PL236589B1 - Zastosowania optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych w enzymologii - Google Patents

Zastosowania optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych w enzymologii Download PDF

Info

Publication number
PL236589B1
PL236589B1 PL420446A PL42044617A PL236589B1 PL 236589 B1 PL236589 B1 PL 236589B1 PL 420446 A PL420446 A PL 420446A PL 42044617 A PL42044617 A PL 42044617A PL 236589 B1 PL236589 B1 PL 236589B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
imidazolium
optically active
concentration
saccharates
methyl
Prior art date
Application number
PL420446A
Other languages
English (en)
Other versions
PL420446A1 (pl
Inventor
Joanna Feder-Kubis
Joanna Bryjak
Urszula Świerczek
Zofia Hrydziuszko
Original Assignee
Politechnika Wroclawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Wroclawska filed Critical Politechnika Wroclawska
Priority to PL420446A priority Critical patent/PL236589B1/pl
Publication of PL420446A1 publication Critical patent/PL420446A1/pl
Publication of PL236589B1 publication Critical patent/PL236589B1/pl

Links

Landscapes

  • Cosmetics (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku są zastosowania optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych, zawierających pochodną chiralnego (1R,2S,5R)-(-)-mentolu i łańcuch alkilowy w enzymologii w szczególności do aktywacji i stabilizacji enzymów z grupy oksydoreduktaz i hydrolaz oraz jako środka biobójczego.
Z polskiego zgłoszenia patentowego nr P412243 A1 znane jest zastosowanie chiralnych chlorkowych cieczy jonowych zawierających pochodną (1R ,2 S ,5 R)-(-)-mentolu do wytwarzania środka lub preparatu do leczenia lub profilaktyki infekcji grzybicznych w szczególności wywołanych przez Candida albicans. Do badań nad aktywnością przeciwgrzybiczną w zgłoszeniu wybrano trzy szczepy C. albicans: (i) C. albicans SC5314 (izolat kliniczny), (ii) C. albicans CAF2-1 (Δura3::imm434/URA3), (iii) C. albicans CAF4-2 ((Δura3::imm434/(Δura3::imm434). Czyste hodowle badanych szczepów utrzymywano do doświadczeń na podłożu stałym YPD w 4°C i przesiewano co 2 tygodnie.
W literaturze światowej znane są doniesienia dotyczące zastosowania soli jonowych o różnej strukturze kationowo-anionowej do aktywacji i stabilizacji enzymów, np.: wzrost aktywności i stabilności lakazy z Cerrena unicolor z wykorzystaniem bis(trifluorometylosulfonylo)imidków amoniowych, imidazoliowych oraz pirydyniowych z komponentem terpenowym - aktywny składnik: J. FederKubis, J. Bryjak “Laccase activity and stability in the presence of menthol-based ionic liquids” Acta Biochim. Pol., 60, 741-745 (2013). Innym doniesieniem jest zgłoszenie patentowe nr P416691 A1, w którym ujawniono chiralne ciecze jonowe z podstawnikiem alkoholu monocyklicznego terpenowego oraz z anionem salicylanowym, wykazujące zastosowanie do aktywacji i stabilizacji lipazy oraz o właściwościach przeciwmikrobiologicznych, których wytwarzanie polega na tym, że odpowiedni chiralny prekursor, wybrany z grupy chlorków 3-alkilo-1-[(1 R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowych, poddaje się reakcji wymiany z salicylanem sodu w stosunku bliskim równomolowemu, korzystnie równym od 0,95 do 1,85, w temperaturze od 273 do 373 K, w obecności rozpuszczalnika organicznego lub w wodzie.
Z doniesienia konferencyjnego pt. „Chiralne ciecze jonowe zawierające słodki anion aromatyczny” zaprezentowanego na VIII Sympozjum Czwartorzędowe Sole Amoniowe i Obszary ich Zastosowania Poznań 1-3 lipca, 2013 roku (książka streszczeń, s. 77) znane są chiralne ciecze jonowe zawierające kation alkiloimidazoliowy z komponentem (1R ,2 S ,5 R)-(-)-mentolu jednocześnie z anionem sacharynianowym, o wzorze ogólnym: [ImRMentol]+Sach-, w którym R oznacza grupę alkilową CnH2n+1, gdzie n wynosi 1-12.
Natomiast w polskim zgłoszeniu patentowym nr P408755 A1 opisana została powyższa grupa słodkich cieczy jonowych zawierających komponent (1R,2S,5R)-(-)-mentolu oraz organiczny anion sacharynianowy {o wzorze ogólnym [ImRMentol]+Sach-, w którym R oznacza grupę alkilową CnH2n+1, gdzie n wynosi 1-12} jako materiały luminescencyjne. Właściwości luminescencyjne sprawdzono wykonując pomiary widm emisji, wzbudzenia oraz wyznaczenie wydajności kwantowej badanej substancji.
Istotą wynalazku jest zastosowanie optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych zawierających pochodną optycznie czynnego (1R,2S,5R)-(-)-mentolu, o wzorze ogólnym [R-Im-CH2OMentol]+Sach-, w którym R oznacza grupę alkilową CnH2n+1, gdzie n wynosi 1,3, 6, 9, 12 oraz 14, do aktywacji i stabilizacji enzymów z grupy oksydoreduktaz i hydrolaz, w szczególności lakazy, lipazy lub trypsyny w roztworach białkowych.
Korzystnie do aktywacji lakazy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone powyżej o długości łańcucha alkilowego od metylowego do nonylowego w stężeniu 2,5 mM oraz optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy od metylowego do heksylowego w stężeniu 8,0-51,1 mM.
Korzystnie do aktywacji lipazy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone powyżej o długości łańcucha alkilowego od propylowego do dodecylowego w stężeniu 2,5 mM oraz optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy od metylowego do nonylowego w stężeniu 5,8-55,9 mM.
Korzystnie do aktywacji trypsyny stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone powyżej o długości łańcucha alkilowego od heksylowego do tetradecylowego w stężeniu 0,5 mM.
Korzystnie do stabilizacji lipazy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone powyżej o długości łańcucha alkilowego od metylowego do tetradecylowego w stężeniu 2,5 mM oraz optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy od heksylowego do tetradecylowego w stężeniu 2,5-7,8 mM.
