PL229194B1 - Neoglikokoniugat oligocukru Escherichia coli R1 LOS i toksoidu Clostridium difficile oraz jego zastosowanie w szczepionkach przeciwbakteryjnych - Google Patents

Neoglikokoniugat oligocukru Escherichia coli R1 LOS i toksoidu Clostridium difficile oraz jego zastosowanie w szczepionkach przeciwbakteryjnych

Info

Publication number
PL229194B1
PL229194B1 PL415211A PL41521115A PL229194B1 PL 229194 B1 PL229194 B1 PL 229194B1 PL 415211 A PL415211 A PL 415211A PL 41521115 A PL41521115 A PL 41521115A PL 229194 B1 PL229194 B1 PL 229194B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
escherichia coli
neoglycoconjugate
los
clostridium difficile
oligosaccharide
Prior art date
Application number
PL415211A
Other languages
English (en)
Other versions
PL415211A1 (pl
Inventor
Ewelina Bobko
Czesław ŁUGOWSKI
Czesław Ługowski
Wojciech Jachymek
Original Assignee
Wroclawskie Centrum Badan Eit Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Wroclawskie Centrum Badan Eit Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia filed Critical Wroclawskie Centrum Badan Eit Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Priority to PL415211A priority Critical patent/PL229194B1/pl
Publication of PL415211A1 publication Critical patent/PL415211A1/pl
Publication of PL229194B1 publication Critical patent/PL229194B1/pl

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Neoglikokoniugat będący przedmiotem zgłoszenia stanowi połączenie oligosacharydu zwitterjonowego Escherichia coli R1 LOS z rekombinowanym C-końcowym fragmentem toksyny B Clostridium difficile. Immunogena kompozycja zawierająca neoglikokoniugat przeznaczona jest do stosowania jako szczepionka w prewencji i leczeniu infekcji wywołanych przez bakterie Gram ujemne - Enterobacterioceae jak Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli a także przez Bordetella pertussis czy Clostridium difficile bądź jako element diagnostyczny do wykrywania zakażeń wywołanych przez rzeczone bakterie. Zgłoszenie obejmuje również kompozycję farmaceutyczną, szczepionkę zawierającą tę kompozycję, przeciwciało generowane oraz zestaw diagnostyczny.

Description

Wynalazek dotyczy nowego glikokoniugatu składającego się z oligocukru rdzenia Escherichia coli R1 LOS i toksoidu Clostridium difficile. immunogennej kompozycji farmaceutycznej i szczepionki zawierającej nowy glikokoniugat oraz jego zastosowania w zapobieganiu i leczeniu zakażeń wywołanych przez szczepy bakterii Gram ujemnych i Gram dodatnich.
Szczepionki antybakteryjne stanowią skuteczny sposób przeciwdziałania wielu chorobom wywoływanym przez wielolekooporne szczepy bakterii Gram-ujemnych i Gram-dodatnich, wobec których zawodzą terapie antybiotykowe. Immunoprofilaktyka jest obiecującym sposobem na zmniejszenie a nawet eliminację liczby zachorowań i powikłań wywołanych zakażeniami bakteryjnymi.
Dokument EP0941738 ujawnia zastosowanie jako antygenu koniugatu białka nośnikowego z konserwatywnym regionem LOS Neisseria meningitidis. Neisseria gonorrhoeae. H. influenzae, Haemophilus ducreyi, Helicobacter pylori, Chlamydia, Proteus mirabilis, P.aeruginosa, Moraxella catarrhalis, Bordetella pertussis, Klebsiella spp. oraz V cholerae. Regionem tym jest fragment LOS o strukturze GlcNAc-Hep2-PEtn-Kdo2-Lipid A, obejmujący wewnętrzny region oligocukrów rdzeni lipooligosacharydów wymienionych bakterii. Uzyskane w wyniku immunizacji takim koniugatem surowice wykazywały krzyżową reaktywność z LOS N. meningitidis, H. influenzae, N. gonorrhoeae i H. pylori oraz aktywność bakteriobójczą w testach in vitro z użyciem kilku szczepów N. meningitidis.
Z publikacji WO2014195881 znany jest glikokoniugat zawierający oligocukier lub fragment oligocukru LOS Bordetella pertussis (OS) i toksynę krztuśca (PT) połączone ze sobą wiązaniem kowalencyjnym mające zastosowania do wytworzenia przeciwkrztuścowej szczepionki zawierającej immunogenne składniki Bordetella pertussis w formie w pełni zinaktywowanej.
Zgłoszenie WO2014195880 ujawnia wyizolowany antygen będący immunogenną formą wspólnego enetrobakteryjnego antygenu Gram-ujemnych bakterii z rodziny Enterobacteriaceae. tj. ECA połączonego z lipopolisacharydem (ECALPS), mający zastosowanie w profilaktyce i leczeniu chorób wywołanych przez bakterie Gram-ujemne, zwłaszcza z rodziny Enterobacteriaceae, uwzględniających w szczególności zakażenie szpitalne i wstrząs septyczny oraz zakażenia jelitowe. Ujawniony antygen określa struktura [podjednostka ECA]n-oligocukier rdzenia - lipid A, gdzie powtarzająca się biologiczna podjednostka ECA stanowi: [ >3)-a-D-Fuc4NAc-(1 >4)-p-D-ManNAcA-(1 >4)-a-D-GlcNAc-(1 >]-. a n > 1, i gdzie oligocukier rdzenia i lipid A pochodzą z LPS lub LOS szczepów bakterii Gram-ujemnych. a lipid A jest detoksyfikowany.
