publication number
- PL193620B1 PL193620B1 PL98340370A PL34037098A PL193620B1 PL 193620 B1 PL193620 B1 PL 193620B1 PL 98340370 A PL98340370 A PL 98340370A PL 34037098 A PL34037098 A PL 34037098A PL 193620 B1 PL193620 B1 PL 193620B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- oil
- agent
- use according
- glucose
- lactoperoxidase
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N63/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
- A01N63/50—Isolated enzymes; Isolated proteins
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N25/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests
- A01N25/02—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, characterised by their forms, or by their non-active ingredients or by their methods of application, e.g. seed treatment or sequential application; Substances for reducing the noxious effect of the active ingredients to organisms other than pests containing liquids as carriers, diluents or solvents
- A01N25/04—Dispersions, emulsions, suspoemulsions, suspension concentrates or gels
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Agronomy & Crop Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Dentistry (AREA)
- Pest Control & Pesticides (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Virology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
1. Zastosowanie kompozycji obejmujacej laktoperoksydaze, tiocyjanian (SCN - ) i/lub jodek (I - ), uklad donorowy nadtlenku wodoru, w szczególnosci oksydaze glukozy i glukoze oraz podloze ole- jowe do wytwarzania srodka przeznaczonego do zwalczania patogennych organizmów roslin, w szczególnosci bakterii i grzybów, przy czym srodek na litr roztworu wodnego zawiera: co najmniej 10 mg laktoperoksydazy, co najmniej 50 I.U. oksydazy glukozy, co najmniej 0,05% glukozy, co najmniej 25 mg jonów jodkowych (I - ), co najmniej 5 mg jonów tiocyjanianowych (SCN - ), i maksimum 1% podloza olejowego. PL PL PL PL PL PL PL PL
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest zastosowanie kompozycji obejmującej laktoperoksydazę, tiocyjanian (SCN-) i/lub jodek (I-), układ donorowy nadtlenku wodoru, w szczególności oksydazę glukozy i glukozę oraz podłoże olejowe do wytwarzania środka do zwalczania patogennych organizmów roślin.
Istnieją różne rodzaje pestycydów przeciwko organizmom takim jak bakterie i grzyby. Często są to środki syntetyczne, które mogą mieć szkodliwe działanie wobec ludzi, zwierząt i środowiska. Często środki te wykazują taką wadę, że zwalczany organizm staje się na nie odporny i konieczne jest wyszukanie nowego czynnika służącego do kontrolowania określonego patogenu.
Wiadomo również, że aktywność niektórych fungicydów jest zależna od wilgotności. Do leczenia roślin i drzew, które rosną na otwartym terenie, takie ograniczone warunki stosowania są niekorzystne. Jednakże, podobne problemy mogą również wystąpić w przypadku upraw hodowanych w szklarniach.
Celem wynalazku jest więc dostarczenie nowego pestycydu, który nie posiada powyższych wad i który można zastosować do zwalczania patogennych bakterii i grzybów na roślinach, drzewach itp. in situ.
Cel ten osiągnięto przez zastosowanie do wytwarzania środka zwalczającego patogeny roślin, kompozycji obejmującej laktoperoksydazę, tiocyjanian (SCN-) i/lub jodek (I-) oraz układ donorowy nadtlenku wodoru, w szczególności oksydazę glukozy i glukozę. Oprócz układu oksydazy glukozy/glukozy można również zastosować inne układy donorowe wodoru, takie jak nadwęglan sodu albo stabilizowany nadtlenek wodoru.
Zaletą nowego środka wytworzonego zgodnie z zastosowaniem jest bardzo niskie albo żadne niebezpieczeństwo powstania oporności. Ponadto, środek ten jest naturalnego pochodzenia.
Aktywność laktoperoksydazy wobec drobnoustrojów jest znana i opisana, przykładowo, w patencie europejskim nr 0 514 417 oraz w publikacji międzynarodowego zgłoszenia WO 97/26908. W publikacjach tych ujawniono zastosowania tzw. układu LP (układ laktoperoksydazy) do konserwowania produktów kosmetycznych albo dla celów medycznych u ludzi i zwierząt. W publikacji WO 91/11105 ujawnione są kompozycje obejmujące laktoperoksydazę, jodek, tiocyjanian, glukozę, GOD, olej parafinowy i surfaktanty, które stosowane są jako kompozycje przeciwbakteryjne przeznaczone do higieny jamy ustnej oraz jako dezodoranty.
Ponieważ leczenie zakażeń drobnoustrojami u roślin, drzew i ich części ma miejsce w całkowicie innych (a zwykle znacznie innych) warunkach niż u ludzi i zwierząt, stąd nieoczywiste jest, że znane układy oparte na laktoperoksydazie mogą mieć aktywność biocydu in situ wobec patogenów roślinnych.
Jak już zaznaczono wyżej, wiele roślin, szczególnie upraw rolniczych, oraz drzew rośnie na otwartym terenie, a więc podlega warunkom pogodowym, takim jak wiatr, deszcz, promieniowanie słoneczne, zmiany temperatury itp. Wszystkie te czynniki mogą zmniejszyć skuteczność układu opartego na enzymach, które są stosunkowo bardziej wrażliwe w porównaniu z pestycydami chemicznymi. Specjalista w dziedzinie pestycydów nie od razu dostrzeże przydatność i szeroką stosowalność pestycydu opartego na laktoperoksydazie.
Wynalazek dotyczy zastosowania kompozycji obejmującej laktoperoksydazę, tiocyjanian (SCN-) i/lub jodek (I-), układ donorowy nadtlenku wodoru, w szczególności oksydazę glukozy i glukozę oraz podłoże olejowe do wytwarzania środka przeznaczonego do zwalczania patogennych organizmów roślin, w szczególności bakterii i grzybów, przy czym środek na litr roztworu wodnego zawiera:
co najmniej 10 mg laktoperoksydazy, co najmniej 50 I.U. oksydazy glukozy, co najmniej 0,05% glukozy, co najmniej 25 mg jonów jodkowych (I-), co najmniej 5 mg jonów tiocyjanianowych (SCN-), i maksimum 1% podłoża olejowego.
Do kompozycji dodaje się również podłoże olejowe w stosunkowo małej ilości, przez co uzyskuje się nieoczekiwane polepszenie skuteczności wytwarzanego środka.
Dodatek oleju mana celu zapewnienie dobrego rozmieszczenia środka na liściach i innych częściach rośliny oraz zapobieganie jego parowaniu, bowiem środek jest kompozycją wodną. Aktywność środka nie zależy od konkretnej temperatury czy wilgotności względnej. Szansa rozwoju oporności na środek jest mała, ponieważ układ nie działa swoiście na mikroorganizm, jak robią to antybiotyki. Komórki roślinne, ludzkie albo zwierzęce są niewrażliwe na ten układ.
PL 193 620 B1
W korzystnym wykonaniu wytworzony zgodnie z zastosowaniem według wynalazku środek na litr roztworu wodnego zawiera:
co najmniej 50 mg laktoperoksydazy, co najmniej 100 I.U. oksydazy glukozy, co najmniej 0,1% glukozy, co najmniej 50 mg jonów jodkowych (I-), co najmniej 10 mg jonów tiocyjanianowych (SCN-), i maksimum 0,4% podłoża olejowego.
