PL233780B1 - Zastosowanie pochodnych fenoksazonowych jako inhibitorow aminopeptydaz - Google Patents

Zastosowanie pochodnych fenoksazonowych jako inhibitorow aminopeptydaz Download PDF

Info

Publication number
PL233780B1
PL233780B1 PL418628A PL41862816A PL233780B1 PL 233780 B1 PL233780 B1 PL 233780B1 PL 418628 A PL418628 A PL 418628A PL 41862816 A PL41862816 A PL 41862816A PL 233780 B1 PL233780 B1 PL 233780B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
aminopeptidases
derivatives
journal
phenoxazone
aminopeptidase
Prior art date
Application number
PL418628A
Other languages
English (en)
Other versions
PL418628A1 (pl
Inventor
Miroslaw Giurg
Ewelina Tomczak-Weglarz
Ewa Suska
Artur Mucha
Original Assignee
Politechnika Wroclawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Wroclawska filed Critical Politechnika Wroclawska
Priority to PL418628A priority Critical patent/PL233780B1/pl
Publication of PL418628A1 publication Critical patent/PL418628A1/pl
Publication of PL233780B1 publication Critical patent/PL233780B1/pl

Links

Landscapes

  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Heterocyclic Carbon Compounds Containing A Hetero Ring Having Nitrogen And Oxygen As The Only Ring Hetero Atoms (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest zastosowanie pochodnych fenoksazonowych w postaci: AktynomycynyD, Kwestiomycyny A oraz pokrewnych związków fenoksazonowych jako inhibitorów aminopeptydaz w szczególności alanylowej i metioninowej, znajdujących zastosowanie w medycynie jako składniki aktywne leków przeciwnowotworowych oraz w diagnostyce medycznej.
2-Amino-3H-fenoksaz-3-ony stanowią fragment aktywny szeregu biologicznie aktywnych związków naturalnych. Przykładem są Aktynomycyny, antybiotyki polipeptydowe znane z pracy przeglądowej Hollstein Chemical Reviews, 1964, 625-652. Aktynomycyna D jest stosowana w leczeniu chorób nowotworowych. Jej płaski szkielet fenoksazonowy selektywnie interkaluje w helisę DNA, w wyniku spowalniając wytwarzanie białek niezbędnych do rozwoju szybko dzielących się komórek nowotworowych podobnie jak analogi Aktynomycyn, znane z publikacji Veselkov et al. European Journal of Biochemistry, 2003, 270, 4200-4207, Teller et al. Journal of National Cancer Institute, 1962, 28(2), 353-364, DoPaolo et al. Antibiotics and Chemotherapy (Washington, D.C.) (1957), 7, 465-470, Ishida et al. Anti-Cancer Drugs, 1996, 7, 591-595.
Z artykułu przeglądowego Jose & Burgess Tetrahedron, 2006, 62, 11021-11037 znane są również właściwości fluorescencyjne fenoksazononów. Patent WO 2010/062536 A2 ujawnia ich przydatność w identyfikacji martwych komórek, a patent US 2010/0000032 A1 ujawnia ich przydatność jako barwniki syntetyczne. 2-Amino-3H-fenoksaz-3-onowe związki naturalne z wolną grupą karboksylową, kwasy plektosphaeroilowe znane z publikacji Carr et al. Organic Letters, 2009, 11(14), 2996-2999, oraz kwas cynnabarynowy znany z publikacji Pasceri et al. Journal of Medicinal Chemistry, 2013, 56, 33103317, hamują aktywność 2,3-dioksygenazy indoloaminowej.
Z publikacji Maskey et al. The Journal of Antibiotics, 2003, 56, 622-629 i Imai et al. The Journal of Antibiotics, 1990, 43(12), 1606-1607 znane są Chandrananimycyny i Eksfoliazon, związki acylowane na grupie aminowej 2-aminofenoksazonów, wykazujące aktywność przeciwnowotworową. Z publikacji Zaytsev et al. Organic Biomolecular Chemistry, 2008, 6, 682-692 i Bebernjak et al. Journal of Medicinal Chemistry, 2016, 59, 4476-4487, znanej jest wykorzystanie ^-alanylowych acylowanych pochodnych 7 i 8 amino-3H-fenoksaz-3-onów w wykrywaniu bakteryjnej aminopeptydazy ^-alanylowej i identyfikacji uciążliwej klinicznie bakterii gram ujemnej, Pseudomonas aeruginosa.
