PL238186B1 - Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGFβ2 lub TGFβ3) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EG FRvIII-pozytywna - Google Patents

Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGFβ2 lub TGFβ3) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EG FRvIII-pozytywna Download PDF

Info

Publication number
PL238186B1
PL238186B1 PL427358A PL42735818A PL238186B1 PL 238186 B1 PL238186 B1 PL 238186B1 PL 427358 A PL427358 A PL 427358A PL 42735818 A PL42735818 A PL 42735818A PL 238186 B1 PL238186 B1 PL 238186B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
cells
growth factor
tgf32
egfrviii
transforming growth
Prior art date
Application number
PL427358A
Other languages
English (en)
Other versions
PL427358A1 (pl
Inventor
Piotr Rieske
Ewelina STOCZYŃSKA-FIDELUS
Ewelina Stoczyńska-Fidelus
Sylwester Piaskowski
Andrzej Szczepan Wyrzykowski
Original Assignee
Celther Polska Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Personather Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Sylwester Piaskowski
Piotr Rieske
STOCZYNSKA FIDELUS Ewelina
Andrzej Szczepan Wyrzykowski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Celther Polska Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia, Personather Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia, Sylwester Piaskowski, Piotr Rieske, STOCZYNSKA FIDELUS Ewelina, Andrzej Szczepan Wyrzykowski filed Critical Celther Polska Spolka Z Ograniczona Odpowiedzialnoscia
Priority to PL427358A priority Critical patent/PL238186B1/pl
Priority to EP18867689.4A priority patent/EP3735261B1/en
Priority to PL18867689.4T priority patent/PL3735261T3/pl
Priority to PCT/PL2018/000097 priority patent/WO2019078745A1/en
Publication of PL427358A1 publication Critical patent/PL427358A1/pl
Publication of PL238186B1 publication Critical patent/PL238186B1/pl

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

W przypadku wielu nowotworów obserwujemy mutację prowadzącą do powstawania tzw. EGFRvIII. Aktualnie obowiązuje pogląd stwierdzający, że działania przeciwnowotworowe w odniesieniu do komórek nowotworowych z EGFRvIII mogą polegać na wywołaniu ich śmierci komórkowej dzięki blokowaniu aktywności kinazowej tego receptora. Stosowano też ogólnie dostępne formy terapii: chemioterapia, radioterapia, chirurgia. Próbowano również bez powodzenia stosować terapie immunologiczne.
Nikt nie proponował do tej pory zastosowania TGF32 lub TGF33 w terapii pacjentów z nowotworami, których komórki wykazują ekspresję EGFRvIII.
EGFRvIII powstaje w wyniku delecji fragmentu genu EGFR zawierającego eksony 2-7 [Wikstrand 1998]. Mutant ten nie występuje w komórkach prawidłowych. Ekspresja EGFRvIII w wielu typach nowotworów tłumaczy olbrzymie zapotrzebowanie na terapię eliminującą komórki nowotworowe wykazujące ekspresję EGFRvIII.
Komórki nowotworowe wykazujące ekspresję EGFRvIII wykazują dużą lekoopomość na terapie związkami drobnocząsteczkowymi [Liu 2013, Learn 2004, Schulte 2013, Ji 2006, Zanca 2017] i terapie immunologiczne [Brand 2011, Yang 2008, Patel 2007].
Komórki EGFRvIII pozytywne mogą odgrywać rolę nowotworowych komórek macierzystych, ewentualnie komórki EGFRvIII negatywne mogą być zależne od komórek EGFRvIII pozytywnych [Zanca 2017, Pęciak 2017].
Popyt na poszukiwany lek działający specyficzne na komórki, które wykazują ekspresję EGFRvIII, jest bardzo duży. W tej chwili nie ma na rynku substancji, które powodują śmierć komórek nowotworowych wykazujących ekspresję EGFRvIII, ale względnie nieszkodliwych dla komórek prawidłowych. Stosowane obecnie substancje lecznicze wykazują bardzo poważne efekty uboczne ponieważ zazwyczaj, molekuły na które oddziałują, znajdują się zarówno w komórkach prawidłowych jak i nowotworowych [Dudek 2006, Perez-Soler 2004, Petty 2003, Nguyen 2009].
