PL205725B1 - Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu - Google Patents
Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwuInfo
- Publication number
- PL205725B1 PL205725B1 PL348323A PL34832301A PL205725B1 PL 205725 B1 PL205725 B1 PL 205725B1 PL 348323 A PL348323 A PL 348323A PL 34832301 A PL34832301 A PL 34832301A PL 205725 B1 PL205725 B1 PL 205725B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- collagen
- tube
- type
- sheet
- nerve
- Prior art date
Links
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 title claims abstract description 59
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 title claims abstract description 59
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 title claims abstract description 59
- 210000005036 nerve Anatomy 0.000 title claims abstract description 46
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 27
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 title claims description 22
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 title claims description 22
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 claims abstract description 16
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims abstract description 15
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims abstract description 14
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 claims abstract description 11
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 49
- 102000012422 Collagen Type I Human genes 0.000 claims description 29
- 108010022452 Collagen Type I Proteins 0.000 claims description 29
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 22
- 239000000945 filler Substances 0.000 claims description 16
- 102000004266 Collagen Type IV Human genes 0.000 claims description 14
- 108010042086 Collagen Type IV Proteins 0.000 claims description 14
- 102000001187 Collagen Type III Human genes 0.000 claims description 12
- 108010069502 Collagen Type III Proteins 0.000 claims description 12
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 claims description 10
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 9
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims description 7
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 4
- 238000005096 rolling process Methods 0.000 claims description 3
- 238000005304 joining Methods 0.000 claims description 2
- 210000004303 peritoneum Anatomy 0.000 claims description 2
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 abstract description 7
- 231100000241 scar Toxicity 0.000 abstract description 7
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 abstract description 4
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 abstract description 4
- 230000035876 healing Effects 0.000 abstract 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 10
- 210000001640 nerve ending Anatomy 0.000 description 7
- 108010009565 Bio-Gide Proteins 0.000 description 6
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 6
- 229920002683 Glycosaminoglycan Polymers 0.000 description 5
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 5
- 239000002002 slurry Substances 0.000 description 5
- 210000002435 tendon Anatomy 0.000 description 5
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 4
- 230000001070 adhesive effect Effects 0.000 description 4
- 210000003050 axon Anatomy 0.000 description 4
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 4
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 3
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 2
- 239000004215 Carbon black (E152) Substances 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000015336 Nerve Growth Factor Human genes 0.000 description 2
- 108010025020 Nerve Growth Factor Proteins 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 2
- 239000003292 glue Substances 0.000 description 2
- 229930195733 hydrocarbon Natural products 0.000 description 2
- 150000002430 hydrocarbons Chemical class 0.000 description 2
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 2
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 2
- 210000000651 myofibroblast Anatomy 0.000 description 2
- 229940053128 nerve growth factor Drugs 0.000 description 2
- 210000000578 peripheral nerve Anatomy 0.000 description 2
- 108010080379 Fibrin Tissue Adhesive Proteins 0.000 description 1
- AEMRFAOFKBGASW-UHFFFAOYSA-N Glycolic acid Polymers OCC(O)=O AEMRFAOFKBGASW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 229920000954 Polyglycolide Polymers 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 210000001691 amnion Anatomy 0.000 description 1
- 230000028600 axonogenesis Effects 0.000 description 1
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 description 1
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 description 1
- 244000309466 calf Species 0.000 description 1
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 description 1
- 210000001136 chorion Anatomy 0.000 description 1
- 108010008495 collagen-glycosaminoglycan copolymer Proteins 0.000 description 1
- 239000000084 colloidal system Substances 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 210000000555 contractile cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 230000000593 degrading effect Effects 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 239000010985 leather Substances 0.000 description 1
- 238000000465 moulding Methods 0.000 description 1
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 1
- 229920000747 poly(lactic acid) Polymers 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 230000036573 scar formation Effects 0.000 description 1
- 230000037390 scarring Effects 0.000 description 1
- 210000003497 sciatic nerve Anatomy 0.000 description 1
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 1
- 210000001032 spinal nerve Anatomy 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 239000000021 stimulant Substances 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 230000009772 tissue formation Effects 0.000 description 1
- 238000012876 topography Methods 0.000 description 1
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
- A61L31/04—Macromolecular materials
- A61L31/043—Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof
- A61L31/044—Collagen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
- A61L31/14—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
- A61L2430/32—Materials or treatment for tissue regeneration for nerve reconstruction
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Surgery (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Prostheses (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu.
Jak wiadomo, połączenia uszkodzonych nerwów mogą być czasem odtworzone metodą rurkowania, w której to metodzie zakończenia nerwów są wkładane do silikonowej rurki, która może zawierać porowaty, wszczepialny, kolagenowy kopolimer glikozaminoglikanowy (kolagen GAG lub CG). Chociaż metoda ta była wykorzystywana do odtwarzania połączeń nerwów, to jednak stosowanie niewchłanialnych przez organizm, silikonowych rurek wymaga późniejszej procedury chirurgicznej zmierzającej do usunięcia tych rurek.
Dla uniknięcia drugiej operacji chirurgicznej, polegającej na usuwaniu silikonowych rurek, stosuje się również rurki wchłanialne, uformowane z kolagenu I typu, pochodzącego z bydlęcych ścięgien. Rurki wchłanialne z kolagenu I typu ze ścięgien formowano z porami w ściance bocznej o wielkości w przybliż eniu 22 nm (co okreś la się jako wykonane z „kolagenu porowatego”) i z porami w ś ciance bocznej o średnicy mniejszej niż 3,8 nm (co czasami określa się niewłaściwie jako wykonane z „kolagenu bez porów”). Te rurki uformowane z kolagenu I typu ze ścięgien są formowane przez nakładanie lepkiego żelu oczyszczonych kolagenowych włókien I typu na obracający się trzpień roboczy i ściskanie nałożonego materiału dla uformowania ciasno upakowanych włókien. Rurki są chemicznie usieciowione i liofilizowane. Jedną z wad wynikających ze stosowania rurek uformowanych jak wyżej opisano z kolagenu I typu ze ścięgien jest to, że tkanka łączna i komórki uczestniczące w formowaniu tkanki łącznej mogą przenikać przez pory w ściankach rurki wykonanej z kolagenu I typu ze ścięgien, co prowadzi do powstawania blizny tkanki łącznej; hamującej odtworzenie połączeń zakończeń nerwowych. W dodatku, powierzchnia wnętrza rurek wykonanych z kolagenu I typu ze ścięgien, uformowanych tak jak wyżej opisano, może również hamować odtwarzanie się połączeń zakończeń nerwowych. Z opisu WO 9310722 są znane rurki kolagenowe wykonane jako owodniowe i kosmówkowe membrany, stosowane jako przeszczepy nerwów i naczyń. Jednakże podczas stosowania tych rurek, mających gładką powierzchnię zewnętrzną i wewnętrzną, również następowało narastanie wewnątrz rurek włóknistej tkanki bliznowatej, zawierającej kurczliwe fibroblasty, które zakłócały regenerację nerwu (niewielka ilość regenerowanych aksonów).