Aminopeptydazy znane z opracowania literaturowego Rawlings et al. Nucleic Acids Research, 2006, 34, D270-D272 należą do grupy metalozależnych egzopeptydaz, które katalizują uwolnienie aminokwasów z N-końca łańcucha polipeptydowego. Podwyższona ekspresja aminopeptydaz uwalniających naturalne aminokwasy, aminopeptydazy alanylowej (E.C. 3.4.11.2, aminopeptydaza N, APN, CD13) znanej z artykułu przeglądowego Luan & Xu, Current Medicinal Chemistry, 2007, 14, 639-647 i aminopeptydazy metioninowej typ 2 (E.C. 3.4.11.18, MetAP2) znanej z opracowania Lowther & Matthews, Biochimica et Biophysica Acta, 2000, 1477(1-2), 157 - 167, jest kojarzona w artykułach przeglądowych Mina-Osorio, Trends in Molecular Medicine, 2008, 14, 361-371 i Wickstrom et al. Cancer Science, 2011,102, 501-508 z niektórymi stanami chorobowymi takimi jak białaczka i nowotwory. Z publikacji Lowther & Matthews, Biochimica et Biophysica Acta, 2000, 1477 (1-2), 157-167, i Selvakumaret al. Biochimica et Biophysica Acta, 2006, 1765(2), 148-154 znanym jest, że MetAP2 bierze udział w powstawaniu nowych naczyń krwionośnych (angiogenezie) i w zaprogramowanej śmierci komórki (apoptozie). W publikacji Catalano et al. The American Journal of Pathology, 2001, 159(2), 721-731 znanym jest, że MetAP2 jest głównym regulatorem proliferacji i apoptozy podczas rozwoju międzybłoniaka opłucnej.
Podwyższony poziom APN został zaobserwowany w komórkach takich nowotworów jak czerniak [Fujii et al. Clinical & Eexperimental Metastasis, 1995, 13(5), 337-344], rak nerki [Kitamura et al. Hinyołdka Kiyo. Acta Urologica Japonica, 1990, 36(5), 535-539], rak trzustki (carcinoma pancreatic) [Ikeda et al. ClinicalCancerResearch, 2003, 9(4), 1503-1508], rak okrężnicy [Hashida et al. Gastroenterology, 2002, 122(2), 376386], rak prostaty [Ishii et al. Biological & Pharmaceutical Bulletin, 2001,24(3), 226-230], rak żołądka [CariMcGrath et al. International Journal of Oncology, 2004, 25(5), 1223-1232] czy rak tarczycy [Kehlen, et al. Cancer Research, 2003, 63(23), 8500-8506]. Z publikacji Griffith et al. Chemistry&Biology, 1997, 4(6), 461471 i z pracy przeglądowej Mucha et al. Biochimie, 2010, 92(11), 1509-1529 znanym jest, że fumagilina i jej syntetyczny analog ovalicin wiążą kowalencyjnie z MetAP2 i hamują jej aktywność.
Sterowanie aktywnością aminopeptydaz tak zwierzęcych jak i ludzkich umożliwi opracowanie nowej generacji leków do zastosowania zarówno w leczeniu ludzi jak i w hodowli. Literatura dotycząca odwracalnych inhibitorów MetAP2 jest ograniczona do kilku publikacji. Odwracalne inhibitory MetAP2 to związki oparte o strukturę fumagiliny i bestatyny [Zhou et al. Journal of Medicinal Chemistry, 2003, 46(16), 3452-3454, Sheppard et al. Bioorganic&Medicinal Chemistry Letters, 2004, 14(4), 865-868],
PL 233 780 Β1
1,2,4-triazolu [Kallander et al. Journal of MedicinalChemistry, 2005, 48(18), 5644-5647] i pirazoloindoli [McBride et al. Bioorganic&MedicinalChemistryLetters, 2016, 26(12), 2779-2783],
