PL226910B1 - Nowy szczep bakterii zrodzaju Enterobacter - Google Patents

Nowy szczep bakterii zrodzaju Enterobacter

Info

Publication number
PL226910B1
PL226910B1 PL406515A PL40651513A PL226910B1 PL 226910 B1 PL226910 B1 PL 226910B1 PL 406515 A PL406515 A PL 406515A PL 40651513 A PL40651513 A PL 40651513A PL 226910 B1 PL226910 B1 PL 226910B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
succinic acid
bacterial strain
enterobacter
production
strain
Prior art date
Application number
PL406515A
Other languages
English (en)
Other versions
PL406515A1 (pl
Inventor
Marcin Podleśny
Marcin Podlesny
Zdzisław Targoński
Zdzisław Targonski
Jakub Wyrostek
Piotr Jarocki
Original Assignee
Univ Przyrodniczy W Lublinie
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Przyrodniczy W Lublinie filed Critical Univ Przyrodniczy W Lublinie
Priority to PL406515A priority Critical patent/PL226910B1/pl
Publication of PL406515A1 publication Critical patent/PL406515A1/pl
Publication of PL226910B1 publication Critical patent/PL226910B1/pl

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest nowy szczep bakterii z rodzaju Enterobacter oraz jego zastosowanie do produkcji kwasu bursztynowego i 2,3-butanodiolu.
Obecnie na świecie trwają intensywne badania zmierzające do opracowania efektywnych procesów biotechnologicznych, pozwalających na otrzymywanie ważnych przemysłowo prekursorów do syntez chemicznych z wykorzystaniem odnawialnych surowców zamiast ropy naftowej. Obserwowany trend jest wynikiem kurczenia się światowych zasobów tego kopalnego surowca, jego wysokich i niestabilnych cen jak również uwalniania ogromnych ilości ditlenku węgla do atmosfery podczas spalania ropy naftowej i jej pochodnych. W przypadku zapotrzebowania na energię znanych jest szereg alte rnatywnych źródeł jej pozyskiwania np. energia promieni słonecznych, wiatru czy źródeł geotermalnych. Jeśli chodzi natomiast o produkcję tworzyw sztucznych i innych chemikaliów jedynym racjona l nym sposobem na odejście od surowców kopalnych wydaje się być wykorzystanie wszechobecnej na naszej planecie biomasy roślinnej i surowców odpadowych z jej przetwarzania. Jednym z nich jest glicerol będący produktem ubocznym w technologii biodiesla. Wzrastająca produkcja glicerolu, blisko 10-krotny spadek jego ceny w ostatnich latach sprawia, że jest obecnie tanim i łatwo dostępnym źródłem węgla w procesach biotechnologicznych. W 2004 roku Amerykański Departament do Spraw Energii (DOE) opracował listę 12 najbardziej pożądanych związków chemicznych, dla których należałoby znaleźć alternatywny sposób produkcji (Werpy T, Petersen G. Eds. Top Value Added Chemicals from Biomass. US DoE 2004). Wśród przedstawionych w przytoczonym raporcie związków możemy odnaleźć kwasy dikarboksylowe takie jak kwas bursztynowy, kwas fumarowy czy kwas jabłkowy.
Mikrobiologiczna produkcja kwasu bursztynowego rysuje się jako najbardziej obiecujący sposób jego alternatywnego pozyskiwania. Obecnie znanych jest jedynie kilka mikroorganizmów zdolnych do znaczącej produkcji kwasu bursztynowego będącego w ich przypadku albo końcowym produktem fermentacji albo produktem pośrednim w cyklu Krebsa. Wśród producentów tego kwasu możemy wymienić bakterie Actinobacillus succinogenes (Guettler MV, Rumler D, Jain MK. Actinobacillus succinogenes sp. nov., a novel succinic-acid-producing strain from the bovine rumen. Int J Syst Bacteriol 1999;49:207-16), Anaerobiospirillium succiniciproducens (Lee PC, Lee WG, Kwon S, Lee SY, Chang HN. Succinic acid production by Anaerobiospirillium succiniciproducens: effects of the H2/CO2 supply and glucose concentration. Enzyme Microb Technol 1999;24:549-54), Mannheimia succiniciproducens (Lee PC, Lee SY, Hong SH, Chang