Również w korzystnym wykonaniu wynalazku środek na litr roztworu wodnego zawiera:
10-100 mg, korzystnie 30-70 mg laktoperoksydazy,
50-1000 I.U., korzystnie 100-250 I.U. oksydazy glukozy,
0,05-2%, korzystnie 0,1-1% glukozy,
25-200 mg, korzystnie 50-100 mg jonów jodkowych (I-),
5-50 mg, korzystnie 10-20 mg jonów tiocyjanianowych (SCN-), i 0,2-1% podłoża olejowego.
W innym korzystnym wykonaniu wynalazku podłoże olejowe obejmuje co najmniej olej i środek powodujący emulgację oleju w roztworze wodnym w postaci emulsji oleju w wodzie, w szczególności emulgator. Korzystnie również podłoże olejowe w roztworze wodnym obejmuje sam olej, który ma właściwości samoemulgujące.
W korzystnym wykonaniu wynalazku olej jest wybrany z grupy obejmującej oleje mineralne, oleje roślinne albo oleje zwierzęce.
Korzystnie olej roślinny jest wybrany z grupy obejmującej olej arachidowy, olej sezamowy, olej rzepakowy, olej lniany, olej rycynowy, olej sojowy, olej kukurydziany i olej bawełniany. Szczególnie przydatny jest olej arachidowy.
Korzystnie olejem zwierzęcym jest olej rybi wybrany z grupy obejmującej olej ze śledzia albo olej z makreli.
Korzystnie olej mineralny jest wybrany z grupy obejmującej oleje parafinowe i oleje naftowe.
W korzystnym wykonaniu wynalazku w celu polepszenia rozmieszczenia środka na traktowanej powierzchni środek dalej obejmuje jeden albo wiele środków dyspergujących, którym korzystnie jest niejonowy środek zmniejszający napięcie powierzchniowe, przykładowo wybrany z grupy obejmującej alkohole etoksylowane, takie jak Volpo T7™ i fosfatydylo-lipidy, takie jak Nathin 130™, przy czym korzystnie stężenie środka dyspergującego wynosi 0,01%-0,2%, korzystnie 0,05% w 1 litrze roztworu wodnego.
W korzystnym wykonaniu wynalazku podłoże olejowe obejmuje:
80-90, korzystnie 85 części oleju,
5-15, korzystnie 10 części emulgatora, ewentualnie 1-10, korzystnie 5 części frakcji lecytyny, przy czym korzystnie olejem jest olej arachidowy, emulgatorem jest ICI Atlas 1086™, frakcją lecytyny jest Nathin 130™, zaś środkiem dyspergującym jest Volpo T7™.
W korzystnym wykonaniu wynalazku środek dalej obejmuje jedną albo wiele substancji lepkich wybranych z grupy obejmującej skrobię, gumy, takie jak guma ksantanowa, guma arabska i karboksymetylocelulozy (CMC).
W innym korzystnym wykonaniu wynalazku środek na litr roztworu wodnego zawiera:
mg laktoperoksydazy,
250 I.E. oksydazy glukozy,
0,25% glukozy,
100 mg jonów jodkowych (I-), mg jonów tiocyjanianowych (SCN-),
0,4% podłoża olejowego obejmującego:
części oleju arachidowego części emulgatora ICI Atlas 1086™ części frakcji lecytyny Nathin 130™ ewentualnie 0,5% środka dyspergującego Volpo T7™.
Korzystnie wytwarzany zgodnie z zastosowaniem według wynalazku środek jest przeznaczony do zwalczania patogennych dla roślin bakterii i/lub grzybów na roślinach, drzewach i ich częściach, w szczególności częściach stanowiących plony, takich jak kwiaty, cebulki, bulwy, owoce itp.
PL 193 620 B1
Korzystnie środek jest przeznaczony do nanoszenia przez rozpylanie, nakraplanie, rozpraszanie, napowietrzne rozpylenie, podlewanie, zanurzanie, nawadnianie kroplowe.
Korzystnie środek jest w zatężonej postaci i jest przeznaczony do zwalczania patogennych dla roślin organizmów w szczególności grzybów i bakterii.
W kolejnym korzystnym wykonaniu wynalazku wytwarzany środek jest w postaci zestawu, który obejmuje trzy kompozycje, z których pierwsza obejmuje kompozycję enzymu, obejmującą co najmniej laktoperoksydazę i ewentualne dodatki i ewentualnie jest w postaci zatężonej, drugą kompozycję donora nadtlenku wodoru obejmującą co najmniej oksydazę glukozy i glukozę, tiocyjanian i/lub jodek oraz ewentualnie inne dodatki oraz trzecią kompozycję olejową obejmującą co najmniej olej, ewentualnie emulgator, ewentualnie środek dyspersyjny i ewentualnie inne dodatki, przy czym, trzy kompozycje należy zmieszać ze sobą przed użyciem w stosunku takim, że otrzymuje żądany środek. Korzystnie zestaw taki przeznaczony jest do zwalczania patogennych dla roślin organizmów w szczególności grzybów i bakterii.
Podłoże olejowe zawsze obejmuje przynajmniej olej i czynnik emulgujący olej w roztworze wodnym w postaci emulsji oleju w wodzie. Czynnik emulgujący może być osobnym emulgatorem, ale również może nim być sam olej, który ma właściwości samo-emulgujące. Takie oleje samo-emulgujące można wytwarzać przez modyfikowanie oleju, przykładowo przez etoksylowanie. Na podstawie swej profesjonalnej wiedzy, specjalista może wybrać najodpowiedniejszy emulgator dla danego oleju.
Olej zastosowany w podłożu olejowym jest wybrany z grupy olejów mineralnych, olejów roślinnych, olejów zwierzęcych albo mieszanin jednego albo wielu olejów z danej grupy. Zalecane są oleje, które same posiadają mniejsze albo większe właściwości antymikrobiologiczne.
W celu przedłużenia aktywności środka in situ, można dodać jeden albo wiele substancji lepkich. Substancje lepkie zapewniają, przykładowo, że składniki środka nie zostaną spłukane z rośliny przez deszcz albo inne warunki. Substancje lepkie specjalista może również wybrać w prosty sposób z dostępnych źródeł. Przykłady obejmują skrobię, gumy, takie jak guma ksantanowa, i karboksymetylocelulozy (CMC).
Środek można nakładać przez rozpylenie, nakroplenie, rozproszenie, rozpylenie, podlewanie, zanurzanie, nawadnianie kroplowe. Szczególnie korzystnym sposobem nakładania środka jest rozpylenie, przy użyciu sposobów mało-objętościowych (układy mgłowe) i sposobów wielko-objętościowych. Nawadnianie kroplowe można zastosować do hodowli na podłożu „Rockwool” i innych substratach wzrostowych. Środek wytworzony zgodnie z zastosowaniem według wynalazku można również stosować do dezynfekcji układów nawadniających. W obu przypadkach, obecność podłoża olejowego nie jest konieczna dla optymalnej aktywności. Zanurzanie w kąpieli środka jest szczególnie przydatne do traktowania części roślin, w szczególności części stanowiącej plony, takie jak cebulki, bulwy, owoce itp.
