PL228178B1 - Wykorzystanie nowych kompleksów Ru(IV) i Ru(VI) jako inhibitorów procesu tworzenia sie biofilmu bakteryjnego - Google Patents

Wykorzystanie nowych kompleksów Ru(IV) i Ru(VI) jako inhibitorów procesu tworzenia sie biofilmu bakteryjnego

Info

Publication number
PL228178B1
PL228178B1 PL411704A PL41170415A PL228178B1 PL 228178 B1 PL228178 B1 PL 228178B1 PL 411704 A PL411704 A PL 411704A PL 41170415 A PL41170415 A PL 41170415A PL 228178 B1 PL228178 B1 PL 228178B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
biofilm
biofilm formation
inhibitors
utilization
bacterial
Prior art date
Application number
PL411704A
Other languages
English (en)
Other versions
PL411704A1 (pl
Inventor
Grzegorz Czerwonka
Wiesław Roman Kaca
Agnieszka Monika Jabłońska-Wawrzycka
-Wawrzycka Agnieszka Monika Jabłonska
Patrycja Monika Rogala
Original Assignee
Univ Jana Kochanowskiego W Kielcach
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Jana Kochanowskiego W Kielcach filed Critical Univ Jana Kochanowskiego W Kielcach
Priority to PL411704A priority Critical patent/PL228178B1/pl
Publication of PL411704A1 publication Critical patent/PL411704A1/pl
Publication of PL228178B1 publication Critical patent/PL228178B1/pl