Komórki nowotworowe wykazujące wysokie stężenie EGFRvIII to przede wszystkim komórki glejaka wielopostaciowego [Pęciak 2017]. Wiele innych nowotworów charakteryzuje się obecnością komórek EGFRvIII pozytywnych. Natomiast w przypadku glejaka wielopostaciowego mediana czasu przeżycia to jedynie 15-18 miesięcy. Najbardziej optymistyczne dane wskazują, że tylko kilka procent pacjentów z glejakiem wielopostaciowym przeżyje więcej niż pięć lat od momentu postawienia diagnozy w USA. Dla porównania tylko 10% kobiet z rakiem piersi w USA nie przeżyje pięciu lat od momentu postawienia diagnozy. W przypadku glejaka wielopostaciowego najdłużej przeżywają pacjenci, u których stosuje się połączenie radioterapii, temozolomidu (chemioterapia) i chirurgii. Terapii towarzyszy najczęściej ekstremalne pogorszenie stanu pacjentów i dramatyczne zmiany osobowości. Blisko połowa pacjentów z glejakiem wielopostaciowym to osoby starsze (około 70-letnie), które bardzo źle znoszą obecnie stosowane rodzaje terapii. Nie ma zgody co do tego jakie powinny być w ich przypadku standardy terapeutyczne. W przypadku tych pacjentów mediana przeżycia wynosi około dziesięciu miesięcy. Nie jest znana terapia prowadząca do śmierci komórek nowotworowych glejaka wielopostaciowego, która jest nieszkodliwa dla komórek prawidłowych co poprawiłoby sytuację pacjentów z glejakiem wielopostaciowym. Takie terapie przeciwnowotworowe nie zostały jeszcze odkryte lub stanowią absolutną rzadkość. U pacjentów z glejakiem wielopostaciowym próbowano stosować terapie immunologiczne, które mogłyby spełnić kryterium ewidentnej nieszkodliwości ale bez powodzenia [Hopper-Borge 2009, Grisanti 2008, Rades 2010].
TGF3 (TGF32 lub TGF33) generalnie znane są z innego wpływu na komórki nowotworowe niż ten opisany w zgłoszeniu. Dotychczas próbowano stosować w terapii onkologicznej blokery receptora dla TGF3 [Han 2015]. Nie są znane skuteczne próby zastosowania TGF32 lub TGF33 jako substancji przeciwnowotworowych, tym bardziej w terapii nowotworów, w których występują komórki EGFRvIII pozytywne. Powszechnie wiadomo, że czynnik wzrostu TGF32 lub TGF33 nie może być szkodliwy wobec komórek prawidłowych w takim sensie jak np. erlotynib, afatynib czy temozolomid. TGF3 jest substancją
PL 238 186 B1 produkowaną w organizmie człowieka w warunkach fizjologicznych. Jego szkodliwość jest więc relatywnie znikoma.
Istota wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGF32 lub TGF33) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EGFRvIII-pozytywna.
Korzystnie komórki nowotworowe EGFRvIII-negatywne są biologicznie zależne od komórek EGFRvIII-pozytywnych. Korzystnie komórką nowotworową podatną na efekt cytotoksyczny i cytostatyczny jest macierzysta komórka nowotworowa EGFRvIII-pozytywna. Korzystnie komórka jest ludzką komórką nowotworową.
Korzystne skutki wynalazku
Korzystnie transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 2 (TGF32 lub TGF33) jest:
- minimalnie toksyczny w stężeniach fizjologicznych i terapeutycznych wobec komórek prawidłowych;
- nietoksyczny w stężeniach fizjologicznych i terapeutycznych wobec komórek prawidłowych;
- nieszkodliwy dla komórek prawidłowych w stężeniach fizjologicznych i terapeutycznych;
- wykazuje nieznaczną toksyczność w porównaniu z drobnocząsteczkowymi blokerami kinaz EGFR;
- wykazuje nieznaczną toksyczność w porównaniu z drobnocząsteczkowymi związkami chemicznymi stosowanymi w terapii onkologicznej.
Korzystnie efektem działania transformującego czynnika wzrostu beta 2 lub transformującego czynnika wzrostu beta 3 (TGF32 lub TGF33) jest:
- zatrzymanie podziałów komórkowych komórek nowotworowych;
- śmierć komórek nowotworowych.
Korzystnie efekt taki obserwuje się w przypadku komórek nowotworowych EGFRvIII-negatywnych, jeśli są biologicznie zależne od komórek EGFRvIII-pozytywnych.
Korzystnie komórka jest komórką nowotworową glejaka wielopostaciowego, w którym ponad 5% komórek nowotworowych jest EGFRvIII-pozytywna.
Korzystnie komórka jest komórką innego nowotworu niż glejak wielopostaciowy, w którym ponad 5% komórek nowotworowych jest EGFRvIII-pozytywna.
Objaśnienie figur rysunku
Przedmiot wynalazku w przykładach wykonania jest uwidoczniony na rysunkach:
Figura 1. Struktura TGF32.
Figura 2. Struktura TGF33.
