PL220887B1 - Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku - Google Patents
Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniakuInfo
- Publication number
- PL220887B1 PL220887B1 PL402476A PL40247613A PL220887B1 PL 220887 B1 PL220887 B1 PL 220887B1 PL 402476 A PL402476 A PL 402476A PL 40247613 A PL40247613 A PL 40247613A PL 220887 B1 PL220887 B1 PL 220887B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- mixture
- mol
- acid
- formalin
- nmr
- Prior art date
Links
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 19
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 title claims description 9
- GOJNABIZVJCYFL-UHFFFAOYSA-N dimethylphosphinic acid Chemical compound CP(C)(O)=O GOJNABIZVJCYFL-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims description 7
- 238000000034 method Methods 0.000 title description 24
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title 1
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 85
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 65
- ACVYVLVWPXVTIT-UHFFFAOYSA-N phosphinic acid Chemical compound O[PH2]=O ACVYVLVWPXVTIT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 35
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 29
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 29
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 27
- OHWRASKXEUIFFB-UHFFFAOYSA-N NCP(O)=O Chemical compound NCP(O)=O OHWRASKXEUIFFB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 25
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 21
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 19
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 15
- 238000000607 proton-decoupled 31P nuclear magnetic resonance spectroscopy Methods 0.000 description 12
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 11
- 238000005481 NMR spectroscopy Methods 0.000 description 10
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 10
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 10
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 9
- 238000001394 phosphorus-31 nuclear magnetic resonance spectrum Methods 0.000 description 9
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 8
- 238000000655 nuclear magnetic resonance spectrum Methods 0.000 description 8
- 101100184636 Rhodobacter capsulatus modA gene Proteins 0.000 description 6
- XYFCBTPGUUZFHI-UHFFFAOYSA-N Phosphine Chemical compound P XYFCBTPGUUZFHI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 238000005902 aminomethylation reaction Methods 0.000 description 4
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 150000003003 phosphines Chemical class 0.000 description 4
- 238000006068 polycondensation reaction Methods 0.000 description 4
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 4
- AQQVTZBWWYVEGR-UHFFFAOYSA-N [NH4+].[O-][PH2]=O Chemical compound [NH4+].[O-][PH2]=O AQQVTZBWWYVEGR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- IAANMKMHMYZVOC-UHFFFAOYSA-N aminomethyl dihydrogen phosphate Chemical class NCOP(O)(O)=O IAANMKMHMYZVOC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 3
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 3
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 3
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 3
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 3
- GNOIPBMMFNIUFM-UHFFFAOYSA-N hexamethylphosphoric triamide Chemical compound CN(C)P(=O)(N(C)C)N(C)C GNOIPBMMFNIUFM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 3
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 3
- SIGZYWRTSGWBNO-UHFFFAOYSA-N hydroxymethylphosphinic acid Chemical compound OCP(O)=O SIGZYWRTSGWBNO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910000073 phosphorus hydride Inorganic materials 0.000 description 2
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 2
- BGJSXRVXTHVRSN-UHFFFAOYSA-N 1,3,5-trioxane Chemical compound C1OCOCO1 BGJSXRVXTHVRSN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N Ammonium chloride Substances [NH4+].[Cl-] NLXLAEXVIDQMFP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N Ammonium hydroxide Chemical compound [NH4+].[OH-] VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ABLZXFCXXLZCGV-UHFFFAOYSA-N Phosphorous acid Chemical compound OP(O)=O ABLZXFCXXLZCGV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 240000007651 Rubus glaucus Species 0.000 description 1
- 235000011034 Rubus glaucus Nutrition 0.000 description 1
- 235000009122 Rubus idaeus Nutrition 0.000 description 1
- 239000012190 activator Substances 0.000 description 1
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 description 1
- 235000011114 ammonium hydroxide Nutrition 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 150000001735 carboxylic acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 125000004122 cyclic group Chemical group 0.000 description 1
- YOTZYFSGUCFUKA-UHFFFAOYSA-N dimethylphosphine Chemical compound CPC YOTZYFSGUCFUKA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005485 electric heating Methods 0.000 description 1
- 150000002170 ethers Chemical class 0.000 description 1
- -1 hydroxide ions Chemical class 0.000 description 1
- 229910021645 metal ion Inorganic materials 0.000 description 1
- WSFSSNUMVMOOMR-NJFSPNSNSA-N methanone Chemical compound O=[14CH2] WSFSSNUMVMOOMR-NJFSPNSNSA-N 0.000 description 1
- 208000033536 noncirrhotic 1 portal hypertension Diseases 0.000 description 1
- 238000010979 pH adjustment Methods 0.000 description 1
- 229920002866 paraformaldehyde Polymers 0.000 description 1
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000000425 proton nuclear magnetic resonance spectrum Methods 0.000 description 1
- 229910001379 sodium hypophosphite Inorganic materials 0.000 description 1
- NASFKTWZWDYFER-UHFFFAOYSA-N sodium;hydrate Chemical compound O.[Na] NASFKTWZWDYFER-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003039 volatile agent Substances 0.000 description 1
Description
Przedmiotem wynalazku jest nowy poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku, będący uniwersalnym buforem przeznaczonym do korekty pH.
