PL205926B1 - Sposób namnażania wirusa - Google Patents

Sposób namnażania wirusa

Info

Publication number
PL205926B1
PL205926B1 PL366897A PL36689702A PL205926B1 PL 205926 B1 PL205926 B1 PL 205926B1 PL 366897 A PL366897 A PL 366897A PL 36689702 A PL36689702 A PL 36689702A PL 205926 B1 PL205926 B1 PL 205926B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
virus
temperature
mva
pox
culture
Prior art date
Application number
PL366897A
Other languages
English (en)
Other versions
PL366897A1 (pl
Inventor
Paul Howley
Karl Heller
Ingmar Räthe
Original Assignee
Bavarian Nordic As
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=8160630&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=PL205926(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Bavarian Nordic As filed Critical Bavarian Nordic As
Publication of PL366897A1 publication Critical patent/PL366897A1/pl
Publication of PL205926B1 publication Critical patent/PL205926B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/275Poxviridae, e.g. avipoxvirus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/275Poxviridae, e.g. avipoxvirus
    • A61K39/285Vaccinia virus or variola virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P39/00General protective or antinoxious agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • C07K14/01DNA viruses
    • C07K14/065Poxviridae, e.g. avipoxvirus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • C07K14/01DNA viruses
    • C07K14/065Poxviridae, e.g. avipoxvirus
    • C07K14/07Vaccinia virus; Variola virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/24011Poxviridae
    • C12N2710/24051Methods of production or purification of viral material

