PL231643B1 - Sposób kriokonserwacji nasienia ryb łososiowatych - Google Patents

Sposób kriokonserwacji nasienia ryb łososiowatych

Info

Publication number
PL231643B1
PL231643B1 PL415680A PL41568015A PL231643B1 PL 231643 B1 PL231643 B1 PL 231643B1 PL 415680 A PL415680 A PL 415680A PL 41568015 A PL41568015 A PL 41568015A PL 231643 B1 PL231643 B1 PL 231643B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
semen
cryopreservation
sperm
quality
straws
Prior art date
Application number
PL415680A
Other languages
English (en)
Other versions
PL415680A1 (pl
Inventor
Joanna NYNCA
Joanna Nynca
Andrzej CIERESZKO
Andrzej Ciereszko
Original Assignee
Inst Rozrodu Zwierzat I Badan Zywnosci Polskiej Akademii Nauk W Olsztynie
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Rozrodu Zwierzat I Badan Zywnosci Polskiej Akademii Nauk W Olsztynie filed Critical Inst Rozrodu Zwierzat I Badan Zywnosci Polskiej Akademii Nauk W Olsztynie
Priority to PL415680A priority Critical patent/PL231643B1/pl
Priority to PCT/PL2016/000050 priority patent/WO2017116250A1/en
Priority to EP16728744.0A priority patent/EP3397053A1/en
Publication of PL415680A1 publication Critical patent/PL415680A1/pl
Publication of PL231643B1 publication Critical patent/PL231643B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/10Preservation of living parts
    • A01N1/12Chemical aspects of preservation
    • A01N1/122Preservation or perfusion media
    • A01N1/125Freeze protecting agents, e.g. cryoprotectants or osmolarity regulators

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

Przedmiotem zgłoszenia jest sposób kriokonserwacji nasienia ryb, który charakteryzuje się tym, że pozyskuje się nasienia z przygotowanych samców lub neosamców, kontroluje jego jakość, rozrzedza się nasienie przy pomocy rozrzedzalnika glukozametanol i następnie poddaje się je ekwilibracji przez 15 min po czym napełnia się słomki i zamyka przy pomocy specjalistycznego aparatu oraz nanosi się na słomkę oznaczenie nasienia i poddaje zamrożeniu w parach ciekłego azotu.