Do najważniejszych inhibitorów APN należą Bestatyna znana z publikacji Wilkes & Prescott, Journal of BiologicalChemistry, 1985, 260(24), 13154-13162], kurkumina znana z publikacji Shim et al. Chemistry&Biology, 2003, 10(8), 695-704, kwas betulinowy znany z publikacji Drąg et al. Molecules, 2009, 14(4), 1639-1651, fosfonowe analogi aminokwasów przykładowo znane z publikacji Węglarz-Tomczak et al. European Journal of Medicinal Chemistry, 2016,117,187-196 i analogi kwasu hydroksamowego znane z publikacji Drąg et al. Bioorganic&MedicinalChemistryLetters, 2007, 17(6), 1516-1519 czy fosfinowe analogi di peptydów znane z publikacji Grembecka et al. Journal of MedicinalChemistry, 2003, 46(13), 2641-2655 i Vassiliou et al. Journal of Medicinal Chemistry, 2014, 57(19), 8140-8151 oraz α-aminowe pochodne tetralonu znane z publikacji Revelant et al. Bioorganic&MedicinalChemistry, 2015, 23(13), 3192-3207. Wszystkie te związki oddziałują odwracanie z APN. Chociaż w literaturze opisanych jest szereg związków hamujących aktywności tych enzymów, lecz nie ma doniesień o inhibitorach działających zarówno na APN jak i na MetAP2 równocześnie.
Istotą rozwiązania według wynalazku jest zastosowanie pochodnych fenoksazonowych o wzorach ogólnych 1 lub 2, w których R1 oznacza H, Me, Cl, R2 oznacza H, ó' . ó , NH2, NHCOXnY, R3 oznacza H, NH2, R4oznacza H, COOH, F, Cl, R5 oznacza H, t-Bu, COOH, F, Cl, Br, R6 oznacza H, Me, R7 oznacza Cl, Br, w których X oznacza CH2 lub (Z)-1,2-eten i n stanowi liczbę 1,2 lub 3,
Y oznacza H, COOH, do leczenia chorób nowotworowych, korzystnie w stosunku do aminopeptydaz: SsAPN, HsAPN lubHsMetAP2.
Przedmiot wynalazku przedstawiony jest bliżej w przykładzie realizacji w procedurze wyznaczania Ki oraz w tabeli 1.
Wyznaczenie K.
Pomiary spektrofluorometryczme wykonywano przy użyciu spektrometru Spectra ΜΑΧ Gemini EM fluorometer (Molecular Devices).
Rekombinowana ludzka aminopeptydaza alanylowa (HsAPN) została zakupiona w formie liofilizowanej. Enzym został rozpuszczony w 50 mM buforze Tris-HCI o pH = 7,0 i był używany bezpośrednio w badaniach kinetycznych.
Aminopeptydaza alanylowa z nerki wieprzowej (SsAPN) została zakupiona w formie liofilizowanej. Enzym został rozpuszczony w 50 mM buforze Tris-HCI o pH = 7,5 i był użyty bezpośrednio w badaniach kinetycznych.
Rekombinowana ludzka aminopeptydaza metioninowa 2 (HsMetAP2) została zakupiona w formie liofilizowanej. Enzym został rozpuszczony w 50 mM buforze 100 mMTris-maleateo pH = 7,5 zawierającym CoCI2 (0,1 mM), NaCI (100 mM) oraz 0,075% albuminy i był używany bezpośrednio w badaniach kinetycznych.
Substraty fluorogeniczne Ala-AMC (L-alanylo-7-amido-4-metylokumaryna) i Met-AMC (L-metionino-7-amido-4-metylokumaryna) zostały zakupione w PeptaNova.
Aktywność inhibitorów wobec SsAPN, HsAPN i MetAP2 była badana na dziewięćdziesięciosześcio dołkowej płytce w dwóch długościach fal: wzbudzenia w 355 nm i emisji w 460 nm w odpowiednim dla każdego enzymu buforze w 31 OK. Enzymy były inkubowane przez 30-60 minut z inhibitorem w ośmiu różnych stężeniach, przed dodaniem substratu w odpowiednim stężeniu. Uwolnienie fluorofomu było monitorowane przez 15 minut. Szybkość hydrolizy była obliczana na podstawie przyrostu fluorescencji w czasie. Mechanizmy inhibicji były określane na podstawie wykresu Linewea vera-Burka, Dixona oraz z zależności IC50 od stężenia enzymu [E] i substrata [S], Związki wykazują mechanizm odwracalny szybkowiążący kompetycyjny wobec SsAPN, HsAPN i MetAP2. Stała K była obliczana przy użyciu równania Chenga-Prusoffa dla inhibitorów kom petycyjnych (K = IC50ĄI + (S/Km)]) z IC50 wyznaczonej z wykresu szybkości hydrolizy V w funkcji logarytmu stężenia inhibitora [I] za pomocą programu GraphPadPrism (K - stała inhibicji, IC50 - stężenie inhibitora, które wywołuje 50% inhibicji. V
- szybkość hydrolizy, [E] - stężenie enzymu, [I] - stężenie inhibitora, Km - stała Michaelisa-Menten, [S]