Figura 3. Wyniki obserwacji w czasie rzeczywistym komórek podlinii DK-MG high z wykorzystaniem urządzenia BioStation CT. Cząsteczka oznaczona jako TGF32 jest skuteczna przeciwnowotworowo wobec komórek DK-MG high już w stężeniu 1 ng/ml - hamuje ich proliferację i wywołuje śmierć. Wpływ TGF32 jest znamienny.
Figura 4. Wyniki obserwacji w czasie rzeczywistym komórek podlinii DK-MG Iow z wykorzystaniem urządzenia BioStation CT. Cząsteczka oznaczona jako TGF32 jest nieskuteczna przeciwnowotworowo wobec komórek DK-MG Iow w stężeniu 1 ng/ml.
Figura 5. Wyniki obserwacji w czasie rzeczywistym komórek podlinii DK-MG high z wykorzystaniem urządzenia BioStation CT. Cząsteczka oznaczona jako TGF33 jest skuteczna przeciwnowotworowo wobec komórek DK-MG high już w stężeniu 1 ng/ml - hamuje ich proliferację i wywołuje śmierć. Wpływ TGF33 jest znamienny.
Figura 6. Wyniki obserwacji w czasie rzeczywistym komórek podlinii DK-MG Iow z wykorzystaniem urządzenia BioStation CT. Cząsteczka oznaczona jako TGF33 jest nieskuteczna przeciwnowotworowo wobec komórek DK-MG Iow w stężeniu 1 ng/ml.
Figura 7. Przykładowa analiza cytotoksyczności TGF32 na indukowane prawidłowe neuralne komórki macierzyste z wykorzystaniem urządzenia BioStation CT. Wpływ TGF32 jest statystycznie nieznamienny.
Figura 8. Przykładowa analiza cytotoksyczności TGF33 na prawidłowe ludzki perycyty z wykorzystaniem urządzenia BioStation CT. Wpływ TGF33 jest statystycznie nieznamienny.
Szczegółowy opis przedmiotu wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest TGF3 (TGF32 lub TGF33, transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3), opisane w bazie danych białek HPRD pod identyfikatorem
PL238 186 Β1
01828 (TGF32) i 01829 (ΤΟΡβ3), do zastosowania w leczeniu pacjentów ze zmianami nowotworowymi, w których komórki nowotworowe wykazują ekspresję EGFRvlll (charakteryzującego się brakiem regionu kodowanego przez eksony 2-7). TGF32 został dostarczony przez Sigma-Aldrich, TGFB3 został dostarczony przez Gibco™ (Thermo Fisher Scientific).
Subrodzina czynników TGF3, dla których receptorem jest TGF3R, składa się z trzech czynników: β1, β2 i β3. Każdy z nich w formie aktywnej składa się ze 112 aminokwasów.
Τ0Ρβ2 składa się wyjściowo z 414 aminokwasów, z których otrzymywana jest sekwencja Τ0Ρβ2 w formie aktywnej składająca się ze 112 aminokwasów. Są to aminokwasy 303 do 414 całkowitej sekwencji aminokwasowej Τ0Ρβ2. To właśnie forma aktywna Τ0Ρβ2 była testowana w analizach. Należy pamiętać, że białko Τ0Ρβ2 podlega glikozylacji w pozycjach 72, 140 i 241. W obrębie struktury występują mostki dwusiarczkowe (Fig. 1).
ALDAAYCF RNVQDNCCLR PLYIDFKRDL GWKWIHEPKG YNANFCAGAC PYLWSSDTQH SRVLSLYNTI NPEASASPCC VSQDLEPLTI LYYIGKTPKI EQLSNMIVKS CKCS
Wzór I. Sekwencja aminokwasów formy aktywnej czynnika wzrostu zwanego dalej jakoTGFp2.
TGFp3 składa się wyjściowo z 412 aminokwasów, z których otrzymywana jest sekwencja TGFp3 w formie aktywnej składająca się, tak samo jak pozostałych czynników z podrodziny TGFp ze 112 aminokwasów. Są to aminokwasy 301 do 412 całkowitej sekwencji aminokwasowej TGFp3. To właśnie forma aktywna TGFp3 była testowana w analizach. Należy pamiętać, że białko TGFp3 podlega glikozylacji w pozycjach 74, 135 i 142. W obrębie struktury występują mostki dwusiarczkowe (Fig. 2).
ALDTNYCFRN LEENCCVRPL YIDFRQDLGW KWVHEPKGYY ANFCSGPCPY LRSADTTHST YLGLYNTLNP EASASPCCVP ODLEPLTILY YVGRTPKVEQ LSNMWKSCK CS
Wzór 2. Sekwencja aminokwasów formy aktywnej czynnika wzrostu zwanego dalej jako TGFp3.
