PL244526B1 - Zestaw diagnostyczny do wykrywania komórek nowotworowych (CTC) oraz jego zastosowanie do identyfikacji komórek nowotworowych - Google Patents

Zestaw diagnostyczny do wykrywania komórek nowotworowych (CTC) oraz jego zastosowanie do identyfikacji komórek nowotworowych Download PDF

Info

Publication number
PL244526B1
PL244526B1 PL433746A PL43374620A PL244526B1 PL 244526 B1 PL244526 B1 PL 244526B1 PL 433746 A PL433746 A PL 433746A PL 43374620 A PL43374620 A PL 43374620A PL 244526 B1 PL244526 B1 PL 244526B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
sequence
cgb3
primer
cancer
cgb1
Prior art date
Application number
PL433746A
Other languages
English (en)
Other versions
PL433746A1 (pl
Inventor
Anna Jankowska
Błażej Rubiś
Anna Szczerba
Original Assignee
Univ Medyczny Im Karola Marcinkowskiego W Poznaniu
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Medyczny Im Karola Marcinkowskiego W Poznaniu filed Critical Univ Medyczny Im Karola Marcinkowskiego W Poznaniu
Priority to PL433746A priority Critical patent/PL244526B1/pl
Publication of PL433746A1 publication Critical patent/PL433746A1/pl
Publication of PL244526B1 publication Critical patent/PL244526B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6883Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
    • C12Q1/6886Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/156Polymorphic or mutational markers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/158Expression markers
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2800/00Detection or diagnosis of diseases
    • G01N2800/70Mechanisms involved in disease identification
    • G01N2800/7023(Hyper)proliferation
    • G01N2800/7028Cancer

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Hospice & Palliative Care (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Przedmiotem wynalazku jest zestaw diagnostyczny do identyfikacji komórek nowotworowych oraz jego zastosowanie do diagnozowania in vitro nowotworów u ludzi. Zestaw diagnostyczny według wynalazku charakteryzuje się tym, że zawiera parę starterów specyficznych względem genów CGB3/CGB9, CGB5, CGB6/CGB7 i CGB8 (CGB3-9): startery o sekwencji CGB3-9 F: GTGTCSAGCTCACYCCAGCATCCTA, CGB3-9 R: AGCAGCCCCTGGAACATCT lub startery o sekwencji CGB3-9 F: TAGTGTCSAGCTCACYCCAGC, CGB3-9 R: CAGCCCCTGGAACATCTCC oraz - parę starterów specyficznych względem genów CGB1 i CGB2: startery o sekwencji CGB1/2 F: CCCCCACGGAGACTCAATTT, CGB1/2 R: ACATGTCTCTCTCTTAGCGGG lub startery o sekwencji CGB1/2 F: ACACCCCTCACTCCCTGTC, CGB1/2 R: ATATCTTCCGCAAGCACTGG i/lub - parę starterów specyficznych względem sekwencji mRNA katalitycznej podjednostki enzymu telomerazy hTERT: startery o sekwencji TERT F: CTTCATCCCCAAGCCTGAC, TERT R: GCCGATTGTGAACATGGACT lub startery o sekwencji TERT F: CGCTCGGCCCTCTTTTC, TERT R: CACCCTCGAGGTGAGACG.

Description

Przedmiotem wynalazku jest zestaw diagnostyczny do identyfikacji komórek nowotworowych oraz jego zastosowanie w medycynie, zwłaszcza podczas przeprowadzania wczesnej diagnostyki procesów nowotworzenia, przerzutowania i monitorowania leczenia.
Dotychczas głównym problemem profilaktyki i leczenia nowotworów pozostaje brak możliwości wystarczająco wczesnego wykrywania choroby - żadna z dotychczasowych strategii nie jest wystarczająco specyficzna i czuła. Stąd zaistniała potrzeba opracowania nowego zestawu diagnostycznego obejmującego najbardziej charakterystyczne i unikatowe, a jednocześnie uniwersalne markery choroby nowotworowej w postaci podjednostki beta hormonu gonadotropiny kosmówkowej oraz podjednostki enzymu telomerazy.
Podjednostka beta ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej (hCGe) oraz katalityczna podjednostka enzymu telomerazy (hTERT) są markerami, które charakteryzują zarówno guzy pierwotne, przerzuty jak i komórki nowotworowe krążące we krwi pacjenta (CTC - ang. Circulating Tumor Cells). Stąd analiza obu jednocześnie może znaleźć zastosowanie w diagnostyce (pozwala na detekcję komórek nowotworowych z guzów, przerzutów oraz CTC), ocenie odpowiedzi na leczenie, długoterminowej obserwacji po leczeniu i prognozowaniu ewentualnej wznowy.
Ludzka gonadotropina kosmówkowa (hCG) jest hormonem zbudowanym z dwóch podjednostek: α (hCGa) i β (hCGe), produkowanym przez komórki łożyska.
Oprócz łożyska, rozrostów i nowotworów trofoblastu także szereg guzów różnego pochodzenia charakteryzuje zdolność wydzielania hCG, zwłaszcza jej podjednostki beta. Jej obecność wyróżnia przerzuty nowotworowe, w tym komórki raka krążące we krwi, oraz koreluje ze słabą odpowiedzią na leczenie i złym rokowaniem.
Przyjmuje się, że podstawowym efektem biologicznym działania hCGe w nowotworach jest zablokowanie procesów apoptozy, czyli programowanej śmierci komórek, co promuje ich wzrost i pozwala na rozwój guza. Wolna podjednostka beta przyczynia się także do neoangiogenezy tj. tworzenia nowych naczyń krwionośnych guza oraz prowadzi do uniewrażliwienia układu immunologicznego pacjenta na komórki nowotworowe. Ekspresja hCGe w komórkach nowotworowych promuje również tranzycję epitelialno-mezenchymalną (EMT - epithelialmesenchymal transition). Stransformowane komórki nabywają zdolności do inwazji i tworzenia przerzutów w odległych narządach. W trakcie EMT często dochodzi także do nabywania chemio- i radiooporności przez komórki odpowiedzialne za tworzenie przerzutów, co drastycznie zmniejsza szansę pacjentów na skorzystanie ze skutecznej terapii onkologicznej. Wolna podjednostka β ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej jest także biomarkerem komórek raka krążących we krwi pacjentów - CTC. Obecność wolnej podjednostki beta ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej we krwi lub moczu wykrywana jest wyłącznie w ciąży i w chorobie nowotworowej.
Biosynteza hCG wymaga ekspresji genów kodujących podjednostkę alfa i beta. Podjednostka alfa kodowana jest przez pojedynczy gen CGA, a podjednostka beta kodowana jest przez sześć allelicznych genów (CGB3, CGB5, CGB6, CGB7, CGB8, CGB9) znajdujących się w klastrze LHB/CGB. Ponadto, w rejonie LHB/CGB znajdują się jeszcze dwa geny CGB1 i CGB2, do niedawna uważane za pseudogeny. Produkty białkowe tych genów nie zostały dotychczas zidentyfikowane, jednak transkrypty CGB1 i CGB2 odnaleziono w tkankach prawidłowych takich jak: łożysko, jądra i przysadka mózgowa oraz zmienionych nowotworowo; do tej pory potwierdzono ich obecność w komórkach raka sutka, pęcherza moczowego oraz rakach jajnika.
Geny CGB cechuje różny poziom ekspresji. Najbardziej aktywnym transkrypcyjnie genem jest CGB5, z ekspresją wyższą nawet dwadzieścia razy, w porównaniu do pozostałych genów CGB. Poziom ekspresji CGB1 i CGB2 jest niższy niż ekspresja pozostałych genów aż tysiąc razy.
Mimo, że poziom ekspresji CGB1 i CGB2 jest nieproporcjonalnie niższy w porównaniu do całkowitej ekspresji pozostałych CGB, wykazano, że transkrypty tych genów odgrywają istotną rolę w procesie inwazji kosmówki i implantacji zarodka.
Związek ekspresji hCGe z nowotworzeniem jest dobrze udokumentowany, jednak dane literaturowe dotyczą najbardziej aktywnych transkrypcyjnie genów, takich jak CGB3, CGB5 i CGB8. Tymczasem najnowsze badania pokazują, że cząsteczką indukującą wzrost guza i zwiększającą potencjał metastatyczny komórek nowotworowych o działaniu autokrynnym może być produkt białkowy genów CGB1 i CGB2. O ile ekspresja CGB3-9 wydaje się cechować wszystkie rodzaje nowotworów, to aktywność transkrypcyjna CGB1-2 wyróżnia prawdopodobnie raki o podwyższonym potencjale metastatycznym.
Specyficzne zahamowanie ekspresji genów CGB1 i 2 in vitro jest znacznie bardziej skuteczne w zmniejszaniu liczby komórek rakowych niż wyciszanie pozostałych genów CGB. Dlatego to te geny można uznać za kluczowe dla rozwoju raka.
hTERT to katalityczna podjednostka enzymu telomerazy, której ekspresja jest charakterystyczna dla komórek nowotworowych. Ekspresja i aktywność telomerazy korelują z potencjałem proliferacyjnym oraz migracyjnym i adhezyjnym komórek nowotworowych.
Telomeraza jest złożonym kompleksem rybonukleoproteinowym utworzonym m.in. przez dwie kluczowe podjednostki - podjednostkę katalityczną (hTERT, ang. human telomerase reverse transcriptase) wykazującą aktywność odwrotnej transkryptazy oraz cząsteczkę RNA (hTR, z ang. human telomerase RNA) stanowiącą matrycę dla syntezy telomerów.
Telomeraza w ludzkich komórkach odpowiedzialna jest za syntezę wielokrotnie powtórzonej sześcionukleotydowej sekwencji telomerowej 5’-TTAGGG-3’ znajdującej się na końcach chromosomów. Enzym zapobiega tym samym skracaniu telomerów po każdym podziale komórkowym (wynik „problemu replikacji końca”); jego aktywność warunkuje zdolność do przeprowadzania podziałów komórkowych.
Ekspresja i aktywność telomerazy są ograniczone do bardzo niewielkiej liczby prawidłowych komórek człowieka (identyfikowana jest na niskim poziomie ekspresji w komórkach płodu w okresie rozwoju zarodkowego oraz w komórkach macierzystych: bazalnej warstwy naskórka, hematopoetycznych, krypt jelitowych oraz linii płciowej). Co najważniejsze jednak, telomeraza wykrywana jest w ponad 85% wszystkich nowotworów, wliczając w to komórki rakowe guza oraz komórki krążące we krwi.
Jak wykazano, aktywność telomerazy jest warunkowana między innymi przez obecność kluczowej podjednostki białkowej hTERT, stąd może ona stanowić dobry marker diagnostyczny, jak również potencjalny punkt uchwytu dla terapii przeciwnowotworowych.