Kompozycję przeznaczoną do wytwarzania środka można udostępniać w handlu w wielu postaciach. Zalecana jest postać, w której aktywność enzymu, laktoperoksydazy, jest przedłużona jak długo to możliwe, ponieważ wydłuża to okres składowania produktu. Aktywność laktoperoksydazy zaczyna się w obecności donora, nadtlenku wodoru. W tym przypadku, donorem nadtlenku wodoru jest układ oksydaza glukozy/glukoza. Stąd zalecane jest, przynajmniej w określonych przypadkach, dostarczenie donora nadtlenku wodoru osobno od laktoperoksydazy. Oprócz tego, podłoże olejowe i czynnik dyspergujący mogą być, o ile to konieczne, pakowane osobno. Przykładowo można dostarczyć zestaw do wytwarzania opisanego środka, który obejmuje ewentualnie zatężoną kompozycję enzymu, obejmującą przynajmniej laktoperoksydazę i ewentualne dodatki, kompozycję donora nadtlenku wodoru obejmującą przynajmniej oksydazę glukozy i glukozę, tiocyjanian i/lub jodek oraz ewentualnie inne dodatki oraz kompozycję olejową obejmującą przynajmniej olej, ewentualnie emulgator, ewentualnie czynnik dyspersyjny i ewentualnie inne dodatki, przy czym, trzy kompozycje należy zmieszać ze sobą przed użyciem w stosunku takim, że otrzymuje się żądany środek.
Kompozycję przeznaczoną do wytwarzania środka zgodnie z wynalazkiem można ewentualnie sprzedawać w postaci zatężonej, która może, ale nie musi być wysuszona. Gotowy środek otrzymuje się przez rozcieńczenie albo rozpuszczenie w, np. wodzie.
Grzyby, które można pomyślnie zwalczać środkiem wytworzonym zgodnie z zastosowaniem według wynalazku obejmują m.in.: Botryotinia spp. („szara pleśń), jak np. B. fuckeliana (bezpostaciowa Botrytis cinerea), Didymella spp., jak np. D. bryonia (= Mycospherella cucurbitaceae), D. lycopersici (= rak pomidorów), Puccunia spp. („rdza), taka jak np. P. horiana (= rdza japońska), Sphaeroteca spp. („żółta zgnilizna), jak np. S. fuliginea (zgnilizna ogórków) i S. pannose (zgnilizna róż), Erysiphe spp., Oidium spp. i Laveillula taurica (również odmiany zgnilizny prawdziwej), Fusarium spp. („zgnilizna
PL 193 620 B1 łodygi i/lub opadanie), Phytophora spp. („choroba łodygi i/lub korzenia) Pythium spp. („choroba łodygi), Plasmopara, Peronospora i Sclerospora spp (odmiany pleśni puszystej), Rhizoctonia, Verticillium i Sclerotinia spp. (powodująca plamy), Rhizopus i Penicillium spp. (powoduje zgniliznę podczas przechowywania) i Venturia spp. (powoduje parch).
Zakażenia bakteryjne, które można leczyć środkiem wytworzonym zgodnie z zastosowaniem według wynalazku obejmują m.in. zakażenia Erwinia chrysanthemi, Pseudomonas syringae, Xanthomonas campestris, Curtobactrium flaccumfaciens.
Środek można zastosować w szerszym sensie do ochrony roślin i kontrolowania patogenów, przykładowo w rolnictwie, ogrodnictwie, hodowli warzyw, hodowli roślin ozdobnych, hodowli owoców, hodowli cebulek, hodowli roślin doniczkowych, leśnictwie itp. oraz jako produkty ochronne dla roślin domowych. Oprócz samych roślin i drzew, można również leczyć części roślin, takie jak cebulki, bulwy, kwiaty, siewki, owoce itp.
Ochrona roślin i kontrola patogenów w znaczeniu tu zastosowanym oznacza według wynalazku działanie zapobiegawcze i lecznicze. W większości przypadków jednakże, dotyczyć to będzie niszczenia już istniejących patogenów. W wielu przypadkach jednakże, przewiduje się również działanie zapobiegawcze. Otrzymany zgodnie z zastosowaniem według wynalazku środek wymaga do aktywności wolnej wody, ale może się uaktywnić po wyschnięciu przez dodanie wody.
Otrzymany środek jest naturalnym pestycydem, a więc jest przyjazny dla środowiska.
Wynalazek może być stosowany do kontrolowania bakterii i/lub grzybów patogennych dla roślin, drzew i ich części, przez nałożenie otrzymanego zgodnie z zastosowaniem według wynalazku środka na roślinę, drzewo albo ich części.
Wynalazek zostanie dalej wyjaśniony i zilustrowany poniższymi przykładami
P r z y k ł a d 1
Bezpośrednia aktywność środka wytworzonego zgodnie z zastosowaniem według wynalazku wobec Verticillium lecanii
Zastosowano pył zarodników grzyba Verticillium lecanii, który stosuje się jako organizm testowy, 10 w ilości około 10x1010 zarodników/gram. Odważono 10 gramów i zawieszono w 100 ml wody. Zarodniki pozostawiono w spokoju przez minimum pół godziny.
500 ml środka według wynalazku wytworzono ze składników podanych w tabeli 1.
Tabel a l
| Ilość/500 ml | |
| laktoperoksydaza (LP) | 35 mg (1 mg = 1000 ABTS U*) |
| oksydaza glukozy (GO) | 12,5 mg (250 U/l**) |
| jodek potasu (KI) | 65 mg (100 ppm I-) |
| tiocyjnian potasu (KSCN) | 16,5 mg (20 ppm SCN-) |
| glukoza | 1,25 g (0,25%) |
| podłoże olejowe | 1,3 ml (1:375) |
| czynnik dyspersyjny | 0,25 ml (0,05%) |
| woda | do 500 ml |
* 1 jednostka LP: ilość laktoperoksydazy na ml, która daje wzrost ekstynkcji 4,41 na minutę przy długości fali 412 nm w roztworze substratu 1 mM ABTS i 0,1 mM nadtlenku wodoru w 50 mM buforze cytrynianowym w pH 5,0 i temperaturze 37°C. (ABTS = 2,2-azyno-di-(3-etylobenzotiazolino)-6-sulfonian).
** 1 jednostka GO: ilość enzymu, który utlenia 30 mg/l glukozy w 15 minut przy 35°C i pH 5,1.
Wodny roztwór doprowadzono do pH 6,5 kwasem cytrynowym. 10 ml zawiesiny zarodników dodano do 90 ml środka. Następnie zarodniki eksponowano na układ laktoperoksydazy przez 1, 3, 5 i 15 minut,
PL 193 620 B1 przy czym za każdym razem pobierano 1 ml i rozcieńczano 1000-krotnie w bieżącej wodzie w celu rozcieńczenia układu laktoperoksydazy.
Z rozcieńczonego roztworu pobierano 30 m l i pipetowano na płytkę SDA (agar Sabouraud z dekstrozą). Po 24 i 48 godzinach określano odsetek kiełkujących zarodników.