Z opisu US 5837278 są znane wch ł aniane bł ony kolagenowe, wkł adane chirurgicznie dookoł a obrzeża zranienia dla wspomagania np. regeneracji kości.
Z artykułu „Histological Response to a Fully Degradable Collagen Device Implanted In a Gap In the Rat Sciatic Nerve”, Tissue Engineering, Tom 3, Nr 4, 1997, jest znany sposób regeneracji nerwu obwodowego, polegający na wszczepianiu rurek z ulegającego całkowitej degradacji kolagenu, zawierających analog kolagenu - glikozoaminoglikanu (GAG) w rurce kolagenowej, jako implantów dla pokrycia defektu.
Z artykuł u „Connective Tissue Response to Tubular Implants for Peripheral Nerve Regeneration: The Role of Myofibroblasts”, The Journal of Comparative Neurology, 417(2000) jest znane badanie regeneracji nerwu, polegające na implantowaniu pustych i wypełnionych matrycą kolagenowoglikozoaminoglikanową (GAG) rurek kolagenowych i silikonowych, i na porównywaniu wyników. Stwierdzono tam znaczące polepszenie odzyskiwania przez nerw normalnych funkcji w przypadku stosowania rurek silikonowych z matrycą kolagenu - GAG.
Rurka do regeneracji nerwu, przeznaczona do przywracania połączenia końców nerwu, zawierająca boczną ściankę, zwiniętą z wchłanialnego kolagenowego materiału arkuszowego, według wynalazku charakteryzuje się tym, że ścianka boczna rurki ma powierzchnię zewnętrzną w postaci zwartej, gładkiej powierzchni zaporowej i powierzchnię wewnętrzną w postaci miękkiej powierzchni włóknistej, przy czym kolagenowy materiał arkuszowy, z którego jest wykonana rurka, jest typu membranowego i ma zwartą, gładką zewnętrzną powierzchnię zaporową i miękką i włóknistą wewnętrzną powierzchnię.
Materiał bocznej ścianki zawiera mieszankę kolagenu III typu i kolagenu I typu.
Mieszanka zawiera od 1% do 10% kolagenu III typu i od 90% do 99% kolagenu I typu.
Rurka jest wypełniona materiałem wypełniającym, zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę.
Materiał wypełniający zawiera włókna kolagenowe zorientowane wzdłużnie w stosunku do rurki.
Materiał wypełniający jest mieszanką kolagenu I typu i kolagenu IV typu, przy czym kolagen
I typu i kolagen IV typu w materiale wypełniającym występują w stosunku wagowym 1:1.
PL 205 725 B1
Materiał wypełniający zawiera ponadto środek pobudzający wzrastanie nerwu, stanowiący lamininę oraz czynnik wzmagający wzrost nerwu, albo ich mieszankę.
Boczna ścianka jest zbudowana z kolagenowej tkanki błoniastej.
Kolagenowa tkanka błoniasta jest błoniastą tkanką otrzewnej.
Długość ścianki bocznej wynosi od 10 do 100 mm.
Ścianka boczna ma wewnętrzną średnicę o wielkości od 0,5 do 5 mm.
Ścianka boczna zawiera pojedynczy arkusz kolagenowego materiału arkuszowego.
Sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu, polegający na zwijaniu w rurkę arkusza z materiału kolagenowego i łączeniu nakładających się brzegów arkusza, według wynalazku charakteryzuje się tym, że stosuje się arkusz typu membranowego, posiadający zewnętrzną, zwartą, gładką powierzchnię zaporową, i wewnętrzną, miękką powierzchnię włóknistą, który formuje się w rurkę posiadającą powierzchnię zewnętrzną stanowiącą zwartą, gładką powierzchnię zaporową i powierzchnię wewnętrzną stanowiącą miękką powierzchnię włóknistą.
Stosuje się arkusz kolagenowy zawierający mieszankę kolagenu III typu i kolagenu I typu, w ilości od 1% do 10% kolagenu III typu i od 90 do 99% kolagenu I typu.
Arkusz kolagenowy formuje się w rurkę razem z zawartym w niej materiałem wypełniającym, zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę.
Rurkę formuje się z pojedynczego arkusza kolagenowego.
Rozwiązanie według wynalazku jest skierowane na rurkę do regeneracji nerwu i na sposób jej wytwarzania, w którym rurka ma wchłanianą ściankę boczną utworzoną z arkusza kolagenowego w postaci błony, mającego zwartą, gładką, zewnętrzną powierzchnię zaporową i miękką, włóknistą powierzchnię wewnętrzną. Tym samym rurka ma zwartą, gładką, zewnętrzną, powierzchnię zaporową, która hamuje przyleganie do niej komórek i działa jako zapora zapobiegająca przechodzeniu komórek przez ściankę rurki.
Ponadto rurka ma miękką, włóknistą powierzchnię wewnętrzną, pobudzającą rozrost nerwu. Zakończenia uszkodzonych nerwów są umieszczane wewnątrz przeciwległych zakończeń rurki, ustalając podczas stosowania odbudowywanie połączenia zakończeń nerwów. Tego rodzaju rurka regenerująca pozwala na uniknięcie znacznego wytwarzania tkanki bliznowatej, która upośledza proces regeneracji nerwu.