Links

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Nitrogen Condensed Heterocyclic Rings (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wykorzystania związków koordynacyjnych ratenu na +IV oraz +VI stopniu utlenienia, jako inhibitorów wzrostu biofllmu. Istotą wynalazku jest zastosowanie kompleksów (HL)4[RuIVCi6]-2Ci-4H2O oraz (HL)2[RuVICl6]-2Cl-2C2H5OH-2H2O, gdzie L = 2-hydroksymetylobenzimidazol o wzorach 1 i 2 przedstawionych na rysunku 1, do hamowania wzrostu bakterii w postaci biofllmu z Gram-ujemnych gatunków - Pseudomonas aeruginosa i Eschericha coli oraz Gram-dodatniej - Staphylococcus aureus.
Drobnoustroje występujące w środowisku naturalnym rzadko spotyka się w postaci wolnopływających komórek, ponieważ tworzą zwykle skupiska zwane biofilmem. Powstające formacje przylegają zarówno do powierzchni biotycznych jak i abiotycznych, a także rozwijają się na granicy faz [1-3]. Szczególne zagrożenie stanowią mikroorganizmy tworzące biofilmy i bytujące w miejscach o dużej wilgotności np.: umywalki, klimatyzatory, wodociągi czy instalacje wodne [1]. Owa zdolność bakterii chorobotwórczych do wzrostu w postaci biofllmu jest szczególnie niebezpieczna dla pacjentów. Do większości zakażeń dochodzi w warunkach szpitalnych (65%) i jest to związane ze stosowanym sprzętem medycznym [4]. Szacuje się, iż około 80% wszystkich infekcji bakteryjnych wiąże się ze zjawiskiem powstawania biofllmu [5]. Odnosi się to przede wszystkim do zakażeń dróg moczowych i oddechowych [6], a także do infekcji pooperacyjnych [7], Zmodyfikowana struktura błony zewnętrznej biofllmu stanowiąca warstwę heteropolimerów, skutecznie chroni komórki bakteryjne przed działaniem antybiotyków oraz zapewnia bakterii warunki do przetrwania i dalszego rozwoju [8], Efektem tego jest większa oporność wspomnianych skupisk na bakteriostatyki i utrudnione leczenie [9]. Problem związany z poszukiwaniem skutecznych środków służących zahamowaniu wzrostu biofllmu jest ciągle aktualny i znajduje się w polu zainteresowań wielu chemików, biochemików i mikrobiologów [10-14]. Pomimo iż, zwalczanie wysokiej oporności komórek drobnoustrojów, jest tematem wielu prac, nie znaleziono jak dotąd właściwego rozwiązania. Dotychczasowe strategie zapobiegania tworzeniu się i/lub eradykacji biofilmów bakteryjnych są oparte m.in. na inhibitorach komunikacji pomiędzy komórkami bakteryjnymi [15].
Niniejszy wynalazek dostarcza nowej strategii w zakresie wykorzystania chlorkowych kompleksów rutenu na +IV oraz + VI stopniu utlenienia, wykazujących inhibicyjną aktywność wobec wzrostu biofllmu bakteryjnego z Gram-ujemnych gatunków Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli oraz Gram-dodatniej Staphylococcus aureus.
Wynalazek przedstawiono w poniższym przykładzie wykonania.
W badaniach wykorzystano bakterie z gatunków Pseudomonas aeruginosa PAO1 i LES B58 [16], Escherichia coli ATCC 8739 oraz Staphylococcus aureus ATCC 6538P [17]. Hodowle mikroorganizmów prowadzono w temperaturze 37°C na podłożu płynnym TSB (Biocorp) z zastosowaniem wytrząsania (160 rpm). Czas prowadzenia hodowli wynosił 24 h. Następnie hodowlę rozcieńczono 100-krotnie przy użyciu świeżego podłoża 0,5 x TSB i przeniesiono do studzienek w 96-dołkowej płytce mikrotitracyjnej. Do każdej z przygotowanych próbek dodano 1 mM roztworów kompleksów (HL)4[RuIVCl6]-2Cl-4H2O i (HL)2[RuVICl6]-2Cl-2C2H5OH-2H2O.
Proces inkubacji prowadzono w atmosferze 5% CO2 i temperaturze 37°C w czasie 24 h. Następnie usunięto z hodowli komórki planktoniczne poprzez trójkrotne płukanie dołków płytki 0,9% roztworem soli fizjologicznej. W kolejnym etapie biofilm bakteryjny zabarwiono 0,01% roztworem fioletu krystalicznego podczas 15 minutowej inkubacji w temperaturze pokojowej. Powstały nadmiar barwnika usunięto poprzez trójkrotne odmycie próbek 0,9% roztworem soli fizjologicznej. Następnie, do dołków płytki dodano 80% roztworu alkoholu etylowego i całość inkubowano w temperaturze pokojowej przez kolejne 15 min. Ma to na celu wyekstrahowanie zawartego w biofilmie barwnika. Absorbancję uwolnionego barwnika zmierzono przy długości fali 595 nm z użyciem czytnika płytek mikrotitracyjnych (Infinite 200PRO, Tecan).
