PL236775B1 - Sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw pasożytów, zwłaszcza Trichinella spp - Google Patents

Sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw pasożytów, zwłaszcza Trichinella spp Download PDF

Info

Publication number
PL236775B1
PL236775B1 PL428256A PL42825618A PL236775B1 PL 236775 B1 PL236775 B1 PL 236775B1 PL 428256 A PL428256 A PL 428256A PL 42825618 A PL42825618 A PL 42825618A PL 236775 B1 PL236775 B1 PL 236775B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
larvae
substrate
gelatin
trichinella
medium
Prior art date
Application number
PL428256A
Other languages
English (en)
Other versions
PL428256A1 (pl
Inventor
Mirosław Różycki
Ewa Bilska-Zając
Maciej Kochanowski
Tomasz Cencek
Jacek Karamon
Joanna Dąbrowska
Jolanta Zdybel
Jacek Sroka
Original Assignee
Panstwowy Inst Weterynaryjny Panstwowy Inst Badawczy
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Panstwowy Inst Weterynaryjny Panstwowy Inst Badawczy filed Critical Panstwowy Inst Weterynaryjny Panstwowy Inst Badawczy
Priority to PL428256A priority Critical patent/PL236775B1/pl
Publication of PL428256A1 publication Critical patent/PL428256A1/pl
Publication of PL236775B1 publication Critical patent/PL236775B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0601Invertebrate cells or tissues, e.g. insect cells; Culture media therefor

Landscapes

  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Meat, Egg Or Seafood Products (AREA)
  • Fodder In General (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw pasożytów, zwłaszcza Trichinella spp.
Trichinella spp jest jednym z najgroźniejszych pasożytów człowieka, wywołującym włośnicę, która może mieć ciężki przebieg, kończący się nawet śmiercią osoby zakażonej włośniem.
Włośnica jest spowodowana spożyciem mięsa, w którym znajdują się żywe larwy włośni. Zapobieganie włośnicy polega przede wszystkim na przerwaniu jej łańcucha epidemiologicznego. W tym celu mięso przeznaczone do konsumpcji a pozyskane od gatunków podatnych na zarażenie takich jak świnie, dziki, konie, nutrie poddawane jest badaniu na obecność włośni przy użyciu metody wytrawiania wspomaganego mieszadłem magnetycznym. Badania te wykonywane są w laboratoriach, odpowiedzialnych za bezpieczeństwo żywności, systematycznie biorących udział w testach sprawdzających ich kompetencje.
Metodologia przygotowania próbek do badań biegłości polega na wyizolowaniu włośni z tkanki mięśniowej i dodaniu znanej liczby larw do mięsa mielonego, W takich warunkach włośnie mogą przeżyć maksymalnie 5-8 dni, gdyż są typowymi beztlenowcami i niewielki dostęp tlenu powoduje ich zamieranie.
Celem wynalazku jest opracowanie podłoża zapewniającego larwom włośni środowisko odżywcze, ograniczające dostęp tlenu co pozwala na kilkutygodniowe utrzymanie żywych larw poza żywicielem.
Istota rozwiązania według wynalazku polega na tym, że przygotowuje się podłoże na bazie żelatyny ze skór wieprzowych otrzymanej w procesie kwaśnym typu A o pH od 3,8 do 5,0 i twardości 300 Bloom, W tym celu żelatynę rozpuszcza się na gorąco w temperaturze od 55 do 65°C w zbuforowanej wodzie peptonowej tworząc roztwór o zawartości od 7 do 9 % wagowych żelatyny i temperaturze krzepnięcia 43-44°C. Płynne podłoże doprowadza się do temperatury 45° i zalewa płytki Pietriego na wysokość od 6 do 8 mm, po czym pozostawia w warunkach jałowych do zakrzepnięcia. Następnie na jałowo wycina się w podłożu studzienki. W tym samym czasie przygotowuje się izobaty larw włośni przez wytrawianie tkanki mięsnej i wyizolowane larwy przepłukuje się jałowym płynem fizjologicznym, po czym oczyszczone larwy zawieszone w płynie fizjologicznym umieszcza w płytce Pietriego i pod mikroskopem przenosi do wcześniej przygotowanego podłoża. Larwy umieszcza się na dnie studzienek w postaci kropli. Tak umieszczone larwy w podłożu zalewa się ostrożnie ostudzonym roztworem żelatyny. Larwy zabezpieczone w ten sposób mogą być przechowywane przez okres około 3 tygodni w temp. od 4 do 8°C.
Korzystnie studzienki w podłożu mają głębokość od 5 do 6 mm.
Korzystnie larwy przenosi się do podłoża: mikropipetą z przezroczystą końcówką, co umożliwia ich liczenie.
Zaletą rozwiązania opisanego wynalazku jest uzyskanie larw zabezpieczonych przed wpływem środowiska i odtworzenie warunków zbliżonych do komórki mięśniowej. Opisane podłoże może mieć zastosowanie w transporcie żywych larw jak również w badaniach międzylaboratoryjnych czy też badaniach biegłości. Opracowane podłoże jest ponadto przejrzyste co pozwala na dokładną kontrolę liczby przesyłanych larw włośni.
Podłoże może mieć również zastosowanie do przechowywania i transportu larw Anisakis Simple oraz Pseudoterranowa decipiens.
Rozwiązanie według wynalazku zostało przedstawione w przykładzie wykonania.
Przygotowuje się podłoże na bazie żelatyny ze skór wieprzowych otrzymanej w procesie kwaśnym typu A o pH 3,8-5,0 i twardości 300 Bloom. W tym celu żelatynę rozpuszcza się na gorąco w temperaturze 60°C w zbuforowanej wodzie peptonowej tworząc roztwór o zawartości 8% wagowych żelatyny i temperaturze krzepnięcia 43-44°C. Płynne podłoże doprowadza się do temperatury 45° i zalewa płytki Pietriego na wysokość od 6 do 8 mm, po czym pozostawia w warunkach jałowych do zakrzepnięcia na około 24 h. Następnie jałowym korkoborem wycina się w podłożu studzienki o głębokości od 5 do 6 mm w tym samym czasie przygotowuje się izobaty larw włośni przez wytrawianie tkanki mięsnej i wyizolowane larwy przepłukuje się jałowym płynem fizjologicznym, po czym oczyszczone larwy zawieszone w płynie fizjologicznym umieszcza w płytce Pietriego i pod mikroskopem przenosi mikropipetą z przezroczystą końcówką do wcześniej przygotowanego podłoża. Larwy umieszcza się na dnie studzienek w postaci kropli. Tak umieszczone larwy w podłożu zalewa się ostrożnie ostudzonym roztworem żelatyny. Larwy zabezpieczone w ten sposób mogą być przechowywane przez okres około 3 tygodni w temp. od 4 do 8°C.