HN. Isolation and characterization of new succinic acid producing bacterium, Mannheimia succiniciproducens MBEL 55E, from bovine rumen. Appl Microbiol Biotechnol 2002;58:663-8), Basfia succiniciproducens DD1 (Scholten D, Daegele D. Succinic acid production by a newly isolated bacterium. Biotechnol Lett 2008;30:2143-46) oraz modyfikowane genetycznie Escherichia coli (Vemuri GN, Eiteman MA, Altman E. Succinate production in dual-phase Escherichia coli fermentations depends on the time of transition from aerobic to anaerobic conditions. J Ind Microbiol Biotechnol 2002;28:325-32), Corynebacterium glutamicum (Okino S, Noburyu R, Suda M, Jojima T, Inui M, Yukawa H. An efficient succinic acid production process in a metabolically engineered Corynebacterium glutamicum strain. Appl Microbiol Biotechnol 2008;81:459-64) oraz drożdże Yarrowia lipolytica (Yuzbashev TV, Yuzbasheva EY, Sobolevskaya TI, Laptev IA, Vybornaya TV, Larina AS, Matsui K, Fukui K, Sineoky SP. Production of succinic acid at low pH by a recombinant strain of the aerobic yeast Yarrowia lipolytica. Biotechnol Bioeng 2010;107:673-82) i Saccharomyces cerevisiae (Raab AM, Gebhardt G, Bolotina N, Weuster-Botz D, Lang C. Metabolic engineering of Saccharomyces cerevisiae for the biotechnological production of succinic acid. Metab Eng 2010;12:518-25). Często dużym problemem okazuje się obecność w płynach pofermentacyjnych produktów ubocznych czy też konieczność stosowania bogatych, a co za tym idzie drogich pożywek fermentacyjnych podrażających koszt mikrobiologicznej produkcji kwasu bursztynowego i jego oczyszczania. Z powyższych względów koniecznym jest poszukiwanie nowych mikroorganizmów zdolnych do efektywnej produkcji kwasu bursztynowego wykorzystujących tanie, nie konkurujące ze składnikami żywności, źródła węgla i energii np. glicerol. Obecnie naturalnymi producentami kwasu bursztynowego na glicerolu są Anaerobiospirilium succiniciproducens (Lee i inni, 2001) oraz Basfia succiniciproducens DD1 (Scholten i Daegele, 2008), u których w filtratach pohodowlanych stwierdzono obecność kwasu bursztynowego, lecz w stężeniach zbyt niskich, aby je akceptować w technologii kwasu bursztynowego.
PL 226 910 B1
Przedmiotem wynalazku jest nowy szczep bakterii Enterobacter sp. LU1 zdeponowany w Międzynarodowej Kolekcji Kultur Drobnoustrojów Przemysłowych Instytutu Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego pod numerem KKP 2050p.
Istotą nowego szczepu jest jego zastosowanie jako szczepu produkcyjnego w procesach mikrobiologicznej produkcji kwasu bursztynowego na płynnej pożywce bakteryjnej zawierającej glicerol jako źródło węgla.
Istotą nowego szczepu jest także jego zastosowanie jako szczepu produkcyjnego w procesach mikrobiologicznej produkcji 2,3-butanodiolu na płynnej pożywce bakteryjnej zawierającej glukozę jako źródło węgla.
Szczep bakterii Enterobacter sp. LU1 nr KKP 2050p posiada następującą sekwencję nukleotydową regionu DNA kodującego 16S rRNA, którego sekwencja określa przynależność rodzajową bakterii:
CGGTAACAGGAAGCAGCTTGCTGCTTCGCTGACGAGTGGCGGACGGGTGAGTAATGTCTG
GGAAACTGCCTGATGGAGGGGGATAACTACTGGAAACGGTAGCTAATACCGCATAACGTC
GCAAGACCAAAGAGGGGGACCTTCGGGCCTCTTGCCATCGGATGTGCCCAGATGGGATTA
GCTAGTAGGTGGGGTAACGGCTCACCTAGGCGACGATCCCTAGCTGGTCTGAGAGGATGA
CCAGCCACACTGGAACTGAGACACGGTCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTGGGGAATA
TTGCACAATGGGCGCAAGCCTGATGCAGCCATGCCGCGTGTATGAAGAAGGCCTTCGGGT
TGTAAAGTACTTTCAGCGGGGAGGAAGGCGATAAGGTTAATAACCTTGTCGATTGACGTT
ACCCGCAGAAGAAGCACCGGCTAACTCCGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGGAGGGTGCA
AGCGTTAATCGGAATTACTGGGCGTAAAGCGCACGCAGGCGGTCTGTCAAGTCGGATGTG
AAATCCCCGGGCTCAACCTGGGAACTGCATTCGAAACTGGCAGGCTAGAGTCTTGTAGAG
GGGGGTAGAATTCCAGGTGTAGCGGTGAAATGCGTAGAGATCTGGAGGAATACCGGTGGC
