PL242410B1 - Sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny i TP10, koniugaty otrzymane tym sposobem oraz ich zastosowanie w leczeniu przeciwbakteryjnym - Google Patents

Sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny i TP10, koniugaty otrzymane tym sposobem oraz ich zastosowanie w leczeniu przeciwbakteryjnym Download PDF

Info

Publication number
PL242410B1
PL242410B1 PL428782A PL42878219A PL242410B1 PL 242410 B1 PL242410 B1 PL 242410B1 PL 428782 A PL428782 A PL 428782A PL 42878219 A PL42878219 A PL 42878219A PL 242410 B1 PL242410 B1 PL 242410B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
van
conjugates
conjugate
peg4
dmf
Prior art date
Application number
PL428782A
Other languages
English (en)
Other versions
PL428782A1 (pl
Inventor
Izabela RUSIECKA
Izabela Rusiecka
Ivan KOCIĆ
Ivan Kocić
Jarosław RUCZYŃSKI
Jarosław Ruczyński
Piotr REKOWSKI
Piotr Rekowski
Original Assignee
Gdanski Univ Medyczny
Univ Gdanski
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Gdanski Univ Medyczny, Univ Gdanski filed Critical Gdanski Univ Medyczny
Priority to PL428782A priority Critical patent/PL242410B1/pl
Priority to PCT/PL2020/000010 priority patent/WO2020159389A1/en
Publication of PL428782A1 publication Critical patent/PL428782A1/pl
Publication of PL242410B1 publication Critical patent/PL242410B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/06General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length using protecting groups or activating agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K9/00Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K9/006Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof the peptide sequence being part of a ring structure
    • C07K9/008Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof the peptide sequence being part of a ring structure directly attached to a hetero atom of the saccharide radical, e.g. actaplanin, avoparcin, ristomycin, vancomycin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/04Peptides having up to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • A61K38/14Peptides containing saccharide radicals; Derivatives thereof, e.g. bleomycin, phleomycin, muramylpeptides or vancomycin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/62Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being a protein, peptide or polyamino acid
    • A61K47/64Drug-peptide, drug-protein or drug-polyamino acid conjugates, i.e. the modifying agent being a peptide, protein or polyamino acid which is covalently bonded or complexed to a therapeutically active agent
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/01Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
    • C07K2319/10Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a tag for extracellular membrane crossing, e.g. TAT or VP22

