PL205926B1 - Sposób namnażania wirusa - Google Patents
Sposób namnażania wirusaInfo
- Publication number
- PL205926B1 PL205926B1 PL366897A PL36689702A PL205926B1 PL 205926 B1 PL205926 B1 PL 205926B1 PL 366897 A PL366897 A PL 366897A PL 36689702 A PL36689702 A PL 36689702A PL 205926 B1 PL205926 B1 PL 205926B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- virus
- temperature
- mva
- pox
- culture
- Prior art date
Links
- 241000700605 Viruses Species 0.000 title claims abstract description 137
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 79
- 230000008569 process Effects 0.000 claims abstract description 38
- 241000700618 Vaccinia virus Species 0.000 claims description 26
- 241000700628 Chordopoxvirinae Species 0.000 claims description 20
- 241000251539 Vertebrata <Metazoa> Species 0.000 claims description 20
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 claims description 17
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 14
- 230000002238 attenuated effect Effects 0.000 claims description 13
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 claims description 10
- 241000700629 Orthopoxvirus Species 0.000 claims description 9
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 claims description 8
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims description 8
- 241000700663 Avipoxvirus Species 0.000 claims description 7
- 238000001415 gene therapy Methods 0.000 claims description 7
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 claims description 7
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 claims description 7
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 claims description 7
- 241001183012 Modified Vaccinia Ankara virus Species 0.000 claims description 5
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 5
- 239000013598 vector Substances 0.000 claims description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 4
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 claims description 4
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 claims description 4
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 abstract 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 63
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 36
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 21
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 20
- 241000700647 Variola virus Species 0.000 description 12
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 9
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 9
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 8
- 235000013330 chicken meat Nutrition 0.000 description 8
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 7
- 230000036760 body temperature Effects 0.000 description 6
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 6
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 6
- RVGRUAULSDPKGF-UHFFFAOYSA-N Poloxamer Chemical compound C1CO1.CC1CO1 RVGRUAULSDPKGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 5
- 229920001993 poloxamer 188 Polymers 0.000 description 5
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 5
- 241000700572 Entomopoxvirinae Species 0.000 description 4
- 241000282412 Homo Species 0.000 description 4
- HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N cholesterol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N 0.000 description 4
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 4
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 4
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 3
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 3
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 3
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 3
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 3
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 3
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 3
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 3
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 3
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 3
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 3
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 3
- 230000001850 reproductive effect Effects 0.000 description 3
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 3
- 230000029812 viral genome replication Effects 0.000 description 3
- 241001135961 Amsacta moorei entomopoxvirus Species 0.000 description 2
- ZAKOWWREFLAJOT-CEFNRUSXSA-N D-alpha-tocopherylacetate Chemical compound CC(=O)OC1=C(C)C(C)=C2O[C@@](CCC[C@H](C)CCC[C@H](C)CCCC(C)C)(C)CCC2=C1C ZAKOWWREFLAJOT-CEFNRUSXSA-N 0.000 description 2
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 description 2
- 229930182816 L-glutamine Natural products 0.000 description 2
- 241000700625 Poxviridae Species 0.000 description 2
- 239000006146 Roswell Park Memorial Institute medium Substances 0.000 description 2
- 206010046865 Vaccinia virus infection Diseases 0.000 description 2
- 229940121375 antifungal agent Drugs 0.000 description 2
- 239000003429 antifungal agent Substances 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 235000012000 cholesterol Nutrition 0.000 description 2
- 239000003026 cod liver oil Substances 0.000 description 2
- 235000012716 cod liver oil Nutrition 0.000 description 2
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 2
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 2
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 2
- 230000036039 immunity Effects 0.000 description 2
- 238000002649 immunization Methods 0.000 description 2
- 230000003053 immunization Effects 0.000 description 2
- 229940041323 measles vaccine Drugs 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 2
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 2
- 229940083538 smallpox vaccine Drugs 0.000 description 2
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 description 2
- 229940042585 tocopherol acetate Drugs 0.000 description 2
- 241001430294 unidentified retrovirus Species 0.000 description 2
- 208000007089 vaccinia Diseases 0.000 description 2
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 1
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 1
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- 241001137864 Camelpox virus Species 0.000 description 1
- 241000700664 Capripoxvirus Species 0.000 description 1
- 108090000994 Catalytic RNA Proteins 0.000 description 1
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 1
- 206010008342 Cervix carcinoma Diseases 0.000 description 1
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 1
- 241000450599 DNA viruses Species 0.000 description 1
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 1
- 241000700662 Fowlpox virus Species 0.000 description 1
- 206010069540 Generalised vaccinia Diseases 0.000 description 1
- 241001112691 Goatpox virus Species 0.000 description 1
- 206010061598 Immunodeficiency Diseases 0.000 description 1
- 241000700559 Molluscipoxvirus Species 0.000 description 1
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 1
- 241000700639 Parapoxvirus Species 0.000 description 1
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 1
- 241000700665 Sheeppox virus Species 0.000 description 1
- 208000001203 Smallpox Diseases 0.000 description 1
- 208000006105 Uterine Cervical Neoplasms Diseases 0.000 description 1
- 241000870995 Variola Species 0.000 description 1
- 208000036142 Viral infection Diseases 0.000 description 1
- 241000700574 Yatapoxvirus Species 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 210000004102 animal cell Anatomy 0.000 description 1
- 244000037640 animal pathogen Species 0.000 description 1
- 230000000692 anti-sense effect Effects 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 1
- 201000010881 cervical cancer Diseases 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 201000003740 cowpox Diseases 0.000 description 1
- 210000000805 cytoplasm Anatomy 0.000 description 1
- 230000002950 deficient Effects 0.000 description 1
- 238000012217 deletion Methods 0.000 description 1
- 230000037430 deletion Effects 0.000 description 1
- 210000002308 embryonic cell Anatomy 0.000 description 1
- 206010014599 encephalitis Diseases 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 239000013604 expression vector Substances 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 244000052637 human pathogen Species 0.000 description 1
- 230000028993 immune response Effects 0.000 description 1
- 238000003364 immunohistochemistry Methods 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 1
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 1
- 210000003292 kidney cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000004962 mammalian cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000004779 membrane envelope Anatomy 0.000 description 1
- 150000007523 nucleic acids Chemical group 0.000 description 1
- 230000008520 organization Effects 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 230000000069 prophylactic effect Effects 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 230000010076 replication Effects 0.000 description 1
- 238000007790 scraping Methods 0.000 description 1
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 1
- 241000894007 species Species 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 210000003501 vero cell Anatomy 0.000 description 1
- 108700026220 vif Genes Proteins 0.000 description 1
- 230000009385 viral infection Effects 0.000 description 1
- 239000005723 virus inoculator Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N7/00—Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
- A61K39/275—Poxviridae, e.g. avipoxvirus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
- A61K39/275—Poxviridae, e.g. avipoxvirus
- A61K39/285—Vaccinia virus or variola virus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P39/00—General protective or antinoxious agents
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
- C07K14/01—DNA viruses
- C07K14/065—Poxviridae, e.g. avipoxvirus
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/005—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
- C07K14/01—DNA viruses
- C07K14/065—Poxviridae, e.g. avipoxvirus
- C07K14/07—Vaccinia virus; Variola virus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2710/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
- C12N2710/00011—Details
- C12N2710/24011—Poxviridae
- C12N2710/24051—Methods of production or purification of viral material
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Virology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Mycology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Oncology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
Description
Opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy procesu otrzymywania wirusa ospy, w szczególności wirusa ospy kręgowców - Chordopoxvirinae, przy czym wspomniany wirus ospy hodowany jest w temperaturze niższej niż 37°C. Proces prowadzi do wzrostu poziomu namnażania wirusa w obniżonej temperaturze.