Wyniki badań in vitro zostały ujęte w przykładach. Do badań wykorzystano komercyjnie dostępną linię komórkową DK-MG, z której wyprowadzono dwie podlinie komórkowe. Pierwsza podlinia tzw. DKMG high wykazywała od 40% do 70% komórek EGFRvlll pozytywnych. Druga podlinia DK-MG Iow wykazywała nie więcej niż 5% komórek EGFRvlll-pozytywnych. Podlinie te opisano w artykule Stec i wsp. [Oncotarget 2017],
Do oceny toksyczności badanego związku na komórki prawidłowe wykorzystano ludzkie perycyty oraz ludzkie indukowane neuralne komórki macierzyste.
W badaniach wykazano ekstremalną toksyczność TGFp, wobec komórek nowotworowych wykazujących ekspresję EGFRvlll i brak toksyczności TGFp wobec komórek prawidłowych (BALB 3T3). W przypadku komórek prawidłowych zaobserwowano korzystny wpływ ΤΟΡβ na ich proliferację. Badano komórki prawidłowe pomimo, że wiadomo że ΤΟΡβ nie może być wobec nich toksyczny w takim stopniu jak stosowane drobnocząsteczkowe substancje lecznicze (np. erlotynib czy temozolomid). Stosowano czynnik Τ0Ρβ2 (cat. No. SRP3170-5UG; Sigma-Aldrich) oraz Τ0Ρβ3 (cat. No. PHG9305; Gibco™; Thermo Fisher Scientific). Stosowano aktywne formy ΤΟΡβ składające się z 112 aminokwasów.
Przykłady
Przykład 1. Analiza wpływu ΤΘΡβ2 na komórki linii DK-MG high w oparciu o metody obrazowe (BioStation CT).
Przykład ilustruje efekt Τ0Ρβ2 na przeżywalność i proliferację komórek linii DK-MG high. W tym celu wykonano badanie na komórkach linii, wykazującej nie mniej niż 40% komórek EGFRvlll pozytywnych (DK-MG high). Podlinię tę opisano w artykule Stec i wsp. Oncotarget 2017.
PL 238 186 B1
Dzień 1
1. Komórki linii DK-MG high w konfluencji do 90% przepłukano buforowaną solą fizjologiczną (PBS) bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto PBS.
2. Komórki odklejono od naczynia używając Trypsyny-EDTA (0,05%, 1x) w czasie 1-3 min w 37°C.
3. Komórki przeniesiono do probówki o objętości 15 ml, zwirować (200xg, 4 min) i zawieszono w pożywce RPMI1640 z 10% surowicą bydlęcą i antybiotykami,
4. Zliczono komórki.
5. Dodano 4x104 komórek na dołek płytki 6-dołkowej do hodowli adherentnej.
6. Uzupełniono w/w pożywką i pozostawić na ok. 24 godziny w 37°C.
Dzień 2
7. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto dokładnie PBS każdorazowo.
8. Dodano 2 ml pożywki RPM]1640 z antybiotykami i bez surowicy i pozostawiono na ok. 24 godziny w 37°C.
Dzień 3
9. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto dokładnie PBS każdorazowo.
10. Dodano 2 ml pożywki RPMI1640 z antybiotykami i bez surowicy z odpowiednimi związkami (DMSO; objętościowo równą maksymalnej objętości testowanych związków); pojedynczo lub w kombinacjach z EGF (20 ng/ml (Sigma, Cat. no. E9644)), erlotynib (10 μM Molecula; Cat. No. 89983631), TGF32 (1; 2,5; 5 ng/ml numer katalog. SRP3170-5UG; Sigma-Aldrich).
11. Wstawiono naczynie z komórkami do BioStation CT. Opisano płytkę i każdy dołek.
12. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych.
Kolejne dni
13. Co 48 godzin zmieniano pożywkę pamiętając o dodawaniu DMSO/ EGF/erlotynibu/TGF32 pojedynczo lub w kombinacjach do odpowiednich naczyń hodowlanych.
14. Wstawiono komórki do urządzenia BioStation CT.
15. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych. Oprogramowanie BioStation CT pozwala na automatyczne zliczanie komórek i pola powierzchni zajmowanego przez te komórki.
16. Analogiczne obserwacje z mniejszą dokładnością mogą zostać wykonane dzięki zastosowaniu mikroskopu JULI czy zwykłego mikroskopu świetlnego. Należy jednak pamiętać, że BioStation CT umożliwia zachowanie warunków środowiska w czasie eksperymentu i obserwację wielu naczyń hodowlanych równocześnie.
Wyniki: TGF32 jest skuteczny wobec komórek nowotworowych DK-MG wykazujących ekspresję EGFRvIII i komórek od nich zależnych - hamuje ich proliferację i wywołuje śmierć komórkową (Fig. 3). Wartości IC50 TGF32 wobec tych komórek wahały się w zakresie kilku nanogramów na mililitr.