Dotychczas rurki miały gładką powierzchnię wewnętrzną, tak jak na przykład rurki silikonowe, które podczas stosowania powodowały narastanie wewnątrz rurek włóknistej tkanki bliznowatej. Taka włóknista tkanka zawiera kurczliwe fibroblasty (miofibroblasty), które powodują kurczenie warstwy włóknistej.
Skurczone włókniste obrzeże przeszkadza wydłużaniu się aksonów poprzez rurkę i tym samym zakłóca regenerację nerwu. Aczkolwiek początkowo nie zdawano sobie sprawy ze znaczenia gładkiej powierzchni wewnętrznej takich rurek, to jednak późniejsze badania i analizy wykazały, iż grubość włóknistej blizny tworzącej się wzdłuż wewnętrznej powierzchni rurki jest uzależniona od topografii powierzchni, i uzależnienie to jest tego rodzaju, że przy gładszych powierzchniach (łącznie z powierzchniami niektórych rurek kolagenowych) jest wzmożone formowanie grubszej warstwy bliznowatej, zawierającej dużą ilość komórek kurczliwych.
W przeciwieństwie do tego, w wynalazku zastosowano rurki z kolagenowej błony mające miękką, włóknistą powierzchnię wewnętrzną, która niespodziewanie minimalizuje formowanie grubej włóknistej blizny przy jednoczesnym pobudzaniu wzrostu aksonów wewnątrz rurki, tak że ich liczba jest nieoczekiwanie duża w porównaniu z zastosowaniem znanych rurek kolagenowych bez miękkiej, włóknistej powierzchni wewnętrznej.
Dane eksperymentalne przedstawione przez jednego z wynalazców, dr Myrona Spectora wykazują, iż rurki według wynalazku do regeneracji nerwu, wykonane z kolagenowej błony (grupa V) powodują, w odróżnieniu od zwykłych rurek kolagenowych (grupa IV) rozrost nieoczekiwanie dużej liczby aksonów nerwu centralnego, co należy uznać za nieoczekiwany efekt wynalazku (patrz fig. 1 artykułu „Effects of Bridging a Gap in the Rat Spinał Cord with a Collagen Tube and Membrane” Harvard Medical School, Boston, MA).
Przedmiot wynalazku jest uwidoczniony w przykładach wykonania na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia schematyczny widok z boku błony do formowania rurki, według jednej z postaci wynalazku; fig. 2 - schematyczny widok końca wypełnionej rurki, według jednej z postaci wynalazku; fig. 3
- widok boczny, częściowo schematyczny, rurki według jednej z postaci wynalazku; fig. 4 - schematyczny widok końca rurki ze złączem zakładkowym, według innej postaci wynalazku.
PL 205 725 B1
Tak więc według wynalazku opracowano sposób i rurkę do odtwarzania połączeń i do regeneracji uszkodzonych nerwów, na przykład zewnętrznych nerwów kręgosłupa. Niniejszy wynalazek wykorzystuje rurki uformowane z wchłanialnego przez organizm materiału kolagenowego, posiadające zwartą, gładką od zewnątrz powierzchnię zaporową, przeciwdziałającą wrastaniu tkanki łącznej, zapobiegającą formowaniu się blizny tkanki i pozwalającą na gojenie się uszkodzonych nerwów bez pogarszania ich funkcji.
Zewnętrzna powierzchnia zaporowa rurki według wynalazku wstrzymuje przyklejanie się do niej komórek i działa jako zapora zabezpieczająca przed przechodzeniem przez nią komórek, takich jak komórki, które uczestniczą w formowaniu włókien tkanki łącznej.
Ścianka boczna rurki według wynalazku ma od wewnątrz miękką, włóknistą powierzchnię, przeciwległą do zewnętrznej gładkiej powierzchni zaporowej.
W zalecanych przykł adach wedł ug wynalazku, rurka wed ł ug wynalazku jest wykonana z mieszaniny kolagenu III typu i kolagenu I typu, na przykład ma zawartość kolagenu III typu od około 1% do 10% wagowo oraz zawartość kolagenu I typu od około 90% do 99% wagowo. W szczególnie zalecanych postaciach, rurka według wynalazku ma zawartość kolagenu III typu od około 1% do 5% wagowo oraz zawartość kolagenu I typu od około 95% do 99% wagowo.
W zalecanych postaciach wykonania, boczna ś cianka rurki według wynalazku jest wykonana z błoniastej tkanki kolagenowej bydlęcej, ś wińskiej lub pochodzącej z innego zwierzęcego źródła.
W zalecanych postaciach wykonania, bł oniasta tkanka jest tkank ą bł ony otrzewnej pobraną od młodego cielęcia.
Jednym z odpowiednich materiałów arkuszowych do formowania rurek według wynalazku jest błoniasty materiał Bio-Gide® pochodzący z Ed. Geistlich Sohne AG far Chemische Industrie, zawierający od około 1% do około 5% kolagenu III typu i od około 95% do około 99% kolagenu I typu. Materiał Bio-Gide® oraz jego formowanie są opisane w patencie USA nr 5,837,278.
Przedmiot wynalazku jest przedstawiony w przykładzie wykonania na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia arkusz materiału kolagenowego do formowania rurki według wynalazku, fig. 2 - rurkę według wynalazku w przekroju, fig. 3 - rurkę według wynalazku w widoku z boku, a fig. 4 - sposób formowania rurki według wynalazku.
Jak pokazano na fig. 1, arkusz materiału kolagenowego ma postać błony, która ma zwartą, gładką zewnętrzną powierzchnię zaporową 10 od zewnątrz oraz miękką powierzchnię włóknistą 12 po przeciwnej stronie gładkiej powierzchni zaporowej 10.
Nieoczekiwanie okazało się, że miękka włóknista powierzchnia 12 od strony wnętrza rurki do regeneracji nerwu według wynalazku ułatwia regenerację nerwu.
Regeneracja nerwu może być także dodatkowo ułatwiona przez wypełnienie rurki według wynalazku materiałem sprzyjającym wzrostowi nerwu. W zalecanej postaci, wypełniający materiał sprzyjający wzrostowi nerwu jest materiałem zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę. Najbardziej zalecany jest materiał wypełniający, który zawiera włókna kolagenowe posiadające wzdłużną orientację w stosunku do osi rurki. Fig. 2 przedstawia rurkę 14 według wynalazku w przekroju, zawierającą materiał wypełniający 16, w skład którego wchodzą włókna kolagenowe posiadające wzdłużną orientację w stosunku do rurki 14.