W komórkach nowotworowych do znaczącego wzrostu biosyntezy telomerazy dochodzi dopiero po rozpoczęciu niekontrolowanych podziałów, już po znacznej utracie podjednostek telomeru. Z tego względu w komórkach nowotworowych, które w trakcie transformacji przeszły już szereg podziałów komórkowych, długość telomerów jest mniejsza niż w komórkach prawidłowych. Z kolei sam fakt skrócenia zakończeń chromosomów może powodować zmniejszenie stabilności genetycznej DNA, co może być kolejnym czynnikiem zaburzającym homeostazę komórki i prowadzącym do dalszych patologicznych zmian. Przywrócenie ekspresji i aktywności enzymatycznej telomerazy jest uznawane za krytyczny moment w procesie nowotworzenia. Zaktywowany kompleks telomerazy stabilizuje końce chromosomów, pozwalając tym samym na nabycie przez komórki nieśmiertelności (w kontekście nieograniczonej liczby podziałów). Samo unieśmiertelnienie nie oznacza fenotypu nowotworowego, jednakże sprzyja uzyskaniu przez komórkę cech nowotworowych. Wykrycie ekspresji i/lub aktywności telomerazy są możliwe już na wczesnym etapie rozwoju choroby nowotworowej, ale mogą również stanowić marker zmian resztkowych u chorych poddanych chemioterapii, dzięki czemu informują o skuteczności prowadzonego leczenia. Ekspresja katalitycznej podjednostki telomerazy hTERT jest także uznawana za charakterystyczną cechę komórek CTC.
Mimo odmienności nowotworów, a nawet różnorodności komórek w obrębie jednego guza, wszystkie typy raków aktywują określone geny, które zapewniają im przetrwanie, wzrost i rozprzestrzenianie się. Takimi genami są geny kodujące podjednostkę beta ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej i katalitycznej podjednostki telomerazy - CGB i hTERT. Dlatego zestaw diagnostyczny umożliwiający analizę ekspresji tych genów w komórkach nowotworowych, ze szczególnym uwzględnieniem CTC, stanowi podstawę przedmiotu wynalazku.
CTC to komórki nowotworowe, które odrywają się od pierwotnego ogniska już na wczesnych etapach tworzenia guza, a po przedostaniu się do krwioobiegu są przenoszone do odległych narządów. Wykazano, że nawet guzy bez klinicznie zaznaczonej metastazy uwalniają do krwiobiegu komórki nowotworowe.
To właśnie rozsiew komórek nowotworowych jest uważany za jedną z ważniejszych przyczyn postępu choroby, niepowodzeń leczenia i, w konsekwencji, zgonów pacjentów. Proces metastazy związany jest z pozyskiwaniem przez komórki nowotworowe zdolności do funkcjonowania niezależenie od masy guza. Uważa się, że komórkami posiadającymi potencjał do zasiedlania nowych nisz w organizmie są inwazyjne komórki nowotworowe krążące we krwi. Stąd przyjmuje się, że ich obecność jest wyznacznikiem zaawansowania choroby i rozsiewu nowotworu z ogniska pierwotnego do odległych narządów. Stwierdzenie obecności CTC ma zatem istotne znaczenie w diagnostyce choroby nowotworowej, ocenie stanu jej zaawansowania i ewentualnego rozsiewu komórek nowotworowych, dzięki czemu może pomóc w doborze odpowiedniej terapii. Identyfikacja CTC stwarza także możliwość monitorowania i modyfikacji prowadzonej terapii. Co równie istotne, monitoring taki może być prowadzony w mało inwazyjny dla pacjenta sposób - pozwala na identyfikację CTC wyizolowanych z krwi obwodowej pobranej od pacjenta. Dodatkowo, dzięki zaangażowaniu nowoczesnej metody opartej na łańcuchowej reakcji polimerazowej prezentowany wynalazek charakteryzuje się bardzo dużą czułością i wiarygodnością uzyskiwanych wyników.
Szacunkowo, już na wczesnych etapach nowotworzenia, z jednego grama tkanki nowotworowej do układu krążenia wydostaje się codziennie od 10 000 do 3 000 000 CTC. Zważywszy na fakt, że większość komórek CTC ginie, ich ostateczna liczba jest niewielka - jest to około 1-10 CTC na 1 ml pełnej krwi. Mimo to identyfikacja CTC jest możliwa, dzięki zastosowaniu metody qPCR, zapewniającej zwielokrotnienie sygnału pochodzącego z pojedynczej komórki. Sygnał ten stanowi ekspresja swoistych genów aktywnych w CTC.
Wykorzystanie markerów umożliwiających identyfikację CTC może stanowić przełom w diagnostyce nowotworów oraz monitorowaniu przerzutów nowotworowych i skuteczności terapii.
Opracowany nowy zestaw diagnostyczny pozwala na wczesną diagnostykę nowotworów, ze szczególnym uwzględnieniem procesów przerzutowania, opartą na identyfikacji CTC na podstawie badania aktywności genów CGB i hTERT.
Analiza ekspresji genów kodujących hCGe prowadzona jest dla dwóch grup genów CGB: (i) CGB3-9, najaktywniejszych transkrypcyjnie we wszystkich typach nowotworów oraz (ii) CGB 1-2, aktywnych w mniejszym odsetku guzów, charakteryzujących się podwyższonym potencjałem metastatycznym. Rozdzielenie badania tych grup genów może odegrać znaczącą rolę w diagnostyce raka, różnicując guzy agresywne od nieagresywnych.
Z europejskiego zgłoszenia patentowego nr EP2994540 (A2) znany jest sposób badania raka, który obejmuje wykrywanie i/lub pomiar produktu ekspresji genu CGB2 i/lub CGB1. Metody te mają zastosowanie do badań przesiewowych, diagnozowania lub monitorowania innych powszechnych nowotworów nabłonka, w tym raka pęcherza, piersi, szyjki macicy, okrężnicy, endometrium, nerek, płuc (w tym raka drobnokomórkowego płuca - SCLC), nosa/gardła, jamy ustnej/twarzy, jajnika, prostaty, trzustki, pochwy i sromu. Ujawniono także sposoby leczenia nowotworów poprzez obniżenie poziomu ekspresji CGB2 i CGB1 lub ich produktów.
W europejskim zgłoszeniu patentowym nr EP1108789 (A2) ujawniono natomiast metodę ilościowego wyrażania ekspresji mRNA, kodującego aktywne białko hTERT, które jest przydatne do diagnozowania i prognozowania raka.
Z kolejnego europejskiego zgłoszenia patentowego nr EP0687898 (A2) znany jest immunocytochemiczny test analityczny dla beta hCG w ustalonej próbce tkanek lub komórek, który jednolicie i niezawodnie wykazuje obecność hCG beta we wszelkiego rodzaju komórkach nowotworowych.
Z polskiego opisu patentowego nr PL233963 (B1) znany jest zestaw starterów i sond do wykrywania mutacji w genie BRCA1 oraz zastosowanie starterów i sond do genotypowania mutacji genu BRCA1 oraz wykrywania raka sutka.
Polskie zgłoszenie patentowe nr P401271 (A1) ujawnia sposoby i produkty znajdujące zastosowanie w diagnozowaniu genetycznej predyspozycji do chorób u ludzi i polega na ocenie czy w materiale biologicznym badanej osoby występuje specyficzna zmiana konstytucyjna w genie NBS1. Wynalazek obejmuje nową metodę diagnostyczną wykrywającą predyspozycję do agresywnego raka prostaty o złym rokowaniu oraz sposób i zestaw diagnostyczny dotyczący opracowania nowego markera złego rokowania dla raka stercza.
W kolejnym polskim zgłoszeniu patentowym nr P405648 (A1) ujawniono sposób diagnozowania raka wątroby i różnicowania raka wątrobowokomórkowego od przerzutów raka z jelita grubego do wątroby u pacjenta. Sposób obejmuje: - dostarczanie pochodzącej od pacjenta próbki biologicznej, - określenie ilości jednego lub więcej miRNA wybranego z grupy obejmującej miR-146a-5p, miR-125b-5p, miR-141-3p, miR-1269a w próbce biologicznej, - porównanie ekspresji miRNA z poziomem ekspresji miRNA otrzymywanym w grupie kontrolnej, w którym to sposobie u pacjenta diagnozuje się wystąpienie nowotworu i różnicuje jego podłoże, jeśli poziom ekspresji miRNA w próbce biologicznej jest zmieniony względem poziomu ekspresji obserwowanej w próbkach płynów biologicznych pochodzących od zdrowych pacjentów. Wynalazek dotyczy również zastosowania markera miRNA oraz zestawu zawierającego markery.
Z polskiego opisu patentowego nr PL234915 (B1) znany jest sposób wykrywania zwiększonego ryzyka zachorowania na raka nerki oraz zastosowania genotypowych wariantów genów GRHL1 i/lub GRHL2 i/lub GRHL3.
Pomimo istnienia w stanie techniki kompozycji czy testów diagnostycznych do identyfikacji komórek nowotworowych (w tym CTC), obejmujących zastosowanie analizy jednego genu czy markera nowotworowego celem wynalazku było opracowanie zestawu diagnostycznego, który łączyłby markery nowotworowe: hCGe i hTERT. Jednoczesna analiza markerów może znaleźć zastosowanie w diagnostyce, ocenie odpowiedzi na leczenie, długoterminowej obserwacji po leczeniu i prognozowaniu ewentualnej wznowy.
Nieoczekiwanie okazało się, że opracowany nowy zestaw diagnostyczny rozwiązuje następujące problemy techniczne:
1. niskiej wykrywalności CTC. Znane ze stanu techniki testy bazujące na wykrywaniu pojedynczych markerów nie pozwalają na identyfikację wszystkich komórek nowotworowych. Nie wszystkie komórki nowotworowe, przez wzgląd na dynamikę ich zmian morfologicznych i molekularnych, charakteryzuje ekspresja każdego z genów uważanych za markery nowotworowe, włączając w to CGB i hTERT. Dlatego zestaw diagnostyczny łączący dwa markery istotnie zwiększa szanse wykrycia komórek raka.
2. niskiej czułości. Zastosowanie metody ilościowego PCR, specyficznych starterów i sond umożliwiających wykrycie ekspresji badanych markerów na poziomie transkryptu znacznie podnosi czułość metody (w porównaniu do analiz opartych na pomiarach białka) i umożliwia wykrycie pojedynczej komórki nowotworowej.
3. niskiej specyficzności. Aktywność CGB i hTERT jest konieczna dla rozwoju nowotworu, ale poszczególne geny kontrolują odmienne funkcje komórkowe: CGB - blokowanie apoptozy, neoangiogenezę, utratę adhezyjności i migrację, unikanie rozpoznania przez komórki układu immunologicznego; hTERT - nieśmiertelność, tj. nieograniczoną proliferację, adhezyjność i migrację. Stąd panel obejmujący analizę aktywności genów CGB i hTERT pokrywa pełne spektrum procesów charakteryzujących nowotworzenie, na różnych etapach jego rozwoju.
4. braku uniwersalnych markerów nowotworzenia. Ze względu na fakt, że hCGe i hTERT kontrolują rozwój i metastazę różnych raków, niezależnie od pochodzenia, proponowana kompozycja umożliwia diagnostykę wszystkich typów złośliwych nowotworów.
5. braku możliwości przewidzenia przebiegu choroby i efektywności terapii. Proponowany zestaw diagnostyczny, dzięki badaniu obecności transkryptów genów CGB1-2, wyróżniającej raki o zwiększonym potencjale metastatycznym, pozwala na wyodrębnienie raków agresywnych, co z kolei wpłynie na dobór odpowiedniej, skutecznej terapii (zastosowanie leczenia bardziej agresywnego lub eksperymentalnego).