Pomimo znanych ze stanu techniki rozwiązań nadal istnieje potrzeba dostarczenia immunogennej kompozycji, która będzie miała zastosowanie jako skuteczna hybrydowa szczepionka indukująca szerokie spektrum ochrony przeciwbakteryjnej zarówno wobec Gram-dodatnich jak i Gram-ujemnych szczepów.
W związku z tym istnieje potrzeba identyfikacji i wytworzenia nowych antygenów, wspólnych dla większej grupy gatunków Gram-ujemnych i Gram-dodatnich bakterii, w szczególności gatunków wywołujących zakażenia szpitalne oraz infekcje, takie jak te wywoływane przez Bordetella pertussis, Klebsiella pneumoniae. Escherichia coli, Shigella spp. oraz Clostridium difficile.
Nieoczekiwanie problem ten rozwiązuje niniejszy wynalazek.
Przedmiotem wynalazku jest neoglikokoniugat składający się z białkowego nośnika zawierającego fragment C-końcowy toksyny B Clostridium difficile zawierający 517 aa od reszty 1850-2366. oraz z co najmniej jednego oligocukru rdzenia Escherichia coli R1 LOS.
Korzystnie. oligocukier rdzenia Escherichia coli R1 LOS posiada wolną grupę aminową (a-GlcN) oraz wolną grupę karboksylową (a-Kdo).
Korzystnie. oligocukier Escherichia coli R1 LOS posiada strukturę o wzorze 1.
Korzystnie, białkowy nośnik posiada sekwencję aminokwasową SEKW NR ID 1.
Wynalazek dotyczy również kompozycji farmaceutycznej zawierającej powyżej zdefiniowany neoglikokoniugat oraz farmaceutycznie dopuszczalną substancję pomocniczą i/lub adiuwant.
Innym przedmiotem wynalazku jest szczepionka zawierająca kompozycję farmaceutyczną obejmującą wyżej cytowany neoglikokoniugat oraz dopuszczalną farmaceutycznie substancję pomocniczą i adiuwant.
Przedmiotem wynalazku jest również kompozycja farmaceutyczna zawierająca cytowany powyżej neoglikokoniugat oraz farmaceutycznie dopuszczalną substancję pomocniczą i/lub adiuwant do leczenia, zapobiegania i diagnozowania zakażeń wywołanych przez bakterie Gram-ujemne i Gram-dodatnie.
PL229 194B1
Przedmiotem wynalazku jest również kompozycja farmaceutyczna zawierająca cytowany powyżej neoglikokoniugat oraz farmaceutycznie dopuszczalną substancję pomocniczą i/lub adiuwant do leczenia, zapobiegania i diagnozowania zakażeń wywołanych przez bakterie Bordetella pertussis, Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Shigella spp., Clostridium difficile.
Innym przedmiotem wynalazku jest przeciwciało generowane przez powyższą kompozycję.
Innym przedmiotem wynalazku jest zestaw diagnostyczny do wykrywania zakażeń Bordetella pertussis, Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Shigella spp., Clostridium difficile zawierający powyżej cytowane przeciwciało.
Wynalazek dotyczy neoglikokoniugatu oligocukru i toksoidu Clostridium difficile. Neoglikokoniugat według rozwiązania stanowi połączenie oligosacharydu Escherichia coli R1 LOS z rekombinowanym C-końcowym fragmentem toksyny B Clostridium difficile. Oligocukierten stanowi konserwatywną strukturę głównego czynnika wirulencji bakterii Gram-ujemnych, natomiast toksyna B jest egzotoksyną bakterii Gram-dodatniej wywołującej częste zakażenia szpitalne.
Oligocukier wyizolowano z Escherichia coli mającej lipopolisacharyd pozbawiony antygenu O - LPS typu szorstkiego (LPS typu R, lipooligosacharyd, LOS). Oligocukierten otrzymano w wyniku łagodnej hydrolizy kwaśnej LOS Escherichia coli R1. Następnie z uzyskanej heterogennej mieszaniny wyizolowano oligocukier rdzenia wykazujący cechy zwitterjonu poprzez obecność wolnej grupy aminowej (α-GlcN) oraz grupy karboksylowej (α-Kdo). Zastosowanie oczyszczonej frakcji oligocukrów w postaci „zwitterjonów” zwiększa odpowiedź immunologiczną na dany antygen. Uzyskane fragmenty oczyszczano i skoniugowano z nośnikiem białkowym -toksoidem Clostridium difficile.
