PL226609B1 - Zastosowanie polinukleotydu, zestaw starterów oraz sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus - Google Patents

Zastosowanie polinukleotydu, zestaw starterów oraz sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus

Info

Publication number
PL226609B1
PL226609B1 PL404497A PL40449713A PL226609B1 PL 226609 B1 PL226609 B1 PL 226609B1 PL 404497 A PL404497 A PL 404497A PL 40449713 A PL40449713 A PL 40449713A PL 226609 B1 PL226609 B1 PL 226609B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
gene
hyptf
staphylococcus
degree
sequence
Prior art date
Application number
PL404497A
Other languages
English (en)
Other versions
PL404497A1 (pl
Inventor
Michał Bukowski
Klaudia Polakowska
Weronika Helbin
Agnieszka Sitarska
Kinga Nytko
Benedykt Władyka
Original Assignee
Univ Jagiellonski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Jagiellonski filed Critical Univ Jagiellonski
Priority to PL404497A priority Critical patent/PL226609B1/pl
Priority to PCT/PL2014/050038 priority patent/WO2014209145A1/en
Publication of PL404497A1 publication Critical patent/PL404497A1/pl
Publication of PL226609B1 publication Critical patent/PL226609B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6813Hybridisation assays
    • C12Q1/6827Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism
    • C12Q1/683Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism involving restriction enzymes, e.g. restriction fragment length polymorphism [RFLP]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/156Polymorphic or mutational markers

