PL199165B1

PL199165B1 - Trwały w temperaturze otoczenia napój

Info

Publication number: PL199165B1
Application number: PL363530A
Authority: PL
Inventors: Marian Blyth; Aminata Yanda Kanu; Roy Michael Kirby; Malcolm Stratford
Original assignee: Unilever Nv
Priority date: 2000-05-15
Filing date: 2001-05-01
Publication date: 2008-08-29
Also published as: JP4519391B2; EP1282370B1; JP2003533201A; MY128418A; HUP0302137A2; CA2408933A1; CN1263404C; DE60115632D1; AU2001267391B2; DE60115632T2; AU6739101A; AR028098A1; EP1282370A1; US6761919B2; MXPA02011243A; BR0110688A; ATE311769T1; HUP0302137A3; GB0011676D0; CN1429079A

Abstract

Trwa ly w temperaturze otoczenia napój zawieraj acy 1 do 175 ppm kwasu cynamonowego i 10 do 200 ppm kwasu sorbinowego lub kwasu benzoesowego, który dodatkowo zawiera 1 do 100 ppm przynajmniej jednego olejku eterycz- nego wybranego z grupy sk ladaj acej si e z: 4-hydroksy- benzoesanu benzylu, 4-t-butylocykloheksanonu, karwonu, aldehydu cynamonowego, aldehydu cytrynowego, dimety- lowego acetalu aldehydu cytrynowego, cytronellolu, alkoho- lu kuminowego, kwasu cykloheksanomas lowego, octanu 2-cykloheksyloetylu, trans,trans-2,4-dekadienalu, dekanalu, dekanolu, dihydrokarweolu, 3,7-dimetylo-1-oktanolu, cyklo- heksanopropionianu etylu, pirogronianu etylu, etylowaniliny, jasmonu, aldehydu o-metoksycynamonowego, antranilanu metylu, aldehydu a-metylo-trans-cynamonowego, metylo- eugenolu, nonanianu metylu, 2-metylo-2-pentenalu, 5-metylo-2-fenylo-2-heksenalu, salicylanu metylu, octanu 4-metylo-5-tiazoloetylu, myrtenolu, neomentolu, kwasu nonanowego, ?-nonalaktonu, d-oktalaktonu, kwasu oktano- wego (kaprylowego), 1-oktanolu, 1-fenylo-1,2-propadionu, octanu piperonylu, benzoesanu propylu, pulgeonu, aldehy- du sorbinowego (2,4-heksadienalu), terpinen-4-olu, aldehy- du toluilowego, ?-undekalaktonu, undekanalu, 1-undekanolu i waniliny. PL PL PL PL

Description

Opis wynalazku

Niniejszy wynalazek dotyczy napoju trwałego w temperaturze otoczenia, w szczególności napoju opartego na herbacie konserwowanego dodatkiem minimalnej ilości kwasu sorbinowego lub kwasu benzoesowego.

Znany stan techniki

W ostatnich latach konsumentom chcą cym zaspokoić pragnienie gotowymi napojami, oferuje się stale wzrastający asortyment napojów. Wielu z nich powraca od dobrze znanych zimnych napojów bezalkoholowych do napojów opartych na herbacie, które mogą być gazowane lub niegazowane i do „naturalnego orzeźwienia którego mogą one dostarczać.

Herbata zawiera złożoną kombinację enzymów, biochemicznych produktów pośrednich i elementów budowy zwykle związanych ze wzrostem roślin i fotosyntezą. Zawiera też wiele substancji naturalnych nadających jej unikalny smak, cierpkość, zapach i barwę. Wiele z nich powstaje wskutek reakcji utleniania zachodzących podczas tak zwanego etapu fermentacji przy wytwarzaniu czarnej herbaty. Wytwarzanie herbaty, przez cały czas jego trwania, odbywa się tradycyjnymi sposobami przetwórstwa tylko z podstawowym zrozumieniem zaangażowanych przy tym chemicznych procesów. W konsekwencji, wytwórcy stwierdzili, że wytwarzanie trwałych w warunkach otoczenia napojów opartych na herbacie w dużych objętościach, wymaganych dla współzawodniczenia z bardziej tradycyjnymi napojami orzeźwiającymi, nie jest tylko sprawą aromatyzowania herbatą napojów bezalkoholowych.

Smak-zapach napojów opartych na herbacie i ich trwałość, są oparte na trwałości napoju jako całości. Grzyby, włącznie z drożdżami i pleśnie, które mogą rozwijać się w napojach opartych na herbacie i w innych napojach orzeźwiających, można zniszczyć przez obróbkę cieplną, lub przynajmniej kontrolować ich wzrost przez stosowanie środków konserwujących. Pewne napoje oparte na herbacie pasteryzuje się, a następnie butelkuje do naczyń szklanych lub specjalnych pojemników PET, odpornych na ciepło. Ten proces znany jest jako „napełnianie na gorąco [„hot filling]. Niestety może to być operacja kosztowna, dostarczająca dużej ilości odpadów szkodliwych dla środowiska. Bardziej atrakcyjne dla wytwórców byłoby gdyby mogli pakować produkty oparte na herbacie do standardowych pojemników PET, o pojemności od pojedynczej serwowanej porcji do opakowań zbiorczych, które mogłyby utrzymywać trwałość produktu za pomocą dokładnie dopasowanych układów smakowo-zapachowego i konserwującego. Jest to znane jako „napełnianie na zimno [„cold filling]. Byłoby także pożyteczne, aby można było łatwo stosować herbaciany koncentrat lub proszek.