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Nowy związek o wzorze ogólnym: gdzie: X - oznacza PEG3; PEG4; Ala-PEG4; TP10 - oznacza X-AGYLLGK(X)INLKALAALAKKIL-X-NH2. Ponadto, zgłoszenie obejmuje też sposób otrzymywania przedmiotowych związków, ich zastosowanie oraz zawierającą je kompozycję farmaceutyczną.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny (Van) i transportami 10 (TP10) oraz koniugaty otrzymane tym sposobem do zastosowania jako nowe związki przeciwbakteryjne przeciwko MRSA, w szczególności przeciwko Staphylococcus aureus, Enterococcus spp. i Neisseria spp.
Wankomycyna, antybiotyk glikopeptydowy, który posiada aktywność przeciwbakteryjną przeciwko Gram(+) tlenowcom i beztlenowcom. Wankomycyna jest często stosowana w infekcjach zagrażających życiu wywołanych przez bakterie takie jak Staphylococcus aureus, Enterococcus spp. i Clostridium difficile. Obecnie zakażenia tymi mikroorganizmami często występują w społeczeństwie co jest przyczyną dużej ilości powikłań i śmiertelności wśród pacjentów. Wśród nich, szczególnie niebezpieczne są zakażenia metycilino-opornym Staphylococcus aureus (MRSA) zlokalizowane w tkance mózgowej jak np. bakteryjne zapalenie opon mózgowych, a ich leczenie to główne wyzwanie dla współczesnej medycyny.
HCI CHa
Rys. 1. Struktura wankomycyny
Wankomycyna oraz sposób jej otrzymywania jest znana z opisu patentowego US 3067099 B.
Skuteczność wankomycyny jest niewystarczająca z uwagi na coraz większą ilość wielolekoopornych (MDR) szczepów szpitalnych. Wankomycyna ma wiele ograniczeń także w leczeniu pacjentów zakażonych MRSA, oprócz wspomnianej wcześniej szybko rozwijająca się oporność na ten antybiotyk również osłabia jej penetrację przez barierę krew-mózg (BBB), co ogranicza jej zastosowanie w zakażeniach mózgu np. bakteryjnym zapaleniu opon mózgowych. Niestety brak jest alternatywnych leków do wankomycyny.
Dlatego też, klinicznym wyzwaniem stało się stworzenie zmodyfikowanej wankomycyny, która ma lepszą skuteczność antybakteryjną oraz dobrze penetruje do tkanki mózgowej.
Takie polepszone własności udało się osiągnąć przez skoniugowanie wankomycyny z transportanem 10 (TP10), który jest przedstawicielem peptydów penetrujących komórkę (CPP). TP10, przedstawiciel kationowych CPP, jest krótkim amfipatycznym peptydem (oznacza X-AGYLLGK(X)INLKALAALAKKIL-X-A/H2).
TP10 jest znany z właściwości transportujących przez błony komórkowe, niestety mechanizm transportu jest niewyjaśniony. TP10 ma również zdolność transportowania różnych cząsteczek w tym leków do wnętrza komórki. Dodatkowo TP10 również posiada własności przeciwbakteryjne.
Stworzenie koniugatów Van-TP10 poprawiło własności farmakokinetyczne i farmakodynamiczne w porównaniu do samej wankomycyny, przy zachowaniu niskiej toksyczności komórkowej. Koniugaty Van-TP10 wykazują lepsze efekty przeciwbakteryjne w stosunku do klinicznych szczepów
MRSA a stężenie jednego z koniugatów w mózgu jest 200-krotnie wyższe niż samej wankomycyny, przy jednoczesnym niskim poziomie ich toksyczności.
Koniugaty mogą znaleźć zastosowanie w leczeniu zagrażających życiu infekcji MRSA, szczególnie tych znajdujących w mózgu.
Nowo otrzymane związki (Van-TP10) mogą znaleźć zastosowanie jako leki w przemyśle farmaceutycznym i stanowić alternatywną terapię w stosunku do tradycyjnej wankomycyny.
Celem niniejszego wynalazku jest dostarczenie sposobu otrzymywania związków w postaci koniugatów, które mogą być zastosowane do leczenia zagrażających życiu infekcji MRSA, również tych znajdujących w mózgu (nowy antybiotyk z grupy glikopeptydów). Nieoczekiwanie problem ten został rozwiązany w istotnym stopniu w niniejszym wynalazku.
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny (Van) i transportami 10 (TP10) o wzorach ogólnych Van-PEG3-TP10 [koniugat I] lub Van-PEG4-TP10 [koniugat II] lub TP10-Ala(PEG4-Van) [koniugat IV] oraz [Lys7(PEG4-Van)]TP10 [koniugat IVa] charakteryzujący się tym, że w pierwszym etapie prowadzi się syntezę łańcucha TP10 i j ego analogów oraz modyfikację struktury wakomycyny, a następnie prowadzi się kowalencyjną koniugację obu związków metodą cykloaddycji Huisgena.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku etap otrzymywania łańcucha TP10 i jego analogów obejmuje syntezę peptydów w fazie stałej z wykorzystaniem automatycznego syntetyzatora oraz żywicy TentaGel S RAM mającej osadzenie grup aminowych 0,25 mmol/g, przy czym