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Wynalazek dotyczy sposobu określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus opartego na analizie polimorfizmu sekwencji wybranego genu.
W ostatnich latach opracowano i rozwinięto wiele metod identyfikacji i typowania izolatów bakterii z rodzaju Staphylococcus (gronkowiec). Wśród metod tych można wyróżnić dwie grupy: metody fenotypowe oraz genotypowe. Identyfikacja gatunków gronkowcowych metodami pierwszej grupy oparta jest na charakterystyce morfologicznej, właściwościach fizjologicznych oraz chemicznym składzie ściany komórkowej. Rezultaty otrzymywane za pomocą komercyjnych testów opartych na profilach reakcji biochemicznych oraz immunologicznych obarczone są pomyłkami z powodu zmiennej ekspresji niektórych cech fenotypowych oraz dwuznaczności w interpretacji wyników. Ogólna dokładność konwencjonalnych testów jest niska i mieści się w przedziale od 50 do 70%.
Spośród genotypowych metod taksonomicznych porównawcza hybrydyzacja DNA-DNA oraz analiza sekwencyjna genu kodującego 16S rRNA zdefiniowały gatunki w obrębie rodzaju Staphylococcus oraz rekomendowane są dla potwierdzenia wyników nowych metod, które wprowadzane są do powszechnego użycia (Takahashi et al. 1999). Do innych metod identyfikacji genetycznych należą m.in.: sondy genetyczne, hybrydyzacja typu dot-blot, rybotypowanie metodą hybrydyzacji typu Southern blot, fluorescencyjna hybrydyzacja in situ (FISH), amplifikacja metodą PCR i PCR gatunkowo-specyficzny (selektywny), PCR-RFLP - analiza polimorfizmu długości fragmentów restrykcyjnych (ang. restriction fragment length polymorphism) (Bentley et al. 1993; Kempf et al. 2000; Krimmer et al. 1999; Yugueros et al. 2000; Yugueros et al. 2001; Zakrzewska-Czerwinska et al. 1992). Od niedawna w celu filogenetycznej i taksonomicznej analizy prokariontów stosuje się porównanie sekwencji DNA genów kodujących wysoce konserwatywne białka, takie jak: białko szoku cieplnego HSP60 kodowane przez gen cpn60, enzym katalizujący kolejne inkorporacje drugiej i trzeciej glicyny do poprzecznego mostka w muropeptydzie kodowany przez gen femA, podjednostka β bakteryjnej polimerazy RNA kodowana przez gen rpoB, czynnik elongacji Tu niezbędny w tworzeniu łańcucha peptydowego kodowany przez gen tuf mangano-zależna oksydaza ponadtlenkowa (Mn-SOD) kodowana przez gen sodA (Blaiotta et al. 2005; Blaiotta et al. 2004; Ghebremedhin et al. 2008; Goh et al. 1996; Goh et al. 1997; Sivadon et al. 2005; Voytenko et al. 2006).
Celem wynalazku jest dostarczenie nowej, bardziej czułej i jednocześnie uniwersalnej, metody określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus oraz środków, które mogą być wykorzystane do jej realizacji.
Przedmiotem wynalazku jest zastosowanie polinukleotydu posiadającego sekwencję genu hyptf do określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus, przy czym gen hyptf koduje białko posiadające sekwencję aminokwasową przedstawioną jako Sekw. Id. Nr 2.
Korzystnie, określanie stopnia pokrewieństwa obejmuje analizę polimorfizmu restrykcyjnego. Korzystnie, gen hyptf posiada sekwencję nukleotydową przedstawioną jako Sekw. Id. Nr 1.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus charakteryzujący się tym, że izoluje się sekwencję genu hyptf z genomu typowanego szczepu bakteryjnego, porównuje się wyizolowaną sekwencję z odpowiadającą jej sekwencją genu hyptf ze znanego szczepu bakterii rodzaju Staphylococcus i określa stopień podobieństwa tych sekwencji, przy czym ustalony stopień podobieństwa sekwencji genu hyptf jest miarą pokrewieństwa pomiędzy typowanym szczepem bakteryjnym ze znanym szczepem bakterii z rodzaju Staphylococcus.