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Description

Opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy procesu otrzymywania wirusa ospy, w szczególności wirusa ospy kręgowców - Chordopoxvirinae, przy czym wspomniany wirus ospy hodowany jest w temperaturze niższej niż 37°C. Proces prowadzi do wzrostu poziomu namnażania wirusa w obniżonej temperaturze.
Stan techniki
Grupa wirusów należących do Poxviridae obejmuje liczną rodzinę złożonych wirusów DNA, replikujących w cytoplazmie komórek kręgowców i bezkręgowców. Rodzinę Poxviridae można podzielić na dwie podrodziny - Chordopoxvirinae (wirusy ospy kręgowców) i - Entomopoxvirinae (owadzie wirusy ospy) (Fields Virology/wyd.: Fields, B.N., Knipe, D.M., Howley, PM; wyd.3/ISBN 0-7817-0253-4/ patrz w szczególności rozdział 83).
Podrodzina Chordopoxvirinae obejmuje liczne zwierzęce wirusy ospy (podzielone na odmienne rodzaje), takie jak wielbłądzie wirusy ospy, wirus ospy owiec, wirus ospy kóz lub wirusy ospy ptaków, w szczególno ś ci wirus ospy drobiu, jak również wirusy ospy dotyczą ce ludzi, tak jak wirus ospy (variola) i wirus krowianki.
Wirusy ospy, w szczególności Chordopoxvirinae, są istotnymi patogenami ludzi i zwierząt. Historia szczepień przeciwko infekcjom wirusami ospy jest długa. Niemal dwa wieki temu, rozpoczęto profilaktycznie szczepienia ludzi ospą krowią mające na celu nadanie odporności przeciwko tej chorobie. W późniejszym okresie do immunizacji wykorzystywano wirusa krowianki. Jednakże, szczepienia tym wirusem powodowały czasami poważne komplikacje, takie jak poszczepienne zapalenie mózgu, uogólnioną krowiankę lub zakażenie kontaktowe.
W póź niejszych latach, Anton Mayr wprowadzi ł nową szczepionkę niepowodują c ą takich komplikacji. Szczepionka na ospę zawierała wirus ospy - zmodyfikowany wirus krowianki Ankara (MVA) i została zastosowana do szczepień przeciwko ospie w około 150000 przypadkach szczepień bez wywołania jakichkolwiek powikłań związanych ze szczepieniem. Nawet dzieci wykazujące niedobór odporności nie przejawiały poważnych efektów ubocznych. MVA uzyskano w wyniku mutacji i selekcji oryginalnego wirusa Ankara po 575 pasażach w hodowli fibroblastów embrionów kurcząt. Bezpieczeństwo tak otrzymanego MVA odzwierciedla jego charakterystyka biologiczna, chemiczna i fizyczna. MVA posiada zredukowaną masę cząsteczkową sześć delecji w genomie i jest silnie atenuowany wobec komórek ssaczych, tj., syntetyzuje DNA i białka, ale nie są produkowane z nich żadne cząsteczki wirusa.
Szczepienia przeciwko ospie zostały zakończone sukcesem. W 1979, Światowa Organizacja Zdrowia ogłosiła wyeliminowanie ospy. Zgodnie z tą deklaracją zaniechano masowych szczepień dzieci a szczepieniami objęto jedynie pracowników laboratoriów i sił zbrojnych w określonych krajach.
Wraz z wyeliminowaniem ospy, usunięto główną przyczynę infekcji wirusami ospy u ludzi. Jednakże, pewne, inne niż ludzkie, wirusy ospy obniżyły swoją specyficzność wobec gospodarza, tj., mogą wywoływać infekcję nie tylko u typowego dla nich gospodarza (np., u krowy dla wirusa ospy krowiej), ale również u innych zwierząt (np., u szczurów i kotów). Tą drogą mogą zostać zainfekowani również ludzie. Ponieważ pewna część populacji nie posiada już odporności przeciwko ospie, mogą okazać się niebezpiecznymi dla nich infekcje wirusami ospy różnych gatunków zwierząt. Zwierzęta domowe są głównym źródłem infekcji u ludzi. Zgodnie z powyższym, rośnie znaczenie szczepienia zwierząt domowych przeciwko wirusom ospy. Ponadto, wirusy ospy są istotnymi wektorami ekspresji obcych genów, np., do zastosowania, jako szczepionka lub do wykorzystania w terapii genowej, tj., do przeniesienia sekwencji kwasu nukleinowego do docelowej komórki, w której ulega ekspresji. Z przytoczonych tu informacji wynika jasno potrzeba wynalezienia wydajnego i efektywnego pod względem kosztów sposobu produkcji wirusów ospy.
Wirusy ospy mogą być amplifikowane w różnych typach komórek. Na przykład, Chordopoxvirinae, szczególnie MVA ulegają powieleniu w kulturach komórkowych pierwotnych lub drugorzędowych płodowych fibroblastów kurcząt (CEF). Komórki uzyskiwane są z jaja zawierającego embrion kurczęcia, inkubowanego przez 10 do 12 dni. Następnie, komórki embrionalne są oddzielane i oczyszczane. Tego typu komórki pierwotne mogą zostać użyte bezpośrednio lub, po jeszcze jednym pasażu komórkowym, jako drugorzędowe komórki. Następnie, pierwotne lub drugorzędowe komórki CEF infekowane są MV A. W celu uzyskania amplifikacji MV A, zainfekowane komórki inkubowane są przez 2-3 dni w 37°C (patrz, np., Meyer, H. i wsp., 1991; J. of General Virology 72, 1031-1038; Sutter i wsp. 1994, Vaccine, Vol.l2, nr 11, 1032-1040). Mimo że inne wirusy kręgowców - Chordopoxvirinae amplifikowane są w różnych typach komórek, we wspomnianych przypadkach wybrano taką samą temperaturę 37°C.
PL 205 926 B1
Na przykład, wirus krowianki możliwy do uzyskania z ATCC (Nr VR1354), hodowany w komórkach HeLa S3 (ludzkie komórki raka szyjki macicy) jest również inkubowany przez 3 dni w 37°C (Current protocols in molecular biology 1998, rozdz. 16, podrozdz. 16.16, John Wiley & Sons, Inc.). Ponadto, wirusy MVA przystosowane do wzrostu w komórkach Vero (komórki nerki małpy) również ulegają powieleniu w 37°C (PCT/EPO1/02703). Zgodnie z powyższym, niezależnie od komórek zastosowanych do amplifikacji i od postaci gatunku czy szczepu wirusa Chordopoxvirinae, amplifikacja wirusów zachodzi w 37°C. Tak wybrana temperatura odpowiada całkowicie ogólnej wiedzy specjalistów w dziedzinie: wirusy ospy, obecnie niemal wyłącznie namnaż ane w laboratoriach, uzyskiwane s ą ze zwierząt ciepłokrwistych o temperaturze ciała w przybliżeniu 37°C. Ze względu na takie przystosowanie Chordopoxvirinae do wzrostu w organizmie tych zwierząt, wirusy te uległy adaptacji do wzrastania w 37°C, tj., powinny amplifikować wydajniej w 37°C.
Z podobnych powodów wirusy owadzie - Entomopoxvirinae hodowane są w temperaturach niż szych niż 37°C: temperatura ciała owadów jest znacznie niższa niż 37°C i zależy od szerokiego zakresu temperatury środowiska. Zatem, inaczej niż w przypadku Chordopoxvirinae, Entomopoxvirinae przystosowane są do wzrostu w niższych temperaturach. W US 5,721,352 i US 5,174,993 ujawniono temperaturę optymalną dla wzrostu w warunkach laboratoryjnych Entomopoxvirinae gatunku Amsacta moorei Entomopoxvirus (AmEPV), wynosiła ona 28°C. Jednakże, wspomniane zgłoszenia patentowe nie ujawniają zasad hodowli Chordopoxvirinae w takich warunkach temperaturowych.
