PL239601B1 - Mikrosystem przepływowy do trójwymiarowej hodowli komórek - Google Patents
Mikrosystem przepływowy do trójwymiarowej hodowli komórek Download PDFInfo
- Publication number
- PL239601B1 PL239601B1 PL427667A PL42766718A PL239601B1 PL 239601 B1 PL239601 B1 PL 239601B1 PL 427667 A PL427667 A PL 427667A PL 42766718 A PL42766718 A PL 42766718A PL 239601 B1 PL239601 B1 PL 239601B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- membrane
- microsystem
- cells
- microstructures
- microchannels
- Prior art date
Links
- 238000012604 3D cell culture Methods 0.000 title 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 33
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 claims description 11
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 10
- 229920000435 poly(dimethylsiloxane) Polymers 0.000 claims description 10
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 9
- 229920000139 polyethylene terephthalate Polymers 0.000 claims description 7
- 239000005020 polyethylene terephthalate Substances 0.000 claims description 7
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 7
- 229920005597 polymer membrane Polymers 0.000 claims description 5
- -1 poly (dimethylsiloxane) Polymers 0.000 claims description 3
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 29
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 9
- 239000000463 material Substances 0.000 description 7
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 5
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 description 4
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 description 4
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 4
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 description 4
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 4
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 3
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 3
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 3
- 238000005304 joining Methods 0.000 description 3
- 239000002547 new drug Substances 0.000 description 3
- 229920002120 photoresistant polymer Polymers 0.000 description 3
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- AOJJSUZBOXZQNB-TZSSRYMLSA-N Doxorubicin Chemical compound O([C@H]1C[C@@](O)(CC=2C(O)=C3C(=O)C=4C=CC=C(C=4C(=O)C3=C(O)C=21)OC)C(=O)CO)[C@H]1C[C@H](N)[C@H](O)[C@H](C)O1 AOJJSUZBOXZQNB-TZSSRYMLSA-N 0.000 description 2
- LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N Ethylene glycol Chemical compound OCCO LYCAIKOWRPUZTN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 2
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 2
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 2
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 description 2
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 2
- 238000002032 lab-on-a-chip Methods 0.000 description 2
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 2
- 230000002611 ovarian Effects 0.000 description 2
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 2
- 238000000206 photolithography Methods 0.000 description 2
- 230000008569 process Effects 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- LLLVZDVNHNWSDS-UHFFFAOYSA-N 4-methylidene-3,5-dioxabicyclo[5.2.2]undeca-1(9),7,10-triene-2,6-dione Chemical compound C1(C2=CC=C(C(=O)OC(=C)O1)C=C2)=O LLLVZDVNHNWSDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010033128 Ovarian cancer Diseases 0.000 description 1
- 206010061535 Ovarian neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 1
- 238000011319 anticancer therapy Methods 0.000 description 1
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 description 1
- 239000000560 biocompatible material Substances 0.000 description 1
- 210000001124 body fluid Anatomy 0.000 description 1
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 238000012832 cell culture technique Methods 0.000 description 1
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 1
- 230000012292 cell migration Effects 0.000 description 1
- 239000013553 cell monolayer Substances 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 238000002512 chemotherapy Methods 0.000 description 1
- 239000003431 cross linking reagent Substances 0.000 description 1
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 229960004679 doxorubicin Drugs 0.000 description 1
- 238000007877 drug screening Methods 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 238000000799 fluorescence microscopy Methods 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- 239000011888 foil Substances 0.000 description 1
- 229920001600 hydrophobic polymer Polymers 0.000 description 1
- WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N hydroxyacetaldehyde Natural products OCC=O WGCNASOHLSPBMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000012606 in vitro cell culture Methods 0.000 description 1
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 1
- 230000001678 irradiating effect Effects 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 238000007726 management method Methods 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 230000002503 metabolic effect Effects 0.000 description 1
- 239000012982 microporous membrane Substances 0.000 description 1
- 230000003278 mimic effect Effects 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 210000005170 neoplastic cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001613 neoplastic effect Effects 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000000399 optical microscopy Methods 0.000 description 1
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 229920003229 poly(methyl methacrylate) Polymers 0.000 description 1
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000515 polycarbonate Polymers 0.000 description 1
- 239000004417 polycarbonate Substances 0.000 description 1
- 229920000307 polymer substrate Polymers 0.000 description 1
- 239000004926 polymethyl methacrylate Substances 0.000 description 1
- XJMOSONTPMZWPB-UHFFFAOYSA-M propidium iodide Chemical compound [I-].[I-].C12=CC(N)=CC=C2C2=CC=C(N)C=C2[N+](CCC[N+](C)(CC)CC)=C1C1=CC=CC=C1 XJMOSONTPMZWPB-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000019491 signal transduction Effects 0.000 description 1
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 1
- 238000007711 solidification Methods 0.000 description 1
- 230000008023 solidification Effects 0.000 description 1
- 239000012180 soy wax Substances 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- 229920001169 thermoplastic Polymers 0.000 description 1
- 239000004416 thermosoftening plastic Substances 0.000 description 1
- 231100000820 toxicity test Toxicity 0.000 description 1
- 210000004881 tumor cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000002700 urine Anatomy 0.000 description 1
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest mikrosystem przepływowy typu Lab-on-a-chip do przestrzennej hodowli komórek. Tego typu mikrosystemy znajdują zastosowanie głównie w bioanalityce i są wykorzystywane jako narzędzia analityczne w badaniach przedklinicznych nad nowymi lekami i procedurami terapeutycznymi.