PL 236 589 B1
Korzystnie do stabilizacji trypsyny stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 o długości łańcucha alkilowego od metylowego do dodecylowego w stężeniu 0,5 mM oraz optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy od metylowego do tetradecylowego w stężeniu 0,9-50,4 mM.
Istotą wynalazku jest również zastosowanie optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych zawierających pochodną optycznie czynnego (1R ,2 S ,5 R)-(-)-mentolu o wzorze ogólnym [R-Im-CH2OMentol]+Sach-, w którym R oznacza grupę alkilową CnH2n+1, gdzie n wynosi 1, 3, 6, 9, 12 oraz 14 jako środków biobójczych, obejmujących działanie bakterio- i grzybobójcze oraz bakterio- i grzybostatyczne.
Korzystnie jako środek grzybobójczy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone powyżej o długości łańcucha alkilowego od metylowego do nonylowego w stężeniu 2,5-55,9 mM.
Korzystnie jako środek bakteriobójczy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone powyżej o długości łańcucha alkilowego od metylowego do heksylowego w stężeniu 6,8-55,9 mM.
Korzystnie jako środek bakterio- i grzybostatyczny stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone powyżej w stężeniu 0,5 mM.
Optycznie czynne sole imidazoliowe, zawierające pochodną chiralnego (1R ,2 S ,5 R)-(-)-mentolu i łańcuch alkilowy, stosowane w rozwiązaniu to związki zawierające w anionie komponent popularnego słodzika: sacharyny - substancji powszechnie stosowanej w przemyśle spożywczym [U. Świerczek, A. Borowiecka, J. Feder-Kubis „Struktura, właściwości i przykłady zastosowań syntetycznych substancji słodzących” Żywność. Nauka. Technologia. Jakość 4, 15-25 (2016)]. Optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe to związki silnie hydrofobowe o gęstościach mieszczących się w zakresie 1,21:1,09 [g/cm3]. Lepkość kinematyczna badanych soli jonowych zawiera się w zakresie 512:689 [mm2/s]. Omawiane optycznie czynne pochodne sacharyny mogą efektywnie konwertować promieniowanie ultrafioletowe. Wydajności kwantowe wyznaczone dla chiralnych soli sacharynianowych wahają się w zakresie od 20 do 40% w zależności od badanej substancji.
Stężenie zastosowanych soli [R-Im-CH2OMentol]+Sach- w roztworach użytkowych zostało wyznaczone poprzez pomiar spektrofotometryczny przy 270 nm (sygnał pochodzący od anionu sacharynianowego) i obliczone na podstawie krzywej standardowej wykonanej dla sacharynianu sodu.
Optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe, przedstawione wzorem [R-Im-CH2OMentol]+Sach-, według wynalazku, wykazują zdolność do modulacji reaktywności enzymów. Cechę tę sprawdzono określając wpływ otrzymanych sacharynianów imidazoliowych na aktywność oraz stabilność lakazy z Cerrena unicolor, lipazy z Pseudomonas cepacia oraz trypsyny z trzustki bydlęcej podczas inkubacji z roztworem użytkowym o danym stężeniu sacharynianu imidazoliowego. Aktywność lakazy wyznaczono w roztworze użytkowym dla gwajakolu, trypsyny w roztworze użytkowym dla BAPNA (a-N-benzoilo-L-arginylo-4-nitroanilidu) jako substratu poprzez pomiar spektrofotometryczny, a dla lipazy w reakcji hydrolizy tributyryny, przez miareczkowanie roztworem NaOH. Aktywność enzymu w poszczególnych roztworach sacharynianów imidazoliowych była liczona jako aktywność procentowa względem próby kontrolnej, czyli buforu nie zawierającego soli imidazoliowej, przyjętej jako 100% aktywności. Stabilność enzymów w obecności sacharynianu imidazoliowego wyznaczono przez pomiary aktywności w trakcie 6-dniowej inkubacji w 30°C. Wpływ soli imidazoliowej na stabilność enzymu liczono dla 6 dnia inkubacji względem próby kontrolnej, czyli enzymu inkubowanego w buforze nie zawierającym soli imidazoliowej, przyjętej jako 100% stabilności.
Optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe, przedstawione wzorem [R-Im-CH2OMentol]+Sach-, według wynalazku, wykazują właściwości biobójcze o szerokim spektrum działania. Cechę tę sprawdzono poprzez wykonanie posiewu mikrobiologicznego mieszanin cieczy użytkowej i enzymu lub enzymu w buforze bez soli imidazoliowej, jako próbie kontrolnej, na standardowych pożywkach dla bakterii oraz grzybów po 6-dniowej inkubacji w 30°C w warunkach niesterylnych. Aktywność biostatyczną i biobójczą roztworów soli imidazoliowych wobec kolonii grzybowych i bakteryjnych określano jako procentowy stosunek liczby kolonii mikroorganizmów zliczonych w posiewach z mieszanin cieczy użytkowych i enzymu do liczby kolonii obecnych w posiewie kontrolnym buforu, nie zawierającym soli imidazoliowej.
Dzięki rozwiązaniu według wynalazku uzyskano roztwory użytkowe o różnych stężeniach soli imidazoliowych: 0,5 oraz 2,5 mM o właściwościach bakterio- i grzybostatycznych, które mogą być stosowane jako środowisko do prowadzenia biotransformacji (zwiększają stabilność enzymu oraz znacząco ograniczają wzrost mikroorganizmów) oraz 6,8-55,9 mM o aktywności antymikrobiologicznej, co wskazuje na zastosowanie optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych z łańcuchem alkilowym o długości od metylowego do heksylowego jako dezynfektantów.
PL 236 589 Β1
Przedmiot wynalazku został bliżej przedstawiony w przykładach realizacji opisujących dodatek sacharynianów imidazoliowych jako modulatorów aktywności i stabilności enzymów oraz środków ograniczających lub hamujących zanieczyszczenie mikrobiologiczne w roztworach białkowych.
Przykład 1
Aktywność lakazy z Cerrena unicolor, lipazy z Pseudomonas cepacia w roztworach użytkowych zawierających substancję aktywną w stężeniu 2,5 mM oraz trypsyny z trzustki bydlęcej w roztworach użytkowych zawierających substancję aktywną w stężeniu 0,5 mM.
