PL235261B1 - Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny - Google Patents

Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny Download PDF

Info

Publication number
PL235261B1
PL235261B1 PL424462A PL42446218A PL235261B1 PL 235261 B1 PL235261 B1 PL 235261B1 PL 424462 A PL424462 A PL 424462A PL 42446218 A PL42446218 A PL 42446218A PL 235261 B1 PL235261 B1 PL 235261B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
adrenaline
biosensor
bitiophene
biosensor according
detection
Prior art date
Application number
PL424462A
Other languages
English (en)
Other versions
PL424462A1 (pl
Inventor
Sylwia Baluta
Uta Syl Wia Bal
Joanna Cabaj
Karol Malecha
Cha Karol Male
Original Assignee
Politechnika Wroclawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Wroclawska filed Critical Politechnika Wroclawska
Priority to PL424462A priority Critical patent/PL235261B1/pl
Publication of PL424462A1 publication Critical patent/PL424462A1/pl
Publication of PL235261B1 publication Critical patent/PL235261B1/pl

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest biosensor wykonany w technologii niskotemperaturowej współwypalanej ceramiki (LTCC) służący do detekcji epinefryny (adrenaliny) w roztworach wodnych, znajdujący zastosowanie w diagnostyce medycznej lub przemyśle spożywczym. Biosensor pozwala na wykrycie bardzo niskich stężeń adrenaliny, może zatem informować o punktach kryzysowych.
Ze zgłoszenia patentowego nr US2017108437 (A1) znany jest biosensor optyczny oparty na pomiarach luminescencji. Zawiera on w swojej budowie porowate podłoże krzemowe lub tlenek glinowy wraz z układem wykrywającym unieruchomionym na ich powierzchni. Biologiczny układ wykrywający zawiera domenę czułą i domenę sygnalizacyjną. Domena czuła zaopatrzona jest w łącznik zdolny do oddziaływania z docelowym bioanalitem i domeną sygnalizacyjną posiadającą donor i akceptor luminescencji - donor i akceptor są optycznie sprzężone przez łącznik w przypadku braku bioanaliów docelowych, co stanowi podstawę do detekcji danego bioanalitu.
W koreańskim zgłoszeniu patentowym nr KR20160107086 (A) przedstawiony jest system optyczny biosensora do wykonywania nieinwazyjnego monitorowania glukozy we krwi. Urządzenie do oznaczania poziomu glukozy we krwi przenosi penetrujące światło do biosensora plazmonowego wykrywającego glukozę. Pomiar polega na ocenie śliny pacjenta, która przepływa przez kanał wykonany w technologii indukowanej folii, zawierającej związek selektywnie reagujący na glukozę próbki.
Następne zgłoszenie patentowe holenderskich naukowców nr W02016096908 (A1) ujawnia biosensor oparty na fluorescencyjnym oznaczaniu pojedynczych molekuł, głównie dzięki emiterom fluorescencyjnym.
Wynalazek przedstawiony w zgłoszeniu o numerze CN103196970 (A) dotyczy biosensora zawierający akceptor beta2, służący do oznaczania epinefryny w roztworach wodnych. Biosensor akceptora beta2 charakteryzuje się tym, że rekombinowany receptor purynergiczny epinefryny beta2 modyfikuje się na elektrodzie złota, a rekombinowany receptor purynergiczny epinefryny beta2 jest sekwencją podstawową. Taki układ może znaleźć zastosowanie między innymi do nadzoru nad higieną żywności czy w gospodarstwach przy hodowli bydła do monitorowania poziomu adrenaliny.
Poli[2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydna] znana jest z publikacji K. Olech, J. Sołoducho, S. Roszak, K. Łaba, P. Data, M. Łapkowski, Donor - Acceptor-Type of Electrochromic Polymer with Low Band-gap based on Pyridine as an Acceptor Unit, Indian Journal of Applied Research, Vol. 7, 6, 593-597, 2017.
Istota biosensora optycznego do detekcji adrenaliny, zawierającego korpus wykonany z co najmniej trzech warstw dolnej, środkowej oraz górnej niskotemperaturowej współwypalanej ceramiki, który posiada kanał przepływowy wyposażony w warstwę platynową połączony światłowodem ze źródłem światła i jednocześnie drugim światłowodem z czujnikiem światła polega na tym, że kanał przepływowy pokryty jest chemoczułym filmem enzymatycznym wytworzonym z poli [2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydny] oraz lakazy lub tyrozynazy.
Korzystnie światłowód połączony ze źródłem światła usytuowany jest równolegle, a światłowód połączony z czujnikiem światła położony jest prostopadle względem kanału przepływowego.
Korzystnie warstwa platynowa naniesiona jest na powierzchnię warstwy dolnej metodą sitodruku.
Korzystnie warstwa platyny zawiera część detekcyjną którą stanowi roztwór adrenaliny z dodatkiem barwnika opartego o jony żelaza (II).