Ponadto, produkcja szczepionek przeciwko innym infekcjom wirusowym przebiega ogólnie w 37°C. Jedynie kilka szczepionek na odrę otrzymywanych jest w niż szej temperaturze. W tym przypadku, szczepionka na odrę, która początkowo była produkowana w 37°C, powodowała często poważne efekty uboczne, została, zatem, poddana atenuacji poprzez ciągłe pasażowanie wirusa w 32°C. Atenuację, tj., znaczne obniżenie zdolności wywoływania choroby przez wirusa, osiągnięto po 85 pasażach w 32°C (Plotkin, Orenstain:Vaccines, wyd. 3, 230-232). Podsumowując, oczekuje się, że wirusy zwierząt ciepłokrwistych, a szczególnie wirusy krowianki, będą ulegać amplifikacji wydajniej w 37°C, ponieważ pochodzą one ze zwierząt o wspomnianej temperaturze ciała i przystosowanie do niższej temperatury osiągane jest jedynie po szeregu pasaży we wspomnianej niższej temperaturze. Ponadto, przystosowanie do niższej temperatury związane jest z atenuacją a zatem często z obniżeniem zdolności do reprodukcji wirusa.
W US 5,616,487 ujawniono proces otrzymywania stabilizowanego wirusa, w szczególnoś ci stabilizowanego retro wirusa, poprzez hodowlę komórek produkujących wirusa wraz z czynnikiem stabilizującym, w temperaturze poniżej 37°C. Czynnikami stabilizującymi są lipidy lub surfaktanty. W patencie ujawniono specyficznie zastosowanie, jako czynnika stabilizującego Pluronic F-68 i koncentratu lipidowego. Nadmieniono, że koncentrat lipidowy zawierał cholesterol, olej wątroby dorsza, Pluronic F-68, octan d-alfa-tokoferolu i Tween 80. W alternatywnym rozwiązaniu, US 5,616,487 ujawniono proces hodowli komórek produkujących specyficzne retrowirusy w temperaturze niższej niż 37°C, przy czym otrzymywany wirus był stabilizowany przy użyciu zdefiniowanego wyżej stabilizatora. Istota wynalazku.
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania wirusa ospy kręgowców - Chordopoxvirinae, charakteryzujący się tym, że wirus namnażany jest w podłożu wzrostowym w hodowli o temperaturze około 35°C lub poniżej 35°C, przy czym wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus wybrany jest zmodyfikowanym wirusem krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanym w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodnej. Korzystnie, wirus ospy namnażany jest w komórkach fibroblastów embrionów kurcząt. Równie korzystnie, wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze od około 26°C do około 35°C. Równie korzystnie, wirus namnażany jest w fibroblastach embrionów kurczą t w temperaturze hodowli wynoszą cej od około 26°C do okoł o 32°C. Korzystnie, wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus wybrany jest z grupy obejmującej Avipoxvirus i Orthopoxvirus, przy czym korzystnie Orthopoxvirus jest wirusem krowianki, szczególnie korzystnie wirus krowianki wybrany jest ze szczepu Elstree i zmodyfikowanego wirusa krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanego w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodnej. Równie korzystnie, wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze od około 28°C do około 35°C. Równie korzystnie, wirus ospy kręgowców- Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze około 30°C. Równie korzystnie, że namnażanie wirusa przebiega przez okres, co najmniej 24 godzin, przy czym szczególnie korzystnie namnażanie wirusa przebiega, przez co najmniej 2 do 3 dni. Równie korzystnie, wirus ospy kręgowców -Chordopoxvirus jest wirusem użytecznym, jako szczepionka lub terapeutyczny wektor genowy. Równie korzystnie, przebiega
PL 205 926 B1 w nieruchomych kolbach. Równie korzystnie, wirus ospy jest niewrażliwym na temperaturę mutantem wirusa. Równie korzystnie, wirus ospy jest nieatenuowanym temperaturowo wirusem. Równie korzystnie, do podłoża hodowlanego nie dodaje się żadnych dodatkowych lipidów ani surfaktantów.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie wirusa otrzymywanego sposobem według wynalazku określonym powyżej do wytwarzania kompozycji. Korzystnie, wytwarzana kompozycja jest szczepionką. Równie korzystnie, wytwarzana kompozycja jest szczepionką przeznaczoną do stosowania w terapii genowej.
Celem niniejszego wynalazku było zapewnienie sposobu otrzymywania wirusów ospy, w szczególności wirusa podrodziny Chordopoxvirus, przy założeniu, że hodowla komórek produkujących wirus przebiega w temperaturze poniżej 37°C.
Zaskakującym okazało się, że sposób według wynalazku prowadzi do znacznie wydajniejszej amplifikacji wirusa w niższej temperaturze (poniżej 37°C), co z kolei pozwala na osiągnięcie wyższej wydajności wirusa w stosunku do liczby zainfekowanych komórek. Zgodnie z powyższym, mniejsza liczba komórek wymagana jest do otrzymania tej samej ilości wirusa. Jest to szczególnie korzystne w przypadku zmodyfikowanego wirusa krowianki Ankara (MVA), ponieważ produkcja komórek CEF wymaganych do amplifikacji MVA jest pracochłonna i kosztowna. Ponadto, obniżenie temperatury inkubacji pozwala na oszczędność energii podczas procesu powielania (amplifikacji) wirusa ospy, a zatem wpływa na obniżenie kosztów produkcji wirusów.
Termin „wirus ospy”, stosowany w niniejszym opisie dotyczy korzystnie wirusów ospy podrodziny Chordopoxvirinae (wirusy ospy kręgowców) (Fields Virology/wyd.: Fields, B.N., Knipe, D.M., Howley, P.M.; wyd.3/ISBN 0-7817-0253-4/ w szczególności rozdział 83). Określenie „Chordopoxvirus”, „Chordopoxvirinae” i „wirusy ospy kręgowców” stosowane są zamiennie w niniejszym opisie. Korzystnymi wirusami Chordopoxvirinae są wirusy ospy rodzaju Orthopoxvirus, Parapoxvirus, Avipoxvirus, Capripoxvirus, Lepripoxvirus, Suipopoxvirus, Molluscipoxvirus i Yatapoxvirus. Bardziej korzystnymi są wirusy ospy rodzaju Orthopoxvirus i Avipoxvirus.
W korzystnej realizacji, wirus ospy, otrzymywany ujawnionym sposobem, jest wirusem ospy, w szczególności podrodziny Chordopoxvirinae, użytecznym, jako szczepionka lub znajdującym zastosowanie, jako wektor w terapii genowej, wprowadzający odpowiednie geny do komórki gospodarza. Specjalistom w dziedzinie znane są odpowiednie szczepy wirusowe. Tego typu odpowiednie szczepy mogą być uzyskane z np., Amerykańskiej Kolekcji Kultur Komórkowych - American Type Culture Collection (ATCC) lub Europejskiej Kolekcji Zwierzęcych Kultur Komórkowych - European Collection of Animal Cell Cultures(ECACC).