Badania przesiewowe nowych leków oraz badania in vitro nad skutecznością nowych procedur terapeutycznych przeprowadzane są zazwyczaj z wykorzystaniem standardowych metod hodowli komórkowej i klasycznych testów toksyczności. Związane jest to z pewnymi ograniczeniami. Tradycyjne hodowle komórkowe in vitro, opierają się na wzroście komórek w monowarstwie (2D), przez co nie odzwierciedlają w pełni warunków panujących w środowisku in vivo. Ponadto, w organizmach żywych komórki otoczone są skomplikowaną siecią włókien białkowych, zwaną macierzą zewnątrzkomórkową ECM (ang. Extracellular Matrix), która zespala komórki ze sobą, umożliwiając im tworzenie trójwymiarowych struktur. Istnieje zatem potrzeba opracowania nowych modeli doświadczalnych in vitro, które lepiej odzwierciedlają środowisko komórek wzrastających in vivo, niż standardowe modele dwuwymiarowe. Odpowiedzią na te potrzeby może być zastosowanie mikrosystemów przepływowych. Badania z wykorzystaniem tradycyjnych metod hodowli wymagają także zużycia dużej ilości drogich odczynników. Mikrosystemy typu Lab-on-a-chip pełnią funkcję zintegrowanego mikrolaboratorium, umożliwiającego przeprowadzenie kompleksowej analizy próbek o objętościach rzędu kilkuset mikrolitrów, co znacznie obniża koszty analizy.
W stanie techniki znane są rozwiązania z wykorzystaniem mikrostruktur.
W dokumencie WO2014008358 ujawniono trójwymiarową porowatą membranę wytwarzaną z warstwy materiału fotolitograficznego formowaną w urządzeniu mikroprzepływowym. Do usieciowania warstwy materiału fotorezystu dochodzi wskutek działania promieniowania i w ten sposób tworzy się porowata membrana, przy czym fotorezystem jest SU-8. Dokument ujawnia także urządzenie mikroprzepływowe zawierające mikroporowatą membranę otrzymaną sposobem jak opisano powyżej.
Rozwiązania zaprezentowane w wynalazku WO2014008358 nie umożliwiają prowadzenia trójwymiarowej hodowli komórkowej, gdyż zasadniczą funkcją membrany tu opisanej jest naśladowanie tkanki barierowej w ludzkim ciele, a nie funkcja rusztowania dla komórek. Dodatkowo, membrana przedstawiona w tym wynalazku jest trwale i szczelnie mocowana wewnątrz systemu lub formowana in situ. Takie rozwiązanie uniemożliwia dokonywanie analiz komórek poza systemem.