a) Fmoc chronione aminokwasy przyłącza się jako aktywne pochodne z wykorzystaniem 3-krotnego molowego nadmiaru TBTU z dodatkiem HOBt i NMP w proporcji molowej 1:1:2 w DMF przez 2 x 30 min; następnie usuwa się grupy Fmoc z użyciem 20% roztworu piperydyny w DMF w 2 cyklach (2 x 3,5 min), gdzie dodatkowo w przypadku syntezy koniugatu I i II N-końcową grupę Fmoc usuwa się za pomocą 20% roztworu piperydyny w DMF (2 x 5 min), a następnie do N-końcowej grupy aminowej przyłącza się grupę propiolową (Prop) stosując 10-krotny molowy nadmiar bezwodnika kwasu propiolowego w DMF przez 1,5 godziny; mieszaninę przechowuje się w temperaturze 0°C przez 10 min; osad odsącza się, a po odparowaniu DCM otrzymany bezwodnik rozpuszcza się w 5 mL DMF i dodaje się do naczynka reakcyjnego z peptydylo-żywicą, lub w przypadku syntezy koniugatu III do żywicy przyłącza się pochodną Fmoc-L-propargiloglicyny (Fmoc-Prg-OH), a następnie kolejne reszty aminokwasowe w sekwencji TP10 w przypadku syntezy koniugatu IV i IVa do osłony grupy ε-aminowej reszty Lys7 stosuje się labilną w środowisku hydrazyny grupę iv Dde, którą usuwa się za pomocą 10% roztworu monohydratu hydrazyny w DMF (3 x 20 min), a następnie przyłącza się grupę alkinową do grupy ε-aminowej reszty Lys7 stosując 10-krotny molowy nadmiar bezwodnika kwasu propiolowego lub w przypadku syntezy koniugatu IV N-końcową resztę Ala przyłącza się jako Boc-chroniony aminokwas, lub w przypadku koniugatu IVa do N-końcowej grupy aminowej przyłącza się 6-karboksyfluoresceinę (FI) stosując 3-krotny molowy nadmiar estru N-hydroksysukcynimidowego 6-karboksyfluoresceiny (Fl-NHS) z dodatkiem DIPEA w proporcji molowej 1:1 w DMF przez 1,5 godziny
b) odszczepianie peptydów od żywicy prowadzi się z jednoczesnym usunięciem osłon grup funkcyjnych w łańcuchach bocznych za pomocą mieszaniny kwas trifluorooctowy (TFA), fenol, triizopropylosilan i woda (w proporcji molowej 88:5:2:5) przez 2 godziny, następnie
c) peptydy wytrąca się z mieszaniny reakcyjnej za pomocą zimnego eteru dietylowego; następnie osad odsącza się, rozpuszcza w wodzie i liofilizuje się; surowe peptydy analizuje się i oczyszcza za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej w układzie faz odwróconych; tożsamość otrzymanych produktów potwierdzano się za pomocą spektrometrii mas.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku modyfikację struktury wankomycyny w celu otrzymania jej pochodnych modyfikowanych grupą azydkową prowadzi się w roztworze, gdzie:
a) dla pochodnej Van-PEG4-N3, ester N-hydroksysukcynimidowy kwasu 15-azydo-4,7,10,13-tetraoksypentadekanowego (N3-PEG4-NHS) przyłącza się do chlorowodorku wankomycyny poprzez pierwszorzędową grupę aminową we fragmencie cukrowym przeprowadzając reakcję w roztworze wodnym zawierającym DIPEA, przy proporcjach molowych reagentów 1:1.5:2.5, przy czym roztwór mieszano w temperaturze 4°C przez 30 min;
b) dla pochodnej Van-PEG3-N3, 1-amino-11-azydo-3,6,9-trioksyundekan (N3-PEG3-NH2) przyłącza się do chlorowodorku wankomycyny poprzez grupę karboksylową we fragmencie aglikonowym przeprowadzając reakcję w roztworze DMF z wykorzystaniem HATU (heksafluorofosforan 2-(1 H-9-azabenzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetrametylouroniowy) z dodatkiem DIPEA, przy proporcjach molowych reagentów 1:0,8:1:2, przy czym roztwór miesza się w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę, po upływie tego czasu, produkty reakcji natychmiast rozdziela się za pomocą preparatywnej RP-HPLC; eluaty frakcjonuje się i analizuje za pomocą analitycznej RP-HPLC;
c) następnie frakcje Van-PEG4-N3 lub Van-PEG3-N3 o czystości powyżej 98% łączy się i liofilizuje się, a tożsamość otrzymanych produktów potwierdza się za pomocą spektrometrii mas.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku kowalencyjną koniugację obu związków metodą cykloaddycji Huisgena do uzyskania koniugatów prowadzi się poprzez reakcje 0,8 μM zmodyfikowanych grupą alkinową analogów TP10 otrzymanych sposobem według zastrz. 2 z 0,4 μM zmodyfikowanych grupą azydkową pochodną Van-PEG3-N3 lub Van-PEG4-N3 w obecności 1,5 ml mieszaniny woda/ tert-butanol w stosunku objętościowym 1:1 i 8 μL 0,1 M roztworu CuSO4xH2O oraz 4 μL świeżo przygotowanego 0,5 M roztworu askorbinianu sodu w proporcji molowej 2:1:2:5, przy czym mieszaninę reakcyjną miesza się w temperaturze pokojowej przez około 24 godziny do utworzenia 1,2,3-triazolu, następnie rozpuszczalnik odparowuje się i produkty syntezy liofilizuje się; po czym otrzymane surowe koniugaty oczyszcza się za pomocą preparatywnej lub semi-preparatywnej RP-HPLC; uzyskując koniugaty o czystości powyżej 98%.
Kolejnym przedmiotem wynalazku są koniugaty otrzymane sposobem według wynalazku do zastosowania jako lek przeciwbakteryjny wobec Staphylococcus aureus lub Enterococcus spp lub Neisseria spp.
Korzystnie, koniugaty do zastosowania jako lek przeciwbakteryjny wobec szczepu MRSA N315 i MRSA hetero-YISA 6347.
Korzystnie, koniugaty do leczenia infekcji MRSA zlokalizowanych w mózgu.
Opis rysunków i tabel:
Fig. 1 - przedstawia chemiczną strukturę zsyntetyzowanych koniugatów.
Koniugat: a) Van-PEG3-TP10 (koniugat I);
b) Van-PEG4-TP10 (koniugat II);
c) TP10-Ala(PEG4-Van) (koniugat III);
d) [Lys7(PEG4-Van)]TP10 (koniugat IV);
e) Fl[Lys7(PEG4-Van)]TP10 (koinugat IVa)
