PL205725B1 - Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu - Google Patents

Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu

Info

Publication number
PL205725B1
PL205725B1 PL348323A PL34832301A PL205725B1 PL 205725 B1 PL205725 B1 PL 205725B1 PL 348323 A PL348323 A PL 348323A PL 34832301 A PL34832301 A PL 34832301A PL 205725 B1 PL205725 B1 PL 205725B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
collagen
tube
type
sheet
nerve
Prior art date
Application number
PL348323A
Other languages
English (en)
Other versions
PL348323A1 (en
Inventor
Myron Spector
Lothar Schlösser
Peter Geistlich
Original Assignee
Ed Geistlich Soehne Ag Fuer Chemische Industrie
Geistlich Soehne Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ed Geistlich Soehne Ag Fuer Chemische Industrie, Geistlich Soehne Ag filed Critical Ed Geistlich Soehne Ag Fuer Chemische Industrie
Publication of PL348323A1 publication Critical patent/PL348323A1/xx
Publication of PL205725B1 publication Critical patent/PL205725B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/04Macromolecular materials
    • A61L31/043Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof
    • A61L31/044Collagen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/14Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2430/00Materials or treatment for tissue regeneration
    • A61L2430/32Materials or treatment for tissue regeneration for nerve reconstruction

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Prostheses (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu.
Jak wiadomo, połączenia uszkodzonych nerwów mogą być czasem odtworzone metodą rurkowania, w której to metodzie zakończenia nerwów są wkładane do silikonowej rurki, która może zawierać porowaty, wszczepialny, kolagenowy kopolimer glikozaminoglikanowy (kolagen GAG lub CG). Chociaż metoda ta była wykorzystywana do odtwarzania połączeń nerwów, to jednak stosowanie niewchłanialnych przez organizm, silikonowych rurek wymaga późniejszej procedury chirurgicznej zmierzającej do usunięcia tych rurek.
Dla uniknięcia drugiej operacji chirurgicznej, polegającej na usuwaniu silikonowych rurek, stosuje się również rurki wchłanialne, uformowane z kolagenu I typu, pochodzącego z bydlęcych ścięgien. Rurki wchłanialne z kolagenu I typu ze ścięgien formowano z porami w ściance bocznej o wielkości w przybliż eniu 22 nm (co okreś la się jako wykonane z „kolagenu porowatego”) i z porami w ś ciance bocznej o średnicy mniejszej niż 3,8 nm (co czasami określa się niewłaściwie jako wykonane z „kolagenu bez porów”). Te rurki uformowane z kolagenu I typu ze ścięgien są formowane przez nakładanie lepkiego żelu oczyszczonych kolagenowych włókien I typu na obracający się trzpień roboczy i ściskanie nałożonego materiału dla uformowania ciasno upakowanych włókien. Rurki są chemicznie usieciowione i liofilizowane. Jedną z wad wynikających ze stosowania rurek uformowanych jak wyżej opisano z kolagenu I typu ze ścięgien jest to, że tkanka łączna i komórki uczestniczące w formowaniu tkanki łącznej mogą przenikać przez pory w ściankach rurki wykonanej z kolagenu I typu ze ścięgien, co prowadzi do powstawania blizny tkanki łącznej; hamującej odtworzenie połączeń zakończeń nerwowych. W dodatku, powierzchnia wnętrza rurek wykonanych z kolagenu I typu ze ścięgien, uformowanych tak jak wyżej opisano, może również hamować odtwarzanie się połączeń zakończeń nerwowych. Z opisu WO 9310722 są znane rurki kolagenowe wykonane jako owodniowe i kosmówkowe membrany, stosowane jako przeszczepy nerwów i naczyń. Jednakże podczas stosowania tych rurek, mających gładką powierzchnię zewnętrzną i wewnętrzną, również następowało narastanie wewnątrz rurek włóknistej tkanki bliznowatej, zawierającej kurczliwe fibroblasty, które zakłócały regenerację nerwu (niewielka ilość regenerowanych aksonów).
Z opisu US 5837278 są znane wch ł aniane bł ony kolagenowe, wkł adane chirurgicznie dookoł a obrzeża zranienia dla wspomagania np. regeneracji kości.
Z artykułu „Histological Response to a Fully Degradable Collagen Device Implanted In a Gap In the Rat Sciatic Nerve”, Tissue Engineering, Tom 3, Nr 4, 1997, jest znany sposób regeneracji nerwu obwodowego, polegający na wszczepianiu rurek z ulegającego całkowitej degradacji kolagenu, zawierających analog kolagenu - glikozoaminoglikanu (GAG) w rurce kolagenowej, jako implantów dla pokrycia defektu.
Z artykuł u „Connective Tissue Response to Tubular Implants for Peripheral Nerve Regeneration: The Role of Myofibroblasts”, The Journal of Comparative Neurology, 417(2000) jest znane badanie regeneracji nerwu, polegające na implantowaniu pustych i wypełnionych matrycą kolagenowoglikozoaminoglikanową (GAG) rurek kolagenowych i silikonowych, i na porównywaniu wyników. Stwierdzono tam znaczące polepszenie odzyskiwania przez nerw normalnych funkcji w przypadku stosowania rurek silikonowych z matrycą kolagenu - GAG.