W dokumencie US8101037 ujawniono sposób formowania kapilar w podłożu do urządzenia mikroprzepływowego, gdzie mikrokanaliki są nadrukowywane, formowane, wytrawiane lub w inny sposób formowane w podłożu z odpowiedniego polimeru a następnie wypełniane cieczą, która po zestaleniu tworzy warstwę protektorową, którą usuwa się po uformowaniu kanalików. Według ujawnienia materiał polimerowy jednego lub obu substratu i pokrywy górnej zawiera tworzywo termoplastyczne, którym jest materiał polimerowy zawierający polimetakrylan metylu) lub poliwęglan lub glikol poli(tereftalan etylenu); materiał protektorowy zawiera wosk parafinowy lub wosk sojowy. Rozwiązanie wg ujawnienia dotyczy zatem separacji cząstek, a nie mikrosystemu przepływowego przeznaczonego do hodowli komórek. Zarówno budowa, geometria, funkcje, zastosowanie jak i wykorzystane materiały są różne, niż te stosowane w mikrosystemach do prowadzenia hodowli komórkowych.
W dokumencie US2006263242 ujawniono mikrochip do analizy próbek ciekłych, charakteryzujący się tym, że ma strukturę pomiarową do odważania i pobierania zadanej ilości cieczy wzorcowej, przy czym strukturami pomiarowymi jest membrana z porowatego materiału zdolna do pomieszczenia danej ilości próbki cieczy. Mikrochip według ujawnienia ma wlot i wylot dla próbki, oraz element analityczny stosowany do wykrywania składnika testowego w próbce znajdujący się w środku kanału, zaś membrana z porowatego materiału absorbuje określoną ilość próbki cieczy w kontakcie z nadmierną ilością próbki cieczy. Rozwiązanie służy do analizy składników testowych zawartych w próbkach takich jak krew, płyn ustrojowy, mocz lub próbki płynne, a nie jest przeznaczony do hodowli komórek. Rozwiązanie wg ujawnienia nie dotyczy mikrosystemu przepływowego z membraną, gdyż mikrochip zawiera organiczny materiał porowaty, a nie membranę porowatą.
W dokumencie US2011253629 ujawniono urządzenie do oczyszczania, rozdzielania i syntezy płynów w mikroskali, w szczególności urządzeń posiadających membrany polimerowe do filtrowania płynów takich jak dializator. Dializator według ujawnienia składa się z półprzepuszczalnej membrany połączonej ze zbiorem mikrokanalików w formie trójkątnych słupków do dostarczania krwi i dializatu oraz wymiennika ciepła. Membrany wykorzystane w przedstawionym mikrosystemie nie mogłyby pełnić
PL 239 601 B1 funkcji podporowej dla komórek, ponieważ są membranami półprzepuszczalnymi. Taki rodzaj membrany nie może zostać wykorzystany do hodowli komórkowej.
Celem wynalazku jest zapewnienie mikrosystemu dedykowanego do hodowli komórek.
Mikrosystem według wynalazku stanowi hybrydowy układ składający się z dwóch hydrofobowych płytek polimerowych z poli(dimetylosiloksanu) (PDMS), który jest materiałem przezroczystym, przepuszczalnym dla gazów, nieprzepuszczalnym dla wody i biokompatybilnym, oraz znajdującej się między nimi porowatej membrany polimerowej, korzystnie wykonanej z poli(tereftalanu etylenu) (PET). Wszystkie elementy układu są ze sobą trwale połączone za pomocą plazmy tlenowej. Górna płytka i dolna płytka z PDMS wyposażone są w analogiczne mikrostruktury przy czym mikrostruktury obrócone są wobec siebie o 180° w poziomie. Każda z mikrostruktur składa się z sześciu podłużnych mikrokomór połączonych siecią symetrycznych, sinusoidalnych mikrokanałów z dwoma kanałami doprowadzającymi i jednym kanałem odprowadzającym. Proces łączenia płytek polimerowych wyposażonych w symetryczne mikrostruktury odbywa się w ten sposób, że wzór mikrostruktury znajdujący się na jednej z płytek ułożony jest naprzemianlegle w stosunku do wzoru mikrostruktury znajdującego się na drugiej płytce. W wyniku takiego łączenia symetryczne mikrostruktury na obu płytkach nakładają się tylko częściowo. Miejsca nałożenia mikrostruktur z obu płytek stanowią miejsca analizy komórek wprowadzanych do układu. Otwory wlotowe połączone z mikrokanałami doprowadzającymi i otwory wylotowe, połączone z mikrokanałami odprowadzającymi zawiesiny komórkowe, medium hodowlane, reagenty oraz produkty przemiany materii wywiercone są tylko w górnej płytce polimerowej, co ułatwia obserwacje mikroskopowe komórek hodowanych w mikrosystemie za pomocą odwróconego mikroskopu optycznego lub fluorescencyjnego.
