PL222395B1 - Sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym - Google Patents
Sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowymInfo
- Publication number
- PL222395B1 PL222395B1 PL403929A PL40392913A PL222395B1 PL 222395 B1 PL222395 B1 PL 222395B1 PL 403929 A PL403929 A PL 403929A PL 40392913 A PL40392913 A PL 40392913A PL 222395 B1 PL222395 B1 PL 222395B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- bioremediation
- parts
- environment
- bacterial strain
- oil
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 33
- 239000002283 diesel fuel Substances 0.000 title claims description 9
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims description 18
- CBENFWSGALASAD-UHFFFAOYSA-N Ozone Chemical compound [O-][O+]=O CBENFWSGALASAD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 13
- 235000015112 vegetable and seed oil Nutrition 0.000 claims description 12
- 239000008158 vegetable oil Substances 0.000 claims description 12
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 claims description 11
- 239000008103 glucose Substances 0.000 claims description 11
- 229930195733 hydrocarbon Natural products 0.000 claims description 11
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 claims description 10
- 150000002430 hydrocarbons Chemical class 0.000 claims description 10
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 claims description 10
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 claims description 10
- 239000003208 petroleum Substances 0.000 claims description 8
- 239000008399 tap water Substances 0.000 claims description 8
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 claims description 8
- 241000194106 Bacillus mycoides Species 0.000 claims description 7
- 235000019484 Rapeseed oil Nutrition 0.000 claims description 7
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 5
- 241000192023 Sarcina Species 0.000 claims description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 4
- 239000003921 oil Substances 0.000 claims description 2
- 235000019198 oils Nutrition 0.000 claims description 2
- 239000002351 wastewater Substances 0.000 claims description 2
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 claims 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 9
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 8
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 6
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 6
- 239000004215 Carbon black (E152) Substances 0.000 description 5
- 238000006065 biodegradation reaction Methods 0.000 description 5
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 5
- 238000006385 ozonation reaction Methods 0.000 description 5
- 125000005575 polycyclic aromatic hydrocarbon group Chemical group 0.000 description 5
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 5
- 241001656677 Gordonia alkanivorans Species 0.000 description 3
- 241000589516 Pseudomonas Species 0.000 description 3
- 241001037421 Sarcina sp. Species 0.000 description 3
- 239000010779 crude oil Substances 0.000 description 3
- 229910000397 disodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 3
- 235000019800 disodium phosphate Nutrition 0.000 description 3
- 239000000383 hazardous chemical Substances 0.000 description 3
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 description 2
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000985506 Penicillium meridianum Species 0.000 description 2
- 235000019486 Sunflower oil Nutrition 0.000 description 2
- BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L disodium hydrogen phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].OP([O-])([O-])=O BNIILDVGGAEEIG-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- DCAYPVUWAIABOU-UHFFFAOYSA-N hexadecane Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCCC DCAYPVUWAIABOU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 2
- 239000002600 sunflower oil Substances 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PAWQVTBBRAZDMG-UHFFFAOYSA-N 2-(3-bromo-2-fluorophenyl)acetic acid Chemical compound OC(=O)CC1=CC=CC(Br)=C1F PAWQVTBBRAZDMG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000590020 Achromobacter Species 0.000 description 1
- 241000589291 Acinetobacter Species 0.000 description 1
- 241000588625 Acinetobacter sp. Species 0.000 description 1
- 241000228245 Aspergillus niger Species 0.000 description 1
- 241001465318 Aspergillus terreus Species 0.000 description 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000186216 Corynebacterium Species 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 241000589565 Flavobacterium Species 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- 241001337904 Gordonia <angiosperm> Species 0.000 description 1
- 241000192041 Micrococcus Species 0.000 description 1
- 241000191938 Micrococcus luteus Species 0.000 description 1
- 241001569439 Monilinia sp. Species 0.000 description 1
- 241000187654 Nocardia Species 0.000 description 1
- 241000589540 Pseudomonas fluorescens Species 0.000 description 1
- 241000187561 Rhodococcus erythropolis Species 0.000 description 1
- 241000168435 Rhodococcus wratislaviensis Species 0.000 description 1
- PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L Sodium Sulfate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]S([O-])(=O)=O PMZURENOXWZQFD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 1
- -1 aromatic polycyclic hydrocarbons Chemical class 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- 239000003876 biosurfactant Substances 0.000 description 1
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 description 1
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000003344 environmental pollutant Substances 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 1
- 239000003630 growth substance Substances 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 230000002503 metabolic effect Effects 0.000 description 1
- VUZPPFZMUPKLLV-UHFFFAOYSA-N methane;hydrate Chemical compound C.O VUZPPFZMUPKLLV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 1
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000719 pollutant Toxicity 0.000 description 1
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 239000010865 sewage Substances 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Purification Treatments By Anaerobic Or Anaerobic And Aerobic Bacteria Or Animals (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Processing Of Solid Wastes (AREA)
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym.