Oligosacharyd Escherichia coli R1 LOS (dekasacharyd rdzenia Escherichia coli PCM 1985) będący konserwatywnym fragmentem głównego antygenu powierzchniowego, ma strukturę wspólną dla wielu pokrewnych szczepów bakterii Gram-ujemnych i w formie immunogennej zapewnia szeroką ochronę przeciwbakteryjną. Według stanu techniki nie są znane właściwości immunogenne tej cząsteczki, opublikowano jedynie dane dotyczące koniugatów oligocukrowych zawierających głównie struktury pozbawione podstawienia GIcN. Strukturę oligosacharydu rdzenia Escherichia coli R1ZW (ZWT) odpowiadającą masie 1865,6 Da przedstawia WZÓR 1. Litery odpowiadają monosacharydom na widmie NMR.
O .o
ChOH B \
WZÓR 1
PL 229 194 B1
Nośnikiem białkowym jest chimera białkowa fragmentu C-końcowego toksyny B Clostridium difficile (TBd, 517 aa, reszty 1850-2366 TcdB) oraz białka SUMO (98 aa) otrzymany w wyniku rekombinacji w heterologicznym systemie bakteryjnym Escherichia coli.
Oligosacharyd skoniugowany z wymienionym wyżej nośnikiem białkowym uzyskuje nowe właściwości antygenowe. W modelu zwierzęcym w wyniku szczepienia takim antygenem generowane są przeciwciała reagujące z toksyną Clostridium difficile oraz z szerokim spektrum LPS i LOS Gram-ujemnych potencjalnie patogennych bakterii. Unikatową właściwością tak wygenerowanej szczepionki jest indukcja przeciwciał rozpoznających struktury powierzchniowe Bordetella pertussis (część końcową cząsteczki endotoksyny) oraz Klebsiella pneumoniae (struktury wielocukrowych epitopów) przy zachowaniu jednocześnie oczekiwanej aktywności generowania przeciwciał rozpoznających toksynę Clostridium difficile, i struktury endotoksyn Escherichia coli oraz Shigella spp.
Obserwowane reakcje dotyczą części rdzeniowej w przypadku Bordetella pertussis oraz szczepów Escherichia coli, których LPS zawierają rdzeń typu R1. W przypadku Klebsiella pneumoniae obserwuje się reakcje w regionie rdzeniowym jak i w części polisacharydowej LPS.
Neoglikokoniugat według wynalazku powoduje generację przeciwciał rozpoznających struktury antygenów o strukturach innych niż te użyte w neoglikokoniugacie. Może mieć to związek ze specyficznym rozkładem ładunków w nowosyntetyzowanym koniugacie i kontekście użytego fragmentu białkowego.
Indukowane neoglikokoniugatem przeciwciała wykazują właściwości bakteriobójcze wobec bakterii Escherichia coli (Escherichia coli PGM 1985), Bordetella pertussis (Bordetella pertussis 186), Klebsiella pneumoniae O5 w testach płytkowych. Neoglikokoniugat według wynalazku pozwala na dostarczenie hybrydowej szczepionki indukującej szerokie spektrum ochrony przeciwbakteryjnej. Szczepionka ta może zapewnić skuteczną ochronę przed infekcją wywołaną przez bakterie Gram-dodatnie i Gramujemne.
Fig. 1 Przesunięcia chemiczne 1H.13C NMR oligocukru zwitterjonowego R1ZW (ZWT).
Fig. 2 Sekwencja białka nośnikowego Clostridium difficile (SEKW NR ID 2).
Fig. 3 Sekwencja rekombinowanego nośnika białkowego TBd (SEKW NR ID 1).
Sekwencja białkowa zawiera 616 aa. Reszta N jest 1850 aminokwasem w sekwencji TcdB. Masa monoizotopowa rekombinantu wynosi 70748,44 Da. (peptyd SUMO 11261.68 Da).
Fig. 4 Profil elucji supernatantu po wirowaniu zawiesiny komórek E. coli, w których ekspresjonowano TBd. Eluent monitorowano przy 280 nm.
Fig. 5 Profil elucji frakcji II na kolumnie HitrapQ. Połączone frakcje zaznaczono. Eluent monitorowano przy 280 nm.
Fig. 6 Profil elucji utlenionego oligosacharydu rdzenia Escherichia coli ZWT. Frakcje oligosacharydu użyte do koniugacji zaznaczono. Eluent monitorowano z pomocą refraktometru przepływowego (Shodex).
Fig. 7 Rozdział w żelu poliakryloamidowym i immunobloting LPS z surowicą skierowaną przeciwko koniugatowi R1ZW-TBd.
Fig. 8 Rozdział w żelu poliakryloamidowym i immunobloting LPS z surowicą skierowaną przeciwko koniugatowi R1 ZW-TTd .
Fig. 9 Immunobloting (test dot blot) reakcja aktywnej toksyny B Clostridium difficile (TCdB) oraz toksoidu TBd (EcdB) z surowicą skierowaną przeciwko koniugatowi R1ZW-TBd. TCdB x1: 70 ng, x2: 140 ng, x3: 210 ng; TBd (EcdB) x1: 100 ng, x2 200 ng, x3: 300 ng. Rozcieńczenie surowicy 1:50.