Jak już wspomniano wyżej, szczególnie korzystnymi wirusami ospy, otrzymywanymi ujawnionym sposobem są wirusy Avipoxvirus i Orthopoxvirus. Przykładami wirusów Orthopoxvirus są wirusy krowianki, takie jak szczepy Elstree wirusa krowianki, Western Reserve, Wyeth, NYVAC, NYCBOH, Paris, Copenhagen, korzystniej różne szczepy MVA i najkorzystniej MVA-BN, zdeponowany w ECACC pod nr V00083008 lub jego pochodne. MVA-BN lub jego pochodne zostały szczegółowo opisane w zgłoszeniu PCT PCT/EPO1/13628, zatytułowanym „Wariant zmodyfikowanego wirusa krowianki Ankara”.
„Pochodna” zdeponowanego wirusa jest wirusem, wykazującym istotnie taką samą charakterystykę wzrostu, w szczególności taką samą zależność od temperatury, jak zdeponowany szczep, lecz może różnić się przynajmniej jedną częścią swojego genomu.
Opisany sposób może być przeprowadzony, odpowiednio, z wirusami typu dzikiego, wirusami atenuowanymi i wirusami rekombinowanymi.
„Wirus atenuowany” jest wirusem pochodzącym od wirusa patogennego, lecz wywołana nim infekcja w organizmie gospodarza prowadzi do niższej śmiertelności i/lub lżejszego stanu chorobowego, w porównaniu z nieatenuowanym, rodzicielskim wirusem. Specjalistom w dziedzinie znane są przykłady atenuowanych wirusów ospy. Przykładem atenuowanego wirusa krowianki jest szczep MV A, w szczególnoś ci szczep zdeponowany w ECACC pod nr V00083008 (zobacz wyż ej).
Termin „wirus rekombinowany” odnosi się do jakiegokolwiek wirusa posiadającego wstawiony do genomu wirusowego heterologiczny gen, niebędący jego naturalną częścią. Heterologiczny gen może być genem terapeutycznym, genem kodującym peptyd obejmujący przynajmniej jeden epitop do indukcji odpowiedzi immunologicznej, antysensowną kasetą ekspresyjną lub genem rybozymu. Specjalistom w dziedzinie znane są sposoby otrzymywania rekombinowanych wirusów. Najkorzystniejszym wektorem wirusa ospy jest MVA, w szczególności MVA 575 i MVA-BN (patrz wyżej).
Przeciwnie do wszystkich wcześniejszych, znanych w dziedzinie zaleceń, Autorzy niniejszego wynalazku odkryli, że spośród sześciu temperatur, zawartych między 26°C a 37°C, wirusy ospy,
PL 205 926 B1 w szczególności Chordopowirinae, ulegają mniej wydajniej amplifikacji podczas inkubacji (hodowli) w temperaturze 37°C. Zaskakującym odkryciem okazało się, że sposób amplifikacji wirusa ospy, w szczególności Chordopoxvirinae, prowadzi do wyższej wydajności wirusa, jeżeli komórki produkujące wirusa hodowane są w temperaturze niższej niż 37°C, zwłaszcza między 36,5°C a 26°C lub pomiędzy 26°C a około 36°C, w szczególności między 28°C a 33°C, a zwłaszcza między 28°C a 32°C, w szczególności w 30°C. Innym pożądanym zakresem temperatury jest przedział od 30°C do 36,5°C.
Szczególnie dobre wyniki uzyskano w podzakresach 30°C do 35°C, 30°C do 33°C i 30°C do 32°C. Szczególnie korzystną temperaturą była temperatura 30°C.
Określenie „około” stosowane w odniesieniu do wartości temperatury dotyczy korzystnie specyficznie wspomnianych temperatur i temperatur 0,5°C wyższych lub niższych od nich. Przykładowo, temperatura „około” 30°C interpretowana jest, jako temperatura w zakresie 29.5°C do 30.5°C.
Ogólnie, w ujawnionym procesie odpowiedni wirus ospy produkowany jest w hodowli zainfekowanych komórek w temperaturze niższej od temperatury ciała zwierzęcia, włączając ludzi, które jest naturalnym gospodarzem danego wirusa ospy. W przypadku wirusa krowianki za naturalnego ich gospodarza uważa się bawoły (Baxby, D.: Jenner's smallpox vaccine: the riddle of vaccinia virus and its origin. London: Heinemann Educational; 1981: 1-214).
Hodowla komórek produkujących wirus prowadzona jest zwłaszcza przez przynajmniej 24 godziny, w szczególności przez przynajmniej 2 dni lub przez przynajmniej 3 dni. Zazwyczaj, komórki nieposiadające wirusów wzrastają w 37°C, aż do uzyskania odpowiedniej ilości takich komórek. Następnie, hodowla komórkowa zaszczepiana jest wirusem, po czym następuje obniżenie temperatury do wyżej wspomnianej wartości. W alternatywnej realizacji, hodowla komórkowa jest poddawana działaniu powyższej temperatury jeszcze przed inokulacją wirusem.
Podłoża stosowane do hodowli komórek przed infekcją i do produkcji wirusów sposobem według niniejszego wynalazku mogą być takie same lub różne. Wszystkie podłoża są standardowymi podłożami, znanymi specjalistom w dziedzinie. W razie konieczności, możliwe jest dodanie dodatkowych składników, takich jak antybiotyki, dodatkowe aminokwasy i/lub płodowa surowica cielęca. Zgodnie ze szczególną realizacją, podłoża stosowane w procesie według wynalazku nie zawierają lipidów ani surfaktantów do stabilizowania wirusowej otoczki lipidowej. W szczególności, podłoża stosowane w ujawnionym procesie nie zawierają żadnego z następujących czynników stabilizujących: Pluronic F-68, połączenia Pluronic F-68 i Tween 80™.
80™ lub koncentratu lipidowego (Gibco/BRL, Gaithersburg, MD, nr kat.: 21900-014), który zawiera cholesterol, olej wątroby dorsza, Pluronic F-68, octan d-alfa-tokoferolu i Tween 80. Specjalistom w dziedzinie znane są komórki dla wirusów Chordopoxvirinae, które mogą być zastosowane w opisywanym procesie. Typ i natura komórek nie jest ściśle określony, pod warunkiem, że komórki mogą zostać zainfekowane odpowiednim wirusem, i że wirus potomny jest produkowany przez zainfekowane komórki. W szczególności, wartość multiplikacji infekcji powinna być niższa niż 1. Szczególnie pożądanymi komórkami są komórki kręgowców, np., komórki ssacze lub ptasie.
Zgodnie ze szczególną realizacją, komórkami kręgowców znajdującymi zastosowanie w ujawnionym sposobie z wirusami krowianki, w szczególności ze szczepami Elstree i MVA wirusa krowianki, są Fibroblasty Embrionów Kurczaków (CEF). Okazało się, że ujawniony proces może znaleźć zastosowanie dla komórek CEF, całkowicie nieoczekiwanie, ponieważ normalna średnia temperatura ciała kurcząt wynosi 41°C. Zatem, zastosowana w ujawnionym sposobie temperatura poniżej 37°C, korzystnie między 36,5°C a 26°C, korzystniej między 28°C a 33°C, jeszcze korzystniej między 28°C a 32°C, najkorzystniej 30°C różni się znacznie od normalnej temperatury ciała kurcząt. Pierwotnie można by było przypuszczać, że takie warunki temperaturowe nie będą mogły znaleźć zastosowania w namnaż aniu wirusów krowianki. Tego samego typu uwagi zwią zane są z temperaturami w zakresie 30°C do 36,5°C, 30°C do 33°C, 30°C do 32°C, a w szczególności z temperaturą 30°C.