Znane są sposoby bioremediacji gleby zanieczyszczonej substancjami ropopochodnymi wykorzystujące potencjał metaboliczny mikroorganizmów, które przyswajając zanieczyszczenia jako źródło węgla powodują ich przekształcenie do prostszych związków - organicznych lub nieorganicznych, terminalnie do dwutlenku węgla i wody. W procesach tych zaangażowane są najczęściej bakterie z rodzaju Bacillus, Achromobacter, Acinetobacter, Flavobacterium, Nocardia, Gordonia, Micrococcus Pseudomonas, Corynebacterium l.
I tak w czasopiśmie Journal of Hazardous Materials 2010 r., t. 176, s. 27-34 opisano wykorzystanie szczepów bakterii Acinetobacter sp. i Pseudomonas oraz konsorcjum szczepów Gordonia alkanivorans i Rhodococcus erythropolis do biodegradacji ogólnej puli węglowodorów ropy naftowej.
W opisie patentowym PL 206 565 ujawniono biopreparat do degradacji węglowodorów cięższych frakcji ropy naftowej, który otrzymuje się z wyselekcjonowanych ze środowiska skażonego szczepów bakterii Gordonia alkanivorans S7, Pseudomonas fluorescens SI-3 i Bacillus substilis P-31.2 w drodze namnażania tych bakterii w formie mieszaniny na pożywce zawierającej glukozę lub sacharozę, azotan lub siarczan amonu, wodorofosforan sodu, substancje wzrostowe oraz dodatek węglowodorów cięższych frakcji ropy naftowej, w warunkach tlenowych.
Natomiast w opisie patentowym PL 206 566 ujawniono biopreparat do degradacji węglowodorów oleju napędowego, który otrzymuje się z wyselekcjonowanych ze środowiska skażonego szczepów bakterii Gordonia alkanivorans S7, Micrococcus luteus A.32.1 i Pseudomonas circulans Bp w drodze namnożenia tych szczepów na pożywce w warunkach tlenowych.
W czasopiśmie Bioresource Technology 2003 r., t. 87, s. 81-86 opisano wykorzystanie szczepu pleśni Aspergillus niger ATCC 9642 do degradacji heksadekanu w procesie solid state.
Z czasopisma Biodegradation 2008 r., t. 19, s. 247-257 jest znane wykorzystanie szczepu grzyba Monilinia sp. do degradacji aromatycznych węglowodorów policyklicznych zanieczyszczających glebę.
W czasopiśmie International Biodeterioration & Biodegradation 2011 r., t. 65, s. 649-655 opisano wykorzystanie szczepów grzybów Penicillium chermesinum, Penicillium indicum i Aspergillus terreus w oczyszczaniu gleby, natomiast w czasopiśmie Journal of soils and sediments 2012 r., t. 12, s. 1350-1359 ujawniono wykorzystanie immobilizowanych bakterii z resztek roślin i biowęgla jako nośnika do degradacji policyklicznych węglowodorów aromatycznych.
W czasopiśmie Journal of Hazardous Materials t. 151, s. 155-163, 2008 opisano wykorzystanie biosurfaktantów i ramnolipidów do zwiększenia efektywności bioremediacji środowisk płynnych i gleby.