P r z y k ł a d 1
Izolacja rdzenia Escherichia coli R1
Szczep Escherichia coli R1 uzyskano z Polskiej Kolekcji Mikroorganizmów. Źródłem struktury jest szczep Escherichia coli PCM 1985. Hodowle bakteryjne prowadzono na płytkach agarowych w 37°C przez noc, następnie zawieszano w sterylnym PBS. Przygotowanym inokulum zaszczepiano 9 l podłoża LB lub podłoża mineralnego Davis'a wzbogaconego w glukozę, hydrolizat kazeiny i wyciąg drożdżowy. Hodowlę prowadzono przez 18 godzin w fermentorze Bioflo 415 (Eppendorf) w 37°C z napowietrzaniem. Po hodowli bakterie zabijano 0,5% fenolem i wirowano na wirówce przepływowej Cepa. Otrzymaną masę bakteryjną zawieszano w 300 ml wody (miliQ 18 MQ/cm) i liofilizowano.
Ekstrakcja LOS
LOS ekstrahowano z masy bakteryjnej metodą wodno-fenolową opisaną przez Westphala (1). Masę bakteryjną zawieszano w wodzie (25 ml wody miliQ na 2 g suchej masy), dodawano równą objętość fenolu i po ogrzewaniu do 65°C ekstrahowano przez 15 min. intensywnie mieszając. Mieszaninę
PL229 194B1 po ochłodzeniu do 4-5°C wirowano 3000 rpm przez 30 min. Zebrano fazę wodną, a do pozostałości dodano wody miliQ w ilości odpowiadającej zebranej objętości i powtórzono cykl ekstrakcji. Fazy wodne połączono i dializowano w wodzie przez 72 godziny, a następnie liofilizowano. Ostatnim etapem oczyszczania LOS było trzykrotne ultrawirowanie przy 100000xg przez 6 godzin (2). Zlifilizowany LOS po dializie zawieszono w wodzie miliO za pomocą sondy ultradźwiękowej i ultrawirowano. Osad po ultrawirowaniu (zawierający LOS) zawieszono w wodzie (miliO) i wirowano jeszcze dwa razy. Po ostatnim cyklu ultrawirowania LOS zawieszono w wodzie i liofilizowano.
Otrzymanie i oczyszczanie oligosacharydu ZWT
Oczyszczony LOS hydrolizowano w 1,5% kwasie octowym (40 ml 1,5% kwasu na 200 mg LOS) w temperaturze 100°C przez 0,5 do 1 godziny i wirowano 18000xg przez 20 minut w celu oddzielenia rozpuszczalnych oligosacharydów od osadu lipidu A. Oligosacharyd zwitterjonowy R1 ZW (ZWT) izolowano za pomocą chromatografii cieczowej sprzężonej z spektrometrią masową, korzystając z kolumny ZIC-HILIC (Merck-Milipore, SeOuant 5um 200A, 150x21,2 ΗΧ4310044) i spektrometru masowego ze źródłem jonowym typu ESI i pułapką jonową jako analizatorem jonów. Rozdziały chromatograficzne prowadzono w gradiencie acetonitrylu i 0,1% roztworu kwasu mrówkowego w wodzie (62%-40% acetonitrylu 30 min). Frakcje rdzeniowe o charakterze zwiterjonowym (oznaczone jako ZWT) z kolejnych rozdziałów łączono i liofilizowano. Osobno łączono frakcje ZWT monofosforylowane (obserwowane jony w widmie 931,8 i 922,8), a osobno pozostałe frakcje ZWT- pozostałe jony wyszczególnione w Tabeli nr 1. Strukturę zliofilizowanych oligosacharydów potwierdzano za pomocą spektroskopii NMR.
Tabela 1
ZWT [M] Obliczona masa monoizotopowa Obserwowany jon (m/z) na widmie ESI QTrap Interpretacja jonu
Kdo+3Hep+5Hex+HexN+P 1988,57 993,2 [M-2H+PEtNJ2'
Kdo+3Hep+5Hex+HexN+P 1970,56 984,2 [M-2H+PEtN-Hz0]2'
Kdo+3Hep+5Hex+HexN+2P 1945,52 971,8 [M2H]2'
Kdo+3Hep+5Hex+HexN+2P 1927,5 962,8 [Μ-2Η-Η2Ο]*
Kdo+3Hep+5Hex+HexN+R 1865,56 931,8 [M-2H]2'
Kdo+3Hep+5Hex+HexN+P 1847,56 922,8 [M 2H-H2O]2
Ekspresja C-końcowego fragmentu toksyny B z Clostridium difficile w Escherichia coli (EcdB).
Do ekspresji w systemie bakteryjnym wybrano fragment C-końca białka TcdB zawierający 517 aminokwasów. Do sekwencji dodano serynę jako pierwszy aminokwas, obecność tej reszty na N-końcu rekombinowanego białka ułatwia hydrolizę białka SUMO za pomocą proteazy SUMO. Zoptymalizowano skład nukleotydowy wybranej sekwencji, tak aby zawartość poszczególnych nukleotydów odpowiadała wymaganiom Escherichia coli.