Ponadto, ujawniony proces prowadzony jest korzystnie w nieruchomych kolbach.
Kolejną zaletą jest to, że proces prowadzi do wzrostu wydajności przy zastosowaniu „normalnych” szczepów wirusa. W celu obniżenia temperatury nie jest wymagane wprowadzenie temperaturowrażliwych mutacji lub długich i skomplikowanych procedur atenuacji. Innymi słowy, do uzyskania wyższej wydajności dla cząsteczek wirusa w niższej, w stosunku do 37°C, temperaturze, niewymagane jest wykorzystanie atenuowanych temperaturowo lub temperaturo-wrażliwych mutantów.
Wiadomo, że temperaturowo atenuowany wirus lub temperaturo-wrażliwe mutanty ulegają amplifikacji lepiej w niższej temperaturze; jednakże, takie szczepy zazwyczaj wykazują mniejszą reproduktywność niż nieatenuowane lub niezmutowane pod kątem wrażliwości temperaturowej wirusy.
PL 205 926 B1
Zatem, dużą korzyścią płynącą ze sposobu według wynalazku jest fakt, że może on być zastosowany wobec jakiegokolwiek rodzaju normalnego, silnie reprodukcyjnego szczepu wirusa.
Wirus otrzymany ujawnionym sposobem jest wykorzystany zwłaszcza, jako szczepionka lub do uzyskania kompozycji znajdującej zastosowanie w terapii genowej. Tego typu zastosowania wirusów ospy są dobrze znane w dziedzinie.
Krótki opis figur
Fig. 1: Na fig. 1 zamieszczono pojedyncze wartości uzyskane z eksperymentu 1, wykonanego w dwóch powtórzeniach (przedstawione punktowo). Słupki obrazują wartości ś rednie. Dla pojedynczych wartości, porównaj tabela 1. Fig. 2: Na fig. 2 zamieszczono pojedyncze wartości otrzymane z eksperymentu 2, wykonanego w dwóch powtórzeniach (przedstawione punktowo). Sł upki obrazują wartości średnie. Dla pojedynczych wartości, porównaj tabela 2. Fig. 3: Przedstawione na fig. 3 punkty są pojedynczymi wartościami uzyskanymi z eksperymentów w czterech różnych temperaturach (eksperyment 3), wykonanych w dwóch powtórzeniach. Słupki obrazują wartości średnie. Dla pojedynczych wartości, porównaj tabela 3. Fig.4: Przedstawione na fig. 4 punkty są pojedynczymi wartościami uzyskanymi z eksperymentów w czterech różnych temperaturach (eksperyment 4), wykonanych w dwóch powtórzeniach. Słupki obrazują wartości średnie. Dla pojedynczych wartości, porównaj tabela 4. Fig. 5: Zamieszczone na fig. 5 słupki prezentują średnie wartości dla eksperymentów wykonanych w trzech powtórzeniach w 30°C i 37°C. Poszczególne wartości zamieszczono w tabeli 5.
Szczegółowy opis wynalazku
Niniejszy wynalazek dotyczy następujących realizacji:
procesu otrzymywania wirusa ospy, w szczególności wirusa ospy kręgowców Chordopoxvirinae, charakteryzującego się tym, że wirus namnażany jest w hodowli o temperaturze poniżej 37°C; powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus jest namnażany w hodowli o temperaturze około 26°C do około 36°C;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus jest namnażany w hodowli o temperaturze około 28°C do około 33°C;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus jest namnażany w hodowli o temperaturze około 30°C do około 33°C;
powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus jest namnażany w hodowli o temperaturze około 30°C;
powyższego procesu, znamiennego tym, że namnażanie wirusa przebiega w okresie, co najmniej 24 godzin;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że namnażanie wirusa przebiega, podczas co najmniej 2 do 3 dni;
powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus ospy jest wirusem użytecznym, jako szczepionka lub terapeutyczny wektor genowy;
powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus ospy wybrany jest z grupy obejmującej wirusy Avipoxvirus i Orthopoxvirus;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus jest wirusem krowianki; powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus jest zmodyfikowanym wirusem krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanym w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodną;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że proces ten przebiega w nieruchomych kolbach;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus ospy nie jest temperaturowrażliwym mutantem wirusa;
powyższego procesu, charakteryzującego się tym, że wirus ospy nie jest atenuowanym temperaturowo wirusem;
powyższego procesu, znamiennego tym, że wirus namnażany jest w komórkach fibroblastów embrionów kurcząt;
wirusa otrzymanego zgodnie z powyższymi procesami; kompozycji zawierającej wspomniany wirus; szczepionki zawierającej wspomniany wirus;
kompozycji do zastosowania w terapii genowej obejmującej genom wirusa otrzymanego według któregokolwiek z powyższych procesów;
zastosowania wirusa otrzymanego według któregokolwiek z powyższych procesów, jako szczepionki;
PL 205 926 B1 zastosowania wirusa otrzymanego według któregokolwiek z powyższych procesów w terapii genowej.
P r z y k ł a d y
Poniższe przykłady stanowią dalszą ilustrację wynalazku.
P r z y k ł a d 1: Wpływ temperatury na powielanie MVA Warunki hodowli komórek
Pierwotne komórki CEF zaszczepiano w nieruchomych kolbach, na poziomie gęstości komórek inokulum 2 x 107 CEF kom/185 cm2. Komórki zaszczepiano w VP-SFM + 4mM L-Glutaminy i 1% antybiotyki/ środki przeciwgrzybiczne. W 4 dniu po zaszczepieniu gęstość komórkowa osiągnęła 5 x 107 CEF kom./185 cm2. Komórki infekowano 0,1 TCID50/kom. MVA-BN (zdeponowanym w ECACC po numerem V00083008) stosując RPMI w/o FCS. Infekcja, po której następowała 72 h inkubacja, przebiegała w 30°C i 37°C (w eksperymencie 1 i 2 z dwoma różnymi preparatami CEF), w 30, 33, 35 i 37°C (eksperyment 3) i w 26, 28, 30 i 33°C (eksperyment 4). Eksperyment przeprowadzono w dwóch powtórzeniach dla każdej temperatury. Replikację wirusa zatrzymywano poprzez zdrapanie komórek do podłoża i zamrożenie podłoża wraz z komórkami w -20°C. Mieszaninę poddawano zamrażaniu/rozmrażaniu kolejne dwa razy, aż do mechanicznego uwolnienia wirusa z komórek. W eksperymentach z 4 różnymi temperaturami infekcji replikację wirusa zatrzymywano poprzez zamrażanie unieruchomionych kolb w -20°C. Mieszanina ta poddawana była zamrażaniu/rozmrażaniu kolejne trzy razy, aż do mechanicznego uwolnienia wirusa z komórek.