W literaturze można znaleźć doniesienia o wykorzystaniu olejów roślinnych do wspomagania procesu bioremediacji.
I tak w czasopiśmie Chemosphere No 58 291-298, 2005 opisano wykorzystanie oleju słonecznikowego jako ekologicznego rozpuszczalnika do usuwania wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych z matrycy gleby.
W czasopiśmie Chemosphere No 62 pp 780-787, 2006 opisano wykorzystanie oleju słonecznikowego do usuwania wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych z dwóch rodzajów gleby umieszczonych w kolumnach laboratoryjnych.
W czasopiśmie Journal of Hazardous Materials No 143 pp 372-378, 2007 opisano wykorzystanie oleju roślinnego jako nietoksycznego i biodegradowalnego rozpuszczalnika do ekstrakcji wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych z zanieczyszczonych gleb.
Z czasopisma International Biodeterioration & Biodegradation No 59 s. 111-118, 2007 jest znane wykorzystanie oleju rzepakowego do degradacji wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych przez szczep bakterii Rhodococcus wratislaviensis.
W kolekcji Instytutu Biochemii Technicznej Politechniki Łódzkiej znajduje się szczep bakterii Bacillus mycoides oznaczony symbolem NS1020 oraz szczep bakterii Sarcina sp. oznaczony symbolem OA10, wyizolowane ze ścieków rafineryjnych.
Sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym, w drodze wprowadzenia do oczyszczanego środowiska namnożonego inokulum szczepu bakterii o zdolności degradacji węglowodorów i prowadzenia hodowli bakterii w warunkach tlenowych, wspomagany olejem roślinnym, korzystnie rzepakowym, według wynalazku charakteryzuje się tym, że w procesie bioremediacji stosuje się inokulum szczepu bakterii Bacillus mycoides NS1020 lub szczepu bakterii
PL 222 395 B1
Sarcina sp OA10, wyizolowanego ze ścieków rafineryjnych, które namnaża się w drodze hodowli wstrząsanej na podłożu płynnym o składzie w częściach wagowych: 20 części glukozy, 20 części ek straktu drożdżowego, 15 części Na2HPO4, 25 części NH4Cl, 1000 części wody wodociągowej, o pH 6,5 w czasie 48 godzin w temperaturze 25-30°C, przy czym do zanieczyszczonego środowiska wprowadza się wpierw, w przeliczeniu na 10 g substancji ropopochodnych, 2 g glukozy, 2 g ekstraktu drożdżowego, 1,5 g Na2HPO4, 2,5 g NH4Cl, sterylizuje oczyszczane środowisko, następnie wprowadza się olej roślinny poddany procesowi ozonowania przez okres od 1 minuty do 4 godzin przy natężeniu przepływu ozonu 0,1-1 dm /min i stężeniu ozonu 1-300 g/m , użyty w ilości 150-1500 g na 1,5 kg substancji ropopochodnych zawartych w oczyszczanym środowisku, prowadzi proces bioremediacji w warunkach tlenowych i między 2-7 dniem bioremediacji z udziałem oleju wprowadza się do oczysz3 czanego środowiska namnożone inokulum szczepu bakterii w ilości 0,1-2,5 cm /kg oczyszczanego środowiska i kontynuuje proces bioremediacji. Bioremediację prowadzi się w temperaturze 25-30°C w łącznym czasie 14 dni.
Użycie w procesie bioremediacji kultur bakterii łącznie z olejem roślinnym poddanym procesowi ozonowania umożliwia zwiększenie wydajności biodegradacji o około 55-65% w porównaniu z wydajnością oraz czasem bioremediacji prowadzonej jedynie z udziałem kultur bakterii oraz o około 30-42% w porównaniu z wydajnością oraz czasem bioremediacji prowadzonej z użyciem oleju roślinnego niepoddanego procesowi ozonowania.
Przedmiot wynalazku ilustrują poniższe przykłady.