Claims (3)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw Trichinella spp, znamienny tym, że przygotowuje się podłoże na bazie żelatyny ze skór wieprzowych otrzymanej w procesie kwaśnym typu A o pH 3,8-5,0 i twardości 300 Bloom i tym celu żelatynę rozpuszcza się na gorąco w temperaturze od 55 do 65°C w zbuforowanej wodzie peptonowej tworząc roztwór o zawartości od 7 do 9% wagowych żelatyny i temperaturze krzepnięcia 43-44°C, po czym płynne podłoże doprowadza się do temperatury 45° i zalewa płytki Pietriego na wysokość od 6 do 8 mm i pozostawia w warunkach jałowych do zakrzepnięcia, a następnie na jałowo, wycina się w podłożu studzienki, przy czym tym samym czasie przygotowuje się izobaty larw włośni przez wytrawianie tkanki mięsnej i wyizolowane larwy przepłukuje się jałowym płynem fizjologicznym, a następnie oczyszczone larwy zawieszone w płynie fizjologicznym umieszcza w płytce Pietriego i pod mikroskopem przenosi się do wcześniej przygotowanego podłoża oraz umieszcza się na dnie studzienek w postaci kropli, po czym tak umieszczone larwy w podłożu zalewa się ostrożnie ostudzonym roztworem żelatyny i zabezpieczone w ten sposób larwy mogą być przechowywane przez okres około 3 tygodni w temp. od 4 do 8°C.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że studzienki w podłożu mają głębokość od 5 do 6 mm.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że larwy przenosi się do podłoża mikropipetą z przezroczystą końcówką, co umożliwia ich liczenie.
PL428256A 2018-12-19 2018-12-19 Sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw pasożytów, zwłaszcza Trichinella spp PL236775B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL428256A PL236775B1 (pl) 2018-12-19 2018-12-19 Sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw pasożytów, zwłaszcza Trichinella spp

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL428256A PL236775B1 (pl) 2018-12-19 2018-12-19 Sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw pasożytów, zwłaszcza Trichinella spp