Sporządzono 18 roztworów użytkowych: 12 roztworów o stężeniu 2,5 mM i objętości 20 mL poprzez rozpuszczenie w 30°C 21,7 mg sacharynianu 1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-metyloimidazoliowego w 50 mM buforze fosforanowo-cytrynianowym pH 5,2 oraz 50 mM buforze fosforanowym pH 8, 23,1 mg sacharynianu 1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-propyloimidazoliowego w 50 mM buforze fosforanowo-cytrynianowym pH 5,2 oraz 50 mM buforze fosforanowym pH 8, 25,2 mg sacharynianu 3-heksylo-1-(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowego w 50 mM buforze fosforanowo-cytrynianowym pH 5,2 oraz 50 mM buforze fosforanowym pH 8, 27,3 mg sacharynianu 1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-nonyloimidazoliowego w 50 mM buforze fosforanowo-cytrynianowym pH 5,2 oraz 50 mM buforze fosforanowym pH 8, 29,4 mg sacharynianu 3-dodecylo-1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowego w 50 mM buforze fosforanowo-cytrynianowym pH 5,2 oraz 50 mM buforze fosforanowym pH 8, 30,8 mg sacharynianu 1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-tetradecyloimidazoliowego w 50 mM buforze fosforanowo-cytrynianowym pH 5,2 oraz 50 mM buforze fosforanowym pH 8, a także 6 roztworów o stężeniu 0,5 mM poprzez rozpuszczenie w 30°C 4,3 mg sacharynianu 1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-metyloimidazoliowego w 50 mM buforze boranowym pH 8,0, 4,6 mg sacharynianu 1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-propyloimidazoliowego w 50 mM buforze boranowym pH 8,0, 5 mg sacharynianu 3-heksylo-1-[(1R,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowego w 50 mM buforze boranowym pH 8,0, 5,5 mg sacharynianu 1 -[(1 R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-nonyloimidazoliowego w 50 mM buforze boranowym pH 8,0, 5,88 mg sacharynianu 3-dodecylo-1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowego w 50 mM buforze boranowym pH 8,0, oraz 6,2 mg sacharynianu 1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-tetradecyloimidazoliowego w 50 mM buforze boranowym pH 8,0.
Uzyskane roztwory użytkowe wykorzystano do pomiaru aktywności lakazy z Cerrena unicolor (pH 5,2) lipazy z Pseudomonas cepacia (pH 8) oraz trypsyny z trzustki bydlęcej (pH 8). Do 1 mL uzyskanych roztworów użytkowych o pH 5,2 dodano 10 gL 150 mM gwajakolu i 5 gL lakazy (aktywność właściwa 30 U/mg) i oznaczono aktywność enzymatyczną w 30°C poprzez pomiar spektrofotometryczny przy 525 nm. Do 1 mL uzyskanych roztworów użytkowych o pH 8 dodano 50 gL tributyryny i 5 gL lipazy (aktywność właściwa 93 U/mg) i oznaczono aktywność enzymatyczną w 37°C poprzez miareczkowanie powstałego kwasu masłowego 0,01 M alkoholowym roztworem NaOH. Do 1 mL uzyskanych roztworów użytkowych buforu boranowego o pH 8 dodano 5 gL 80 mM ΒΑΡΝΑ i 5 gL trypsyny (aktywność właściwa 2 U/mg) i oznaczono aktywność enzymatyczną w 30°C poprzez pomiar spektrofotometryczny przy 405 nm. W Tabeli 1 przedstawiono wyniki wyrażone jako procentowa wartość aktywności w odniesieniu do prób kontrolnych nie zawierających soli imidazoliowych, dla których wartość aktywności oznaczono jako 100.
Tabela 1
Procentowa aktywność lakazy i lipazy w roztworach użytkowych zawierających 2,5 mM optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych oraz procentowa aktywność trypsyny w roztworach użytkowych zawierających 0,5 mM optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych, w odniesieniu do prób kontrolnych (za 100% przyjęto wyniki uzyskane dla roztworów bez soli imidazoliowej).
Optycznie czynny sacharynian iinidazoliowy [R-Im-CHzOMentolTSach' Aktywność lakazy, pH5.2 [%] Aktywność lipazy, pH 8,0 [%] Aktywność tiypsyny, pH 8,0 [%]
sachary nian 1 -[(1Λ ,2S, 5R) -(-)-mentoksy mety lo] -3 mety loimidazoliowy [CH5-Im-CH2OMeiitol]+Sach 119,4 77,4 99,4
PL 236 589 Β1
sacharynian l-[(l/t2S.5R)-(-)-mcntoksymctylo|-3“ propyloimidazoliowy [CjHidm-CHiOMentol] Sacir 134,4 102.9 99,7
sacharynian 3-liekjylo-1 -{( mciitoksvmctylo]imidazoliowv [CtHu-lniCHiOMentol] 'Sacir 126,4 150.3 105,4
sacharynian l-[(l/?,2S.5/i)-(—)-mentok$yinetylo|-3nonyloimidazoliowy [CeHw-Ini-CHiOMentol]Sacir 116,6 110.7 112,6
sachaiy niań 3 -dodecylo-l -| (1 R,2S,5R) mcntoksrmctylojimidazoliowy ICuH^-lm- CHiOMentol] 'Sacir 91,7 101.6 112,3
sacharynian 1 -[ (1 R.2S,SR)-(-)-inenloksy inely lo| - 3tetradecyloimidazcliowy [CuHis-Ini-CHiOMentoll +Sacłr 87,3 79.6 104,5
Dodatek optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych z podstawnikiem alkilowym od metylowego do nonylowego w stężeniu 2,5 mM w roztworze użytkowym o pH 5,2 powoduje wzrost aktywności lakazy. 2,5 mM stężenie sacharynianu 3-dodecylo-1-[(1R,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowego i sacharynianu 1-[(1/?,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-tetradecyloimidazoliowego w roztworach użytkowych o pH 5,2 powoduje niewielki spadek aktywności tego enzymu. Korzystne jest stosowanie 2,5 mM stężenia sacharynianów imidazoliowych z podstawnikiem alkilowym od propylowego do dodecylowego w roztworach użytkowych o pH 8 do aktywacji lipazy. Sacharynian 1 -[(1 R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-metyloimidazoliowy oraz sacharynian 1 -[(1 R,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]-3-tetradecyloimidazoliowy w podanym stężeniu powodują niewielki spadek aktywności lipazy. Korzystne jest stosowanie 0,5 mM stężenia sacharynianów imidazoliowych {[R-lm-CHDOMentol]+Sach } do stabilizacji trypsyny. 0,5 mM stężenie sacharynianów imidazoliowych z podstawnikiem od heksylowego do tetradecylowego powoduje wzrost aktywności tego enzymu.