Korzystnie, gen hyptf koduje białko posiadające sekwencję aminokwasową przedstawioną jako Sekw. Id. Nr 2. Korzystnie, określanie stopnia pokrewieństwa obejmuje analizę polimorfizmu restrykcyjnego. Korzystnie, gen hyptf posiada sekwencję nukleotydową przedstawioną jako Sekw. Id. Nr 1. Korzystnie, sekwencję genu hyptf izoluje się techniką PCR wykorzystując jako startery oligonukleotydy wskazane w tabeli 1. Korzystnie, sposób według wynalazku obejmuje trawienie wyizolowanej sekwencji genu hyptf lub jego fragmentu enzymem restrykcyjnym wybranym z grupy obejmującej następujące enzymy restrykcyjne: TaiI, Tsp509I, AluI oraz MseI.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zestaw starterów do określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus techniką RFLP, który składa się z konsensusowych starterów wskazanych w tabeli 1 specyficznych dla genu hyptf bakterii z rodzaju Staphylococcus.
Wynalazek ujawnia nowe wykorzystanie locus genomowego hyptf w diagnostyce mikrobiologicznej a w szczególności do określania przynależności gatunkowej oraz analizy różnorodności
PL 226 609 B1 wewnątrzgatunkowej szczepów bakterii w obrębie rodzaju Staphylococcus. Przykładowo może ono opierać się o wykorzystanie reakcji PCR (ang. polymerase chain reaction) do otrzymania produktu na matrycy konserwatywnego locus genomowego, trawienia tego produktu enzymami restrykcyjnymi oraz analizy powstałego obrazu (RFLP, ang. restriction fragments length polymorphism) w celu determinacji przynależności gatunkowej. Analiza RFLP z odpowiednio dobranymi enzymami restrykcyjnymi pozwala również na analizę wewnątrzgatunkowej zmienności w obrębie rodzaju Staphylococcus.
Na Figurze 1 zaprezentowano zestaw obrazów RFLP otrzymanych dla 25 gatunków z rodzaju Staphylococcus z wykorzystaniem analizy polimorfizmu restrykcyjnego dla genu hyptf. Kolejność ścieżek dla poszczególnych enzymów restrykcyjnych: TaiI, Tsp509I, AluI, MseI.
P r z y k ł a d 1.
Określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus poprzez analizę RFLP genu hyptf
Materiały i metody
Szczepy bakteryjne
Wykorzystane szczepy bakteryjne z rodzaju Staphylococcus pochodziły częściowo z kolekcji własnej Zakładu Mikrobiologii (Wydział Biochemii, Biofizyki i Biotechnologii, Uniwersytet Jagielloński w Krakowie, Polska) a częściowo z kolekcji zagranicznych (pozyskane poprzez Instytut Immunologii i Terapii Doświadczalnej PAN we Wrocławiu, Polska).
Oznaczanie stężenia DNA
Stężenie otrzymanych wodnych roztworów DNA oznaczano poprzez pomiar absorbancji przy długościach fali 260 i 280 nm wykorzystując do tego spektrofotometr ND-1000 (Thermo Scientific, Wilmington, Stany Zjednoczone).
Izolacja DNA genomowego
Bakterie hodowano w 20 ml płynnej pożywki LB (Sigma Aldrich, Poznań, Poland) w 37°C przez 14 h. Z hodowli pobierano 2 ml i wirowano 2 min przy prędkości 5000 g. Pożywkę zlewano a osad bakteryjny zamrażano w -20°C. Po rozmrożeniu osad zawieszano w 200 pl buforu EC (6 mM Tris; 1 M NaCl; 100 mM EDTA; 0,5% Brij 58; 0,5% Sarkozyl; pH 7,6) do którego dodawano 1 pl RNazy A (Thermo Scientific, Schwerte, Germany) i 1 pl lizostafiny (Thermo Scientific). Tak przygotowaną próbkę inkubowano w 37°C przez 14 h. W kolejnych etapach oczyszczania wykorzystano zestaw Genomic Mini (A&A Biotechnology, Gdańsk, Polska) i postępowano zgodnie z załączonym przez producenta protokołem. W ostatnim etapie DNA eluowano 50 pl destylowanej i filtrowanej wody (ddH2O) oraz oznaczano jego stężenie.
Startery wykorzystane do reakcji PCR