Rurka do regeneracji nerwu, przeznaczona do przywracania połączenia końców nerwu, zawierająca boczną ściankę, zwiniętą z wchłanialnego kolagenowego materiału arkuszowego, według wynalazku charakteryzuje się tym, że ścianka boczna rurki ma powierzchnię zewnętrzną w postaci zwartej, gładkiej powierzchni zaporowej i powierzchnię wewnętrzną w postaci miękkiej powierzchni włóknistej, przy czym kolagenowy materiał arkuszowy, z którego jest wykonana rurka, jest typu membranowego i ma zwartą, gładką zewnętrzną powierzchnię zaporową i miękką i włóknistą wewnętrzną powierzchnię.
Materiał bocznej ścianki zawiera mieszankę kolagenu III typu i kolagenu I typu.
Mieszanka zawiera od 1% do 10% kolagenu III typu i od 90% do 99% kolagenu I typu.
Rurka jest wypełniona materiałem wypełniającym, zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę.
Materiał wypełniający zawiera włókna kolagenowe zorientowane wzdłużnie w stosunku do rurki.
Materiał wypełniający jest mieszanką kolagenu I typu i kolagenu IV typu, przy czym kolagen
I typu i kolagen IV typu w materiale wypełniającym występują w stosunku wagowym 1:1.
PL 205 725 B1
Materiał wypełniający zawiera ponadto środek pobudzający wzrastanie nerwu, stanowiący lamininę oraz czynnik wzmagający wzrost nerwu, albo ich mieszankę.
Boczna ścianka jest zbudowana z kolagenowej tkanki błoniastej.
Kolagenowa tkanka błoniasta jest błoniastą tkanką otrzewnej.
Długość ścianki bocznej wynosi od 10 do 100 mm.
Ścianka boczna ma wewnętrzną średnicę o wielkości od 0,5 do 5 mm.
Ścianka boczna zawiera pojedynczy arkusz kolagenowego materiału arkuszowego.
Sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu, polegający na zwijaniu w rurkę arkusza z materiału kolagenowego i łączeniu nakładających się brzegów arkusza, według wynalazku charakteryzuje się tym, że stosuje się arkusz typu membranowego, posiadający zewnętrzną, zwartą, gładką powierzchnię zaporową, i wewnętrzną, miękką powierzchnię włóknistą, który formuje się w rurkę posiadającą powierzchnię zewnętrzną stanowiącą zwartą, gładką powierzchnię zaporową i powierzchnię wewnętrzną stanowiącą miękką powierzchnię włóknistą.
Stosuje się arkusz kolagenowy zawierający mieszankę kolagenu III typu i kolagenu I typu, w ilości od 1% do 10% kolagenu III typu i od 90 do 99% kolagenu I typu.
Arkusz kolagenowy formuje się w rurkę razem z zawartym w niej materiałem wypełniającym, zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę.
Rurkę formuje się z pojedynczego arkusza kolagenowego.
Rozwiązanie według wynalazku jest skierowane na rurkę do regeneracji nerwu i na sposób jej wytwarzania, w którym rurka ma wchłanianą ściankę boczną utworzoną z arkusza kolagenowego w postaci błony, mającego zwartą, gładką, zewnętrzną powierzchnię zaporową i miękką, włóknistą powierzchnię wewnętrzną. Tym samym rurka ma zwartą, gładką, zewnętrzną, powierzchnię zaporową, która hamuje przyleganie do niej komórek i działa jako zapora zapobiegająca przechodzeniu komórek przez ściankę rurki.
Ponadto rurka ma miękką, włóknistą powierzchnię wewnętrzną, pobudzającą rozrost nerwu. Zakończenia uszkodzonych nerwów są umieszczane wewnątrz przeciwległych zakończeń rurki, ustalając podczas stosowania odbudowywanie połączenia zakończeń nerwów. Tego rodzaju rurka regenerująca pozwala na uniknięcie znacznego wytwarzania tkanki bliznowatej, która upośledza proces regeneracji nerwu.
Dotychczas rurki miały gładką powierzchnię wewnętrzną, tak jak na przykład rurki silikonowe, które podczas stosowania powodowały narastanie wewnątrz rurek włóknistej tkanki bliznowatej. Taka włóknista tkanka zawiera kurczliwe fibroblasty (miofibroblasty), które powodują kurczenie warstwy włóknistej.
Skurczone włókniste obrzeże przeszkadza wydłużaniu się aksonów poprzez rurkę i tym samym zakłóca regenerację nerwu. Aczkolwiek początkowo nie zdawano sobie sprawy ze znaczenia gładkiej powierzchni wewnętrznej takich rurek, to jednak późniejsze badania i analizy wykazały, iż grubość włóknistej blizny tworzącej się wzdłuż wewnętrznej powierzchni rurki jest uzależniona od topografii powierzchni, i uzależnienie to jest tego rodzaju, że przy gładszych powierzchniach (łącznie z powierzchniami niektórych rurek kolagenowych) jest wzmożone formowanie grubszej warstwy bliznowatej, zawierającej dużą ilość komórek kurczliwych.
W przeciwieństwie do tego, w wynalazku zastosowano rurki z kolagenowej błony mające miękką, włóknistą powierzchnię wewnętrzną, która niespodziewanie minimalizuje formowanie grubej włóknistej blizny przy jednoczesnym pobudzaniu wzrostu aksonów wewnątrz rurki, tak że ich liczba jest nieoczekiwanie duża w porównaniu z zastosowaniem znanych rurek kolagenowych bez miękkiej, włóknistej powierzchni wewnętrznej.
Dane eksperymentalne przedstawione przez jednego z wynalazców, dr Myrona Spectora wykazują, iż rurki według wynalazku do regeneracji nerwu, wykonane z kolagenowej błony (grupa V) powodują, w odróżnieniu od zwykłych rurek kolagenowych (grupa IV) rozrost nieoczekiwanie dużej liczby aksonów nerwu centralnego, co należy uznać za nieoczekiwany efekt wynalazku (patrz fig. 1 artykułu „Effects of Bridging a Gap in the Rat Spinał Cord with a Collagen Tube and Membrane” Harvard Medical School, Boston, MA).