Przykład 2
Stabilność lakazy z Cerrena unicolor, lipazy z Pseudomonas cepacia oraz trypsyny z trzustki bydlęcej w roztworach użytkowych zawierających substancję aktywną w stężeniu 2,5 mM (dla lakazy i lipazy) oraz 0,5 mM (dla trypsyny) oraz czystość mikrobiologiczna roztworów użytkowych z enzymem po 144 h inkubacji.
Roztwory użytkowe o stężeniu 2,5 mM oraz 0,5 mM uzyskano poprzez rozpuszczenie w 30°C odpowiednich naważek optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych, analogicznie jak w Przykładzie 1, w 50 mM buforze fosforanowo-cytrynianowym pH 5,2, 50 mM buforze fosforanowym pH 8 oraz 50 mM buforze boranowym wykorzystano do oznaczenia stabilności i czystości mikrobiologicznej roztworów enzymatycznych. Do 3 mL uzyskanych roztworów użytkowych o pH 5,2 dodano 100 μί lakazy (aktywność właściwa 170 U/mg), do 3 mL uzyskanych roztworów użytkowych o pH 8 (lipaza) dodano 100 μί lipazy (aktywność właściwa 830 U/mg), a także do 3 mL uzyskanych roztworów użytkowych o pH 8 (trypsyna) dodano 100 μί trypsyny (aktywność właściwa 15 U/mg). Mieszaniny inkubowano przez 144 godziny w 30°C i oznaczano aktywność enzymów w ustalonych odstępach czasowych. Po 6 dniach inkubacji w warunkach niesterylnych, pobierano 100 μί enzymu w przygotowanych roztworach użytkowych o pH 5,2 lub pH 8, rozcieńczano 1, 10, 100, 1000, 10 000 razy sterylnym płynem fizjologicznym i wysiewano 50 μί próbki na standardowych stałych pożywkach odpowiednich do wzrostu bakterii (LB Agar) lub grzybów (Potato Dextrose Agar). Hodowle inkubowano w 30°C, po 2 dniach zliczono liczbę kolonii bakteryjnych, a po 4 dniach liczbę kolonii grzybiczych. W Tabeli 2 przedstawiono wyniki wyrażone jako procentowe wartości badanych parametrów w odniesieniu do prób kontrolnych nie zawierających soli imidazoliowych.
PL 236 589 Β1
Tabela 2
Procentowa stabilność lakazy, lipazy, trypsyny oraz liczba kolonii bakteryjnych i grzybiczych po 6 dniach inkubacji w 30°C w roztworach użytkowych o pH 5,2 i pH 8 zawierających optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe w stężeniu 2,5 mM oraz 0,5 mM dla trypsyny w odniesieniu do prób kontrolnych (za 100% przyjęto wyniki uzyskane dla roztworów bez soli imidazoliowej).
Optycznie czynny sacharynian imidaznliowy [R-IrnCH;OMei:tol]Saclf Lakaza (pH 5,2) Lipaza (pH 8.0) Trypsyiia (pH 8 0)
Stabilność enzymu [%] Liczba kolonii bakteiyjnych (%| Liczba kolonii grzybiczych [%] Stabilność enzymu [%] Liczba kolonii bakteryjnych [%| Liczba kolonii grzybiCzych [%] Stabilność enzymu [%] Liczba kolonii bakteryjnych |%| Liczba kolonii grzybiczych r%i
sacharynian 1 - inentoksy mety lo] -3 metyloitnidazoliowy [CHj-Im- CH.OMcrtoirSaclr 61.7 0,0003 brak 103,4 9,7522 brak 135,7 10,8056 3,2677
sachatynian 1- |(l«,2Ś,5/?)-(-)mentoksymetylo]-3propy loimidazoliowy [C3H7-ItnCHiOMentoirSach- 51.9 brak brak 106,2 1.1900 brak 121,8 7.1988 2.7606
sacharynian 3 -heksyΙοί -l(’l ^,25.5^)-(-)mentoksymetylojimida zoliowy [CtHu-ImCH2OMentol]+Sach- 65,8 brak brak 98,6 brak brak 129,8 brak brak
sacharynian 1[(17?.2Ś,5«)-HmcntoksymetyloJ-3nonyloimidazoliowy [CSH,9-ImCHiOMentol]1 Sach 66,4 0,0003 brak 98,8 0.6729 brak 133,5 brak brak
sachatynian 3dodecylo-1[(1Λ,25,Μ)-(-)mentoksymetylo] imida zoliowy [CnHii-ImCH.OMcrtollSach 44,5 0,0054 0,0288 106,4 3,2053 0,0066 163,6 0,0063 0,02817
sachatynian 1- [(1Λ,25,5Λ)-(-)mentoksymetylo]-3 tetradecyloimidazoliowy [C ląHj^-ImCH7OMentol|+Sach- 75,2 2,2315 0,2304 105,6 9,0452 0,2354 95,5 0,0009 0,0352
Zastosowanie roztworów użytkowych o pH 5,2 o 2,5 mM stężeniu sacharynianów imidazoliowych powoduje spadek stabilności lakazy, ale znacząco ogranicza wzrost mikroorganizmów podczas długoterminowej inkubacji w 30°C. Roztwory użytkowe o pH 8 powodują stabilizację lipazy oraz ograniczają wzrost mikroorganizmów w roztworze enzymatycznym, co sprawia, że sacharynianowe sole imidazoliowe z podstawnikiem alkilowym od metylowego do tetradecylowego mogą być wykorzystywane jako stabilizator podczas długoterminowych biotransformacji z wykorzystaniem lipazy. Zastosowanie roztworów użytkowych sacharynianów imidazoliowych z podstawnikiem alkilowym od metylowego do dodecylowego o stężeniu 0,5 mM powoduje znaczący wzrost stabilności trypsyny, natomiast obecność sacharynianu 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-tetradecyloimidazoliowego w roztworze, jej nieznaczny spadek w czasie 144 h inkubacji w porównaniu do roztworu, który nie zawierał soli imidazoliowej. Roztwory te ograniczają wzrost mikroorganizmów w roztworze enzymatycznym, co sugeruje na ich właściwości bakterio- i grzybostatyczne w przypadku związków: [CH3-lm-CH2OMentol]+Sach·, [C3H7-lm-CH2OMentol]+Sach·, [Ci2H25-lm-CH2OMentol]+Sacfr oraz [Ci4H29-lm-CH2OMentol]+Sach·, a także biobójczych związków zawierających heksylowy {[C6Hi3-lm-CH2OMentol]+Sach} i nonylowy {[C9Hi9-lm-CH2OMentol]+Sach} łańcuch alifatyczny, pozwalających zachować sterylność układu. W niespecyficznych testach mikrobiologicznych, czyli przy braku sterylności podczas długoterminowej inkubacji roztworów użytkowych o pH 5,2 i pH 8 oraz 0,5 i 2,5 mM stężeniu sacharynianowych soli