Istotę wynalazku stanowi zestaw diagnostyczny do wykrywania krążących komórek nowotworowych (CTC) charakteryzujący się tym, że zawiera: parę starterów specyficznych względem genów CGB3/CGB9, CGB5, CGB6/CGB7 i CGB8 (CGB3-9): startery o sekwencji CGB3-9 F nr 1, CGB3-9 R nr 2 lub startery o sekwencji CGB3-9 F nr 3, CGB3-9 R nr 4 oraz
- parę starterów specyficznych względem genów CGB1 i CGB2: startery o sekwencji CGB 1/2 F nr 5, CGB 1/2 R nr 6 lub startery o sekwencji CGB 1/2 F nr 7, CGB 1/2 R nr 8
- parę starterów specyficznych względem sekwencji mRNA katalitycznej podjednostki enzymu telomerazy hTERT: startery o sekwencji TERT F nr 9, TERT R nr 10 lub startery o sekwencji TERT F nr 11, TERT R nr 12.
Korzystnie, gdy zestaw dodatkowo zawiera sondę CGB1/2 o sekwencji nr 13 lub sondę CGB3-9 o sekwencji nr 14 lub sondę hTERT o sekwencji nr 15.
Korzystnie, gdy zestaw zawiera dodatkowo barwnik fluoroscencyjny wybarwiający dwuniciowy DNA.
Przedmiotem wynalazku jest również zastosowanie zestawu diagnostycznego określonego powyżej do diagnozowania in vitro nowotworów u ludzi poprzez identyfikację komórek CTC. Korzystnie diagnozowanie obejmuje nowotwory wybrane z grupy: rak piersi, rak jajnika, rak prostaty, rak jelita grubego, rak płuca.
Otrzymany według wynalazku zestaw diagnostyczny do identyfikacji komórek nowotworowych cechuje się: (i) wysoką wykrywalnością CTC - zważywszy na fakt, iż potwierdzenie ekspresji jednego z badanych genów jest już wskazówką obecności CTC oraz, że nie wszystkie CTC charakteryzuje ekspresja CGB i hTERT jednocześnie, to zestaw diagnostyczny łączący oba markery pozwala na istotne zwiększenie wykrywalności tych komórek we krwi pacjenta; (ii) wysoką czułością wynikającą z zastosowania metody ilościowego PCR, specyficznych sond i starterów, co umożliwia wykrycie badanych markerów na poziomie pojedynczej komórki nowotworowej; (iii) wysoką specyficznością wynikającą z faktu, że poszczególne markery kontrolują odmienne funkcje komórkowe niezbędne dla wzrostu nowotworu na różnych etapach jego rozwoju; (iv) uniwersalnością, jako że hCGe i hTERT kontrolują rozwój i metastazę różnych raków, niezależnie od pochodzenia, zatem proponowana kompozycja umożliwia wykrywanie i diagnostykę wszystkich typów nowotworów; (v) możliwością wyodrębnienia raków o zwiększonym potencjale metastatycznym, co wpłynie na dobór odpowiedniej terapii.
Proponowany zestaw diagnostyczny daje również możliwość wczesnego rozpoznania nowotworu w sposób szybki, precyzyjny, czuły i małoinwazyjny; badanie opiera się na molekularnej analizie ekspresji genów metodą ilościowego PCR w CTC wyizolowanych z krwi obwodowej pobranej od pacjenta.
Należy podkreślić, że nie ma w diagnostyce równie uniwersalnego, specyficznego i czułego zestawu jak prezentowany wynalazek, który pozwala na bardzo wczesne wykrycie ewentualnych zmian nowotworowych w organizmie pacjenta. Ponieważ hCGe i hTERT biorą udział w kontroli szeregu procesów na różnych etapach rozwoju nowotworu, stanowią one zarówno marker rozwijającej się choroby nowotworowej, jak i przerzutów, zmian resztkowych czy wznowy u chorych poddanych chemioterapii/radioterapii, dzięki czemu informują o skuteczności prowadzonego leczenia.
Dzięki zastosowaniu technik opartych o amplifikację, tj. powielenie nawet niewielkich ilości materiału biologicznego (PCR), wynalazek pozwala na analizę obecności komórek raka krążących we krwi z o wiele większą czułością niż dotychczas stosowane metody, wliczając w to cytometrię przepływową czy testy typu ELISA, które opierają się na wykrywaniu białkowych produktów ekspresji genów, a zatem wymagające znacznie większych ilości materiału badawczego. Ponadto, wymienione powyżej metody opierają się przede wszystkim na wykrywaniu obecności markerów komórek nabłonkowych; tymczasem komórki nowotworowe odrywające się od guza, aby móc zasiedlić nową niszę, przechodzą proces tranzycji epitelialno-mezenchymalnej (EMT), co wiąże się z utratą białek epitelialnych, na których obecności zasadza się zdecydowana większość testów mających na celu wykrywanie CTC.
Przedmiot wynalazku przedstawiony jest bliżej w przykładach wykonania i na podstawie przeprowadzanych badań jednocześnie nie ograniczając jego zakresu oraz w wykazie sekwencji, w którym:
sekwencje 16, 17 i 18 przedstawiają sekwencje mRNA genów CGB1 i CGB2 (dwa warianty transkrypcyjne genu) kodujących podjednostkę beta ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej zdeponowane w bazie danych NCBI (ang. National Center for Biotechnology Information) oraz sekwencje, do których komplementarne są startery i sonda, sekwencje 19-23 przedstawiają sekwencje mRNA genów CGB3, CGB5 CGB7 (dwa warianty transkrypcyjne genu) i CGB8 kodujących podjednostkę beta ludzkiej gonadotropiny kosmówkowej zdeponowane w bazie danych NCBI oraz pozycje starterów i sond, sekwencja 24 przedstawia sekwencję mRNA genu hTERT kodującego katalityczną podjednostkę enzymu telomerazy zdeponowaną w bazie danych NCBI oraz sekwencje, do których komplementarne są pary starterów i sonda.
Metodyka
Zestaw diagnostyczny według wynalazku opiera się na wykrywaniu przedstawionych poniżej markerów w jednej próbie za pomocą zestawu specyficznych starterów (i sond hydrolizujących) wykrywających ekspresję następujących genów: CGB1/CGB2 i CGB3-CGB9 i hTERT.
1. Identyfikacja transkryptów genów CGB1 i CGB2
Starter 1 CGB 1/2 F - sekwencja nr5
Starter 1 CGB 1/2 R - sekwencja nr6
LUB para starterów:
Starter 2 CGB 1/2 F - sekwencja nr7
Starter 2 CGB 1/2 R - sekwencja nr8
Sonda CGB1/2 - sekwencja nr 13
Obie pary starterów i sonda zostały zaprojektowane w sposób pozwalający na jednoczesne wykrycie mRNA obu genów, tj. CGB1 i CGB2. Dodatkowo ich specyfika umożliwia identyfikację obydwu znanych wariantów transkrypcyjnych genu CGB2.
2. Identyfikacja transkryptów genów CGB3-CGB9
Starter 1 CGB3-9 F - sekwencja nr 1
Starter 1 CGB3-9 R - sekwencja nr 2
LUB para starterów:
Starter 2 CGB3-9 F - sekwencja nr 3
Starter 2 CGB3-9 R - sekwencja nr 4
Sonda CGB3-9 R - sekwencja nr 14
Oznaczenie zdegenerowanych nukleotydów: S-G/C; Y-C/T (część starterów i sonda mają G lub C oraz C lub T w konkretnej lokalizacji podczas syntezy, tak by umożliwić detekcję obydwu wariantów transkrypcyjnych genu).
Startery zostały zaprojektowane w sposób pozwalający na jednoczesne wykrycie mRNA genów CGB3, CGB5 CGB7 (dwa warianty transkrypcyjne genu) i CGB8.
3. Identyfikacja transkryptu hTERT
Starter 1 TERT F - sekwencja nr 9
Starter 1 TERT R - sekwencja nr 10
LUB para starterów
Starter 2 TERT F - sekwencja nr 11
Starter 2 TERT R - sekwencja nr 12
Sonda: TERT P - sekwencja nr 15
Sekwencje par starterów i oligonukleotydowych sond dla poszczególnych markerów stanowiących zestaw służący do detekcji komórek nowotworowych zostały opracowane tak, by optymalne warunki reakcji były zbliżone do standardowo stosowanych w reakcji qPCR (PCR w czasie rzeczywistym).
Reakcja qPCR wykorzystuje polimerazę o aktywności egzonukleazy 5’ do 3’, co umożliwia detekcję sondy hydrolizującej.
Preferowaną metodą jest identyfikacja transkryptów za pomocą sondy, która hybrydyzuje do specyficznej sekwencji cDNA komplementarnej do mRNA badanego genu. Sonda od końca 5’ wyznakowana jest odpowiednią cząsteczką fluorescencyjną, z kolei od końca 3’ cząsteczką wygaszacza. Fluorochrom stanowi cząsteczka FAM 6-karboksyfluoresceina, cząsteczkę wygaszacza zaś BBQ BlackBerry Quencher.
Alternatywnym rozwiązaniem jest stosowanie wymienionych par starterów do amplifikacji fragmentów transkryptów badanych genów w obecności barwnika fluorescencyjnego, który wiąże dwuniciowe struktury DNA, np. SybrGreen.
Poziom ekspresji badanych genów może być określany względem genu referencyjnego i/lub krzywej standardowej w sposób odpowiednio względny lub bezwzględny.
W celu amplifikacji DNA badanego markera reakcję PCR przeprowadzono w termocyklerach zapewniających odczyt fluorescencji.
Profil termiczny reakcji qPCR:
I aktywacja polimerazy - optymalnie: 95°C, 5 - 15 min
II 45 cykli:
1. 94 - 95°C, 10 - 20 s
2. 55 - 65°C, 10 - 30 s*
3. 72°C, 1 - 10 s**
III 4°C, 10 s lub bez ograniczenia; aż do schłodzenia próbek * zależne od zestawu odczynników i sekwencji zastosowanych starterów * * na tym etapie następuje pomiar fluorescencji
Ocena ekspresji badanego genu polega na wykryciu w mieszaninie reakcyjnej jego unikatowej sekwencji reprezentowanej przez specyficzny transkrypt czyli mRNA.
Aby prawidłowo ocenić ekspresję genu, najpierw należy przeprowadzić reakcję odwrotnej transkrypcji, w wyniku której na matrycy mRNA uzyskuje się tzw. DNA komplementarny, cDNA (ang. complementary DNA). Ocena obecności i ilości tego cDNA jest miarą ekspresji badanego genu.
Metoda qPCR pozwala obliczyć początkową liczbę kopii badanego cDNA. Reakcja przebiega w ten sposób, że z każdym kolejnym cyklem ilość powstającego specyficznego produktu (liczba kopii cDNA) ulega podwojeniu. Wynik testu jest prezentowany za pomocą oprogramowania komputerowego jako wartość Cq (ang. quantification cycle). Przyrost liczby kopii produktu jest monitorowany, ale dopiero od momentu osiągnięcia poziomu detekcji, czyli momentu, w którym, w trakcie powielania cDNA, poziom fluorescencji znacznika kwasu nukleinowego przekroczy próg nazywany Cq. Im wcześniej poziom fluorescencji wzrasta do poziomu, który umożliwia wiarygodny odczyt, tym większa jest początkowa liczba
PL 244526 Β1 kopii badanej sekwencji w próbce na początku reakcji. Tym samym, im mniejsza wartość Cq, tym wyższy poziom ekspresji badanego genu. Za próbę o zerowej ekspresji (Cq = 0 - brak ekspresji badanego genu) uznaje się taką, w której amplifikacja specyficznego cDNA nie zachodzi (poziom fluorescencji nie przekracza poziomu progowego) lub zachodzi dopiero po 40. cyklu reakcji qPCR.