Przedmiot wynalazku jest uwidoczniony w przykładach wykonania na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia schematyczny widok z boku błony do formowania rurki, według jednej z postaci wynalazku; fig. 2 - schematyczny widok końca wypełnionej rurki, według jednej z postaci wynalazku; fig. 3
- widok boczny, częściowo schematyczny, rurki według jednej z postaci wynalazku; fig. 4 - schematyczny widok końca rurki ze złączem zakładkowym, według innej postaci wynalazku.
PL 205 725 B1
Tak więc według wynalazku opracowano sposób i rurkę do odtwarzania połączeń i do regeneracji uszkodzonych nerwów, na przykład zewnętrznych nerwów kręgosłupa. Niniejszy wynalazek wykorzystuje rurki uformowane z wchłanialnego przez organizm materiału kolagenowego, posiadające zwartą, gładką od zewnątrz powierzchnię zaporową, przeciwdziałającą wrastaniu tkanki łącznej, zapobiegającą formowaniu się blizny tkanki i pozwalającą na gojenie się uszkodzonych nerwów bez pogarszania ich funkcji.
Zewnętrzna powierzchnia zaporowa rurki według wynalazku wstrzymuje przyklejanie się do niej komórek i działa jako zapora zabezpieczająca przed przechodzeniem przez nią komórek, takich jak komórki, które uczestniczą w formowaniu włókien tkanki łącznej.
Ścianka boczna rurki według wynalazku ma od wewnątrz miękką, włóknistą powierzchnię, przeciwległą do zewnętrznej gładkiej powierzchni zaporowej.
W zalecanych przykł adach wedł ug wynalazku, rurka wed ł ug wynalazku jest wykonana z mieszaniny kolagenu III typu i kolagenu I typu, na przykład ma zawartość kolagenu III typu od około 1% do 10% wagowo oraz zawartość kolagenu I typu od około 90% do 99% wagowo. W szczególnie zalecanych postaciach, rurka według wynalazku ma zawartość kolagenu III typu od około 1% do 5% wagowo oraz zawartość kolagenu I typu od około 95% do 99% wagowo.
W zalecanych postaciach wykonania, boczna ś cianka rurki według wynalazku jest wykonana z błoniastej tkanki kolagenowej bydlęcej, ś wińskiej lub pochodzącej z innego zwierzęcego źródła.
W zalecanych postaciach wykonania, bł oniasta tkanka jest tkank ą bł ony otrzewnej pobraną od młodego cielęcia.
Jednym z odpowiednich materiałów arkuszowych do formowania rurek według wynalazku jest błoniasty materiał Bio-Gide® pochodzący z Ed. Geistlich Sohne AG far Chemische Industrie, zawierający od około 1% do około 5% kolagenu III typu i od około 95% do około 99% kolagenu I typu. Materiał Bio-Gide® oraz jego formowanie są opisane w patencie USA nr 5,837,278.
Przedmiot wynalazku jest przedstawiony w przykładzie wykonania na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia arkusz materiału kolagenowego do formowania rurki według wynalazku, fig. 2 - rurkę według wynalazku w przekroju, fig. 3 - rurkę według wynalazku w widoku z boku, a fig. 4 - sposób formowania rurki według wynalazku.
Jak pokazano na fig. 1, arkusz materiału kolagenowego ma postać błony, która ma zwartą, gładką zewnętrzną powierzchnię zaporową 10 od zewnątrz oraz miękką powierzchnię włóknistą 12 po przeciwnej stronie gładkiej powierzchni zaporowej 10.
Nieoczekiwanie okazało się, że miękka włóknista powierzchnia 12 od strony wnętrza rurki do regeneracji nerwu według wynalazku ułatwia regenerację nerwu.
Regeneracja nerwu może być także dodatkowo ułatwiona przez wypełnienie rurki według wynalazku materiałem sprzyjającym wzrostowi nerwu. W zalecanej postaci, wypełniający materiał sprzyjający wzrostowi nerwu jest materiałem zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę. Najbardziej zalecany jest materiał wypełniający, który zawiera włókna kolagenowe posiadające wzdłużną orientację w stosunku do osi rurki. Fig. 2 przedstawia rurkę 14 według wynalazku w przekroju, zawierającą materiał wypełniający 16, w skład którego wchodzą włókna kolagenowe posiadające wzdłużną orientację w stosunku do rurki 14.
W szczególnie zalecanych postaciach wykonania rurki według wynalazku, materiał wypełniający 16 jest mieszanką kolagenu I typu i kolagenu IV typu, najlepiej w stosunku wagowym około 1: 1.
Materiał wypełniający 16 może również zawierać inne składniki do pobudzania wzrostu nerwu, takie jak środki pobudzające wzrost nerwu (na przykład laminina), oraz czynnik wzrostu nerwu (NGF), lub tym podobne, albo ich mieszaniny.
Według jednej z postaci, rurka regenerująca nerw według wynalazku jest wykonywana sposobem, w którym jest stosowany opisany wyżej błoniasty kolagenowy materiał Bio-Gide® w formie arkusza, i ten błoniasty arkusz jest kształtowany w rurkę. W tym sposobie, dwa przeciwległe brzegi 18 i 20 arkusza materiału są naprowadzone wzajemnie na siebie dla uformowania rurki 14, jak pokazano na fig. 3. Dwa przeciwległe brzegi 18 i 20 arkusza mogą być razem połączone ze sobą odpowiednią metodą formowania rurki, w której wykorzystuje się wchłanialne przez organizm szwy 22, pokazane na fig. 3, uformowane przez zastosowanie nici podlegających rozkładowi biologicznemu, na przykład nici z kolagenu, polilaktydu, poliglikolidu, lub tym podobne. Alternatywnie, do łączenia brzegów 18, 20 może być wykorzystywany klej dopuszczalny pod względem medycznym, taki jak klej fibrynowy, zawiesina skrobiowa lub zawiesina kolagenowa.