Sorbinian potasu jest dobrze znanym środkiem konserwującym. Jest inhibitorem wzrostu drożdży i pleśni i jednym z niewielu środków konserwujących legalnie dopuszczonych do stosowania w zimnych napojach bezalkoholowych i sokach owocowych. W Wielkiej Brytanii jest wymieniany na liście środków konserwujących żywność przynajmniej od 1962 roku. Stosowane ilości mieszczą się w zakresie 100-1000 ppm. Stwierdzono, że ta ilość jest skuteczna jako ś rodek mikrobójczy w wielu produktach żywnościowych, w tym napojach gazowanych, pewnych produktach owocowych i warzywnych, włącznie z winami. To właśnie kwas sorbinowy jest tym skutecznym środkiem.

Niestety, nawet umiarkowana ilość kwasu sorbinowego lub benzoesowego może poważnie wpływać na smak-zapach napoju opartego na herbacie. Dodawanie silnych środków smakowo-zapachowych, jak cytryna, może zrównoważyć smak konserwanta. Jednak konsumenci są wrażliwi na doświadczanie innych zapachów, często bardziej delikatnych. Ponadto, niektórzy konsumenci, poszukujący produktów opartych na herbacie, uznając je za zdrowsze i za naturalną alternatywę dla zimnych napojów bezalkoholowych, ogólnie chcieliby ograniczyć wprowadzanie konserwantów.

Zgłaszający zetknęli się z podobnym problemem w odniesieniu do napojów opartych na herbacie w patencie USA nr US-6036986. Ale, tam zaproponowanym rozwiązaniem było stopniowe dostosowywanie twardości wody i pH oraz stopniowe dodawanie polifosforanu, kwasu benzoesowego, kwasu sorbinowego i kwasu cynamonowego. W publikacji US-6042861 ujawniono napoje oparte na herbacie, zawierające kwas cynamonowy i substancję zakwaszającą dla uzyskania pH poniżej 4,5, a które mogą ewentualnie zawierać kwas sorbinowy i/lub kwas benzoesowy.

Jednak istnieje wciąż zapotrzebowanie na przyjemnie aromatyzowane, trwałe w temperaturze otoczenia napoje oparte na herbacie, które zawierają minimalną ilość konserwantów, takich jak kwasy sorbinowy i benzoesowy. Napoje nie oparte na herbacie, włącznie z napojami owocowymi i zimnymi napojami bezalkoholowymi mogą być stabilizowane w podobny sposób.

W odpowiedzi na takie zapotrzebowanie twórcy wynalazku znaleź li napój oparty na herbacie, konserwowany minimalną ilością kwasu sorbinowego lub benzoesowego.

PL 199 165 B1

Opis wynalazku

Wynalazek dotyczy trwałego w temperaturze otoczenia napoju, w szczególności napoju opartego na herbacie, zawierającego układ konserwujący zawierający 1 do 175 ppm kwasu cynamonowego, 10 do 200 ppm kwasu sorbinowego lub benzoesowego i przynajmniej jeden olejek eteryczny inny niż kwas cynamonowy. Gdy napój jest napojem opartym na herbacie to korzystnie zawiera 0,01 do 3% stałych substancji z herbaty, a szczególnie około 0,14% stałych substancji z herbaty.

Wynalazek ma zastosowanie w sposobie wytwarzania trwałego w temperaturze otoczenia napoju, nadającego się do napełniania na zimno, sposobie obejmującym konserwowanie ekstraktu z herbaty układem konserwującym zawierającym 1 do 175 ppm kwasu cynamonowego, 10 do 200 ppm kwasu sorbinowego lub benzoesowego i przynajmniej jeden olejek eteryczny inny niż kwas cynamonowy wybrany z listy w tabeli I poniżej.

Przedmiotem wynalazku jest trwały w temperaturze otoczenia napój zawierający 1 do 175 ppm kwasu cynamonowego i 10 do 200 ppm kwasu sorbinowego lub kwasu benzoesowego, charakteryzujący się tym, że dodatkowo zawiera 1 do 100 ppm przynajmniej jednego olejku eterycznego wybranego z grupy składającej się z: 4-hydroksybenzoesanu benzylu, 4-t-butylocykloheksanonu, karwonu, aldehydu cynamonowego, aldehydu cytrynowego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, cytronellolu, alkoholu kuminowego, kwasu cykloheksanomasłowego, octanu 2-cykloheksyloetylu, trans,trans-2,4-dekadiennalu, dekanalu, dekanolu, dihydrokarweolu, 3,7-dimetylo-1-oktanolu, cykloheksanopropionianu etylu, pirogronianu etylu, etylowaniliny, jasmonu, aldehydu o-metoksycynamonowego, antranilanu metylu, aldehydu α-metylo-trans-cynamonowego, metyloeugenolu, nonanianu metylu, 2-metylo-2-pentenalu, 5-metylo-2-fenylo-2-heksenalu, salicylanu metylu, octanu 4-metylo-5-tiazoloetylu, myrtenolu, neomentolu, kwasu nonanowego, γ-nonalaktonu, δ-oktalaktonu, kwasu oktanowego (kaprylowego), 1-oktanolu, 1-fenylo-1,2-propadionu, octanu piperonylu, benzoesanu propylu, pulgeonu, aldehydu sorbinowego (2,4-heksadienalu), terpinen-4-olu, aldehydu toluilowego, γ-undekalaktonu, undekanalu, 1-undekanolu i waniliny.

Korzystnie napój według wynalazku zawiera olejek eteryczny wybrany z grupy składającej się z: aldehydu cytrynowego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, alkoholu kuminowego (alkoholu izopropylobenzylowego), trans,trans-2,4-dekadienalu, 3,7-dimetylo-1-oktanolu, pirogronianu etylu, myrtenolu i octanu piperonylu.