Stan techniki
Grupa wirusów należących do Poxviridae obejmuje liczną rodzinę złożonych wirusów DNA, replikujących w cytoplazmie komórek kręgowców i bezkręgowców. Rodzinę Poxviridae można podzielić na dwie podrodziny - Chordopoxvirinae (wirusy ospy kręgowców) i - Entomopoxvirinae (owadzie wirusy ospy) (Fields Virology/wyd.: Fields, B.N., Knipe, D.M., Howley, PM; wyd.3/ISBN 0-7817-0253-4/ patrz w szczególności rozdział 83).
Podrodzina Chordopoxvirinae obejmuje liczne zwierzęce wirusy ospy (podzielone na odmienne rodzaje), takie jak wielbłądzie wirusy ospy, wirus ospy owiec, wirus ospy kóz lub wirusy ospy ptaków, w szczególno ś ci wirus ospy drobiu, jak również wirusy ospy dotyczą ce ludzi, tak jak wirus ospy (variola) i wirus krowianki.
Wirusy ospy, w szczególności Chordopoxvirinae, są istotnymi patogenami ludzi i zwierząt. Historia szczepień przeciwko infekcjom wirusami ospy jest długa. Niemal dwa wieki temu, rozpoczęto profilaktycznie szczepienia ludzi ospą krowią mające na celu nadanie odporności przeciwko tej chorobie. W późniejszym okresie do immunizacji wykorzystywano wirusa krowianki. Jednakże, szczepienia tym wirusem powodowały czasami poważne komplikacje, takie jak poszczepienne zapalenie mózgu, uogólnioną krowiankę lub zakażenie kontaktowe.
W póź niejszych latach, Anton Mayr wprowadzi ł nową szczepionkę niepowodują c ą takich komplikacji. Szczepionka na ospę zawierała wirus ospy - zmodyfikowany wirus krowianki Ankara (MVA) i została zastosowana do szczepień przeciwko ospie w około 150000 przypadkach szczepień bez wywołania jakichkolwiek powikłań związanych ze szczepieniem. Nawet dzieci wykazujące niedobór odporności nie przejawiały poważnych efektów ubocznych. MVA uzyskano w wyniku mutacji i selekcji oryginalnego wirusa Ankara po 575 pasażach w hodowli fibroblastów embrionów kurcząt. Bezpieczeństwo tak otrzymanego MVA odzwierciedla jego charakterystyka biologiczna, chemiczna i fizyczna. MVA posiada zredukowaną masę cząsteczkową sześć delecji w genomie i jest silnie atenuowany wobec komórek ssaczych, tj., syntetyzuje DNA i białka, ale nie są produkowane z nich żadne cząsteczki wirusa.
Szczepienia przeciwko ospie zostały zakończone sukcesem. W 1979, Światowa Organizacja Zdrowia ogłosiła wyeliminowanie ospy. Zgodnie z tą deklaracją zaniechano masowych szczepień dzieci a szczepieniami objęto jedynie pracowników laboratoriów i sił zbrojnych w określonych krajach.
Wraz z wyeliminowaniem ospy, usunięto główną przyczynę infekcji wirusami ospy u ludzi. Jednakże, pewne, inne niż ludzkie, wirusy ospy obniżyły swoją specyficzność wobec gospodarza, tj., mogą wywoływać infekcję nie tylko u typowego dla nich gospodarza (np., u krowy dla wirusa ospy krowiej), ale również u innych zwierząt (np., u szczurów i kotów). Tą drogą mogą zostać zainfekowani również ludzie. Ponieważ pewna część populacji nie posiada już odporności przeciwko ospie, mogą okazać się niebezpiecznymi dla nich infekcje wirusami ospy różnych gatunków zwierząt. Zwierzęta domowe są głównym źródłem infekcji u ludzi. Zgodnie z powyższym, rośnie znaczenie szczepienia zwierząt domowych przeciwko wirusom ospy. Ponadto, wirusy ospy są istotnymi wektorami ekspresji obcych genów, np., do zastosowania, jako szczepionka lub do wykorzystania w terapii genowej, tj., do przeniesienia sekwencji kwasu nukleinowego do docelowej komórki, w której ulega ekspresji. Z przytoczonych tu informacji wynika jasno potrzeba wynalezienia wydajnego i efektywnego pod względem kosztów sposobu produkcji wirusów ospy.
Wirusy ospy mogą być amplifikowane w różnych typach komórek. Na przykład, Chordopoxvirinae, szczególnie MVA ulegają powieleniu w kulturach komórkowych pierwotnych lub drugorzędowych płodowych fibroblastów kurcząt (CEF). Komórki uzyskiwane są z jaja zawierającego embrion kurczęcia, inkubowanego przez 10 do 12 dni. Następnie, komórki embrionalne są oddzielane i oczyszczane. Tego typu komórki pierwotne mogą zostać użyte bezpośrednio lub, po jeszcze jednym pasażu komórkowym, jako drugorzędowe komórki. Następnie, pierwotne lub drugorzędowe komórki CEF infekowane są MV A. W celu uzyskania amplifikacji MV A, zainfekowane komórki inkubowane są przez 2-3 dni w 37°C (patrz, np., Meyer, H. i wsp., 1991; J. of General Virology 72, 1031-1038; Sutter i wsp. 1994, Vaccine, Vol.l2, nr 11, 1032-1040). Mimo że inne wirusy kręgowców - Chordopoxvirinae amplifikowane są w różnych typach komórek, we wspomnianych przypadkach wybrano taką samą temperaturę 37°C.
PL 205 926 B1
Na przykład, wirus krowianki możliwy do uzyskania z ATCC (Nr VR1354), hodowany w komórkach HeLa S3 (ludzkie komórki raka szyjki macicy) jest również inkubowany przez 3 dni w 37°C (Current protocols in molecular biology 1998, rozdz. 16, podrozdz. 16.16, John Wiley & Sons, Inc.). Ponadto, wirusy MVA przystosowane do wzrostu w komórkach Vero (komórki nerki małpy) również ulegają powieleniu w 37°C (PCT/EPO1/02703). Zgodnie z powyższym, niezależnie od komórek zastosowanych do amplifikacji i od postaci gatunku czy szczepu wirusa Chordopoxvirinae, amplifikacja wirusów zachodzi w 37°C. Tak wybrana temperatura odpowiada całkowicie ogólnej wiedzy specjalistów w dziedzinie: wirusy ospy, obecnie niemal wyłącznie namnaż ane w laboratoriach, uzyskiwane s ą ze zwierząt ciepłokrwistych o temperaturze ciała w przybliżeniu 37°C. Ze względu na takie przystosowanie Chordopoxvirinae do wzrostu w organizmie tych zwierząt, wirusy te uległy adaptacji do wzrastania w 37°C, tj., powinny amplifikować wydajniej w 37°C.