Korzystnie wszystkie mikrostruktury: mikrokanały oraz mikrokomory mają wysokość 50 μm.
Korzystnie porowata membrana PET jest okrągłego kształtu, o średnicy 25 mm, wyposażona w pory o średnicy 0.4 μm, rozmieszczone na membranie z gęstością 2 x 106 cm-2.
Mikrosystem według wynalazku charakteryzuje się tym, że w prosty sposób umożliwia wytworzenie zaawansowanej trójwymiarowej hodowli komórek różnych linii komórkowych, dzięki wykorzystaniu dodatkowego elementu konstrukcyjnego w postaci porowatej membrany polimerowej. Hodowla komórek w tym mikrosystemie daje możliwość wykorzystania wynalazku jako narzędzia do szybkiej wstępnej oceny skuteczności nowych leków oraz procedur terapeutycznych w warunkach in vitro, które lepiej odzwierciedlają warunki in vivo niż standardowe techniki hodowli komórkowej.
Mikrosystem według wynalazku został zaprojektowany w taki sposób, że umożliwia jednoczesną hodowlę dwóch adherentnych linii komórkowych po dwóch różnych stronach porowatej membrany polimerowej. W żadnym z opisywanych w stanie techniki rozwiązań nie jest możliwym prowadzenie takiej hodowli. Zgodnie z wynalazkiem, w pierwszym etapie komórki pierwszej linii wprowadzane są dwoma kanałami doprowadzającymi do przestrzeni znajdujących się nad membraną polimerową. Po 24 godzinach od wprowadzenia komórki ulegają adhezji do membrany. Po tym czasie komórki drugiej linii komórkowej wprowadzane są dwoma innymi kanałami doprowadzającymi, znajdującymi się po przeciwnej stronie układu. Po wprowadzeniu komórek mikrosystem jest odwracany o 180° i utrzymywany w ten sposób przez kolejne 24 godziny (do momentu adhezji komórek drugiej linii komórkowej do drugiej strony membrany). Mikrosystem daje także możliwość hodowli tej samej linii komórkowej po dwóch różnych stronach membrany.
Mikrosystem według wynalazku daje możliwość tworzenia trójwymiarowej (3D) hodowli komórkowej. Struktura przestrzenna otrzymywana jest dzięki nałożeniu dwóch monowarstw komórkowych rosnących po dwóch różnych stronach membrany, które pozostają ze sobą w bezpośrednim kontakcie dzięki obecności porów w membranie. Porowatość membrany umożliwia tworzenie się połączeń międzykomórkowych występujących naturalnie w strukturach tkankowych, tworzenie wspólnej dla obu hodowli macierzy zewnątrzkomórkowej oraz zachowanie aktywności szlaków sygnałowych komórka-komórka i komórkaECM charakterystycznych dla przestrzennych struktur komórkowych. Mikrosystem według wynalazku został zaprojektowany w celu tworzenie modelu komórkowego użytecznego w analizie skuteczności kombinacji różnych procedur terapii przeciwnowotworowych oraz do analizy migracji komórkowej.
Mikrosystem według wynalazku został zilustrowany w przykładzie wykonania na rysunku, na którym Fig. 1 przedstawia schemat mikrostruktury układu w widoku z góry, Fig. 2 przedstawia przekrój poprzeczny mikrokomór hodowlanych i membrany porowatej wzdłuż linii A-A, Fig. 3 przedstawia warstwy mikrosystemu, a Fig. 4 przedstawia mikroukład w rzucie ukośnym.
Mikrosystem według wynalazku wykonano z górnej płytki polimerowej 1 wykonanej z PDMS, porowatej membrany PET 2 oraz z górnej płytki polimerowej 3 wykonanej z PDMS. Górna płytka 1 i dolna
PL 239 601 B1 płytka 3 z PDMS wyposażone są w analogiczne mikrostruktury przy czym mikrostruktury obrócone są wobec siebie o 180° w poziomie. Każda z mikrostruktur składa się z sześciu podłużnych mikrokomór 4 połączonych siecią symetrycznych, sinusoidalnych mikrokanałów z dwoma kanałami doprowadzającymi 5 i jednym kanałem odprowadzającym 6. W górnej płytce polimerowej 1 znajdują się otwory doprowadzające 7 i otwory odprowadzające 8 do odprowadzania zawiesin komórkowych, mediów hodowlanych oraz reagentów. Wszystkie mikrostruktury: mikrokanały oraz mikrokomory mają wysokość 50 μm. Porowata membrana PET jest okrągłego kształtu, o średnicy 25 mm, wyposażona w pory o średnicy 0.4 μm, rozmieszczone na membranie z gęstością 2 x 106 cm-2.