P r z y k ł a d 2. Analiza wpływu TGFp2 na komórki linii DK-MG Iow w oparciu o metody obrazowe (BioStation CT).
Przykład ilustruje efekt TGF32 na przeżywalność i proliferację komórek linii DK-MG Iow. W tym celu wykonano badanie na komórkach linii, wykazującej nie więcej niż 5% komórek EGFRvIII pozytywnych (DK-MG Iow). Podlinię tę opisano w artykule Stec i wsp. Oncotarget 2017.
Dzień 1
1. Komórki linii DK-MG Iow w konfluencji do 90% przepłukano buforowaną solą fizjologiczną (PBS) bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto PBS.
2. Komórki odklejono od naczynia używając Trypsyny-EDTA (0,05%, 1x) w czasie 1-3 min w 37°C.
3. Komórki przeniesiono do probówki o objętości 15 ml, żwirowano (200xg, 4 min) i zawieszono w pożywce RPMI1640 z 10% surowicą bydlęcą i antybiotykami.
4. Zliczono komórki.
5. Dodano 4x104 komórek na dołek płytki 6-dołkowej do hodowli adherentnej.
6. Uzupełniono w/w pożywką i pozostawiono na ok. 24 godziny w 37°C.
PL 238 186 B1
Dzień 2
7. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto dokładnie PBS każdorazowo.
8. Dodano 2 ml pożywki RPMI1640 z antybiotykami i bez surowicy i pozostawiono na ok. 24 godziny w 37°C.
Dzień 3
9. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto dokładnie PBS każdorazowo.
10. Dodano 2 ml pożywki RPMI1640 z antybiotykami i bez surowicy z odpowiednimi związkami (DMSO; objętościowo równą maksymalnej objętości testowanych związków); pojedynczo lub w kombinacjach z EGF (20 ng/ml (Sigma, Cat. no. E9644)), erlotynib(10 μM Molecula; Cat. No. 89983631), TGF32 (1; 2,5; 5 ng/ml numer katalog. SRP3170-5UG; Sigma-Aldrich).
11. Wstawiono naczynie z komórkami do BioStation CT. Opisać płytkę i każdy dołek.
12. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych.
Kolejne dni
13. Co 48 godzin zmieniono pożywkę pamiętając o dodawaniu DMSO/EGF/erlotynibu/TGF32 pojedynczo lub w kombinacjach do odpowiednich naczyń hodowlanych.
14. Wstawiono komórki do urządzenia BioStation CT.
15. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych. Oprogramowanie BioStation CT pozwala na automatyczne zliczanie komórek i pola powierzchni zajmowanego przez te komórki.
16. Analogiczne obserwacje z mniejszą dokładnością mogą zostać wykonane dzięki zastosowaniu mikroskopu JULI czy zwykłego mikroskopu świetlnego. Należy jednak pamiętać, że BioStation CT umożliwia zachowanie warunków środowiska w czasie eksperymentu i obserwację wielu naczyń hodowlanych równocześnie.
Wyniki: TGF32 jest nieskuteczny wobec komórek nowotworowych DK-MG i niewykazujących EGFRvIII (Fig. 4). Przedstawiony wynik wskazuje na brak toksyczności cząsteczki TGF32 wobec komórek linii DK-MG Iow w analizowanych warunkach.
P r z y k ł a d 3. Analiza wpływu TGF-3 na komórki linii DK-MG high w oparcia o metody obrazowe (BioStation CT).
Przykład ilustruje efekt TGF33 na przeżywalność i proliferację komórek linii DK-MG high. W tym celu wykonano badanie na komórkach linii, wykazującej nie mniej niż 40% komórek EGFRvIII pozytywnych (DK-MG high). Podlinię tę opisano w artykule Stec i wsp. Oncotarget 2017.
Dzień 1
1. Komórki linii DK-MG high w konfluencji do 90% przepłukano buforowaną solą fizjologiczną (PBS) bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto PBS.
2. Komórki odklejono od naczynia używając Trypsyny-EDTA (0,05%, 1x) w czasie 1-3 min w 37°C.
3. Komórki przeniesiono do probówki o objętości 15 ml, żwirowano (200xg, 4 min) i zawieszono w pożywce RPMI1640 z 10% surowicą bydlęcą i antybiotykami.
4. Zliczono komórki.
5. Dodano 4x104 komórek na dołek płytki 6-dołkowej do hodowli adherentnej.
6. Uzupełniono w/w pożywką i pozostawiono na ok. 24 godziny w 37°C.
Dzień 2
7. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+ Usunięto dokładnie PBS każdorazowo.
8. Dodano 2 ml pożywki RPMI1640 z antybiotykami i bez surowicy i pozostawiono na ok. 24 godziny w 37°C.
Dzień 3
9. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto dokładnie PBS każdorazowo.