Istotę wynalazku stanowi poliamfolit, będący pochodną kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku o wzorze 1.
Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku nie był dotychczas opisany w literaturze naukowej ani technicznej.
Poliamfolit jest przeznaczony do stosowania w charakterze uniwersalnego buforu do korekty pH, do wiązania jonów wodorotlenowych, protonów i jonów metali, do stabilizacji wody technologicznej, i innych zastosowań.
Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku jest silniejszym kwasem niż poliamfolity zawierające kwasy karboksylowe, a słabszym kwasem niż powszechnie stosowane poliamfolity zawierające grapy fosfonowe lub sulfonowe. Poliamfolity dimetylofosfinowe tworzą w swoich strukturach liczne fragmenty cykliczne, są zatem strukturalnie zbliżone do polimerów zawierających etery azakoronowe.
Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku o wzorze 1, otrzymuje się w trzy etapowej reakcji kwasu fosfinowego z amoniakiem i formaldehydem, prowadzonej w temperaturze
273-373 K, w wodzie, w obecności aktywatora, otrzymany kwas aminometylofosfinowy, w drugim etapie poddaje się reakcji polikondensacji z formaldehydem, a w trzecim etapie dosieciowaniu formaldehydem.
Przedmiot wynalazku przedstawiony jest w przykładach otrzymywania.
P r z y k ł a d 1
Do roztworu fosfinianu amonu (4,15 g, 0,050 mola) w wodzie (5 cm3) wkrapla się w temperatu3 rze około 298 K 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w tempera1 31 1 31 turze około 298 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 96 godzinach głównymi składnikami mieszaniny są: kwas aminometylofosfinowy (47%) i kwas fosfinowy (41%). Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 1.
P r z y k ł a d 2
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że przed wprowadzeniem formaliny dodaje się 3
12M wodny roztwór HCl (1,25 cm3, 0,30x0,050 mola), a otrzymaną mieszaninę analizuje się przy po1 31 1 31 mocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR. Z pomiarów wynika, że po 96 godzinach głównymi składnikami mieszaniny są: kwas aminometylofosfinowy (51%), kwas fosfinowy (19%) i 30% różnych związków fosfinowych, w tym polimery. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 1.
P r z y k ł a d 3
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że przed wprowadzeniem formaliny dodaje się 3
12M wodny roztwór HCl (2,50 cm3, 0,60x0,050 mola), a otrzymaną mieszaninę analizuje się przy po1 31 1 31 mocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR. Z pomiarów wynika, że po 96 godz. głów n ym i składnikami mieszaniny są: kwas aminometylofosfinowy (26%), kwas fosfinowy (15%) i 59% różnych związków fosfinowych, w tym aż 57% polimerów. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 1.
P r z y k ł a d 4
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że przed wprowadzeniem formaliny dodaje się 3
12M wodny roztwór HCl (5,00 cm3, 1,20x0,050 mola), a otrzymaną mieszaninę analizuje się przy po1 31 1 31 mocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR. Z pomiarów wynika, że po 96 h głównymi składnikami mieszaniny są: kwas aminometylofosfinowy (21%), kwas fosfinowy (39%) i 30% różnych związków fosfinowych, w tym 25% polimerów. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 1.
P r z y k ł a d 5
Postępuje się jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że przed wprowadzeniem formaliny dodaje się 3
12M wodny roztwór HCl (7,50 cm3, 1,80x0,050 mola), a otrzymaną mieszaninę analizuje się przy po1 31 1 31 mocy widm 1H, 31P{1H) i 31P NMR. Z pomiarów wynika, że po 96 h głównymi składnikami mieszaniny są: kwas fosfinowy (86%) i kwas hydroksymetylofosfinowy (12%), brak innych związków fosfinowych oraz polimerów. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 1.