Na bazie tego prostego algorytmu oznaczane są różnice w poziomie ekspresji poszczególnych genów między badanymi próbkami (Tab. 1).
Tabela 1. Ocena wyników reakcji qPCR
Amplifikacja Wynik Ekspresja genu
Cq < 39. cyklu pozytywny stwierdzona*
Cq = 40. Cykl wątpliwy wątpliwa
Cq > 40. Cyklu negatywny Brak
brak fluorescencji (Cq = 0) negatywny Brak
* im niższa wartość Cq, tym wyższa ekspresja genu
Przeprowadzono szereg reakcji sprawdzających poprawność działania poszczególnych par starterów i sond molekularnych pozwalających na identyfikację ekspresji genów CGB i hTERT w ludzkich tkankach. W każdym z przeprowadzonych eksperymentów matrycę do reakcji qPCR stanowił cDNA. cDNA otrzymano według standardowego protokołu reakcji syntezy, wykorzystując RNA wyizolowany z badanej tkanki. W każdym eksperymencie zastosowano kontrolę negatywną, którą stanowiła prawidłowa tkanka (pobierana podczas operacji wykonywanych z przyczyn innych niż złośliwy nowotwór). Jedynie w przykładzie 1 w kontroli negatywnej matrycę zastąpiono wodą.
Jak opisano w przykładach wykonania, wykrywanie transkryptów może się odbywać za pomocą różnych metod: z zastosowaniem sond hydrolizujących lub z wykorzystaniem fluorescencyjnych barwników DNA (np. Sybr Green).
Ocena ekspresji genów CGB (CGB1-2 i CGB3-9) oraz hTERT opierała się na wartości Cq. Im niższa wartość Cq, tym wyższa ekspresja danego genu.
W przedstawionych poniżej przykładach użycia wynalazku każdy wynik Cq < 40. cyklu świadczy o ekspresji badanego genu. Cq > 40. cyklu lub Cq = 0 jednoznacznie świadczy o braku ekspresji.
Przykład 1
Celem badania było stwierdzenie, czy za pomocą opracowanego zestawu diagnostycznego można wykryć mRNA genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w tkance guza piersi. Przygotowano standardową mieszaninę reakcyjną dla metody qPCR; dla oceny ekspresji badanych genów zastosowano startery i sondy, które przedstawiono w Tab. 2.
Tabela 2. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCRw przykładzie 1
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera antysensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB 1-2 Starter 1 CGB1/2 F sekwencja nr 5 Starter 1 CGB1/2 R sekwencja nr 6 Sonda CGB 1/2 sekwencja nr 13
CGB3-9 Starter 1 CGB3-9 F sekwencja nr 1 Starter 1 CGB3-9 R sekwencja nr 2 Sonda CGB3-9 sekwencja nr 14
hTERT Starter 1 TERT F sekwencja nr 9 Starter 1 TERTR sekwencja nr 10 Sonda hTERT sekwencja nr 15
Matrycę (czyli cDNA) do reakcji qPCR otrzymano wykorzystując całkowite RNA wyizolowane z tkanki złośliwego guza piersi. Kontrola negatywna reakcji zawierała wodę dodaną w miejsce matrycy. W wyniku przeprowadzonych reakcji potwierdzono aktywność genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w tkance guza piersi - wyniki przedstawiono w Tab. 3.
PL 244526 Β1
Tabela 3. Wyniki reakcji qPCR potwierdzające ekspresję genów markerowych. Badanie przeprowadzono na tkance raka piersi
wartość Cq
ekspresja genu badana tkanka: guz piersi kontrola negatywna - H2O
CGB1-2 29 0
CGB3-9 27 0
hTERT 29 0
Otrzymane wartości Cq potwierdzają obecność komórek nowotworowych, reprezentowanych przez transkrypty poszczególnych badanych genów w badanej tkance i mogą świadczyć o zwiększonym potencjale metastatycznym komórek guza piersi. Wartość Cq równa zero, która oznacza brak ekspresji badanych genów, w przypadku kontroli negatywnej, gdzie matrycę (cDNA) zastąpiła woda świadczy o prawidłowo przeprowadzonym eksperymencie.
Przykład 2
Celem badania było stwierdzenie, czy wykorzystując alternatywne warianty starterów można potwierdzić aktywność genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w tkance guza piersi. Postępowano tak jak w przykładzie 1 z tą różnicą, że użyto innego zestawu starterów (Tab. 4.); matrycą w reakcji qPCR, tak jak w przykładzie 1, było cDNA z tkanki złośliwego guza piersi.
Tabela 4. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCRw przykładzie 2
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera antysensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB1-2 Starter 2 CGB1/2 F sekwencja ni1 7 Starter 2 CGB 1/2 R sekwencja nr 8 Sonda CGB 1/2 sekwencja nr 13
CGB3-9 Starter 2 CGB3-9 F sekwencja nr 3 Starter 2 CGB 3-9 R sekwencja nr 4 Sonda CGB3-9 sekwencja nr 14
hTERT Starter 2 TERT F sekwencja nr 11 Starter 2 TERT R sekwencja nr 12 Sonda hTERT sekwencja nr 15
W wyniku reakcji qPCR przeprowadzonych z wykorzystaniem alternatywnego zestawu starterów uzyskano wyniki potwierdzające aktywność transkrypcyjną genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w tkance guza piersi (Tab. 5) na takim samym poziomie dla poszczególnych genów jak w przykładzie 1 (czego dowodzą wartości Cq). Pokazuje to, że oba zestawy starterów dla każdego z genów zostały zaprojektowane prawidłowo i wykazują ten sam poziom ekspresji dla poszczególnych genów.
Tabela 5. Wyniki reakcji qPCR. Badanie przeprowadzono na tkance guza piersi
wartość Cq
ekspresja genu badana tkanka: guz piersi kontrola negatywna: H2O
CGB 1-2 29 0
CGB3-9 27 0
hTERT 29 0
Przykład 3
Celem badania było stwierdzenie, czy za pomocą opracowanego zestawu diagnostycznego można potwierdzić aktywność transkrypcyjną genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w tkance guza jajnika. Zastosowano skład zestawu diagnostycznego podany w Tab. 6. Badaną próbę stanowiła tkanka raka jajnika. Kontrolę negatywną stanowiła tkanka jajnika niezmienionego nowotworowo.
PL 244526 Β1
Tabela 6. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCRw przykładzie 3
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera antysensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB1-2 Starter 2 CGB 1/2 F sekwencja nr 7 Starter 2 CGB 1/2 R sekwencja nr 8 Sonda CGB 1/2 sekwencja nr 13
CGB3-9 Starter 1 CGB3-9 F sekwencja nr 1 Starter 1 CGB3-9 R sekwencja nr 2 Sonda CGB 3-9 sekwencja nr 14
hTERT Starter 2 TERT F sekwencja nr 11 Starter 2 TERT R sekwencja nr 12 Sonda hTERT sekwencja nr 15
W wyniku przeprowadzonych reakcji uzyskano wyniki (Tab. 7) potwierdzające aktywność transkrypcyjną genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w tkance guza jajnika.
Tabela 7. Wyniki reakcji qPCR. Badanie przeprowadzono na tkance guza jajnika
wartość Cq
ekspresja genu badana tkanka: guz jajnika kontrola negatywna: zdrowy jajnik
CGB 1-2 25 0
CGB3-9 25 0
hTERT 30 0
Stosunkowo wysokie wartości Cq otrzymane w przypadku analizy ekspresji genów CGB mogą świadczyć o zwiększonej złośliwości komórek raka jajnika. Wykonany eksperyment nie wykazał aktywności transkrypcyjną genów CGB i hTERT w jajniku niewykazującym zmian nowotworowych. Wartość Cq=0 dla kontroli negatywnej, gdzie matrycę (cDNA) reakcji qPCR uzyskano z tkanki jajnika bez zmian nowotworowych potwierdza założenia wynalazku: w prawidłowej tkance jajnika brak ekspresji genów CGB i hTERT.
Przykład 4
Celem badania było stwierdzenie, czy za pomocą opracowanego zestawu diagnostycznego można potwierdzić aktywność transkrypcyjną genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w krwi pacjentki z rakiem piersi, wskazującą na obecność komórek raka krążących we krwi (CTC). Zastosowano skład zestawu diagnostycznego podany w Tab. 8. Badaną próbę stanowiły komórki krwi pacjentki z rakiem piersi. Kontrolę negatywną stanowiła krew zdrowej ochotniczki.
Tabela 8. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCRw przykładzie 4
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera antysensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB 1-2 Starter 1 CGB 1/2 F sekwencja nr 5 Starter 1 CGB 1/2 R sekwencja nr 6 Sonda CGB 1/2 sekwencja nr 13
CGB3-9 Starter 2 CGB3-9 F sekwencja nr 1 Starter 2 CGB 3-9 R sekwencja nr 2 Sonda CGB3-9 sekwencja nr 14
hTERT Starter 1 TERT F sekwencja nr 9 Starter 1 TERT R sekwencja nr 10 Sonda hTERT sekwencja nr 15
Wyniki reakcji qPCR przedstawiono w tabeli 9. Wykazują one aktywność genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz genu hTERT w krwi pacjentki z rakiem. Nie wykazano aktywności badanych genów w krwi zdrowej ochotniczki.
PL 244526 Β1
Tabela 9. Wyniki reakcji qPCR. Badanie przeprowadzono na krwi pacjentki z rakiem piersi
wartość Cq
ekspresja genu badana tkanka: krew pacjentki z rakiem piersi kontrola negatywna: krew zdrowej ochotniczki
CGB 1-2 32 0
CGB3-9 29 0
hTERT 32 0
Potwierdzenie ekspresji genów CGB i hTERT w krwi pacjentki z rakiem piersi świadczy o obecności komórek raka krążących we krwi (CTC). Obecność tych komórek jest z kolei wyznacznikiem metastazy. Wartość Cq=0 w kontroli negatywnej, gdzie matrycę (cDNA) do qPCR uzyskano z komórek krwi zdrowej ochotniczki potwierdza założenia wynalazku: w krwi zdrowej osoby brak ekspresji genów CGB i hTERT.
Przykład 5
Celem badania było stwierdzenie, czy za pomocą opracowanego zestawu diagnostycznego można potwierdzić aktywność transkrypcyjną genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w komórkach obecnych w wysięku z opłucnej pacjenta ze stwierdzonym drobnokomórkowym rakiem płuca. Zastosowano skład zestawu diagnostycznego podany w tabeli 10. Badaną próbę stanowiły komórki obecne w wysięku z opłucnej pacjenta ze stwierdzonym drobnokomórkowym rakiem płuca. Kontrolę negatywną reakcji stanowiło cDNA uzyskane na matrycy RNA wyizolowanego z komórek obecnych w wysięku z opłucnej pacjenta leczonego z przyczyn innych niż nowotwór.