Zawiesinę chemikompetentnych komórek Escherichia coli BL21 rozmrożono na lodzie i dodano 10 ng plazmidu ChampionTM pET SUMO z wklonowanym fragmentem receptorowym toksyny B z Clostridium difficile. Postępowano zgodnie z instrukcją dołączoną do zestawu Champion pET SUMO (Protein Expression System, lnvitrogen by life technologies). Inkubowano na lodzie przez 30 minut a następnie przez 30 sekund inkubowano w 42°C i dodano 250 ml SOC ogrzanego do temperatury pokojowej i inkubowano w 37°C z wytrząsaniem przez 1 h 200 rpm/min. Otrzymaną zawiesiną bakteryjną zaszczepiono 50 ml płynnego podłoża LB zawierającego kanamycynę (Gibco by life technologies) w stężeniu 50 pg/ml i inkubowano przez noc w 37°C z wytrząsaniem. Otrzymanym inokulum zaszczepiono 1,5 I płynnego LB zawierającego kanamycynę 50 pg/ml, hodowlę prowadzono w 37°C z wytrząsaniem. W momencie gdy gęstość optyczna hodowli osiągnęła wartość OD=0,6 dodano IPTG (Roth) do stężenia 1 mM/ml. Ekspresję prowadzono przez 5 godzin w 37°C z wytrząsaniem. Otrzymaną masę bakteryjną zebrano przez wirowanie 5000xg przez 10 minut i zamrożono w - 20°C. Masę bakteryjną po rozmrożeniu zawieszono w 20 ml buforu 10 mMTris/HCI 50 mMCaCb pH=8 (bufor A), i sonikowano na
PL 229 194 B1 lodzie 3 lub 4 razy po 1 min, w celu dezintegracji ściany i błony komórkowej bakterii, obserwując zgęstnienie zawiesiny w momencie uwolnienia zawartości komórki. Zawiesinę wirowano dwukrotnie 18000xg 20 min. Rekombinowane białko oczyszczono z supernatantu za pomocą chromatografii jonowymiennej na złożu DEAE Sephadex A-25, w buforze A w gradiencie 0-0,5M NaCI (1M NaCI 10m MTris/HCI 50 mMCaCl2 pH=8 - bufor B). Obecność białka w eluencie monitorowano obserwując absorbancję przy długości fali 260 i 280 nm. Obecność toksoidu TBd monitorowano w teście dot-blot za pomocą przeciwciała anty TcdB (antibodies-online GmbH).
Frakcje zawierające toksoid połączono, następnie zagęszczono na filtrach Amicon 30 kDa, wymieniając bufor na bufor A. Otrzymany roztwór toksoidu oczyszczano na kolumnie HiTrap Q w buforze A i gradiencie 0-0,5M NaCl. Obecność białka w eluencie monitorowano obserwując absorbancję przy długości fali 260 i 280 nm. Obecność toksoidu monitorowano w teście dot-blot za pomocą przeciwciała anty-TcdB. Oczyszczony toksoid przechowywano w -20°C w 50% roztworze glicerolu.
Przygotowanie koniugatów oligosacharydów rdzeniowych z toksoidem toksyny B z Clostridium difficile.
Koniugat R1ZW-TBd przygotowano wykorzystując reakcję reduktywnej aminacji, 4,2 mg oczyszczonego R1ZW (ZWT) rozpuszczono w 0,1M octanie sodu pH=5,5 w stężeniu 10 mg/ml i utleniano w ciemności w 10 mM nadjodanie sodu przez 1 h (3), w takich warunkach utlenieniu do aldehydów ulegają wicynalne grupy hydroksylowe na heptozach i Kdo. Następnie oligosacharyd oczyszczano za pomocą chromatografii SEC w wodzie na kolumnie ze złożem G3000 PW. Eluent monitorowano za pomocą refraktometru przepływowego, a otrzymane frakcje analizowano za pomocą spektrometrii mas na obecność oligosacharydów. Frakcje oligosacharydowe połączono i zliofilizowano. Otrzymano 3,5 mg utlenionego oligosacharydu. Utleniony oligosacharyd R1ZW (3.5 mg) następnie rozpuszczono w 260 pl roztworu białka TBd, (1,5 mg) w 0.2 M buforze boranowym (pH=9.0), inkubowano przez 1 h w 37°C, dodano 40 pl 1M roztworu cyjanoborowodorku sodu (odczynnik ALD, Sterogene, USA) oraz kroplę chloroformu. Reakcję prowadzono w temperaturze 37°C przez 12 dni, bez mieszania. W 5 i 10 dniu reakcji dodano kolejne porcje 22 pl ALD. Po zakończeniu reakcji mieszaninę oczyszczono przy użyciu SECHPLC na kolumnie G3000 SW (2.5 x 30 cm) (Tosoh Bioscience, Japonia) zrównoważonej buforem PBS. Wielkość nastrzyku wynosiła 1 ml, prędkość przepływu 6 ml/min., a objętość zbieranych frakcji wynosiła 3 ml. Frakcje koniugatu monitorowano immunochemicznie pod względem reakcji ze specyficznymi przeciwciałami anty-R1ZW i anty-CdTB i tym samym na obecność antygenu białkowego toksyny B C. difficile cukrowego ZWR1 za pomocą testu dot-blot. Na dwie membrany nitrocelulozowe naniesiono 3x 0,7 pl roztworu z każdej analizowanej frakcji. Membrany blokowano w 0,2% roztworze kazeiny w TBS, następnie w celu wykrycia antygenu cukrowego, jedną membranę inkubowano z surowicą króliczą, otrzymaną w wyniku immunizacji koniugatem oligosacharydu rdzenia E. coli R1 z toksoidem tężcowym OSR1TTd, w rozcieńczeniu 1:150. Surowicę rozcieńczano 0,2% roztworem kazeiny w TBS. Jako drugorzędowego przeciwciała użyto koziego anty króliczego IgG skoniugowanego z fosfatazą alkaliczną w rozcieńczeniu 1:500. Drugą membranę inkubowano z mysim przeciwciałem poliklonalnym przeciwko toksynie B z C. difficile, roztwór o stężeniu 1 mg/ml rozcieńczono 1:500 0,2% roztworem kazeiny w TBS. Jako drugorzędowego przeciwciała użyto koziego anty mysiego IgG skoniugowanego z fosfatazą alkaliczną w rozcieńczeniu 1:500. Jako substratów używano roztworów BCIP/NBT. Zebraną frakcję zawierającą glikokoniugat zagęszczono na koncentratorach Vivaspin 30 kDa (Millipore) do stężenia mg/ml w oparciu o pomiar zawartości białka (spektrofotometryczny, przy dł. fali 280 nm). Do konserwacji roztworu koniugatu użyto roztworu mertiolatu o końcowym stężeniu 0.02%. Roztwór koniugatu jest przechowywany w lodówce w 4°C.