PL 220 887 B1
T a b e l a 1. Skład mieszaniny [%] w zależności od stosunku nHCl/nH2PO2H w temperaturze 298 K.
| HCI/H2PO2H [mol/mol] | H2PO2H [%molP] | H2NCH2PO2H2 [%molP] | Inne [%molP] |
| 0,00 | 41 | 47 | 12 |
| 0,30 | 19 | 51 | 30 |
| 0,60 | 15 | 26 | 59 (57 polimery) |
| 1,20 | 39 | 21 | 30 (25 polimery) |
| 1,80 | 86 | 0 | 12 HMPA |
HMPA = HOCH2PO2H2.
Z przykładów 1-5 wynika, że optimum dla syntezy kwasu aminometylofosfinowego, który jest podstawowym substratem do następnej polikondensacji, wynosi 0,3 mola HCl na mol kwasu fosfinowego, zaś optimum dla stopnia przereagowania kwasu aminometylofosfinowego i polimeryzacji wynoszą 0,6 mola HCl na mol kwasu fosfinowego. Zwiększenie ilości HCl ponad tą wartość powoduje zahamowanie reakcji aminometylowania kwasu fosfinowego i obniżenie wydajności kwasu aminometylofosfinowego, a co za tym idzie, również stopnia następczej polikondensacji. Przy ilości 1,8 mola HCl na mol kwasu fosfinowego nie obserwuje się już żadnych produktów aminometylowania kwasu fosfinowego.
P r z y k ł a d 6
Do roztworu fosfinianu amonu (4,15 g, 0,050 mola) w wodzie (5 cm3) wkrapla się w temperatu3 rze około 298 K 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w tempera1 31 1 31 turze około 323 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H) i 31P NMR, z których wynika, że po 4 godzinach głównymi składnikami mieszaniny są: kwas aminometylofosfinowy (46%) i kwas fosfinowy (35%). Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 2.
P r z y k ł a d 7
Postępuje się jak w przykładzie 6 z tą różnicą, że przed wprowadzeniem formaliny dodaje się 3
12M wodny roztwór HCl (1,25 cm3, 0,30x0,050 mola), a otrzymaną mieszaninę analizuje się przy po1 31 1 31 mocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR. Z pomiarów tych wynika, że po 4 godzinach głównymi składnikami mieszaniny są: kwas aminometylofosfinowy (42%), kwas fosfinowy (12%), 29% różnych związków aminometylofosfinowych i około 11% związków zawierających ugrupowanie N-C-P-C-N. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 2.
P r z y k ł a d 8
Postępuje się jak w przykładzie 6 z tą różnicą, że przed wprowadzeniem formaliny dodaje się 3
12M wodny roztwór HCl (2,50 cm3, 0,60x0,050 mola), a otrzymaną mieszaninę analizuje się przy po1 31 1 31 mocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR. Z pomiarów tych wynika, że po 4 godzinach głównymi składnikami mieszaniny są: kwas aminometylofosfinowy (30%), kwas fosfinowy (16%), 37% różnych związków aminometylofosfinowych i około 16% związków zawierających ugrupowanie N-C-P-C-N. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 2.
P r z y k ł a d 9
Postępuje się jak w przykładzie 6 z tą różnicą, że przed wprowadzeniem formaliny dodaje się 3
12M wodny roztwór HCl (5,00 cm3, 1,20x0,050 mola), a otrzymaną mieszaninę analizuje się przy po1 31 1 31 mocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR. Z pomiarów tych wynika, że po 4 godzinach głównymi składnikami mieszaniny są: kwas aminometylofosfinowy (21%), kwas fosfinowy (29%), 31% różnych związków aminometylofosfinowych i 11% związków zawierających ugrupowanie N-C-P-C-N. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 2.
P r z y k ł a d 10
Postępuje się jak w przykładzie 6 z tą różnicą, że przed wprowadzeniem formaliny dodaje się 3
12M wodny roztwór HCl (7,50 cm3, 1,80x0,050 mola), a otrzymaną mieszaninę analizuje się przy 1 31 1 31 pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR. Z pomiarów tych wynika, że po 4 h głównym składnikiem mieszaniny jest kwas fosfinowy (96%). Nie stwierdzono obecności innych związków fosfinowych ani polimerów. Otrzymane wyniki przedstawiono w tabeli 2.