GAAGGCGGCCCCCTGGACAAAGACTGACGCTCAGGTGCGAAAGCGTGGGGAGCAAACAGG
ATTAGATACCCTGGTAGTCCACGCCGTAAACGATGTCGACTTGGAGGTTGTGCCCTTGAG
GCGTGGCTTCCGGAGCTAACGCGTTAAGTCGACCGCCTGGGGAGTACGGCCGCAAGGTTA
AAACTCAAATGAATTGACGGGGGCCCGCACAAGCGGTGGAGCATGTGGTTTAATTCGATG
CAACGCGAAGAACCTTACCTACTCTTGACATCCAGAGAACTTTCCAGAGATGGATTGGTG
CCTTCGGGAACTCTGAGACAGGTGCTGCATGGCTGTCGTCAGCTCGTGTTGTGAAATGTT
GGGTTAAGTCCCGCAACGAGCGCAACCCTTATCCTTTGTTGCCAGCGGTTAGGCCGGGAA
CTCAAAGGAGACTGCCAGTGATAAACTGGAGGAAGGTGGGGATGACGTCAAGTCATCATG
GCCCTTACGAGTAGGGCTACACACGTGCTACAATGGCGCATACAAAGAGAAGCGACCTCG
CGAGAGCAAGCGGACCTCATAAAGTGCGTCGTAGTCCGGATTGGAGTCTGCAACTCGACT
CCATGAAGTCGGAATCGCTAGTAATCGTGGATCAGAATGCCACGGTGAATACGTTCCCGG
GCCTTGTACACACCGCCCGTCACACCATGGGAGTGGGTTGCAAAAGAAGTAGGTAGCTTA
ACCTTCGGGAGGGCGCTTACCACTTTGTGATTCATGACTGGGG
PL 226 910 B1
Przynależność taksonomiczna nowego szczepu do grupy gatunków kompleksu Enterobacter cloacae określona była w oparciu o zastosowanie biochemicznych testów API 20E. Sekwencjonowanie genu rpoB oraz testy API 50 CH pozwalają stwierdzić największe podobieństwo taksonomiczne do gatunku Enterobacter hormaechei subsp. Steigerwaltii. Sekwencja nukleotydowa regionu DNA kodującego podjednostkę β bakteryjnej polimerazy RNA przedstawia się następująco:
GTCTCTGGGCGATCTGGATACCCTGATGCCTCAGGATATGATTAACGCGAAGCCGATTTC
TGCGGCAGTGAAAGAGTTCTTCGGTTCCAGCCAGCTGTCTCAGTTCATGGACCAGAACAA
CCCGCTGTCTGAGATCACGCACAAACGTCGTATCTCCGCACTCGGCCCAGGCGGTCTGAC
CCGTGAACGCGCAGGCTTTGAAGTTCGAGACGTACACCCGACTCACTACGGTCGCGTATG
TCCAATCGAAACGCCTGAAGGTCCAAACATCGGTCTGATCAACTCCCTGTCCGTGTACGC
ACAGACGAACGAATACGGTTTCCTCGAGACCCCGTATCGTAAAGTGACCGACGGTGTTGT
TACTGACGAAATTCATTACCTGTCTGCTATTGAAGAAGGCAACTACGTTATCGCTCAGGC
GAACTCCAACCTGGATGACGAAGGCCACTTTGTAGAAGATCTGGTTACCTGCCGTAGCAA
AGGCGAATCCAGCTTGTTCAGCCGCGACCAGGTTGACTACATGGACGTATCCACCCAGCA
GGTGGTATCCGTCGGTGCGTCCCTGATCCCGTTCCTGGAACACGATGACGCCAACCGTGC
ATTGATGGGTGCGAACATGCAACGTCAGGCCGTTCCAACTCTGCGTGCTGATAAGCCGCT
GGTTGGTACCGGTATGGAACGTGCTGTTGCCGTTGACTCTGGTGTTACAGCAGTTGCTAA
GCGTGGCGGTACCGTTCAGTACGTTGACGCATCCCGTATCGTTATCAAAGTTAACGAAGA
CGAGATGTATCCGGGCGAAGCGGGTATCGACATCTACAACCTGACCAAATACACCCGTTC
TAACCAGAACACCTGTATCAACCAGATGCCATGTGTGTCTCTGGGTGAGCCAGTTGAGCG
CGGCGACGTGCTGGCAGACGGTCCGTCCACCGACCTCGGTGAACTGGCGCTCGGTCAGAA
CATGCGCGTAGC
Testy API 50 CH pozwoliły również na stwierdzenie zdolności fermentacyjnych nowego szczepu względem następujących sacharydów i ich pochodnych: glicerolu, D-arabinozy, L-arabinozy, D-rybozy, D-ksylozy, D-adonitolu, D-galaktozy, D-glukozy, D-fruktozy, D-mannozy, L-ramnozy, D-mannitolu, D-sorbitolu, Metylo-aD-glukopironazydu, N-acetyloglukozaminy, arbutyny, eskuliny (słaba reakcja), salicyny, D-celobiozy, D-maltozy, D-laktozy, D-melibiozy, D-sacharozy, D-trehalozy, D-rafmozy, gencjobiozy, D-fukozy, L-fukozy, D-arabitolu, 2-ketoglukonianu potasu.
Nowo wyizolowane bakterie mają kształt pałeczek gram ujemnych o długości 1 pm, nie wytwarzają przetrwalników.
Nowy szczep charakteryzuje się zdolnością do produkcji kwasu bursztynowego na pożywce gdzie źródłem węgla jest glicerol. Kwas bursztynowy, w stężeniu ok. 2 g/l jest w tym przypadku głównym produktem fermentacji. Dodatkowym produktem przemian metabolicznych jest kwas octowy obecny w nieznacznej ilości ok. 0,4 g/l. Ewentualna obecność innych produktów przemiany materii jest na poziomie niższym niż ich próg wykrywalności w stosowanej standardowo w takich przypadkach metodzie analizy HPLC z wykorzystaniem detektora RI.
Nowy szczep posiada też zdolność do produkcji 2,3-butanodiolu na pożywce gdzie źródłem węgla jest glukoza. W tym przypadku 2,3-butanodiol jest jednym z wielu produktów fermentacji.