Uzyskane wyniki świadczą o znacznej redukcji masy biofilmu, spowodowanej działaniem kompleksów rutenu. Badany parametr redukcji dla wykorzystanych szczepów waha się w granicach od 31,8% do 58,3% - Tabela 1. Najwyższą wartość redukcji stanowiącą aż 58,3% odnotowano dla eradykacji biofllmu ze szczepu P. aeruginosa PAO1 traktowanego 1 mM roztworem kompleksu Ru(IV). Dodatkowo, wpływ kompleksów (HL)4[RuIVCl6]-2Cl-4H2O i (HL)2[RuVICl6]-2Cl-2C2H5OH-2H2O na morfologię mikrokoloni biofllmu zobrazowano za pomocą mikroskopii epi-fluorescencyjnej (mikroskop CARL ZEISS axio scope.a1) (Rysunek 2). Obserwacje wskazują, że badane związki mogą
PL 228 178 B1 uczestniczyć w mechanizmie agregacji komórek bakterii, a po przedostaniu się do wnętrza struktury działać bakteriobójczo, hamując wzrost masy biofilmów.
Pozycje literaturowe
[1] R. M. Donlan, „Biofilms: Microbial life on surfaces”, Emerg. Infect. Dis., 2002, 8(9): 881-890.
[2] W. M. Dunne Jr, „Bacterial adhesion: seen any good biofilms lately?”, Clin. Microbiol. Rev., 2002,15: 155-166.
[3] K. K. Jefferson „What drives bacteria to produce a biofilm?”, FEMS Microbiol. Lett., 2004, 236:163-173.
[4] R. M. Donlan, „Biofilms and Device-Associated Infections”, Emerg. Infect. Dis., 2001, 7(2): 277-28.
[5] D. Davies, „Understanding biofilm resistance to antibacterial agents”, Nat. Rev. Drug Discov., 2003, 2: 114-122.
[6] R. M. Donlan, J. W. Costerton, „Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms”, Clin. Microbiol. Rev., 2002,15: 167-193.
[7] R. D. Wolcott, V. Gontcharova, Y. Sun, A. Zischakau, S. E. Dowd, (2009). „Bacterial diversity in surgical site infections: not just aerobic cocci any more”, J. Wound Care, 2009, 18(8): 317-323.
[8] P. S. Stewart, J. W. Costerton, (2001). „Antibiotic resistance of bacteria in biofilms”, Lancet, 2001, 358(9276): 135-138.
[9] N. H0iby, T. Bjarnsholt, M. Givskov, S. Molin, O. Ciofu, „Antibiotic resistance of bacterial biofilms”, Int. J. Antimicrob. Agents, 2010, 35: 322-332.
[10] M. Chen, Q. Yu, H. Sun, „Novel Strategies for the Prevention and Treatment of Biofilm Related Infections”, Int. J. Mol. Sci., 2013,14: 18488-18501.
[11] I. Patel, V. Patel, A. Thakkar, V. Kothari, „Microbial Biofilms: Microbes in Social Mode”, IJBRP, 2013, 1: 19-34.
[12] S. D. Stowe, J. J. Richards, A. T. Tucker, R. Thompson, Ch. Melander, J. Cavanagh, „AntiBiofilm Compounds Derived from Marine Sponges”, Mar. Drugs, 2011,9: 2010-2035.
[13] S. M. Abdel-Aziz, A. Aeron, „Bacterial Biofilm: Dispersai and Inhibition Strategies”, SAJ Biotechnology, 2014,1, ISSN: 2375-6713.
[14] D. G. Davies, G. G. Geesey, „Regulation of the Alginate Biosynthesis Gene algC in Pseudomonas aeruginosa during Biofilm Development in Continuous Culture”, AEM, 1995, 61(3): 860-867.
[15] N. C. Cady, K. A. McKean, J. Behnke, R. Kubec, A. P. Mosier, S. H. Kasper, D. S. Burz, RA. Musah, „Inhibition of biofilm formation, quorum sensing and infection in Pseudomonas aeruginosa by natural products-inspired organosulfur compounds”. PLoS ONE, 2012, 7(6): e38492-e38492.
[16] A. De Soyza, A. J. Hall, E. Mahenthiralingam, P. Drevinek, W. Kaca, Z. Drulis-Kawa,
S. R. Stoitsova, V. Toth, T. Coenye, J. E. A. Zlosnik, J. L. Bums, I. Sa' -Correia, D.De Vos, J-P Pimay,
T. J. Kidd, D. Reid, J. Manos, J. Klockgether, L. Wiehlmann, B. Tummler, S. McClean, C. Winstanley, “Developing an international Pseudomonas aeruginosa reference panel”, Microbiology Open, 2013, 2(6): 1010-1023.
[17] M. Machovsky, I. Kuritka, P. Bazant, D. Vesela, P. Saha, „Antibacterial performance of ZnO-based fillers with mesoscale structured morphology in model medical PVC composites” Mater. Sci. Eng. C, 2014, 41: 70-77.
PL228 178 Β1
Tabela 1
Wpływ kompleksów Ru(IV) i Ru(VI) na redukcję masy biofllmu bakteryjnego dla szczepów Staphylococcus aureus, Escherichia coli oraz Pseudomonas aeruginosa PAO1 i LES B58
Badany szczep
S. aureus E. coli P. aeruginosa P. aeruginosa
Kompleks rutenu ATCC 653 8P ATCC 8739 PAO1 LES B58
Redukcja Ru(IV) 41,1 49,3 58,3 38,4
biofllmu [%] Ru(VI) 36,8 35,2 31,8 37,6
Zastrzeżenia patentowe