PL 220 887 B1
T a b e l a 2. Skład mieszaniny [%] w zależności od stosunku nHCl/nH2PO2H w temperaturze 323 K.
| HCl/H2PO2H [mol/mol] | H2PO2H [%molP] | H2NCH2PO2H2 [%molP] | Inne [%molP] |
| 0,00 | 35 | 46 | 7NCPH+1NCPCN |
| 0,30 | 12 | 42 | 29NCPH+11NCPCN |
| 0,60 | 16 | 30 | 37NCPH+16NCPCN |
| 1,20 | 29 | 21 | 31NCPH+11NCPCN |
| 1,80 | 95 | 0 | 5HMPA |
HMPA = HOCH2PO2H2, NCPH = związki zawierające fragment N-CH2-P-H, NCPCN = związki zawierające fragment N-CH2-P-CH2-N.
Z przykładów 6-10 wynika, że optimum dla syntezy kwasu aminometylofosfinowego, który jest podstawowym substratem do następczej polikondensacji, w temperaturze 323 K jest zmienne. Po godzinie wynosi 0,3 mola HCl na mol kwasu fosfinowego, a po 4 h wynosi ono 0,0 mola HCl na mol kwasu fosfinowego. Optimum stopnia przereagowania kwasu aminometylofosfinowego wynosi 0,3-1,2 mola HCl na mol kwasu fosfinowego. Zwiększenie ilości HCl ponad te wartości powoduje zahamowanie reakcji aminometylowania kwasu fosfinowego i znaczne obniżenie wydajności kwasu aminometylofosfinowego. Przy ilości 1,8 mola HCl na mol kwasu fosfinowego nie obserwuje się już żadnych produktów aminometylowania kwasu fosfinowego.
P r z y k ł a d 11
Postępuje się jak w przykładzie 1, z tą różnicą, że po 96 h dodaje się do mieszaniny reakcyjnej 3
37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 298 K i wyko1 31 1 31 nuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 70 h głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie
N-CH2-P-CH2-N (48%), N-CH2-P-H (28%). Na widmach nie stwierdza się już obecności kwasu ami3 nometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego. Następnie dodaje się jeszcze 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 298 K przez 24 godziny i uzyskuje roztwór poliamfolitu, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temp. 373 K. Uzyskuje się poliamfolit w postaci białego proszku, której strukturę potwierdzają widma 1H i 31P{1H} NMR.
P r z y k ł a d 12
Postępuje się jak w przykładzie 2, z tą różnicą, że po 96 h dodaje się do mieszaniny reakcyjnej 3
37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 298 K
31 1 31 i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 70 h głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie
N-CH2-P-CH2-N (43%) i N-CH2-P-H (34%). Na widmach nie stwierdza się już obecności kwasu ami3 nometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego. Następnie dodaje się 37% formalinę (4,10 cm , 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 298 K przez 24 h i uzyskuje roztwór poliamfolitu, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temperaturze końcowej 373 K. Uzyskuje się poliamfolit w postaci białego proszku,
31 1 którego strukturę potwierdzają widma H i P{ H} NMR.
P r z y k ł a d 13
Postępuje się jak w przykładzie 3, z tą różnicą, że po 96 godzinach dodaje się do mieszaniny 3 reakcyjnej 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze
31 1 31 około 298 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H) i 31P NMR, z których wynika, że po 70 h głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie N-CH2-P-CH2-N (61%) i N-CH2-P-H (17%). Na widmach nie stwierdzono obecności kwasu aminometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego. Następnie dodaje się jeszcze 37% formalinę 3 (4,10 cm3, 0,055 mola), i utrzymuje mieszaninę w temperaturze około 298 K przez 24 h. Z uzyskanego roztworu poliamfolitu, oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa.
31 1
Uzyskuje się biały proszek poliamfolitu, którego strukturę potwierdzają widma 1H i 31P{1H} NMR.
P r z y k ł a d 14
Postępuje się jak w przykładzie 4, z tą różnicą, że po 96 godzinach dodaje się do mieszaniny 3 reakcyjnej 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze
PL 220 887 B1
31 1 31 około 298 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 70 h głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie N-CH2-P-CH2-N (59%), N-CH2-P-H (30%). Na widmach nie stwierdza się już obecności kwasu aminometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego, natomiast poliamfolit zawiera około 7% kwa3 su hydroksymetylofosfinowego. Następnie dodaje się jeszcze 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 298 K przez 24 h i uzyskuje roztwór poliamfolitu, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temperaturze końcowej 373 K. Uzyskuje się poliamfolit w postaci białego proszku, której
311 strukturę potwierdzają widma H i P{ H} NMR.