Odsetek ten porównywano ze ślepą próbą. Ślepa próba zawierała 10 ml zawiesiny zarodników z 90 ml bieżącej wody, którą rozcieńczono 1000-krotnie i umieszczono 30 m l na płytce SDA. Doświadczenie przeprowadzono w temperaturze 21°C.
Stwierdzono, że Verticillium lecanii został zabity w 99% przez działanie środkiem przez 1 minutę.
P r z y k ł a d 2
Aktywność wobec Verticillium lecanii po czasie aktywności środka równym 24 godziny
Doświadczenie przeprowadzono jak to opisano w przykładzie 1 z taką różnicą, że układ laktoperoksydazy przechowywano przez 24 godziny w 500-ml retorcie, po czym dodano do niego zawiesinę zarodników. Celem było sprawdzenie, czy po 24 godzinach układ wciąż jest aktywny.
Przy użyciu tej formulacji i po 24 godzinach od aktywowania układu Verticillium lecanii ulegał zniszczeniu w ponad 99% w ciągu 1 minuty.
P r z y k ł a d 3
Aktywność środka bez I- wobec Verticillium lecanii
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 1, przy użyciu środka pozbawionego KI (I-). Wtym przypadku badano jedynie aktywność wobec zarodników bezpośrednio po aktywacji układu.
Verticillium lecanii ulegał zniszczeniu w 25% przy użyciu tej kompozycji. Pokazuje to, że dodatek I- jest istotny dla aktywności biocydu wobec grzybów.
P r z y k ł a d 4
Aktywność środka bez SCN- wobec Verticillium lecanii
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 1, przy użyciu środka pozbawionego KSCN (SCN-). Wtym przypadku badano jedynie aktywność wobec zarodników bezpośrednio po aktywacji układu.
Verticillium lecanii ulegał zniszczeniu w 99% przy użyciu tej kompozycji według wynalazku.
P r z y k ł a d 5
Aktywność środka wobec Verticillium lecanii w różnych temperaturach
Doświadczenie przeprowadzono jak to opisano w przykładzie 1, ale w dwóch różnych temperaturach (±10°C i 37°C).
Verticillium lecanii ulegał zniszczeniu w 99% w obu temperaturach w ciągi 1 minuty.
P r z y k ł a d 6
Aktywność środka wobec Botrytis cinerea
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 1 z użyciem zarodników Botrytis cinerea zamiast zarodników Verticillium lecanii. Po inkubacji przez 30 i 60 minut oznaczano liczbę przeżywających zarodników.
Ponad 99% zarodników Botrytis cinerea ulegało zniszczeniu w ciągu 30 minut.
P r z y k ł a d 7
Bezpośrednie działanie środka wytworzonego zgodnie z zastosowaniem według wynalazku wobec Sphaerotheca fuliginea (pleśń ogórków)
Do testu biologicznego zastosowano plastikowe szalki Petri'ego o średnicy 9 cm. Każdą z szalek napełniono warstwą 8-10 mm agaru. Agar wytworzono przez rozpuszczenie 10 g sproszkowanego agaru w 1 litrze wody i zagotowanie. Następnie, agar zlano do zlewki i umieszczono w chłodnej łaźni wodnej. Gdy roztwór agaru ostygł do około 50°C, napełniono szalki Petri'ego. Tuż przed zestaleniem, (w temperaturze około 30-40°C) na agarze ułożono okrągłe wycinki liści ogórków. Wycinki liści miały tę samą średnicę co szalki i umieszczono je na agarze powierzchnią dolną liścia w dół. Wten sposób liść pozostawał świeży przez około 14 dni.
Wycinki liści zaszczepiono Sphaerotheca fuliginea. W tym celu liść ogórka ze świeżą pleśnią spryskano rozpylaczem roślinnym. Spływającą wodę z zarodnikami pleśni zbierano w zlewce. Szalki z wycinkami liści spryskano tą wodą przy użyciu rozpylacza Badger (ciśn. 2 bar). Wycinki suszono na powietrzu i umieszczono w komorze o wilgotności względnej (RH) 75%. RH 75% uzyskano przez rozpuszczenie 150 g NaCl w 100 ml wody. Roztwór NaCl umieszczono w zamkniętym zbiorniku z gazą nad cieczą, na której można położyć płytki z prowadzonym testem biologicznym.
PL 193 620 B1
1-2 dni po zaszczepieniu wycinków liści, szalki spryskano różnymi rodzajami środka. Odnośnikiem była wodai chemiczny rozpylacz.
Szalki z prowadzonym testem biologicznym spryskano spryskiwaczem Badger (2 bar) i wysuszono na powietrzu. Zamknięte szalki Petri'ego umieszczono powyżej nasyconego roztworu soli o RH równym 75%.
6-7 dni po zaszczepieniu, szalki oceniano pod względem obecności pleśni i odsetka powierzchni liścia zajętego przez pleśń. Jeżeli to możliwe i konieczne wycinki liści spryskiwano środkiem wytworzonym zgodnie z zastosowaniem według wynalazku w 7 dni po zaszczepieniu pleśnią. 5 dni po drugim spryskiwaniu wycinki liści badano ponownie.
Wytworzono 500 ml środka o składnikach podanych w tabeli 2.
Tabela 2
| Ilość/500 ml | |
| laktoperoksydaza (LP) | 15 mg (1 mg = 1000 ABTS U*) |
| oksydaza glukozy (GO) | 25 mg (500 U/l**) |
| jodek potasu (KI) | 32,5 mg (50 ppm I-) |
| tiocyjanian potasu (KSCN) | 8,25 mg (10 ppm SCN-) |
| glukoza | 5 g (1%) |
| woda | do 500 ml |
* 1 jednostka LP: ilość laktoperoksydazy na ml, która daje wzrost ekstynkcji 4,41 na minutę przy długości fali 412nm w roztworze substratu 1 mM ABTS i 0,1 mM nadtlenku wodoru w 50 mM buforze cytrynianowym w pH 5,0 i temperaturze 37°C. (ABTS = 2,2-azyno-di-(3-etylobenzotiazolino)-6-sulfonian).
** 1 jednostka GO: ilość enzymu, który utlenia 30 mg/l glukozy w 15 minut przy 35°C i pH 5,1.
Wodny roztwór doprowadzono do pH 6,5 kwasem cytrynowym. 10 ml zawiesiny zarodników dodano do 90 ml środka. Następnie zarodniki eksponowano na układ laktoperoksydazy przez 1, 3, 5 i 15 minut, przy czym za każdym razem pobierano 1 ml i rozcieńczano 1000-krotnie w bieżącej wodzie w celu rozcieńczenia układu laktoperoksydazy.
W tych warunkach, środek dawał wyniki kontrolne wobec Sphaerotheca fuliginea rzędu około 20-25%.
P r z y k ł a d 8
Aktywność środka w różnych stężeniach laktoperoksydazy
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 7, z taką różnicą, że zamiast 30 mg/l laktoperoksydazy zastosowano stężenie 100 mg/l (50 mg/500 ml).
W tym stężeniu, środek niszczył Sphaerotheca fuliginea w 55 do 65%.