Fig. 2 - przedstawia przeciwbakteryjne aktywności [Lys7(PEG4-Van)]TP10 przeciwko wewnątrzkomórkowo zlokalizowanym szczepom MRSA 12673 * istotność statystyczna (p<0.05) w porównaniu do kontroli (bez leczenia) i Van
Fig. 3 - przedstawia przeciwbakteryjne aktywności [Lys7(PEG4-Van)]TP10 przeciwko wewnątrzkomórkowo zlokalizowanym szczepom MRSA h-VISA 6347.
* istotność statystyczna (p<0.05) w porównaniu do kontroli (bez leczenia) i Van
Fig. 4 - przedstawia obecność Fl-[Lys7(PEG4-Van)]TP10 w mózgach mysich uzyskany za pomocą mikroskopu fluorescencyjnego.
Fig. 5 - przedstawia hemolityczną aktywność Van, Van-PEG3-TP10 i Van-PEG4-TP10 w zakresie stężeń of 100-0.049 μM mierzony spektrofotometryczne przy długości fali 450 nm.
* Van - 0% hemolizy w całym zakresie stężeń * istotność statystyczna (p<0.05) w porównaniu do Van
Tabela 1 - przedstawia strukturę pierwszorzędową otrzymanych koniugatów Van-TP10
Tabela 2 - przedstawia uzyskane koniugaty, ich masy molekularne oraz wydajność reakcji koniugacji.
Tabela 3 - przedstawia antybakteryjną aktywność koniugatów Van-TP10
Tabela 4 - przedstawia stężenie [Lys7(PEG4-Van)]TP10, Van i TP10 w homogenatach mysich mózgów.
Wynalazek ilustrują następujące przykłady wykonania, nie stanowiące jego ograniczenia.
Przykład 1
Z syntetyzowane koniugaty
Otrzymano 4 koniugaty Van z TP10, o strukturach przedstawionych w tabeli 1 oraz na Fig. 1.
PL 242410 Β1
Tabela 1. Struktura pierwszorzędowa otrzymanych koniugatów TP10 z Van
Nazwa związku Sekwencja
I Van-PEG3-TP10 Van-NH-PEG3-Tra( 1,4)-C(O)- AGYLLGKINLKALAALAKKIL-ir™
II Van-PEG4-TP10 Van-C(O)-PEG4-Tra( 1,4)-0(0)- AGYLLGKINLKALAALAKKIL-ćotzć/
III TP10-Ala(PEG4- Van) AGYLLGKINLKALAALAKKIL-Ala(Tra(l,4)- PEG4-C(O)-Van)-iZwz7
IV IVa [Lys7(PEG4- Van)]TP10 AGYLLGK7(C(O)-Tra(l,4)-PEG4-C(O)- Van)INLKALAALAKKIL-ć//w7
/7-[Lys7(PEG4- Van)]TP10 F7-AGYLLGK7(C(O)-Tra( 1,4)-PEG4-C(O)- Van)INLKALAALAKKIL-z™/7
/7 — fluoresceina, PEG4 - linker 4,7,10,13-tetraoksypentadekanowy, PEG3 - linker
3,6,9-triokyaundekanowy, Tra - pierścień 1,2,3-triazolowy
Synteza łańcucha TP10
TP10 i jego analogi zsyntezowano stosując standardową procedurę syntezy peptydów w fazie stałej (SPPS) z wykorzystaniem automatycznego syntezatora peptydów (Ouartet, Protein Technologies Inc) oraz żywicy TentaGel S RAM (o osadzeniu grup aminowych 0,25 mmol/g). Fmoc-chronione aminokwasy przyłączano jako aktywne pochodne z wykorzystaniem 3-krotnego molowego nadmiaru TBTU (tetrafluoroboran 2-(1/7-benzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetrametylo-uroniowy) z dodatkiem HOBt (1-hydroksybenzotriazol) i NMP (A/-metylomorfoli na) (w proporcji molowej 1:1:2) w DMF (A/,A/-dimetyloformamid) przez 2 x 30 min. Usuwanie grup Fmoc (fluorenylo-9-metoksykarbonyl) przeprowadzano z użyciem 20% roztworu piperydyny w DMF w 2 cyklach (2 x 3,5 min). Dodatkowo, zastosowano labilną w środowisku hydrazyny grupę /VDde (1-(4,4-dimetylo-2,6-dioksycykloheksadieno)-3-metylobutyl) do osłony grupy ε-aminowej reszty Lys7, zamiast standardowej labilnej w środowisku kwaśnym grupy Boc (ferf-butyloksycarbonyl) (synteza koniugatu IV i IVa). Ze względu fakt, że hydrazyna usuwa grupę Fmoc, A/-końcowa resztę Ala (synteza koniugatu IV) przyłączono jako Boc-chroniony aminokwas. W syntezie koniugatu IVa do A/-końcowej grupy aminowej przyłączono 6-karboksyfluoresceinę (FI) stosując 3-krotny molowy nadmiar estru A/-hydroksysukcynimidowego 6-karboksyfluoresceiny (FI-NHS) z dodatkiem DIPEA (A/,A/-diizopropyloetylamina) (w proporcji molowej 1:1) w DMF przez 1,5 godziny.
Modyfikacja TP10 grupą alkinową
W przypadku syntezy koniugatu I i II, A/-końcową grupę Fmoc usuwano za pomocą 20% roztworu piperydyny w DMF (2x5 min), a następnie do A/-końcowej grupy aminowej przyłączano grupę propiolową (Prop) stosując 10-krotny molowy nadmiar bezwodnika kwasu propiolowego w DMF przez 1,5 godziny. Bezwodnik kwasu propiolowego otrzymano przez zmieszanie A/,A/-diizopropylokarbodiimidu (DIC) z kwasem propiolowym (w proporcji molowej 1:2) w dichlorometanie (DCM). Mieszaninę przechowywano w temperaturze 0°C przez 10 min. Osad odsączono, a po odparowaniu DCM otrzymany bezwodnik rozpuszczono w 5 mL DMF i dodano do naczynka reakcyjnego z peptydylo-żywicą. Natomiast, modyfikowany grupą alkinową koniugat III otrzymano przez przyłączenie do żywicy pochodnej Fmoc-L-propargiloglicyny (Fmoc-Prg-OH), a następnie przez przyłączanie kolejnych reszt aminokwasowych w sekwencji TP10. W przypadku syntezy koniugatu IV i IVa, grupę /VDde usuwano za pomocą 10% roztworu monohydratu hydrazyny w DMF (3 x20 min), a następnie przyłączano grupę alkinową do grupy ε-aminowej reszty Lys7 stosując 10-krotny molowy nadmiar bezwodnika kwasu propiolowego (otrzymanego w sposób wyżej opisany).
PL 242410 Β1
Odszczepianie peptydów od żywicy