Startery zostały z syntetyzowane i dostarczone przez firmę Genomed (Warszawa, Polska).
Tabela 1. Konsensusowe startery specyficzne dla genu hyptf bakterii z rodzaju Staphylococcus
Nazwa startera
1. GEN0MIC-SigEndDeg2RevB: 2 . GEN0MIC-SigEndDeg2RevA:
3. GENOMIC-SiglntDeglForA:
4. GENOMIC-SiglntDeglForB:
5. GENOMIC-SigExtraForA:
6. GENOMIC~SigExtraRevB:
7. GENOMlC-SigFinalRev:
Sekwencja
ΆθΆ 7\ *X*
RAATAJRNCKNKS GAAGAAACC
ATGYTAACNAAAGAATTYGC
ATGYTAACNAAAGAATTYGCNCARCG
AT G T T AAC T AAAGAAT T T G CAC
TGCGAAGAAACCTTTTTTCT
AATAAACGTGCAAAGAANCCYTT
Startery zaprojektowano w oparciu o sekwencje genu locus hyptf i homologicznych loci w różnych gatunkach bakterii z rodzaju Staphylococcus, których sekwencje genomowe są dostępne w bazie danych NCBI Nucleotide, http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore (nazwa gatunku i oznaczenie szczepu; accession number sekwencji genomowej dla danego gatunku w bazie NCBI Nucleotide; accession number sekwencji białka kodowanego przez gen hyptf lub jego homolog w bazie NCBI Protein; Locus tag genu hyptf lub jego homologu):
PL 226 609 B1
1. S. arlettae CVD059; NZ_ALWK01000016; ZP_10998849; SARL_04191
2. S. aureus ED98; NC_013450; YP_003281300; SAAV_0351
3. S. capitis SK14; NZ_ACFR01000004; ZP_03613546; STACA0001_1451
4. S. caprae C87; NZ_GL545278; ZP_07842400; HMPREF0786_01751
5. S. carnosus TM300; NC_012121 ; YP_002633143 ; Sca_0043
6. S. epidermidis VCU071; NZ_AGUB01000006; ZP_12936352; SEVCU071_1788
7. S. equorum Mu2; NZ_CAJL01000015; ZP_10336487; SEQMU2_13725
8. S. haemolyticus JCSC1435; NC_007168; YP_254503; SH2588
9. S. hominis SK119; NZ_ACLP01000001; ZP_04058912; STAHO0001_2121
10. S. ludginensis VCU139; NZ_AHLK01000025; ZP_13198142; SEVCU139_2215
11. S. massiliensis S46; NZ_AMSQ01000007; ZP_18856164; C273_05867
12. S. pettenkoferi VCU012; NZ_AGUA01000079; ZP_12935319; SEVCU012_0617
13. S. pseudintermedius HKU10-03; NC_014925; YP_004148220; SPSINT_0055
14. S. saprophyticus ATCC15305; NC_007350; YP_302418; SSP2328
15. S. simiae CCM 7213 NZ_AEUN01000034; ZP_09145692; SS7213T_01868
16. S. simulans ACS-120-V-Sch1; NZ_KB373326; ZP_11416468; HMPREF9310_00842
17. S. warnerii L37603; NZ_ACPZ01000041; ZP_04678206; STAWA0001_2413 Prototypem tego locus jest locus SAAV_0351 szczepu Staphylococcus aureus ED98 (NCBI
Nucleotide DB: NC_013450) o następującej sekwencji genu:
Sekw. Id. Nr 1 :
AT GT TAACTAAAGAAT T TGCACAACGCG TAGAAC TAAGT GAGAAGCAAGTCCG TAAAAT T
GT TCAACAT T TAGAAGAACGTGGT TACC AACT AAGCAAGAC TGAATATC GTGGT CGTGAA
G CAAC T G AT T T CAAAGAAGAAGATAT C GAG C T T T T CAAAGACAT T G C C GAC AAAG T AAAA ^jz^2\A.C2rL?k2\.Tj?kGT TJ?\.T G.?lTC Tj^\.GCGT T T G.A.T T TCCTGCAA.
CTCjArTGTC/AAAACGACCACAAAAACTTACCIACTAATCAAAATCTCCCTCAACTAGTA
GAAGATTTACGCCTAGAAATCCAGAAAATGCGCGAAGAACGTCACCTACTTGGTCAAATG ATG^TC^GTACATCAGC^C^C^G^TTAAAAGAACTTCAAAATCAACTTACATCT
AAAATCGATTCAAATAGCGAATCCTTAAAAGCCATCCAAACATCACAAGAGGCTATCCAA
GAAGCACAAGCATCTCAAGCTAAAGTATTGGCTGAATCAACAAATAAAGTTGAAAAGAAT
GCTGTTACTGAAGATAAAGCTGACAGTAAAGATTCGAAGGTTGCTGGAGTGAATACATCA
ACAGACGCTAAGACGGATACTAAAGCAGAAAATGCAGGCGATGGCACTGCTACTAAAGTA
GATAAAGAGGATCAAATTTCTGCAACTGAAGCAATTGAAAAAGCCAGCGTTGAGCAGTCT
AAAAATGAAAATGCAGCTGAGACTTCAAATAAAGAAGCTACAGTAGATGCAGACGCGCAA
CATGATGCTGAACAACAAGTAGCAGAAGCCCATGCAGAAGCTTCTAAACAAGCTACTTCG
AAC GAT T CAT T GGAAGC GAAAG C AGAAAAT GAC AG C ACAGC T T C ACAG T C AGAAAT G T CA
GAAC C AAAAC C T CAAGAAGAGAAAAAAG GTTTCTTCG CAC G T T T AT T CAAC C T G T AA i kodowanej sekwencji białka służącej do poszukiwania homologów tego genu w innych gatunkach:
PL 226 609 B1
Sekw. Id. Nr 2:
MLTKEFAQRVELSEKQVRKIVQHLEERGYQLSKTEYRGREATDFKEEDIELFKDIADKVK