10. Dodano 2 ml pożywki RPMI1640 z antybiotykami i bez surowicy z odpowiednimi związkami (DMSO; objętościowo równą maksymalnej objętości testowanych związków); pojedynczo lub
PL 238 186 B1 w kombinacjach z EGF (20 ng/ml (Sigma, Cat. no. E9644)), erlotynib(10 μΜ Molecula; Cat. No. 89983631), TGF33 (1; 2,5; 5 ng/ml numer katalog. PHG9305; Gibco™; Thermo Fisher Scientific).
11. Wstawiono naczynie z komórkami do BioStation CT. Opisano płytkę i każdy dołek.
12. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych.
Kolejne dni
13. Co 48 godzin zmieniano pożywkę pamiętając o dodawaniu DMSO/EGF/erlotynibu/TGF32 pojedynczo lub w kombinacjach do odpowiednich naczyń hodowlanych.
14. Wstawiono komórki do urządzenia BioStation CT.
15. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych. Oprogramowanie BioStation CT pozwala na automatyczne zliczanie komórek i pola powierzchni zajmowanego przez te komórki.
16. Analogiczne obserwacje z mniejszą dokładnością mogą zostać wykonane dzięki zastosowaniu mikroskopu JULI czy zwykłego mikroskopu świetlnego. Należy jednak pamiętać, że BioStation CT umożliwia zachowanie warunków środowiska w czasie eksperymentu i obserwację wielu naczyń hodowlanych równocześnie.
Wyniki: TGF33 jest skuteczny wobec komórek nowotworowych DK-MG wykazujących ekspresję EGFRvIII i komórek od nich zależnych - hamuje ich proliferację i wywołuje śmierć komórkową (Fig. 5). Wartości IC50 TGF33 wobec tych komórek wahały się w zakresie kilku ng na mililitr.
P r z y k ł a d 4. Analiza wpływu TGFp3 na komórki linii DK-MG Iow w oparciu o metody obrazowe (BioStation CT).
Przykład ilustruje efekt TGF33 na przeżywalność i proliferację komórek linii DK-MG Iow. W tym celu wykonano badanie na komórkach linii, wykazującej nie więcej niż 5% komórek EGFRvIII pozytywnych (DK-MG Iow). Podlinię tę opisano w artykule Stec i wsp. Oncotarget 2017.
Dzień 1
1. Komórki linii DK-MG Iow w konfluencji do 90% przepłukano buforowaną solą fizjologiczną (PBS) bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto PBS.
2. Komórki odklejono od naczynia używając Trypsyny-EDTA (0,05%, 1x) w czasie 1-3 min w 37°C.
3. Komórki przeniesiono do probówki o objętości 15 ml, żwirowano (200xg, 4 min) i zawieszono w pożywce RPMI1640 z 10% surowicą bydlęcą i antybiotykami.
4. Zliczono komórki.
5. Dodano 4x104 komórek na dołek płytki 6-dołkowej do hodowli adherentnej.
6. Uzupełniono w/w pożywką i pozostawiono na ok. 24 godziny w 37°C.
Dzień 2
7. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto dokładnie PBS każdorazowo.
8. Dodano 2 ml pożywki RPMI1640 z antybiotykami i bez surowicy i pozostawiono na ok. 24 godziny w 37°C.
Dzień 3
9. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto dokładnie PBS każdorazowo.
10. Dodano 2 ml pożywki RPMI1640 z antybiotykami i bez surowicy z odpowiednimi związkami (DMSO; objętościowo równą maksymalnej objętości testowanych związków); pojedynczo lub w kombinacjach z EGF (20 ng/ml (Sigma, Cat. no. E9644)), erlotynib (10 μM Molecula; Cat. No. 89983631), TGF33 (1; 2,5; 5 ng/ml numer katalog. PHG9305; Gibco™; Thermo Fisher Scientific).
11. Wstawiono naczynie z komórkami do BioStation CT. Opisać płytkę i każdy dołek.
12. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych.
Kolejne dni
13. Co 48 godzin zmieniano pożywkę pamiętając o dodawaniu DMSO/ EGF/erlotynibu/TGF32 pojedynczo lub w kombinacjach do odpowiednich naczyń hodowlanych.
14. Wstawiono komórki do urządzenia BioStation CT.
PL 238 186 B1
15. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych. Oprogramowanie BioStation CT pozwala na automatyczne zliczanie komórek i pola powierzchni zajmowanego przez te komórki.
16. Analogiczne obserwacje z mniejszą dokładnością mogą zostać wykonane dzięki zastosowaniu mikroskopu JULI czy zwykłego mikroskopu świetlnego. Należy jednak pamiętać, że BioStation CT umożliwia zachowanie warunków środowiska w czasie eksperymentu i obserwację wielu naczyń hodowlanych równocześnie.