P r z y k ł a d 15
Postępuje się jak w przykładzie 5, z tą różnicą, że po 96 godzinach dodaje się do mieszaniny 3 reakcyjnej 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze
31 1 31 około 298 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 70 h głównymi składnikami mieszaniny są kwas fosfinowy (49%) i kwas hydroksymetylofosfinowy (23%), z czego wynika, że dodatek 1,8 mola HCl na mol kwasu fosfinowego niemal całkowicie hamuje powstawanie aminometylofosfinianów i powstawanie poliamfolitów.
P r z y k ł a d 16
Postępuje się jak w przykładzie 6, z tą różnicą, że po 14 godzinach dodaje się do mieszaniny 3 reakcyjnej 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze
31 1 31 około 323 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 4 h głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie N-CH2-P-CH2-N (51%), N-CH2-P-H (21%). Na widmach nie stwierdza się już obecności kwasu aminometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego. Następnie dodaje się jeszcze 37% formalinę 3 (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 323 K przez 9 h i uzyskuje roztwór poliamfolitu, zawierający w sumie 99% polimerów, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temperaturze końcowej 373 K.
31 1
Uzyskuje się poliamfolit w postaci białego proszku, której strukturę potwierdzają widma 1H i 31P{1H} NMR.
P r z y k ł a d 17
Postępuje się jak w przykładzie 7, z tą różnicą, że po 14 godzinach dodaje się do mieszaniny 3 reakcyjnej 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze
31 1 31 około 323 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm H, P{ H) i P NMR, z których wynika, że po 4 h głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie N-CH2-P-CH2-N (54%) i N-CH2-P-H (32%). Na widmach nie stwierdzono już obecności kwasu aminometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego. Następnie dodaje się jeszcze 37% formalinę 3 (4,10 cm , 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 323 K przez 9 h i uzyskuje roztwór poliamfolitu, zawierający w sumie 96% polimerów, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temperaturze końcowej 373 K.
31 1
Uzyskuje się poliamfolit w postaci białego proszku, której strukturę potwierdzają widma H i P{ H} NMR.
P r z y k ł a d 18
Postępuje się jak w przykładzie 8, z tą różnicą, że po 14 godzinach dodaje się do mieszaniny 3 reakcyjnej 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze
31 1 31 około 323 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 4 h głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie N-CH2-P-CH2-N (67%) i N-CH2-P-H (23%). Na widmach nie stwierdzono już obecności kwasu aminometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego. Następnie dodaje się jeszcze 37% formalinę 3 (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 323 K przez 9 h i uzyskuje roztwór poliamfolitu, zawierający w sumie 97% polimerów, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temperaturze końcowej 373 K.
31 1
Uzyskuje się poliamfolit w postaci białego proszku, której strukturę potwierdzają widma 1H i 31P{1H} NMR.
P r z y k ł a d 19
Postępuje się jak w przykładzie 9, z tą różnicą, że po 14 h dodaje się do mieszaniny reakcyjnej 3
37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 323 K
31 1 31 i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 4 h głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie
N-CH2-P-CH2-N (73%), N-CH2-P-H (22%). Na widmach nie stwierdza się już obecności kwasu ami3 nometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego. Następnie dodaje się jeszcze 37% formalinę (4,10 cm ,
PL 220 887 B1
0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 323 K przez 9 h i uzyskuje roztwór poliamfolitu, zawierający w sumie 98% polimerów, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temperaturze końcowej 373 K. Uzyskuje się
31 1 poliamfolit w postaci białego proszku, której strukturę potwierdzają widma H i P{ H} NMR.