Szczep według wynalazku wyizolowano z treści żwacza kozy używając do tego dziesiętnych rozcieńczeń analizowanej treści wykonanych w roztworze PBS (0,145 M NaCl, 0,01 M Na2HPO4). Uzyskane rozcieńczenia wysiewano na pożywki do izolacji. W skład używanej pożywki wchodziły w g/l: glicerol 20; kwas galakturonowy 10; ekstrakt drożdżowy 10; Na2HPO4 x 12H2O 0,78; NaH2HPO4
PL 226 910 B1 x H2O 1,16; MgCl2 x 6H2O 0,2; CaCl2 0,15; NaCl 1; MgCO3 15; agar bakteriologiczny 15. Pojedyncze kolonie wyrosłe na płytkach po 48 godzinach beztlenowej inkubacji w 37°C przesiewano w sposób redukcyjny na świeże pożywki trzykrotnie, w celu oczyszczenia wyizolowanych bakterii. Następnie oczyszczony izolat hodowano przez 48 godzin w bulionie mózgowo-sercowym (pożywka BHI: glukoza 2 g/l; wyciąg mózgowo-sercowy 17,5 g/l; pepton 10 g/l; Na2HPO4 2,5 g/l; NaCl 5 g/l; pH 7,2). Po zakończeniu hodowli szczep zabezpieczano w 20% glicerolu i przechowywano w temperaturze -80°C.
P R Z Y K Ł A D 1
Szczep Enterobacter sp. LU1 hodowano na podłożu płynnym o następującym składzie w g/l: glicerol 20; ekstrakt drożdżowy 10; Na2HPO4 x 12H2O 0,78; NaH2HPO4 x H2O 1,16; MgCl2 x 6 H2O 0,2; CaCl2 0,15; NaCl 1; MgCO3 15; w temperaturze 37°C, z wytrząsaniem 160 obr./min., w szczelnie pozamykanych butelkach iniekcyjnych o pojemności 20 ml. Przy zaszczepieniu mikroorganizmu dodawano również do pożywki 2 μΐ roztworu witamin (witamina B12 0,01 mg/ml, biotyna 0,2 mg/ml, tiamina 0,5 mg/ml, ryboflawina 0,5 mg/ml, niacyna 0,5 mg/ml, pantotenian wapnia 0,5 mg/ml, p-aminobenzoesan 0,5 mg/ml, witamina B6 1 mg/ml, kwas liponowy 0,5 mg/ml). Po 96 godzinach wyhodowane komórki oddzielono od podłoża poprzez wirowanie (5 min. 7800 x g, 4°C), powstały w ten sposób nadsącz rozcieńczano dwukrotnie, a następnie odbiałczano za pomocą soli Carreza (sól I - 15% r-r K4[Fe(CN)]6 x 3H2O; sól II - 30% r-r ZnSO4 x 7H2O). Tak przygotowaną próbkę analizowano na obecność produktów fermentacji przy pomocy HPLC, stosując kolumnę dla kwasów organicznych Aminex HPX-87H oraz refractive index detektor (Knauer). Elucję prowadzono za pomocą 30 mM kwasu siarkowego, w temperaturze 42°C, przy prędkości przepływu eluentu 0,3 ml/min, stwierdzając obecność kwasu bursztynowego w ilości 2,19 g/l. Dokładne wyniki badania przedstawiono w Tabeli.
P R Z Y K Ł A D II
Szczep Enterobacter sp. LU1 hodowano na podłożu płynnym o następującym składzie w g/l: glukoza 20; ekstrakt drożdżowy 10; Na2HPO4 x 12H2O 0,78; NaH2HPO4 x H2O 1,16; MgCl2 x 6 H2O 0,2; CaCl2 0,15; NaCl 1; MgCO3 15; w temperaturze 37°C w szczelnie pozamykanych butelkach iniekcyjnych o pojemności 20 ml. Przy zaszczepieniu mikroorganizmu dodawano również do pożywki 2 μl roztworu witamin (witamina B12 0,01 mg/ml, biotyna 0,2 mg/ml, tiamina 0,5 mg/ml, ryboflawina 0,5 mg/ml, niacyna 0,5 mg/ml, pantotenian wapnia 0,5 mg/ml, p-aminobenzoesan 0,5 mg/ml, witamina B6 1 mg/ml, kwas liponowy 0,5 mg/ml). Po 96 godzinach wyhodowane komórki oddzielono od podłoża poprzez wirowanie, a powstały w ten sposób nadsącz rozcieńczano dwukrotnie, a następnie odbiałczano za pomocą soli Carreza (sól I - 15% r-r K4[Fe(CN)]6 x 3 H2O; sól II - 30% r-r ZnSO4 x 7 H2O). Tak przygotowaną próbkę analizowano na obecność produktów fermentacji stwierdzając obecność 2,3-butanodiolu w ilości 4,06 g/l. Dokładne wyniki badania przedstawiono w Tabeli. Rozdział chromatograficzny odbiałczonego płynu pofermentacyjnego prowadzono na kolumnie Aminex HPX-87H w temperaturze 42°C i przy przepływie 0,3 ml/min. Zastosowanym eluentem był 30 mM kwas siarkowy.
T a b e l a. Produkty metabolizmu szczepu Enterobacter sp. LU1
Przykład (źródło węgla) Produkcja
Kwasu bursztynowego 2,3- -butanediolu Kwasu mrówkowego Kwasu octowego Kwasu mlekowego Etanolu
[g/l] [g/l] [g/l] [g/l] [g/l] [g/l]
I (Glicerol) 2,19 - - 0,46 - -
II (Glukoza) 0,69 4,06 1,5 1,34 1,21 1,76