Korzystnie napój zawiera 50 do 150 ppm kwasu sorbinowego, a w innym korzystnym wykonaniu napój zawiera 50 do 150 ppm kwasu benzoesowego.

Korzystnie napój według wynalazku jest napojem opartym na herbacie, a zwłaszcza zawiera 0,01 do 3% stałych substancji z herbaty.

Korzystnie napój zawiera 1 do 30 ppm kwasu cynamonowego, 50 do 150 ppm kwasu sorbinowego, 1 do 30 ppm dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, 1 do 40 ppm alkoholu kuminowego i 1 do 20 myrtenolu i octanu piperonylu.

„Napój” w rozumieniu niniejszego wynalazku oznacza dowolny napój, inny niż woda, i obejmuje zimne napoje bezalkoholowe, napoje owocowe, napoje oparte na kawie i napoje oparte na herbacie.

Określenie „olejek eteryczny dla celów niniejszego wynalazku obejmuje dowolny z lotnych olejów roślinnych, wykazujących zapach lub smak-zapach rośliny, z której się go ekstrahuje. Także obejmuje jeden lub więcej składników tego oleju, który jest lub są odpowiedzialne lub przynajmniej przyczyniają się do zapachu lub smaku-zapachu tej rośliny.

„Herbata” dla celów niniejszego wynalazku oznacza materiał liściasty z rośliny Camellia sinensis var. sinensis lub Camellia sinensis var. assamica. Określenie „herbata ma także obejmować produkt zmieszania dwu lub więcej z dowolnych z tych herbat.

W celu uniknięcia wątpliwości co do znaczenia słowa „zawiera” w niniejszym opisie oznacza ono „zawiera” ale nie koniecznie „składa się z” lub „zbudowany z”. Innymi słowy, wymienione etapy lub opcje nie muszą być wyczerpujące.

Z wyjątkiem przykładów wykonania i przykładów porównawczych, lub gdy tego wyraźnie nie podano, wszystkie liczby w opisie odnoszące się do ilości lub stężenia materiałów powinny być rozumiane jako modyfikowane słowem „około.

Szczegółowy opis rysunków

Figura 1 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia (RDT), 0,14% herbaty, zawierającą różne ilości konserwanta, kwasu sorbinowego i kwasu cynamonowego.

PL 199 165 B1

Figura 2 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 3 przedstawia łączny wpływ alkoholu kuminowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 4 przedstawia łączny wpływ aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 5 przedstawia łączny wpływ 3,7-dimetylooktanolu, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 6 przedstawia łączny wpływ myrtenolu, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 7 przedstawia łączny wpływ octanu piperonylu, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 8 przedstawia łączny wpływ trans,trans-2,4-dekadienalu, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 9 przedstawia łączny wpływ δ-dekanolaktonu (δ-dekalaktonu), kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 10 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, alkoholu kuminowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 11 pokazuje wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty, zawierającym różne ilości konserwanta, kwasu sorbinowego i kwasu cynamonowego.

Figura 12 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z syntetycznym zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty. Syntetyczny napój bezalkoholowy zawierał 8% wagowo/objętościowych glukozy, 3 g/l kwasu cytrynowego, 1 g/l ortofosforanu potasu, 0,1 g/l chlorku magnezu i 0,1 g/l ekstraktu z drożdży.

Figura 13 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty, zawierającej różne ilości konserwanta, kwasu benzoesowego i kwasu cynamonowego.

Figura 14 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 15 przedstawia łączny wpływ 3,7-dimetylooktanolu, kwasu cynamonowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 16 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, alkoholu kuminowego, kwasu cynamonowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 17 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty, zawierającym różne ilości konserwanta, kwasu benzoesowego i kwasu cynamonowego.

Figura 19 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty, zawierającej różne ilości konserwanta, kwasu sorbinowego, kwasu benzoesowego i kwasu cynamonowego.

Figura 20 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego, kwasu sorbinowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

PL 199 165 B1

Figura 21 przedstawia łączny wpływ 3,7-dimetylooktanolu, kwasu cynamonowego, kwasu sorbinowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 22 przedstawia łączny wpływ acetalu dimetylowego aldehydu cytrynowego, alkoholu kuminowego, kwasu cynamonowego, kwasu sorbinowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty.

Figura 23 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty, zawierającym różne ilości konserwanta, kwasu sorbinowego, kwasu benzoesowego i kwasu cynamonowego.

Figura 24 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego, kwasu sorbinowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty.

Figura 25 przedstawia skuteczne stężenia olejku eterycznego - aldehydu cytrynowego (cytralu). Wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B odbywał się w butelkach o pojemności 30 ml, zawierających herbatę RTD, 0,14% herbaty, i zawierających 0,15 ppm lub 30 ppm kwasu cynamonowego.

Figura 26 przedstawia skuteczne stężenia olejku eterycznego - trans,trans-2,4-dekadienalu.

Figura 27 przedstawia wymagania dla olejku eterycznego obok środków konserwujących dla zapobiegania psuciu się herbaty RDT.

Szczegółowy opis wynalazku

Napój trwały w temperaturze otoczenia według niniejszego wynalazku zawiera układ konserwujący z kwasu cynamonowego, minimalnych ilości kwasu sorbinowego lub benzoesowego i olejek eteryczny inny niż kwas cynamonowy wybrany spośród substancji wymienionych wyżej. Korzystnie napój jest napojem opartym na herbacie, lecz napoje nie oparte na herbacie, obejmujące napoje owocowe i zimne napoje bezalkoholowe, mogą być stabilizowane za pomocą takiego samego układu stabilizującego.