W szczególnie zalecanych postaciach wykonania rurki według wynalazku, materiał wypełniający 16 jest mieszanką kolagenu I typu i kolagenu IV typu, najlepiej w stosunku wagowym około 1: 1.
Materiał wypełniający 16 może również zawierać inne składniki do pobudzania wzrostu nerwu, takie jak środki pobudzające wzrost nerwu (na przykład laminina), oraz czynnik wzrostu nerwu (NGF), lub tym podobne, albo ich mieszaniny.
Według jednej z postaci, rurka regenerująca nerw według wynalazku jest wykonywana sposobem, w którym jest stosowany opisany wyżej błoniasty kolagenowy materiał Bio-Gide® w formie arkusza, i ten błoniasty arkusz jest kształtowany w rurkę. W tym sposobie, dwa przeciwległe brzegi 18 i 20 arkusza materiału są naprowadzone wzajemnie na siebie dla uformowania rurki 14, jak pokazano na fig. 3. Dwa przeciwległe brzegi 18 i 20 arkusza mogą być razem połączone ze sobą odpowiednią metodą formowania rurki, w której wykorzystuje się wchłanialne przez organizm szwy 22, pokazane na fig. 3, uformowane przez zastosowanie nici podlegających rozkładowi biologicznemu, na przykład nici z kolagenu, polilaktydu, poliglikolidu, lub tym podobne. Alternatywnie, do łączenia brzegów 18, 20 może być wykorzystywany klej dopuszczalny pod względem medycznym, taki jak klej fibrynowy, zawiesina skrobiowa lub zawiesina kolagenowa.
PL 205 725 B1
Jak pokazano na fig. 2, do wnętrza rurki 14 po jej uformowaniu może być wtryśnięty materiał wypełniający 16, sprzyjający wzrostowi nerwu.
Alternatywnie, sprzyjający wzrostowi nerwu, materiał wypełniający 16, może być uformowany w postaci tamponu i osuszony sublimacyjnie, a nastę pnie wycię ty w kształ t okrą g ł ego cylindra posiadającego średnicę zbliżoną do średnicy wnętrza rurki 14. Cylindryczny tampon można wtedy ścisnąć i wprowadzić do rurki 14 po jej uformowaniu.
W jeszcze innej postaci sposobu wykonania rurki 14 według wynalazku, na powierzchnię włóknistą 12 arkusza materiału kolagenowego, w postaci błony, takiego jak arkusz pokazany na fig. 1, może być nakładana zawiesina materiału wypełniającego 16, sprzyjającego wzrostowi nerwu, jeszcze przed formowaniem rurki. Następnie rurka może być formowana przez zwijanie błony z zawiesiną materiału wypełniającego powiązanego z powierzchnią włóknistą, tak żeby w jednym zabiegu uformować rurkę z zawartym wewnątrz niej materiałem wypełniającym 16. Dwa brzegi mogą być razem połączone szwami, klejem, albo innym odpowiednim spoiwem. Rolę spoiwa może też spełniać zawiesina materiału wypełniającego.
W przykł adzie pokazanym na fig. 4 dla uformowania rurki 14', dwa przeciwległ e brzegi 18' i 20' są połączone na zakładkę. Założone na siebie brzegi 18' i 20' mogą być razem połączone szwami lub klejem 24, jak pokazano na fig. 4. Alternatywnie, do łączenia przeciwległych bocznych krawędzi przy formowaniu rurki, jako spoiwo może służyć materiał sprzyjający wzrostowi nerwu.
Kiedy materiał wypełniający, sprzyjający wzrostowi nerwu, jest dostarczany jako zawiesina do wypełniania rurki, wówczas wypełniane rurki przy składowaniu ich przed użyciem do celów chirurgicznych są osuszane sublimacyjnie.
W rozwią zaniu alternatywnym, przy formowaniu rurek wedł ug wynalazku bezpoś rednio z bł oniastego materiału takiego jak Bio-Gide®, boczna ścianka rurek może być wykonywana z zawiesiny kolagenowej, tak aby uzyskać zwartą, gładką powierzchnię zaporową na zewnątrz i włóknistą, miękką przeciwległą powierzchnię od strony wnętrza. Następnie materiał może być osuszony sublimacyjnie i dalej uformowany zgodnie z wynalazkiem. Podczas stosowania, zakończenia nerwów są wkładane do otwartych końców 26 i 28 rurki 14 według wynalazku dla ułatwienia odtworzenia połączeń zakończeń nerwowych.
Wynalazek jest zilustrowany następującymi poniżej przykładami.
P r z y k ł a d 1.
Rurki uformowano z błon materiału Bio-Gide® tak, że miały wewnętrzną średnicę od około 0,5 mm do około 5 mm oraz długość od około 10 mm do około 100 mm. Brzegi rurek połączono szwem lub klejem.
P r z y k ł a d 2.
Ze skór prosiąt wytworzono żelowatą masę kolagenu I typu tak jak podano niżej. Skóry prosiąt posiekano na kawałki o maksymalnej wielkości 1 cm3, a następnie przy pomocy rozpuszczalnika organicznego, mającego zdolność rozpuszczania wody, usunięto wodę ze skór prosiąt, i pozwolono na odparowanie rozpuszczalnika. Osuszone kawałki skóry odtłuszczono płynnym rozpuszczalnikiem węglowodorowym. Następnie płynny rozpuszczalnik węglowodorowy usunięto, a suche kawałki skóry nasączono wodą. Nawodnione kawałki skóry poddano działaniu roztworu 1N wodorotlenku sodowego (roztworu o stężeniu 1-normalnym) i wypłukano. Wypłukane kawałki skóry poddano działaniu roztworu 0,04N kwasu solnego (roztworu o stężeniu 0,04-normalnym) i ponownie wypłukano. Obrobiony w ten sposób materiał zmielono w młynie koloidalnym dla uzyskania homogenizowanej płynnej zawiesiny zawierającej około 1,5% kolagenu. Zawiesinę tę umieszczono w strzykawce do wtryskiwania i wypełniono nią rurki, uformowane według przykładu 1. Wypełnione rurki zamrożono przez 24 godziny w temperaturze - 20°C i osuszono sublimacyjnie przez 72 godziny pod ciśnieniem mniejszym niż 1 mbar.