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób kriokonserwacji nasienia ryb a w szczególności ryb łososiowatych i koregonidów.
Specyfiką nowoczesnej wylęgarni jest dywersyfikacja podaży opartej na produkcji gatunków, hybrydów i linii ryb łososiowatych przez okrągły rok. Podstawowy cel hybrydyzacji wynika z preferencji hodowlanych, które ukierunkowane są na uzyskanie osobników wykazujących pozytywne cechy wynikające z heterozji, w tym tempo wzrostu oraz, co szczególnie ważne w warunkach intensywnej hodowli ryb - odporności na choroby. U ryb łososiowatych korzystna jest także poliploidyzacja hybrydów, szczególnie triploidyzacja. Konieczność całorocznej podaży ryb stoi w bezpośredniej sprzeczności z biologią ryb łososiowatych, która charakteryzuje się wyraźnie zaznaczoną sezonowością rozrodu. Przełamanie sezonowości osiąga się poprzez wytworzenie sztucznych warunków fotoperiodu, ukierunkowanych na „oszukanie” natury, np. poprzez stworzenie skróconego (ok. 6 m-cy) lub wydłużonego (ok. 18 m-cy) roku. Skutkuje to przeniesieniem okresu gotowości rozrodczej (tarła) na terminy przed lub po tarle naturalnym. Podstawowym problemem w wylęgarnictwie jest konieczność zapewnienia dojrzałości samic i samców w tym samym czasie. Jest to zadanie trudne lub wręcz prawie niemożliwe, np. gdy tarła osobników rodzicielskich są znacznie od siebie oddalone w czasie.
Dla ryb łososiowatych opracowano i zastosowano z powodzeniem metodę wykorzystującą konfekcjonowanie nasienia w kulkach (Głogowski i wsp., 2000). Niestety omawiana metoda ma trzy podstawowe wady:
- brak możliwości identyfikacji poszczególnych prób nasienia (ponieważ nie ma możliwości znakowania indywidualnych porcji zamrożonego nasienia,
- potencjalne niebezpieczeństwo transmisji patogenów, przede wszystkim wirusów, pomiędzy próbami nasienia przechowywanymi w ciekłym azocie (ponieważ nasienie w kulkach nie jest odizolowane od ciekłego azotu),
- ograniczona możliwość manipulacji nasienia po rozmrożeniu
Dodatkowymi istotnymi czynnikami ograniczającymi szanse implementacji kriokonserwowanego nasienia do praktyki hodowli ryb są: niska jakość kriokonserwowanego nasienia (ok. 10% ruchliwości po rozmrożeniu) oraz zalecenia użycia nasienia natychmiast po rozmrożeniu. Konfekcjonowanie nasienia w kulkach wiąże się z koniecznością natychmiastowej aktywacji ruchu plemników po rozmrożeniu, co nie jest korzystne z powodu wyjątkowo krótkiego czasu ruchu plemników ryb łososiowatych (zaledwie 10-20 s). Z powyższych powodów zarzucono konfekcjonowanie nasienia w kulkach i w chwili obecnej stosuje się wyłącznie kriokonserwowane nasienie konfekcjonowane w słomkach, tj. w zamkniętych plastikowych rurkach o pojemności najczęściej 250 pl, ale jakość zamrożonego nasienia jest dalej ograniczona. Przyjmuje się, że do uzyskania podobnych wyników należy użyć 10 x więcej (tzn. 1000%) plemników kriokonserwowanych w porównaniu do nasienia świeżego (Billard, 1992), w ciągu 20 s po rozmrożeniu, co znacząco ogranicza czas wymagany do zapłodnienia (Lahnsteiner, 2000).
Celem wynalazku jest przeprowadzenie kriokonserwacji w czasie, kiedy jakość nasienia samców lub maskulinizowanych samic jest najwyższa, utworzenie banków nasienia podstawowych linii utrzymywanych w wylęgarni, wykorzystanie kriokonserwowanego nasienia do wielu specjalnych zastosowań w hodowli ryb w czasie, kiedy jakość ikry jest najwyższa.
Sposób kriokonserwacji nasienia ryb według wynalazku charakteryzuje się tym, że pozyskuje się nasienia z przygotowanych samców lub neosamców, kontroluje jego jakość, rozrzedza się nasienie przy pomocy rozrzedzalnika glukoza-metanol i następnie poddaje się je ekwilibracji przez 15 min po czym napełnia się słomki i zamyka przy pomocy specjalistycznego aparatu oraz nanosi się na słomkę oznaczenie nasienia i poddaje zamrożeniu w parach ciekłego azotu.
Przygotowanie samców lub neosamców w optymalnym stadium dojrzałości płciowej, jest niezmiernie ważne dla powodzenia kriokonserwacji. Ponieważ kriokonserwacja z definicji powoduje uszkodzenia komórek, dlatego dobra jakość materiału wyjściowego (nasienia) jest kluczowa.