Immunizacja zwierząt i preparacja surowic odpornościowych
3-miesięczne samice królików rasy baran francuski szczepiono podskórnie w okolice karku, 5-6 punktów podania. Cykl szczepień obejmował trójkrotną immunizację w odstępach 3 tygodni. Przed rozpoczęciem cyklu szczepień pobierano surowicę kontrolną. 14 dni po ostatniej immunizacji króliki poddawano procedurze całkowitego skrwawiania. Krew zbierano do probówek o obj. 10 ml (probówki PMMA z granulatem i akceleratorem koagulacji, FL Medical, Włochy) i pozostawiano (bez mieszania/wytrząsania) do wykrzepienia przez noc, w temperaturze 20°C. Po wykrzepieniu krwi, surowice oddzielano od skrzepu poprzez wirowanie (1500 x g, 15 min. 4°C, Beckman J-2MC, rotor JS-7.5). Otrzymane surowice inkubowano bez mieszania przez 30 min. w temperaturze 56°C w celu inaktywacji białek układu dopełniacza. Surowice porcjowano i przechowywano w temperaturze - 20°C.
PL 229 194 B1
Przygotowanie formulacji szczepionki
Bezpośrednio przed immunizacją królików sporządzano szczepionkę, która zawierała dla: R1ZW-dTT:
• 40 pg of the antygenu, (glikokoniugatu) (objętość zależna od stężenia antygenu), • 80 pl of the MPLA adiuwant (1 mg/ml in skwalen/lecytyna/Tween-80/PBS • PBS, pH=7,3 do objętości 320 pL dla : R1ZW-RdTCdB:
• 60 pg antygenu, (glikokoniugatu) (objętość zależna od stężenia antygenu), • 80 pl adiuwantu MPLA (1 mg/ml in squalen/1 ecitine/Tween-80/PBS • PBS, pH=7,3 do objętości 320 pL.
Mieszaninę, bezpośrednio przed immunizacją, homogenizowano ultradźwiękami na lodzie (5-krotnie po 5 sek., 10 sek. przerwy między etapami sonikacji moc: 70 Weff) stosując sondę ultradźwiękową (homogenizator ultradźwiękowy Sonoplus, Bandelin, Niemcy).
Przygotowanie adiuwantu - monofosforylowanei pochodnej lipidu A Hafnia alvei (MPLA)
Adiuwant MPLA otrzymano z lipidu A H. alvei PCM 1200. W celu otrzymania MPLA, lipid A (200 mg) zawieszono w 20 ml 0,1 M HCl, a następnie przeprowadzono reakcję hydrolizy w 100°C przez 15 min. Po reakcji mieszaninę zliofilizowano. Formulację adiuwantu otrzymano wg metody Baldridge i Crane (Methods, 1999, 19:103-7). Przygotowano 12% roztwór lecytyny w skwalenie oraz 0,5% roztwór detergentu Tween 80 w buforze PBS. 10 mg MPLA zawieszano w 1 ml 12% mieszaniny skwalenu w lecytynie w 65°C na łaźni ultradźwiękowej Bandelin RK10H przez 2 godziny - do rozpuszczenia próbki, a następnie 0,5 ml otrzymanej zawiesiny zmieszano z 4,5 ml 0,5% roztworu detergentu Tween 80 w PBS. Otrzymaną mieszaninę sonikowano sondą ultradźwiękową, chłodząc mieszaninę na lodzie. Tak przygotowaną formulację adiuwantu zawierającą 1 mg/ml MPLA stosowano do przygotowania szczepionek.
