PL235043B1 - Biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 z wykorzystaniem przeciwciała - Google Patents

Biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 z wykorzystaniem przeciwciała Download PDF

Info

Publication number
PL235043B1
PL235043B1 PL412411A PL41241115A PL235043B1 PL 235043 B1 PL235043 B1 PL 235043B1 PL 412411 A PL412411 A PL 412411A PL 41241115 A PL41241115 A PL 41241115A PL 235043 B1 PL235043 B1 PL 235043B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
biosensor
mmp
metalloproteinase
determination
enzyme
Prior art date
Application number
PL412411A
Other languages
English (en)
Other versions
PL412411A1 (pl
Inventor
Ewa Gorodkiewicz
Anna Tokarzewicz
Original Assignee
Univ W Bialymstoku
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ W Bialymstoku filed Critical Univ W Bialymstoku
Priority to PL412411A priority Critical patent/PL235043B1/pl
Publication of PL412411A1 publication Critical patent/PL412411A1/pl
Publication of PL235043B1 publication Critical patent/PL235043B1/pl

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Ujawniono biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1, z wykorzystaniem króliczego, specyficznego przeciwciała przeciwko ludzkiej metaloproteinazie-1. Biosensor składa się ze szkiełka (1) oraz czterech warstw, na które nałożona jest siatka polimeru (6) dzieląca sensor na partycje. Spodnią warstwę biosensoru stanowi chrom (3), na który nałożone jest złoto (2), następnie tiolowy linker (4) oraz królicze, specyficzne, zimmobilizowane przeciwciało przeciwko ludzkiej metaloproteinazie-1 (5).