Z podobnych powodów wirusy owadzie - Entomopoxvirinae hodowane są w temperaturach niż szych niż 37°C: temperatura ciała owadów jest znacznie niższa niż 37°C i zależy od szerokiego zakresu temperatury środowiska. Zatem, inaczej niż w przypadku Chordopoxvirinae, Entomopoxvirinae przystosowane są do wzrostu w niższych temperaturach. W US 5,721,352 i US 5,174,993 ujawniono temperaturę optymalną dla wzrostu w warunkach laboratoryjnych Entomopoxvirinae gatunku Amsacta moorei Entomopoxvirus (AmEPV), wynosiła ona 28°C. Jednakże, wspomniane zgłoszenia patentowe nie ujawniają zasad hodowli Chordopoxvirinae w takich warunkach temperaturowych.
Ponadto, produkcja szczepionek przeciwko innym infekcjom wirusowym przebiega ogólnie w 37°C. Jedynie kilka szczepionek na odrę otrzymywanych jest w niż szej temperaturze. W tym przypadku, szczepionka na odrę, która początkowo była produkowana w 37°C, powodowała często poważne efekty uboczne, została, zatem, poddana atenuacji poprzez ciągłe pasażowanie wirusa w 32°C. Atenuację, tj., znaczne obniżenie zdolności wywoływania choroby przez wirusa, osiągnięto po 85 pasażach w 32°C (Plotkin, Orenstain:Vaccines, wyd. 3, 230-232). Podsumowując, oczekuje się, że wirusy zwierząt ciepłokrwistych, a szczególnie wirusy krowianki, będą ulegać amplifikacji wydajniej w 37°C, ponieważ pochodzą one ze zwierząt o wspomnianej temperaturze ciała i przystosowanie do niższej temperatury osiągane jest jedynie po szeregu pasaży we wspomnianej niższej temperaturze. Ponadto, przystosowanie do niższej temperatury związane jest z atenuacją a zatem często z obniżeniem zdolności do reprodukcji wirusa.
W US 5,616,487 ujawniono proces otrzymywania stabilizowanego wirusa, w szczególnoś ci stabilizowanego retro wirusa, poprzez hodowlę komórek produkujących wirusa wraz z czynnikiem stabilizującym, w temperaturze poniżej 37°C. Czynnikami stabilizującymi są lipidy lub surfaktanty. W patencie ujawniono specyficznie zastosowanie, jako czynnika stabilizującego Pluronic F-68 i koncentratu lipidowego. Nadmieniono, że koncentrat lipidowy zawierał cholesterol, olej wątroby dorsza, Pluronic F-68, octan d-alfa-tokoferolu i Tween 80. W alternatywnym rozwiązaniu, US 5,616,487 ujawniono proces hodowli komórek produkujących specyficzne retrowirusy w temperaturze niższej niż 37°C, przy czym otrzymywany wirus był stabilizowany przy użyciu zdefiniowanego wyżej stabilizatora. Istota wynalazku.
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania wirusa ospy kręgowców - Chordopoxvirinae, charakteryzujący się tym, że wirus namnażany jest w podłożu wzrostowym w hodowli o temperaturze około 35°C lub poniżej 35°C, przy czym wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus wybrany jest zmodyfikowanym wirusem krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanym w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodnej. Korzystnie, wirus ospy namnażany jest w komórkach fibroblastów embrionów kurcząt. Równie korzystnie, wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze od około 26°C do około 35°C. Równie korzystnie, wirus namnażany jest w fibroblastach embrionów kurczą t w temperaturze hodowli wynoszą cej od około 26°C do okoł o 32°C. Korzystnie, wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus wybrany jest z grupy obejmującej Avipoxvirus i Orthopoxvirus, przy czym korzystnie Orthopoxvirus jest wirusem krowianki, szczególnie korzystnie wirus krowianki wybrany jest ze szczepu Elstree i zmodyfikowanego wirusa krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanego w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodnej. Równie korzystnie, wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze od około 28°C do około 35°C. Równie korzystnie, wirus ospy kręgowców- Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze około 30°C. Równie korzystnie, że namnażanie wirusa przebiega przez okres, co najmniej 24 godzin, przy czym szczególnie korzystnie namnażanie wirusa przebiega, przez co najmniej 2 do 3 dni. Równie korzystnie, wirus ospy kręgowców -Chordopoxvirus jest wirusem użytecznym, jako szczepionka lub terapeutyczny wektor genowy. Równie korzystnie, przebiega
PL 205 926 B1 w nieruchomych kolbach. Równie korzystnie, wirus ospy jest niewrażliwym na temperaturę mutantem wirusa. Równie korzystnie, wirus ospy jest nieatenuowanym temperaturowo wirusem. Równie korzystnie, do podłoża hodowlanego nie dodaje się żadnych dodatkowych lipidów ani surfaktantów.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie wirusa otrzymywanego sposobem według wynalazku określonym powyżej do wytwarzania kompozycji. Korzystnie, wytwarzana kompozycja jest szczepionką. Równie korzystnie, wytwarzana kompozycja jest szczepionką przeznaczoną do stosowania w terapii genowej.
Celem niniejszego wynalazku było zapewnienie sposobu otrzymywania wirusów ospy, w szczególności wirusa podrodziny Chordopoxvirus, przy założeniu, że hodowla komórek produkujących wirus przebiega w temperaturze poniżej 37°C.
Zaskakującym okazało się, że sposób według wynalazku prowadzi do znacznie wydajniejszej amplifikacji wirusa w niższej temperaturze (poniżej 37°C), co z kolei pozwala na osiągnięcie wyższej wydajności wirusa w stosunku do liczby zainfekowanych komórek. Zgodnie z powyższym, mniejsza liczba komórek wymagana jest do otrzymania tej samej ilości wirusa. Jest to szczególnie korzystne w przypadku zmodyfikowanego wirusa krowianki Ankara (MVA), ponieważ produkcja komórek CEF wymaganych do amplifikacji MVA jest pracochłonna i kosztowna. Ponadto, obniżenie temperatury inkubacji pozwala na oszczędność energii podczas procesu powielania (amplifikacji) wirusa ospy, a zatem wpływa na obniżenie kosztów produkcji wirusów.
Termin „wirus ospy”, stosowany w niniejszym opisie dotyczy korzystnie wirusów ospy podrodziny Chordopoxvirinae (wirusy ospy kręgowców) (Fields Virology/wyd.: Fields, B.N., Knipe, D.M., Howley, P.M.; wyd.3/ISBN 0-7817-0253-4/ w szczególności rozdział 83). Określenie „Chordopoxvirus”, „Chordopoxvirinae” i „wirusy ospy kręgowców” stosowane są zamiennie w niniejszym opisie. Korzystnymi wirusami Chordopoxvirinae są wirusy ospy rodzaju Orthopoxvirus, Parapoxvirus, Avipoxvirus, Capripoxvirus, Lepripoxvirus, Suipopoxvirus, Molluscipoxvirus i Yatapoxvirus. Bardziej korzystnymi są wirusy ospy rodzaju Orthopoxvirus i Avipoxvirus.