Claims (3)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Nowy szczep bakterii Enterobacter sp. LU1 zdeponowany w Międzynarodowej Kolekcji Kultur Drobnoustrojów Przemysłowych Instytutu Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego pod numerem KKP 2050p.
  2. 2. Zastosowanie szczepu bakterii Enterobacter sp. LU1 nr KKP 2050p w procesach mikrobiologicznej produkcji kwasu bursztynowego na płynnej pożywce bakteryjnej zawierającej glicerol jako źródło węgla.
  3. 3. Zastosowanie szczepu bakterii Enterobacter sp. LU1 nr KKP 2050p w procesach mikrobiologicznej produkcji kwasu bursztynowego oraz 2,3-butanodiolu na płynnej pożywce bakteryjnej zawierającej glukozę jako źródło węgla.
PL406515A 2013-12-13 2013-12-13 Nowy szczep bakterii zrodzaju Enterobacter PL226910B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL406515A PL226910B1 (pl) 2013-12-13 2013-12-13 Nowy szczep bakterii zrodzaju Enterobacter

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL406515A PL226910B1 (pl) 2013-12-13 2013-12-13 Nowy szczep bakterii zrodzaju Enterobacter

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL406515A1 PL406515A1 (pl) 2015-06-22
PL226910B1 true PL226910B1 (pl) 2017-09-29