Korzystnie światłowody są światłowodami polimerowymi lub kwarcowymi.
Korzystnie czujnikiem światła jest fotodioda lub fototranzystor.
Korzystnie źródłem światła jest dioda laserowa lub dioda elektroluminescencyjna.
Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny według wynalazku jest urządzeniem miniaturowym, wykonanym z folii niskotemperaturowej współwypalanej ceramiki LTCC. Sensor według wynalazku do oznaczania adrenaliny w roztworach wodnych wyposażony jest w dwa światłowody oraz korpus wykonany z ceramiki, która jest niewrażliwa na substancje chemiczne oraz biologiczne, co umożliwia prowadzenie pomiarów niezależnie od składu chemicznego badanej próbki. Miniaturowy czujnik wykonany jest przy użyciu lasera lub wykrojnika mechanicznego z niskotemperaturowej ceramiki.
Przedmiot wynalazku przedstawiony jest bliżej w przykładach realizacji oraz na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia biosensor optyczny służący do detekcji adrenaliny w widoku z góry i w przekroju A-A, a fig. 2 przedstawia wykres przedstawiający zależność intensywności fluorescencji od stężenia epinefryny w badanej próbce.
PL 235 261 B1
P r z y k ł a d 1
Ceramiczny biosensor fluorescencyjny ma korpus KS wykonany z trzech warstw WD, WS, WG niskotemperaturowej współwypalanej ceramiki, zawiera kanał przepływowy KP wyposażony w warstwę platyny PT pokrytą cienkim filmem polimerowym otrzymanym z 2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydny wraz ze zimmobilizowaną lakazą, połączony światłowodem S1 umocowanym w kanale wykonanym w korpusie KS ze źródłem światła ZS w postaci diody elektroluminescencyjnej. Jednocześnie kanał przepływowy KP połączony jest drugim światłowodem S2 z czujnikiem światła CS w postaci fotodiody. Kanał światłowodowy S1 oraz kanał przepływowy KP wykonane są w warstwie środkowej WS, a kanał światłowody S2 w warstwie dolnej WD.
Ceramiczny czujnik fluorescencyjny wykonany jest z surowej folii niskotemperaturowej współwypalanej ceramiki, z której wycina się jedną warstwę dolną WD, na której naniesiona jest metodą sitodruku warstwa platyny PT.
Zgodnie z wynalazkiem, warstwy WD, WS, WG zgrywa się i laminuje za pomocą metody termokompersyjnej w temperaturze 70°C, pod ciśnieniem 5 MPa, przez 10 minut. Zalaminowane warstwy WD, WS, WG wypala się podczas wieloetapowej obróbki termicznej. Kolejno, obróbkę termiczną prowadzi się przez 240 minut i w temperaturze otoczenia (rt) - do 450°C. W temperaturze 450°C wygrzewa się spodnią część obudowy przez 60 minut, kolejno spodnią część obudowy podgrzewa się do temperatury 850°C (60 minut). Następnie, zgodnie z wynalazkiem układ chłodzi się powoli do temperatury otoczenia (rt). W dalszym etapie do kanałów światłowodowych wkleja się światłowody polimerowe przy użyciu kleju epoksydowego.
Roztwór detekcyjny zawiera barwny kompleks tworzony pomiędzy jonami Fe2+ i cząsteczkami epinefryny. Utworzenie kompleksu potwierdza zmiana koloru barwnika z jasnozielonego na-w zależności od pH kolor krwistoczerwony, ciemnofioletowy bądź ciemnogranatowy, po dodaniu do barwnika roztworu chlorowodorku epinefryny. Warstwa enzymatyczna lakazy jest cienkim filmem zaadsorbowanym na matrycy polimerowej poli [2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2ylo)pirydny] pokrywającej warstwę platynową. Następnie roztwory epinefryny o różnych stężeniach mieszane są w stosunku 1:1 z roztworem barwnika i jest to podstawą do detekcji adrenaliny. Im wyższe stężenie adrenaliny w próbce, tym wyższa wartość sygnału. Zaletą układu jest jego duża czułość i fakt, że nadaje się do wykrywania różnych stężeń. Powtarzalność otrzymanych wyników oraz różne odpowiedzi czujnika, na różne stężenia adrenaliny, typują ten materiał do budowy czujników stosowanych w diagnostyce medycznej.
Działanie miniaturowego ceramicznego czujnika fluorescencyjnego do oznaczania stężenia adrenaliny w roztworach wodnych, polega na tym, że w kanale przepływowym KP wyposażonym w chemoczułą warstwę enzymatyczną zbudowaną z polimeru wytworzonego z 2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydny oraz lakazy, umieszcza się próbkę barwnika wraz z adrenaliną, która ulega reakcji enzymatycznej. Próbkę oświetla się diodą, która podczas przepływu próbki wzbudza związki obecne w roztworze. Rejestrowany przez czujnik światła wzrost intensywności fluorescencji jest zatem proporcjonalny do stężenia oznaczanej substancji. Pomiar intensywności fluorescencji wykonuje się za pomocą czujnika światła, a intensywność fluorescencji jest określana wielkością wzrostu napięcia na rezystorze pomiarowym podłączonym do czujnika światła. Rejestrowany wzrost intensywności fluorescencji jest wprost proporcjonalny do stężenia oznaczanej substancji. Limit detekcji dla układu wynosi 2,1 nM.