P r z y k ł a d I
Przygotowano inokulum szczepu Bacillus mycoides NS1020 w drodze hodowli wstrząsanej na wysterylizowanym, w temperaturze 121°C w czasie 20 minut, podłożu płynnym o składzie w częściach wagowych: 20 części glukozy, 20 części ekstraktu drożdżowego, 15 części Na2HPO4, 25 części NH4CI, 1000 części wody wodociągowej, pH 6,5 w czasie 48 godzin w temperaturze 25°C.
Do kolby o pojemności 1 l zawierającej 100 ml wody wodociągowej dodano: 10 g oleju napędowego, 2 g glukozy, 2 g ekstraktu drożdżowego, 1,5 g Na2HPO4, 2,5 g NH4CI i sterylizowano w temperaturze 121°C przez 2 minuty, po czym dodano olej rzepakowy poddany procesowi ozonowania przez okres 10 minut przy natężeniu przepływu ozonu 0,6 dm /minutę i stężeniu ozonu 50 g/m , w ilości 500 g na 1,5 kg związków ropopochodnych zawartych w wodzie. Proces bioremediacji prowadzono w warunkach tlenowych w temperaturze 25°C na wstrząsarce mimośrodowej o amplitudzie drgań 4,5 cm przy szybkości obrotów 200 min- . Po 3 dniach szczepiono zawartość kolby szczepem bakterii Bacillus mycoides NS1020 i dalej prowadzono proces bioremediacji w warukach tlenowych.
Po 14 dniach prowadzenia procesu stwierdzono 86%-owy ubytek ogólnej puli węglowodorów tj. o 55% większy niż w przypadku prowadzenia próby bioremediacji wyłącznie z udziałem bakterii, jak również o 30% większy ubytek w przypadku prowadzenia próby bioremediacji z udziałem oleju roślinnego niepoddanego procesowi ozonowania.
P r z y k ł a d II
Inokulum szczepu Bacillus mycoides NS1020 przygotowano jak w przykładzie I, ale w temperaturze 30°C.
Do kolby o pojemności 1 l zawierającej 100 ml wody wodociągowej dodano: 10 g oleju napędowego, 2 g glukozy, 2 g ekstraktu drożdżowego, 1,5 g Na2HPO4, 2,5 g NH4CI i sterylizowano w temperaturze 121°C przez 20 minut, dodano olej rzepakowy poddany procesowi ozonowania przez okres 45 minut przy natężeniu przepływu ozonu 0,8 dm3/minutę i stężeniu ozonu 150 g/m3, w ilości 1500 g na
1,5 kg związków ropopochodnych. Proces prowadzono w warunkach tlenowych, w temperaturze 25°C na wstrząsarce mimośrodowej o amplitudzie drgań 4,5 cm przy szybkości obrotów 200 min- . Po 7 dniach szczepiono kolbę szczepem bakterii Bacillus mycoides NS1020 i dalej prowadzono proces bioremediacji w warunkach tlenowych.
Po 14 dniach prowadzenia procesu stwierdzono 92%-owy ubytek ogólnej puli węglowodorów tj. o 62% większy niż w przypadku prowadzenia bioremediacji wyłącznie z udziałem bakterii i o 36% większy niż w przypadku prowadzenia bioremediacji z udziałem oleju roślinnego niepoddanego proc esowi ozonowania.
P r z y k ł a d III
Przygotowano inokulum szczepu Sarcina sp. OA10 w drodze hodowli wstrząsanej na wysterylizowanym, w temperaturze 121°C w czasie 20 minut, podłożu płynnym o składzie w częściach wagowych: 20 części glukozy, 20 części ekstraktu drożdżowego, 15 części Na2HPO4, 25 części NH4CI, 1000 części wody wodociągowej, o pH 6,5 w czasie 48 godzin w temperaturze 25°C.