W korzystnej realizacji, wirus ospy, otrzymywany ujawnionym sposobem, jest wirusem ospy, w szczególności podrodziny Chordopoxvirinae, użytecznym, jako szczepionka lub znajdującym zastosowanie, jako wektor w terapii genowej, wprowadzający odpowiednie geny do komórki gospodarza. Specjalistom w dziedzinie znane są odpowiednie szczepy wirusowe. Tego typu odpowiednie szczepy mogą być uzyskane z np., Amerykańskiej Kolekcji Kultur Komórkowych - American Type Culture Collection (ATCC) lub Europejskiej Kolekcji Zwierzęcych Kultur Komórkowych - European Collection of Animal Cell Cultures(ECACC).
Jak już wspomniano wyżej, szczególnie korzystnymi wirusami ospy, otrzymywanymi ujawnionym sposobem są wirusy Avipoxvirus i Orthopoxvirus. Przykładami wirusów Orthopoxvirus są wirusy krowianki, takie jak szczepy Elstree wirusa krowianki, Western Reserve, Wyeth, NYVAC, NYCBOH, Paris, Copenhagen, korzystniej różne szczepy MVA i najkorzystniej MVA-BN, zdeponowany w ECACC pod nr V00083008 lub jego pochodne. MVA-BN lub jego pochodne zostały szczegółowo opisane w zgłoszeniu PCT PCT/EPO1/13628, zatytułowanym „Wariant zmodyfikowanego wirusa krowianki Ankara”.
„Pochodna” zdeponowanego wirusa jest wirusem, wykazującym istotnie taką samą charakterystykę wzrostu, w szczególności taką samą zależność od temperatury, jak zdeponowany szczep, lecz może różnić się przynajmniej jedną częścią swojego genomu.
Opisany sposób może być przeprowadzony, odpowiednio, z wirusami typu dzikiego, wirusami atenuowanymi i wirusami rekombinowanymi.
„Wirus atenuowany” jest wirusem pochodzącym od wirusa patogennego, lecz wywołana nim infekcja w organizmie gospodarza prowadzi do niższej śmiertelności i/lub lżejszego stanu chorobowego, w porównaniu z nieatenuowanym, rodzicielskim wirusem. Specjalistom w dziedzinie znane są przykłady atenuowanych wirusów ospy. Przykładem atenuowanego wirusa krowianki jest szczep MV A, w szczególnoś ci szczep zdeponowany w ECACC pod nr V00083008 (zobacz wyż ej).
Termin „wirus rekombinowany” odnosi się do jakiegokolwiek wirusa posiadającego wstawiony do genomu wirusowego heterologiczny gen, niebędący jego naturalną częścią. Heterologiczny gen może być genem terapeutycznym, genem kodującym peptyd obejmujący przynajmniej jeden epitop do indukcji odpowiedzi immunologicznej, antysensowną kasetą ekspresyjną lub genem rybozymu. Specjalistom w dziedzinie znane są sposoby otrzymywania rekombinowanych wirusów. Najkorzystniejszym wektorem wirusa ospy jest MVA, w szczególności MVA 575 i MVA-BN (patrz wyżej).
Przeciwnie do wszystkich wcześniejszych, znanych w dziedzinie zaleceń, Autorzy niniejszego wynalazku odkryli, że spośród sześciu temperatur, zawartych między 26°C a 37°C, wirusy ospy,
PL 205 926 B1 w szczególności Chordopowirinae, ulegają mniej wydajniej amplifikacji podczas inkubacji (hodowli) w temperaturze 37°C. Zaskakującym odkryciem okazało się, że sposób amplifikacji wirusa ospy, w szczególności Chordopoxvirinae, prowadzi do wyższej wydajności wirusa, jeżeli komórki produkujące wirusa hodowane są w temperaturze niższej niż 37°C, zwłaszcza między 36,5°C a 26°C lub pomiędzy 26°C a około 36°C, w szczególności między 28°C a 33°C, a zwłaszcza między 28°C a 32°C, w szczególności w 30°C. Innym pożądanym zakresem temperatury jest przedział od 30°C do 36,5°C.
Szczególnie dobre wyniki uzyskano w podzakresach 30°C do 35°C, 30°C do 33°C i 30°C do 32°C. Szczególnie korzystną temperaturą była temperatura 30°C.
Określenie „około” stosowane w odniesieniu do wartości temperatury dotyczy korzystnie specyficznie wspomnianych temperatur i temperatur 0,5°C wyższych lub niższych od nich. Przykładowo, temperatura „około” 30°C interpretowana jest, jako temperatura w zakresie 29.5°C do 30.5°C.
Ogólnie, w ujawnionym procesie odpowiedni wirus ospy produkowany jest w hodowli zainfekowanych komórek w temperaturze niższej od temperatury ciała zwierzęcia, włączając ludzi, które jest naturalnym gospodarzem danego wirusa ospy. W przypadku wirusa krowianki za naturalnego ich gospodarza uważa się bawoły (Baxby, D.: Jenner's smallpox vaccine: the riddle of vaccinia virus and its origin. London: Heinemann Educational; 1981: 1-214).
Hodowla komórek produkujących wirus prowadzona jest zwłaszcza przez przynajmniej 24 godziny, w szczególności przez przynajmniej 2 dni lub przez przynajmniej 3 dni. Zazwyczaj, komórki nieposiadające wirusów wzrastają w 37°C, aż do uzyskania odpowiedniej ilości takich komórek. Następnie, hodowla komórkowa zaszczepiana jest wirusem, po czym następuje obniżenie temperatury do wyżej wspomnianej wartości. W alternatywnej realizacji, hodowla komórkowa jest poddawana działaniu powyższej temperatury jeszcze przed inokulacją wirusem.
Podłoża stosowane do hodowli komórek przed infekcją i do produkcji wirusów sposobem według niniejszego wynalazku mogą być takie same lub różne. Wszystkie podłoża są standardowymi podłożami, znanymi specjalistom w dziedzinie. W razie konieczności, możliwe jest dodanie dodatkowych składników, takich jak antybiotyki, dodatkowe aminokwasy i/lub płodowa surowica cielęca. Zgodnie ze szczególną realizacją, podłoża stosowane w procesie według wynalazku nie zawierają lipidów ani surfaktantów do stabilizowania wirusowej otoczki lipidowej. W szczególności, podłoża stosowane w ujawnionym procesie nie zawierają żadnego z następujących czynników stabilizujących: Pluronic F-68, połączenia Pluronic F-68 i Tween 80™.
80™ lub koncentratu lipidowego (Gibco/BRL, Gaithersburg, MD, nr kat.: 21900-014), który zawiera cholesterol, olej wątroby dorsza, Pluronic F-68, octan d-alfa-tokoferolu i Tween 80. Specjalistom w dziedzinie znane są komórki dla wirusów Chordopoxvirinae, które mogą być zastosowane w opisywanym procesie. Typ i natura komórek nie jest ściśle określony, pod warunkiem, że komórki mogą zostać zainfekowane odpowiednim wirusem, i że wirus potomny jest produkowany przez zainfekowane komórki. W szczególności, wartość multiplikacji infekcji powinna być niższa niż 1. Szczególnie pożądanymi komórkami są komórki kręgowców, np., komórki ssacze lub ptasie.