P r z y k ł a d 2
Ceramiczny biosensor fluorescencyjny wykonany jak w przykładzie pierwszym z tą różnicą, że czujnikiem światła CS jest fotodioda, a źródłem światła ZS jest dioda laserowa, ponadto światłowody S1 i S2 są światłowodami kwarcowymi, i przyklejone są klejem epoksydowym do kanału wykonanego w korpusie KS.
P r z y k ł a d 3
Elektroda enzymatyczna zawierająca tyrozynazę immobilizowaną adsorpcyjnie z dodatkiem czynnika sieciującego (glutaraldehyd) w elektroprzewodzącym materiale wytworzonym z 2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydny powstała w wyniku depozycj tyrozynazy na elektrodzie platynowej zmodyfikowanej materiałem przewodzącym. Proces depozycji białka na modyfikowanej elektrodzie pracującej prowadzono za pomocą adsorpcji kowalencyjnej z dodatkiem czynnika sieciującego w buforze fosforanowym o pH 6,8 w ciągu dwóch godzin. Następnie biosensor białkowy według wynalazku wprowadzono do układu optycznego, wykonanego w technologii LTCC. Do pomiaru aktywności wytworzonej warstwy chemoczułej użyto różnych stężeń epine
PL 235 261 B1 fryny jako substratu, wraz z barwnikiem żelaza. Układ pomiarowy w trakcie prowadzonego procesu zmieniał sygnał chemiczny na mierzalny sygnał optyczny (Fig. 2).
P r z y k ł a d 4
Ceramiczny biosensor fluorescencyjny ma korpus KS wykonany z trzech warstw WD, WS, WG niskotemperaturowej współwypalanej ceramiki, zawiera kanał przepływowy KP wyposażony w warstwę platyny PT pokrytą cienkim filmem polimerowym otrzymanym z 2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydny wraz ze zimmobilizowaną tyrozynazą, połączony światłowodem S1 umocowanym w kanale wykonanym w korpusie KS ze źródłem światła ZS w postaci diody elektroluminescencyjnej. Jednocześnie kanał przepływowy KP połączony jest drugim światłowodem S2 z czujnikiem światła CS w postaci fotodiody. Kanał światłowodowy S1 oraz kanał przepływowy KP wykonane są w warstwie środkowej WS, a kanał światłowody S2 w warstwie dolnej WD.
Ceramiczny czujnik fluorescencyjny wykonany jest z surowej folii niskotemperaturowej współwypalanej ceramiki, z której wycina się jedną warstwę dolną WD, na której naniesiona jest metodą sitodruku warstwa platyny PT.
Roztwór detekcyjny, według wynalazku, zawiera barwny kompleks tworzony pomiędzy jonami Fe2+ i cząsteczkami epinefryny. Utworzenie kompleksu potwierdza zmiana koloru barwnika z jasnozielonego na - w zależności od pH kolor krwistoczerwony, ciemnofioletowy bądź ciemnogranatowy, po dodaniu do barwnika roztworu chlorowodorku epinefryny. Warstwa enzymatyczna tyrozynazy jest cienkim filmem zaadsorbowanym na matrycy polimerowej poli [2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydny] pokrywającej warstwę platynową. Następnie roztwory epinefryny o różnych stężeniach mieszane są w stosunku 1:1 z roztworem barwnika i jest to podstawą do detekcji epinefryny. Im wyższe stężenie epinefryny w próbce, tym wyższa wartość sygnału. Zaletą układu jest jego duża czułość i fakt, że nadaje się do wykrywania różnych stężeń. Powtarzalność otrzymanych wyników oraz różne odpowiedzi czujnika, na różne stężenia epinefryny, typują ten materiał do budowy czujników stosowanych w diagnostyce medycznej.
Działanie miniaturowego ceramicznego czujnika fluorescencyjnego do oznaczania stężenia adrenaliny w roztworach wodnych, polega na tym, że w kanale przepływowym KP wyposażonym w chemoczułą warstwę enzymatyczną zbudowaną z polimeru wytworzonego z 2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydny oraz tyrozynazy, umieszcza się próbkę barwnika wraz z adrenaliną, która ulega reakcji enzymatycznej. Próbkę oświetla się diodą, która podczas przepływu próbki wzbudza związki obecne w roztworze. Rejestrowany przez czujnik światła wzrost intensywności fluorescencji jest zatem proporcjonalny do stężenia oznaczanej substancji. Pomiar intensywności fluorescencji wykonuje się za pomocą czujnika światła, a intensywność fluorescencji jest określana wielkością wzrostu napięcia na rezystorze pomiarowym podłączonym do czujnika światła. Rejestrowany wzrost intensywności fluorescencji jest wprost proporcjonalny do stężenia oznaczanej substancji. Limit detekcji dla układu wynosi 2,07 nM.