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL428256A1 PL428256A1 (pl) 2020-03-09
PL236775B1 true PL236775B1 (pl) 2021-02-22

Family

ID=69709589

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL428256A PL236775B1 (pl) 2018-12-19 2018-12-19 Sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw pasożytów, zwłaszcza Trichinella spp

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL236775B1 (pl)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL444124A1 (pl) * 2023-03-17 2024-09-23 Państwowy Instytut Weterynaryjny - Państwowy Instytut Badawczy Sposób wytwarzania podłoża transportowego do długotrwałego przechowywania żywych jaj pasożytów jelitowych Ascaris spp., Trichuris spp. i Toxocara spp

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL444124A1 (pl) * 2023-03-17 2024-09-23 Państwowy Instytut Weterynaryjny - Państwowy Instytut Badawczy Sposób wytwarzania podłoża transportowego do długotrwałego przechowywania żywych jaj pasożytów jelitowych Ascaris spp., Trichuris spp. i Toxocara spp
PL246826B1 (pl) * 2023-03-17 2025-03-17 Panstwowy Inst Weterynaryjny Panstwowy Inst Badawczy Sposób wytwarzania podłoża transportowego do długotrwałego przechowywania żywych jaj pasożytów jelitowych Ascaris spp., Trichuris spp. i Toxocara spp.

Also Published As

Publication number Publication date
PL428256A1 (pl) 2020-03-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Dreanno et al. Cryopreservation of turbot (Scophthalmus maximus) spermatozoa
Berkhout et al. Variation among genotypes in responses to increasing temperature in a marine parasite: evolutionary potential in the face of global warming?
PL236775B1 (pl) Sposób wykonania podłoża transportowego dla żywych larw pasożytów, zwłaszcza Trichinella spp
Ashfaq et al. Size at sexual maturity of waved whelk (Buccinum undatum) on the Eastern Scotian Shelf
Songe et al. A thicker chorion gives ova of Atlantic salmon (Salmo salar L.) the upper hand against Saprolegnia infections
Dziewulska et al. Basic physico‐chemical parameters of milt from sea trout (Salmo trutta m. trutta), brook trout (Salvelinus fontinalis) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)
Tirpak et al. Effect of taurine on bovine spermatozoa motility parameters following cryopreservation
Dogliero et al. Use of computer-assisted semen analysis for evaluation of rosy-faced lovebird (Agapornis roseicollis) semen collected in different periods of the year
Öğretmen et al. Inhibitory effect of K^+ and Ca^{2+} concentrations, pH, and osmolality of activation solution on motility of shabut (Barbus grypus Heckel 1843) spermatozoa
Omori et al. Gene expression analysis of Six3, Pax6, and Otx in the early development of the stalked crinoid Metacrinus rotundus
Clarke et al. Clipping the tail fin enables cohort identification of small anuran tadpoles
Shah et al. Blastomeres derived from the vegetal pole provide extra-embryonic nutrition to sturgeon (Acipenser) embryos: transition from holoblastic to meroblastic cleavage
RU2745401C1 (ru) Способ индукции секреции биологически активных соединений у рапаны rapana venosa val.
Reid et al. Post-metamorphic attachment by solitary ascidian Ciona intestinalis (Linnaeus, 1767) juveniles from Newfoundland and Labrador, Canada.
Bilska-Zajac et al. Gelatin medium for preserving of Trichinella spp. for quality control in laboratories-estimation of larvae viability
Leech Investigation into the vector competence of Ixodes ricinus ticks to Hazara virus and Crimean-Congo Haemorrhagic Fever virus
Prociv Observations on the post-mortem migration of nematode larvae and its role in tissue digestion techniques
Sonseeda et al. Effects of sericin supplementation on the sperm survival of cooled stored chicken semen
Dogliero et al. Comparison of different methods of semen cryopreservation in Melopsittacus undulatus
Guðmundsson Identification of parasites in haddock (Melanogrammus aeglefinus) for use in stock discrimination
Sampieri et al. Chilled storage of zebrafish embryos: Development of an efficient protocol
MacLeod In vitro study of the microsporidian parasite Loma morhua, using cod-derived cells and novel culture techniques
Melnychuk et al. Industrial tests of different methods of soil samples testing for the presence of eggs of nematodes–pathogens of parasitic diseases of sheep
JP5073224B2 (ja) 分化細胞の調製方法および分化誘導用未分化細胞組成物
KR20130137284A (ko) 무당개구리의 배아 또는 유생을 이용한 독성 평가 방법