P r z y k ł a d 2
Surowicę skierowaną przeciwko koniugatowi R1ZW-TBd (Cd) (Fig. 7) przebadano z 32 lipopolisacharydami: Escherichia coli R1, R2, R3, R4, K-12, Shigella flexneri 3A, Shigella sonnei fazy II, Salmonella Ra, S. sonnei fazy I, Escherichia coli O6, O18, O39, O10, O100, O111, O86, Klebsiella pneumoniae O1, O2a, O3, O4, O5, Plesiomonas shigelloides O17, O51, Proteus penneri 12, Proteus vulgaris 9/57, Proteus mirabilis O28, Citrobacter O16, Hafnia alvei 1209, H. alvei 1190, Salmonella enterica, Shigella flexneri VI, Bordetella pertussis 186. Immunobloting poprzedzono rozdziałam elektroforetycznym z żelu poliakryloamidowym, w warunkach denaturujących.
Dla surowicy anty-R1ZW-TBd (Cd) obserwowano silne reakcje krzyżowe dla szybko wędrujących frakcji rdzeniowych dla LPS Escherichia coli R1, S. sonnei fazy II i I, Escherichia coli O6, O18, O39, Bordetella, pertussis 186 oraz dla LPS Klebsiella pneumoniae O5 dla wolno wędrujących frakcji łańcuchów O-swoistych. Surowica słabiej reagowała z LPS Klebsiella pneumoniae O1, O2a, O23, O4, P. shigelloides 017, 051, P. mirabilis O28, Citrobacter O16, H. alvei 1209, 1190, S. flexneri VI. Wyniki zebrano w Tabeli 2.
PL229 194B1
Tabela 2. Tabela reaktywności surowicy R1ZW-TBd (Cd), anty-R1ZW-TTd i anty-R1-TTd z LPS
Bakterie Reaktywność surowicy RlZW-TBd Reaktywność surowicy RlZW-TTd Reaktywność surowicy Rl-TTd
E.coli R1 +++ -F++ -++
E.C0//R2 +
E.coli R3 +++
E.coli R4
E.coli K-12
S. flexneri 3a +
S. sonnei fazy II +++ -++ +++
Salmonella Ra
S. sonnei fazy 1 +++ )
E.coli 06 ++ +
E.coli 018 +++ +++ -I-++
E.coli 039 +++ -++ +++
E.coli 010
E.coli 0100
E.coli 0111 +
E.coli 086
K. pneuminlae Ol +
K. pneuminiae 02a +
K. pneuminiae 03 + 1' (silna reakcja w antygenie 0)
K. pneuminiae 04 +
K. pneuminiae 05 +++
P. shigeiioides 017 +
P. shigeiioides 051 +
p. penneri 12
P. vulgaris 9/57
P. mirabiiis 028 +
Citrobacter 016 ++
H. alvei 1209 +
H. alvei 1190 ++
Salmonella enterica +
S. ftexneri VI + + ++
8, pertussis 186 +++
Na uwagę zasługuje brak reakcji surowic anty-R1-TTd i anty-R1ZW-TTd z lipopolisacharydem Bordetella pertussis 186 (Fig. 8) podczas gdy surowica indukowana koniugatem R1ZW-TBd reagowała silnie z lipopolisacharydem Bordetella pertussis 186. Wszystkie surowice anty R1ZW-TBd reagowały z toksyną B Clostridium difficile.
Bakteriobójcze działanie surowicy anty-R1ZW-TBd sprawdzono dla następujących bakterii: Klebsiella pneumoniae 05, Escherichia coli 018, Escherichia coli 039, Escherichia coli R1 oraz Bordetella pertussis 186 (Tabela 3). Dla wszystkich surowic badano rozcieńczenia dla 1:2 do 1:2048 z wyjątkiem Bordetella pertussis - testy do rozcieńczenia surowicy 1:400. Wszystkie testy przeprowadzono dwukrotnie, dane liczbowe: średnia liczba kolonii na płytkach.
Surowica anty-R1ZW-TBd wykazała właściwości bakteriobójcze wobec bakterii Klebsiella pneumoniae 05 przy rozcieńczeniu 1:8.
W przypadku bakterii Escherichia coli R1 surowica anty-R1ZW-TBd wykazała właściwości bakteriobójcze do rozcieńczenia 1:2048.
PL229 194B1
Tabela 3
Bakteria K- K+ Miano bakteriobójczości
E. coli Rl* 90.5 24 1:2048, w tym stężeniu zabitych 52 % bakterii
E. coli 039 133 0,5 W przypadku bakterii E. coli 039 nie obserwowano wzrostu bakterii nawet w przypadku próby kontrolnej (same bakterie z komplementem) - bakteriobójcze działanie komplementu.
E. coli 018 156 77,5 Do rozcieńczenia surowicy 1:2 w przypadku E. coli 018 nie obserwowano właściwości bakteriobójczych surowicy anty-RlZW-RdTCdB
K. pneumoniae 05 96.5 83,5 1:8, w tym stężeniu zabitych 51% bakterii
B. pertussis 1904 964 1:200, w tym stężeniu zabitych 58% bakterii
K+ - kontrola: surowica królika nieimmunizowanego z komplementem, średnia liczba kolonii na płytkach
K- - surowica królika nieimmunizowanego bez komplementu * - test wykonany z użyciem płodowego komplementu cielęcego (źródło Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu, Katedra Immunologii Weterynaryjnej (prof. Tadeusz Stefaniak). Ze względu na ograniczoną ilość otrzymanego płodowego komplementu cielęcego wykonano testy bakteriobójczości wyłącznie na bakteriach Escherichia coli R1.