- stężenie substratu, IC50 - stężenie inhibitora, które wywołuje 50% inhibicji).
PL 233 780 Β1
Stężenie DMSO w próbce było mniejsze niż 1% (v/v).
W tabeli 1 przedstawiono wyniki stałej inhibicji K wobec SsAPN, HsAPN i MetAP2 dla poszczególnych pochodnych fenoksazonowych.
Wtab. 1 użyto następujących oznaczeń: SsAPN - aminopeptydaza alanylowa z nerki wieprzowej, HsAPN - rekombinowana ludzka aminopeptydaza alanylowa, HsMetAP2 - rekombinowana ludzka aminopeptydaza metioninowa 2.
Tabela 1.
Wyniki stałej inhibicji Ki wobec SsAPN, HsAPN i HsMetAP2
KilnM/di-n'1
Związek SsAPN IIsAPN HsMetAP2
_^,M42 13,39 26,02 2,09
r
HV JJ Ck 4,52 12,02 6,88
Ϊ
0
hcAy 'YS 4,55 16,08 8,05
l
52,96 50,47 92,03
ί| ^_--ΝΗ2 6,81 16,01 9,94
F
li 171,18 45,07 232,4
i 7,29 3,73 38,15
Cl'^
135,94 204,1 117,28
o
ci^^ Α^.νη2 T 4,26 4,73 135,42
Cl
o
ξ JL^nh2 T 5,65 7,63 223,53
Br
Cl
Jl 52,88 25,97 102,75
Cl^ γ^ο
nh2
H
f-Bu-A N CHa Y T 102,6 87,32 476,1
A o ^0
PL 233 780 Β1
Η IL JL·.J-L. ο 141,3 70,72 120,51
Η I ΧΧΧΧϊ cr ο 267,39 >500 >500
Η CCCCJ 10,32 13,84 7,09
Η I f-Βικ ^-Ν ,COOH χιχιτ^ ''Ο Ό 18,06 11,20 6,23
CCO^U 6,58 27,42 9,40
Η I 1 JX>Xs Ο COOH 19,15 29,17 2,65
Η 0X0^°° 16,70 24,96 8,63
Η I f-Bu. ,Ν. .hL >< <ίι< >·< COOH IL Jcs. Jx_ ο xr ~^ o 16,33 33,42 23,29
H 0 αχό~\> 48,75 19,84 -
°x /=\ ιΛ-J IL JL Js^ o ^cr 'ί^'<·ο 133,46 166,42 >500
°x Me Me N—i (W 254,99 36,33 190,34
PL 233 780 Β1
Po przeanalizowaniu tabeli 1 i sposobu oznaczenia aktywności, zasadniczą korzyścią wynikającą ze stosowania inhibitorów będących przedmiotem wynalazku jest wysoka zdolność hamowania aktywności aminopeptydaz wykazujących podwyższone stężenie podczas rozwoju choroby nowotworowej. Stała inhibicji fenoksazonów mieści się w przedziale od 500 pmol/dm3 do 2,09 pmol/dm3. Zaletą jest zdolność hamowania przez fenoksazony dwóch aminopeptydaz ludzkich jednocześnie.
7- Fluoro-3H-fenoksaz-3-on i 7-chloro-3H-fenoksaz-3-on wykazują stałą inhibicji w przedziale 3,73-9,94 pmol/dm3 względem obu typów aminopeptydaz. Również karboksylowane w pozycji 7 lub 8 2-amino-3H-fenoksaz-3-onywykazują zdolność hamowania dwóch typów aminopeptydaz w przedziale 4,52-8,05 pmol/dm3.
8- tert-Butyl owa pochodna Kwestiomycyny A wykazuje zdolność hamowania ludzkiej aminopeptydazy metioninowej HsMetAP2 na poziomie 2,09 μηΊθΙ/dm3.
Acylowane pochodne Kwestiomycyny A połączone łącznikiem alkilowym lub grupą (Z)-1,2-etenową z wolna grupą karboksylową wykazują aktywność wobec HsMetAP2 rzędu 7,09-9,40 μηΊθΙ/dm3. Dodatkową zaletą jest wysoka aktywność względem SsAPN związków z krótszym łącznikiem na poziomie 6,58-10,32 μηΊθΙ/dm3. Ponadto pochodne z krótszymi łącznikami podstawione grupą 8-tert-butylową wykazują względem HsMetAP2 stałą inhibicji rzędu 2,65-6,23 μηΊθΙ/dm3.
Zasadniczą korzyścią techniczno-użytkową jest wysoka zdolność hamowania aktywności obu testowanych aminopeptydaz ludzkich, HsAPN oraz HsMetAP2 na poziomie odpowiednio 11,20 μπιοΙ/ dm3 i 6,23 μηΊθΙ/dm3 przez fenoksazon w postaci kwasu 4-[(8-tert-butylo-3-okso-3H-fenoksaz-2-ylo)amino]4-okso-butanowego, oraz na poziomie odpowiednio 12,02 μηΊθΙ/dm3 i 6,88 μηΊθΙ/dm3 przez związek w postaci 2-amino-8-karboksy-3H-fenoksaz-3-onu.
2-Amino-1H-fenoksaz-1-ony przedstawione wzorem 2 wykazują wysoką aktywność rzędu 4,26-7,63 μηΊθΙ/dm3 względem testowanych aminopeptydaz alanylowych. Dodatkową zaletą jest aktywność związku z mniejszym podstawnikiem chlorowym w postaci 2-amino-4,8-dichloro-1H-fenoksaz-1-onu rzędu 4,26-4,73 μηΊθΙ/dm3.
Zastrzeżenia patentowe