Pozyskanie nasienia i kontrola jego jakości, polega na sprawdzeniu koncentracji i ruchliwości plemników. Koncentracja jest szacowana kolorymetrycznie, zaś ruchliwość poprzez obiektywną komputerową metodę analizy ruchliwości plemników, CASA). W wyniku tych testów nasienie będzie kwalifikowane do zamrażania. Rozrzedzenie nasienia przy pomocy rozrzedzalnika glukoza-metanol i krótka (15 min) ekwilibracja.
Napełnienie i zamknięcie słomek przy pomocy specjalistycznego aparatu oraz jednoczesne nadrukowanie informacji na słomki przy pomocy specjalistycznego aparatu.
PL 231 643 Β1
Zamrażanie w parach ciekłego azotu.
Kontrola jakości zamrożenia. Jakość nasienia jest sprawdzana na podstawie ruchliwości po rozmrożeniu i na tej podstawie kwalifikowana do przechowywania. Przechowywanie nasienia w ciekłym azocie i używanie go do realizacji zadań produkcyjnych.
Wyniki uzyskane w sezonie jesień 2013 - wiosna 2014 wskazują na uniwersalność opracowanego sposobu kriokonserwacji dla ryb łososiowatych. Uzyskano wysoką jakość nasienia po rozmrożeniu dla wszystkich badanych gatunków zarówno z rodzaju Salmo jak i Salvelinus. Także wyniki uzyskane dla nasienia siei dwukrotnie przewyższają uzyskane ostatnio rezultaty co zostało uwidocznione w poniższej tabeli.
Odsetek ruchliwych plemników i zdolność zapładniająca nasienia kriokonserwowanego z użyciem extendera glukoza-metanol (średnie ± SD). Przedstawiano bezwzględne dane dla odsetka zaoczkowania, wynoszą one 80-100% wartości kontrolnych.
Gatunek Ruchliwość plemników (%) Zaoczkowanie (%)
Pstrąg tęczowy 50 + 8 79 + 9
Pstrąg potokowy 74 + 7 93 + 7
Pstrąg źródlany 57 ±4 45 + 13
Sieja 54 + 6 61+9
Neosamce pstrąga tęczowego 54 ±12 79 ±6
Przeprowadzone zostały pierwsze doświadczenia ukierunkowane na przeskalowanie metodyki w kierunku zastosowania do zapłodnienia większej ilości ikry. Doświadczenia w tym kierunku są kluczowe dla wdrożenia metodyki do praktyki. Wstępne wyniki wskazują na wysokie wartości zapłodnienia (83-90%) dla liczby ziaren ikry w zakresie 100-1600, co oznacza 16-krotny wzrost w porównaniu do dotychczas stosowanej procedury. Może to stanowić przełomowe osiągnięcie w kierunku przeskalowania metodyki. Wbrew aktualnym poglądom, przedstawione wysokie wyniki zapłodnienia uzyskano dla nasienia maskulinizowanych samic wiosennego tarła (maj). Do tej pory uważano, że nasienia z tego okresu nie nadaje się do zamrażania. W drugim przykładzie, w warunkach produkcyjnych udało się zapłodnić trzy porcje ikry, po 10 000 ziaren każda.
Uzyskane wyniki potwierdzają skuteczność i uniwersalność opracowanej metodyki. Wynalazek umożliwił osiągnięcie pierwszych postępów w przeskalowaniu co zostało zobrazowane na zamieszczonym wykresie.
Liczba ziaren ikry
Zdolność zapładniająca kriokonserwowanych plemników maskulinizowanych samic pstrąga tęczowego w zależności od liczby ziaren ikry w czasie zapłodnienia.
Przedmiot wynalazku został przedstawiony w przykładowym wykonaniu z wykorzystaniem sposobu kriokonserwacji nasienia pstrąga tęczowego. W przykładzie ukazano przydatność czterech rozrzedzalników (I metanol, glukoza; II DMSO, glukoza; III metanol, sacharoza z dodatkiem żółtka,
PL 231 643 B1
IV metanol i sacharoza) do kriokonserwacji nasienia pstrąga tęczowego w słomkach (Ryc. 1, Nynca i in., 2013). Rozrzedzalniki l i II okazały się najbardziej skuteczne. Pomimo obniżonej ruchliwości i żywotności plemników nasienia mrożonego z użyciem rozrzedzalnika I i II, uzyskano wyniki wskazujące na utrzymanie zbliżonej zdolności zapładniającej nasienia mrożonego do nasienia świeżego. Należy podkreślić, że stosunek plemników na jajo w czasie zapłodnienia wynosił 2 mln, co jest niższe od ok. 3 mln plemników/jajo zalecanych w procedurach zapłodnienia z wykorzystaniem kriokonserwowanego nasienia (Billard 1992). W związku z tym osiągnięto założony cel polegający na wstępnym opracowaniu metodyki konfekcjonowania nasienia pstrąga tęczowego w słomach, alternatywnej dla tradycyjnej procedury kriokonserwacji w kulkach. Metodyka z wykorzystaniem metanolu i glukozy stanowiła punkt wyjściowy do dalszych prac ukierunkowanych na doskonalenie kriokonserwacji nasienia pstrąga tęczowego.
Kriokonserwowane nasienie będzie wykorzystywane do: zachowania materiału genetycznego cennych linii do pracy hodowlanej, wykorzystania nasienia do stymulacji gynogenezy, produkcji pożądanych krzyżówek towarowych, oraz zakonserwowania niewykorzystanych nadwyżek nasienia.
Zastrzeżenie patentowe