Gdy napój jest napojem opartym na herbacie to zawiera ekstrakt herbaty. Ekstrakt herbaty można otrzymać w dowolny odpowiedni sposób. Korzystnie liście herbaty ekstrahuje się gorącą wodą przez okres między 20 minut a 5 godzin. Ekstrakt można wysuszyć do postaci proszku, ponownie roztwarzać do postaci kwaśnego napoju lub zatężać do postaci syropu, z którego można wytworzyć napój oparty na herbacie.

Wiadomo że sama herbata ma pewne własności przeciwbakteryjne i przeciwirusowe. Musi być przekroczone stężenie około 3%, dla stwierdzenia początku tłumienia wzrostu drożdży i pleśni. W stężeniach niższych niż to, które jest typowe dla napojów opartych na herbacie, herbata działa jak środek odżywczy zwiększający możliwość mikrobiologicznego psucia. Dlatego napój powinien zawierać 0,01 do 3% stałych substancji z herbaty, a szczególnie zalecane jest około 0,14%.

Wynalazcy przebadali następujące związki: aldehyd octowy, 2-acetylofuran, octan amylu, alkohol amylowy, aldehyd α-amylocynamonowy, mrówczan amylu, trans-anetol, aldehyd m-anyżowy, aldehyd o-anyżowy, aldehyd p-anyżowy, anizol, alkohol anyżowy, aldehyd benzoesowy, dimetylowy acetal aldehydu benzoesowego, benzoinę, benzofenon, benzotiazol, octan benzylu, acetooctan benzylu, alkohol benzylowy, benzoesan benzylu, cynamonian benzylu, eter benzylowy (eter dibenzylowy), mrówczan benzylowy, 4-hydroksybenzoesan benzylowy, bifenyl, borneol, butanal, 1-butanol,

2-butanon, octan butylu, acetooctan t-butylu, maślan butylu, 4-t-butylocykloheksanon, malonian etylowo t-butylowy, mrówczan butylu, mleczan butylu, lewulinian butylu, eter butylowo-fenylowy, propionian butylu, kwas masłowy, γ-butyrolakton, kwas kawowy, kofeinę, (+)-kamfen, (-)-kamfen, kamforę, karwakol, karweol, karwon, octan karwylu, propionian karwylu, tlenek kariofilenu, olejek z drzewa cedrowego, cyneol, aldehyd cynamonowy, octan cynamylu, alkohol cynamylowy, chlorek cynamylu, mrówczan cynamylu, olejek cynamonowy, chlorek trans-cynamoilu, aldehyd cytrynowy, dimetylowy acetal aldehydu cytrynowego, kwas (S)-cytronellowy, kwas (R)-cytronellowy, aldehyd cytronellowy, alkohol cytronellowy, kwas kumarowy, kreozol, m-krezol, o-krezol, p-krezol, kumen, kwas kuminowy, alkohol kuminowy, aldehyd kuminowy, kwas cykloheksanomasłowy, octan cykloheksylu, kwas cykloheksanooctowy, octan 2-cykloheksyloetylu, p-cymen, trans,trans-2,4-dekadienal, dekanal, dekanol, δ-dekanalakton, 3-dekanon, kwas dekanowy, trans-4-decenal, diacetyl (2,3-butanodion), malonian dietylu, 2,3-dietylopirazyna, bursztynian dietylowy, L-winian dietylowy, dihyrokarweol, dihydrokarwon, dihydrokumaryna, 2,6-dimetylo-4-heptanol, 2,6-dimetylo-5-heptenal (melonal), 3,7-dimetylo-1-oktanol, 2,3-dimetylopirazyna, bursztynian dimetylowy (DBE-4), dodekan, estragol (4-alliloanizol), octan etylu, maślan etylu, cykloheksanopropionian etylu, dekanian etylu (kaprynian), mrówczan etylu, heptanian

PL 199 165 B1 etylu, heksanian etylu, 2-etylo-1-heksanol, mirystynian etylu, nonanian etylu, oktanian etylu (kaprylan), palmitynian etylu, propionian etylu, pirogronian etylu, sorbinian etylu, tridekanian etylu, undekanian etylu, walerianian etylu, etylowanilinę, eugenol, kwas ferrulowy, kwas fumarowy, kwas geraniowy, geraniol, octan geranylu, tribenzoesan gliceryny (tribenzoina), kwas glicyrynowy, gwajakol, heptanal, kwas heptanowy, 1-heptanol, heksanal, kwas heksanowy (kapronowy), 1-heksanol, 2-heksanol,

3- heksanol, 3-heksanon, kwas trans-2-heksenowy, kwas trans-3-heksenowy, cis-2-heksen-1-ol, trans-2-heksen-1-ol, octan heksylu, kwas 4-heksylobenzenowy, kwas trans-e-hydromukonowy, (hydro-β-mukonowy), kwas m-hydroksybenzoesowy, kwas p-hydroksybenzoesowy, o-hydroksybifenyl, aldehyd hydroksycytrynowy, γ-jonon, octan izoamylowy, octan izobutylowy, kwas izomasłowy, izoeugenol, octan izopropylu, jasmon, leucynę, limonen, linalol, octan linalilu, mentol, menton, alkohol