PL 205 725 B1
Jak pokazano na fig. 2, do wnętrza rurki 14 po jej uformowaniu może być wtryśnięty materiał wypełniający 16, sprzyjający wzrostowi nerwu.
Alternatywnie, sprzyjający wzrostowi nerwu, materiał wypełniający 16, może być uformowany w postaci tamponu i osuszony sublimacyjnie, a nastę pnie wycię ty w kształ t okrą g ł ego cylindra posiadającego średnicę zbliżoną do średnicy wnętrza rurki 14. Cylindryczny tampon można wtedy ścisnąć i wprowadzić do rurki 14 po jej uformowaniu.
W jeszcze innej postaci sposobu wykonania rurki 14 według wynalazku, na powierzchnię włóknistą 12 arkusza materiału kolagenowego, w postaci błony, takiego jak arkusz pokazany na fig. 1, może być nakładana zawiesina materiału wypełniającego 16, sprzyjającego wzrostowi nerwu, jeszcze przed formowaniem rurki. Następnie rurka może być formowana przez zwijanie błony z zawiesiną materiału wypełniającego powiązanego z powierzchnią włóknistą, tak żeby w jednym zabiegu uformować rurkę z zawartym wewnątrz niej materiałem wypełniającym 16. Dwa brzegi mogą być razem połączone szwami, klejem, albo innym odpowiednim spoiwem. Rolę spoiwa może też spełniać zawiesina materiału wypełniającego.
W przykł adzie pokazanym na fig. 4 dla uformowania rurki 14', dwa przeciwległ e brzegi 18' i 20' są połączone na zakładkę. Założone na siebie brzegi 18' i 20' mogą być razem połączone szwami lub klejem 24, jak pokazano na fig. 4. Alternatywnie, do łączenia przeciwległych bocznych krawędzi przy formowaniu rurki, jako spoiwo może służyć materiał sprzyjający wzrostowi nerwu.
Kiedy materiał wypełniający, sprzyjający wzrostowi nerwu, jest dostarczany jako zawiesina do wypełniania rurki, wówczas wypełniane rurki przy składowaniu ich przed użyciem do celów chirurgicznych są osuszane sublimacyjnie.
W rozwią zaniu alternatywnym, przy formowaniu rurek wedł ug wynalazku bezpoś rednio z bł oniastego materiału takiego jak Bio-Gide®, boczna ścianka rurek może być wykonywana z zawiesiny kolagenowej, tak aby uzyskać zwartą, gładką powierzchnię zaporową na zewnątrz i włóknistą, miękką przeciwległą powierzchnię od strony wnętrza. Następnie materiał może być osuszony sublimacyjnie i dalej uformowany zgodnie z wynalazkiem. Podczas stosowania, zakończenia nerwów są wkładane do otwartych końców 26 i 28 rurki 14 według wynalazku dla ułatwienia odtworzenia połączeń zakończeń nerwowych.
Wynalazek jest zilustrowany następującymi poniżej przykładami.
P r z y k ł a d 1.
Rurki uformowano z błon materiału Bio-Gide® tak, że miały wewnętrzną średnicę od około 0,5 mm do około 5 mm oraz długość od około 10 mm do około 100 mm. Brzegi rurek połączono szwem lub klejem.
P r z y k ł a d 2.
Ze skór prosiąt wytworzono żelowatą masę kolagenu I typu tak jak podano niżej. Skóry prosiąt posiekano na kawałki o maksymalnej wielkości 1 cm3, a następnie przy pomocy rozpuszczalnika organicznego, mającego zdolność rozpuszczania wody, usunięto wodę ze skór prosiąt, i pozwolono na odparowanie rozpuszczalnika. Osuszone kawałki skóry odtłuszczono płynnym rozpuszczalnikiem węglowodorowym. Następnie płynny rozpuszczalnik węglowodorowy usunięto, a suche kawałki skóry nasączono wodą. Nawodnione kawałki skóry poddano działaniu roztworu 1N wodorotlenku sodowego (roztworu o stężeniu 1-normalnym) i wypłukano. Wypłukane kawałki skóry poddano działaniu roztworu 0,04N kwasu solnego (roztworu o stężeniu 0,04-normalnym) i ponownie wypłukano. Obrobiony w ten sposób materiał zmielono w młynie koloidalnym dla uzyskania homogenizowanej płynnej zawiesiny zawierającej około 1,5% kolagenu. Zawiesinę tę umieszczono w strzykawce do wtryskiwania i wypełniono nią rurki, uformowane według przykładu 1. Wypełnione rurki zamrożono przez 24 godziny w temperaturze - 20°C i osuszono sublimacyjnie przez 72 godziny pod ciśnieniem mniejszym niż 1 mbar.
P r z y k ł a d 3.
Materiał wypełniający, zawierający 50% kolagenu I typu i 50% kolagenu IV typu, przygotowano jak podano niżej. Ze skór prosiąt przygotowano zawiesinę o zawartości 1,5% kolagenu I typu, tak jak opisano w przykładzie 2. Dostępny w handlu kolagen IV typu zmieszano z wodą i połączono z 1,5% zawiesiną. Zawiesiny kolagenu I typu i kolagenu IV typu zmieszano razem w tych samych ilościach. Pomieszane ze sobą zawiesiny umieszczono w strzykawce i tą mieszanką zawiesin wypełniono rurki, takie jak uformowane w przykładzie 1.
P r z y k ł a d 4.
Na włókniste strony błoniastych arkuszy Bio-Gide® nałożono zawiesinę według przykładu 2, albo mieszankę zawiesin według przykładu 3, i te arkusze zwinięto w jednej operacji aż do nałożenia na
PL 205 725 B1 siebie bocznych brzegów arkuszy i osłonięcia mieszaniny znajdującej się w środku, po czym połączono boczne brzegi arkuszy. Wypełnione w ten sposób rurki zamrożono przez 24 godziny w temperaturze -20°C i osuszono sublimacyjnie przez 72 godziny pod ciśnieniem mniejszym niż 1 mbar.
Wszystkie opisane wyżej rurki, po ich użyciu do regeneracji nerwu, umożliwiły rozrost znacząco dużej liczby aksonów regenerowanego nerwu