Family

ID=53396735

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL406515A PL226910B1 (pl) 2013-12-13 2013-12-13 Nowy szczep bakterii zrodzaju Enterobacter

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL226910B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL406515A1 (pl) 2015-06-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Xu et al. Efficient production of L-lactic acid using co-feeding strategy based on cane molasses/glucose carbon sources
Liu et al. Economical succinic acid production from cane molasses by Actinobacillus succinogenes
Niu et al. Characteristics of fermentative hydrogen production with Klebsiella pneumoniae ECU-15 isolated from anaerobic sewage sludge
US9631211B2 (en) Bacterial strain and fermentative process for producing succinic acid
Tashiro et al. A novel production process for optically pure L-lactic acid from kitchen refuse using a bacterial consortium at high temperatures
US9273331B2 (en) Process for producing 3-hydroxybutyric acid or salt thereof
Timbuntam et al. Lactic acid production from sugar-cane juice by a newly isolated Lactobacillus sp.
CN104946576B (zh) 大肠杆菌基因工程菌及其构建方法和在生产丙酮酸中的应用
Xia et al. Economical production of poly (ε-l-lysine) and poly (l-diaminopropionic acid) using cane molasses and hydrolysate of streptomyces cells by Streptomyces albulus PD-1
CN104593442A (zh) 一种重组大肠杆菌高密度培养生产四氢嘧啶的方法
CN103409485A (zh) 一种通过流加有机氮源提高腺苷发酵产量的方法
Wang et al. Isolation, characterization and evolution of a new thermophilic Bacillus licheniformis for lactic acid production in mineral salts medium
Wang et al. Impact of carbon and nitrogen sources on hydrogen production by a newly isolated Clostridium butyricum W5
Suzuki et al. Ethanol production from glycerol-containing biodiesel waste by Klebsiella variicola shows maximum productivity under alkaline conditions
Wittlich et al. Conversion of glycerol to 1, 3-propanediol by a newly isolated thermophilic strain
Khiyami et al. Polyhydroxyalkanoates production via Bacillus plastic composite support (PCS) biofilm and date palm syrup
Wang et al. Two‐stage fermentation optimization for poly‐3‐hydroxybutyrate production from methanol by a new Methylobacterium isolate from oil fields
Chekroud et al. Valorisation of date fruits by-products for the production of biopolymer polyhydroxybutyrate (PHB) using the bacterial strain Bacillus paramycoides
CN106834177B (zh) 一株瘤胃菌及其应用
Divyashree et al. Extractability of polyhydroxyalkanoate synthesized by Bacillus flexus cultivated in organic and inorganic nutrient media
CN103937733B (zh) 一株利用蔗糖产丁二酸基因工程菌株及其发酵生产丁二酸的方法
KR101366398B1 (ko) 신규 크렙시엘라 뉴모니애 j2b 균주 및 이를 이용한 3-하이드록시프로피온산을 생산하는 재조합 균주
PL226910B1 (pl) Nowy szczep bakterii zrodzaju Enterobacter
Hniman et al. Community analysis of thermophilic hydrogen-producing consortia enriched from Thailand hot spring with mixed xylose and glucose
WO2020187388A1 (en) Lactobacillus diolivorans biotransformation process