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 (MMP-1).
Metaloproteinazy macierzy zewnątrzkomórkowej (ang. matrix metalloproteinases, MMPs) jest to grupa zależnych od cynku enzymów proteolitycznych, należących do endopeptydaz, których podstawową funkcją jest uczestniczenie w fizjologicznych i patologicznych procesach przebudowy i degradowania składników macierzy zewnątrzkomórkowej (ang. extracellular matrix, ECM): kolagenu, laminy, proteoglikanów, czy fibronektyny, co przekłada się na ułatwienie migracji komórek. Jednak ECM nie jest tylko biernym rusztowaniem tkanki, ale jest także rezerwuarem licznych czynników wzrostu, które uwolnione przez MMP mogą wpływać na komórki. Poza ECM substratami MMP są różnego rodzaju molekuły znajdujących się na powierzchni komórek. Mogą one uczestniczyć w procesie formułowania receptorów komórkowych oraz w procesach immunologicznych. Dlatego funkcji MMP nie można upraszczać tylko do prostej degradacji ECM. W swoim składzie zawierają atom cynku (Zn2+), który pełni rolę katalityczną i strukturalną w cząsteczce enzymu.
MMP są syntetyzowane w postaci nieaktywnych zymogenów (proMMP). Aktywacja MMP odbywa się przez usunięcie prodomeny, w wyniku czego następuje odsłonięcie miejsca aktywnego enzymu. MMP mogą być aktywowane przez inne proteazy lub czynnikami chemicznymi. Także niskie pH oraz podwyższona temperatura prowadzą do aktywacji MMP. Aktywność metaloproteaz jest precyzyjnie regulowana na poziomie transkrypcji, translacji oraz poprzez endogenne inhibitory, takie jak a2-makroglobulina i tkankowe inhibitory metaloproteinaz (TIMP). Według obecnego stanu wiedzy rodzina macierzowych metaloproteinaz (MMP) to 21 enzymów podzielonych na podgrupy różniące się nieznacznie strukturą czwartorzędową oraz swoistością substratową (Śliwowska I., Kopczyński Z.: Metaloproteinazy macierzy zewnątrzkomórkowej - charakterystyka biochemiczna i kliniczna wartość oznaczania u chorych na raka piersi; Współczesna Onkologia 2005; 9: 327-335; Starska K., Stasikowska O., Lukomski M., Lewy-Trenda I.: Correlation of membrane type I matrix metalloproteinase (MT1-MMP) expression with clinicomorphological features of tumor front in squamous cell carcinoma of the larynx; Polski merkuriusz lekarski, 2007; 135: 188-91; Hrabec E., Naduk J., Stręk M., Hrabec Z.: Kolagenazy typu IV (MMP-2 i MMP-9) i ich substraty - białka macierzy pozakomórkowej, hormony, cytokin, hemokiny i ich receptory. Post. Biochem., 2007; 53: 37-45).
Metaloproteinaza-1 (MMP-1) zaliczana jest do kolagenoz. Degraduje kolagen typu I, II, III. Jej przydatność kliniczną wykazano w rozwoju, morfogenezie tkanek, gojeniu ran i innych procesach fizjologicznych (Durkan G. E., Nutt C. J., Rajjayabun P. H., Neal D. E., Lunec J.: Prognostic Significance of Matrix Metalloproteinase-1 and Tissue Inhibitor of Metalloproteinase-1 in Voided Urine Samples from Patients with Transitional Cell Carcinoma of the Bladder; Clinical Cancer Research 2001; 7: 3450-3456).
Do tej pory stężenie i aktywności enzymatyczną MMP-1 mierzono:
- kanapkowym testem immunoenzymatycznym (ang. Sandwich ELISA-enzyme-linked immunosorbent assay) (Maeda S., Sawai T.i, Uzuki M., Takahashi Y., Omoto H., Seki M., Sakurai M.: Determination of interstitial collagenase (MMP-1) in patients with rheumatoid arthritis; Annals of the Rheumatic Diseases 1995; 54: 970-975)
- metodami immunochemicznymi (Maeda S., Sawai T.i, Uzuki M., Takahashi Y., Omoto H., Seki M., Sakurai M.: Determination of interstitial collagenase (MMP-1) in patients with rheumatoid arthritis; Annals of the Rheumatic Diseases 1995; 54: 970-975)
- klasycznym testem immunoenzymatycznym (ELISA) (Myers A., Lakey R., Cawston T. E., Kay L. J., Walker D. J.: Serum MMP-1 and TIMP-1 levels are increased in patients with psoriatic arthritis and their siblings; Rheumatology 2004, 43: 272-276; Lehrke M., Greif M., Broed U.C., Lebherz C., Rudiger Laubender P., Becker A., von Ziegler F, Tittus J., Reiser M., Becker Ch., Goke B., Steinbeck G., Leber A.W., Parhofer K. G.: MMP-1 serum levels predict coronary atherosclerosis in humans; Cardiovascular Diabetology 2009; 8: 50)