Peptydy odszczepiano z żywicy z jednoczesnym usunięciem osłon grup funkcyjnych w łańcuchach bocznych za pomocą mieszaniny kwas trifluorooctowy (TFA), fenol, triizopropylosilan i woda (w proporcji molowej 88:5:2:5) przez 2 godziny. Peptydy wytrącano z mieszaniny reakcyjnej za pomocą zimnego eteru dietylowego. Następnie osad odsączano, rozpuszczano w wodzie i liofilizowano. Surowe peptydy analizowano i oczyszczano za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej w układzie faz odwróconych (RP-HPLC). Tożsamość otrzymanych produktów potwierdzano za pomocą spektrometrii mas, techniką MALDI-TOF (Bruker Daltonics, model HCT Ultra) lub techniką ESI (ABSciex, TripleTOF 5600+).
Modyfikacja struktury Van
Pochodne Van modyfikowane grupą azydkową zsyntezowano w roztworze. W przypadku pochodnej Van-PEG4-N3, ester A/-hydroksysukcynimidowy kwasu 15-azydo-4,7,10,13-tetraoksypentadekanowego (N3-PEG4-NHS) przyłączono do chlorowodorku wankomycyny poprzez pierwszorzędową grupę aminową we fragmencie cukrowym. Reakcję przeprowadzono w roztworze wodnym zawierającym DIPEA (proporcje molowe reagentów 1:1.5:2.5). Roztwór mieszano w temperaturze 4°C przez 30 min. Natomiast pochodną Van-PEG3-N3 otrzymano przez przyłączenie 1-amino-11-azydo-3,6,9-trioksyundekanu (N3-PEG3-NH2) do chlorowodorku wankomycyny poprzez grupę karboksylową we fragmencie aglikonowym. Reakcję przeprowadzono w roztworze DMF z wykorzystaniem HATU (heksafluorofosforan 2-(1/-/-9-azabenzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetrametylouroniowy) z dodatkiem DIPEA (w proporcji molowej 1:0,8:1:2). Roztwór mieszano w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę. Po upływie tego czasu, produkty reakcji natychmiast rozdzielano za pomocą preparatywnej RP-HPLC. Eluaty frakcjonowano i analizowano za pomocą analitycznej RP-HPLC. Frakcje Van-PEG4-N3 lub Van-PEG3-N3 o czystości powyżej 98% łączono i liofilizowano. Tożsamość otrzymanych produktów potwierdzono za pomocą spektrometrii mass, techniką MALDI-TOF lub ESI.
Koniugacja Van z TP10
Do kowalencyjnej koniugacji TP10z wankomycyną (Van) wykorzystano katalizowaną jonami miedzi Cu(l) specyficzną 1,3-dipolarną reakcję cykloaddycji Huisgena, znaną również jako reakcja klik (rys. 2). Metoda ta jest szybka, wysoce wydajna oraz regio- i chemoselektywna w łagodnych warunkach reakcji.
RŁ J ...... . Óu (I).
—N, + =—R -j 1
Rysunek 2. Ogólny schemat katalizowanej jonami miedzi(l) 1,3-dipolarnej cykloaddycji Huisgena („reakcja klik”); gdzie R - Van, R1 - TP10 o sekwencji aminokwasowej przedstawionej na rysunku 1.
Reakcje modyfikowanych grupą alkinową analogów TP10 (za każdym razem 0,8 μΜ) ze modyfikowaną grupą azydkową pochodną (0,4 μΜ) Van-PEG3-N3 (koniugat I) lub Van-PEG4-N3 (koniugaty ll-IV) prowadzono w 1,5 ml mieszaniny woda/ferf-butanol (1:1 v/v) w obecności 8 pL 0,1 M roztworu CuSO4xH2O i 4 pL świeżo przygotowanego 0,5 M roztworu askorbinianu sodu (w proporcji molowej 2:1:2:5). Roztwór mieszano w temperaturze pokojowej przez około 24 godziny. Po zakończeniu reakcji tworzenia 1,2,3-triazolu, rozpuszczalnik odparowywano i produkty syntezy liofilizowano. Otrzymane w ten sposób surowe koniugaty oczyszczano za pomocą preparatywnej lub semi-preparatywnej RP-HPLC. Czystość związków sprawdzano za pomocą analitycznej RP-HPLC (z wykorzystaniem różnych metod gradientowych acetonitryl-woda), ich czystość oszacowano na poziomie powyżej 98%. Masy cząsteczkowe otrzymanych związków potwierdzono za pomocą spektrometrii mass, techniką ESI lub MALDI-TOF. Tabela 2 przedstawia porównanie mas cząsteczkowych obliczonych i wyznaczonych doświadczalnie otrzymanych koniugatów, jak również wydajności reakcji koniugacji.
PL 242410 Β1
Tabela 2. Porównanie mas cząsteczkowych otrzymanych koniugatów oraz wydajności reakcji koniugacji
Nazwa związku Masa cząsteczkowa Wydajność** [%]
Obliczona Wyznaczona doświadczalnie
I Vaii-PEG3-TP10 3883,27 1294.36 [M+3II]3; 971,03 IMI41IJ4·, 47
777,04 [M+5HJ5*, 647,97 [M+6H]6+
II Van-PEG4-TP10 3956,32 1318,40 [M+3H]3+, 989,05 [M+4H]4+, 791,45 (M+5H]5+, 659,87 [M+6H]Ć+ 85
III TP10-Ala(PEG4-Van) 4001,40 3999,60* [M+H]+ 76
IV [Lys7PEGj-Van)]TP10 3957,30 3956,80* [M+HJ+ 58
IVa F7-[Ly s7 (PEGi-Van)] TP10 4316,60 4317,10* [M+H]+ 24
* otrzymane techniką spektrometrii mas MALDI-TOF ** uwzględniono tylko frakcje o czystości HPLC powyżej 98%
Analiza i oczyszczanie produktów reakcji
Oczyszczanie zsyntezowanych związków przeprowadzono na kolumnie Reprosil 100 C18 (Dr. Maisch GmbH, 40 x 250 mm, rozmiar ziaren 10 pm, przepływ fazy ruchomej 25 mL/min) lub kolumnie Reprosil 100 C18-XBD (Dr. Maisch GmbH, 20 x 250 mm, rozmiar ziaren 10 pm, przepływ fazy ruchomej 10 mL/min) z wykorzystaniem chromatografu SpotPrep (Armen) oraz różnych metod gradientowych. Faza ruchoma 10 składała się z 0,08% TFA w acetonitrylu (ACN) (roztwór A) i 0,1% TFA w wodzie (roztwór B). Kolumnę utrzymywano w temperaturze otoczenia. Eluowane roztwory monitorowano za pomocą detektora UV przy λ = 220 i λ = 254 nm. Eluaty frakcjonowano i analizowano za pomocą analitycznej RP-HPLC.