Claims (3)

1.
Pochodne fenoksazonowe o wzorach ogólnych 1 lub 2 w których R1 oznacza H, Me, o o
o
NH2, NHCOXnY, R3 oznacza H, NH2
2.
Cl, R2 oznacza H, °
R4H COOH, F Cl R5 oznacza H, t-Bu, COOH, F, Cl, Br, R6 oznacza H, Me R7 oznacza Cl, Br w których X oznacza CH2 lub (Z)-1,2-eten i n stanowi liczbę 1,2 lub 3, o
Y oznacza H, COOH > do zastosowania w leczeniu chorób nowotworowych. Pochodne fenoksazonowe zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że pochodne fenoksazonowe o wzorach ogólnych 1 lub 2 określonych w zastrz. 1 stosuje się do leczenia chorób nowotworowych, w stosunku do aminopeptydaz wybranych z grupy aminopeptydaz alanylowych (E.C.
3.3.12.2, aminopeptydaza N, APN, CD12) SsAPN i HsAPN i aminopeptydazy metioninowej typ 2 (E.C. 3.3.H.18, MetAP2), HsMetAP2.
PL418628A 2016-09-09 2016-09-09 Zastosowanie pochodnych fenoksazonowych jako inhibitorow aminopeptydaz PL233780B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL418628A PL233780B1 (pl) 2016-09-09 2016-09-09 Zastosowanie pochodnych fenoksazonowych jako inhibitorow aminopeptydaz

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL418628A PL233780B1 (pl) 2016-09-09 2016-09-09 Zastosowanie pochodnych fenoksazonowych jako inhibitorow aminopeptydaz