Claims (16)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Rurka do regeneracji nerwu, przeznaczona do przywracania połączenia końców nerwu, zawierająca boczną ściankę, zwiniętą z wchłanialnego kolagenowego materiału arkuszowego, znamienna tym, że ścianka boczna rurki (14) ma powierzchnię zewnętrzną w postaci zwartej, gładkiej powierzchni zaporowej (10) i powierzchnię wewnętrzną w postaci miękkiej powierzchni włóknistej (12), przy czym kolagenowy materiał arkuszowy, z którego jest wykonana rurka (14) jest typu membranowego i ma zwartą, gładką zewnętrzną powierzchnię zaporową i miękką i włóknistą wewnętrzną powierzchnię.
  2. 2. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że materiał bocznej ścianki zawiera mieszankę kolagenu III typu i kolagenu I typu.
  3. 3. Rurka według zastrz. 2, znamienna tym, że mieszanka zawiera od 1% do 10% kolagenu III typu i od 90% do 99% kolagenu I typu.
  4. 4. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że rurka (14) jest wypełniona materiałem wypełniającym (16), zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę.
  5. 5. Rurka według zastrz. 4, znamienna tym, że materiał wypełniający (16) zawiera włókna kolagenowe zorientowane wzdłużnie w stosunku do rurki (14).
  6. 6. Rurka według zastrz. 4, znamienna tym, że materiał wypełniający (16) jest mieszanką kolagenu I typu i kolagenu IV typu, przy czym kolagen I typu i kolagen IV typu w materiale wypełniającym (16) występują w stosunku wagowym 1:1.
  7. 7. Rurka według zastrz. 4, znamienna tym, że materiał wypełniający (16) zawiera ponadto środek pobudzający wzrastanie nerwu, stanowiący lamininę oraz czynnik wzmagający wzrost nerwu, albo ich mieszankę.
  8. 8. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że boczna ścianka jest zbudowana z kolagenowej tkanki błoniastej.
  9. 9. Rurka według zastrz. 8, znamienna tym, że kolagenowa tkanka błoniasta jest błoniastą tkanką otrzewnej.
  10. 10. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że długość ścianki bocznej wynosi od 10 do 100 mm.
  11. 11. Rurka według zastrz.1, znamienna tym, że ścianka boczna ma wewnętrzną średnicę o wielkoś ci od 0,5 do 5 mm.
  12. 12. Rurka według zastrz. 1, znamienna tym, że ścianka boczna zawiera pojedynczy arkusz kolagenowego materiału arkuszowego.
  13. 13. Sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu, polegający na zwijaniu w rurkę arkusza z materiału kolagenowego i łączeniu nakładających się brzegów arkusza, znamienny tym, że stosuje się arkusz typu membranowego, posiadający zewnętrzną, zwartą, gładką powierzchnię zaporową, i wewnętrzną, mię kką powierzchnię włóknistą, który formuje się w rurkę (14) posiadając ą powierzchnię zewnętrzną stanowiącą zwartą, gładką powierzchnię zaporową (10) i powierzchnię wewnętrzną stanowiącą miękką powierzchnię włóknistą (12).
  14. 14. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że stosuje się arkusz kolagenowy zawierający mieszankę kolagenu III typu i kolagenu I typu, w ilości od 1% do 10% kolagenu III typu i od 90 do 99% kolagenu I typu.
  15. 15. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że arkusz kolagenowy formuje się w rurkę (14) razem z zawartym w niej materiałem wypełniającym (16), zawierającym kolagen I typu, kolagen IV typu, albo ich mieszankę.
  16. 16. Sposób według zastrz. 13, znamienny tym, że rurkę (14) formuje się z pojedynczego arkusza kolagenowego.
PL348323A 2000-06-28 2001-06-27 Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu PL205725B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US21484800P 2000-06-28 2000-06-28