Miana wirusów z każdej unieruchomionej kolby określano stosując analizę immunohistochemiczną. Zainfekowane komórki wybarwiano swoistym dla wirusa krowianki przeciwciałem. Następnie, dodawano sprzężone z HRP przeciwciało skierowane przeciwko przeciwciału wirusa krowianki. Po dodaniu substratu zainfekowane komórki przybierały niebieski lub brązowy kolor. Oceny tego testu dokonywano stosując wzór Spearman'a i Kaerber'a, określający TCID50/ml (dawka infekcyjna dla kultury tkankowej).
Eksperymenty przeprowadzano w dwóch powtórzeniach. Za kryterium wobec danych z miareczkowania przyjęto wyniki dla standardowego MVA-BN o znanych mianach, które zastosowano, jako kontrolę wewnętrzną każdego eksperymentu miareczkowania. Wyniki z eksperymentów brano pod uwagę jedynie wtedy, gdy wartości standardu MVA-BN nie odbiegały więcej niż ± 0,5 log od uzyskanej całkowitej średniej.
Wyniki
Biorąc pod uwagę możliwość wariantów wzrostowych komórek pierwotnych CEF, badania porównawcze temperatury infekcji 30°C i 37°C wykonano stosując dwa różne preparaty komórkowe. Wyniki z dwóch niezależnych eksperymentów infekcji zawarto w tabeli 1-2 i na fig. 1-2.
Wyniki z doświadczenia 1 i 2 jasno wskazują na wyższą wydajność wirusa w 30°C niż w 37°C. W doś wiadczeniu 1 uzyskano wzrost 0,5 log a w doś wiadczeniu 2 - okoł o 0,7 log.
T a b e l a 1: W tabeli 1 przedstawiono wyniki uzyskane w 1 doś wiadczeniu
Miano wirusowe [TCID50/1T1I] w 30°C Miano wirusowe [TCID50/ml] w 7°C
kolba a 7,50E+07 3,20E+07
kolba b 1,30E+08 3,20E+07
wartość średnia 1,00E+08 3,20E+07
T a b e l a 2: W tabeli 2 przedstawiono wyniki uzyskane w 2 doś wiadczeniu
Miano wirusowe [TCID50/ml] w 30°C Miano wirusowe [TCID50/ml] w 37°C
kolba a 1,30E+08 3,20E+07
kolba b 1,30E+08 2,40E+07
wartość średnia 1.30E+08 2,70E+07
Dane otrzymane z dwóch pierwszych eksperymentów są bardzo obiecujące i wskazują, że wzrost wydajności MVA można uzyskać poprzez obniżenie temperatury inkubacji po infekcji. Zatem, idąc tym tokiem myślenia, w celu znalezienia optymalnej temperatury infekcji, zdecydowano się zastosować również inne wartości temperatury. Zastosowano temperaturę 30, 33, 35 i 37°C. Wyniki z tego eksperymentu przedstawiono w tabeli 3 i na fig. 3.
PL 205 926 B1
Porównując wydajności uzyskane dla 37°C i niższych temperatur infekcji (35, 33 i 30°C) w sposób oczywisty wykazano wzrost w niższych temperaturach. Najlepszy wynik miana wirusowego [TCID50/ml] osiągnięto w eksperymencie o temperaturze infekcji 30°C. Rezultat ten był o 0,8 log wyższy od odnotowanego dla 37°C.
T a b e l a 3: W tabeli 3 przedstawiono miana wirusowe [TCID50/ml] uzyskane w 30, 33, 35 i 37°C
Miano wirusowe [TClDso/ml] w 30°C Miano wirusowe [TCIDsc/ml] w 33°C Miano wirusowe [TCID50/ml] w 35°C Miano wirusowe [TCID50/ml] w 37°C
kolba a 1,30E+08 5,60E+07 3,20E+07 3,20E+07
kolba b 1,30E+08 1,00E+08 7,50E+07 1,30E+07
wartość średnia 1,30E+08 7,50E+07 4,90E+07 2,10E+07
W kolejnym eksperymencie, w celu zbadania czy 30°C jest rzeczywiś cie temperaturą optymalną do powielania MVA w komórkach CEF, w hodowli w nieruchomych kolbach zastosowano temperatury niższe nawet niż 30°C. Zgodnie z powyższym, wprowadzono 26, 28, 30 i 33°C. Wyniki uzyskane w tym do ś wiadczeniu zamieszczono w tabeli 4 i na fig. 4.
T a b e l a 4: W tabeli 4 przedstawiono miana wirusowe [TCID50/ml] uzyskane w 26, 28, 30 i 33°C
Miano wirusowe [TCID50/ml] w 26°C Miano wirusowe [TCID50/ml] w 28°C Miano wirusowe [TCID50/ml] w 30°C Miano wirusowe [TCID50/ml] w 33°C
kolba a 3,20E+07 1,00E+08 4,20E+08 1,80E+08
kolba b 1,00E+08 1,80E+O8 2,40E+08 1,00E+08
wartość średnia 5,60E+07 1,30E+08 3,20E+08 1,30E+08
Najwyższą wydajność w tym eksperymencie stwierdzono w przypadku temperatury inkubacji po infekcji wynoszącej 30°C. Porównując powyższe dane z rezultatami wcześniejszego eksperymentu (4 temperatury pomiędzy 30 a 37°C), wykazano, że temperaturą po infekcji, optymalną do powielania MVA w komórkach CEF w nieruchomych kolbach, jest temperatura 30°C.
Analiza pochodzących z omówionych dwóch eksperymentów mian wirusowych dla poszczególnych temperatur, pozwala na stwierdzenie, że inkubacja w 37°C może wiązać się nawet z najniższym, spośród ustalonych dla 6 stosowanych temperatur, poziomem uzyskanych wirusów. Zaobserwowana kolejność, według uzyskanych wydajności w stosowanych temperaturach, jest następująca: 30°C > 33°C/28°C > 35°C/26°C > 37°C.
P r z y k ł a d 2
Wpływ temperatury na powielanie wirusa krowianki szczepu Elstree
W innej realizacji, oprócz MVA-BN, również wirus krowianki szczepu Elstree testowany był pod kątem zależności od temperatury. MVA-BN i Elstree powielano stosując komórki CEF. W ramach eksperymentu, pierwotne komórki CEF zaszczepiano w nieruchomych kolbach na poziomie gęstości komórek inokulum 2E+07 CEF kom./175 cm2. Komórki zaszczepiano w podłożu hodowlanym + 4mM L-Glutaminy i 1% antybiotyki/środki przeciwgrzybiczne. W 4 dniu po zaszczepieniu gęstość komórkowa osiągnęła 5E+07 CEF kom./175 cm2. Komórki infekowano 0,1 TCID50/kom. MVA-BN stosując odpowiednio, RPMI w/o FCS i Elstree. Infekcja, po której następowała 72 h inkubacja, przebiegała w 30°C i 37°C. Eksperyment przeprowadzono w trzech powtórzeniach dla każdej temperatury. Replikację wirusa zatrzymywano poprzez zamrożenie unieruchomionej kolby w -20°C. Mieszaninę poddawano zamrażaniu/rozmrażaniu kolejne trzy razy, aż do mechanicznego uwolnienia wirusa z komórek. Miana wirusa z każdej unieruchomionej kolbki określano stosując miareczkowanie według SOP/MVA/04. Za kryterium miareczkowania przyjęto wyniki dla standardowy MVA F6 o znanych mianach, które zastosowano, jako kontrolę wewnętrzną każdego eksperymentu miareczkowania. Wyniki z eksperymentu brano pod uwagę tylko, gdy standardowe wartości MVA F6 S nie odbiegały więcej niż ± 0,5 log od uzyskanych.
Wyniki uzyskane w doświadczeniu obejmującym infekcję przedstawiono w tabeli 5 i na figurze 5.
PL 205 926 B1
Dane z eksperymentu, w którym zastosowano MVA-BN wskazują jasno na wzrost wydajności wirusa w 30°C, w porównaniu z 37°C (0,667 log). W doświadczeniu z Elstree odnotowano wzrost 1,125 log w 30°C - w porównaniu z 37°C.
T a b e l a 5: W tabeli 5 przedstawiono miana wirusów [log10 TCID50/ml] uzyskane w 30 i 37°C dla MVA-BN i wirusa krowianki szczepu Elstree.
MVA 30°C MVA 37°C Elstree 30°C komórki CEF Elstree 37°C komórki CEF
kolba a 9,0 7,88 7,25 6,375
kolba b 8,0 8,0 8 6,5
kolba c 8,25 7,38 7,5 6,5
wartość średnia 8,42 7,75 7,583 6,458
Zastrzeżenia patentowe