Claims (7)

1. Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny zawierający korpus (KS) wykonany z co najmniej trzech warstw dolnej (WD), środkowej (WS) oraz górnej (WG) niskotemperaturowej współwypalanej ceramiki, który posiada kanał przepływowy (KP) wyposażony w warstwę platynową (PT) połączony światłowodem (S1) ze źródłem światła (ZS) i jednocześnie drugim światłowodem (S2) z czujnikiem światła (CS) znamienny tym, że kanał przepływowy (KP) pokryty jest chemoczułym filmem enzymatycznym wytworzonym z poli [2-([2,2'-bitiofen]-5-ylo)-6-([2,3'-bitiofen]-5'-ylo)-4-(5-heksylotiofen-2-ylo)pirydny] oraz lakazy lub tyrozynazy.
2. Biosensor według zastrz. 1, znamienny tym, że światłowód (S1) połączony ze źródłem światła (ZS) usytuowany jest równolegle, a światłowód (S2) połączony z czujnikiem światła (CS) położony jest prostopadle względem kanału przepływowego (KP).
3. Biosensor według zastrz. 1, znamienny tym, że warstwa platynowa (PT) naniesiona jest na powierzchnię warstwy dolnej (WD) metodą sitodruku.
4. Biosensor według zastrz. 1, znamienny tym, że warstwa platyny (PT) zawiera część detekcyjną którą stanowi roztwór adrenaliny z dodatkiem barwnika opartego o jony żelaza (II).
5. Biosensor według zastrz. 1, znamienny tym, że światłowody (S1, S2) są światłowodami polimerowymi lub kwarcowymi.
PL 235 261 Β1
6. Biosensor według zastrz. 1, znamienny tym, że czujnikiem światła (CS) jest fotodioda lub fototranzystor.
7. Biosensor według zastrz. 1, znamienny tym, że źródłem światła (ZS) jest dioda laserowa lub dioda elektroluminescencyjna.
PL424462A 2018-02-02 2018-02-02 Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny PL235261B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL424462A PL235261B1 (pl) 2018-02-02 2018-02-02 Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL424462A PL235261B1 (pl) 2018-02-02 2018-02-02 Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL424462A1 PL424462A1 (pl) 2018-11-05
PL235261B1 true PL235261B1 (pl) 2020-06-15