4- metoksybenzylowy, aldehyd o-metoksycynamonowy, 4-(p-metoksyfenylo)-2-butanon, octan metylu, antranilan metylu, maślan metylu, aldehyd α-metylo-trans-cynamonowy, dekanian metylu, metyloeugenol, heptanian metylu (enantan), heksanian metylu (kaprynian), laurynian metylu, mirystynian metylu, nonanian metylu, oktanian etylu (kaprylan), 2-metylopentenal, 5-metylo-2-fenylo-2-heksenal, propionian metylu, salicylan metylu, 4-metylotiazolo-etanol, octan 4-metylotiazoloetanolu, tridekanian metylu, walerianian metylu, undekanian metylu, β-myrcen, 7-metylo-3-metyleno-1,6-oktadien, aldehyd mirystylowy, myrtenol, neomentol, nerol, nerolidol, nonanal, kwas nonanowy, lakton kwasu γ nonanowego, 1-nonanol, δ-oktalakton, oktanal, kwas oktanowy (kaprylowy), 1-oktanol, octan oktylu, pentanal, pentanol, kwas fenylooctowy, fenyloaceton, 1-fenylo-1,2-propandion, kwas 2-fenylopropionowy, kwas 3-fenylopropionowy (kwas hydrocynamonowy), pinen, octan piperonylu, propanal, 1-propanol, 2-propanol (izopropanol), propenyloguaetol, octan propylu, benzoesan propylu, pulegon, chlorowodorek chininy, safrol, aldehyd salicylowy, skatol (3-metyloindol), alkohol sorbinowy (2,4-heksadienol), aldehyd sorbinowy (2,4-heksadienal), kwas winowy, α-terpinen, γ-terpinen, terpinen-4-ol, terpineol, aldehyd toluilowy, tymol, triacetynę (trójoctan gliceryny), acetylocytrynian tributylu, tributyrynę (trójmaślan gliceryny), 3,5,5-trimetylo-1-heksanol, γ-undekalakton, undekanal, undekan, kwas undekanowy, 1-undekanol, 2-undekanol, kwas walerianowy, kwas wanililowy, wanilinę, alkohol wanilinowy i aldehyd weratronowy.

Poniższa tabela 1 zawiera te z olejków eterycznych wymienionych wyżej, które wykazują aktywność grzybobójczą odpowiednią do stosowania w wynalazku. Dla każdego związku podano minimalne stężenie hamujące (MIC).

T a b e l a 1: Korzystne olejki eteryczne

Związek	MIC (ppm)
1	2
4-hydroksybenzoesan benzylu	68
4-t-butylocykloheksanon	462
Karwon	300
Aldehyd cynamonowy	66
Aldehyd cytrynowy	228
dimetylowy acetal aldehydu cytrynowego	198
Cytronellol	125
alkohol kuminowy	450
kwas cykloheksanomasłowy	68
octan 2-cykloheksyloetylu	102
trans,trans-2,4-dekadienal	8
Dekanal	47
Dekanol	24

PL 199 165 B1 cd. tabeli 1

1	2
Dihydrokarweol	540
3,7-dimetylo-1-oktanol	15,8
cykloheksanopropionian etylu	184
pirogronian etylu	1392
Etylowanilina	249
Jasmon	246
aldehyd o-metoksycynamonowy	130
antranilan metylu	310
aldehyd α-metylo-trans-cynamonowy	58,4
Metyloeugenol	356
nonanian metylu	90
2-metylo-2-pentenal	1274
5-metylo-2-fenylo-2-heksenal	162
salicylan metylu	152
octan 4-metylo-5-tiazoloetanolu	1110
Myrtenol	137
Neomentol	156
kwas nonanowy	63
γ-nonalakton	63
δ-oktalakton	568
kwas oktanowy (kaprylowy)	115
1-oktanol	247
1-fenylo-1,2-propanodion	222
octan piperonylu	242
benzoesan propylu	66
Pulegon	152
aldehyd sorbinowy (2,4-heksadienal)	86
terpinen-4-ol	616
aldehyd toluilowy	240
γ-undekalakton	28
Undekanal	34
1-undekanol	14
Wanilina	1216

Układ konserwujący korzystnie zawiera 1 do 100 ppm olejku eterycznego.

Stwierdzono, że niektóre z wyżej wymienionych olejków eterycznych są szczególnie korzystne w odniesieniu do wywierania wpływu na profil smaku zawierających je napojów opartych na herbacie. Zostały one wymienione w poniższej tabeli II. W każdym przypadku podano minimalne stężenia hamujące (MIC) oraz stężenia korzystne.

PL 199 165 B1

T a b e l a 2: Szczególnie korzystne olejki eteryczne

	MIC (ppm)	stężenie korzystne
Związek		(ppm)
aldehyd cytrynowy	228	1-30
acetal dimetylowy aldehydu cytrynowego	198	1-30
alkohol kuminowy	450	1-40
trans,trans-2,4-dekadienal	8	1-20
3,7-dimetylo-1-oktanol	15,8	1-20
pirogronian etylu	1392	1-40
Myrtenol	137	1-20
octan piperonylu	242	1-20

Szczególnie korzystny układ konserwujący dla napojów opartych na herbacie, oparty na działaniu konserwującym i profilu smaku zawiera 1 do 30 ppm kwasu cynamonowego, 1 do 30 ppm dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, 1 do 40 ppm alkoholu kuminowego (alkohol izopropylobenzylowy) oraz 1 do 20 myrtenolu i octanu piperonylu.

Jakość wody może poważnie naruszyć trwałość napoju. Jest to ważny czynnik przy wytwarzaniu napoju, w szczególności napoju opartego na herbacie napełniania na zimno. Z tego powodu często ważne będzie minimalizowanie zawartości drożdży w wodzie stosowanej we wszystkich etapach produkcji. Sposoby ze stanu techniki obejmują chlorowanie/odchlorowywanie i naświetlanie promieniami UV.

Trwałe w temperaturze otoczenia napoje według wynalazku mogą być niegazowane lub gazowane dwutlenkiem węgla. Samo wprowadzanie dwutlenku węgla wydaje się zapewniać wpływ konserwujący, a więc receptura produktu z dwutlenkiem węgla nie musi być taka sama jak niegazowanego.