Tabela 10. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCR w przykładzie 5
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera antysensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB 1-2 Starter 2 CGB 1/2 F sekwencja nr 7 Starter 2 CGB 1/2 R sekwencja nr 8 Sonda CGB 1/2 sekwencja nr 13
CGB3-9 Starter 2 CGB3-9 F sekwencja nr 3 Starter 2 CGB3-9R sekwencja nr 4 Sonda CGB3-9 sekwencja nr 14
hTERT Starter 1 TERT F sekwencja nr 9 Starter 1 TERT R sekwencja nr 10 Sonda hTERT sekwencja nr 15
W wyniku przeprowadzonych reakcji qPCR uzyskano wyniki (Tab. 11) potwierdzające aktywność transkrypcyjną genów CGB 1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w komórkach uzyskanych z wysięku z opłucnej pacjenta z rakiem płuca. W kontroli negatywnej - w komórkach obecnych w wysięku z opłucnej pacjenta leczonego z przyczyn innych niż nowotwór, geny CGB i hTERT nie były aktywne transkrypcyjnie (Tab. 11).
Tabela 11. Wyniki reakcji qPCR. Badanie przeprowadzono na komórkach izolowanych z wysięku z opłucnej pacjenta z rakiem płuca i pacjenta bez zmian nowotworowych
wartość Cq
ekspresja badana tkanka: wysięk z kontrola negatywna: wysięk z
genu opłucnej pacjenta z rakiem opłucnej pacjenta bez raka
CGB1-2 34 0
CGB3-9 28 0
hTERT 33 0
Potwierdzenie ekspresji genów CGB i hTERT w komórkach uzyskanych z wysięku z opłucnej pacj enta z rakiem płuca świadczy o obecności komórek raka w badanym płynie. Wartość Cq=0 w kon
PL 244526 Β1 troli negatywnej, gdzie matrycę (cDNA) do qPCR uzyskano z komórek pacjenta leczącego się z przyczyn innych niż nowotwór potwierdza założenia wynalazku: w wysięku pacjenta nie chorującego na nowotwór brak ekspresji genów CGB i hTERT.
Przykład 6
Celem badania było stwierdzenie, czy za pomocą opracowanego zestawu diagnostycznego można zaobserwować aktywność genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT bez użycia sond hydrolizujących. Zastosowano zestaw starterów identyczny jak przykładzie 1., różnicą było to, że do mieszanin reakcyjnych wykrywających aktywność transkrypcyjną genów CGB1-2, CGB3-9 i hTERT nie dodano odpowiednich sond (Tab. 12.); wyniki reakcji były identyfikowane dzięki zastosowaniu fluorescencyjnego barwnika Sybr Green. Badaną próbę stanowiła tkanka złośliwego guza jelita grubego. Kontrolę negatywną reakcji stanowiła tkanka jelita grubego bez zmian nowotworowych.
Tabela 12. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCRw przykładzie 6
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera antysensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB 1-2 Starter ł CGB 1/2 F sekwencja nr 5 Starter 1 CGB 1/2 R sekwencja nr 6 Sybr Green
CGB3-9 Starter 1 CGB3-9 F sekwencja nr 1 Starter 1 CGB 3-9 R sekwencja nr 2 Sybr Green
hTERT Starter 1 TERT F sekwencja nr 9 Starter 1 TERT R sekwencja nr 10 Sybr Green
W wyniku przeprowadzonych reakcji qPCR uzyskano wyniki (Tab. 13.) wskazujące na aktywność genów CGB 1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w tkance guza jelita z wykorzystaniem zestawu starterów jak w przykładzie 1., jednak z zastosowaniem barwnika Sybr Green. W prawidłowej tkance jelita grubego nie stwierdzono aktywności transkrypcyjnej badanych genów.
Tabela 13. Wyniki reakcji qPCR. Badanie przeprowadzono na tkance guza jelita grubego
wartość Cq
ekspresja genu badana tkanka: guz jelita kontrola negatywna: tkanka jelita niezmienionego nowotworowe
CGB1-2 26 0
CGB3-9 23 0
hTERT 24 0
Potwierdzenie ekspresji genów CGB i hTERT w komórkach uzyskanych z tkanki guza jelita grubego świadczy o: (i) obecności komórek nowotworowych w badanym guzie jelita oraz fakcie, że (ii) ekspresję badanych genów można zidentyfikować również bez zastosowania sondy hydrolizującej, jedynie z użyciem specyficznych starterów i barwnika DNA. Ponadto, niskie wartości Cq otrzymane w przypadku analizy ekspresji badanych genów mogą świadczyć o zaawansowaniu i/lub zwiększonej złośliwości badanego nowotworu. Wartość Cq=0 w kontroli negatywnej, gdzie matrycę (cDNA) do qPCR uzyskano z komórek jelita bez zmian nowotworowych potwierdza założenia wynalazku: w tkance prawidłowego jelita brak ekspresji genów CGB i hTERT.
Przykład 7
Celem badania było stwierdzenie, czy za pomocą opracowanego zestawu diagnostycznego można zaobserwować aktywność transkrypcyjną genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w potencjalnym przerzucie regionalnym, tj. w pachowym węźle chłonnym pacjentki z rakiem piersi. Zastosowano skład zestawu diagnostycznego podany w tabeli 14. Badaną próbkę stanowiła tkanka pachowego węzła chłonnego pacjentki z rozsianym rakiem piersi. Kontrolę negatywną stanowiła tkanka prawidłowego węzła chłonnego.
PL 244526 Β1
Tabela 14. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCRw przykładzie 7
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera anty sensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB 1-2 Starter 1 CGB1/2 F sekwencja nr 5 Starter 1 CGB 1/2 R sekwencja nr 6 Sybr Green
CGB3-9 Starter 2 CGB3-9 F sekwencja nr 3 Starter 2 CGB3-9 R sekwencja nr 4 Sybr Green
hTERT Starter 2 TERT F sekwencja nr 11 Starter 2 TERT R sekwencja nr 12 Sybr Green
W wyniku przeprowadzonych reakcji qPCR wykazano aktywność genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT w tkance węzła chłonnego pacjentki z rakiem piersi (Tab. 15). W węźle o prawidłowej budowie nie zaobserwowano aktywności badanych genów.
Tabela 15. Wyniki reakcji qPCR. Badanie przeprowadzono na tkance węzła chłonnego pacjentki z rakiem piersi
wartość Cq
ekspresja genu badana tkanka: węzeł chłonny pacjentki z rakiem piersi kontrola negatywna: węzeł chłonny od pacjentki bez raka
CGB 1-2 28 0
CGB3-9 30 0
hTERT 30 0
Potwierdzenie ekspresji genów CGB i hTERT w komórkach uzyskanych z tkanki węzła chłonnego pacjentki z rakiem piersi świadczy o inwazji komórek nowotworu i powstaniu przerzutu regionalnego. Ponadto, wyniki potwierdzają wynik badania histopatologicznego, wskazujący na zmiany nowotworowe w pachowym węźle chłonnym pacjentki z rakiem piersi. Wartość Cq w kontroli negatywnej, gdzie matrycę (cDNA) do qPCR uzyskano z komórek węzła chłonnego bez zmian nowotworowych potwierdza założenia wynalazku: w prawidłowej tkance brak ekspresji genów CGB i hTERT.
Przykład 8
Celem badania było stwierdzenie, czy rak jajnika dokonuje inwazji na sąsiadujące tkanki za pomocą opracowanego zestawu diagnostycznego wykazującego aktywność genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT. Zastosowano skład zestawu diagnostycznego podany w tabeli 16. Badaną próbę stanowiła tkanka otrzewnej pacjentki z rakiem jajnika. Kontrolę negatywną stanowiła tkanka otrzewnej uzyskana podczas operacji przeprowadzonej z przyczyn innych niż złośliwy nowotwór.
Tabela 16. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCR w przykładzie 8
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera anty sensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB 1-2 Starter 1 CGB 1/2 F sekwencja nr 5 Starter 1 CGB 1/2 R sekwencja nr 6 Sybr Green
CGB3-9 Starter 1 CGB3-9 F sekwencja nr 1 Starter 1 CGB3-9 R sekwencja nr 2 Sybr Green
hTERT Starter 2 TERT F sekwencja nr' 11 Starter 2 TERT R sekwencja nr 12 Sybr Green
Wyniki reakcji qPCR przedstawiono w tabeli 17. Wskazują one, że w tkance otrzewnej pacjentki z rakiem jajnika geny CGB (CGB1-2 i CGB3-9) są aktywne; nie wykazano natomiast aktywności genu hTERT. Tkanka otrzewnej pacjentki bez raka nie wykazywała aktywności transkrypcyjnej badanych genów.
PL 244526 Β1
Tabela 17. Wyniki reakcji qPCR. Badanie przeprowadzono na tkance otrzewnej pacjentki z rakiem jajnika
wartość Cq
ekspresja genu badana tkanka: otrzewna pacjentki z rakiem jajnika kontrola negatywna: otrzewna pacjentki bez raka
CGB 1-2 28 0
CGB3-9 30 0
hTERT 0 0
Potwierdzenie ekspresji genów CGB w komórkach uzyskanych z tkanki otrzewnej pacjentki z rakiem jajnika świadczy o inwazji komórek raka w jamie brzusznej. Brak ekspresji genu hTERT nie wpływa na informatywność otrzymanego wyniku, ponieważ - jak zaznaczono powyżej - nie wszystkie komórki raka charakteryzują się ekspresją każdego z genów specyficznych dla złośliwego nowotworu. Wartość Cq w kontroli negatywnej, gdzie matrycę (cDNA) do qPCR uzyskano z komórek otrzewnej bez zmian nowotworowych potwierdza założenia wynalazku: w prawidłowej tkance brak ekspresji genów zarówno CGB jak i hTERT.
Przykład 9
Celem badania było stwierdzenie, czy zmiana w płucach pacjenta z rakiem prostaty jest zmianą nowotworową, np. potencjalnym przerzutem odległym. Wykorzystano opracowany zestaw diagnostyczny wykazujący aktywność genów CGB1-2 i CGB3-9 oraz hTERT.
Zastosowano skład kompozycji diagnostycznej podany w tabeli 18. Badaną próbę stanowiła pobrana podczas biopsji zmieniona tkanka płuca pacjenta z rakiem prostaty. Kontrolę negatywną stanowiła tkanka płuca niezmieniona nowotworowo.
Tabela 18. Zestawienie starterów wykorzystanych w reakcji qPCR w przykładzie 9
wykrywane geny nazwa startera sensowego nazwa startera antysensowego metoda detekcji produktu qPCR
CGB 12 Starter 2 CGB 1/2 F sekwencja nr 7 Starter 2 CGB 1/2 R sekwencja nr 8 Sybr Grccn
CGB3-9 Starter 1 CGB3-9 F sekwencja nr 1 Starter 1 CGB3-9 R sekwencja nr 2 Sybr Green
hTERT Starter 1 TERT F sekwencja ni' 9 Starter 1 TERT R sekwencja nr 10 Sybr Green
Wyniki reakcji qPCR przedstawiono w tabeli 19. W zmienionej nowotworowo tkance płuca geny CGB3-9 i hTERT były aktywne transkrypcyjnie; nie wykazano aktywności transkrypcyjnej genów CGB1-2. W prawidłowej tkance nie stwierdzono ekspresji badanych genów.