- testem fluorescencyjnym (Navratilova Z., Zatloukal J., Kriegova E., Kolek V., Petrek M.: Simultaneous up-regulation of matrix metalloproteinases 1,2, 3, 7, 8, 9 and tissue inhibitors of metalloproteinases 1,4 in serum of patients with chronic obstructive pulmonary disease; Respirology 2012; 17: 1006-1012)
- spektrofotometrycznie [Evrosimovska B,, Dimova C., Kovacevska L, Panov S.: Concentration Of Collagenases (Mmp-1, -8, -13) in Patients With Chronically Inflamed Dental Pulp Tissue; Sec. Biol. Med. Sci., 2012; XXXIII/2: 191-204)
PL 235 043 B1
- zymografią żelową (Imai K., Okada Y.: Assays for matrix metalloprotein activity; Protocol Exchange (2008), doi:10.1038/nprot.2008.85; Schutz A., Schneidenbach D., Aust G., Tannapfel A., Steinert M., Wittekind C.: Differential expression and activity status of MMP-1, MMP-2 and MMP-9 in tumor and stromal cells of squamous cell carcinomas of the lung; Tumour Biol. 2002; 23: 179-84).
- immunohistologicznie [Schutz A., Schneidenbach D., Aust G., Tannapfel A., Steinert M., Wittekind C.: Differential expression and activity status of MMP-1, MMP-2 and MMP-9 in tumor and stromal cells of squamous cell carcinomas of the lung; Tumour Biol. 2002; 23: 179-84)
- techniką Western Blot- Recombinant Human MMP-1 Western Blot Standard test firmy R&D
Technika rezonansu powierzchniowego plazmonów (ang. Surface Plasmon Resonance Imaging) jest niezwykle skutecznym narzędziem do oznaczania biologicznie aktywnych związków, została przedstawiona m.in. Lee H.J., Yan Y., Marriott G., Corn R.M.: Quantitative functional analysis of protein complexes on surfaces; J Physiol 2005; 563: 61-71; 95 Lee H.J., Nedelkov D., Corn R.M.: Surface Plasmon Resonance Imaging Measurements of Antibody Arrays for the Multiplexed Detection of Low Molecular Weight Protein Biomarkers; Anal Chem 2006; 78: 6504-6510; Fang S., Lee J., Wark A.W., Corn R.M.: Attomole Microarray Detection of MicroRNAs by Nanoparticle-Amplified SPR Imaging Measurements of Surface Polyadenylation Reactions. J Am Chem Soc 2006; 128: 14044-14046; Gorodkiewicz, E.: Surface Plasmon Resonance Imaging sensor for cathepsin determination based on immobilized cystatin. Protein Pept. Lett. 2009; 16: 1379-1385; Gorodkiewicz E., Regulska E.: SPR Imaging Biosensor for Aspartyl Cathepsins: Sensor Development and Application for Biological Material; Protein Pept Let 2010; 17: 1148-1154; Gorodkiewicz E., Ostrowska H., Sankiewicz A.: SPR Imaging Biosensor for 20S proteasome: Sensor Development and Application for Measurement of Proteasomes in Human Blood Plasma; Microchim. Acta 2011; 175: 177-184; Gorodkiewicz E., Charkiewicz R., Rakowska A., Bajko P., Chyczewski L., Niklinski J.: SPR Imaging Biosensor for Podoplanin: Sensor Development and Application for Biological Material; Microchim. Acta 2012; 176: 337-343; Gorodkiewicz E., Sankiewicz A., Laudański P: Surface plasmon resonance imaging biosensors for aromatase based on a potent inhibitor and a specific antibody: Sensor development and application for biological material; Central European Journal of Chemistry 2014; 12: 557-567, Sankiewicz A., Laudanski P., Romanowicz L., Hermanowicz A.: Development of surface resonance imaging biosensors for detection of ubiquitin carboxyl-terminal hydrolase L1; Analytical Biochemistry 2015; 469: 4-11, Grzywa R., Gorodkiewicz E., Burchacka E., Lesner A., Laudański P., Łukaszewski Z., Sieńczyk M: Determination of cathepsin G in endometrial tissue Rusing a surface plasmon resonance imaging biosensor with tailored phosphonic inhibitor; European Journal of Obstetrics et Gynecology and Reproductive Biology 2014; 182: 38-42, Laudański P., Gorodkiewicz E., Ramotowska B., Charkiewicz R., Kuźmicki M., Szamatowicz J: Determination of cathepsins B, D and G concentration in eutopic proliferative endometrium of women with endometriosis by surface plasmon resonance imaging (SPRI) technique; European Journal of Obstetrics et Gynecology and Reproductive Biology 2013; 169: 80-83.