Analityczne rozdziały przeprowadzano na kolumnie Kinetex XB-C18 (Phenomenex, 4,6 x 150 mm, rozmiar ziaren 5 pm, przepływ fazy ruchomej 1 mL/min) z wykorzystaniem chromatografu Shimadzu Prominence oraz różnych metod gradientowych. Faza ruchoma, temperatura kolumny i parametry monitorowania eluatów były takie same jak w przypadku rozdziałów preparatywnych.
Przykład 2
Sprawdzenie aktywności przeciwbakteryjnei uzyskanych koniugatów
W celu sprawdzenia działania przeciwbakteryjnego uzyskanych koniugatów wykorzystano test MIC in vitro na trzech szczepach bakteryjnych MRSA (N315, 12673, 6347). MRSA N315 to szczep referencyjny, wrażliwy na Van; MRSA 12673 - szczep kliniczny średnio-wrażliwy na Van; MRSA 6347 to szczep kliniczny h-VISA - średnio-oporny na Van. Wszystkie wyniki porównywano do samej Van.
PL 242410 Β1
Tabela 3
Szczep MIC w μΜ and (gg/ml)
Van-HCl TP10-amirfe Van-PEGj- TPlO-amrrf Yan-PEGł- TPlO-amii/ TP10- Ala(PEGt- Nnń)-amid [Lys7(PEG4- Van)]TP10amid
I II III IV
S. mireus MRSA N315 1 2,00+0.52 (2.97+0.66) 6.25+1.28 (13.64+2.78) 1.56+0.81 (6,06+2.47) 1.60+0.83 (6.33+2.58) 12.50*±3.23 (50.01+12.91) 6.25*±1.61 (24.72+6.38)
S awens MRSA 12673 2 4.07+1.05 (6.05+1.56) 6.25+1.61 (13.64+3.52) 1.56*±0.85 (6.06+3.13) 1.60*±0.65 (6.33+2.58) 0.78*±0.40 (3.12+1.61) 0.78*±0.32 (3.09+1.26)
X aureus MRSA hctcro- VISA 6347 2 4.07+1.05 (6.05+1.56) 12.50+3.23 (27.27+7.04) 1.56*±0.32 (6.06+1.24) 3.10+0.84 (12.26+3.56) 1.60*±0.42 (6.40+1.65) 3.10+0.79 (12.26+3.08)
1 szczep referencyjny 2 szczep kliniczny * istotność statystyczna (p 0.05) w porównaniu do Van
W przypadku szczepów klinicznych uzyskano statystycznie istotną poprawę działania przeciwbakteryjnego dla wszystkich badanych koniugatów w porównaniu do tradycyjnej Van.
Przykład 3
Ocena skuteczności wewnątrzkomórkowego działania przeciwbakteryjnego badanych koniugatów
W związku z tym, że S.aureus to patogen wewnątrzkomórkowy, sprawdzono czy badane koniugaty mają możliwość penetracji do komórek eukariotycznych. W tym celu wykorzystano ludzką linię komórkową HEK293, którą zakażono szczepem MRSA 12673 a następnie sprawdzano wewnątrzkomórkową skuteczność przeciwbakteryjną jednego z badanych koniugatów Fig. 2.
W tym badaniu otrzymano 70% poprawę inaktywacji bakterii wewnątrzkomórkowych MRSA 12673 w porównaniu do samej Van przy stężeniu 32xMIC. Na drugi szczep kliniczny MRSA h-VISA 6347 również uzyskano znaczą poprawę przeciwbakteryjną przy 8xMIC (Fig.3).
Przykład 4
Jakościowa ocena zdolności przechodzenia koniugatu FI-[Lys7(PEG4-Van1TP10 przez barierę krew-mózg (BBB)
W związku z tym, że zagrażające życiu infekcje MRSA są zlokalizowane w mózgu a sama Van słabo penetruje przez BBB, ważne było aby stworzone koniugaty penetrowały do tkanki mózgowej. W tym celu wybrano koniugat [Lys7(PEG4-Van)]TP10 i połączono go z barwnikiem fluorescencyjnym fluoresceiną (FI). Badany koniugat wstrzykiwano myszom do żyły ogonowej a po dwóch godzinach izolowano mózgi zwierząt w których badano obecność koniugatu za pomocą mikroskopii fluorescencyjnej. Obecność koniugatu uwidoczniona była w postaci zielonego koloru w preparatach tkanki mózgowej Fig. 4.
Przykład 5
Ilościowa ocena zdolności przechodzenia koniugatu rLys7(PEG4-Van)ITP10 przez barierę krew-mózg (BBB)
PL 242410 Β1
Aby ilościowo oszacować ilość koniugatu w tkance mózgowej w porównaniu do samej Van zastosowano model mysi. Badany koniugat lub Van podano do żyły ogonowej a po 2 h mózgi zwierząt izolowano, homogenizowano a następnie analizowano za pomocą LC-MS. Wyniki przedstawiono w Tab. 4.
Tabela 4
Związek (/v) Stężenie w mózgu [nM] jako (Średnia±SD)
Van TP10 [Lys7(PEG4-Van)]TP10
NaCI ND ND
Van 11±2 ND
TP10 ND
[Lys7(PEG4Van)]TPl0 ND 2611*±120
Van+TP10 ND ND
ND - nie wykryto * istotność statystyczna (p<0.05) w porównaniu do Van
Przykład 6
Badanie toksyczności wybranych koniugatów
W celu sprawdzenia bezpieczeństwa stosowania badanych koniugatów wykonano test lizy erytrocytów. Do badania wybrano 2 koniugaty Van-PEG3-TP10 i Van-PEG4-TP10, które wg. danych literaturowych mogły okazać się najbardziej toksyczne ze względu na ortogonalne ułożenie podstawników. Oba koniugaty okazały się nietoksyczne w stosowanym przeciwbakteryjnym zakresie stężeń, jednak koniugat z linkerem PEG4 wykazuje większe bezpieczeństwo stosowania Fig. 5.
Wnioski
Z syntetyzowane koniugaty wykazały większą aktywność przeciwbakteryjną wobec klinicznych szczepów MRSA, zarówno tych zlokalizowanych zewnątrz- i wewnątrzkomórkowo. Dodatkowo koniugaty mają zdolność penetracji przez BBB (badano na wybranym koniugacie) osiągając 200-krotnie wyższe stężenia w mózgu niż sama Van. Ten fakt jest szczególnie istotny w przypadku infekcji MRSA zlokalizowanych w mózgu. Wartym podkreślenia jest fakt, że badane koniugaty w niskich stężeniach (terapeutycznych) mają toksyczność podobną do tej wykazywanej przez Van.