P r z y k ł a d 20
Postępuje się jak w przykładzie 10, z tą różnicą, że po 14 godzinach dodaje się do mieszaniny 3 reakcyjnej 37% formalinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze
31 1 31 około 323 K i wykonuje się serie pomiarów przy pomocy widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR, z których wynika, że po 4 godzinach głównymi składnikami mieszaniny są polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie N-CH2-P-CH2-N (76%), N-CH2-P-H (17%). Na widmach nie stwierdza się już obecności kwasu aminometylofosfinowego ani kwasu fosfinowego. Następnie dodaje się jeszcze 37% for3 malinę (4,10 cm3, 0,055 mola), po czym mieszaninę utrzymuje się w temperaturze około 323 K przez 9 godzin i uzyskuje roztwór poliamfolitu, zawierający w sumie 97% polimerów, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temperaturze końcowej 1
373 K. Uzyskuje się poliamfolit w postaci białego proszku, której strukturę potwierdzają widma 1H 31P{1H} NMR.
P r z y k ł a d 21 3
W pierwszym etapie, do roztworu fosfinianu amonu (8,30 g, 0,10 mola) w wodzie (10 cm3) 3 wkrapla się ostrożnie w temperaturze około 300-310 K 12M kwas solny (5,0 cm , 0,060 mola), a na3 stępnie 37% formalinę (8,2 cm3, 0,11 mola). Mieszaninę ogrzewa się do temperatury około 353 K
31 1 31 przez godzinę, a następnie wykonuje pomiary widm H, P{ H} i P NMR, z których wynika, że po godzinie głównymi składnikami mieszaniny są pochodne kwasu aminometylofosfinowego (78%) i polimeryczne aminometylofosfiniany, zawierające ugrupowanie N-CH2-P-CH2-N (14%). Dalsze ogrzewanie tej mieszaniny nie zmienia już jej składu, wobec tego dodaje się drugą porcję 37% formaliny 3 (8,2 cm3, 0,11 mola), a następnie mieszaninę ogrzewa się do temperatury około 353 K przez 3 godziny, co powoduje powstanie gęstego żelu. Pobiera się 0,10 g żelu i zawiesza w 0,60 g wody, a następ1 31 1 31 nie wykonuje się pomiary widm 1H, 31P{1H} i 31P NMR roztworu znad żelu, z których wynika, że w części rozpuszczalnej nie ma kwasu fosfinowego ani kwasów aminometylofosfinowych, a jedynie niewielka ilość (o czym świadczy mały stosunek sygnałów do szumów) polimerycznych związków, zawierających ugrupowanie N-CH2-P-CH2-N (99%), co wskazuje na to, że wszystkie substraty wbudowały się 3 w strukturę żywicy. Do żelu dodaje się trzecią porcję 37% formaliny (8,2 cm3, 0,11 mola), a następnie mieszaninę ogrzewa się do temperatury około 353 K przez 6 godzin, co powoduje utwardzenie żelu, z którego oddestylowuje się wodę i inne lotne składniki pod ciśnieniem około 20 hPa z łaźni wodnej o temperaturze końcowej 373 K. Uzyskuje się poliamfolit w postaci białego proszku, której strukturę po31 1 twierdza widmo P{ H} NMR (w D2O) [AK010], na którym widać tylko szerokie sygnały od 15 do 18 ppm.
P r z y k ł a d 22 3
Do wody (10 g) dodaje się 14M wodny roztwór amoniaku (7,1 cm3, 0,10 mola), następnie wkra3 pla się ostrożnie, w temperaturze około 300-310 K, 12M kwas solny (7,5 cm3, 0,090 mola), po czym
50% kwas fosfinowy (15,6 cm3, 0,15 mola) i 37% formalinę (9,0 cm3, 0,12 mola), a następnie mieszaninę ogrzewa się w temperaturze około 353 K przez godzinę, co powoduje fosfinometylowanie amo31 niaku, co potwierdza widmo 31P NMR, na którym widać główne sygnały przy 10-11 ppm [N-CH2-P(O)(OH)H]; oraz widmo 1H NMR, na którym widać sygnały przy 8,03 i 6,20 ppm (P-H) i przy
3,35/3,32 ppm (N-CH2-P). Po tym czasie mieszaninę ochładza się do temperatury około 300-310 K, 3 dodaje kroplami drugą porcję 37% formaliny (9,0 cm3, 0,12 mola) i kontynuuje się ogrzewanie przez godziny w temperaturze około 353 K, dzięki czemu zachodzi usieciowanie produktu i częściowe wytrącenie żelowatego poliamfolitu. Widmo 31P NMR wykonane z rozpuszczalnej części poliamfolitu zawiera głównie sygnały przy około 16 ppm, które pochodzą od fragmentu N-CH2-P-CH2-N. Następnie 3 kolejny raz chłodzi się mieszaninę do około 300-310 K, dodaje trzecią porcję 37% formaliny (9,0 cm , 0,12 mola) i ponownie ogrzewa w temperaturze około 353 K przez 4 h, co powoduje utwardzenie po31 liamfolitu przez dosieciowanie polimeru, co potwierdza widmo P NMR (wykonane z roztworu znad nierozpuszczalnej żywicy), na którym widać tylko resztkowe sygnały od substratów i produktów, przy bardzo niskim stosunku sygnałów do szumu, co wskazuje na to, że wszystkie składowe zostały wbudowane do żywicy. Utworzony produkt chłodzi się do temp. pokojowej i oddestylowuje się lotne składniki pod zmniejszonym ciśnieniem 20 hPa z łaźni o temperaturze końcowej 373 K. Po tych operacjach produkt dodatkowo suszy się na szalce Petriego na elektrycznej płytce grzejnej o temperaturze około 333-353 K i otrzymuje w wyniku produkt, który zawiera 6,6 mmola/g grup aminowych i 9,9 mmola/g
PL 220 887 B1 grup fosfinowych, a masa cząsteczkowa i wzór sumaryczny najmniejszego, możliwego do napisania mera wynosi M = 304,1 dla C6H15N2O6P3.