W pierwszym etapie geometrię mikrosystemu zaprojektowano w programie AutoCAD, a następnie wzór odzwierciedlający geometrię naświetlono na foli, w wysokiej rozdzielczości 3600 dpi, tworząc maskę. Maskę wykorzystano do wytworzenia pieczątki, czyli wypukłej mikrostruktury ze światłoczułego materiału, korzystnie filmu kapilarnego, za pomocą metody fotolitografii. Metoda fotolitografii polega na naświetleniu i utwardzeniu filmu kapilarnego światłem UV w wybranych miejscach oraz odmyciu filmu kapilarnego z miejsc nienaświetlonych. W kolejnym etapie na pieczątkę z wypukłą strukturą, umieszczoną w formie, wylano płynny PDMS, czyli odgazowaną mieszaninę prepolimeru i czynnika sieciującego w stosunku 10 : 1, a następnie PDMS sieciowano w temperaturze 70°C przez 90 minut. Usieciowaną górną płytkę polimerową 1 zamrożono w ciekłym azocie, a następnie wywiercono otwory 7 doprowadzające i otwory odprowadzające 8 zawiesiny komórkowe, medium hodowlane oraz reagenty. Obie płytki polimerowe 1 i 3 oraz membranę polimerową 2 połączono ze sobą za pomocą plazmy tlenowej, tak, aby membrana PET znajdowała się miedzy płytkami z PDMS, dokładnie w miejscu nakładania się mikrokomór hodowlanych 4. W wykonanych otworach umieszczono wężyki. W procesie łączenia elementów mikrosystemu naprzemianlegle ułożone mikrostruktury utworzyły nienakładające się sieci mikrokanałów doprowadzających 5 i odprowadzających 6.
Mikrosystem według wynalazku został wykorzystany do hodowli komórek prawidłowych i nowotworowych jajnika w ułożeniu przestrzennym. Do wysterylizowanego mikroukładu wprowadzono medium hodowlane. Następnie, przez kanały doprowadzające do przestrzeni mikrokomór hodowlanych znajdujących się nad membraną wprowadzono zawiesinę prawidłowych komórek jajnika o gęstości około 105 komórek mL-1. Mikrosystem z komórkami inkubowano przez 24 h w inkubatorze (T = 37°C, CO2 = 5%) do momentu, kiedy komórki uległy adhezji do membrany. Po 24 h do przestrzeni mikrokomór znajdujących się pod membraną wprowadzono zawiesinę komórek nowotworowych jajnika o gęstości około 105 komórek mL-1. Mikrosystem odwrócono o 180° i inkubowano w inkubatorze (T = 37°C, C02 = 5%) przez kolejne 24 h, do momentu adhezji komórek nowotworowych do drugiej strony membrany. Tak otrzymaną hodowlę przestrzenną monitorowano za pomocą odwróconego mikroskopu optycznego, a następnie wykorzystano do przeprowadzenia procedury chemioterapii. Do hodowanych komórek wprowadzano roztwory doksorubicyny w różnych stężeniach, zawiązek inkubowano z komórkami 24 h, a następnie oceniano niezależnie żywotność komórek prawidłowych i nowotworowych, wykorzystując różnicowe barwienie komórek barwnikami fluorescencyjnymi: kaleceiną-AM i jodkiem propidyny.