Zgodnie ze szczególną realizacją, komórkami kręgowców znajdującymi zastosowanie w ujawnionym sposobie z wirusami krowianki, w szczególności ze szczepami Elstree i MVA wirusa krowianki, są Fibroblasty Embrionów Kurczaków (CEF). Okazało się, że ujawniony proces może znaleźć zastosowanie dla komórek CEF, całkowicie nieoczekiwanie, ponieważ normalna średnia temperatura ciała kurcząt wynosi 41°C. Zatem, zastosowana w ujawnionym sposobie temperatura poniżej 37°C, korzystnie między 36,5°C a 26°C, korzystniej między 28°C a 33°C, jeszcze korzystniej między 28°C a 32°C, najkorzystniej 30°C różni się znacznie od normalnej temperatury ciała kurcząt. Pierwotnie można by było przypuszczać, że takie warunki temperaturowe nie będą mogły znaleźć zastosowania w namnaż aniu wirusów krowianki. Tego samego typu uwagi zwią zane są z temperaturami w zakresie 30°C do 36,5°C, 30°C do 33°C, 30°C do 32°C, a w szczególności z temperaturą 30°C.
Ponadto, ujawniony proces prowadzony jest korzystnie w nieruchomych kolbach.
Kolejną zaletą jest to, że proces prowadzi do wzrostu wydajności przy zastosowaniu „normalnych” szczepów wirusa. W celu obniżenia temperatury nie jest wymagane wprowadzenie temperaturowrażliwych mutacji lub długich i skomplikowanych procedur atenuacji. Innymi słowy, do uzyskania wyższej wydajności dla cząsteczek wirusa w niższej, w stosunku do 37°C, temperaturze, niewymagane jest wykorzystanie atenuowanych temperaturowo lub temperaturo-wrażliwych mutantów.
Wiadomo, że temperaturowo atenuowany wirus lub temperaturo-wrażliwe mutanty ulegają amplifikacji lepiej w niższej temperaturze; jednakże, takie szczepy zazwyczaj wykazują mniejszą reproduktywność niż nieatenuowane lub niezmutowane pod kątem wrażliwości temperaturowej wirusy.
PL 205 926 B1
Zatem, dużą korzyścią płynącą ze sposobu według wynalazku jest fakt, że może on być zastosowany wobec jakiegokolwiek rodzaju normalnego, silnie reprodukcyjnego szczepu wirusa.
Wirus otrzymany ujawnionym sposobem jest wykorzystany zwłaszcza, jako szczepionka lub do uzyskania kompozycji znajdującej zastosowanie w terapii genowej. Tego typu zastosowania wirusów ospy są dobrze znane w dziedzinie.
Krótki opis figur
Fig. 1: Na fig. 1 zamieszczono pojedyncze wartości uzyskane z eksperymentu 1, wykonanego w dwóch powtórzeniach (przedstawione punktowo). Słupki obrazują wartości ś rednie. Dla pojedynczych wartości, porównaj tabela 1. Fig. 2: Na fig. 2 zamieszczono pojedyncze wartości otrzymane z eksperymentu 2, wykonanego w dwóch powtórzeniach (przedstawione punktowo). Sł upki obrazują wartości średnie. Dla pojedynczych wartości, porównaj tabela 2. Fig. 3: Przedstawione na fig. 3 punkty są pojedynczymi wartościami uzyskanymi z eksperymentów w czterech różnych temperaturach (eksperyment 3), wykonanych w dwóch powtórzeniach. Słupki obrazują wartości średnie. Dla pojedynczych wartości, porównaj tabela 3. Fig.4: Przedstawione na fig. 4 punkty są pojedynczymi wartościami uzyskanymi z eksperymentów w czterech różnych temperaturach (eksperyment 4), wykonanych w dwóch powtórzeniach. Słupki obrazują wartości średnie. Dla pojedynczych wartości, porównaj tabela 4. Fig. 5: Zamieszczone na fig. 5 słupki prezentują średnie wartości dla eksperymentów wykonanych w trzech powtórzeniach w 30°C i 37°C. Poszczególne wartości zamieszczono w tabeli 5.
Szczegółowy opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy następujących realizacji:
procesu otrzymywania wirusa ospy, w szczególności wirusa ospy kręgowców Chordopoxvirinae, charakteryzującego się tym, że wirus namnażany jest w hodowli o temperaturze poniżej 37°C; powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus jest namnażany w hodowli o temperaturze około 26°C do około 36°C;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus jest namnażany w hodowli o temperaturze około 28°C do około 33°C;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus jest namnażany w hodowli o temperaturze około 30°C do około 33°C;
powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus jest namnażany w hodowli o temperaturze około 30°C;
powyższego procesu, znamiennego tym, że namnażanie wirusa przebiega w okresie, co najmniej 24 godzin;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że namnażanie wirusa przebiega, podczas co najmniej 2 do 3 dni;
powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus ospy jest wirusem użytecznym, jako szczepionka lub terapeutyczny wektor genowy;
powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus ospy wybrany jest z grupy obejmującej wirusy Avipoxvirus i Orthopoxvirus;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus jest wirusem krowianki; powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus jest zmodyfikowanym wirusem krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanym w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodną;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że proces ten przebiega w nieruchomych kolbach;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus ospy nie jest temperaturowrażliwym mutantem wirusa;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus ospy nie jest atenuowanym temperaturowo wirusem;
powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus namnażany jest w komórkach fibroblastów embrionów kurcząt;
wirusa otrzymanego zgodnie z powyższymi procesami; kompozycji zawierającej wspomniany wirus; szczepionki zawierającej wspomniany wirus;
kompozycji do zastosowania w terapii genowej obejmującej genom wirusa otrzymanego według któregokolwiek z powyższych procesów;
zastosowania wirusa otrzymanego według któregokolwiek z powyższych procesów, jako szczepionki;
PL 205 926 B1 zastosowania wirusa otrzymanego według któregokolwiek z powyższych procesów w terapii genowej.
P r z y k ł a d y
Poniższe przykłady stanowią dalszą ilustrację wynalazku.
P r z y k ł a d 1: Wpływ temperatury na powielanie MVA Warunki hodowli komórek
Pierwotne komórki CEF zaszczepiano w nieruchomych kolbach, na poziomie gęstości komórek inokulum 2 x 107 CEF kom/185 cm2. Komórki zaszczepiano w VP-SFM + 4mM L-Glutaminy i 1% antybiotyki/ środki przeciwgrzybiczne. W 4 dniu po zaszczepieniu gęstość komórkowa osiągnęła 5 x 107 CEF kom./185 cm2. Komórki infekowano 0,1 TCID50/kom. MVA-BN (zdeponowanym w ECACC po numerem V00083008) stosując RPMI w/o FCS. Infekcja, po której następowała 72 h inkubacja, przebiegała w 30°C i 37°C (w eksperymencie 1 i 2 z dwoma różnymi preparatami CEF), w 30, 33, 35 i 37°C (eksperyment 3) i w 26, 28, 30 i 33°C (eksperyment 4). Eksperyment przeprowadzono w dwóch powtórzeniach dla każdej temperatury. Replikację wirusa zatrzymywano poprzez zdrapanie komórek do podłoża i zamrożenie podłoża wraz z komórkami w -20°C. Mieszaninę poddawano zamrażaniu/rozmrażaniu kolejne dwa razy, aż do mechanicznego uwolnienia wirusa z komórek. W eksperymentach z 4 różnymi temperaturami infekcji replikację wirusa zatrzymywano poprzez zamrażanie unieruchomionych kolb w -20°C. Mieszanina ta poddawana była zamrażaniu/rozmrażaniu kolejne trzy razy, aż do mechanicznego uwolnienia wirusa z komórek.