PL 236 589 Β1 z podstawnikiem alkilowym od metylowego do nonylowego, wykazano ich pełną grzybobójczość, co wskazuje na zastosowanie tych związków jako środka przeciwgrzybiczego o szerokim spektrum działania już w stężeniu 0,5 mM. W niespecyficznych testach mikrobiologicznych wykazano bakteriostatyczne działanie roztworów użytkowych o pH 5,2 i pH 8 zawierających badane sacharyniany w stężeniu 2,5 mM, a sacharynian 3-heksylo-1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowy {[CgHi3-lm-CH2OMentol]+Sach } w tym stężeniu wykazał działanie bakteriobójcze. Sacharynian z łańcuchem alifatycznym zawierającym 6 atomów węgla {[C6Hi3-lm-CH2OMentol]+Sach} w stężeniu 2,5 mM w roztworach użytkowych o pH 5,2 i pH 8 oraz 0,5 mM o pH 8 może mieć zastosowanie jako dezynfektant o szerokim spektrum działania, a w roztworze użytkowym o pH 8 jako stabilizator lipazy oraz trypsyny podczas długoterminowych biotransformacji.
Przykład 3
Aktywność lakazy z Cerrena unicolor i lipazy z Pseudomonas cepacia w roztworach użytkowych nasyconych substancjami aktywnymi: [R-lm-ChLOMentoipSacIr.
Roztwory użytkowe nasycone sacharynianem 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-metyloimidazoliowym uzyskano inkubując w 30°C przez 72 godziny w 10mL50 mM buforu fosforanowo-cytrynianowego o pH 5,2 i w 10 mL 50 mM buforu fosforanowego o pH 8, 250 mg sacharynianu z podstawnikiem metylowym. Roztwory użytkowe nasycone sacharynianem 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-propyloimidazoliowym uzyskano inkubując w 30°C przez 72 godziny w 10 mL 50 mM buforu fosforanowo-cytrynianowego o pH 5,2 i w 10 mL 50 mM buforu fosforanowego o pH 8, 110 mg sacharynianu z podstawnikiem propylowym. Roztwory użytkowe nasycone sacharynianem 3-heksylo-1-[(1R,2S,5/?)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowym, sacharynianem 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-nonyloimidazoliowym, sacharynianem 3-dodecylo-1 -[(1 R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowym oraz sacharynianem 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-tetradecyloimidazoliowym uzyskano kontaktując w 30°C 50 mM bufor fosforanowo-cytrynianowy o pH 5,2 i 50 mM bufor fosforanowy o pH 8 z sacharynianami z podstawnikami heksylowym, nonylowym, dodecylowym i tetradecylowym w stosunku objętościowym 1:1, całość 5-krotnie intensywnie mieszano w ciągu pierwszej doby i pozostawiono na kolejnych 48 godzin. Po 72 godzinach inkubacji wszystkie otrzymane mieszaniny odwirowano przez 10 min przy 8000 rpm, uzyskując roztwory użytkowe o stężeniach optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych podanych w Tabeli 3.
Tabela 3
Procentowa aktywność lakazy i lipazy w roztworach użytkowych nasyconych optycznie czynnymi sacharynianami imidazoliowymi, [R-lm-CH2OMentol]+Sach', w odniesieniu do prób kontrolnych (za 100% przyjęto wyniki uzyskane dla roztworów bez soli imidazoliowej).
Optycznie czynny sacharynian imidazoliowy [R-Ini-CHiOMeiitoirSaclr Lakaza (pH 5,2) Lipaza (pH 8,0)
Stężenie sacharynianu iinidazoliowcgo w roztworze użytkowym [mM] Aktywność enzymu [%] Stężenie sacliaiynianu iinidazoliowcgo w roztworze użytkowym ’[mM] Aktywność enzymu [%]
sacharynian 1-((17^,2^,57^)-(-)mentoksy metylo] -3 metyloimidazoliowy [CH34m-CH:OMenloirSach- 51,1 138,2 55.9 147,4
sacharynian 1 -[(1A.2S'. 5/()-(-)mentoksy metylo] -3 propy lorrnrdazoliowy |C5H7-Im-CH2OMentoirSach- 22,5 145,8 23,2 155,9
sacharynian 3-heksylo-l[(1Λ,25,5Λ)-(-)inentoksymeiylo]iniidazoliowv [C6Hn -Im-CHjOMentoll +Sach‘ 8,0 175,4 6,8 167,6
sacharynian 1-((12(,25,5/()-(-)rnentoksy metylo] -3 nonyloimidazoliowy [ C,H -Iin-CH iOMentol] +Sach' 3,8 97,6 5,8 104,7
sacharynian 3-dodecylo-l[(1/(,25,5/()-(-)mentoksy mety lo |irnidazoliowy [C uHM-Im-CH jOMento 1 ] *Sach 2.5 94,5 2.5 98,0
sacharynian 1-((1/(,25,5/()-(-)mentoksy metylo] -3 tctradccyloimidazoliowy [ C HHii-Im-CHrOMentol] łSadr 4,5 78,0 7,8 74,1
PL 236 589 Β1
Uzyskane roztwory użytkowe o pH 5,2 i pH 8 nasycone optycznie czynnymi sacharynianami imidazoliowymi z łańcuchami alkilowymi od metylowego do dodecylowego zwiększały aktywność enzymów nawet o 75% w przypadku lakazy i 68% dla lipazy w przypadku sacharynianu 3-heksylo-1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowego {[C6Hi3-lm-CH2OMentol]+Sach} w stężeniu 8 mM. Sacharynian 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-tetradecyloimidazoliowy {[Ci4H29-lm-CH2OMentol]+Sach } w stężeniu 4,5 mM w roztworze użytkowym o pH 5,2 i 7,8 mM w roztworze użytkowym o pH 8 powoduje niewielki spadek aktywności obu badanych enzymów.