Napoje oparte na herbacie zwykle zawierają cukier lub pewne inne środki słodzące, dla zrównoważenia czasem cierpkiego smaku herbaty. Większość mikroorganizmów, które typowo mogą rosnąć w napojach opartych na herbacie, żywi się cukrem, źródłem azotu, tlenem, cynkiem, magnezem, potasem, fosforanami i witaminami. Zatem korzystne jest ograniczenie zawartości cukru do 8 do 10 stopni briksa, jednak można stosować do 60 stopni briksa, gdy produkt jest mieszanką herbaty.

Zawartość tlenu można minimalizować przez wstępną pasteryzację lub pewną obróbkę cieplną, albo przez przedmuchiwanie azotem. Zawartość substancji mineralnych napoju opartego na herbacie można zminimalizować, stosując EDTA, cytrynian lub środek zmiękczający wodę. Na przykład, mikroorganizmy mogą rozwijać się w herbacie, jeśli stężenie jonów magnezu przekracza 0,2 ppm, i potrzebują tylko śladowych ilości cynku.

Trwały w temperaturze otoczenia napój oparty na herbacie, nadający się do napełniania na zimno, można wytwarzać przez konserwowanie ekstraktu z herbaty za pomocą układu konserwującego zawierającego 1 do 175 ppm kwasu cynamonowego, 10 do 200 ppm kwasu sorbinowego lub kwasu benzoesowego, oraz przynajmniej jeden olejek eteryczny wybrany spośród wymienionych powyżej, inny niż kwas cynamonowy.

Trwały w warunkach otoczenia napój według wynalazku zostanie opisany w poniższych przykładach, z odniesieniem do załączonych rysunków

P r z y k ł a d 1: Kwas sorbinowy w doświadczeniach z herbatą RDT

Figura 1 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówek z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty, zawierającej różne ilości konserwanta, kwasu sorbinowego i kwasu cynamonowego. Każda z matryc w probówkach o pojemnoś ci 30 ml, zawierał a 10 ml herbaty RDT o pH 3,4. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm, a kwas cynamonowy w zakresie 1-175 ppm. Probówki zaszczepiano 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próby.

Figura 2 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy

PL 199 165 B1 probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml, zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 100 ppm acetalu aldehydu cytrynowego. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 3 przedstawia łączny wpływ alkoholu kuminowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml, zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 100 ppm alkoholu kuminowego. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, alkoholu kuminowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 4 przedstawia łączny wpływ aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml, zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 100 ppm aldehydu cytrynowego. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, aldehydu cytrynowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 5 przedstawia łączny wpływ 3,7-dimetylooktanolu, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml, zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 50 ppm 3,7-dimetylooktanolu. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, 3,7-dimetylooktanolu, wykazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 6 przedstawia łączny wpływ myrtenolu, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml, zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 100 ppm myrtenolu. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

PL 199 165 B1

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, myrtenolu, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i ś rodków konserwujących.

Figura 7 przedstawia łączny wpływ octanu piperonylu, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml, zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 100 ppm octanu piperonylu. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ś lepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, octanu piperonylu, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 8 przedstawia łączny wpływ trans,trans-2,4-dekadienalu, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w 30 ml probówkach zawierała 10 ml herbaty RDT, wszystkie zawierały trans,trans-2,4-dekadienal. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml droż d ż y Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, trans,trans-2,4-dekadienalu, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 9 przedstawia łączny wpływ δ-dekanolaktonu (δ-dekalaktonu), kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w 30 ml probówkach zawierała 10 ml herbaty RDT, wszystkie zawierały 100 ppm δ-dekanolaktonu. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, δ-dekanolaktonu, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 10 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, alkoholu kuminowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w 30 ml probówkach zawierała 10 ml herbaty RDT, wszystkie zawierały 25 ppm acetalu dimetylowego aldehydu cytrynowego i 35 ppm alkoholu kuminowego. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 1 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego i alkoholu kuminowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

P r z y k ł a d 2: Kwas sorbinowy w doświadczeniach z syntetycznym zimnym napojem bezalkoholowym

Figura 11 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty, zawierającym różne ilości konserwantów, kwasu sorbinowego i kwasu cynamonowego. Syntetyczny zimny napój bezalkoholowy zawierał 8% wagowo/objętościowych glukozy, 3 g/l kwasu cytrynowego, 1 g/l ortofosforanu potasu, 0,1 g/l chlorku magnezu i 0,1 g/l ekstraktu drożdży. Każda z matryc w probówPL 199 165 B1 kach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml syntetycznego zimnego napoju bezalkoholowego o pH 3,4. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Figura 12 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu sorbinowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z syntetycznym zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty. Syntetyczny napój bezalkoholowy zawierał 8% wagowo/objętościowych glukozy, 3 g/l kwasu cytrynowego, 1 g/l ortofosforanu potasu, 0,1 g/l chlorku magnezu i 0,1 g/l ekstraktu z drożdży. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml syntetycznego zimnego napoju bezalkoholowego o pH 3,4, wszystkie zawierały dimetylowy acetal aldehydu cytrynowego. Kwas sorbinowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 11 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

P r z y k ł a d 3: Kwas benzoesowy w doświadczeniach z herbatą RDT

Figura 13 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty, zawierającej różne ilości konserwantów, kwasu benzoesowego i kwasu cynamonowego. Każda z matryc w probówce o pojemności 30 ml zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4. Kwas benzoesowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Figura 14 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówce o pojemności 30 ml zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały dimetylowy actetal aldehydu cytrynowego. Kwas benzoesowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 13 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 15 przedstawia łączny wpływ 3,7-dimetylooktanolu, kwasu cynamonowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówce o pojemności 30 ml zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 50 ppm 3,7-dimetylooktanolu. Kwas benzoesowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 13 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, 3,7-dimetylooktanolu, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 16 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, alkoholu kuminowego, kwasu cynamonowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces ce12