Miana wirusów z każdej unieruchomionej kolby określano stosując analizę immunohistochemiczną. Zainfekowane komórki wybarwiano swoistym dla wirusa krowianki przeciwciałem. Następnie, dodawano sprzężone z HRP przeciwciało skierowane przeciwko przeciwciału wirusa krowianki. Po dodaniu substratu zainfekowane komórki przybierały niebieski lub brązowy kolor. Oceny tego testu dokonywano stosując wzór Spearman'a i Kaerber'a, określający TCID50/ml (dawka infekcyjna dla kultury tkankowej).
Eksperymenty przeprowadzano w dwóch powtórzeniach. Za kryterium wobec danych z miareczkowania przyjęto wyniki dla standardowego MVA-BN o znanych mianach, które zastosowano, jako kontrolę wewnętrzną każdego eksperymentu miareczkowania. Wyniki z eksperymentów brano pod uwagę jedynie wtedy, gdy wartości standardu MVA-BN nie odbiegały więcej niż ± 0,5 log od uzyskanej całkowitej średniej.
Wyniki
Biorąc pod uwagę możliwość wariantów wzrostowych komórek pierwotnych CEF, badania porównawcze temperatury infekcji 30°C i 37°C wykonano stosując dwa różne preparaty komórkowe. Wyniki z dwóch niezależnych eksperymentów infekcji zawarto w tabeli 1-2 i na fig. 1-2.
Wyniki z doświadczenia 1 i 2 jasno wskazują na wyższą wydajność wirusa w 30°C niż w 37°C. W doś wiadczeniu 1 uzyskano wzrost 0,5 log a w doś wiadczeniu 2 - okoł o 0,7 log.
T a b e l a 1: W tabeli 1 przedstawiono wyniki uzyskane w 1 doś wiadczeniu
| Miano wirusowe [TCID50/1T1I] w 30°C | Miano wirusowe [TCID50/ml] w 7°C | |
| kolba a | 7,50E+07 | 3,20E+07 |
| kolba b | 1,30E+08 | 3,20E+07 |
| wartość średnia | 1,00E+08 | 3,20E+07 |
T a b e l a 2: W tabeli 2 przedstawiono wyniki uzyskane w 2 doś wiadczeniu
| Miano wirusowe [TCID50/ml] w 30°C | Miano wirusowe [TCID50/ml] w 37°C | |
| kolba a | 1,30E+08 | 3,20E+07 |
| kolba b | 1,30E+08 | 2,40E+07 |
| wartość średnia | 1.30E+08 | 2,70E+07 |
Dane otrzymane z dwóch pierwszych eksperymentów są bardzo obiecujące i wskazują, że wzrost wydajności MVA można uzyskać poprzez obniżenie temperatury inkubacji po infekcji. Zatem, idąc tym tokiem myślenia, w celu znalezienia optymalnej temperatury infekcji, zdecydowano się zastosować również inne wartości temperatury. Zastosowano temperaturę 30, 33, 35 i 37°C. Wyniki z tego eksperymentu przedstawiono w tabeli 3 i na fig. 3.
PL 205 926 B1
Porównując wydajności uzyskane dla 37°C i niższych temperatur infekcji (35, 33 i 30°C) w sposób oczywisty wykazano wzrost w niższych temperaturach. Najlepszy wynik miana wirusowego [TCID50/ml] osiągnięto w eksperymencie o temperaturze infekcji 30°C. Rezultat ten był o 0,8 log wyższy od odnotowanego dla 37°C.
T a b e l a 3: W tabeli 3 przedstawiono miana wirusowe [TCID50/ml] uzyskane w 30, 33, 35 i 37°C
| Miano wirusowe [TClDso/ml] w 30°C | Miano wirusowe [TCIDsc/ml] w 33°C | Miano wirusowe [TCID50/ml] w 35°C | Miano wirusowe [TCID50/ml] w 37°C | |
| kolba a | 1,30E+08 | 5,60E+07 | 3,20E+07 | 3,20E+07 |
| kolba b | 1,30E+08 | 1,00E+08 | 7,50E+07 | 1,30E+07 |
| wartość średnia | 1,30E+08 | 7,50E+07 | 4,90E+07 | 2,10E+07 |
W kolejnym eksperymencie, w celu zbadania czy 30°C jest rzeczywiś cie temperaturą optymalną do powielania MVA w komórkach CEF, w hodowli w nieruchomych kolbach zastosowano temperatury niższe nawet niż 30°C. Zgodnie z powyższym, wprowadzono 26, 28, 30 i 33°C. Wyniki uzyskane w tym do ś wiadczeniu zamieszczono w tabeli 4 i na fig. 4.
T a b e l a 4: W tabeli 4 przedstawiono miana wirusowe [TCID50/ml] uzyskane w 26, 28, 30 i 33°C
| Miano wirusowe [TCID50/ml] w 26°C | Miano wirusowe [TCID50/ml] w 28°C | Miano wirusowe [TCID50/ml] w 30°C | Miano wirusowe [TCID50/ml] w 33°C | |
| kolba a | 3,20E+07 | 1,00E+08 | 4,20E+08 | 1,80E+08 |
| kolba b | 1,00E+08 | 1,80E+O8 | 2,40E+08 | 1,00E+08 |
| wartość średnia | 5,60E+07 | 1,30E+08 | 3,20E+08 | 1,30E+08 |
Najwyższą wydajność w tym eksperymencie stwierdzono w przypadku temperatury inkubacji po infekcji wynoszącej 30°C. Porównując powyższe dane z rezultatami wcześniejszego eksperymentu (4 temperatury pomiędzy 30 a 37°C), wykazano, że temperaturą po infekcji, optymalną do powielania MVA w komórkach CEF w nieruchomych kolbach, jest temperatura 30°C.
Analiza pochodzących z omówionych dwóch eksperymentów mian wirusowych dla poszczególnych temperatur, pozwala na stwierdzenie, że inkubacja w 37°C może wiązać się nawet z najniższym, spośród ustalonych dla 6 stosowanych temperatur, poziomem uzyskanych wirusów. Zaobserwowana kolejność, według uzyskanych wydajności w stosowanych temperaturach, jest następująca: 30°C > 33°C/28°C > 35°C/26°C > 37°C.