Przykład 4
Stabilność lakazy z Cerrena unicolor, lipazy z Pseudomonas cepacia i trypsyny z trzustki bydlęcej w roztworach użytkowych nasyconych substancjami aktywnymi, [R-lm-CH2OMentol]+Sacfr, oraz czystość mikrobiologiczna roztworów użytkowych z enzymem po 144 h inkubacji.
Roztwory użytkowe nasycone sacharynianem 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-metyloimidazoliowym uzyskano inkubując w 30°C przez 72 godziny w 10mL50 mM buforu fosforanowo-cytrynianowego o pH 5,2 i w 10 mL 50 mM buforu fosforanowego o pH 8, 250 mg sacharynianu z podstawnikiem metylowym, a także 10 mL 50 mM buforu boranowego o pH 8 z 220 mg sacharyniau z podstawnikiem metylowym. Roztwory użytkowe nasycone sacharynianem 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-propyloimidazoliowym uzyskano inkubując w 30°C przez 72 godziny w 10 mL 50 mM buforu fosforanowo-cytrynianowego o pH 5,2 i w 10 mL 50 mM buforu fosforanowego o pH 8, 110 mg sacharynianu z podstawnikiem propylowym, a także 10 mL 50 mM buforu boranowego o pH 8 z 100 mg sacharynianu z podstawnikiem propylowym. Roztwory użytkowe nasycone sacharynianem 3-heksylo-1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowym, sacharynianem 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-nonyloimidazoliowym, sacharynianem 3-dodecylo-1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]imidazoliowym oraz sacharynianem 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-tetradecyloimidazoliowym uzyskano kontaktując w 30°C 50 mM bufor fosforanowo-cytrynianowy o pH 5,2, 50 mM bufor fosforanowy o pH 8 oraz 50 mM bufor boranowy o pH 8 z sacharynianami z podstawnikami heksylowym, nonylowym, dodecylowym i tetradecylowym w stosunku objętościowym 1:1, całość 5-krotnie intensywnie mieszano w ciągu pierwszej doby i pozostawiono na kolejnych 48 godzin. Po 72 godzinach inkubacji wszystkie otrzymane mieszaniny odwirowano przez 10 min przy 8000 rpm, uzyskując roztwory użytkowe o stężeniach sacharynianów imidazoliowych podanych w Tabeli 4.
Tabela 4
Procentowa stabilność lakazy i lipazy po 6 dniach inkubacji w 30°C w roztworach użytkowych o pH 5,2 i pH 8 nasyconych optycznie czynnymi sacharynianami imidazoliowymi, [R-lm-CH2OMentol]+Sach', w odniesieniu do prób kontrolnych (za 100% przyjęto wyniki uzyskane dla roztworów bez soli imidazoliowej).
Optycznie czynny sacharynian imidazoliowy |R-lmCBjOMentcl]+Sach· Lakaza (pH 5,2) Lipaza (pH 8,0) Trypsyna (pH 8.0)
Stężenie sacharynianu imidazoliowego w roztworze użytkowym [mM] Stabilność enzymu [%] Stężenie sacharynianu imidazoliowego w roztworze użytku wyru [mM] Stabilność enzymu [%] Stężenie sacharynianu imidazoliowego w roztworze użytkowym [mM] Stabilność enzymu [%]
sacharynian 1[(1Λ2$,5Λ)-(-)nientoksymetylo] -3 me ty loimidazoliowy [CHj-ImCHjOMentolTSach' 51,1 18.0 55.9 22,3 50,4 158,0
sacharynian 1[(12?,2S,5i)-(-)mentoksy metylo] -3 propy loimidazoliowy ’ [C3H7-Im- CHiOMentcirSach’ 22,5 38,3 23,2 46,2 21,6 113,6
sacharynian 3-heksvlo-l[(1Λ.2Χ,5Λ)-(-)- nientoksymetylojimidazoliowy [CeHu-ImCILOMetilciySach 8,0 60.5 6,8 102,2 5,1 154,5
sacharvnian 1- [(1Λ.2ίΐ.5Λ)-(-)mentoksymetylo] -3 nony loimidazoliowy [C»Hi9-IinCH;OMentcirSach- 3,8 35,7 5,8 107,5 1,2 211.1
PL 236 589 Β1
sacharynian 3-dodccylol-[(12i,2S,5/i)-(-)mentoksymetylo]imidazoliowy [CizHh-IuiCHiOMcntcl PSach 2,5 50.4 2,5 108.5 0,5 175,2
sacharynian 1[(lR,2S,5A)-(-)mcntoksy metylo]-3Ictradccj· loimidazoliowy [CiłHjg-linCIWMentolTSach- 4,5 77.8 7,8 125,8 0,9 160,7
Do 3 mL każdego z uzyskanych roztworów użytkowych o pH 5,2 dodano 100 μί lakazy (aktywność właściwa 170 U/mg), do 3 mL uzyskanych roztworów użytkowych buforu fosforanowego o pH 8 dodano 100 μί lipazy (aktywność właściwa 830 U/mg), a do 3 mL uzyskanych roztworów użytkowych buforu boranowego pH 8 dodano 100 μί trypsyny (aktywność właściwa 15 U/mg). Mieszaniny inkubowano przez 144 godziny w 30°C i oznaczano aktywność obu enzymów w ustalonych odstępach czasowych. Po 6 dniach inkubacji w warunkach niesterylnych, pobierano 100 μί enzymu w przygotowanych roztworach użytkowych o pH 5,2 lub pH 8, rozcieńczano 1, 10, 100, 1000, 10 000 razy sterylnym płynem fizjologicznym i wysiewano 50 μί próbki na standardowych stałych pożywkach odpowiednich do wzrostu bakterii (LB Agar) lub grzybów (Potato Dextrose Agar). Hodowle inkubowano w 30°C, po 2 dniach zliczono liczbę kolonii bakteryjnych, a po 4 dniach liczbę kolonii grzybiczych. W Tabelach 4 i 5 przedstawiono wyniki wyrażone jako procentowe wartości badanych parametrów w odniesieniu do prób kontrolnych nie zawierających soli imidazoliowych.