Wyniki: TGF33 jest nieskuteczny wobec komórek nowotworowych DK-MG i niewykazujących EGFRvIII (Fig. 6). Przedstawiony wynik wskazuje na brak toksyczności cząsteczki TGF33 wobec komórek linii DK-MG Iow w analizowanych warunkach.
P r z y k ł a d 5. Analiza toksyczności TGFp2 i znanych inhibitorów kinazy EGFR wobec indukowanych prawidłowych neuralnych komórek macierzystych z wykorzystaniem urządzenia BioStation CT.
Dzień 1
1. Komórki linii iNSc (Neural Induction Stem Cells) w konfluencji do 80% przepłukano buforowaną solą fizjologiczną (PBS) bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunięto PBS.
2. Komórki odklejono od naczynia używając StemPro Accutase (ThermoFisher Scientific, Cat. No. Al 110501) w czasie 5 min w temperaturze pokojowej.
3. Komórki przeniesiono do probówki o objętości 15 ml, żwirowano (200xg, 4 min) i zawieszono w pożywce PSC Neural Induction Medium (ThermoFisher Scentific, Cat. No. A1647801) z antybiotykami.
4. Zliczono komórki.
5. Dodano 1x105 komórek na dołek płytki 6-dołkowej do hodowli adherentnej.
6. Uzupełniono w/w pożywką i pozostawić na ok. 24 godziny w 37°C.
Dzień 2
7. Komórki przemyto 2-3 razy buforowaną solą fizjologiczną bez jonów Mg2+ i Ca2+. Usunęto dokładnie PBS każdorazowo.
8. Dodano 1,5 ml pożywki PSC Neural Induction Medium z antybiotykami z odpowiednimi związkami (DMSO; objętościowo równą maksymalnej objętości testowanych związków); pojedynczo lub w kombinacjach z EGF (20 ng/ml (Sigma, Cat. no. E9644)), erlotynib (10 pM Molecula; Cat. No. 89983631), TGF32 (; 2,5 i 5 ng/ml; numer katalog. SRP3170-5UG; SigmaAldrich).
9. Wstawiono naczynie z komórkami do BioStation CT. Opisano płytkę i każdy dołek.
10. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych.
Kolejne dni
11. Co 48 godziny zmieniano pożywkę pamiętając o dodawaniu DMSO/EGF/erlotynibu/TGF32 pojedynczo lub w kombinacjach do odpowiednich naczyń hodowlanych.
12. Wstawiono komórki do urządzenia BioStation CT.
13. Dokonano automatycznej obserwacji mikroskopowej w odstępach 6-godzinnych. Oprogramowanie BioStation CT pozwala na automatyczne zliczanie komórek i pola powierzchni zajmowanego przez te komórki.
14. Analogiczne obserwacje z mniejszą dokładnością mogą zostać wykonane dzięki zastosowaniu mikroskopu JULI czy zwykłego mikroskopu świetlnego. Należy jednak pamiętać, że BioStation CT umożliwia zachowanie warunków środowiska w czasie eksperymentu i obserwację wielu naczyń hodowlanych równocześnie.
Wyniki: Przedstawiony wynik wskazuje na brak cytotoksyczności cząsteczki TGF32 wobec indukowanych prawidłowych neuralnych komórek macierzystych w analizowanych warunkach w sposób istotny statystycznie (Fig. 7). Wartości IC50 TGF32 wobec tych komórek były niemierzalne i wynosiły więcej niż kilkaset nanogramów na minilitr.

Claims (4)

1. Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGFp2 lub TGFp3) do zastosowania wleczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EGFRvIII-pozytywna.
PL238 186 Β1
2. Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGF32 lub TGF33) do zastosowania według zastrz. 1, znamienny tym, że komórki nowotworowe EGFRvlll-negatywne są biologicznie zależne od komórek EGFRvlll-pozytywnych.
3. Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGF32 lub TGF33) do zastosowania według zastrz. 1, znamienny tym, że komórką nowotworową podatną na efekt cytotoksyczny i cytostatyczny jest macierzysta komórka nowotworowa EGFRvlll-pozytywna.
4. Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGF32 lub TGF33) do zastosowania wedlugzastrz.1. znamienny tym, że komórka jest ludzką komórką nowotworową.