Istotą wynalazku jest biosensor umożliwiający specyficzne oznaczanie metaloproteinazy-1 techniką powierzchniowego rezonansu plazmonów w wersji Imaging. Biosensor składa się ze szkiełka, korzystnie typu BK7 oraz czterech warstw, na które nałożona jest siatka polimeru dzieląca sensor na partycje. Spodnią warstwę biosensora stanowi chrom, na który nałożone jest złoto, korzystnie o grubości 50 nm, a następnie tiolowy linker, korzystnie cysteamina. Warstwę wierzchnią biosensora stanowi królicze, specyficzne, zimmobilizowane przeciwciało przeciwko ludzkiej metaloproteinazie-1.
Dzięki zastosowaniu rozwiązania według wynalazku uzyskuje się bardzo szybką analizę badanego materiału, w tym: osocza, moczu, śliny, homogenatów tkanek na stężenie metaloproteinazy-1.
Przedmiot wynalazku uwidoczniony jest na rysunku, na którym Fig. 1 przedstawia przekrój pionowy przez biosensor, a Fig. 2 przedstawia zakres prostoliniowy krzywej kalibracyjnej enzymu MMP-1. Biosensor składa się ze szkiełka (1) oraz czterech warstw. Spodnią warstwę biosensora stanowi chrom (3), na który nałożone jest złoto (2) korzystnie o grubości 50 nm, następnie tiolowy linker (4) oraz królicze, specyficzne, zimmobilizowane przeciwciało przeciwko ludzkiej metaloproteinazie-1 (5). Sensor na partycje dzieli siatka polimeru (6).
Sensor działa współpracując z urządzeniem do pomiarów techniką powierzchniowego rezonansu plazmonów w wersji Imaging (SPRI). Sensor kładzie się na pryzmacie urządzenia. Odpowiednie przygotowanie sensora polega na zimmobilizowaniu na warstwie złota (2), monowarstwy tiolu (4) np. cysteaminy, a na niej utworzenie monowarstwy króliczego, specyficznego przeciwciała przeciwko ludzkiej MMP-1 (5) w zakresie stężeń 50- 300 ng/ml- z plateau otrzymanej krzywej odczytuje się stężenie tego
PL 235 043 B1 przeciwciała przy którym następuje maksymalne wysycenie powierzchni biosensora. Na poszczególne pola sensora zawierające dużą liczbę miejsc aktywnych np. 12, nakłada się wzorzec MMP-1 tak, aby uzyskać stężenia 0,05; 0,1; 0,25; 0,5; 0,75; 1,0 ng/ml. Stężenia te odpowiadają prostoliniowemu odcinkowi krzywej kalibracyjnej MMP-1. Na wolne pola nakłada się próbki osocza i moczu pochodzących od zdrowych ludzi jak i pacjentów z nowotworem pęcherza.
Nierozcieńczane próbki moczu od osób zdrowych i pięciokrotnie rozcieńczone próbki pochodzące od pacjentów z nowotworem pęcherza, nanoszone są na powierzchnie sensora na 10 minut. Objętość przenoszonego roztworu wynosi ok. 3 pl. Powierzchnia sensora jest przemywana co najmniej sześciokrotnie buforem HBS-ES oraz wodą. Mierzy się sygnał SPRI. Stężenie MMP-1 odczytuje się z krzywej kalibracyjnej.
P r z y k ł a d
Oznaczenie stężenia MMP-1 w próbkach osocza i moczu pochodzące od pacjentów z nowotworem pęcherza i od osób zdrowych.
Z próbek moczu od pacjentów z nowotworem pęcherza otrzymano następujące wartości intensywności sygnału SPRI dla poszczególnych miejsc aktywnych:
1. 3831,006
2. 4186,15
3. 4789,01
4. 3901,65
5. 4207,25
6. 4004,74
7. 2782,47
8. 3580,70
Odczytane z krzywej stężenia MMP-1 wynoszą odpowiednio:
1.0,90
2.0,80
3.1,03
4.1,26
5.0,92
6.0,96
7.1,04
8.0,49
9.0,80
Po uwzględnieniu pięciokrotnego rozcieńczenia otrzymano następujące wyniki stężenia:
1.4,48
2.4,01
3.5,16
4.6,32
5.4,62
6.4,81
7.2,47
8.4,00
Średnie stężenie wynosi 4,56 ng/ml.
Obliczony przedział ufności dla poziomu istotności a=0,05 wynosi 0,10 ng/ml
Średni wynik określono jako 4,56±0,10 ng/ml.
Z próbek moczu od zdrowych osób otrzymano następujące wartości intensywności sygnału SPRI dla poszczególnych miejsc aktywnych:
1. 2128,90
2. 2372,09
3. 2032,15
4. 3336,58
5. 3130,91
PL 235 043 B1
6. 2688,99
7. 2323,72
8. 2866,76
9. 2213,65
Odczytane z krzywej stężenia MMP-1 wynoszą odpowiednio:
1.0,24
2.0,34
3.0,20
4.0,71
5.0,63
6.0,46
7.0,32
8.0,53
9.0,27
Średnie stężenie wynosi 0,41 ng/ml.
Obliczony przedział ufności dla poziomu istotności a=0,05 wynosi 0,01 ng/ml.
Średni wynik określono jako 0,41 ±0,01 ng/ml.