QTNSYDLAFDELEKEKDFLQVIVKNDDKNLPTNQNVAQLVEDLRLEIQKMREERHLLGQM
MNQVHQQQQELKELQNQLTSKIDSNSESLKAIQTSQEAIQEAQASQAKVLAESTNKVEKN
AVTEDKADSKDSKVAGVNTSTDAKTDTKAENAGDGTATKVDKEDQISATEAIEKASVEQS
KNENAAET3NKEATVEADAQHDAEQQVAEAHAEASKQATSND3LEAKAENDSTA3QSEMS
EPKPQEEKKGFFARLFNL
Reakcja łańcuchowa polimerazy (PCR, ang .polymerase chain reaction)
Reakcję przeprowadzano w objętości 10 μΐ (w celach analitycznych) lub pięciu powtórzeniach po 20 μl (w celach preparatywnych do trawienia enzymami restrykcyjnymi). Każde 10 μΐ reakcji przygotowywano z 6,50 μΐ ddH2O, 1,0 μl 10x stężonego buforu do polimerazy RUN z jonami magnezu (A&A Biotechnology), 1,0 μl 2 mM dNTP (A&A Biotechnology), 0,5 μl 10 μM mieszaniny starterów (vide Startery wykorzystane do reakcji PCR) i 0,5 μl polimerazy DNA Run (A&A Biotechnology) i 0,5 μl roztworu wyizolowanego genomowego DNA (50-100 ng DNA). Reakcję PCR przeprowadzano zgodnie z następującym programem:
1. 94°C, 2 min.
2. 94°C, 30 s.
3. 50°C , 30 s.
4. 74°C, 1 min 30 s.
5. 30 powtórzeń od kroku nr 2.
6. 74°C, 10 min.
7. 4°C, pauza.
Oczyszczanie produktu reakcji PCR
Produkt reakcji PCR przeznaczony do trawienia enzymami restrykcyjnymi oczyszczano wykorzystując zestaw Clean Up (A&A Biotechnology) zgodnie z protokołem załączonym przez producenta. W ostatnim kroku DNA eluowano 50 μl ddH2O oraz oznaczano jego stężenie.
Trawienie enzymami restrykcyjnymi
500 ng produktu PCR trawiono niezależnie czterema enzymami restrykcyjnymi FastDigest® TaiI, FastDigest® Tsp509I, FastDigest® AluI, FastDigest® MseI (Thermo Scientific) zgodnie z zaleceniami producenta. Trawione fragmenty DNA poddawano rozdziałowi elektroforetycznemu w żelu agarozowym wraz ze standardem długości fragmentów DNA GeneRuler® 50 bp DNA Ladder (Thermo Scientific) zawierającym fragmenty DNA o długościach od 50 do 1000 par zasad.
Elektroforeza w żelu agarozowym
Rozdział elektroforetyczny prowadzono w 3% roztwór oczyszczonej agarozy (Bioshop, Burlington, Kanada) w buforze TAE (40 mM Tris; 20 mM kwas octowy; 1 mM EDTA; pH 8,0) z dodatkiem bromku etydyny (Sigma Aldrich) w stężeniu 0,5 μg/ml przy napięciu 5 V/cm przez 1 h. Efekt rozdziału obrazowano podświetlając żel z fragmentami DNA światłem UV i robiąc zdjęcie aparatem fotograficznym.
Wyniki
Spośród metod typowania przynależności gatunkowej w obrębie rodzaju Staphylococcus szeroko stosowaną jest metoda analizy polimorfizmu długości fragmentów restrykcyjnych (RFLP) genu gap (kodującego dehydrogenazę aldehydu 3-fosfoglicerynowego, ang. glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase) z wykorzystaniem enzymu AluI (Yugueros et al. 2000; Yugueros et al. 2001). Nowością w porównaniu z tą metodą jest wykorzystanie unikalnego wzoru zmienności genu hyptf, zmienności znacząco większej niż genu gap i innych genów stosowanych w metodach typowania bakterii z rodzaju Staphylococcus. Umożliwia to otrzymanie obrazów restrykcyjnych dla czterech różnych enzymów (a nie jednego), które charakteryzują się wysoką jednoznacznością i powtarzalnością oraz możliwością łatwej interpretacji nawet w przypadku pojawienia się polimorfizmów wewnątrzgatunkowych. Otrzymane produkty PCR dla genu hyptf i jego homologów posiadały długość w granicach 600-1000 par zasad. Trawienie tych produktów niezależnie czterema różnymi enzymami restrykcyjnymi oraz rozdział elektroforetyczny otrzymanych fragmentów DNA w żelu agarozowym pozwolił otrzymać wysoce różnicujące obrazy (Fig. 1). Dzięki nim możliwe było różnicowanie nawet bardzo blisko
PL 226 609 B1 spokrewnionych gatunków takich jak S. delphinii, S. intermedius i S. pseudintermedius, które nie jest możliwe dla innych metod opartych o RLFP, w tym metody gap.