Claims (19)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób otrzymywania wirusa ospy kręgowców - Chordopoxvirinae, znamienny tym, że wirus namnażany jest w podłożu wzrostowym w hodowli o temperaturze około 35°C lub poniżej 35°C, przy czym wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus wybrany jest zmodyfikowanym wirusem krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanym w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodnej.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wirus ospy namnażany jest w komórkach fibroblastów embrionów kurcząt.
  3. 3. Sposób wedł ug zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, ż e wirus ospy krę gowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze od około 26°C do około 35°C.
  4. 4. Sposób otrzymywania wirusa ospy kręgowców - Chordopoxvirinae, znamienny tym, ż e wirus namnażany jest w fibroblastach embrionów kurcząt w temperaturze hodowli wynoszącej od około 26°C do około 32°C.
  5. 5. Sposób wedł ug zastrz. 4, znamienny tym, ż e wirus ospy krę gowców - Chordopoxvirus wybrany jest z grupy obejmującej Avipoxvirus i Orthopoxvirus.
  6. 6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, ż e Orthopoxvirus jest wirusem krowianki.
  7. 7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że wirus krowianki wybrany jest ze szczepu Elstree i zmodyfikowanego wirusa krowianki Ankara (MVA), korzystnie MVA-BN, zdeponowanego w ECACC pod numerem V00083008 lub jego pochodnej.
  8. 8. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 3, znamienny tym, że wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze od około 28°C do około 35°C.
  9. 9. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 8, znamienny tym, że wirus ospy kręgowców - Chordopoxvirus namnażany jest w hodowli o temperaturze około 30°C.
  10. 10. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 9, znamienny tym, że namnażanie wirusa przebiega przez okres co najmniej 24 godzin.
  11. 11. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 10, znamienny tym, że namnażanie wirusa przebiega, przez co najmniej 2 do 3 dni.
  12. 12. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 11, znamienny tym, że wirus ospy kręgowców -Chordopoxvirus jest wirusem użytecznym jako szczepionka lub terapeutyczny wektor genowy.
  13. 13. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 12, znamienny tym, że przebiega w nieruchomych kolbach.
  14. 14. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 13, znamienny tym, że wirus ospy jest niewrażliwym na temperaturę mutantem wirusa.
  15. 15. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 14, znamienny tym, że wirus ospy jest nieatenuowanym temperaturowo wirusem.
  16. 16. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 15, znamienny tym, że do podłoża hodowlanego nie dodaje się żadnych dodatkowych lipidów ani surfaktantów.
  17. 17. Zastosowanie wirusa otrzymywanego sposobem określonym w zastrz. od 1 do 16 do wytwarzania kompozycji.
    PL 205 926 B1
  18. 18. Zastosowanie według zastrz. 17, znamienne tym, że wytwarzana kompozycja jest szczepionką.
  19. 19. Zastosowanie według zastrz. 17, znamienne tym, że wytwarzana kompozycja jest szczepionką przeznaczoną do stosowania w terapii genowej.
PL366897A 2001-07-18 2002-07-02 Sposób namnażania wirusa PL205926B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DKPA200101122 2001-07-18