Claims (1)

1. Sposób kriokonserwacji nasienia ryb z wykorzystaniem jego zamrażania znamienny tym, że pozyskuje się nasienia z przygotowanych samców lub neosamców, kontroluje jego jakość, rozrzedza się nasienie przy pomocy rozrzedzalnika glukoza-metanol i następnie poddaje się je ekwilibracji przez 15 min po czym napełnia się słomki i zamyka przy pomocy specjalistycznego aparatu oraz nanosi się na słomkę oznaczenie nasienia i poddaje zamrożeniu w parach ciekłego azotu.
PL415680A 2015-12-31 2015-12-31 Sposób kriokonserwacji nasienia ryb łososiowatych PL231643B1 (pl)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL415680A PL231643B1 (pl) 2015-12-31 2015-12-31 Sposób kriokonserwacji nasienia ryb łososiowatych
PCT/PL2016/000050 WO2017116250A1 (en) 2015-12-31 2016-05-09 Salmonid sperm cryopreservation method
EP16728744.0A EP3397053A1 (en) 2015-12-31 2016-05-09 Salmonid sperm cryopreservation method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL415680A PL231643B1 (pl) 2015-12-31 2015-12-31 Sposób kriokonserwacji nasienia ryb łososiowatych

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL415680A1 PL415680A1 (pl) 2017-07-03
PL231643B1 true PL231643B1 (pl) 2019-03-29

Family

ID=56119722

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL415680A PL231643B1 (pl) 2015-12-31 2015-12-31 Sposób kriokonserwacji nasienia ryb łososiowatych

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP3397053A1 (pl)
PL (1) PL231643B1 (pl)
WO (1) WO2017116250A1 (pl)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20170182220A1 (en) 2014-02-26 2017-06-29 University Of Massachusetts Degradable hydrogel with predictable tuning of properties, and compositions and methods thereof
CN107624754A (zh) * 2017-10-24 2018-01-26 浙江省淡水水产研究所 一种用于河川沙塘鳢精子保存的抗冻液及其使用方法

Also Published As

Publication number Publication date
EP3397053A1 (en) 2018-11-07
WO2017116250A1 (en) 2017-07-06
PL415680A1 (pl) 2017-07-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Frijters et al. What affects fertility of sexed bull semen more, low sperm dosage or the sorting process?
Judycka et al. Opportunities and challenges related to the implementation of sperm cryopreservation into breeding of salmonid fishes
Cejko et al. Artificial seminal plasma improves motility and fertilisation capacity of common carp Cyprinus carpio L. sperm during one hour of storage
Che‐Zulkifli et al. Cryopreservation of spermatozoa on grouper species: a review
Dietrich et al. The effect of cryopreservation of semen from whitefish (Coregonus lavaretus) and northern pike (Esox lucius) using a glucose-methanol extender on sperm motility parameters and fertilizing ability
Bernáth et al. Commercial-scale out-of-season cryopreservation of Eurasian perch (Perca fluviatilis) sperm and its application for fertilization
Nahiduzzaman et al. Sperm cryopreservation of the Indian major carp, Labeo calbasu: Effects of cryoprotectants, cooling rates and thawing rates on egg fertilization
Tekin et al. Effects of glycerol additions on post‐thaw fertility of frozen rainbow trout sperm, with an emphasis on interaction between extender and cryoprotectant
Lujić et al. Fertilizing capacity and motility of tench T inca tinca (L., 1758) sperm following cryopreservation
Riley et al. Cryopreservation of sperm of red snapper (Lutjanus campechanus)
Roushdy et al. Semen cryopreservation for two local chicken strains as a tool for conservation of Egyptian local genetic resources
PL231643B1 (pl) Sposób kriokonserwacji nasienia ryb łososiowatych
Alvarez et al. High fry production rates using post-thaw silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) spermatozoa under farming conditions
Chereguini et al. Cryopreservation of turbot Scophthalmus maximus (L.) sperm: fertilization and hatching rates
Agarwal et al. Characterization and short-term storage of semen of a coldwater Himalayan fish species
Norðberg et al. Cryopreservation of lumpfish Cyclopterus lumpus (Linnaeus, 1758) milt
Hossen et al. Effect of extenders and storage periods on motility and fertilization rate of Silver Barb, Barbonymus gonionotus (Bleeker, 1850) semen
Riley Refrigerated storage and cryopreservation of sperm for the production of red snapper and snapper hybrids
CN110036950B (zh) 一种海水养殖虹鳟的人工杂交育种方法
Oyeleye et al. EVALUATION OF MOTILITY OF THE SHORT-TERM CRYOPRESERVED SPERM OF THE AFRICAN GIANT CATFISH (CLARIAS GARIEPINUS BURCHELL, 1822)
Streit Jr et al. Germplasm banking and its role in the development of the fish genetic improvement programme in Brazil
Umaa Rani et al. Fertilizability of cryopreserved and cadaveric fish spermatozoa of freshwater catfish P angasius sutchi (F owler, 1937)
Hossian et al. Use of Cryopreserved Sperm of Grass Carp (Ctenopharyngodon idella) for Seed Production at the Hatchery Level of Bangladesh—A Need for Development of Germplasm Repositories
Antenucci Optimizing genetic resource conservation and semen cryobanking in aquatic and avian species with a focus on investigating the impact of ovarian fluid on fertilization success in native Mediterranean trout
Jahageerdar et al. Effective spermatozoa to egg ratio for artificial insemination in Labeo rohita (Ham.)