Tabela 19. Wyniki reakcji qPCR. Badanie przeprowadzono na tkance przerzutu do płuca z prostaty - ogniska pierwotnego nowotworu
wartość Cq
ekspresja genu badana tkanka: bioptat płuca u pacjenta z rakiem prostaty kontrola negatywna: prawidłowa tkanka
CGB 1-2 0 0
CGB3-9 33 0
hTERT 32 0
Potwierdzenie ekspresji genów CGB3-9 i hTERT w komórkach uzyskanych podczas biopsji zmiany w płucu pacjenta z rakiem prostaty świadczy o inwazji komórek nowotworu i powstaniu przerzutu
PL 244526 Β1 odległego. Na tej podstawie można stwierdzić, że w płucu pacjenta z rakiem prostaty doszło do powstania ogniska nowotworowego; badanie histopatologiczne potwierdziło, że jest to przerzut odległy. Brak ekspresji genów CGB1-2 nie zmienia informatywności wyniku, ponieważ - jak zaznaczono powyżej nie wszystkie komórki raka charakteryzują się ekspresją każdego z genów specyficznych dla złośliwego nowotworu. Wartość Cq w kontroli negatywnej, gdzie matrycę (cDNA) do qPCR uzyskano z komórek bez zmian nowotworowych potwierdza założenia wynalazku: w prawidłowej tkance brak ekspresji genów zarówno CGB jak i hTERT.
< 110> Uniwersytet Medyczny im. Karola Marcinkowskiego w Poznaniu < 120> Zestaw diagnostyczny do wykrywania krążących komórek nowotworowych (CTC) oraz jego zastosowanie do identyfikacji komórek nowotworowych <130 P.433746 <140 P.433746 < 141> 2023-11-07 <160 24 < 170> Patentln verslon 3.5 < 210> 1 <211> 25 < 212> DNA < 213> Homo sapiens < 400> 1 gtgtcsagct cacyccagca tccta 25 <210 2 <211> 19 <212> DNA <213> Homo sapiens <400 2 agcagcccct ggaacatct <210> 3 <211> 21 <212> DNA <213> Homo sapiens <400 3 tagtgtcsag ctcacyccag c <210 4 <211> 19 <212> DNA <213> Homo sapiens <400 4 cagcccctgg aacatctcc <210 5 <211> 20
PL 244526 Β1 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 5 cccccacgga gactcaattt <210> 6 <211> 21 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 6 acatgtctct ctcttagcgg g <210> 7 <211> 19 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 7 acacccctca ctccctgtc <210> 8 <211> 20 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 8 atatcttccg caagcactgg <210> 9 <211> 19 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 9 cttcatcccc aagcctgac <210> 10 <211> 17 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 10 cgctcggccc tcttttc <210> 11
PL 244526 Β1 <211> 20 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 11 gccgattgtg aacatggact <210> 12 <211> 18 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 12 caccctcgag gtgagacg <210> 13 <211> 21 < 212> DNA < 213> Homo sapiens < 400> 13
6FAM ctttccatgt ccacatyccc a BBQ 21 <210> 14 <211> 28 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 14
6FAM ccgaggtyta aagccaggta cacsaggc BBQ <210> 15 <211> 19 <212> DNA <213> Homo sapiens <400> 15
6FAM cgtcgtggga gccagaacg BBQ <210> 16 <211> 732 <212> DNA <213> Homo sapiens <220>
<221> primer bind <222> (124)..(143)
PL 244526 Β1 < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2F nr 7 <220>
< 221> primer bind < 222> (149).,(169) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2F nr 5 <220>
< 221> misc_binding < 222> (171)..(192) < 223> Miejsce hybrydyzacji sondy CGB1/2F Nr 13 <220>
< 221> primer bind < 222> (190)..(210) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2R nr 8 <220>
< 221> primer bind < 222> (211) . . (230) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2F nr 6 < 400> 1 ccccagggcc agtgagggcc ctgcgttccg tggcgccccc tggagggagg aaggggaact60 gcatctgaga gagagcagcc aattgggtcc gctgactctg gccaggttcc cgtgccgcgt120 ccaacacccc tcactccctg tctcactccc ccacggagac tcaatttact ttccatgtcc180 acattcccag tgcttgcgga agatatcccg ctaagagaga gacatgtcaa agaggctgct240 gctgttgctg ctgctgagca tgggcgggac atgggcatcc aaggagccgc ttcggccacg300 gtgccgcccc atcaatgcca ccctggctgt ggagaaggag ggctgccccg tgtgcatcac360 cgtcaacacc accatctgtg ccggctactg ccccaccatg acccgcgtgc tgcagggggt420 cctgccggcc ctgcctcagg tggtgtgcaa ctaccgcgat gtgcgcttcg agtccatccg480 gctccctggc tgcccgcgcg gcgtgaaccc cgtggtctcc tacgccgtgg ctctcagctg540 tcaatgtgca ctctgccgcc gcagcaccac tgactgcggg ggtcccaagg accacccctt600 gacctgtgat gacccccgct tccaggactc ctcttcctca aaggcccctc cccccagcct660 tccaagtcca tcccgtctcc cggggcccta ggacaccccg atcctcccac aataaaggct720 tctcaatccg ca732 <210> 17 <211> 732 <212> DNA
PL 244526 Β1 < 213> Homo sapiens <220>
< 221> primer_bind < 222> (1241 . . (143) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2F nr 7 <220>
< 221> primer bind < 222> (149)..(169) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2F nr 5 <220>
< 221> misc binding < 222> (171)..(192) < 223> Miejsce hybrydyzacji sondy CGB1/2 nr 13 <220>
< 221> primer_bind < 222> (190)..(210) < 223> Miejsce hybrydyzacji Startera CGB1/2R nr 8 <220>
< 221> primer_bind < 222> (211) . . (230) < 223> Miejsce hybrydyzacji Startera CGB1/2R nr 6 <400> 1
ccccagggcc agtgagggcc ctgcgttccg tggcgccccc tggagggagg aaggggaact 60
gtatctgaga gagagcagcc aattgggtcc gctgactccg gccgggttcc cgtgccgcgt 120
ccaacacccc tcactccctg tctcactccc ccacggagaG tcaatttact ttccatgtcc 180
acatccccag tgcttgcgga agatatcccg ctaagagaga gacatgtcaa aggggctgct 240
gctgttgctg ctgctgagca tgggcgggac atgggcatcc aaggagccgc ttcggccacg 300
gtgccgcccc atcaatgcca ccctggctgt ggagaaggag ggctgccccg tgtgcatcac 360
cgtcaacacc accatctgtg ccggctactg ccccaccatg acccgcgtgc tgcagggggt 420
cctgccggcc ctgcctcagg tggtgtgcaa ctaccgcgat gtgcgcttcg agtccatccg 480
gctccctggc tgcccgcgcg gcgtgaaccc cgtggtctcc tacgccgtgg ctctcagctg 540
tcaatgtgca ctctgccgcc gcagcaccac tgactgcggg ggtcccaagg accacccctt 600
gacctgtgat gacccccgct tccaggcctc ctcttcctca aaggcccctc cccccagcct 660
tccaagccca tcccgactcc cggggccctc agacaccccg atcctcccac aataaaggct 720
PL 244526 Β1 tctcaatccg ca
732 <210> 18 <211> 859 <212> DNA <213> Homo sapiens
<220> <221> <222> <223> primer bind (85) . . (104) Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2F nr 7
<220> <221> <222> <223> primer_bind (108) . . (128) Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2F nr 5
<220> <221> <222> <223> misc binding (130)..(151) Miejsce hybrydyzacji sondy CGB1/2 nr 13
<220> <221> <222> <223> primer bind (147)..(167) Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2R nr 8
<220> <221> <222> <223> primer_bind (165) . . (186) Miejsce hybrydyzacji startera CGB1/2R nr 6
<400> 1
ctggagggag gaaggggaac tg Latctgag agagagcagc caattgggtc cgctgactcc 60
ggccgggttc ccgtgccgcg tccaacaccc ctcactccct gtctcactcc cccacggaga 120
ctcaatttac tttccatgtc cacatcccca gtgcttgcgg aagatatccc gctaagagag 180
agacatgtca aaggtagggt agatcgacat ttccaggcac caaagatgga gatgttccag 240
gaaagactgc agggcccctg ggcaccttcc acctgcttcc aggccatcac tggcatgaga 300
aggggcagac cagtgtgagc tgtggaagga ggcctctttc tggaggagcg tgacccccag 360
ggctgctgct gttgctgctg ctgagcatgg gcgggacatg ggcatccaag gagccgcttc 420
ggccacggtg ccgccccatc aatgccaccc tggctgtgga gaaggagggc tgccccgtgt 480
gcatcaccgt caacaccacc atctgtgccg gctactgccc caccatgacc cgcgtgctgc 540
PL 244526 Β1
agggggtcct gccggccctg cctcaggtgg tgtgcaacta ccgcgatgtg cgcttcgagt 600
ccatccggct ccctggctgc ccgcgcggcg tgaaccccgt ggtctcctac gccgtggctc 660
tcagctgtca atgtgcactc tgccgccgca gcaccactga ctgcgggggt cccaaggacc 720
accccttgac ctgtgatgac ccccgcttcc aggcctcctc ttcctcaaag gcccctcccc 780
ccagccttcc aagcccatcc cgactcccgg ggccctcaga caccccgatc ctcccacaat 840
aaaggcttct caatccgca 859
<210> 19 <211> 933 <212> DNA < 213> Homo sapiens <220>
< 221> primer_bind < 222> (301)..(322) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 3 <220>
< 221> priiner_bind < 222> (301)..(326) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 1 <220>
< 221> misc_binding < 222> (361) .. (389) < 223> Miejsce hybrydyzacji sondy CGB3-9 nr 14 <220>
< 221> primer bind < 222> (406) . . (425) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 4 <220>
< 221> primer bind < 222> (408) . . (427) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 2 <400> 1
tgcaggaaag cctcaagtag aggagggttg aggcttcagt ccagcacctt tctcgggtca 60
cggcctcctc ctggctccca ggaccccacc ataggcagag gcaggccttc ctacacccta 12 0
ctccctgtgc ctccagcctc gactagtccc tagcactcga cgactgagtc tctgaggtca 180
cttcaccgtg gtctccgcct cacccttggc gctggaccag tgagaggaga gggctggggc 240
PL 244526 Β1
gctccgctga gccactcctg cgcccccctg gccttgtcta cctattgccc cccgaggggt 300
tagtgtcgag ctcaccccag catcctatca cctcctggtg gccttgccgc ccccacaacc 360
ccgaggtata aagccaggta cacgaggcag gggacgcacc aaggatggag atgttccagg 420
ggctgctgct gttgctgctg Gtgagcatgg gcgggacatg ggcatccaag gagccgcttc 480
ggccacggtg ccgccccatc aatgccaccc tggctgtgga gaaggagggc tgccccgtgt 540
gcatcaccgt caacaccacc atctgtgccg gctactgccc caccatgacc cgcgtgctgc 600