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL348323A1 PL348323A1 (en) 2002-01-02
PL205725B1 true PL205725B1 (pl) 2010-05-31

Family

ID=22800639

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL348323A PL205725B1 (pl) 2000-06-28 2001-06-27 Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu

Country Status (14)

Country Link
US (2) US20020018799A1 (pl)
JP (1) JP5155506B2 (pl)
CN (1) CN1264483C (pl)
CA (1) CA2351787C (pl)
CH (1) CH695207A5 (pl)
CZ (1) CZ301649B6 (pl)
DE (1) DE10129871A1 (pl)
ES (1) ES2191536B1 (pl)
FR (1) FR2810889B1 (pl)
GB (1) GB2366736B (pl)
IT (1) ITMI20011320A1 (pl)
NL (1) NL1018400C2 (pl)
PL (1) PL205725B1 (pl)
RU (1) RU2302262C2 (pl)

Families Citing this family (64)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6964685B2 (en) 1999-06-22 2005-11-15 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Biologic replacement for fibrin clot
TWI264301B (en) * 2002-03-11 2006-10-21 Ind Tech Res Inst Multi-channel bioresorbable nerve regeneration conduit and preparation method for the same
US7846183B2 (en) 2004-02-06 2010-12-07 Spinal Elements, Inc. Vertebral facet joint prosthesis and method of fixation
AU2005211797B2 (en) 2004-02-10 2010-10-28 Spinal Elements, Inc. System and method for protecting neurovascular structures
US9504583B2 (en) 2004-06-10 2016-11-29 Spinal Elements, Inc. Implant and method for facet immobilization
CN100372576C (zh) * 2004-12-29 2008-03-05 东华大学 可促进神经再生的复合胶原神经导管及其中空湿法纺丝成形方法
GB2441098B (en) 2005-05-16 2010-05-26 Purdue Research Foundation Engineered extracellular matrices
PL1937293T3 (pl) 2005-09-02 2014-03-31 Ed Geistlich Soehne Ag Fuer Chemische Ind Sposób naprawy rozdarć łąkotki
DE102005054941A1 (de) * 2005-11-17 2007-05-31 Gelita Ag Nervenleitschiene
CN1985777B (zh) * 2005-12-20 2011-08-03 广东冠昊生物科技股份有限公司 生物型人工脊髓
JP2009524483A (ja) 2006-01-25 2009-07-02 チルドレンズ メディカル センター コーポレーション 靭帯修復のための方法および手順
JP2007289634A (ja) * 2006-03-30 2007-11-08 Gc Corp 生体吸収性チューブ及びその製造方法
US20070269476A1 (en) 2006-05-16 2007-11-22 Voytik-Harbin Sherry L Engineered extracellular matrices control stem cell behavior
CA2652138C (en) * 2006-05-16 2016-01-19 Purdue Research Foundation Three dimensional purified collagen matrices
JP4569543B2 (ja) * 2006-08-18 2010-10-27 ニプロ株式会社 膨潤可能な棒状体を備えた組織再生器具の前駆体
JP2007050263A (ja) * 2006-08-23 2007-03-01 Nipro Corp 生体組織または器官再生用器具
WO2008036393A1 (en) 2006-09-21 2008-03-27 Purdue Research Foundation Collagen preparation and method of isolation
ES2936715T3 (es) 2006-09-28 2023-03-21 Childrens Medical Ct Corp Métodos y productos de colágeno para reparación de tejidos
US7858142B2 (en) * 2006-10-17 2010-12-28 Henrich Cheng Laminin-modified conduit for nerve regeneration and methods of manufacturing the conduit and regenerating nerves using the conduit
CN100462105C (zh) * 2006-10-19 2009-02-18 中国人民解放军第四军医大学 一种重组合神经替代物的制备方法
US8652137B2 (en) 2007-02-22 2014-02-18 Spinal Elements, Inc. Vertebral facet joint drill and method of use
US8992533B2 (en) 2007-02-22 2015-03-31 Spinal Elements, Inc. Vertebral facet joint drill and method of use
CA2708615C (en) 2007-12-10 2019-12-31 Purdue Research Foundation Collagen-based matrices with stem cells
US9386990B2 (en) * 2008-03-19 2016-07-12 University Of Florida Research Foundation, Inc. Nerve repair with a hydrogel and adhesive
EP2404622B1 (en) * 2009-02-02 2015-12-02 Toyobo Co., Ltd. Nerve regeneration-inducing tube
RU2401648C1 (ru) * 2009-03-05 2010-10-20 Игорь Иванович Марков Медицинский прибор для устранения диастаза и восстановления целостности поврежденного периферического нерва и способ его изготовления
FR2944706B1 (fr) 2009-04-28 2012-08-24 Biom Up Nouveaux materiaux en collagene et procedes d'obtention.
US20110129515A1 (en) * 2009-05-29 2011-06-02 Integra Lifesciences Corporation Devices and Methods for Nerve Regeneration
US8740949B2 (en) 2011-02-24 2014-06-03 Spinal Elements, Inc. Methods and apparatus for stabilizing bone
US9271765B2 (en) 2011-02-24 2016-03-01 Spinal Elements, Inc. Vertebral facet joint fusion implant and method for fusion