Claims (4)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Nowy sposób inhibicji wzrostu bakterii w postaci biofllmu za pomocą chlorkowych związków koordynacyjnych Ru(IV) i Ru(VI), znamienny tym, że związki wykazują hamujące działanie wobec bakterii Gram-ujemnych Pseudomonas aeruginosa, Eschericha coli oraz Gramdodatniej Staphylococcus aureus.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że inhibitory tworzenia biofllmu obecne są w podłożu hodowlanym w stężeniach od 0,5 μΜ do 2 mM.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że proces inhibicji tworzenia biofllmu prowadzi się w temperaturze od 16°C do 44°C.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że proces inhibicji tworzenia biofllmu prowadzi się w warunkach napowietrzania, mikroaerofilnych oraz beztlenowych.
PL411704A 2015-03-23 2015-03-23 Wykorzystanie nowych kompleksów Ru(IV) i Ru(VI) jako inhibitorów procesu tworzenia sie biofilmu bakteryjnego PL228178B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL411704A PL228178B1 (pl) 2015-03-23 2015-03-23 Wykorzystanie nowych kompleksów Ru(IV) i Ru(VI) jako inhibitorów procesu tworzenia sie biofilmu bakteryjnego

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL411704A PL228178B1 (pl) 2015-03-23 2015-03-23 Wykorzystanie nowych kompleksów Ru(IV) i Ru(VI) jako inhibitorów procesu tworzenia sie biofilmu bakteryjnego

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL411704A1 PL411704A1 (pl) 2016-09-26
PL228178B1 true PL228178B1 (pl) 2018-02-28

Family

ID=56942370

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL411704A PL228178B1 (pl) 2015-03-23 2015-03-23 Wykorzystanie nowych kompleksów Ru(IV) i Ru(VI) jako inhibitorów procesu tworzenia sie biofilmu bakteryjnego

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL228178B1 (pl)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL424896A1 (pl) * 2018-03-15 2019-09-23 Politechnika Łódzka Zastosowanie polimerowych pochodnych N-acetylocysteiny

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL424896A1 (pl) * 2018-03-15 2019-09-23 Politechnika Łódzka Zastosowanie polimerowych pochodnych N-acetylocysteiny

Also Published As

Publication number Publication date
PL411704A1 (pl) 2016-09-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cos et al. Biofilms: an extra hurdle for effective antimicrobial therapy
RU2648356C2 (ru) Бактерицидные композиции
Reddy et al. Alkylimidazolium ionic liquids for biofilm control: Experimental studies on controlling multispecies biofilms in natural waters
Sang et al. Synthesis and preservative application of quaternized carboxymethyl chitosan containing guanidine groups
ES2488869T3 (es) Composiciones de dibromomalonamida y su uso como biocidas
Guezennec et al. Exopolysaccharides from unusual marine environments inhibit early stages of biofouling
CN109181325B (zh) 一种沥青路面复合抗微生物老化剂的复配方法
Lee et al. Silver ion-exchanged sodium titanate and resulting effect on antibacterial efficacy
JP2009527346A (ja) リゾチーム含有組成物を使用する水設備における微生物増殖を制御する方法
WO2021003419A1 (en) Methods to reduce contamination, biofilm and fouling from water systems, surfaces, and products
CN113350327A (zh) 肉桂酸及其衍生物作为抗菌剂在抑制人源性病菌中的应用
CN113016798A (zh) 一种低温杀菌剂
Mahami et al. Biofilm-associated infections: public health implications
Saidi et al. Slime producing, heavy metals and antibiotics resistance in Aeromonas hydrophila isolated in Tunisia
Možina et al. Mechanisms of microbial resistance in biofilms
WO2019018087A1 (en) DISPERSION METHOD OF BIOFILM
CN110974838B (zh) 金化合物在制备抗菌剂中的应用
CN103945698B (zh) 邻苯基苯酚和银的抗微生物组合物
CN106879602A (zh) 一种协同抑细菌和抗细菌生物膜形成的组合物
JP2018507845A (ja) 相乗的抗微生物組成物
CN114431227A (zh) 一种生物膜杀菌增效剂、杀菌组合物及生物膜去除方法
WO2020257578A1 (en) Probiotic and chemical control of biofilms
US20100173996A1 (en) Synergistic mixtures of opp and dgh
CN110946149B (zh) 一种用于油漆、涂料、水体和木材的杀菌杀藻增效组合物及其应用
US20260137086A1 (en) Methods to reduce contamination, biofilm and fouling from water systems, surfaces, and products