PL 199 165 B1 revisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówce o pojemności 30 ml zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 25 ppm dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego i 35 ppm alkoholu kuminowego. Kwas benzoesowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 13 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejków eterycznych, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego i alkoholu kuminowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

P r z y k ł a d 4: Kwas benzoesowy w doświadczeniach z zimnym napojem bezalkoholowym

Figura 17 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty, zawierającym różne ilości konserwantów, kwasu benzoesowego i kwasu cynamonowego. Syntetyczny zimny napój bezalkoholowy zawierał 8% wagowo/objętościowych glukozy, 3 g/l kwasu cytrynowego, 1 g/l ortofosforanu potasu, 0,1 g/l chlorku magnezu i 0,1 g/l ekstraktu drożdży. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml syntetycznego zimnego napoju bezalkoholowego o pH 3,4. Kwas benzoesowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Figura 18 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z syntetycznym zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty. Syntetyczny napój bezalkoholowy zawierał 8% wagowo/objętościowych glukozy, 3 g/l kwasu cytrynowego, 1 g/l ortofosforanu potasu, 0,1 g/l chlorku magnezu i 0,1 g/l ekstraktu drożdży. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml syntetycznego zimnego napoju bezalkoholowego o pH 3,4, wszystkie zawierały 100 ppm dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego. Kwas benzoesowy stosowano w zakresie 1 do 250 ppm a kwas cynamonowy w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 17 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

P r z y k ł a d 5: Kwas sorbinowy + kwas benzoesowy w doświadczeniach z herbatą RDT

Figura 19 przedstawia wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty, zawierającej różne ilości konserwantów, kwasu sorbinowego, kwasu benzoesowego i kwasu cynamonowego. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4. Stosunek kwasu sorbinowego do benzoesowego wynosił 1:1, mieszaninę stosowano w ilości 1 do 250 ppm (np. 250 ppm = 125 ppm kwasu sorbinowego + 125 ppm kwasu benzoesowego) a kwas cynamonowy dodawano w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Figura 20 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego, kwasu sorbinowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 100 ppm dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego. Stosunek kwasu sorbinowego do benzoesowego wynosił 1:1, mieszaninę stosowano w zakresie 1-250 ppm (np. 250 ppm = 125 ppm kwasu sorbinowego + 125 ppm kwasu benzoesowego) a kwas cynamonowy dodawano w zakresie 1 do 175 ppm.

PL 199 165 B1

Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 19 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 21 przedstawia łączny wpływ 3,7-dimetylooktanolu, kwasu cynamonowego, kwasu sorbinowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 50 ppm 3,7-dimetylooktanol. Stosunek kwasu sorbinowego do benzoesowego wynosił 1:1, mieszaninę stosowano w zakresie 1-250 ppm (np. 250 ppm = 125 ppm kwasu sorbinowego + 125 ppm kwasu benzoesowego) a kwas cynamonowy dodawano w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 19 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, 3,7-dimetylooktanolu, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 22 przedstawia łączny wpływ dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, alkoholu kuminowego, kwasu cynamonowego, kwasu sorbinowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z herbatą gotową do spożycia, 0,14% herbaty. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,4, wszystkie zawierały 25 ppm acetalu dimetylowego aldehydu cytrynowego i 35 ppm alkoholu kuminowego. Stosunek kwasu sorbinowego do benzoesowego wynosił 1:1, mieszaninę stosowano w ilości 1-250 ppm (np. 250 ppm = 125 ppm kwasu sorbinowego + 125 ppm kwasu benzoesowego) a kwas cynamonowy dodawano w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 19 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejków eterycznych, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego i alkoholu kuminowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

P r z y k ł a d 6: Kwas sorbinowy + kwas benzoesowy w doś wiadczeniach z zimnym napojem bezalkoholowym

Figura 23 pokazuje wyniki doświadczenia kontrolnego wzrostu drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty, zawierającym różne ilości konserwantów, kwasu sorbinowego, kwasu benzoesowego i kwasu cynamonowego. Syntetyczny zimny napój bezalkoholowy zawierał 8% wagowo/objętościowych glukozy, 3 g/l kwasu cytrynowego, 1 g/l ortofosforanu potasu, 0,1 g/l chlorku magnezu i 0,1 g/l ekstraktu drożdży. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml zimnego napoju bezalkoholowego o pH 3,4. Stosunek kwasu sorbinowego do benzoesowego wynosił 1:1, mieszaninę stosowano w ilości 1-250 ppm (np. 250 ppm = 125 ppm kwasu sorbinowego + 125 ppm kwasu benzoesowego) a kwas cynamonowy dodawano w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Figura 24 przedstawia łączny wpływ acetalu dimetylowego aldehydu cytrynowego, kwasu cynamonowego, kwasu sorbinowego i kwasu benzoesowego na wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B w matrycy probówki z zimnym napojem bezalkoholowym, 0% herbaty. Syntetyczny zimny napój bezalkoholowy zawierał 8% wagowo/objętościowych glukozy, 3 g/l kwasu cytrynowego, 1 g/l ortofosforanu potasu, 0,1 g/l chlorku magnezu i 0,1 g/l ekstraktu drożdży. Każda z matryc w probówkach o pojemności 30 ml zawierała 10 ml zimnego napoju bezalkoholowego o pH 3,4, wszystkie próbki zawierały 100 ppm acetalu dimetylowego aldehydu cytrynowego. Stosunek kwasu sorbinowego do benzoesowego wynosił 1:1, mieszaninę stosowano w ilości 1-250 ppm (np. 250 ppm = 125 ppm

PL 199 165 B1 kwasu sorbinowego + 125 ppm kwasu benzoesowego) a kwas cynamonowy dodawano w zakresie 1 do 175 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ komórek/ml droż d ż y Saccharomyces cerevisiae X2180-1B. Probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Porównanie tej Figury z Figurą 23 pokazuje bardzo znacząco mniejszy wzrost drożdży w obecności olejku eterycznego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, wskazując na silny łączny efekt działania olejku eterycznego i konserwantów.