USD724733S1 (en) 2011-02-24 2015-03-17 Spinal Elements, Inc. Interbody bone implant
USD739935S1 (en) 2011-10-26 2015-09-29 Spinal Elements, Inc. Interbody bone implant
WO2013116744A1 (en) 2012-02-01 2013-08-08 Children's Medical Center Corporation Biomaterial for articular cartilage maintenance and treatment of arthritis
US12599700B2 (en) 2013-02-01 2026-04-14 The Children's Medical Center Corporation System and methods for connective tissue repair using scaffolds
EP3798226A1 (en) 2013-02-01 2021-03-31 Children's Medical Center Corporation Collagen scaffolds
US9820784B2 (en) 2013-03-14 2017-11-21 Spinal Elements, Inc. Apparatus for spinal fixation and methods of use
USD765853S1 (en) 2013-03-14 2016-09-06 Spinal Elements, Inc. Flexible elongate member with a portion configured to receive a bone anchor
US9421044B2 (en) 2013-03-14 2016-08-23 Spinal Elements, Inc. Apparatus for bone stabilization and distraction and methods of use
US9839450B2 (en) 2013-09-27 2017-12-12 Spinal Elements, Inc. Device and method for reinforcement of a facet
US9456855B2 (en) 2013-09-27 2016-10-04 Spinal Elements, Inc. Method of placing an implant between bone portions
US9878071B2 (en) 2013-10-16 2018-01-30 Purdue Research Foundation Collagen compositions and methods of use
EP3185922B1 (en) 2014-08-27 2025-04-02 Purdue Research Foundation Collagen-based therapeutic delivery systems
WO2016044432A1 (en) 2014-09-17 2016-03-24 Spinal Elements, Inc. Flexible fastening band connector
WO2016122868A1 (en) 2015-01-27 2016-08-04 Spinal Elements, Inc. Facet joint implant
US11919941B2 (en) 2015-04-21 2024-03-05 Purdue Research Foundation Cell-collagen-silica composites and methods of making and using the same
US9855317B2 (en) 2015-04-27 2018-01-02 Reflex Medical, Inc. Systems and methods for sympathetic cardiopulmonary neuromodulation
CN106913393B (zh) * 2015-12-28 2020-10-30 烟台蓝创生物技术有限公司 一种人工神经支架及其制备方法与应用
WO2017139487A1 (en) 2016-02-09 2017-08-17 Northwind Medical, Inc. Methods, agents, and devices for local neuromodulation of autonomic nerves
EP3478287A4 (en) 2016-06-29 2020-04-08 Tulavi Therapeutics, Inc. TREATMENT OF SEPTICEMIA AND ASSOCIATED INFLAMMATORY CONDITIONS BY LOCAL NEUROMODULATION OF THE AUTONOMOUS NERVOUS SYSTEM
US12377193B2 (en) 2016-07-06 2025-08-05 The Children's Medical Center Corporation Indirect method of articular tissue repair
ES2966669T3 (es) 2016-12-02 2024-04-23 Integra Lifesciences Corp Dispositivos y métodos para regeneración nerviosa
CA3052266A1 (en) 2017-01-31 2018-08-09 Geniphys, Llc Methods and compositions for matrix preparation
US11739291B2 (en) 2017-04-25 2023-08-29 Purdue Research Foundation 3-dimensional (3D) tissue-engineered muscle for tissue restoration
CN109010915B (zh) * 2017-06-09 2021-06-15 中国科学院苏州纳米技术与纳米仿生研究所 有序胶原支架及其在制备修复脊髓损伤的产品中的应用
JPWO2019054407A1 (ja) * 2017-09-15 2020-10-29 東洋紡株式会社 神経保護材
AU2019299519B2 (en) 2018-07-02 2025-03-06 Incept Llc Methods and devices for in situ formed nerve cap
US20210315587A1 (en) 2018-07-02 2021-10-14 Tulavi Therapeutics, Inc. Methods and devices for in situ formed nerve cap with rapid release
US11457959B2 (en) 2019-05-22 2022-10-04 Spinal Elements, Inc. Bone tie and bone tie inserter
AU2020278453A1 (en) 2019-05-22 2022-01-20 Spinal Elements, Inc. Bone tie and bone tie inserter
RU193833U1 (ru) * 2019-06-21 2019-11-18 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования Читинская государственная медицинская академия Министерства здравоохранения российской федерации Кондуит для регенерации поврежденного периферического нерва
EP4096635A4 (en) 2020-01-27 2024-02-21 GeniPhys, Inc. BIOLOGICAL FILLER FOR TISSUE RESTORATION AND REGENERATION
US11304733B2 (en) 2020-02-14 2022-04-19 Spinal Elements, Inc. Bone tie methods
EP3892311B1 (en) 2020-04-06 2023-09-20 Integra LifeSciences Corporation Devices and methods for nerve regeneration
WO2023108007A2 (en) 2021-12-10 2023-06-15 Spinal Elements, Inc. Bone tie and portal