Tabela 5
Procentowa liczba kolonii bakteryjnych i grzybiczych po 6 dniach inkubacji w 30°C lakazy i lipazy w roztworach użytkowych o pH 5,2 i pH 8 nasyconych optycznie czynnymi sacharynianami imidazoliowymi, [R-lm-CH2OMentol]+Sach', w odniesieniu do prób kontrolnych (za 100% przyjęto wyniki uzyskane dla roztworów bez soli imidazoliowej).
Optycznie czynny sacharynian imidazoliowy (R-ImCH2OMentolj+Sach' Lakaza (pH 5,2) Lipaza (pH 8.0) Trypsyna (pH 8,0)
Stężenie sachatynianu imidazoliowego fmM] Liczba kolonii bakteryjnych [%] Liczba kolonii grzybiczych |%] Stężenie sacbaryniann imidazoliowcgo [mM] Liczba kolonii bakteryjnych |%] Liczba kolonii grzybiczych [%] Stężenie sacharyniann iinidazoliowcgo [mM] Liczba kolonii bakteryjnych [%] Liczba kolonii grzybiczych l%]
sacharynian 1- [(1Λ,25,5Λ)-(-)mentoksy metylo| -3 mctyloimidazoliowy ' [CHrlmCHjOMentol PSach 51,1 brak brak 55.9 brak brak 50,4 brak brak
sacharynian 1[(1Λ.25,5Λ)-Ηmentoksy metylol -3 propyloimidazoliowy [CjH-lmCHzOMetitolTSactr 22.5 brak brak 23,2 brak brak 21,6 brak brak
sacharynian 3heksvlo-l- [(lfi,2S,5fi)-( ) mentoksymetylo]imidazoliowy [CtHn-Im- CH?OMctilol]+Saclr 8,0 brak brak 6,8 brak brak 5,1 brak brak
sacharynian 1[(lfl,2S,57?)-(-)mentoksy metylo] -3 nonyloi midazoliowy ' |C,H19-Im- CHzOMentolpSach- 3,8 0,002 brak 5,8 0.359 brak 1,2 brak 0,025
sacharynian 3dodecvlo-l](1K,2.<5W)-Mmentoksymetylojimidazoliowy [CnHjs-ImCH2OMentol]+Sach 2,5 0,018 0,014 2,5 3.003 0,003 0,5 0,029 1,070
PL 236 589 Β1
sacharynian 1[C menloks.ytnclylo|-3tctradccyloiuiidazo liowy | C uHjfł-Ini- CHjOMcntollSaclr 4,5 0,291 0,043 7.8 6,097 0.017 0.9 0.005 0,013
Uzyskane roztwory użytkowe o pH 5,2 nasycone optycznie czynnymi sacharynianami imidazoliowymi w stężeniach 2,5-51,1 mM powodują spadek stabilności lakazy w przypadku każdego związku {[R-lm-CH2OMentol]+Sach }, co wyklucza ich stosowanie jako stabilizatorów lakazy podczas biotechnologicznych procesów długoterminowych. Sacharynian 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-metyloimidazoliowy w stężeniu 55,9 mM oraz sacharynian 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-propyloimidazoliowy w stężeniu 23,2 mM w roztworach użytkowych o pH 8 powodują znaczny spadek stabilności lipazy względem enzymu inkubowanego w roztworze bez soli imidazoliowej. Roztwory użytkowe o pH 8 nasycone optycznie czynnymi sacharynianami imidazoliowymi z podstawnikami alkilowymi od heksylowego do tetradecylowego powodują wzrost stabilności lipazy do 126% po 6 dniach inkubacji w 30°C względem enzymu inkubowanego w tym samym czasie bez dodatku substancji aktywnej, stąd nasycone roztwory użytkowe z powyższymi sacharynianami mogą mieć zastosowanie podczas długoterminowych biotransformacji z wykorzystaniem lipaz. Roztwory użytkowe nasycone optycznie czynnymi sacharynianami imidazoliowymi {[R-lm-CH2OMentol]+Sach} powodują znaczący wzrost stabilności trypsyny. Sacharynian 1-[(1R,2S,5R)-(-)-mentoksymetylo]-3-nonyloimidazoliowy powoduje wzrost stabilności trypsyny do 211% w stężeniu 1,2 mM oraz działa bakteriobójczo i grzybostatycznie, co wskazuje na jego zastosowanie jako stabilizatora trypsyny podczas biotechnologicznych procesów długoterminowych. W niespecyficznych testach mikrobiologicznych, czyli przy braku sterylności podczas długoterminowej inkubacji roztworów użytkowych o pH 5,2 i pH 8 wykazano pełną bakterioi grzybobójczość soli imidazoliowych z podstawnikiem alkilowym od metylowego do heksylowego w stężeniach 5,1-55,9 mM, dlatego związki te mogą mieć zastosowanie jako dezynfektanty. Optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy 9 {[C9Hi9-lm-CH2OMentol]+Sach}, 12 {[Ci2H25-lm-CH2OMentol]+Sach } i 14 {[Ci4H29-lm-CH2OMentol]+Sach } węglowy wykazują działanie bakteriostatyczne i grzybostatyczne w roztworach użytkowych o pH 5,2 i pH 8, dzięki czemu znacząco ograniczają wzrost mikroorganizmów podczas długoterminowych procesów i mogą być stosowane jako stabilizator lipazy oraz trypsyny o pH 8.