P r z y k ł a d 23
Postępuje się jak w przykładzie 22 z tą różnicą, że nie dodaje się kwasu solnego, otrzymuje się poliamfolit w postaci bezbarwnej lepkiej masy rozpuszczalnej w wodzie.
P r z y k ł a d 24
Postępuje się jak w przykładzie 22 z tą różnicą, że zamiast 50% roztworu kwasu fosfinowego stosuje się roztwór sporządzony z jednowodnego podfosforynu sodu (15,9 g, 0,15 mola), wody (15 g) 3 i 12M kwasu solnego (12,5 cm3, 0,15 mola), otrzymuje się poliamfolit, o właściwościach zbliżonych do poliamfolitu uzyskanego w przykładzie 22.
P r z y k ł a d 25
Postępuje się analogicznie jak w przykładzie 22, z tą różnicą, że zamiast formaliny stosuje się trioksan (w trzech porcjach po 3,6 g, 0,12 mola), otrzymuje się poliamfolit, o właściwościach zbliżonych do poliamfolitu uzyskanego w przyk. 22.
P r z y k ł a d 26
Postępuje się analogicznie jak w przykładzie 22, z tą różnicą, że zamiast formaliny stosuje się paraform (w trzech porcjach po 3,6 g, 0,12 mola), otrzymuje się poliamfolit, o właściwościach zbliżonych do poliamfolitu uzyskanego w przyk. 22.
P r z y k ł a d 27 3
Do wody (20 g) dodaje się 14M wodny roztwór amoniaku (14,2 cm3, 0,20 mola), następnie 3 wkrapla się ostrożnie, w temperaturze około 300-310 K, 12M kwas solny (15,0 cm3, 0,180 mola), po czym 50% kwas fosfinowy (31,2 cm3, 0,30 mola) i 37% formalinę (18,0 cm3, 0,24 mola), a następnie mieszaninę ogrzewa się w temperaturze około 353 K przez godzinę. Po tym czasie mieszaninę ochła3 dza się do temperatury około 300-310 K, dodaje kroplami drugą porcję 37% formaliny (18,0 cm3, 0,24 mola) i kontynuuje się ogrzewanie przez 2 godziny w temperaturze około 353 K, dzięki czemu zachodzi usieciowanie produktu. Na widmie 31P NMR widać głównie poszerzony sygnał przy 17,5-18,7 ppm pochodzący od fragmentu N-CH2-P-H, poszerzony sygnał przy 23,1-23,6 ppm pochodzą od fragmentu N-CH2-P-CH2-N oraz szeroki sygnał przy 35,7-35,9 ppm pochodzący od fragmentu
N-CH2-P-CH2-OH. Mieszaninę chłodzi się kolejny raz do około 300-310 K, dodaje trzecią porcję 37% 3 formaliny (18,0 cm3, 0,24 mola) i ponownie ogrzewa w temperaturze około 353 K przez 6 godzin. Mieszaninę chłodzi się do temperatury około 298 K i oddestylowuje się lotne składniki pod zmniejszonym ciśnieniem 20 hPa z łaźni o początkowej temperaturze 293 K, a końcowej 373 K, w wyniku czego uzyskuje się około 36 g poliamfolitu w postaci białej semikrystalicznej pozostałości, którego strukturę potwierdzają widma NMR [WG11872C]: 31P{1H} NMR (D2O, δ [ppm]): poszerzony sygnał przy 17,2-19,5 ppm pochodzący od polimerycznego fragmentu N-CH2-P-CH2-N oraz poszerzony sygnał przy 30-35 ppm pochodzący od polimerycznego fragmentu N-CH2-P-CH2-OH, ponadto na widmie widoczne są ślady kwasu fosfonowego (<1%), ślady HO-CH2-P(O)OH-CH2OH (<2%) oraz około 5% HOCH2-P(O)HOH. 1H NMR (D2O, δ [ppm]): 2,95 (bs) (CH3N od produktów ubocznych), 3,1-4,2 ppm szeroki sygnał z nałożonymi na nim 3 dubletami: 3,60 (d, J=5,4 Hz), 3,62 (d, J=5,4 Hz), 3,70 (d, J=5,2 Hz) pochodzącymi od CH2P, 6,78 ppm (dt, H-P-CH2, J=552, J=2,3 Hz), 7,0 ppm (bdt, H-P-CH2, J=567 Hz, J=nieozn.).