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL366897A1 PL366897A1 (pl) 2005-02-07
PL205926B1 true PL205926B1 (pl) 2010-06-30

Family

ID=8160630

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL366897A PL205926B1 (pl) 2001-07-18 2002-07-02 Sposób namnażania wirusa

Country Status (19)

Country Link
US (1) US6924137B2 (pl)
EP (1) EP1412486B1 (pl)
JP (2) JP4700907B2 (pl)
KR (1) KR100908377B1 (pl)
CN (1) CN100513560C (pl)
AU (1) AU2002314201B2 (pl)
BR (2) BRPI0211276B1 (pl)
CA (1) CA2450206C (pl)
DE (1) DE60223812T2 (pl)
DK (1) DK1412486T3 (pl)
EA (1) EA006628B1 (pl)
HU (1) HUP0400393A3 (pl)
IL (2) IL158927A0 (pl)
MX (1) MXPA04000326A (pl)
NO (1) NO339056B1 (pl)
NZ (1) NZ529914A (pl)
PL (1) PL205926B1 (pl)
UA (1) UA82466C2 (pl)
WO (1) WO2003008533A2 (pl)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7445924B2 (en) 2000-11-23 2008-11-04 Bavarian Nordic A/S Modified Vaccinia Ankara virus variant and cultivation method
UA76731C2 (uk) * 2000-11-23 2006-09-15 Баваріан Нордік А/С Штам mva-bn модифікованого вірусу коров'ячої віспи ankara, фармацевтична композиція, вакцина, застосування mva-bn для приготування лікарського препарату та для приготування вакцини, спосіб введення гомологічної і/або гетерологічної послідовності нуклеїнової кислоти в клітини-мішені in vitro, спосіб одержання пептиду або білка, спосіб одержання mva-bn, клітина, набір для основної/бустерної імунізації
ES2305514T5 (es) 2002-09-05 2019-06-14 Bavarian Nordic As Método para la amplificación de un poxvirus en condiciones exentas de suero
US8691502B2 (en) 2008-10-31 2014-04-08 Tremrx, Inc. T-cell vaccination with viral vectors via mechanical epidermal disruption
TWI638829B (zh) 2012-07-10 2018-10-21 法商傳斯堅公司 分枝桿菌抗原疫苗
WO2014009433A1 (en) 2012-07-10 2014-01-16 Transgene Sa Mycobacterium resuscitation promoting factor for use as adjuvant
WO2015104380A1 (en) 2014-01-09 2015-07-16 Transgene Sa Fusion of heterooligomeric mycobacterial antigens
EP4523756A3 (en) 2015-02-13 2025-05-28 Transgene Immunotherapeutic vaccine and antibody combination therapy
WO2016131945A1 (en) 2015-02-20 2016-08-25 Transgene Sa Combination product with autophagy modulator
FR3042121A1 (fr) 2015-10-08 2017-04-14 Jean-Marc Limacher Composition anti-tumorale
CA3023022A1 (en) 2016-05-04 2017-11-09 Transgene Sa Combination therapy with cpg tlr9 ligand
US10913063B2 (en) * 2016-07-12 2021-02-09 EMULATE, Inc. Removing bubbles in a microfluidic device
WO2018069316A2 (en) 2016-10-10 2018-04-19 Transgene Sa Immunotherapeutic product and mdsc modulator combination therapy
WO2018234506A2 (en) 2017-06-21 2018-12-27 Transgene Sa PERSONALIZED VACCINE
EP3842065A1 (en) 2019-12-23 2021-06-30 Transgene Process for designing a recombinant poxvirus for a therapeutic vaccine
WO2023213764A1 (en) 2022-05-02 2023-11-09 Transgene Fusion polypeptide comprising an anti-pd-l1 sdab and a member of the tnfsf
WO2023213763A1 (en) 2022-05-02 2023-11-09 Transgene Poxvirus encoding a binding agent comprising an anti- pd-l1 sdab
CN121443308A (zh) 2023-03-17 2026-01-30 亥姆霍兹慕尼黑中心-德国健康与环境研究中心(有限公司) 用于治疗乙型肝炎的hbv抗原制剂
WO2025172435A1 (en) 2024-02-13 2025-08-21 Helmholtz Zentrum München - Deutsches Forschungszentrum für Gesundheit und Umwelt (GmbH) Hbv antigen formulation for treating hepatitis b
FR3160186A1 (fr) 2024-03-13 2025-09-19 Odimma Therapeutics Vecteur non-viral pour transcription augmentee
WO2026041811A1 (en) 2024-08-23 2026-02-26 Transgene Recombinant poxvirus and method for regulating the expression of toxic conditional gene products of said recombinant poxvirus in a producing cell

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2384845A1 (fr) * 1976-08-05 1978-10-20 Anvar Vaccin contre la myxomatose et nouvelle souche virale utilisee
JPS60202827A (ja) * 1984-03-28 1985-10-14 Chibaken 弱毒痘そうワクチン株
CA1341245C (en) * 1988-01-12 2001-06-05 F. Hoffmann-La Roche Ag Recombinant vaccinia virus mva
DE4405841C1 (de) * 1994-02-23 1995-01-05 Mayr Anton Prof Dr Med Vet Dr Multipotente Paramunitätsinducer auf der Basis von Kombinationen von Pockenviruskomponenten, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung als Arzneimittel
US5616487A (en) * 1994-09-15 1997-04-01 Aastrom Biosciences, Inc. Stabilized retrovirus compositions
US6264957B1 (en) * 1995-09-27 2001-07-24 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Product of infectious respiratory syncytial virus from cloned nucleotide sequences
WO1998002530A1 (en) * 1996-07-15 1998-01-22 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Department Of Health And Human Services Production of attenuated respiratory syncytial virus vaccines from cloned nucleotide sequences
UA76731C2 (uk) * 2000-11-23 2006-09-15 Баваріан Нордік А/С Штам mva-bn модифікованого вірусу коров'ячої віспи ankara, фармацевтична композиція, вакцина, застосування mva-bn для приготування лікарського препарату та для приготування вакцини, спосіб введення гомологічної і/або гетерологічної послідовності нуклеїнової кислоти в клітини-мішені in vitro, спосіб одержання пептиду або білка, спосіб одержання mva-bn, клітина, набір для основної/бустерної імунізації

Also Published As

Publication number Publication date
JP4700907B2 (ja) 2011-06-15
EA200400195A1 (ru) 2004-06-24
AU2002314201B2 (en) 2006-09-21
CN1533433A (zh) 2004-09-29
IL158927A0 (en) 2004-05-12
BRPI0211276B1 (pt) 2018-12-04
DE60223812T2 (de) 2008-11-13
KR20040018474A (ko) 2004-03-03
HK1066245A1 (zh) 2005-03-18
CA2450206C (en) 2012-08-21
IL158927A (en) 2009-09-01
CN100513560C (zh) 2009-07-15
NZ529914A (en) 2005-03-24
HUP0400393A3 (en) 2004-10-28
CA2450206A1 (en) 2003-01-30
WO2003008533A2 (en) 2003-01-30
EA006628B1 (ru) 2006-02-24
NO20040158L (no) 2004-01-13
JP2011078424A (ja) 2011-04-21
DK1412486T3 (da) 2008-03-10
MXPA04000326A (es) 2005-03-07
KR100908377B1 (ko) 2009-07-20
US20040234950A1 (en) 2004-11-25
EP1412486A2 (en) 2004-04-28
EP1412486B1 (en) 2007-11-28
DE60223812D1 (de) 2008-01-10
NO339056B1 (no) 2016-11-07
UA82466C2 (uk) 2008-04-25
WO2003008533A3 (en) 2004-01-08
US6924137B2 (en) 2005-08-02
PL366897A1 (pl) 2005-02-07
JP2004535203A (ja) 2004-11-25
HUP0400393A2 (hu) 2004-07-28
JP5154632B2 (ja) 2013-02-27
BR0211276A (pt) 2004-08-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5154632B2 (ja) ウイルス増殖法
US8329466B2 (en) Method for the cultivation of primary cells and for the amplification of viruses under serum free conditions
AU2004257939B2 (en) Production of poxviruses with adherent or non adherent avian cell lines
US7445924B2 (en) Modified Vaccinia Ankara virus variant and cultivation method
RU2704485C2 (ru) Стабильные жидкие препараты вируса осповакцины
AU2002314201A1 (en) Method for virus propagation
JP2004535203A5 (pl)
HK1066245B (en) Method for virus propagation
HK1091229B (en) Production of poxviruses with adherent or non adherent avian cell lines