Family

ID=63998352

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL424462A PL235261B1 (pl) 2018-02-02 2018-02-02 Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL235261B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL424462A1 (pl) 2018-11-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Leiner Luminescence chemical sensors for biomedical applications: scope and limitations
AU711444B2 (en) A method and apparatus to perform trans-cutaneous analyte monitoring
Tusa et al. Critical care analyzer with fluorescent optical chemosensors for blood analytes
Ngernsutivorakul et al. Microfabricated probes for studying brain chemistry: a review
DE10101576B4 (de) Optischer Sensor und Sensorfeld
EP2565630A1 (en) Dye-doped gelatin-coated optical fibers for in situ monitoring of protease activity in wounds
WO2003100469A9 (en) Internal biochemical sensing device
Schultz Biosensors
US5376336A (en) Apparatus for determining the flow of matter passing through a boundary surface
KR20010076415A (ko) 다항목 시험구 그 제조방법 및 시험구 측정장치
Optiz et al. Theory and development of fluorescence-based optochemical oxygen sensors: oxygen optodes
JP2003287532A (ja) 血液検査ユニット
US11733168B2 (en) Sensor module for multiparametrically analysing a medium
KR0178397B1 (ko) 미생물의 검출 기기
EP2150176B1 (en) Implantable concentration sensor and device
Schäferling et al. Time-resolved fluorescent imaging of glucose
KR101333844B1 (ko) 체액 결정용 시험 요소 및 측정 방법
Schaffar et al. Chemically mediated fiberoptic biosensors
PL235261B1 (pl) Biosensor optyczny do detekcji adrenaliny
Wolfbeis et al. Recent progress in optical oxygen sensing
Wu et al. Fiber-optic biological/chemical sensing system based on degradable hydrogel
Porterfield et al. Noninvasive approaches to measuring respiratory patterns using a PtTFPP-based phase-lifetime self-referencing oxygen optrode
Dixit et al. Simultaneous single detector measurement of multiple fluorescent sources
Storey et al. Enhanced sensitivity for quantifying disease markers via raman and machine-learning of circulating biofluids in optofluidic chips
JP3697852B2 (ja) 計測システム