P r z y k ł a d 2
Wpływ temperatury na powielanie wirusa krowianki szczepu Elstree
W innej realizacji, oprócz MVA-BN, również wirus krowianki szczepu Elstree testowany był pod kątem zależności od temperatury. MVA-BN i Elstree powielano stosując komórki CEF. W ramach eksperymentu, pierwotne komórki CEF zaszczepiano w nieruchomych kolbach na poziomie gęstości komórek inokulum 2E+07 CEF kom./175 cm2. Komórki zaszczepiano w podłożu hodowlanym + 4mM L-Glutaminy i 1% antybiotyki/środki przeciwgrzybiczne. W 4 dniu po zaszczepieniu gęstość komórkowa osiągnęła 5E+07 CEF kom./175 cm2. Komórki infekowano 0,1 TCID50/kom. MVA-BN stosując odpowiednio, RPMI w/o FCS i Elstree. Infekcja, po której następowała 72 h inkubacja, przebiegała w 30°C i 37°C. Eksperyment przeprowadzono w trzech powtórzeniach dla każdej temperatury. Replikację wirusa zatrzymywano poprzez zamrożenie unieruchomionej kolby w -20°C. Mieszaninę poddawano zamrażaniu/rozmrażaniu kolejne trzy razy, aż do mechanicznego uwolnienia wirusa z komórek. Miana wirusa z każdej unieruchomionej kolbki określano stosując miareczkowanie według SOP/MVA/04. Za kryterium miareczkowania przyjęto wyniki dla standardowy MVA F6 o znanych mianach, które zastosowano, jako kontrolę wewnętrzną każdego eksperymentu miareczkowania. Wyniki z eksperymentu brano pod uwagę tylko, gdy standardowe wartości MVA F6 S nie odbiegały więcej niż ± 0,5 log od uzyskanych.
Wyniki uzyskane w doświadczeniu obejmującym infekcję przedstawiono w tabeli 5 i na figurze 5.
PL 205 926 B1
Dane z eksperymentu, w którym zastosowano MVA-BN wskazują jasno na wzrost wydajności wirusa w 30°C, w porównaniu z 37°C (0,667 log). W doświadczeniu z Elstree odnotowano wzrost 1,125 log w 30°C - w porównaniu z 37°C.
T a b e l a 5: W tabeli 5 przedstawiono miana wirusów [log10 TCID50/ml] uzyskane w 30 i 37°C dla MVA-BN i wirusa krowianki szczepu Elstree.
| MVA 30°C | MVA 37°C | Elstree 30°C komórki CEF | Elstree 37°C komórki CEF | |
| kolba a | 9,0 | 7,88 | 7,25 | 6,375 |
| kolba b | 8,0 | 8,0 | 8 | 6,5 |
| kolba c | 8,25 | 7,38 | 7,5 | 6,5 |
| wartość średnia | 8,42 | 7,75 | 7,583 | 6,458 |
Zastrzeżenia patentowe
Claims (19)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób otrzymywania wirusa ospy kręgowców - Chordopoxvirinae, znamienny tym, że wirus namnażany jest w podłożu wzrostowym w hodowli o temperaturze około 35°C lub poniżej 35°C, przy czym wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus wybrany jest zmodyfikowanym wirusem krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanym w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodnej.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wirus ospy namnażany jest w komórkach fibroblastów embrionów kurcząt.
- 3. Sposób wedł ug zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, ż e wirus ospy krę gowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze od około 26°C do około 35°C.
- 4. Sposób otrzymywania wirusa ospy kręgowców - Chordopoxvirinae, znamienny tym, ż e wirus namnażany jest w fibroblastach embrionów kurcząt w temperaturze hodowli wynoszącej od około 26°C do około 32°C.
- 5. Sposób wedł ug zastrz. 4, znamienny tym, ż e wirus ospy krę gowców - Chordopoxvirus wybrany jest z grupy obejmującej Avipoxvirus i Orthopoxvirus.
- 6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, ż e Orthopoxvirus jest wirusem krowianki.
- 7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że wirus krowianki wybrany jest ze szczepu Elstree i zmodyfikowanego wirusa krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanego w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodnej.
- 8. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 3, znamienny tym, że wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze od około 28°C do około 35°C.
- 9. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 8, znamienny tym, że wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze około 30°C.
- 10. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 9, znamienny tym, że namnażanie wirusa przebiega przez okres co najmniej 24 godzin.
- 11. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 10, znamienny tym, że namnażanie wirusa przebiega, przez co najmniej 2 do 3 dni.
- 12. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 11, znamienny tym, że wirus ospy kręgowców -Chordopoxvirus jest wirusem użytecznym jako szczepionka lub terapeutyczny wektor genowy.
- 13. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 12, znamienny tym, że przebiega w nieruchomych kolbach.
- 14. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 13, znamienny tym, że wirus ospy jest niewrażliwym na temperaturę mutantem wirusa.
- 15. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 14, znamienny tym, że wirus ospy jest nieatenuowanym temperaturowo wirusem.
- 16. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 15, znamienny tym, że do podłoża hodowlanego nie dodaje się żadnych dodatkowych lipidów ani surfaktantów.
- 17. Zastosowanie wirusa otrzymywanego sposobem określonym w zastrz. od 1 do 16 do wytwarzania kompozycji.PL 205 926 B1
- 18. Zastosowanie według zastrz. 17, znamienne tym, że wytwarzana kompozycja jest szczepionką.
- 19. Zastosowanie według zastrz. 17, znamienne tym, że wytwarzana kompozycja jest szczepionką przeznaczoną do stosowania w terapii genowej.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DKPA200101122 | 2001-07-18 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL366897A1 PL366897A1 (pl) | 2005-02-07 |
| PL205926B1 true PL205926B1 (pl) | 2010-06-30 |
Family
ID=8160630
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL366897A PL205926B1 (pl) | 2001-07-18 | 2002-07-02 | Sposób namnażania wirusa |
Country Status (19)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6924137B2 (pl) |
| EP (1) | EP1412486B1 (pl) |
| JP (2) | JP4700907B2 (pl) |
| KR (1) | KR100908377B1 (pl) |
| CN (1) | CN100513560C (pl) |
| AU (1) | AU2002314201B2 (pl) |
| BR (2) | BRPI0211276B1 (pl) |
| CA (1) | CA2450206C (pl) |
| DE (1) | DE60223812T2 (pl) |
| DK (1) | DK1412486T3 (pl) |
| EA (1) | EA006628B1 (pl) |
| HU (1) | HUP0400393A3 (pl) |
| IL (2) | IL158927A0 (pl) |
| MX (1) | MXPA04000326A (pl) |
| NO (1) | NO339056B1 (pl) |
| NZ (1) | NZ529914A (pl) |
| PL (1) | PL205926B1 (pl) |
| UA (1) | UA82466C2 (pl) |
| WO (1) | WO2003008533A2 (pl) |
Families Citing this family (21)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7445924B2 (en) | 2000-11-23 | 2008-11-04 | Bavarian Nordic A/S | Modified Vaccinia Ankara virus variant and cultivation method |