PL427358A 2017-10-19 2018-10-09 Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGFβ2 lub TGFβ3) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EG FRvIII-pozytywna PL238186B1 (pl)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL427358A PL238186B1 (pl) 2018-10-09 2018-10-09 Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGFβ2 lub TGFβ3) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EG FRvIII-pozytywna
EP18867689.4A EP3735261B1 (en) 2017-10-19 2018-10-11 Growth factor tgfbeta1 or tgfbeta2 or tgfbeta3 for the use in anticancer therapy for patients with tumors, in which at least part of cells express egfrviii
PL18867689.4T PL3735261T3 (pl) 2017-10-19 2018-10-11 Aktywna forma transformującego czynnika wzrostu beta 1 (TGFβ1) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EGFRvIII- pozytywna
PCT/PL2018/000097 WO2019078745A1 (en) 2017-10-19 2018-10-11 TGFβ1 OR TGFβ2 OR TGFβ3 GROWTH FACTOR FOR ITS USE IN ANTICANCER THERAPY FOR PATIENTS WITH TUMORS WHERE AT LEAST ONE PART OF THE CELLS EXPRESS EGFR VIII

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL427358A PL238186B1 (pl) 2018-10-09 2018-10-09 Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGFβ2 lub TGFβ3) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EG FRvIII-pozytywna

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL427358A1 PL427358A1 (pl) 2020-04-20
PL238186B1 true PL238186B1 (pl) 2021-07-19

Family

ID=70281474

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL427358A PL238186B1 (pl) 2017-10-19 2018-10-09 Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGFβ2 lub TGFβ3) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EG FRvIII-pozytywna

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL238186B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL427358A1 (pl) 2020-04-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Uhl et al. SD-208, a novel transforming growth factor β receptor I kinase inhibitor, inhibits growth and invasiveness and enhances immunogenicity of murine and human glioma cells in vitro and in vivo
Hilton et al. Schwannomas and their pathogenesis
EP2340040B1 (en) Modulation of axon degeneration
US20110223177A1 (en) Treatment of fibrotic eye disorders
JP2016510999A (ja) 上皮幹細胞の増殖および培養のための組成物および方法
AU2011310109B2 (en) Eph receptor expression in tumor stem cells
Zhang et al. Crocetin inhibits PDGF-BB-induced proliferation and migration of retinal pigment epithelial cells
Kawaguchi et al. Combination therapy of tumor-targeting Salmonella typhimurium A1-R and oral recombinant methioninase regresses a BRAF-V600E-negative melanoma
Lin et al. Inhibition of Kinesin‐5, a microtubule‐based motor protein, as a strategy for enhancing regeneration of adult axons
JP2021143195A (ja) がんにおけるマクロピノサイトーシス
CN109073634A (zh) 用于诱导神经干细胞的分化和保护的组合物及使用该组合物诱导神经再生的方法
Croslan et al. Neuroprotective effects of neuregulin-1 on B35 neuronal cells following ischemia
JP2025024030A (ja) ミトコンドリア標的化及び抗癌治療のためのアルキルtpp化合物
Joly et al. Sphingosine 1‐Phosphate Receptor 1 Modulates CNTF‐Induced Axonal Growth and Neuroprotection in the Mouse Visual System
Yin et al. Nintedanib inhibits normal human vitreous-induced epithelial-mesenchymal transition in human retinal pigment epithelial cells
Shen et al. Temporal–spatial expressions of p27kip1 and its phosphorylation on Serine-10 after acute spinal cord injury in adult rat: Implications for post-traumatic glial proliferation
Hossain et al. N-Myc knockdown and apigenin treatment controlled growth of malignant neuroblastoma cells having N-Myc amplification
Fang et al. Enhanced cell growth and tumorigenicity of rat glioma cells by stable expression of human CD133 through multiple molecular actions
KR101815080B1 (ko) 췌장소도세포 및 엘라스틴 유사 인공 세포외 기질을 포함하는 당뇨병 치료용 약학적 조성물
Badalamenti et al. Soft tissue sarcomas in the precision medicine era: new advances in clinical practice and future perspectives
PL238186B1 (pl) Transformujący czynnik wzrostu beta 2 lub transformujący czynnik wzrostu beta 3 (TGFβ2 lub TGFβ3) do zastosowania w leczeniu pacjentów z glejakami wielopostaciowymi, w przypadku których to glejaków ponad 5% komórek nowotworowych jest EG FRvIII-pozytywna
Hussein et al. Breast cancer cells inhibit spontaneous and bisphosphonate-induced osteoclast apoptosis
de Paiva Roda et al. Inhibition of Rho kinase (ROCK) impairs cytoskeletal contractility in human Müller glial cells without effects on cell viability, migration, and extracellular matrix production
Li et al. BMP7 alleviates trigeminal neuralgia by suppressing oxidative stress and activation of satellite glial cells via the NRF2/HO-1 pathway
RU2810558C1 (ru) Способ подбора лекарственных средств для реализации фармакологической индукции митохондриальной дисфункции в макрофагах для противоопухолевой терапии