Claims (7)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny (Van) i transportami 10 (TP10) o wzorach ogólnych Van-PEG3-TP10 [koniugat I] lub Van-PEG4-TP10 [koniugat II] lub TP10-Ala(PEG4-Van) [koniugat IV] oraz [Lys7(PEG4-Van)]TP10 [koniugat IVa] znamienny tym, że w pierwszym etapie prowadzi się syntezę łańcucha TP10 i jego analogów oraz modyfikację struktury wakomycyny, a następnie prowadzi się kowalencyjną koniugację obu związków metodą cykloaddycji Huisgena.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że etap otrzymywania łańcucha TP10 i jego analogów obejmuje syntezę peptydów w fazie stałej z wykorzystaniem automatycznego syntetyzatora oraz żywicy TentaGel S RAM mającej osadzenie grup aminowych 0,25 mmol/g, przy czym
    a) Fmoc chronione aminokwasy przyłącza się jako aktywne pochodne z wykorzystaniem 3-krotnego molowego nadmiaru TBTU z dodatkiem HOBt i NMP w proporcji molowej 1:1:2 w DMF przez 2 x 30 min; następnie usuwa się grupy Fmoc z użyciem 20% roztworu piperydyny w DMF w 2 cyklach (2 x 3,5 min), gdzie dodatkowo w przypadku syntezy koniugatu I i II N-końcową grupę Fmoc usuwa się za pomocą 20% roztworu piperydyny w DMF (2 x 5 min), a następnie do N-końcowej grupy aminowej przyłącza się grupę propiolową (Prop) stosując 10-krotny molowy nadmiar bezwodnika kwasu propiolowego w DMF przez 1,5 godziny; mieszaninę przechowuje się w temperaturze 0°C przez 10 min; osad odsącza się, a po odparowaniu DCM otrzymany bezwodnik rozpuszcza się w 5 mL DMF i dodaje się do naczynka reakcyjnego z peptydylo-żywicą, lub w przypadku syntezy koniugatu III do żywicy przyłącza się pochodną Fmoc-L-propargiloglicyny (Fmoc-Prg-OH), a następnie kolejne reszty aminokwasowe w sekwencji TP10 w przypadku syntezy koniugatu IV i IVa do osłony grupy ε-aminowej reszty Lys7 stosuje się labilną w środowisku hydrazyny grupę iv Dde, którą usuwa się za pomocą 10% roztworu monohydratu hydrazyny w DMF (3 x 20 min), a następnie przyłącza się grupę alkinową do grupy ε-aminowej reszty Lys7 stosując 10-krotny molowy nadmiar bezwodnika kwasu propiolowego; lub w przypadku syntezy koniugatu IV N-końcową resztę Ala przyłącza się jako Boc-chroniony aminokwas, lub w przypadku koniugatu IVa do N-końcowej grupy aminowej przyłącza się 6-karboksyfluoresceinę (FI) stosując 3-krotny molowy nadmiar estru N-hydroksysukcynimidowego 6-karboksyfluoresceiny (Fl-NHS) z dodatkiem DIPEA w proporcji molowej 1:1 w DMF przez 1,5 godziny
    b) odszczepianie peptydów od żywicy prowadzi się z jednoczesnym usunięciem osłon grup funkcyjnych w łańcuchach bocznych za pomocą mieszaniny kwas trifluorooctowy (TFA), fenol, triizopropylosilan i woda (w proporcji molowej 88:5:2:5) przez 2 godziny, następnie c) peptydy wytrąca się z mieszaniny reakcyjnej za pomocą zimnego eteru dietylowego; następnie osad odsącza się, rozpuszcza w wodzie i liofilizuje się; surowe peptydy analizuje się i oczyszcza za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej w układzie faz odwróconych; tożsamość otrzymanych produktów potwierdzano się za pomocą spektrometrii mas.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że modyfikację struktury wankomycyny w celu otrzymania jej pochodnych modyfikowanych grupą azydkową prowadzi się w roztworze, gdzie:
    a) dla pochodnej Van-PEG4-N3, ester N-hydroksysukcynimidowy kwasu 15-azydo-4,7,10,13-tetraoksypentadekanowego (N3-PEG4-NHS) przyłącza się do chlorowodorku wankomycyny poprzez pierwszorzędową grupę aminową we fragmencie cukrowym przeprowadzając reakcję w roztworze wodnym zawierającym DIPEA, przy proporcjach molowych reagentów 1:1.5:2.5, przy czym roztwór mieszano w temperaturze 4°C przez 30 min;
    b) dla pochodnej Van-PEG3-N3, 1-amino-11-azydo-3,6,9-trioksyundekan (N3-PEG3-NH2) przyłącza się do chlorowodorku wankomycyny poprzez grupę karboksylową we fragmencie aglikonowym przeprowadzając reakcję w roztworze DMF z wykorzystaniem HATU (heksafluorofosforan 2-( 1H-9-azabenzotriazol-1-yl)-1,1,3,3-tetrametylouroniowy) z dodatkiem DIPEA, przy proporcjach molowych reagentów 1:0,8:1:2, przy czym roztwór miesza się w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę, po upływie tego czasu, produkty reakcji natychmiast rozdziela się za pomocą preparatywnej RP-HPLC; eluaty frakcjonuje się i analizuje za pomocą analitycznej RP-HPLC;
    c) następnie frakcje Van-PEG4-N3 lub Van-PEG3-N3 o czystości powyżej 98% łączy się i liofilizuje się, a tożsamość otrzymanych produktów potwierdza się za pomocą spektrometrii mas.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kowalencyjną koniugację obu związków metodą cykloaddycji Huisgena do uzyskania koniugatów prowadzi się poprzez reakcje 0,8 μM zmodyfikowanych grupą alkinową analogów TP10 otrzymanych sposobem według zastrz. 2 z 0,4 μM zmodyfikowanych grupą azydkową pochodną Van-PEG3-N3 lub Van-PEG4-N3 w obecności 1,5 ml mieszaniny woda/tert-butanol w stosunku objętościowym 1:1 i 8 μL 0,1 M roztworu CuSO4xH2O oraz 4 μL świeżo przygotowanego 0,5 M roztworu askorbinianu sodu w proporcji molowej 2:1:2:5, przy czym mieszaninę reakcyjną miesza się w temperaturze pokojowej przez około 24 godziny do utworzenia 1,2,3-triazolu, następnie rozpuszczalnik odparowuje się i produkty syntezy liofilizuje się; po czy, otrzymane surowe koniugaty oczyszcza się za pomocą preparatywnej lub semi-preparatywnej RP-HPLC; uzyskując koniugaty o czystości powyżej 98%.
  5. 5. Koniugaty otrzymane sposobem według któregokolwiek z zastrzeżeń 1-4 do zastosowania jako lek przeciwbakteryjny wobec Staphylococcus aureus lub Enterococcus spp lub Neisseria spp.
    PL 242410 Β1
  6. 6. Koniugaty otrzymane sposobem według któregokolwiek z zastrzeżeń 1-4 do zastosowania jako lek przeciwbakteryjny wobec szczepu MRSA N315 i MRSA hetero-VISA 6347.
  7. 7. Koniugaty do zastosowania według zastrz. 6 do leczenia infekcji MRSA zlokalizowanych w mózgu.
PL428782A 2019-01-31 2019-01-31 Sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny i TP10, koniugaty otrzymane tym sposobem oraz ich zastosowanie w leczeniu przeciwbakteryjnym PL242410B1 (pl)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL428782A PL242410B1 (pl) 2019-01-31 2019-01-31 Sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny i TP10, koniugaty otrzymane tym sposobem oraz ich zastosowanie w leczeniu przeciwbakteryjnym
PCT/PL2020/000010 WO2020159389A1 (en) 2019-01-31 2020-01-29 Compounds of vancomycin and tp10, methods of their preparation, composition and use in antibacterial treatment