Family Cites Families (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NL269404A (pl) * 1960-09-20 1900-01-01
US4013078A (en) * 1974-11-25 1977-03-22 Feild James Rodney Intervertebral protector means
FR2559666B1 (fr) * 1984-02-21 1986-08-08 Tech Cuir Centre Procede de fabrication de tubes de collagene, notamment de tubes de faibles diametres, et application des tubes obtenus dans le domaine des protheses vasculaires et des sutures nerveuses
US4778467A (en) * 1984-04-25 1988-10-18 The University Of Utah Prostheses and methods for promoting nerve regeneration and for inhibiting the formation of neuromas
US4877029A (en) * 1987-03-30 1989-10-31 Brown University Research Foundation Semipermeable nerve guidance channels
US4870966A (en) * 1988-02-01 1989-10-03 American Cyanamid Company Bioabsorbable surgical device for treating nerve defects
US5573771A (en) * 1988-08-19 1996-11-12 Osteomedical Limited Medicinal bone mineral products
US4863668A (en) * 1988-09-22 1989-09-05 University Of Utah Method of forming fibrin-collagen nerve and body tissue repair material
AU663150B2 (en) * 1991-11-26 1995-09-28 Research Development Foundation Fetal membrane tubes for nerve and vessel grafts
US5429938A (en) * 1992-03-02 1995-07-04 University Of Michigan Methods and compositions for isolation and growth of kidney tubule stem cells, in vitro kidney tubulogenesis and ex vivo construction of renal tubules
FI922517L (fi) * 1992-05-29 1993-11-30 Paeivi Liesi Nervrepareringsmedel och dess anvaendning
US5611354A (en) * 1992-11-12 1997-03-18 Alleyne; Neville Cardiac protection device
EP1716864A1 (en) * 1993-08-26 2006-11-02 Genetics Institute, LLC Neural regeneration using home bone morphogenetic proteins
GB9400163D0 (en) * 1994-01-06 1994-03-02 Geistlich Soehne Ag Membrane
ATE372747T1 (de) * 1994-02-18 2007-09-15 Organogenesis Inc Verfahren zur herstellung einer bio-umbaubare transplantatprothese aus kollagen
TW369414B (en) * 1994-09-30 1999-09-11 Yamanouchi Pharma Co Ltd Bone formation transplant
US6057137A (en) * 1994-10-06 2000-05-02 Regents Of The University Of Minnesota Tissue-equivalent rods containing aligned collagen fibrils and schwann cells
TW501934B (en) * 1996-11-20 2002-09-11 Tapic Int Co Ltd Collagen material and process for making the same
TW528600B (en) * 1996-11-20 2003-04-21 Yasuhiko Shimizu Artificial neural canal
ATE249182T1 (de) * 1996-12-10 2003-09-15 Purdue Research Foundation Rohrförmige transplantatkonstruktionen aus submucosalem gewebe
CN1304296A (zh) * 1998-06-10 2001-07-18 清水庆彦 人造神经管
KR20020029069A (ko) * 1999-07-07 2002-04-17 시미즈, 야스히꼬 인공 신경관
US6221109B1 (en) * 1999-09-15 2001-04-24 Ed. Geistlich Söhne AG fur Chemische Industrie Method of protecting spinal area

Also Published As

Publication number Publication date
ES2191536B1 (es) 2005-02-01
NL1018400A1 (nl) 2002-01-02
GB2366736A (en) 2002-03-20
ITMI20011320A1 (it) 2002-12-22
RU2302262C2 (ru) 2007-07-10
GB0115847D0 (en) 2001-08-22
CA2351787C (en) 2012-04-03
US20040170664A1 (en) 2004-09-02
NL1018400C2 (nl) 2003-02-04
DE10129871A1 (de) 2002-10-24
CH695207A5 (de) 2006-01-31
CN1264483C (zh) 2006-07-19
ES2191536A1 (es) 2003-09-01
PL348323A1 (en) 2002-01-02
CZ20012263A3 (cs) 2002-02-13
CA2351787A1 (en) 2001-12-28
FR2810889B1 (fr) 2004-10-29
US20020018799A1 (en) 2002-02-14
JP5155506B2 (ja) 2013-03-06
JP2002336345A (ja) 2002-11-26
GB2366736B (en) 2004-05-12
CZ301649B6 (cs) 2010-05-12
FR2810889A1 (fr) 2002-01-04
CN1329877A (zh) 2002-01-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL205725B1 (pl) Rurka do regeneracji nerwu i sposób wytwarzania rurki do regeneracji nerwu
Chvapil Collagen sponge: theory and practice of medical applications
DE69728054T2 (de) Bioresorbierbare dichtungsmassen für poröse künstliche gefässen
AU670136B2 (en) Devices for preventing tissue adhesion
ES2195731B1 (es) Producto mineral oseo en particulas para la reparacion de defectos de cartilagos y defectos oseos combinados.
US5665114A (en) Tubular expanded polytetrafluoroethylene implantable prostheses
EP0906764B1 (en) Biopolymer sponge tubes
US9480774B2 (en) Implant for tissue repair including chitosan
KR101766679B1 (ko) 유착 방지를 위한 히드로겔 막
EP3402443B1 (en) Devices and compositions and methods of use thereof
WO1998022155A1 (en) Artificial neural canal
EP2863838B1 (en) Compression and kink resistant implants
JPH01212559A (ja) 生物学的インプラント物質
US20060095139A1 (en) Composite prosthetic implant
Annibali Prosthetic materials and adhesion formation
EP2566528B1 (en) Medical implant
WO1996040302A1 (en) Bioabsorbable space filling soft tissue prosthesis
JPWO1998022155A1 (ja) 人工神経管
JPWO2001003609A1 (ja) 人工神経管