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL418628A1 PL418628A1 (pl) 2017-09-25
PL233780B1 true PL233780B1 (pl) 2019-11-29

Family

ID=59897638

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL418628A PL233780B1 (pl) 2016-09-09 2016-09-09 Zastosowanie pochodnych fenoksazonowych jako inhibitorow aminopeptydaz

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL233780B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL418628A1 (pl) 2017-09-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Chang et al. Metabolic mechanism investigation of antibacterial active cysteine-conjugated gold nanoclusters in Escherichia coli
Zhu et al. Discovery of cyclic acylguanidines as highly potent and selective β-site amyloid cleaving enzyme (BACE) inhibitors: Part I Inhibitor design and validation
Fu et al. A new ternary copper (II) complex derived from 2-(2′-pyridyl) benzimidazole and glycylglycine: Synthesis, characterization, DNA binding and cleavage, antioxidation and HSA interaction
Shahabadi et al. In vitro study of DNA interaction with a water-soluble dinitrogen Schiff base
Khorasani-Motlagh et al. Fluorescence studies, DNA binding properties and antimicrobial activity of a dysprosium (III) complex containing 1, 10-phenanthroline
Gallegos et al. Jizanpeptins, cyanobacterial protease inhibitors from a Symploca sp. cyanobacterium collected in the Red Sea
Zygiel et al. Exploring iron withholding by the innate immune protein human calprotectin
Ozdemir et al. Alkyl sulfonic acide hydrazides: Synthesis, characterization, computational studies and anticancer, antibacterial, anticarbonic anhydrase II (hCA II) activities
EA201170139A1 (ru) 5-фенилизоксазол-3-карбоксамиды с противоопухолевыми активностями, модулирующие hsp90
Brunel et al. Polyamino geranic derivatives as new chemosensitizers to combat antibiotic resistant Gram-negative bacteria
Desvergne et al. Dimerized linear mimics of a natural cyclopeptide (TMC-95A) are potent noncovalent inhibitors of the eukaryotic 20S proteasome
Moradi et al. Evaluation of the effects of isoniazid and rifampin on the structure and activity of pepsin enzyme by multi spectroscopy and molecular modeling methods
Xiao et al. Novel fluorescent cephalosporins: synthesis, antimicrobial activity and photodynamic inactivation of antibiotic resistant bacteria
Sato et al. Demonstration of direct binding of cIAP1 degradation-promoting bestatin analogs to BIR3 domain: synthesis and application of fluorescent bestatin ester analogs
Gungor et al. Cu (II) complexes of biguanidine ligands: Structural characterisation, DNA binding and antimicrobial properties
Upritchard et al. Adsorption of enterobactin to metal oxides and the role of siderophores in bacterial adhesion to metals
Sriraman et al. Synthesis, crystal structure, DFT, docking and biological activity studies of (NZ, N’Z)-3, 3’-(piperazine-1, 4-diyl) bis (N-(-4-methyl benzylidene) propane-1-amine)
Nuţă et al. Synthesis, characterization and antimicrobial activity evaluation of new agents from benzamides class
Vijayan et al. Mixed ligand octahedral Zn (II) complex of N^ N^ O donor tridentate Schiff base ligand and N^ N donor bidentate bipyridine ligand: Synthesis, characterization, biological activity and cytotoxicity
Jayaram et al. Synthesis, Biological Evaluation and Molecular Modeling Studies of novel 2-[(2, 4-dioxo-1, 3-thiazolidin-3-yl) acetyl]-N-arylhydrazinecarbothioamides as Antibacterial Agents Targeting Alanine Racemase Enzyme
Ayyash et al. Synthesis and Description of Some New Heterocyclic Imideis Compounds Derived from Ciprofloxacin Drug
Vignesh et al. Molecular interaction studies of some Co (III)-surfactants with the transport protein
Rayi et al. Interbacterial biofilm competition through a suite of secreted metabolites
Saverina et al. Synthesis and antibacterial activity of new bis-quaternary ammonium compounds based on 2, 5-diformylfuran and pentaerythritol
Desvergne et al. Noncovalent fluorescent probes of human immuno-and constitutive proteasomes