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL428782A PL242410B1 (pl) 2019-01-31 2019-01-31 Sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny i TP10, koniugaty otrzymane tym sposobem oraz ich zastosowanie w leczeniu przeciwbakteryjnym

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL428782A1 PL428782A1 (pl) 2020-08-10
PL242410B1 true PL242410B1 (pl) 2023-02-20

Family

ID=70050180

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL428782A PL242410B1 (pl) 2019-01-31 2019-01-31 Sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny i TP10, koniugaty otrzymane tym sposobem oraz ich zastosowanie w leczeniu przeciwbakteryjnym

Country Status (2)

Country Link
PL (1) PL242410B1 (pl)
WO (1) WO2020159389A1 (pl)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2023225904A1 (zh) * 2022-05-25 2023-11-30 深圳先进技术研究院 一种用于检测颅内葡萄球菌感染的试剂底物以及试剂盒的应用

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2012129493A1 (en) * 2011-03-24 2012-09-27 Seachaid Pharmaceuticals, Inc. Vancomycin derivatives
WO2015022335A1 (en) * 2013-08-12 2015-02-19 Katholieke Universiteit Leuven Vancomycin analogs
EP3158992A1 (en) * 2015-10-21 2017-04-26 Universität Heidelberg Liposomes containing cell penetrating peptides and tetraetherlipids for the oral delivery of macromolecules
JP7084320B2 (ja) * 2016-06-15 2022-06-14 ザ ジェネラル ホスピタル コーポレイション 生体直交型反応を用いた生体材料の代謝標識及び分子増強

Also Published As

Publication number Publication date
WO2020159389A1 (en) 2020-08-06
PL428782A1 (pl) 2020-08-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2926195T3 (es) Ligandos peptídicos bicíclicos específicos de CD137
Contreras et al. Cellular uptake of cyclotide MCoTI-I follows multiple endocytic pathways
Ruczyński et al. Transportan 10 improves the pharmacokinetics and pharmacodynamics of vancomycin
CA2333145C (en) Drug delivery system comprising a homeobox peptide and a non-peptide, non-nucleotide drug
US11884708B2 (en) Stapled peptide inhibitors of nemo as potential anti-inflammatory and anti-cancer drugs
US11046730B2 (en) Antimicrobial compositions
EP3185880A1 (en) Improved peptidyl calcineurin inhibitors
KR101171381B1 (ko) 암세포에 특이적인 활성을 갖는 신규 펩타이드 항암제
Ptaszyńska et al. Peptide conjugates of lactoferricin analogues and antimicrobials—Design, chemical synthesis, and evaluation of antimicrobial activity and mammalian cytotoxicity
AU2014228777B2 (en) BH4 stabilized peptides and uses thereof
WO2017152756A1 (zh) cRGD-厄洛替尼缀合物及其制备方法
WO2013073998A2 (ru) Новые производные гемина с антибактериальной и противовирусной активностью
ES2527432T3 (es) Agentes antimicrobianos a base de derivados de hemina
Tripodi et al. Development of novel cyclic NGR peptide–daunomycin conjugates with dual targeting property
PL242410B1 (pl) Sposób otrzymywania koniugatów wankomycyny i TP10, koniugaty otrzymane tym sposobem oraz ich zastosowanie w leczeniu przeciwbakteryjnym
EP4410816A1 (en) Peptide
Kubi et al. Cell-penetrating and mitochondrion-targeting molecules
CN111247162B (zh) 多黏菌素类似物及其制备方法
Lee et al. Stimulus-responsive conformational transformation of peptide with cell penetrating motif for triggered cytotoxicity
Dai et al. Synthesis and evaluation of redox-sensitive gonadotropin-releasing hormone receptor-targeting peptide conjugates
Lohan et al. Development of novel membrane active lipidated peptidomimetics active against drug resistant clinical isolates
Feni Improving cargo delivery in cancer therapy with the help of cell-penetrating peptides
IL323549A (en) Transmembrane transport system for peptides and its uses
Xie et al. Structure, biological activity and membrane partitioning of analogs of the isoprenylated a‐factor mating peptide of Saccharomyces cerevisiae
Safaei et al. The Effect of Synthesized Triazole and Ciprofloxacin Conjugated Peptide Compounds on Biological systems: Biological effects of Triazole and Ciprofloxacin Conjugated Peptide.