P r z y k ł a d 3.
Materiał wypełniający, zawierający 50% kolagenu I typu i 50% kolagenu IV typu, przygotowano jak podano niżej. Ze skór prosiąt przygotowano zawiesinę o zawartości 1,5% kolagenu I typu, tak jak opisano w przykładzie 2. Dostępny w handlu kolagen IV typu zmieszano z wodą i połączono z 1,5% zawiesiną. Zawiesiny kolagenu I typu i kolagenu IV typu zmieszano razem w tych samych ilościach. Pomieszane ze sobą zawiesiny umieszczono w strzykawce i tą mieszanką zawiesin wypełniono rurki, takie jak uformowane w przykładzie 1.
P r z y k ł a d 4.
Na włókniste strony błoniastych arkuszy Bio-Gide® nałożono zawiesinę według przykładu 2, albo mieszankę zawiesin według przykładu 3, i te arkusze zwinięto w jednej operacji aż do nałożenia na
PL 205 725 B1 siebie bocznych brzegów arkuszy i osłonięcia mieszaniny znajdującej się w środku, po czym połączono boczne brzegi arkuszy. Wypełnione w ten sposób rurki zamrożono przez 24 godziny w temperaturze -20°C i osuszono sublimacyjnie przez 72 godziny pod ciśnieniem mniejszym niż 1 mbar.
Wszystkie opisane wyżej rurki, po ich użyciu do regeneracji nerwu, umożliwiły rozrost znacząco dużej liczby aksonów regenerowanego nerwu
Claims (16)
- Zastrzeżenia patentowe1. Rurka do regeneracji nerwu, przeznaczona do przywracania połączenia końców nerwu, zawierająca boczną ściankę, zwiniętą z wchłanialnego kolagenowego materiału arkuszowego, znamienna tym, że ścianka boczna rurki (14) ma powierzchnię zewnętrzną w postaci zwartej, gładkiej powierzchni zaporowej (10) i powierzchnię wewnętrzną w postaci miękkiej powierzchni włóknistej (12), przy czym kolagenowy materiał arkuszowy, z którego jest wykonana rurka (14) jest typu membranowego i ma zwartą, gładką zewnętrzną powierzchnię zaporową i miękką i włóknistą wewnętrzną powierzchnię.
- 2. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że materiał bocznej ścianki zawiera mieszankę kolagenu III typu i kolagenu I typu.
- 3. Rurka według zastrz. 2, znamienna tym, że mieszanka zawiera od 1% do 10% kolagenu III typu i od 90% do 99% kolagenu I typu.
- 4. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że rurka (14) jest wypełniona materiałem wypełniającym (16), zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę.
- 5. Rurka według zastrz. 4, znamienna tym, że materiał wypełniający (16) zawiera włókna kolagenowe zorientowane wzdłużnie w stosunku do rurki (14).
- 6. Rurka według zastrz. 4, znamienna tym, że materiał wypełniający (16) jest mieszanką kolagenu I typu i kolagenu IV typu, przy czym kolagen I typu i kolagen IV typu w materiale wypełniającym (16) występują w stosunku wagowym 1:1.
- 7. Rurka według zastrz. 4, znamienna tym, że materiał wypełniający (16) zawiera ponadto środek pobudzający wzrastanie nerwu, stanowiący lamininę oraz czynnik wzmagający wzrost nerwu, albo ich mieszankę.
- 8. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że boczna ścianka jest zbudowana z kolagenowej tkanki błoniastej.
- 9. Rurka według zastrz. 8, znamienna tym, że kolagenowa tkanka błoniasta jest błoniastą tkanką otrzewnej.
- 10. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że długość ścianki bocznej wynosi od 10 do 100 mm.
- 11. Rurka według zastrz.1, znamienna tym, że ścianka boczna ma wewnętrzną średnicę o wielkoś ci od 0,5 do 5 mm.
- 12. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że ścianka boczna zawiera pojedynczy arkusz kolagenowego materiału arkuszowego.
- 13. Sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu, polegający na zwijaniu w rurkę arkusza z materiału kolagenowego i łączeniu nakładających się brzegów arkusza, znamienny tym, że stosuje się arkusz typu membranowego, posiadający zewnętrzną, zwartą, gładką powierzchnię zaporową, i wewnętrzną, mię kką powierzchnię włóknistą, który formuje się w rurkę (14) posiadając ą powierzchnię zewnętrzną stanowiącą zwartą, gładką powierzchnię zaporową (10) i powierzchnię wewnętrzną stanowiącą miękką powierzchnię włóknistą (12).
- 14. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że stosuje się arkusz kolagenowy zawierający mieszankę kolagenu III typu i kolagenu I typu, w ilości od 1% do 10% kolagenu III typu i od 90 do 99% kolagenu I typu.
- 15. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że arkusz kolagenowy formuje się w rurkę (14) razem z zawartym w niej materiałem wypełniającym (16), zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę.