P r z y k ł a d 9
Aktywność środka w różnych stężeniach laktoperoksydazy i podłoża olejowego
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 7, z taką różnicą, że oprócz podanych składników dodano podłoże olejowe zawierające olej arachidowy, emulgator Atlas 1086™ (ICI) oraz środek dyspersyjny Nathin 130™ + Volpo T7™. Podłoże olejowe dodano w ilości 1:250. Środek z 30 mg/l laktoperoksydazy + podłoże olejowe dawał kontrolne wyniki wobec Sphaerotheca fuliginea rzędu 50-55%, zaś środek ze 100 mg/l laktoperoksydazy + podłoże olejowe dawał kontrolne wyniki wobec Sphaerotheca fuliginea rzędu 80-95%.
Chemiczny odnośnik dawał wyniki kontrolne wynoszące około 80-95%. Woda nie wykazuje zauważalnego działania na Sphaerotheca fuliginea.
P r z y k ł a d 10
Doświadczenie pół-polowe do badania aktywności środka wobec Sphaerotheca fuliginea na roślinach ogórka do 15 młodych roślin ogórka umieszczono w zamkniętych klatkach w szklarni. Rośliny ogórka pozostawione nie opryskane i bezbronne wobec pleśni. Miały one około 60 cm i 4-5 liści. Rośliny
PL 193 620 B1 zaszczepiono w dniu 1 pleśnią przez opryskanie roztworem zarodników (patrz przykład 7). Dnia 7, rośliny traktowano środkiem wytworzonym zgodnie z zastosowaniem według wynalazku, wodą albo środkiem chemicznym. Substancje rozpylano pod ciśnieniem 5 bar). Dnia 8 i w dniach kolejnych rośliny badano na odsetek uszkodzeń pleśnią. Jeżeli to konieczne, drugie opryskiwanie miało miejsce w dniu 14 przy użyciu różnych środków.
Początkowe ubytki przed spryskiwaniem wynosiły 50% dla roślin traktowanych środkiem wytworzonym zgodnie z zastosowaniem według wynalazku i 50% dla roślin traktowanych za pomocą środka chemicznego.
1000 ml środka wytwarza się przy użyciu składników z tabeli 3
Tabel a 3
| Ilość/litr | |
| laktoperoksydaza (LP) | 100 mg (1 mg = 1000 ABTS U*) |
| oksydaza glukozy (GO) | 50 mg (500 U/l**) |
| jodek potasu (KI) | 130 mg (100 ppm I-) |
| tiocyjanian potasu (KSCN) | 33 mg (20 ppm SCN-) |
| glukoza | 10 g (1%) |
| podłoże olejowe | 1:250 |
| woda | do 1000 ml |
* 1 jednostka LP: ilość laktoperoksydazy na ml, która daje wzrost ekstynkcji 4,41 na minutę przy długości fali 412 nm w roztworze substratu 1 mM ABTS i 0,1 mM nadtlenku wodoru w 50 mM buforze cytrynianowym w pH 5,0 i temperaturze 37°C. (ABTS = 2,2-azyno-di-(3-etylobenzotiazolino)-6-sulfonian).
**1 jednostka GO: ilość enzymu, który utlenia 30 mg/l glukozy w 15 minut przy 35°C i pH 5,1.
W tym stężeniu środek wytworzony zgodnie z zastosowaniem według wynalazku ograniczał wzrost Sphaerotheca fuliginea o około 80%.
Zastosowanie środka chemicznego powodowało ograniczenie wzrostu Sphaerotheca fuliginea o około 40%.
P r z y k ł a d 11
Doświadczenie pół-polowe badające aktywność środka z dodatkiem środka dyspersyjnego wobec Sphaerotheca fuliginea na roślinie ogórka
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 10 z taką różnicą, że dodano środka dyspersyjnego. Stężenie środka dyspersyjnego Volpo T7™ wynosiło 0,05%. Początkowe uszkodzenie pleśnią przed spryskaniem wynosiło 35-40%.
W tym stężeniu środek bez środka dyspersyjnego miał działanie względem Sphaerotheca fuliginea 85% względem kontroli jaką stanowiła woda. W tym stężeniu środek wraz ze środkiem dyspersyjnym dawał wynik względem Sphaerotheca fuliginea około 99%.
P r z y k ł a d 12
Doświadczenie polowe badające aktywność środka wobec Sphaerotheca fuliginea na roślinach ogórka z i bez środka dyspersyjnego
Zastosowano taki sam sposób jak w doświadczeniu w przykładzie 10, z taką różnicą, że zastosowano w pełni dojrzałe rośliny w szklarni i przeprowadzono opryskiwanie przy użyciu opryskiwacza plecakowego („knapsack) albo opryskiwacza taczkowego („spray barrow).
1000 l środka wytworzono przy użyciu składników pokazanych w tabeli 4.
Początkowe uszkodzenie przez Sphaerotheca fuliginea przed opryskiem wynosiło 80-90%. Przeprowadzono leczenie zi bez środka dyspersyjnego.
PL 193 620 B1
T ab el a 4
| Ilość/1000 litrów | |
| laktoperoksydaza (LP) | 70 g (1 mg = 1000 ABTS U*) |
| jodek potasu (KI) | 130 g (100 ppm I-) |
| tiocyjanian potasu (KSCN) | 33 g (20 ppm SCN-) |
| oksydaza glukozy (GO) | 25 g (500 U/l**) |
| glukoza | 2500 g (0,25%) |
| podłoże olejowe | 2666 ml (1:375) |
| środek dyspersyjny | 500 ml (0,05%) |
* 1 jednostka LP: ilość laktoperoksydazy na ml, która daje wzrost ekstynkcji 4,41 na minutę przy długości fali 412 nm w roztworze substratu 1 mM ABTS i 0,1 mM nadtlenku wodoru w 50 mM buforze cytrynianowym w pH 5,0 i temperaturze 37°C. (ABTS = 2,2-azyno-di-(3-etylobenzotiazolino)-6-sulfonian).
** 1 jednostka GO: ilość enzymu, który utlenia 30 mg/l glukozy w 15 minut przy 35°C i pH 5,1.
Środek razem ze środkiem dyspersyjnym dawał wynik wobec Sphaerotheca fuliginea około 90%. Środek bez środka dyspersyjnego dawał wynik około 75%.
P r z y k ł a d 13
Aktywność wobec Sphaerotheca fuliginea na roślinach ogórka, przy różnych stężeniach laktoperoksydazy
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 12, z taką różnicą, że stężenie laktoperoksydazy (LP) wynosiło 70 mg/l, 60 mg/l albo 50 mg/l.
Nie stwierdzono żadnych różnic w tym doświadczeniu pomiędzy różnymi stężeniami laktoperoksydazy. Wyniki kontrolne dla wszystkich trzech stężeń LP wynosiły około 75 do 80%.
P r z y k ł a d 14
Aktywność środka wobec Leveillula taurica na roślinach papryki
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 12 z opryskiwaczem plecakowym z taką różnicą, że zamiast ogórka zastosowano paprykę porośniętą pleśnią Leveillula taurica. Nie zastosowano środka dyspersyjnego.
W tym stężeniu środek według wynalazku ograniczał wzrost pleśni Leveillula taurica na papryce w około 60-70%.