PL 222 395 B1
Do kolby o pojemności 1 l zawierającej 100 ml wody wodociągowej dodano: 10 g oleju napędowego, 2 g glukozy, 2 g ekstraktu drożdżowego, 1,5 g Na2HPO4, 2,5 g NH4CI i sterylizowano w temperaturze 121°C przez 20 minut, dodano olej rzepakowy poddany procesowi ozonowania przez okres 8 minut przy natężeniu przepływu ozonu 0,6 dm /minutę i stężeniu ozonu 300 g/m , w ilości 750 g na 1,5 kg związków ropopochodnych. Proces prowadzono w warunkach tlenowych w temperaturze 25°C na wstrząsarce mimośrodowej o amplitudzie drgań 4,5 cm przy szybkości obrotów 200 min- . Po 7 dniach szczepiono kolbę szczepem bakterii Sarcina sp OA10 i dalej prowadzono proces bioremediacji w warunkach tlenowych.
Po 14 dniach prowadzenia procesu stwierdzono 83%-owy ubytek ogólnej puli węglowodorów tj. o 56% większy niż w przypadku prowadzenia bioremediacji wyłącznie z udziałem bakterii, jak ró wnież o 32% większy niż w przypadku prowadzenia bioremediacji z udziałem oleju roślinnego niepoddanego procesowi ozonowania.
P r z y k ł a d IV
Inokulum szczepu Sarcina sp. OA10 przygotowano jak w przykładzie III, ale w temperaturze 30°C.
Do kolby o pojemności 1 l zawierającej 100 ml wody wodociągowej dodano: 10 g oleju napędowego, 2 g glukozy, 2 g ekstraktu drożdżowego, 1,5 g Na2HPO4, 2,5 g NH4CI i sterylizowano w temperaturze 121°C przez 20 minut, dodano olej rzepakowy poddany procesowi ozonowania przez okres
180 minut przy natężeniu przepływu ozonu 0,1 dm /minutę i stężeniu ozonu 250 g/m , w ilości 1000 g na 1,5 kg związków ropopochodnych. Proces prowadzono w warunkach tlenowych w temperaturze
25°C na wstrząsarce mimośrodowej o amplitudzie drgań 4,5 cm przy szybkości obrotów 200 min- . Po 2 dniach szczepiono zawartość kolby szczepem bakterii Sarcina sp OA10 i dalej prowadzono proces bioremediacji w warunkach tlenowych.
Po 14 dniach prowadzenia procesu stwierdzono 90%-owy ubytek ogólnej puli węglowodorów tj. o 60% większy niż w przypadku prowadzenia bioremediacji wyłącznie z udziałem bakterii i o 42% większy niż w przypadku prowadzenia bioremediacji z udziałem oleju roślinnego niepoddanego procesowi ozonowania.
Claims (2)
- Zastrzeżenie patentoweSposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym, w drodze wprowadzenia do oczyszczanego środowiska namnożonego inokulum szczepu bakterii o zdolności degradacji węglowodorów i prowadzenia hodowli bakterii w warunkach tlenowych, wspomagany ol ejem roślinnym, korzystnie rzepakowym, znamienny tym, że w procesie bioremediacji stosuje się inokulum szczepu bakterii Bacillus mycoides NS1020 lub szczepu bakterii Sarcina sp OA10, wyizolowanego ze ścieków rafineryjnych, które namnaża się w drodze hodowli wstrząsanej na podłożu płynnym o składzie w częściach wagowych: 20 części glukozy, 20 części ekstraktu drożdżowego, 15 części Na2HPO4, 25 części NH4CI, 1000 części wody wodociągowej, o pH 6,5 w czasie 48 godzin w temperaturze 25-30°C, przy czym do zanieczyszczonego środowiska wprowadza się wpierw, w przeliczeniu na 10 g substancji ropopochodnych, 2 g glukozy, 2 g ekstraktu drożdżowego, 1,5 g Na2HPO4, 2,5 gNH4CI, sterylizuje oczyszczane środowisko, następnie wprowadza się olej roślinny poddany procesowi 3 ozonowania przez okres od 1 minuty do 4 godzin przy natężeniu przepływu ozonu 0,1-1 dm /min 3 i stężeniu ozonu 1-300 g/m3, użyty w ilości 150-1500 g na 1,5 kg substancji ropopochodnych zawartych w oczyszczanym środowisku, prowadzi proces bioremediacji w warunkach tlenowych i między