Bibliografia
Bentley, R. W., Harland, N. M., Leigh, J. A. and Collins, M. D. 1993. A Staphylococcus aureus-specific oligonucleotide probe derived from 16S rRNA gene sequences. Lett Appl Microbiol 16, 203-6.
Blaiotta, G., Casaburi, A. and Villani, F. 2005. Identification and differentiation of Staphylococcus carnosus and Staphylococcus simulans by species-specific PCR assays of sodA genes. Syst Appl Microbiol 28, 519-26.
Blaiotta, G., Ercolini, D., Mauriello, G., Salzano, G. and Villani, F. 2004. Rapid and reliable identification of Staphylococcus equorum by a species-specific PCR assay targeting the sodA gene. Syst Appl Microbiol 27, 696-702.
Ghebremedhin, B., Layer, F., Konig, W. and Konig, B. 2008. Genetic classification and distinguishing of Staphylococcus species based on different partial gap, 16S rRNA, hsp60, rpoB, sodA, and tuf gene sequences. J Clin Microbiol 46, 1019-25.
Goh, S. H, Potter, S., Wood, J. O., Hemmingsen, S. M., Reynolds, R. P. and Chow, A. W. 1996. HSP60 gene sequences as universal targets for microbial species identification: studies with coagulase-negative staphylococci. J Clin Microbiol 34, 818-23.
Goh, S. H, Santucci, Z., Kloos, W. E., Faltyn, M., George, C. G., Driedger, D. and Hemmingsen, S. M. 1997. Identification of Staphylococcus species and subspecies by the chaperonin 60 gene identification method and reverse checkerboard hybridization. J Clin Microbiol 35, 3116-21.
Kempf, V. A., Trebesius, K. and Autenrieth, I. B. 2000. Fluorescent In situ hybridization allows rapid identification of microorganisms in blood cultures. J Clin Microbiol 38, 830-8.
Krimmer, V., Merkert, H., von Eiff, C., Frosch, M., Eulert, J., Lohr, J. F., Hacker, J. and Ziebuhr, W.
1999. Detection of Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis in clinical samples by 16S rRNA-directed in situ hybridization. J Clin Microbiol 37, 2667-73.
Sivadon, V., Rottman, M., Chaverot, S., Quincampoix, J. C., Avettand, V., de Mazancourt, P., Bernard, L., Trieu-Cuot, P., Feron, J. M., Lortat-Jacob, A., Piriou, P., Judet, T. and Gaillard, J. L. 2005. Use of genotypic identification by sodA sequencing in a prospective study to examine the distribution of coagulase-negative Staphylococcus species among strains recovered during septic orthopedic surgery and evaluate their significance. J Clin Microbiol 43, 2952-4.
Takahashi, T., Satoh, I. and Kikuchi, N. 1999. Phylogenetic relationships of 38 taxa of the genus Staphylococcus based on 16S rRNA gene sequence analysis. Int J Syst Bacteriol 49 Pt 2, 725-8.
Voytenko, A. V., Kanbar, T., Alber, J., Lammler, C., Weiss, R., Prenger-Berninghoff, E., Zschock, M., Akineden, O., Hassan, A. A. and Dmitrenko, O. A. 2006. Identification of Staphylococcus hyicus by polymerase chain reaction mediated amplification of species specific sequences of superoxide dismutase A encoding gene sodA. Vet Microbiol 116, 211-6.
Yugueros, J., Temprano, A., Berzal, B., Sanchez, M., Hemanz, C., Luengo, J. M. and Naharro, G.
2000. Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase-encoding gene as a useful taxonomic tool for Staphylococcus spp. J Clin Microbiol 38, 4351-5.
Yugueros, J., Temprano, A., Sanchez, M., Luengo, J. M. and Naharro, G. 2001. Identification of Staphylococcus spp. by PCR-restriction fragment length polymorphism of gap gene. J Clin Microbiol 39, 3693-5.
Zakrzewska-Czerwinska, J., Gaszewska-Mastalarz, A., Pulverer, G. and Mordarski, M. 1992. Identification of Staphylococcus epidermidis using a 16S rRNA-directed oligonucleotide probe. FEMS Microbiol Lett 79, 51-8.