agggggtcct gucggccctg cctcaggtgg tgtgcaacta ccgcgatgtg cgcttcgagt 660
ccatccggct ccctggctgc ccgcgcggcg tgaaccccgt ggtctcctac gccgtggctc 720
tcagctgtca atgtgcactc tgccgccgca gcaccactga ctgcgggggt cccaaggacc 780
accccttgac ctgtgatgac ccccgcttcc aggactcctc ttcctcaaag gcccctcccc 840
ccagccttcc aagcccatcc cgactcccgg ggccctcgga caccccgatc ctcccacaat 900
aaaggcttct caatccgcaa aaaaaaaaaa aaa 933
<210> 20 <211> 877 <212> ΕΝΑ < 213> Homo sapiens <220>
< 221> primer_bind < 222> (259)..(284) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 3 <220>
< 221> primer_bind < 222> (261) . . (286) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 1 <220>
< 221> misc binding < 222> (319)..(347) < 223> Miejsce hybrydyzacji Sondy CGB3-9 nr 14 <220>
< 221> primerbind < 222> (364)..(385) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 2 <220>
< 221> primer_bind
PL 244526 Β1 <222> (364)..(383) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 4 <400 1
agcactttgc tcgggtcacg gcctcctcct ggctcccagg accccaccat aggcagaggc 60
aggccttcct acaccctact ccctgtgcct ccaggctcga ctagtcccta gcactcgacg 120
actgagtctc tgagatcact tcaccgtggt ctccgcctca cccttggcgc tggaccagtg 180
agaggagagg gctggggcgc tccgctgagc cactcctgcg cccccctggc cttgtctacc 240
tcttgccccc cgaagggtta gtgtcgagct caccccagca tcctacaacc tcctggtggc 300
cttgccgccc ccacaacccc gaggtataaa gccaggtaca cgaggcaggg gacgcaccaa 360
ggatggagat gttccagggg ctgctgctgt tgctgctgct gagcatgggc gggacatggg 420
catccaagga gccgcttcgg ccacggtgcc gccccatcaa tgccaccctg gctgtggaga 480
aggagggctg ccccgtgtgc atcaccgtca acaccaccat ctgtgccggc tactgcccca 540
ccatgacccg cgtgctgcag ggggtcctgc cggccctgcc tcaggtggtg tgcaactacc 600
gcgatgtgcg cttcgagtcc atccggctcc ctggctgccc gcgcggcgtg aaccccgtgg 660
tctcctacgc cgtggctctc agctgtcaat gtgcactctg ccgccgcagc accactgact 720
gcgggggtcc caaggaccac cccttgacct gtgatgaccc ccgcttccag gactcctctt 780
cctcaaaggc ccctcccccc agccttccaa gtccatcccg actcccgggg ccctcggaca 840
ccccgatcct cccacaataa aggcttctca atccgca 877
<210 21 < 211> 880 < 212> DNA < 213> Homo sapiens <220 < 221> primer_bind < 222> (262)..(283) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 3 <220 < 221> primer_bind < 222> (264)..(289) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 1 <220 < 221> misc binding
PL 244526 Β1 < 222> (322)..(350) < 223> Miejsce hybrydyzacji Sondy CGB3-9 nr 14 <220>
< 221> primer bind < 222> (367)..(386) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 4 <220>
< 221> primer_bind < 222> (369)..(388) <223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 2 <400> 1
tccagcacct ttctcgggtc acggcatcct cctggttccc aagaccccac cataggcaga 60
ggcaggcctt cctacaecct actctctgtg cctccagcct cgactagtcc ctagcactcg 120
acgactgagt ctcagaggtc acttcaccgt ggtctccgcc tcatccttgg cgctagacca 180
ctgaggggag aggactgggg tgctccgctg agccactcct gtgcctccct ggccttgtct 240
acttctcgcc ccccgaaggg ttagtgtcca gctcactcca gcatcctaca acctcctggt 300
ggccttgacg cccccacaaa cccgaggtat aaagccaggt acaccaggca ggggacgcac 360
caaggatgga gatgttccag gggctgctgc tgttgctgct gctgagcatg ggcgggacat 420
gggcatccag ggagatgctt cggccacggt gccgccccat caatgccacc ctggctgtgg 480
agaaggaggg ctgccccgtg tgcatcaccg tcaacaccac catctgtgcc ggctactgcc 540
ccaccatgac ccgcgtgctg cagggggtcc tgccggccct gcctcaggtg gtgtgcaact 600
accgcgatgt gcgcttcgag tccatccggc tccctggctg ccogcgcggc gtgaaccccg 660
tggtctccta cgccgtggct ctcagctgtc aatgtgcact ctgccgccgc agcaccactg 720
actgcggggg tcccaaggac caccccttga cctgtgatga cccccgcttc caggcctcct 780
cttecteaaa ggcccctccc cccagccttc caagtćcatc Ccgactcccg gggccctcag 840
acaccccgat ccteccacaa taaaggcttc tcaatccgca 880
<210> 22 <211> 1863 <212> DNA <213> Homo sapiens <220>
<221>
primer_bind
PL 244526 Β1 <222> (1245) .. (1266) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 3 <220>
< 221> primer bind < 222> (1247) .. (1272) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 1 <220>
< 221> misc binding < 222> (1304)..(1332) < 223> Miejsce hybrydyzacji Sondy CGB3-9 nr 14 <220>
< 221> prirner_bind < 222> (1350) . . (1369) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 4 <220>
< 221> primer_bind < 222> (1352) .. (1371) <223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 2 <400>1 gctctaatcg cctgcacgaa gaaccccgcg ctgtctggcc cacccttcac agtatccgac60 cggggcgtcc tgaaccgccg ccagctctat ctgaccacct cggcgcggga ctttcggttc120 tatcccaaga cggagccgtc cggatacccc cgcaaggact acctgaccta ctggagctta180 gaagagacgc cccaactctg gagtcacgac ccgcagcggc agccctgtct ctgctcttcc240 aggccgcctc gagcgccgca cggcgggcca tgtctccggc tcaggaaacc tacagctcct300 cgccgcaccc gctccgccgg ctcgaccgct tccgcccgct ggaggcgact tggggtggcc360 cccactggaa gcccctgccg ggcatacaca gcgtcccgaa agcctacagc accgagaact420 cccgctcagg ccgctgtaag ccggggctag tgggagcctg ccgggccagc cccaccccag480 acacgccccc tggcgtgggg gcggagcaga gctctgggca gccgctcact acgcggtgtc540 ggacctaggt gggctcgcac tcattaagtc tatccgcagt gtggggacag gactagccca600 gacacgccca ctcagctgcg gctggatcgc ggggaaggga ctaagtccag acaatgtcct660 ccgaggctgc ggccccgcgg gcaggacaca cctcctgcgg gcctattcaa taatcagtta720 aatcacctga agcacacgca tttccgggga ccgctccggg catcctggct tgagggtagg780 gtgggcggag gttcctaagg gagaggtggg gctcgggctg aatccctcgt tggggggcat840 ctgggtcaag tggcttccct ggcagcacag tcacggggag accctctctc actgggcaga900
PL 244526 Β1
agctaagtcc gaagccgcgc ccctcctgtt aggttggact gtggtgcagg aatggctcaa 960
gtagaggagg gttgaggctt cagtccagca cctttctcgg gtcacggcct cctcctggtt 1020
cccaagaccc caccataggc agaggcaggc cttcctacac cctactctct gtgcctccag 1080
cctcgactag tccctagcac tcgacgactg agtctcagag gtcacttcac cgtggtctcc 1140
gcctcatcct tggcgctaga ccactgaggg gagaggactg gggtgctccg ctgagccact 1200
catgtgcctc catggccttg tctacttctc gccccccgaa gggttagtgt ccagctcact 1260
ccagcatcct acaacctcct ggtggccttg acgcccccac aaacccgagg tataaagcca 1320
ggtacaccag gcaggggacg caccaaggat ggagatgttc caggggctgc tgctgttgct 1380
gctgctgagc atgggcggga catgggcatc cagggagatg cttcggccac ggtgccgccc 1440
catcaatgcc accctggctg tggagaagga gggctgcccc gtgtgcatca ccgtcaacac 1500
caccatctgt gccggctact gccccaccat gacccgcgtg ctgcaggggg tcctgccggc 1560
cctgcctcag gtggtgtgca actaccgcga tgtgcgcttc gagtccatcc ggctccctgg 1620
ctgcccgcgc ggcgtgaacc ccgtggtctc ctacgccgtg gctctcagct gtcaatgtgc 1680
actctgccgc cgcagcacca ctgactgcgg gggtcccaag gaccacccct tgacctgtga 1740
tgacccccgc ttccaggcct cctcttcctc aaaggcccct ccccccagcc ttccaagtcc 1800
atcccgactc ccggggccct cagacacccc gatcctccca caataaaggc ttctcaatcc 1860
gca 1863
<210> 23 <211> 887 <212> DNA <213> Homo sapiens <220>
<221> primer_bind <222> (269)..(290) <223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 3 <220>
<221> primerbind <222> (271) . . (296) <223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9F nr 1 <220>
PL 244526 Β1 < 221> primer_bind < 222> (374)..(393) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 4 <220 < 221> primer_bind < 222> (376)..(395) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera CGB3-9R nr 2 <220 < 221> misc binding < 222> (392)..(420) <223> Miejsce hybrydyzacji Sondy CGB3-9 nr 14 <400 1
gcttcagtcc agcacctttc tcgggtcacg gcctcctcct ggctcccagg accccaccat 60
aggcagaggc aggccttcct acaccctact ccctgtgcct ccaggctcga ctagtcccta 12 0
gcactcgacg actgagtctc tgaggtcact tcaccgtggt ctccgcctca cccttggcgc 180
tggaccagtg agaggagagg gctggggcgc tccgctgagc cactcctgcg cccccctggc 240
cttgtctacc tcttgcccoc cgaagggtta gtgtcgagct cactccagca tcctacaacc 300
tcctggtggc cttgccgccc ccacaacccc gaggtttaaa gccaggtaca cgaggcaggg 360
gacacaccaa ggatggagat gttccagggg ctgctgctgt tgctgctgct gagcatgggc 420
gggacatggg catccaagga gccgcttcgg ccacggtgcc gccccatcaa tgccaccctg 480
gctgtggaga aggagggctg ccccgtgtgc atcaccgtca acaccaccat ctgtgccggc 540
tactgcccca ccatgacccg cgtgctgcag ggggtcctgc cggccctgcc tcaggtggtg 600
tgcaactacc gcgatgtgcg cttcgagtcc atccggctcc Gtggctgccc gcgcggcgtg 660
aaccccgtgg tctcctacgc cgtggctctc agctgtcaat gtgcactctg ccgccgcagc 720
accactgact gcgggggtcc caaggaccac cccttgacct gtgatgaccc ccgcttccag 780
gactcctctt cctcaaaggc ccctcccccc agccttccaa gtccatcccg actcccgggg 840
ccctcggaca ccccgatcct cccacaataa aggcttctca atccgca 887
<210 24 <211> 3210 <212> DNA <213> Homo sapiens <220 <221> primer_bind <222> (1866) .. (1885)
PL 244526 Β1 < 223> Miejsce hybrydyzacji startera TERT F nr 9 <220>
< 221> primer bind < 222> (1893) .. (1913) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera TERT F nr 11 <220>
< 221> rtiisc_binding < 222> (1914) .. (1933) < 223> Miejsce hybrydyzacji sondy TERT nr 15 <220>
< 221> primerbind < 222> (1940) .. (1958) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera TERT R nr 10 <220>