P r z y k ł a d 15
Aktywność środka względem Oidium lycopersicum na roślinach pomidora
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 12 z opryskiwaczem plecakowym, z taką różnicą, że zamiast ogórków zastosowano pomidory porośnięte pleśnią Oidium lycopersicum.
W tym stężeniu, środek wytworzony zgodnie z zastosowaniem według wynalazku ograniczał wzrost pleśni Oidium lycopersicum na pomidorach w około 80-85%.
P r z y k ł a d 16
Aktywność środka wobec Xanthomonas campestris
Wytworzono zawiesinę bakterii o gęstości 108 zarodników/ml w pożywce odżywczej (Nutrient
Broth). 500 ml środka wytworzono przy użyciu składników opisanych w tabeli 5.
PL 193 620 B1
Tabel a 5
| Ilość/1000 litrów | |
| laktoperoksydaza (LP) | 35 mg (1 mg = 1000 ABTS U*) |
| oksydaza glukozy (GO) | 12,5 mg (500 U/l**) |
| jodek potasu (Kl) | 65 g (100 ppm I-) |
| tiocyjanian potasu (KSCN) | 16,5 g (20 ppm SCN-) |
| glukoza | 1,25 g (0,25%) |
| pożywka odżywcza | do 500 ml |
* 1 jednostka LP: ilość laktoperoksydazy na ml, która daje wzrost ekstynkcji 4,41 na minutę przy długości fali 412 nm w roztworze substratu 1 mM ABTS i 0,1 mM nadtlenku wodoru w 50 mM buforze cytrynianowym w pH 5,0 i temperaturze 37°C. (ABTS = 2,2-azyno-di-(3-etylobenzotiazolino)-6-sulfonian).
** 1 jednostka GO: ilość enzymu, który utlenia 30 mg/l glukozy w 15 minut przy 35°C i pH 5,1.
ml zawiesiny bakterii dodano do 90 ml środka. Bakterie eksponowano na działanie środka przez 5, 10, 15 i 30 minut, po czym 1 ml pobierano i rozcieńczano 1000-krotnie w pożywce odżywczej w celu rozcieńczenia środka.
Z tego rozcieńczonego roztworu pobierano 0,1 ml i pipetowano na płytkę NUA (agar odżywczy) i wysiewano. Po 72 godzinach płytki oceniano w kierunku wzrostu bakterii. Wyniki porównywano ze ślepą próbą.
Doświadczenie przeprowadzono w temperaturze 21°C i w pH około 7,5.
W doświadczeniu zastosowano bakterie Xanthomonas campestris.
Przy użyciu tego sposobu Xanthomonas campestris ulegały zniszczeniu w 100% po 5 minutach działania środka.
P r z y k ł a d 17
Aktywność środka wobec Pseudomonas syringae
Doświadczenie przeprowadzono w sposób opisany w przykładzie 16, z taką różnicą, że zamiast Xanthomonas campestris badano Pseudomonas syringae.
Pseudomonas syringae ulegały zniszczeniu w 100% po 5 minutach działania w opisany sposób środka wytworzonego zgodnie z zastosowaniem według wynalazku.
Claims (21)
1. Zastosowanie kompozycji obejmującej laktoperoksydazę, tiocyjanian (SCN-) i/lub jodek (I-), układ donorowy nadtlenku wodoru, w szczególności oksydazę glukozy i glukozę oraz podłoże olejowe do wytwarzania środka przeznaczonego do zwalczania patogennych organizmów roślin, w szczególności bakterii i grzybów, przy czym środek na litr roztworu wodnego zawiera:
co najmniej 10 mg laktoperoksydazy, co najmniej 50 I.U. oksydazy glukozy, co najmniej 0,05% glukozy, co najmniej 25 mg jonów jodkowych (I-), co najmniej 5 mg jonów tiocyjanianowych (SCN-), i maksimum 1% podłoża olejowego.
2. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że środek na litr roztworu wodnego zawiera: co najmniej 50 mg laktoperoksydazy, co najmniej 100 I.U. oksydazy glukozy, co najmniej 0,1% glukozy, co najmniej 50 mg jonów jodkowych (I-), co najmniej 10 mg jonów tiocyjanianowych (SCN-),
PL 193 620 B1 i maksimum 0,4% podłoża olejowego.
3. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że środek na litr roztworu wodnego zawiera:
10-100 mg, korzystnie 30-70 mg laktoperoksydazy,
50-1000 I.U., korzystnie 100-250 I.U. oksydazy glukozy,
0,05-2%, korzystnie 0,1-1% glukozy,
25-200 mg, korzystnie 50-100 mg jonów jodkowych (I-),
5-50 mg, korzystnie 10-20 mg jonów tiocyjanianowych (SCN-), i 0,2-1% podłoża olejowego.
4. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że podłoże olejowe obejmuje co najmniej olej i środek powodujący emulgację oleju w roztworze wodnym w postaci emulsji oleju w wodzie, w szczególności emulgator.
5. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że podłoże olejowe w roztworze wodnym obejmuje sam olej, który ma właściwości samoemulgujące.
6. Zastosowanie według zastrz. 4 albo 5, znamienne tym, że olej jest wybrany z grupy obejmującej oleje mineralne, oleje roślinne albo oleje zwierzęce.
7. Zastosowanie według zastrz. 6, znamienne tym, że olej roślinny jest wybrany z grupy obejmującej olej arachidowy, olej sezamowy, olej rzepakowy, olej lniany, olej rycynowy, olej sojowy, olej kukurydziany i olej bawełniany.
8. Zastosowanie według zastrz. 6, znamienne tym, że olejem zwierzęcym jest olej rybi wybrany z grupy obejmującej olej ze śledzia albo olej z makreli.
9. Zastosowanie według zastrz. 6, znamienne tym, że olej mineralny jest wybrany z grupy obejmującej oleje parafinowe i oleje naftowe.
10. Zastosowanie według zastrz. 1-9, znamienne tym, że środek dalej obejmuje jeden albo wiele środków dyspergujących.
11. Zastosowanie według zastrz. 10, znamienne tym, że środkiem dyspergującym jest niejonowy środek zmniejszający napięcie powierzchniowe, przykładowo wybrany z grupy obejmującej alkohole etoksylowane, takie jak Volpo T7™ i fosfatydylo-lipidy takie jak Nathin 130™.
12. Zastosowanie według zastrz. 10 albo 11, znamienne tym, że stężenie środka dyspergującego wynosi 0,01%-0,2%, korzystnie 0,05% w 1 litrze roztworu wodnego.
13. Zastosowanie według zastrz. 1 albo 5, albo 10, znamienne tym, że podłoże olejowe obejmuje:
80-90, korzystnie 85 części oleju,
5-15, korzystnie 10 części emulgatora, ewentualnie 1-10, korzystnie 5 części frakcji lecytyny.
14. Zastosowanie według zastrz. 13, znamienne tym, że olejem jest olej arachidowy, emulgatorem jest ICI Atlas 1086™, frakcją lecytyny jest Nathin 130™, zaś środkiem dyspergującym jest Volpo T7™.
15. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że środek dalej obejmuje jedną albo wiele substancji lepkich wybranych z grupy obejmującej skrobię, gumy, takie jak guma ksantanowa, guma arabska i karboksymetylocelulozy (CMC).
16. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że środek na litr roztworu wodnego zawiera:
70 mg laktoperoksydazy,
250 I.E. oksydazy glukozy,
0,25% glukozy,
100 mg jonów jodkowych (I-),
20 mg jonów tiocyjanianowych (SCN-),
0,4% podłoża olejowego obejmującego:
85 części oleju arachidowego
10 części emulgatora ICI Atlas 1086™
5 części frakcji lecytyny Nathin 130™ ewentualnie 0,5% środka dyspergującego Volpo T7™.
17. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że wytwarzany środek jest przeznaczony do zwalczania patogennych dla roślin bakterii i/lub grzybów na roślinach, drzewach i ich częściach, w szczególności częściach stanowiących plony, takich jak kwiaty, cebulki, bulwy, owoce itp.
18. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że wytwarzany środek jest przeznaczony do nanoszenia przez rozpylanie, nakraplanie, rozpraszanie, napowietrzne rozpylenie, podlewanie, zanurzanie, nawadnianie kroplowe.
PL 193 620 B1
19. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że środek jest w zatężonej postaci i jest przeznaczony do zwalczania patogennych dla roślin organizmów w szczególności grzybów i bakterii.
20. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że wytwarzany środek jest w postaci zestawu, który obejmuje trzy kompozycje, z których pierwsza obejmuje kompozycję enzymu, obejmującą co najmniej laktoperoksydazę i ewentualne dodatki i ewentualnie jest w postaci zatężonej, drugą kompozycję donora nadtlenku wodoru obejmującą co najmniej oksydazę glukozy i glukozę, tiocyjanian i/lub jodek oraz ewentualnie inne dodatki oraz trzecią kompozycję olejową obejmującą co najmniej olej, ewentualnie emulgator, ewentualnie środek dyspersyjny i ewentualnie inne dodatki, przy czym, trzy kompozycje należy zmieszać ze sobą przed użyciem w stosunku takim, że otrzymuje się żądany środek.
21. Zastosowanie według zastrz. 20, znamienne tym, że zestaw przeznaczony jest do zwalczania patogennych dla roślin organizmów w szczególności grzybów i bakterii.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| NL1007457 | 1997-11-05 | ||
| PCT/NL1998/000640 WO1999022597A1 (en) | 1997-11-05 | 1998-11-05 | Pesticide against plant-pathogenic microorganisms |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL340370A1 PL340370A1 (en) | 2001-01-29 |
| PL193620B1 true PL193620B1 (pl) | 2007-02-28 |
Family
ID=19765961
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL98340370A PL193620B1 (pl) | 1997-11-05 | 1998-11-05 | Zastosowanie kompozycji obejmującej laktoperoksydazę, tiocyjanian (SCN<^>-<D>) i/lub jodek (I<^>-<D>), układ donorowy nadtlenku wodoru, w szczególności oksydazę glukozy i glukozę oraz podłoże olejowe |
Country Status (20)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6447811B1 (pl) |
| EP (1) | EP1028628B1 (pl) |
| JP (1) | JP4545311B2 (pl) |
| KR (1) | KR100603088B1 (pl) |
| AT (1) | ATE233050T1 (pl) |
| AU (1) | AU752395B2 (pl) |
| BR (1) | BR9813969A (pl) |
| CA (1) | CA2309500C (pl) |
| DE (1) | DE69811709T2 (pl) |
| DK (1) | DK1028628T3 (pl) |
| ES (1) | ES2189264T3 (pl) |
| HU (1) | HUP0004393A3 (pl) |
| IL (1) | IL135946A (pl) |
| NL (1) | NL350034I2 (pl) |
| NZ (1) | NZ504293A (pl) |
| PL (1) | PL193620B1 (pl) |
| PT (1) | PT1028628E (pl) |
| RU (1) | RU2224436C2 (pl) |
| TR (1) | TR200001273T2 (pl) |
| WO (1) | WO1999022597A1 (pl) |
Families Citing this family (23)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2812173B1 (fr) * | 2000-07-28 | 2003-01-03 | Aventis Cropscience Sa | Association fongicide a base d'huile d'origine vegetale |
| MX2007000493A (es) * | 2004-07-14 | 2007-03-28 | Solvay | Uso de peroxidos inorganicos para la oxigenacion del suelo, con el fin de prevenir enfermedades causadas por agentes anaerobicos en plantas. |
| US20060289354A1 (en) * | 2005-06-15 | 2006-12-28 | Buckman Laboratories International, Inc. | Method and composition to control the growth of microorganisms in aqueous systems and on substrates |
| EP2016187B1 (en) * | 2006-05-10 | 2016-07-06 | Laclede, Inc. | Compositions for use in the enzymatic treatment of lung disorders |
| AU2012216497B2 (en) * | 2006-05-10 | 2013-09-12 | Laclede, Inc. | Compositions and Methods for Enzymatic Treatment of Lung Disorders |
| FR2914146B1 (fr) * | 2007-03-30 | 2011-05-20 | Xeda International | Procede de traitement nematocide des plantes a base d'eugenol et de lecithine(s) et/ou derives |
| TW200913894A (en) * | 2007-05-18 | 2009-04-01 | Valent Biosciences Corp | Oil formulations and methods of use |
| CN106399292B (zh) | 2011-03-10 | 2019-07-26 | 康奈尔大学 | 磁性纳米粒子和产生自由基的酶的介孔催化剂及其使用方法 |
| WO2012166392A1 (en) | 2011-05-20 | 2012-12-06 | The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health & Human Services | Paenibacillus alvei strain ts-15 and its use in controlling pathogenic organisms |
| FR2984690B1 (fr) * | 2011-12-22 | 2014-04-11 | Total Raffinage Marketing | Utilisation d’une composition vaporisable pour la protection des plantes cultivees contre les ravageurs |
| CA2885546C (en) | 2012-10-05 | 2018-06-05 | Cornell University | Enzymes forming mesoporous assemblies embedded in macroporous scaffolds |
| EP2925167A1 (en) * | 2012-11-30 | 2015-10-07 | DSM IP Assets B.V. | Synergistic fungicidal compositions containing lactoperoxidase system |
| US11311017B2 (en) | 2014-04-30 | 2022-04-26 | Matoke Holdings Limited | Antimicrobial compositions |
| EP2987408A1 (en) * | 2014-08-20 | 2016-02-24 | National University of Ireland, Galway | Iodophor composition with improved stability in the presence of organic material |
| GB2573068B (en) * | 2015-02-03 | 2020-02-12 | Matoke Holdings Ltd | Antimicrobial Compositions |
| CN107896481B (zh) * | 2015-05-18 | 2021-07-06 | 齐姆特罗尼克斯公司 | 磁力固定化的杀微生物酶 |