Claims (10)

1. Zastosowanie polinukleotydu posiadającego sekwencję genu hyptfdo określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus, przy czym gen hyptf koduje białko posiadające sekwencję aminokwasową przedstawioną jako Sekw. Id. Nr 2.
2. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że określanie stopnia pokrewieństwa obejmuje analizę polimorfizmu restrykcyjnego.
3. Zastosowanie według zastrz, 1, znamienne tym, że gen hyptf posiada sekwencję nukleotydową przedstawioną jako Sekw. Id. Nr 1.
PL 226 609 B1
4. Sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus, znamienny tym, że izoluje się sekwencję genu hyptf z genomu typowanego szczepu bakteryjnego, porównuje się wyizolowaną sekwencję z odpowiadającą jej sekwencją genu hyptf ze znanego szczepu bakterii rodzaju Staphylococcus i określa stopień podobieństwa tych sekwencji, przy czym ustalony stopień podobieństwa sekwencji genu hyptf jest miarą pokrewieństwa pomiędzy typowanym szczepem bakteryjnym ze znanym szczepem bakterii z rodzaju Staphylococcus.
5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że gen hyptf koduje białko posiadające sekwencję aminokwasową przedstawioną jako Sekw. Id. Nr 2.
6. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że określanie stopnia pokrewieństwa obejmuje analizę polimorfizmu restrykcyjnego.
7. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że gen hyptf posiada sekwencję nukleotydową przedstawioną jako Sekw. Id. Nr 1.
8. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że sekwencję genu hyptf izoluje się techniką PCR wykorzystując jako startery oligonukleotydy wskazane w tabeli 1.
9. Sposób według zastrz. 4 lub 6, znamienny tym, że obejmuje trawienie wyizolowanej sekwencji genu hyptf lub jego fragmentu enzymem restrykcyjnym wybranym z grupy obejmującej następujące enzymy restrykcyjne: TaiI. Tsp509I, AluI oraz MseI.
10. Zestaw starterów do określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus techniką RFLP, znamienny tym, że składa się z konsensusowych starterów wskazanych w tabeli 1 specyficznych dla genu hyptf bakterii z rodzaju Staphylococcus.
PL404497A 2013-06-28 2013-06-28 Zastosowanie polinukleotydu, zestaw starterów oraz sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus PL226609B1 (pl)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL404497A PL226609B1 (pl) 2013-06-28 2013-06-28 Zastosowanie polinukleotydu, zestaw starterów oraz sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus
PCT/PL2014/050038 WO2014209145A1 (en) 2013-06-28 2014-06-25 The method for determination of phylogenetic relations among staphylococcus species strains