Figura 25 przedstawia skuteczne stężenia olejku eterycznego, aldehydu cytrynowego. Wzrost drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B odbywał się w butelkach o pojemności 30 ml, zawierających herbatę RTD, 0,14% herbaty, i zawierających 0,15 ppm lub 30 ppm kwasu cynamonowego. Rzędy probówek zawierały także aldehyd cytrynowy w stężeniu w zakresie między 0 a 120 ppm. Po szczepieniu probówek 10⁴ komórek drożdży, probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Figura 26 przedstawia skuteczne stężenia olejku eterycznego, trans,trans-2,4-dekadienalu. Hodowlę drożdży Saccharomyces cerevisiae X2180-1B prowadzono w 30 ml butelkach zawierających herbatę RTD, 0,14% herbaty, zawierającej 15 ppm lub 30 ppm kwasu cynamonowego. Rzędy probówek zawierały także trans,trans-2,4-dekadienal w stężeniu w zakresie 0 do 16 ppm. Po zaszczepieniu probówek 10⁴ komórek drożdży, probówki inkubowano przez 14 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu drożdżom, które przeżyły. Po 14 dniach mierzono populację drożdży przez pomiar gęstości optycznej przy 600 nm w próbce rozcieńczonej 11 razy i odejmowano wartości z ślepej próbki.

Figura 27 przedstawia wymagania dla olejku eterycznego dodawanego do konserwantów w celu zapobieżenia psuciu się herbaty RDT. Hodowlę pleśni Aspergillus niger POL10 prowadzono w 30 ml probówkach, każda zawierała 10 ml herbaty RDT o pH 3,1, 0,14% herbaty. Wszystkie probówki zawierały kwas sorbinowy w ilości 200 ppm, kwas cynamonowy w ilości 60 ppm, EDTA w ilości 30 ppm. Do probówek dodawano olejek eteryczny, acetal dimetylowy aldehydu cytrynowego w stężeniu zwiększającym się w zakresie 1-400 ppm. Probówki szczepiono 10⁴ konidiów pleśni Aspergillus niger POL10. Probówki inkubowano przez 28 dni w 25°C dla umożliwienia wzrostu pleśni. Po 28 dniach wizualnie mierzono populację pleśni. Wzrost pleśni obserwowano we wszystkich probówkach, za wyjątkiem zawierających acetal dimetylowy aldehydu cytrynowego w ilości >80 ppm.

Claims

1. Trwały w temperaturze otoczenia napój zawierający 1 do 175 ppm kwasu cynamonowego i 10 do 200 ppm kwasu sorbinowego lub kwasu benzoesowego, znamienny tym, że dodatkowo zawiera 1 do 100 ppm przynajmniej jednego olejku eterycznego wybranego z grupy składającej się z: 4-hydroksybenzoesanu benzylu, 4-t-butylocykloheksanonu, karwonu, aldehydu cynamonowego, aldehydu cytrynowego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, cytronellolu, alkoholu kuminowego, kwasu cykloheksanomasłowego, octanu 2-cykloheksyloetylu, trans,trans-2,4-dekadiennalu, dekanalu, dekanolu, dihydrokarweolu, 3,7-dimetylo-1-oktanolu, cykloheksanopropionianu etylu, pirogronianu etylu, etylowaniliny, jasmonu, aldehydu o-metoksy-cynamonowego, antranilanu metylu, aldehydu α-metylo-trans-cynamonowego, metyloeugenolu, nonanianu metylu, 2-metylo-2-pentenalu,

5-metylo-2-fenylo-2-heksenalu, salicylanu metylu, octanu 4-metylo-5-tiazoloetylu, myrtenolu, neomentolu, kwasu nonanowego, γ-nonalaktonu, δ-oktalaktonu, kwasu oktanowego (kaprylowego), 1-oktanolu, 1-fenylo-1,2-propadionu, octanu piperonylu, benzoesanu propylu, pulgeonu, aldehydu sorbinowego (2,4-heksadienalu), terpinen-4-olu, aldehydu toluilowego, γ-undekalaktonu, undekanalu, 1-undekanolu i waniliny.

2. Napój według zastrz. 1, znamienny tym, że olejek eteryczny wybrany jest z grupy składającej się z: aldehydu cytrynowego, dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, alkoholu kuminowego (alkoholu izopropylobenzylowego), trans,trans-2,4-dekadienalu, 3,7-dimetylo-1-oktanolu, pirogronianu etylu, myrtenolu i octanu piperonylu.

3. Napój według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że zawiera 50 do 150 ppm kwasu sorbinowego.

PL 199 165 B1

4. Napój według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że zawiera 50 do 150 ppm kwasu benzoesowego.

5. Napój według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że jest napojem opartym na herbacie.

6. Napój według zastrz. 5, znamienny tym, że zawiera 0,01 do 3% stałych substancji z herbaty.

7. Napój według zastrz. 1, znamienny tym, że zawiera 1 do 30 ppm kwasu cynamonowego, 50 do 150 ppm kwasu sorbinowego, 1 do 30 ppm dimetylowego acetalu aldehydu cytrynowego, 1 do 40 ppm alkoholu kuminowego i 1 do 20 myrtenolu i octanu piperonylu.