- 2-7 dniem bioremediacji z udziałem oleju wprowadza się do oczyszczanego środowiska namnożone 3 inokulum szczepu bakterii w ilości 0,1-2,5 cm /kg oczyszczanego środowiska i kontynuuje proces bioremediacji, przy czym bioremediację prowadzi się w temperaturze 25-30°C w łącznym czasie 14 dni.Departament Wydawnictw UPRPCena 2,46 zł (w tym 23% VAT)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL403929A PL222395B1 (pl) | 2013-05-17 | 2013-05-17 | Sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL403929A PL222395B1 (pl) | 2013-05-17 | 2013-05-17 | Sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL403929A1 PL403929A1 (pl) | 2014-11-24 |
| PL222395B1 true PL222395B1 (pl) | 2016-07-29 |
Family
ID=51902469
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL403929A PL222395B1 (pl) | 2013-05-17 | 2013-05-17 | Sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL222395B1 (pl) |
-
2013
- 2013-05-17 PL PL403929A patent/PL222395B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL403929A1 (pl) | 2014-11-24 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Li et al. | Waste water produced from an oilfield and continuous treatment with an oil-degrading bacterium | |
| Gallego et al. | Biodegradation of oil tank bottom sludge using microbial consortia | |
| Obayori et al. | Differential degradation of crude oil (Bonny Light) by four Pseudomonas strains | |
| JP5251003B2 (ja) | 潤滑油分解微生物および微生物コンソーシアム、ならびにそれらを用いた潤滑油汚染土壌の浄化方法 | |
| Ismail et al. | Bacterial degradation of the saturate fraction of Arabian light crude oil: biosurfactant production and the effect of ZnO nanoparticles | |
| Mnif et al. | Biodegradation of phenanthrene by a bacterial consortium enriched from Sercina oilfield | |
| Heydarnezhad et al. | Optimizing toluene degradation by bacterial strain isolated from oil-polluted soils | |
| RU2053204C1 (ru) | Способ очистки объектов окружающей среды от нефтепродуктов | |
| Shaieb et al. | Studies on crude oil degrading bacteria isolated from Libyan desert | |
| Luo et al. | Characterization of a novel diesel oil-degrading Pseudomonas sp. strain F4 | |
| KR101710044B1 (ko) | 유류 분해능을 가지는 신규 슈도모나스 속 sdy3 균주 및 이를 이용한 유류 분해 방법 | |
| Benchouk et al. | Petroleum-hydrocarbons biodegradation by Pseudomonas strains isolated from hydrocarbon-contaminated soil | |
| Gupta et al. | Role of biosurfactants in enhancing the microbial degradation of pyrene | |
| Jabbar et al. | Biodegradation of diesel contaminated soil using single bacterial strains and a mixed bacterial consortium | |
| KR20130100532A (ko) | 유류 오염물질 분해능을 갖는 슈도모나스 니트로덕션―ｏｃｔｏ１ 균주 및 이를 이용한 유류 오염물질 분해 방법 | |
| Yasin et al. | Bioremediation of polluted water with crude oil in South Baghdad power plant | |
| PL222395B1 (pl) | Sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym | |
| Aicha et al. | Characterization of indigenous and adapted hydrocarbon degrading bacteria isolated from landfill leachate from ain temouchent engineered landfill, Algeria | |
| PL222397B1 (pl) | Sposób bioremediacji gleby zanieczyszczonej olejem napędowym | |
| JP2007215403A (ja) | 微生物を用いた環境汚染物質の分解方法 | |
| PL222394B1 (pl) | Sposób bioremediacji środowiska wodnego zanieczyszczonego olejem napędowym | |
| Maiyadi et al. | Studies on the bioremediation potential of bacteria isolated from Diesel-contaminated soils in Kano | |
| JP4836206B2 (ja) | 油含有土壌の浄化方法およびそれに用いる微生物 | |
| PL222396B1 (pl) | Sposób bioremediacji gleby zanieczyszczonej olejem napędowym | |
| JP2009247279A (ja) | 新規水草根圏微生物 |