| UA76731C2 (uk) * | 2000-11-23 | 2006-09-15 | Баваріан Нордік А/С | Штам mva-bn модифікованого вірусу коров'ячої віспи ankara, фармацевтична композиція, вакцина, застосування mva-bn для приготування лікарського препарату та для приготування вакцини, спосіб введення гомологічної і/або гетерологічної послідовності нуклеїнової кислоти в клітини-мішені in vitro, спосіб одержання пептиду або білка, спосіб одержання mva-bn, клітина, набір для основної/бустерної імунізації |
| ES2305514T5 (es) | 2002-09-05 | 2019-06-14 | Bavarian Nordic As | Método para la amplificación de un poxvirus en condiciones exentas de suero |
| US8691502B2 (en) | 2008-10-31 | 2014-04-08 | Tremrx, Inc. | T-cell vaccination with viral vectors via mechanical epidermal disruption |
| TWI638829B (zh) | 2012-07-10 | 2018-10-21 | 法商傳斯堅公司 | 分枝桿菌抗原疫苗 |
| WO2014009433A1 (en) | 2012-07-10 | 2014-01-16 | Transgene Sa | Mycobacterium resuscitation promoting factor for use as adjuvant |
| WO2015104380A1 (en) | 2014-01-09 | 2015-07-16 | Transgene Sa | Fusion of heterooligomeric mycobacterial antigens |
| EP4523756A3 (en) | 2015-02-13 | 2025-05-28 | Transgene | Immunotherapeutic vaccine and antibody combination therapy |
| WO2016131945A1 (en) | 2015-02-20 | 2016-08-25 | Transgene Sa | Combination product with autophagy modulator |
| FR3042121A1 (fr) | 2015-10-08 | 2017-04-14 | Jean-Marc Limacher | Composition anti-tumorale |
| CA3023022A1 (en) | 2016-05-04 | 2017-11-09 | Transgene Sa | Combination therapy with cpg tlr9 ligand |
| US10913063B2 (en) * | 2016-07-12 | 2021-02-09 | EMULATE, Inc. | Removing bubbles in a microfluidic device |
| WO2018069316A2 (en) | 2016-10-10 | 2018-04-19 | Transgene Sa | Immunotherapeutic product and mdsc modulator combination therapy |
| WO2018234506A2 (en) | 2017-06-21 | 2018-12-27 | Transgene Sa | PERSONALIZED VACCINE |
| EP3842065A1 (en) | 2019-12-23 | 2021-06-30 | Transgene | Process for designing a recombinant poxvirus for a therapeutic vaccine |
| WO2023213764A1 (en) | 2022-05-02 | 2023-11-09 | Transgene | Fusion polypeptide comprising an anti-pd-l1 sdab and a member of the tnfsf |
| WO2023213763A1 (en) | 2022-05-02 | 2023-11-09 | Transgene | Poxvirus encoding a binding agent comprising an anti- pd-l1 sdab |
| CN121443308A (zh) | 2023-03-17 | 2026-01-30 | 亥姆霍兹慕尼黑中心-德国健康与环境研究中心(有限公司) | 用于治疗乙型肝炎的hbv抗原制剂 |
| WO2025172435A1 (en) | 2024-02-13 | 2025-08-21 | Helmholtz Zentrum München - Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) | Hbv antigen formulation for treating hepatitis b |
| FR3160186A1 (fr) | 2024-03-13 | 2025-09-19 | Odimma Therapeutics | Vecteur non-viral pour transcription augmentee |
| WO2026041811A1 (en) | 2024-08-23 | 2026-02-26 | Transgene | Recombinant poxvirus and method for regulating the expression of toxic conditional gene products of said recombinant poxvirus in a producing cell |
Family Cites Families (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2384845A1 (fr) * | 1976-08-05 | 1978-10-20 | Anvar | Vaccin contre la myxomatose et nouvelle souche virale utilisee |
| JPS60202827A (ja) * | 1984-03-28 | 1985-10-14 | Chibaken | 弱毒痘そうワクチン株 |
| CA1341245C (en) * | 1988-01-12 | 2001-06-05 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Recombinant vaccinia virus mva |
| DE4405841C1 (de) * | 1994-02-23 | 1995-01-05 | Mayr Anton Prof Dr Med Vet Dr | Multipotente Paramunitätsinducer auf der Basis von Kombinationen von Pockenviruskomponenten, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung als Arzneimittel |
| US5616487A (en) * | 1994-09-15 | 1997-04-01 | Aastrom Biosciences, Inc. | Stabilized retrovirus compositions |
| US6264957B1 (en) * | 1995-09-27 | 2001-07-24 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Product of infectious respiratory syncytial virus from cloned nucleotide sequences |
| WO1998002530A1 (en) * | 1996-07-15 | 1998-01-22 | The Government Of The United States Of America, As Represented By The Department Of Health And Human Services | Production of attenuated respiratory syncytial virus vaccines from cloned nucleotide sequences |
| UA76731C2 (uk) * | 2000-11-23 | 2006-09-15 | Баваріан Нордік А/С | Штам mva-bn модифікованого вірусу коров'ячої віспи ankara, фармацевтична композиція, вакцина, застосування mva-bn для приготування лікарського препарату та для приготування вакцини, спосіб введення гомологічної і/або гетерологічної послідовності нуклеїнової кислоти в клітини-мішені in vitro, спосіб одержання пептиду або білка, спосіб одержання mva-bn, клітина, набір для основної/бустерної імунізації |
-
2002
- 2002-02-07 UA UA2004010355A patent/UA82466C2/uk unknown
- 2002-07-02 EA EA200400195A patent/EA006628B1/ru not_active IP Right Cessation
- 2002-07-02 IL IL15892702A patent/IL158927A0/xx unknown
- 2002-07-02 NZ NZ529914A patent/NZ529914A/en not_active IP Right Cessation
- 2002-07-02 PL PL366897A patent/PL205926B1/pl unknown
- 2002-07-02 BR BRPI0211276A patent/BRPI0211276B1/pt unknown
- 2002-07-02 MX MXPA04000326A patent/MXPA04000326A/es active IP Right Grant
- 2002-07-02 US US10/483,707 patent/US6924137B2/en not_active Expired - Lifetime
- 2002-07-02 KR KR1020047000786A patent/KR100908377B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 2002-07-02 BR BR0211276-0A patent/BR0211276A/pt not_active IP Right Cessation
- 2002-07-02 AU AU2002314201A patent/AU2002314201B2/en not_active Ceased
- 2002-07-02 CA CA2450206A patent/CA2450206C/en not_active Expired - Fee Related
- 2002-07-02 DK DK02740758T patent/DK1412486T3/da active
- 2002-07-02 JP JP2003514077A patent/JP4700907B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2002-07-02 DE DE60223812T patent/DE60223812T2/de not_active Expired - Lifetime
- 2002-07-02 WO PCT/EP2002/007280 patent/WO2003008533A2/en not_active Ceased
- 2002-07-02 HU HU0400393A patent/HUP0400393A3/hu unknown
- 2002-07-02 CN CNB02814421XA patent/CN100513560C/zh not_active Expired - Fee Related
- 2002-07-02 EP EP02740758A patent/EP1412486B1/en not_active Revoked
-
2003
- 2003-11-18 IL IL158927A patent/IL158927A/en not_active IP Right Cessation
-
2004
- 2004-01-13 NO NO20040158A patent/NO339056B1/no not_active IP Right Cessation
-
2010
- 2010-11-22 JP JP2010259770A patent/JP5154632B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP5154632B2 (ja) | ウイルス増殖法 | |
| US8329466B2 (en) | Method for the cultivation of primary cells and for the amplification of viruses under serum free conditions | |
| AU2004257939B2 (en) | Production of poxviruses with adherent or non adherent avian cell lines | |
| US7445924B2 (en) | Modified Vaccinia Ankara virus variant and cultivation method | |
| RU2704485C2 (ru) | Стабильные жидкие препараты вируса осповакцины | |
| AU2002314201A1 (en) | Method for virus propagation | |
| JP2004535203A5 (pl) | ||
| HK1066245B (en) | Method for virus propagation | |
| HK1091229B (en) | Production of poxviruses with adherent or non adherent avian cell lines |