- 16. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że rurkę (14) formuje się z pojedynczego arkusza kolagenowego.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US21484800P | 2000-06-28 | 2000-06-28 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL348323A1 PL348323A1 (en) | 2002-01-02 |
| PL205725B1 true PL205725B1 (pl) | 2010-05-31 |
Family
ID=22800639
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL348323A PL205725B1 (pl) | 2000-06-28 | 2001-06-27 | Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu |
Country Status (14)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US20020018799A1 (pl) |
| JP (1) | JP5155506B2 (pl) |
| CN (1) | CN1264483C (pl) |
| CA (1) | CA2351787C (pl) |
| CH (1) | CH695207A5 (pl) |
| CZ (1) | CZ301649B6 (pl) |
| DE (1) | DE10129871A1 (pl) |
| ES (1) | ES2191536B1 (pl) |
| FR (1) | FR2810889B1 (pl) |
| GB (1) | GB2366736B (pl) |
| IT (1) | ITMI20011320A1 (pl) |
| NL (1) | NL1018400C2 (pl) |
| PL (1) | PL205725B1 (pl) |
| RU (1) | RU2302262C2 (pl) |
Families Citing this family (64)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6964685B2 (en) | 1999-06-22 | 2005-11-15 | The Brigham And Women's Hospital, Inc. | Biologic replacement for fibrin clot |
| TWI264301B (en) * | 2002-03-11 | 2006-10-21 | Ind Tech Res Inst | Multi-channel bioresorbable nerve regeneration conduit and preparation method for the same |
| US7846183B2 (en) | 2004-02-06 | 2010-12-07 | Spinal Elements, Inc. | Vertebral facet joint prosthesis and method of fixation |
| AU2005211797B2 (en) | 2004-02-10 | 2010-10-28 | Spinal Elements, Inc. | System and method for protecting neurovascular structures |
| US9504583B2 (en) | 2004-06-10 | 2016-11-29 | Spinal Elements, Inc. | Implant and method for facet immobilization |
| CN100372576C (zh) * | 2004-12-29 | 2008-03-05 | 东华大学 | 可促进神经再生的复合胶原神经导管及其中空湿法纺丝成形方法 |
| GB2441098B (en) | 2005-05-16 | 2010-05-26 | Purdue Research Foundation | Engineered extracellular matrices |
| PL1937293T3 (pl) | 2005-09-02 | 2014-03-31 | Ed Geistlich Soehne Ag Fuer Chemische Ind | Sposób naprawy rozdarć łąkotki |
| DE102005054941A1 (de) * | 2005-11-17 | 2007-05-31 | Gelita Ag | Nervenleitschiene |
| CN1985777B (zh) * | 2005-12-20 | 2011-08-03 | 广东冠昊生物科技股份有限公司 | 生物型人工脊髓 |
| JP2009524483A (ja) | 2006-01-25 | 2009-07-02 | チルドレンズ メディカル センター コーポレーション | 靭帯修復のための方法および手順 |
| JP2007289634A (ja) * | 2006-03-30 | 2007-11-08 | Gc Corp | 生体吸収性チューブ及びその製造方法 |
| US20070269476A1 (en) | 2006-05-16 | 2007-11-22 | Voytik-Harbin Sherry L | Engineered extracellular matrices control stem cell behavior |
| CA2652138C (en) * | 2006-05-16 | 2016-01-19 | Purdue Research Foundation | Three dimensional purified collagen matrices |
| JP4569543B2 (ja) * | 2006-08-18 | 2010-10-27 | ニプロ株式会社 | 膨潤可能な棒状体を備えた組織再生器具の前駆体 |
| JP2007050263A (ja) * | 2006-08-23 | 2007-03-01 | Nipro Corp | 生体組織または器官再生用器具 |
| WO2008036393A1 (en) | 2006-09-21 | 2008-03-27 | Purdue Research Foundation | Collagen preparation and method of isolation |
| ES2936715T3 (es) | 2006-09-28 | 2023-03-21 | Childrens Medical Ct Corp | Métodos y productos de colágeno para reparación de tejidos |
| US7858142B2 (en) * | 2006-10-17 | 2010-12-28 | Henrich Cheng | Laminin-modified conduit for nerve regeneration and methods of manufacturing the conduit and regenerating nerves using the conduit |
| CN100462105C (zh) * | 2006-10-19 | 2009-02-18 | 中国人民解放军第四军医大学 | 一种重组合神经替代物的制备方法 |
| US8652137B2 (en) | 2007-02-22 | 2014-02-18 | Spinal Elements, Inc. | Vertebral facet joint drill and method of use |
| US8992533B2 (en) | 2007-02-22 | 2015-03-31 | Spinal Elements, Inc. | Vertebral facet joint drill and method of use |
| CA2708615C (en) | 2007-12-10 | 2019-12-31 | Purdue Research Foundation | Collagen-based matrices with stem cells |
| US9386990B2 (en) * | 2008-03-19 | 2016-07-12 | University Of Florida Research Foundation, Inc. | Nerve repair with a hydrogel and adhesive |
| EP2404622B1 (en) * | 2009-02-02 | 2015-12-02 | Toyobo Co., Ltd. | Nerve regeneration-inducing tube |
| RU2401648C1 (ru) * | 2009-03-05 | 2010-10-20 | Игорь Иванович Марков | Медицинский прибор для устранения диастаза и восстановления целостности поврежденного периферического нерва и способ его изготовления |
| FR2944706B1 (fr) | 2009-04-28 | 2012-08-24 | Biom Up | Nouveaux materiaux en collagene et procedes d'obtention. |
| US20110129515A1 (en) * | 2009-05-29 | 2011-06-02 | Integra Lifesciences Corporation | Devices and Methods for Nerve Regeneration |
| US8740949B2 (en) | 2011-02-24 | 2014-06-03 | Spinal Elements, Inc. | Methods and apparatus for stabilizing bone |
| US9271765B2 (en) | 2011-02-24 | 2016-03-01 | Spinal Elements, Inc. | Vertebral facet joint fusion implant and method for fusion |
| USD724733S1 (en) | 2011-02-24 | 2015-03-17 | Spinal Elements, Inc. | Interbody bone implant |
| USD739935S1 (en) | 2011-10-26 | 2015-09-29 | Spinal Elements, Inc. | Interbody bone implant |
| WO2013116744A1 (en) | 2012-02-01 | 2013-08-08 | Children's Medical Center Corporation | Biomaterial for articular cartilage maintenance and treatment of arthritis |