Claims (10)

1. Neoglikokoniugat składający się z białkowego nośnika zawierającego C-końcowy fragment toksyny B Clostriudium difficile zawierający 517 aa od reszty 1850-2366, oraz z co najmniej jednego oligocukru rdzenia Escherichia coli R1 LOS.
2. Neoglikokoniugat według zastrz. 1, znamienny tym, że oligocukier posiada wolną grupę aminową (α-GlcN) oraz wolną grupę karboksylową (a-Kdo).
3. Neoglikokoniugat według zastrz. 1, znamienny tym, że oligocukier Escherichia coli R1 LOS posiada strukturę o wzorze 1.
4. Neoglikokoniugat według zastrz. 1, znamienny tym, że białkowy nośnik posiada sekwencję aminokwasową SEKW NR ID 1.
5. Kompozycja farmaceutyczna zawierająca neoglikokoniugat jak zdefiniowano w zastrz. 1-4 oraz farmaceutycznie dopuszczalny nośnik i/lub adiuwant.
6. Szczepionka zawierająca kompozycję farmaceutyczną jak zdefiniowano w zastrz. 5.
7. Kompozycja farmaceutyczna jak zdefiniowano w zastrz. 5 do leczenia, zapobiegania i diagnozowania zakażeń wywołanych przez bakterie Gram-ujemne i Gram-dodatnie.
8. Kompozycja farmaceutyczna do zastosowania według zastrz. 7, znamienna tym, że bakterie stanowią Bordetella pertussis, Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Shigella spp., Clostridium difficile.
9. Przeciwciało generowane przez kompozycję jak określono w zastrz. 5.
10. Zestaw diagnostyczny do wykrywania zakażeń wywołanych przez Bordetella pertussis, Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Shigella spp., Clostridium difficile zawierający przeciwciało jak określono w zastrz. 9.
PL415211A 2015-12-09 2015-12-09 Neoglikokoniugat oligocukru Escherichia coli R1 LOS i toksoidu Clostridium difficile oraz jego zastosowanie w szczepionkach przeciwbakteryjnych PL229194B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL415211A PL229194B1 (pl) 2015-12-09 2015-12-09 Neoglikokoniugat oligocukru Escherichia coli R1 LOS i toksoidu Clostridium difficile oraz jego zastosowanie w szczepionkach przeciwbakteryjnych

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL415211A PL229194B1 (pl) 2015-12-09 2015-12-09 Neoglikokoniugat oligocukru Escherichia coli R1 LOS i toksoidu Clostridium difficile oraz jego zastosowanie w szczepionkach przeciwbakteryjnych

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL415211A1 PL415211A1 (pl) 2017-06-19
PL229194B1 true PL229194B1 (pl) 2018-06-29

Family

ID=59061625

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL415211A PL229194B1 (pl) 2015-12-09 2015-12-09 Neoglikokoniugat oligocukru Escherichia coli R1 LOS i toksoidu Clostridium difficile oraz jego zastosowanie w szczepionkach przeciwbakteryjnych

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL229194B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL415211A1 (pl) 2017-06-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6771499B2 (ja) 新規の多糖及びその使用
TWI751513B (zh) E. coli O-抗原多醣生物結合物、其製備方法及其使用方法
TWI771663B (zh) E. coli O-抗原多醣生物結合物之製備方法、其組合物及其使用方法
JP6381147B2 (ja) ピロリ菌リポ多糖類の外殻エピトープ
JP7485771B2 (ja) FimH変異体、その組成物、及びその使用
WO2019175147A1 (en) Vaccines against intra-abdominal infections
US20160136285A1 (en) An isolated immunogenic bacterial antigen and its use in the prevention and treatment of infections caused by gram-negative bacteria
JP2000509707A (ja) 免疫原性複合体、その使用、製造法およびそれを含有するワクチン
PL229194B1 (pl) Neoglikokoniugat oligocukru Escherichia coli R1 LOS i toksoidu Clostridium difficile oraz jego zastosowanie w szczepionkach przeciwbakteryjnych
JP2007537307A (ja) 多種ワクチン候補としての保存された内側コアリポ多糖体エピトープ:アクチノバシラス・プレウロニューモニー、マンヘイミア・ヘモリティカ及びパスツレラ・マルトシダを含む畜獣の病原菌によって起きる病気の予防のためのワクチン候補としての内核リポ多糖体エピトープ
RU2818894C1 (ru) Свободные от примеси с-полисахарида капсульные полисахариды streptococcus pneumoniae с остатком 2,5-ангидроманнозы на восстанавливающем конце
US20230346902A1 (en) Shigella-Tetravalent (Shigella4V) Bioconjugate
JP2025535072A (ja) モラクセラ科o結合型オリゴ糖転移酵素、糖鎖付加断片、及びそれらの使用
TW202434282A (zh) 多價疫苗組合物及其用途
EA046636B1 (ru) Способы получения биоконъюгатов полисахаридных о-антигенов e. coli, их композиции и способы их применения
KR20070031936A (ko) 다종 백신 후보로서의 보존된 내부 코어 지질다당류에피토프