Claims (1)
- Poliamfolit, będący pochodną kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku o wzorze 1,PL 220 887 B1
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL402476A PL220887B1 (pl) | 2013-01-18 | 2013-01-18 | Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL402476A PL220887B1 (pl) | 2013-01-18 | 2013-01-18 | Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL402476A1 PL402476A1 (pl) | 2013-07-08 |
| PL220887B1 true PL220887B1 (pl) | 2016-01-29 |
Family
ID=48748852
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL402476A PL220887B1 (pl) | 2013-01-18 | 2013-01-18 | Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL220887B1 (pl) |
-
2013
- 2013-01-18 PL PL402476A patent/PL220887B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL402476A1 (pl) | 2013-07-08 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Nichol et al. | Biodegradable alanine and phenylalanine alkyl ester polyphosphazenes as potential ligament and tendon tissue scaffolds | |
| EP3022247B1 (en) | Flame retarded thermoplastic moulding composition | |
| CN114258415A (zh) | 含膦酸酯阻燃剂的聚合物配混物 | |
| KR20090067663A (ko) | 비할로겐 난연 열가소성 폴리우레탄 복합 수지 조성물 | |
| US9938381B2 (en) | Flame retardant polyamide compositions | |
| KR101462309B1 (ko) | 아미노기 함유 인산에스테르 난연제 및 그 제조방법 | |
| CN105026447B (zh) | 硬质体、制备方法、应用和组合物 | |
| CN119331214B (zh) | 一种非添加型氮磷铈协同阻燃聚氨酯弹性体的制备方法 | |
| TW201912771A (zh) | 用於聚合物組成物的增效性阻燃劑組合及其用途 | |
| US9624357B2 (en) | Polycyclohexylenedimethylene terephthalate resin composition with high color resistance and heat resistance comprising a non-halogen flame retardant and a non-halogen flame retardant aid | |
| TW201920633A (zh) | 用於聚合物組成物之阻燃劑組合及其用途 | |
| US10377874B2 (en) | Bio-based fire retardant derived from polyacrylamide grafted starch and use thereof | |
| KR101771781B1 (ko) | 폴리아미드에스테르 수지, 이의 제조방법 및 이를 포함하는 성형품 | |
| PL220887B1 (pl) | Poliamfolit pochodny kwasu dimetylofosfinowego i amoniaku | |
| CN103619994B (zh) | 具有阻燃膦酸酯的硬化环氧树脂的制备 | |
| CN119894969A (zh) | 阻燃热塑性聚氨酯组合物 | |
| JP2021516269A (ja) | 硫黄及びリン含有ポリマー並びにその生成方法 | |
| CN110105395B (zh) | 一种吡啶阻燃剂及其制备方法和应用 | |
| CN114364656A (zh) | 二胺化合物和其制造方法 | |
| TWI622574B (zh) | 亞二甲苯二胺組成物及聚醯胺樹脂之製造方法 | |
| RU2391362C2 (ru) | Полиуретановая композиция для покрытий | |
| CN113185551A (zh) | 超支化含磷阻燃剂以及阻燃pla材料的制备方法 | |
| CN103484053A (zh) | 一种导电布用热熔胶的制备方法 | |
| Finocchiaro et al. | Synthesis and characterization of novel polyamides from new aromatic phosphonate diamine monomer | |
| JP7585359B2 (ja) | 反応性末端基を有するポリベンズイミダゾールオリゴマー |