| EP3323166B1 (en) | 2015-07-15 | 2024-03-13 | ZYMtronix, Inc. | Automated bionanocatalyst production |
| FR3041269B1 (fr) * | 2015-09-17 | 2020-04-17 | Taradon Laboratory | Composition comprenant des ions i2scn- et/ou des ions i(scn)2- |
| WO2018034877A1 (en) * | 2016-08-13 | 2018-02-22 | Zymtronix, Llc | Magnetically immobilized biocidal enzymes and biocidal chemicals |
| GB201716986D0 (en) | 2017-10-16 | 2017-11-29 | Matoke Holdings Ltd | Antimicrobial compositions |
| CA3253718A1 (en) | 2022-07-18 | 2024-01-25 | Acies Bio D.O.O. | PEROXIDASE-BASED BIOLOGICAL CONTROL AGENTS |
| EP4309500B1 (en) | 2022-07-18 | 2025-06-04 | Acies Bio d.o.o. | Peroxidase based biocontrol agents |
| WO2025194130A1 (en) * | 2024-03-14 | 2025-09-18 | Zymtronix Catalytic Systems, Inc. | Herbicides and herbicide enhancer compositions and methods of use thereof |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB9002422D0 (en) * | 1990-02-03 | 1990-04-04 | Boots Co Plc | Anti-microbial compositions |
| GB9406075D0 (en) * | 1994-03-26 | 1994-05-18 | Boots Co Plc | Method of killing microorganisms |
| SE506529C2 (sv) | 1996-01-23 | 1997-12-22 | Semper Ab | Användning av ett laktoperoxidassystem för framställning av ett läkemedel mot Helicobacter pylori |
-
1998
- 1998-11-05 AT AT98954839T patent/ATE233050T1/de active
- 1998-11-05 KR KR1020007004902A patent/KR100603088B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 1998-11-05 DK DK98954839T patent/DK1028628T3/da active
- 1998-11-05 CA CA2309500A patent/CA2309500C/en not_active Expired - Fee Related
- 1998-11-05 ES ES98954839T patent/ES2189264T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1998-11-05 IL IL13594698A patent/IL135946A/xx not_active IP Right Cessation
- 1998-11-05 AU AU11786/99A patent/AU752395B2/en not_active Ceased
- 1998-11-05 US US09/530,728 patent/US6447811B1/en not_active Expired - Fee Related
- 1998-11-05 PT PT98954839T patent/PT1028628E/pt unknown
- 1998-11-05 HU HU0004393A patent/HUP0004393A3/hu unknown
- 1998-11-05 NZ NZ504293A patent/NZ504293A/en unknown
- 1998-11-05 JP JP2000518553A patent/JP4545311B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1998-11-05 RU RU2000114178A patent/RU2224436C2/ru not_active IP Right Cessation
- 1998-11-05 EP EP19980954839 patent/EP1028628B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1998-11-05 PL PL98340370A patent/PL193620B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1998-11-05 DE DE1998611709 patent/DE69811709T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1998-11-05 BR BR9813969A patent/BR9813969A/pt not_active Application Discontinuation
- 1998-11-05 TR TR200001273T patent/TR200001273T2/xx unknown
- 1998-11-05 WO PCT/NL1998/000640 patent/WO1999022597A1/en not_active Ceased
-
2007
- 2007-07-26 NL NL350034C patent/NL350034I2/nl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| IL135946A (en) | 2005-08-31 |
| PT1028628E (pt) | 2003-06-30 |
| DE69811709D1 (de) | 2003-04-03 |
| WO1999022597A1 (en) | 1999-05-14 |
| JP2001521878A (ja) | 2001-11-13 |
| IL135946A0 (en) | 2001-05-20 |
| CA2309500A1 (en) | 1999-05-14 |
| JP4545311B2 (ja) | 2010-09-15 |
| DE69811709T2 (de) | 2004-03-25 |
| EP1028628B1 (en) | 2003-02-26 |
| EP1028628A1 (en) | 2000-08-23 |
| NL350034I1 (nl) | 2007-10-01 |
| KR100603088B1 (ko) | 2006-07-20 |
| DK1028628T3 (da) | 2003-06-16 |
| KR20010031831A (ko) | 2001-04-16 |
| TR200001273T2 (tr) | 2000-11-21 |
| AU1178699A (en) | 1999-05-24 |
| PL340370A1 (en) | 2001-01-29 |
| RU2224436C2 (ru) | 2004-02-27 |
| ATE233050T1 (de) | 2003-03-15 |
| NZ504293A (en) | 2002-03-28 |
| ES2189264T3 (es) | 2003-07-01 |
| US6447811B1 (en) | 2002-09-10 |
| NL350034I2 (nl) | 2008-03-03 |
| HUP0004393A3 (en) | 2004-03-01 |
| HUP0004393A2 (hu) | 2001-04-28 |
| AU752395B2 (en) | 2002-09-19 |
| CA2309500C (en) | 2012-04-17 |
| BR9813969A (pt) | 2000-09-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| PL193620B1 (pl) | Zastosowanie kompozycji obejmującej laktoperoksydazę, tiocyjanian (SCN<^>-<D>) i/lub jodek (I<^>-<D>), układ donorowy nadtlenku wodoru, w szczególności oksydazę glukozy i glukozę oraz podłoże olejowe | |
| DE69925516T2 (de) | Behandlung mit Persäuren zur Bekämpfung von pathogenen Organismen auf wachsenden Pflanzen | |
| EP2053921B1 (en) | A new antifungal composition | |
| EP3071033B1 (en) | Use of hydroxyapatite as a carrier of bioactive substances for treating grapevine trunk diseases | |
| CZ2001254A3 (cs) | Ekologický způsob, prostředek, rostlinná hmota a brambory | |
| CA2573860A1 (en) | Formulation and method for treating plants to control or suppress a plant pathogen | |
| AU2009201512A1 (en) | Method of treating microbial plant disease | |
| PL185168B1 (pl) | Środek o działaniu grzybo-i/lub owadobójczym, środek o działaniu grzybo-i/lub owadobójczym i przyspieszającym wzrost roślin, sposób zwalczania owadów oraz sposób zwalczania owadów i przyspieszania wzrostu roślin | |
| WO2022064262A1 (en) | Nano-silver for the preservation and treatment of diseases in agriculture | |
| EP0228464A1 (en) | Plant microbiocidal compound and method | |
| JP3095551B2 (ja) | 無農薬栽培方法 | |
| KR20030096303A (ko) | 식물 인비고레이터 | |
| Solgi | Application of Biogenic and Non-biogenic Synthesized Metal Nanoparticles on Longevity of Agricultural Crops | |
| JPH08104602A (ja) | 植物の生体防御増強剤 | |
| CZ38013U1 (cs) | Fungicidní prostředek | |
| JPH0441407A (ja) | 植物の制菌剤 | |
| WO2025037126A1 (en) | The compounds to combat fungal and bacterial with plant disease | |
| KR20020087232A (ko) | 원예작물 재배용 액비 조성물 및 이를 이용하는 방법 | |
| IL296523A (en) | Protected plants and methods of obtaining them | |
| JP2002212003A (ja) | 切り花の鮮度保持剤 | |
| JPS60237986A (ja) | トリコデルマ菌の増殖法 | |
| JP2006136261A (ja) | マルチング材とその施工方法 | |
| NO870949L (no) | Plantemikrobicid forbindelse og metode. | |
| MXPA97005257A (en) | Pesticide and accelerator of growth of plants environmentally seg |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20111105 |