Zastrzeżenia patentowe
Claims (3)
1. Mikrosystem przepływowy do trójwymiarowej hodowli komórek, zawierający dwie płytki polimerowe z poli(dimetylosiloksanu), zaopatrzone w sieć mikrokanałów, komory hodowlane oraz otwory wlotowe i wylotowe, znamienny tym, że pomiędzy płytką górną (1) a płytką dolną (2) znajduje się porowata membrana polimerowa a górna płytka (1) i dolna płytka (3) wyposażone są w analogiczne mikrostruktury, przy czym mikrostruktury obrócone są wobec siebie o 180° w poziomie i każda z mikrostruktur składa się z sześciu podłużnych mikrokomór (4) połączonych siecią symetrycznych, sinusoidalnych mikrokanałów z dwoma kanałami doprowadzającymi (5) i jednym kanałem odprowadzającym (6), a ponadto otwory doprowadzające (7) i otwory odprowadzające (8) znajdują się w górnej płytce polimerowej (1), przy czym porowata membrana polimerowa (2) ma kształt okrągły i śred nicę 25 mm oraz wykonana jest z poli(tereftalanu etylenu).
2. Mikrosystem według zastrz. 1, znamienny tym, że wszystkie mikrokanały oraz mikrokomory mają wysokość 50 μm.
3. Mikrosystem według zastrz. 1, znamienny tym, że pory w membranie (2) mają średnicę 0.4 μm i gęstość 2 x 106 cm-2.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL427667A PL239601B1 (pl) | 2018-11-06 | 2018-11-06 | Mikrosystem przepływowy do trójwymiarowej hodowli komórek |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL427667A PL239601B1 (pl) | 2018-11-06 | 2018-11-06 | Mikrosystem przepływowy do trójwymiarowej hodowli komórek |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL427667A1 PL427667A1 (pl) | 2020-05-18 |
| PL239601B1 true PL239601B1 (pl) | 2021-12-20 |
Family
ID=70725645
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL427667A PL239601B1 (pl) | 2018-11-06 | 2018-11-06 | Mikrosystem przepływowy do trójwymiarowej hodowli komórek |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL239601B1 (pl) |
-
2018
- 2018-11-06 PL PL427667A patent/PL239601B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL427667A1 (pl) | 2020-05-18 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US10202569B2 (en) | Radial microfluidic devices and methods of use | |
| US20140273223A1 (en) | Micro-device for culturing cells, method for manufacturing same, and method for culturing cells using the micro-device for culturing cells | |
| US9618500B2 (en) | Vascular model, method for producing said model and use thereof | |
| JP5801311B2 (ja) | 細胞培養用のマイクロスケール多流体流バイオリアクタ | |
| US9739699B2 (en) | Device for the study of living cells | |
| US9975118B2 (en) | Device for the study of living cells | |
| US20080257735A1 (en) | Microfluidic Device for Enabling the Controlled Growth of Cells and Methods Relating to Same | |
| WO2017175236A1 (en) | Microfluidic platform for developing in-vitro co-cultures of mammalian tissues. | |
| Li et al. | Injection molded microfluidics for establishing high-density single cell arrays in an open hydrogel format | |
| CN113814010A (zh) | 多细胞、多组织共培养仿生微流控芯片及其制备方法 | |
| US20240189822A1 (en) | Three-dimensional microfluidic metastasis array | |
| WO2023073178A1 (en) | Microfluidic cell culturing device | |
| US20130230911A1 (en) | Porous structure with independently controlled surface patterns | |
| WO2011135339A2 (en) | Reactor | |
| EP2811013A1 (en) | Hanging network plate | |
| US11090651B2 (en) | Fluidic patterning of hydrogel partitions | |
| PL239601B1 (pl) | Mikrosystem przepływowy do trójwymiarowej hodowli komórek | |
| WO2020226519A1 (en) | Magnetic microfluidic device for high-throughput screening | |
| PL238703B1 (pl) | Sposób wytwarzania wielowarstwowego urządzenia mikrofluidalnego do prowadzenia hodowli tkankowych w warunkach dynamicznych | |
| Vijay et al. | Microfluidic platforms: applications and challenges | |
| Damiati | Polymers in sensory and lab-on-a-chip devices | |
| WO2025255537A1 (en) | Double-tapered sloped microstructures with embedded microchannel arrays for tissue barrier formation on organ-on-chip platforms | |
| WO2026044423A1 (en) | Microfluidic device and method for forming multicellular constructs of selected shapes | |
| PL240748B1 (pl) | Magnetyczno-hydrodynamiczna platforma mikrofluidalna, sposób jej wytwarzania oraz sposób hodowli sztucznych tkanek w mikropolu magnetycznym | |
| Hu | Novel polymer-based microfluidic devices: fabrication and application for controllable reactions |