| US12599700B2 (en) | 2013-02-01 | 2026-04-14 | The Children's Medical Center Corporation | System and methods for connective tissue repair using scaffolds |
| EP3798226A1 (en) | 2013-02-01 | 2021-03-31 | Children's Medical Center Corporation | Collagen scaffolds |
| US9820784B2 (en) | 2013-03-14 | 2017-11-21 | Spinal Elements, Inc. | Apparatus for spinal fixation and methods of use |
| USD765853S1 (en) | 2013-03-14 | 2016-09-06 | Spinal Elements, Inc. | Flexible elongate member with a portion configured to receive a bone anchor |
| US9421044B2 (en) | 2013-03-14 | 2016-08-23 | Spinal Elements, Inc. | Apparatus for bone stabilization and distraction and methods of use |
| US9839450B2 (en) | 2013-09-27 | 2017-12-12 | Spinal Elements, Inc. | Device and method for reinforcement of a facet |
| US9456855B2 (en) | 2013-09-27 | 2016-10-04 | Spinal Elements, Inc. | Method of placing an implant between bone portions |
| US9878071B2 (en) | 2013-10-16 | 2018-01-30 | Purdue Research Foundation | Collagen compositions and methods of use |
| EP3185922B1 (en) | 2014-08-27 | 2025-04-02 | Purdue Research Foundation | Collagen-based therapeutic delivery systems |
| WO2016044432A1 (en) | 2014-09-17 | 2016-03-24 | Spinal Elements, Inc. | Flexible fastening band connector |
| WO2016122868A1 (en) | 2015-01-27 | 2016-08-04 | Spinal Elements, Inc. | Facet joint implant |
| US11919941B2 (en) | 2015-04-21 | 2024-03-05 | Purdue Research Foundation | Cell-collagen-silica composites and methods of making and using the same |
| US9855317B2 (en) | 2015-04-27 | 2018-01-02 | Reflex Medical, Inc. | Systems and methods for sympathetic cardiopulmonary neuromodulation |
| CN106913393B (zh) * | 2015-12-28 | 2020-10-30 | 烟台蓝创生物技术有限公司 | 一种人工神经支架及其制备方法与应用 |
| WO2017139487A1 (en) | 2016-02-09 | 2017-08-17 | Northwind Medical, Inc. | Methods, agents, and devices for local neuromodulation of autonomic nerves |
| EP3478287A4 (en) | 2016-06-29 | 2020-04-08 | Tulavi Therapeutics, Inc. | TREATMENT OF SEPTICEMIA AND ASSOCIATED INFLAMMATORY CONDITIONS BY LOCAL NEUROMODULATION OF THE AUTONOMOUS NERVOUS SYSTEM |
| US12377193B2 (en) | 2016-07-06 | 2025-08-05 | The Children's Medical Center Corporation | Indirect method of articular tissue repair |
| ES2966669T3 (es) | 2016-12-02 | 2024-04-23 | Integra Lifesciences Corp | Dispositivos y métodos para regeneración nerviosa |
| CA3052266A1 (en) | 2017-01-31 | 2018-08-09 | Geniphys, Llc | Methods and compositions for matrix preparation |
| US11739291B2 (en) | 2017-04-25 | 2023-08-29 | Purdue Research Foundation | 3-dimensional (3D) tissue-engineered muscle for tissue restoration |
| CN109010915B (zh) * | 2017-06-09 | 2021-06-15 | 中国科学院苏州纳米技术与纳米仿生研究所 | 有序胶原支架及其在制备修复脊髓损伤的产品中的应用 |
| JPWO2019054407A1 (ja) * | 2017-09-15 | 2020-10-29 | 東洋紡株式会社 | 神経保護材 |
| AU2019299519B2 (en) | 2018-07-02 | 2025-03-06 | Incept Llc | Methods and devices for in situ formed nerve cap |
| US20210315587A1 (en) | 2018-07-02 | 2021-10-14 | Tulavi Therapeutics, Inc. | Methods and devices for in situ formed nerve cap with rapid release |
| US11457959B2 (en) | 2019-05-22 | 2022-10-04 | Spinal Elements, Inc. | Bone tie and bone tie inserter |
| AU2020278453A1 (en) | 2019-05-22 | 2022-01-20 | Spinal Elements, Inc. | Bone tie and bone tie inserter |
| RU193833U1 (ru) * | 2019-06-21 | 2019-11-18 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования Читинская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения российской федерации | Кондуит для регенерации поврежденного периферического нерва |
| EP4096635A4 (en) | 2020-01-27 | 2024-02-21 | GeniPhys, Inc. | BIOLOGICAL FILLER FOR TISSUE RESTORATION AND REGENERATION |
| US11304733B2 (en) | 2020-02-14 | 2022-04-19 | Spinal Elements, Inc. | Bone tie methods |
| EP3892311B1 (en) | 2020-04-06 | 2023-09-20 | Integra LifeSciences Corporation | Devices and methods for nerve regeneration |
| WO2023108007A2 (en) | 2021-12-10 | 2023-06-15 | Spinal Elements, Inc. | Bone tie and portal |
Family Cites Families (23)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| NL269404A (pl) * | 1960-09-20 | 1900-01-01 | ||
| US4013078A (en) * | 1974-11-25 | 1977-03-22 | Feild James Rodney | Intervertebral protector means |
| FR2559666B1 (fr) * | 1984-02-21 | 1986-08-08 | Tech Cuir Centre | Procede de fabrication de tubes de collagene, notamment de tubes de faibles diametres, et application des tubes obtenus dans le domaine des protheses vasculaires et des sutures nerveuses |
| US4778467A (en) * | 1984-04-25 | 1988-10-18 | The University Of Utah | Prostheses and methods for promoting nerve regeneration and for inhibiting the formation of neuromas |
| US4877029A (en) * | 1987-03-30 | 1989-10-31 | Brown University Research Foundation | Semipermeable nerve guidance channels |
| US4870966A (en) * | 1988-02-01 | 1989-10-03 | American Cyanamid Company | Bioabsorbable surgical device for treating nerve defects |
| US5573771A (en) * | 1988-08-19 | 1996-11-12 | Osteomedical Limited | Medicinal bone mineral products |
| US4863668A (en) * | 1988-09-22 | 1989-09-05 | University Of Utah | Method of forming fibrin-collagen nerve and body tissue repair material |