Claims (10)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Zastosowanie optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych zawierających pochodną optycznie czynnego (1R,2S,5R)-(-)-mentolu, o wzorze ogólnym [R-lm-ChLOMentoIpSaclr, w którym R oznacza grupę alkilową CnH2n+i, gdzie n wynosi 1,3, 6, 9, 12 oraz 14 do aktywacji i stabilizacji enzymów z grupy oksydoreduktaz oraz hydrolaz w szczególności lakazy, lipazy lub trypsyny w roztworach białkowych.
  2. 2. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że do aktywacji lakazy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 o długości łańcucha alkilowego od metylowego do nonylowego w stężeniu 2,5 mM oraz optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy od metylowego do heksylowego w stężeniu 8,0-51,1 mM.
  3. 3. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że do aktywacji lipazy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 o długości łańcucha alkilowego od propylowego do dodecylowego w stężeniu 2,5 mM oraz optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy od metylowego do nonylowego w stężeniu 5,8-55,9 mM.
  4. 4. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że do aktywacji trypsyny stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 o długości łańcucha alkilowego od heksylowego do tetradecylowego w stężeniu 0,5 mM.
  5. 5. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że do stabilizacji lipazy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 o długości łańcucha alkilowego od metylowego do tetradecylowego w stężeniu 2,5 mM oraz optycznie czynne sacharyniany
    PL 236 589 Β1 imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy od heksylowego do tetradecylowego w stężeniu 2,5-7,8 mM.
  6. 6. Zastosowanie według zastrz. 1, znamienne tym, że do stabilizacji trypsyny stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 o długości łańcucha alkilowego od metylowego do dodecylowego w stężeniu 0,5 mM oraz optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe zawierające łańcuch alkilowy od metylowego do tetradecylowego w stężeniu 0,9-50,4 mM.
  7. 7. Zastosowanie optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych zawierających pochodną optycznie czynnego (1R,2S,5R)-(-)-mentolu o wzorze ogólnym [R-lm-ChLOMentoipSaclr, w którym R oznacza grupę alkilową CnH2n+i, gdzie n wynosi 1,3, 6, 9, 12 oraz 14, jako środków biobójczych, obejmujących działanie bakterio- i grzybobójcze oraz bakterio- i grzybostatyczne.
  8. 8. Zastosowanie według zastrz. 7, znamienne tym, że jako środek grzybobójczy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 o długości łańcucha alkilowego od metylowego do nonylowego w stężeniu 2,5-55,9 mM.
  9. 9. Zastosowanie według zastrz. 7, znamienne tym, że jako środek bakteriobójczy stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 o długości łańcucha alkilowego od metylowego do heksylowego w stężeniu 6,8-55,9 mM.
  10. 10. Zastosowanie według zastrz. 7, znamienne tym, że jako środek bakterio- i grzybostatyczny stosuje się optycznie czynne sacharyniany imidazoliowe określone w zastrz. 1 w stężeniu 0,5 mM.
PL420446A 2017-02-10 2017-02-10 Zastosowania optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych w enzymologii PL236589B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL420446A PL236589B1 (pl) 2017-02-10 2017-02-10 Zastosowania optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych w enzymologii

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL420446A PL236589B1 (pl) 2017-02-10 2017-02-10 Zastosowania optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych w enzymologii

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL420446A1 PL420446A1 (pl) 2017-12-04
PL236589B1 true PL236589B1 (pl) 2021-01-25

Family

ID=60473223

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL420446A PL236589B1 (pl) 2017-02-10 2017-02-10 Zastosowania optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych w enzymologii

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL236589B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL420446A1 (pl) 2017-12-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wen et al. Assessing the toxicity and biodegradability of deep eutectic solvents
Caillier et al. Polymerizable semi-fluorinated gemini surfactants designed for antimicrobial materials
Kanazawa et al. Synthesis and antimicrobial activity of dimethyl-and trimethyl-substituted phosphonium salts with alkyl chains of various lengths
Schaffran et al. Toxicity of N, N, N-trialkylammoniododecaborates as new anions of ionic liquids in cellular, liposomal and enzymatic test systems
Lukáč et al. Synthesis and antimicrobial activity of a series of optically active quaternary ammonium salts derived from phenylalanine
WO2008092688A1 (en) Disinfectant formulations containing quaternary ammonium compounds and hydrogen peroxide
Vera et al. Comparative effects of technical-grade and a commercial formulation of glyphosate on the pigment content of periphytic algae
US4166122A (en) Bis-(5,5-dimethyl-1,3-oxazolidin-3-yl) methane as an antimicrobial agent
EP0900015B1 (en) Fungicide salts
PL236589B1 (pl) Zastosowania optycznie czynnych sacharynianów imidazoliowych w enzymologii
AU2010266055B2 (en) Use of monochlorourea to treat industrial waters
NO171591B (no) Forbindelse, biocid blanding og anvendelse
Swiontek Brzezinska et al. The influence of polyhexamethylene guanidine derivatives introduced into polyhydroxybutyrate on biofilm formation and the activity of bacterial enzymes
US20100144877A1 (en) Synergistic Enhancement of Calcium Propionate
Thebault et al. Surface and antimicrobial properties of semi-fluorinated quaternary ammonium thiol surfactants potentially usable for self-assembled monolayers
CN104619688B (zh) 抗微生物化合物
US20130261148A1 (en) Protected antimicrobial compounds for high temperature applications
PT99043B (pt) Processo para a preparacao de composicoes biocidas contendo derivados de 4,5-polimetileno-4-isotiazolin-3-onas
JP2020129976A (ja) Ahlラクトナーゼ活性測定方法及び水処理方法
RU2793332C2 (ru) Дезинфицирующее средство на основе четвертичного аммониевого соединения &#34;изобак&#34;
PL229834B1 (pl) Chiralne ciecze jonowe z anionem salicylanowym, sposób ich wytwarzania oraz zastosowanie
US9617278B2 (en) Antimicrobial compounds
Kusumahastuti et al. Antibacterial Activity of 24 L-Phenylalanine Derived Surface-Active Ionic Liquids (SAILs) Towards Two Clinically Relevant Pathogens
RU2748418C1 (ru) Борорганические производные моноэтаноламина, обладающие антимикробной активностью
Fait et al. Green Molecules on Red Alert: Amino Acid‐Based Surfactants as Sustainable Antimicrobials Against Biofilms