Claims (1)

1. Biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 (MMP-1) składający się ze szkiełka (1) oraz czterech warstw, na które nałożona jest siatka polimeru (6) dzieląca sensor na partycje, przy czym spodnią warstwę biosensora stanowi chrom (3), na który nałożone jest złoto (2) korzystnie o grubości 50 nm, następnie tiolowy linker (4), a biosensor jest znamienny tym, że jego warstwę wierzchnią stanowi królicze, specyficzne, zimmobilizowane przeciwciało przeciwko ludzkiej metaloproteinazie-1 (5).
PL412411A 2015-05-21 2015-05-21 Biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 z wykorzystaniem przeciwciała PL235043B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL412411A PL235043B1 (pl) 2015-05-21 2015-05-21 Biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 z wykorzystaniem przeciwciała

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL412411A PL235043B1 (pl) 2015-05-21 2015-05-21 Biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 z wykorzystaniem przeciwciała

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL412411A1 PL412411A1 (pl) 2016-12-05
PL235043B1 true PL235043B1 (pl) 2020-05-18

Family

ID=57405815

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL412411A PL235043B1 (pl) 2015-05-21 2015-05-21 Biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 z wykorzystaniem przeciwciała

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL235043B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL412411A1 (pl) 2016-12-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
De la Harpe et al. A semi-automated micro-assay for H2O2 release by human blood monocytes and mouse peritoneal macrophages
US7153660B2 (en) Non-invasive enzyme screen for tissue remodelling-associated conditions
Wignarajah et al. Colorimetric assay for the detection of typical biomarkers for periodontitis using a magnetic nanoparticle biosensor
Zhou et al. Up-regulation of SERPINA3 correlates with high mortality of melanoma patients and increased migration and invasion of cancer cells
Théret et al. Differential expression and origin of membrane-type 1 and 2 matrix metalloproteinases (MT-MMPs) in association with MMP2 activation in injured human livers
Roh et al. Differential expression patterns of MMPs and their role in the invasion of epithelial premalignant tumors and invasive cutaneous squamous cell carcinoma
Kim et al. Detection of periodontal disease marker with geometrical transformation of Ag nanoplates
Son et al. Micropatterned sensing hydrogels integrated with reconfigurable microfluidics for detecting protease release from cells
Tran et al. Electrical dual-sensing method for real-time quantitative monitoring of cell-secreted MMP-9 and cellular morphology during migration process
CN102695805B (zh) 用于测定样品中硫氧还蛋白还原酶活性的方法和试剂盒及应用
JP7089294B2 (ja) 創傷の状態の決定
Diamandis et al. Immunofluorometric quantification of human kallikrein 5 expression in ovarian cancer cytosols and its association with unfavorable patient prognosis
Song et al. Quantitative detection of cathepsin B activity in neutral pH buffers using gold microelectrode arrays: toward direct multiplex analyses of extracellular proteases in human serum
Park et al. Interference-free duplex detection of total and active enzyme concentrations at a single working electrode
Nisiewicz et al. Novel electrogravimetric biosensors for the ultrasensitive detection of plasma matrix metalloproteinase-2 considered a potential tumor biomarker
Grzywa et al. Determination of cathepsin G in endometrial tissue using a surface plasmon resonance imaging biosensor with tailored phosphonic inhibitor
JP2002526772A (ja) マトリックスメタロプロテイナーゼ9の診断アッセイおよびその使用
Devani et al. Kallikrein-kinin system activation in Crohn's disease: differences in intestinal and systemic markers
PL235043B1 (pl) Biosensor do oznaczania enzymu metaloproteinazy-1 z wykorzystaniem przeciwciała
Castellazzi et al. Effects of anticoagulants on the activity of gelatinases
Ondo et al. The significance of serum active matrix metalloproteinase-9 in patients with non-small cell lung cancer
JPWO2006123789A1 (ja) 酵素分析方法
Roy et al. Potential of fluorescent metalloproteinase substrates for cancer detection
JP2001000197A (ja) プロテアーゼ活性の測定方法
Srivastava et al. Matrix Metalloproteinase-9: A Key Diagnostic Biomarker in Cancer Progression