| AU663150B2 (en) * | 1991-11-26 | 1995-09-28 | Research Development Foundation | Fetal membrane tubes for nerve and vessel grafts |
| US5429938A (en) * | 1992-03-02 | 1995-07-04 | University Of Michigan | Methods and compositions for isolation and growth of kidney tubule stem cells, in vitro kidney tubulogenesis and ex vivo construction of renal tubules |
| FI922517L (fi) * | 1992-05-29 | 1993-11-30 | Paeivi Liesi | Nervrepareringsmedel och dess anvaendning |
| US5611354A (en) * | 1992-11-12 | 1997-03-18 | Alleyne; Neville | Cardiac protection device |
| EP1716864A1 (en) * | 1993-08-26 | 2006-11-02 | Genetics Institute, LLC | Neural regeneration using home bone morphogenetic proteins |
| GB9400163D0 (en) * | 1994-01-06 | 1994-03-02 | Geistlich Soehne Ag | Membrane |
| ATE372747T1 (de) * | 1994-02-18 | 2007-09-15 | Organogenesis Inc | Verfahren zur herstellung einer bio-umbaubare transplantatprothese aus kollagen |
| TW369414B (en) * | 1994-09-30 | 1999-09-11 | Yamanouchi Pharma Co Ltd | Bone formation transplant |
| US6057137A (en) * | 1994-10-06 | 2000-05-02 | Regents Of The University Of Minnesota | Tissue-equivalent rods containing aligned collagen fibrils and schwann cells |
| TW501934B (en) * | 1996-11-20 | 2002-09-11 | Tapic Int Co Ltd | Collagen material and process for making the same |
| TW528600B (en) * | 1996-11-20 | 2003-04-21 | Yasuhiko Shimizu | Artificial neural canal |
| ATE249182T1 (de) * | 1996-12-10 | 2003-09-15 | Purdue Research Foundation | Rohrförmige transplantatkonstruktionen aus submucosalem gewebe |
| CN1304296A (zh) * | 1998-06-10 | 2001-07-18 | 清水庆彦 | 人造神经管 |
| KR20020029069A (ko) * | 1999-07-07 | 2002-04-17 | 시미즈, 야스히꼬 | 인공 신경관 |
| US6221109B1 (en) * | 1999-09-15 | 2001-04-24 | Ed. Geistlich Söhne AG fur Chemische Industrie | Method of protecting spinal area |
-
2001
- 2001-06-20 CZ CZ20012263A patent/CZ301649B6/cs not_active IP Right Cessation
- 2001-06-21 FR FR0108195A patent/FR2810889B1/fr not_active Expired - Fee Related
- 2001-06-21 US US09/885,537 patent/US20020018799A1/en not_active Abandoned
- 2001-06-21 DE DE10129871A patent/DE10129871A1/de not_active Withdrawn
- 2001-06-22 IT IT2001MI001320A patent/ITMI20011320A1/it unknown
- 2001-06-25 ES ES200101462A patent/ES2191536B1/es not_active Expired - Fee Related
- 2001-06-26 CH CH01168/01A patent/CH695207A5/de not_active IP Right Cessation
- 2001-06-27 RU RU2001117467/15A patent/RU2302262C2/ru not_active IP Right Cessation
- 2001-06-27 NL NL1018400A patent/NL1018400C2/nl not_active IP Right Cessation
- 2001-06-27 PL PL348323A patent/PL205725B1/pl unknown
- 2001-06-27 JP JP2001194381A patent/JP5155506B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2001-06-28 GB GB0115847A patent/GB2366736B/en not_active Expired - Fee Related
- 2001-06-28 CA CA2351787A patent/CA2351787C/en not_active Expired - Fee Related
- 2001-06-28 CN CN01115782.8A patent/CN1264483C/zh not_active Expired - Fee Related
-
2004
- 2004-03-10 US US10/796,113 patent/US20040170664A1/en not_active Abandoned
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| ES2191536B1 (es) | 2005-02-01 |
| NL1018400A1 (nl) | 2002-01-02 |
| GB2366736A (en) | 2002-03-20 |
| ITMI20011320A1 (it) | 2002-12-22 |
| RU2302262C2 (ru) | 2007-07-10 |
| GB0115847D0 (en) | 2001-08-22 |
| CA2351787C (en) | 2012-04-03 |
| US20040170664A1 (en) | 2004-09-02 |
| NL1018400C2 (nl) | 2003-02-04 |
| DE10129871A1 (de) | 2002-10-24 |
| CH695207A5 (de) | 2006-01-31 |
| CN1264483C (zh) | 2006-07-19 |
| ES2191536A1 (es) | 2003-09-01 |
| PL348323A1 (en) | 2002-01-02 |
| CZ20012263A3 (cs) | 2002-02-13 |
| CA2351787A1 (en) | 2001-12-28 |
| FR2810889B1 (fr) | 2004-10-29 |
| US20020018799A1 (en) | 2002-02-14 |
| JP5155506B2 (ja) | 2013-03-06 |
| JP2002336345A (ja) | 2002-11-26 |
| GB2366736B (en) | 2004-05-12 |
| CZ301649B6 (cs) | 2010-05-12 |
| FR2810889A1 (fr) | 2002-01-04 |
| CN1329877A (zh) | 2002-01-09 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| PL205725B1 (pl) | Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu | |
| Chvapil | Collagen sponge: theory and practice of medical applications | |
| DE69728054T2 (de) | Bioresorbierbare dichtungsmassen für poröse künstliche gefässen | |
| AU670136B2 (en) | Devices for preventing tissue adhesion | |
| ES2195731B1 (es) | Producto mineral oseo en particulas para la reparacion de defectos de cartilagos y defectos oseos combinados. | |
| US5665114A (en) | Tubular expanded polytetrafluoroethylene implantable prostheses | |
| EP0906764B1 (en) | Biopolymer sponge tubes | |
| US9480774B2 (en) | Implant for tissue repair including chitosan | |
| KR101766679B1 (ko) | 유착 방지를 위한 히드로겔 막 | |
| EP3402443B1 (en) | Devices and compositions and methods of use thereof | |
| WO1998022155A1 (en) | Artificial neural canal | |
| EP2863838B1 (en) | Compression and kink resistant implants | |
| JPH01212559A (ja) | 生物学的インプラント物質 | |
| US20060095139A1 (en) | Composite prosthetic implant | |
| Annibali | Prosthetic materials and adhesion formation | |
| EP2566528B1 (en) | Medical implant | |
| WO1996040302A1 (en) | Bioabsorbable space filling soft tissue prosthesis | |
| JPWO1998022155A1 (ja) | 人工神経管 | |
| JPWO2001003609A1 (ja) | 人工神経管 |