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL404497A PL226609B1 (pl) 2013-06-28 2013-06-28 Zastosowanie polinukleotydu, zestaw starterów oraz sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL404497A1 PL404497A1 (pl) 2015-01-05
PL226609B1 true PL226609B1 (pl) 2017-08-31

Family

ID=51293119

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL404497A PL226609B1 (pl) 2013-06-28 2013-06-28 Zastosowanie polinukleotydu, zestaw starterów oraz sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus

Country Status (2)

Country Link
PL (1) PL226609B1 (pl)
WO (1) WO2014209145A1 (pl)

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AT503862B1 (de) * 2006-07-05 2010-11-15 Arc Austrian Res Centers Gmbh Pathogen-identifizierung anhand eines 16s oder 18s-rrna mikroarray

Also Published As

Publication number Publication date
WO2014209145A1 (en) 2014-12-31
PL404497A1 (pl) 2015-01-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Seki et al. Loop-mediated isothermal amplification method targeting the lytA gene for detection of Streptococcus pneumoniae
Tavanti et al. Optimization and validation of multilocus sequence typing for Candida albicans
Grape et al. Standard and real-time multiplex PCR methods for detection of trimethoprim resistance dfr genes in large collections of bacteria
CA2997303C (en) Sequences for the detection and identification of methicillin-resistant staphylococcus aureus mrej type vi strains
Sánchez Identification and typing methods for the study of bacterial infections: a brief review and mycobacterial as case of study
JP2010524454A (ja) 抗生物質耐性細菌の検出および分析のための方法、組成物、およびキット
Lin et al. Review on molecular typing methods of pathogens
Hung et al. Using groEL as the target for identification of Enterococcus faecium clades and 7 clinically relevant Enterococcus species
JP2014204717A (ja) 黄色ブドウ球菌の検出およびメチシリン耐性黄色ブドウ球菌の特定
EP0885310B1 (en) Genetic markers and methods for the detection of escherichia coli serotype-0157:h7
KR101373756B1 (ko) 황색포도상구균의 분자적 동정을 위한 프라이머 및 이를 이용한 황색포도상구균 동정 방법
US7883870B2 (en) Molecular identification of Staphylococcus-genus bacteria
Pomati et al. PCR‐based positive hybridization to detect genomic diversity associated with bacterial secondary metabolism
US8043812B2 (en) Method of detecting Streptococcus pneumoniae, primer set for the detection and kit for the detection
JP2006505262A (ja) 連鎖球菌属および関連する属の細菌の分子レベルの同定
Kim et al. Determination of the most closely related bacillus isolates to Bacillus anthracis by multilocus sequence typing
PL226609B1 (pl) Zastosowanie polinukleotydu, zestaw starterów oraz sposób określania stopnia pokrewieństwa szczepów z rodzaju Staphylococcus
JP4238319B2 (ja) マイコプラズマの検出方法
WO2001088186A2 (en) Methods for detecting and identifying a gram positive bacteria in a sample
Sachse et al. Molecular typing tools: from pattern recognition to genome-based algorithms
US20090253129A1 (en) Identification of usa300 community-associated methicillin-resistant staphylococcus aureus
Massonet et al. Direct identification of bacteria in clinical respiratory samples using fluorescent amplicon length analysis of 16S–23S rRNA spacer-region
Chandan et al. Rapid and sensitive method for detecting Leptospira by PCR-SSCP analysis
Garland et al. Polymorphic repetitive loci of the amphibian pathogen Batrachochytrium dendrobatidis
Leeuwen Molecular diagnostics in clinical microbiology