< 221> primer bind < 222> (1956) .. (1974) < 223> Miejsce hybrydyzacji startera TERT R nr 12 < 400> 1 atgccgcgcg ctccccgctg ccgagccgtg cgctccctgc tgcgcagcca ctaccgcgag60 gtgctgccgc tggccacgtt cgtgcggcgc ctggggcccc agggctggcg gctggtgcag120 cgcggggacc cggcggcttt ccgcgcgctg gtggcccagt gcctggtgtg cgtgccctgg180 gacgcacggc cgccccccgc cgccccctcc ttccgccagg tgtcctgcct gaaggagctg240 gtggcccgag tgctgcagag gctgtgcgag cgcggcgcga agaacgtgct ggccttcggc300 ttcgcgctgc tggacggggc ccgcgggggc ccccccgagg ccttcaccac cagcgtgcgc360 agctacctgc ccaacacggL gaccgacgca ctgcggggga gcggggcgLg ggggctgctg420 ctgcgccgcg tgggogacga cgtgctggtt cacctgctgg cacgctgcgc gctctttgtg480 ctggtggctc ccagctgcgc ctaccaggtg tgcgggccgc cgctgtacca gctcggcgct540 gccactcagg cccggccccc gccacacgct agtggacccc gaaggcgtct gggatgcgaa600 cgggcctgga accatagcgt cagggaggcc ggggtccccc tgggcctgcc agccccgggt660 gcgaggaggc gcgggggcag tgccagccga agtctgccgt tgcccaagag gcccaggcgt720 ggcgctgccc ctgagccgga gcggacgccc gttgggcagg ggtcctgggc ccacccgggc780 aggacgcgtg gaccgagtga ccgtggtttc tgtgtggtgt cacctgccag acccgccgaa840 gaagccacct ctttggaggg tgcgctctct ggcacgcgcc actcccaccc atccgtgggc900
PL 244526 Β1
cgccagcacc acgagggccc cccatacaca tcgcggccac cacgtccctg ggacacgcct 960
tgtcccccgg tgtacgccga gaccaagcac ttcctctact cctcaggcga caaggagcag 1020
ctgcggccct ccttcctact cagctctctg aggcccagcc tgactggcgc tcggaggctc 1080
gtggagacca tctttctggg ttccaggccG tggatgccag ggactccccg caggttgccc 1140
cgcctgcccc agcgctactg gcaaatgcgg cccctgtttc tggagctgct tgggaaccac 1200
gcgcagtgcc cctacggggt gctcctcaag acgcactgcc cgctgcgagc tgcggtcacc 1260
ccagcagccg gtgtctgtgc ccgggagaag ccccagggct ctgtggcggc ccccgaggag 1320
gaggacacag acccccgtcg cctggtgcag ctgctccgcc agcacagcag cccctggcag 1380
gtgtacggct tcgtgcgggc ctgcctgcgc cggctggtgc ccccaggcct ctggggctcc 1440
aggcacaacg aacgccgctt cctcaggaac accaagaagt tcatctccct ggggaagcat 1500
gccaagctct cgctgcagga gctgacgtgg aagatgagcg tgcgggactg cgcttggctg 1560
cgcaggagcc caggggttgg ctgtgttccg gccgcagagc accgtctgcg tgaggagatc 1620
ctggccaagt tcctgcactg gctgatgagt gtgtacgtcg tcgagctgct caggtctttc 1680
ttttatgtca cggagaccac gtttcaaaag aacaggctct ttttctaccg gaagagtgtc 1740
tggagcaagt tgcaaagcat tggaatcaga cagcacttga agagggtgca gctgcgggag 1800
ctgtcggaag cagaggtcag gcagcatcgg gaagccaggc ccgccctgct gacgtccaga 1860
ctccgcttca tccccaagcc tgacgggctg cggccgattg tgaacatgga ctacgtcgtg 1920
ggagccagaa cgttccgcag agaaaagagg gccgagcgtc tcacctcgag ggtgaaggca 1980
ctgttcagcg tgctcaacta cgagcgggcg cggcgccccg gcctcctggg cgcctctgtg 2040
ctgggcctgg acgatatcca cagggcctgg cgcaccttcg tgctgcgtgt gcgggcccag 2100
gacccgccgc ctgagctgta ctttgtcaag gtggatgtga cgggcgcgta cgacaccatc 2160
ccccaggaca ggctcacgga ggtcatcgcc agcatcatca aaccccagaa cacgtactgc 2220
gtgcgtcggt atgccgtggt ccagaaggcc gcccatgggc acgtccgcaa ggccttcaag 2280
agccacgtct ctaccttgac agacctccag ccgtacatgc gacagttcgt ggctcacctg 2340
caggagacca gcccgctgag ggatgccgtc gtcatcgagc agagctcctc cctgaatgag 2400
gccagcagtg gcctcttcga cgtcttccta cgcttcatgt gccaccacgc cgtgcgcatc 2460
aggggcaagt cctacgtcca gtgccagggg atcccgcagg gctccatcct ctccacgctg 2520
PL 244526 Β1
ctctgcagcc tgtgctacgg cgacatggag aacaagctgt ttgcggggat tcggcgggac 2580
gggctgctcc tgcgtttggt ggatgatttc ttgttggtga cacctcacct cacccacgcg 2640
aaaaccttcc tcagctatgc ccggacctcc atcagagcca gtctcacctt caaccgcggc 2700
ttcaaggctg ggaggaacat gcgtcgcaaa ctctttgggg tcttgcggct gaagtgtcac 2760
agcctgtttc tggatttgca ggtgaacagc ctccagacgg tgtgcaccaa catctacaag 2820
atcctcctgc tgcaggcgta caggtttcac gcatgtgtgc tgcagctccc atttcatcag 2880
caagtttgga agaaccccac atttttcctg cgcgtcatct ctgacacggc ctccctctgc 2940
tactccatcc tgaaagccaa gaacgcaggg atgtcgctgg gggccaaggg cgccgccggc 3000
cctctgccct ccgaggccgt gcagtggctg tgccaccaag cattcctgct caagctgact 3060
cgacaccgtg tcacctacgt gccactcctg gggtcactca ggacagccca gacgcagctg 3120
agtcggaagc tcccggggac gacgctgact gccctggagg ccgcagccaa cccggcactg 3180
ccctcagact tcaagaccat cctggactga 3210

Claims (5)

1. Zestaw diagnostyczny do wykrywania krążących komórek nowotworowych (CTC), znamienny tym, że zawiera:
- parę starterów specyficznych względem genów CGB3/CGB9, CGB5, CGB6/CGB7 i CGB8 (CGB3-9): startery o sekwencji CGB3-9 F nr 1, CGB3-9 R nr 2 lub startery o sekwencji CGB3-9 F nr 3, CGB3-9 R nr 4 oraz
- parę starterów specyficznych względem genów CGB1 i CGB2: startery o sekwencji CGB1/2 F nr 5, CGB1/2 R nr 6 lub startery o sekwencji CGB1/2 F nr 7, CGB1/2 R nr 8 i
- parę starterów specyficznych względem sekwencji mRNA katalitycznej podjednostki enzymu telomerazy hTERT: startery o sekwencji TERT F nr 9, TERT R nr 10 lub startery o sekwencji TERT F nr 11, TERT R nr 12.
2. Zestaw diagnostyczny według zastrz. 1, znamienny tym, że dodatkowo zawiera sondę CGB1/2 o sekwencji nr 13 lub sondę CGB3-9 o sekwencji nr 14 lub sondę TERT o sekwencji nr 15.
3. Zestaw diagnostyczny według zastrz. 1, znamienny tym, że dodatkowo zawiera barwnik fluoroscencyjny wybarwiający dwuniciowy DNA.
4. Zestaw diagnostyczny określony w zastrz. 1-3 do zastosowania w diagnozowaniu in vitro nowotworów u ludzi poprzez identyfikację komórek CTC.
5. Zestaw diagnostyczny według zastrz. 4, znamienny tym, że obejmuje diagnozowanie nowotworów wybranych z grupy: rak piersi, rak jajnika, rak prostaty, rak jelita grubego, rak płuca.
PL433746A 2020-04-29 2020-04-29 Zestaw diagnostyczny do wykrywania komórek nowotworowych (CTC) oraz jego zastosowanie do identyfikacji komórek nowotworowych PL244526B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL433746A PL244526B1 (pl) 2020-04-29 2020-04-29 Zestaw diagnostyczny do wykrywania komórek nowotworowych (CTC) oraz jego zastosowanie do identyfikacji komórek nowotworowych

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL433746A PL244526B1 (pl) 2020-04-29 2020-04-29 Zestaw diagnostyczny do wykrywania komórek nowotworowych (CTC) oraz jego zastosowanie do identyfikacji komórek nowotworowych

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL433746A1 PL433746A1 (pl) 2021-11-02
PL244526B1 true PL244526B1 (pl) 2024-02-05

Family

ID=78595346

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL433746A PL244526B1 (pl) 2020-04-29 2020-04-29 Zestaw diagnostyczny do wykrywania komórek nowotworowych (CTC) oraz jego zastosowanie do identyfikacji komórek nowotworowych

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL244526B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL433746A1 (pl) 2021-11-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5117852B2 (ja) 乳癌の予後診断方法およびキット
JP6743056B2 (ja) 前立腺がん予後判定の方法
CA2642331C (en) Dna conformation (loop structures) in abnormal gene expression in cancer
Reinholz et al. Differential gene expression of TGFβ inducible early gene (TIEG), Smad7, Smad2 and Bard1 in normal and malignant breast tissue
JP2010517536A (ja) 原発不明がんの原発巣を同定するための方法および材料
CN108738329A (zh) 前列腺癌预后方法
US20220229060A1 (en) Gender-specific markers for diagnosing prognosis and determining treatment strategy for renal cancer patients
BR112019011031A2 (pt) Método para estratificação de risco, produto de programa de computador, kit de diagnóstico e uso de um perfil de expressão gênica para estratificação de risco
US20060121477A1 (en) Method for detection of micro-metastasis
Baumann et al. Association of high miR-182 levels with low-risk prostate cancer
Bialkowska-Hobrzanska et al. Comparison of human telomerase reverse transcriptase messenger RNA and telomerase activity as urine markers for diagnosis of bladder carcinoma
MXPA05005039A (es) Metodos y composiciones para detectar actividad telomerasa.
PL244526B1 (pl) Zestaw diagnostyczny do wykrywania komórek nowotworowych (CTC) oraz jego zastosowanie do identyfikacji komórek nowotworowych
KR20210101179A (ko) 신장암 환자의 예후 진단 및 치료 전략 결정용 성별 특이적 마커
RU2837879C1 (ru) Способ прогнозирования привычной невынашиваемости беременности по экспрессии генов микроРНК в биопсийном материале эндометрия
Kawashima et al. TERT promotor region rearrangements analyzed in high-risk neuroblastomas by FISH method and whole genome sequencing
KR101799152B1 (ko) Pd-l1 다형성을 이용한 비소세포폐암 환자의 예후 진단방법
Martínez-Sanchíz et al. Diagnostic and prognostic value of the detection of hTERT mRNA in renal tumors
EP1071808A1 (en) Telomerase assay of body fluids for cancer screening and assessment of disease stage and prognosis
CN110904222B (zh) 胎盘植入性疾病标志物
US7011950B2 (en) Detecting recurrence and high stage bladder carcinoma
PL244067B1 (pl) Sposób wykrywania raka prostaty o złym rokowaniu
WO2022051141A1 (en) Methods for early detection of breast cancer
河島茉澄 TERT promotor region rearrangements analyzed in high-risk neuroblastomas by FISH method and whole genome sequencing
WO2012056033A1 (en) Method for the analysis of a biological sample of a patient