RU1781299C - Способ идентификации возбудител брюшного тифа - Google Patents

Способ идентификации возбудител брюшного тифа

Info

Publication number
RU1781299C
RU1781299C SU904908092A SU4908092A RU1781299C RU 1781299 C RU1781299 C RU 1781299C SU 904908092 A SU904908092 A SU 904908092A SU 4908092 A SU4908092 A SU 4908092A RU 1781299 C RU1781299 C RU 1781299C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
lactose
media
medium
cultures
column
Prior art date
Application number
SU904908092A
Other languages
English (en)
Inventor
Ирина Михайловна Подплетенная
Original Assignee
Районная Санэпидстанция Г.Пролетарск Ростовской Обл.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Районная Санэпидстанция Г.Пролетарск Ростовской Обл. filed Critical Районная Санэпидстанция Г.Пролетарск Ростовской Обл.
Priority to SU904908092A priority Critical patent/RU1781299C/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU1781299C publication Critical patent/RU1781299C/ru

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Использование: микробиологи , идентификаци  энтеробактерий, бактериологическа  диагностика. Сущность изобретени : на комбинированных 2 и 3 сахарных средах дополнительно отбирают лактозоположи- тельные. не образующие газ и сероводород культуры. Пересевают их на скошенную со столбиком лактозную среду, содержащую (г/л): агар 8,9; пептон 2-3; углевод 10-15; натри  хлорид 4-5; кали  дигидрофосфат 0,3-0,4; натри  тиосульфат 0,2-0,3, бромти- моловый синий (0,2%-ный водный раствор) 11-12 мл, вода дистиллированна  до 1 л, рН 7,2-7,4. Инкубируют посевы 24-72 ч при 37°С, отбирают культуры, дающие лактозо- отрицательную реакцию, пересевают их на дифференцирующий биохимический р д,- определ ют серологические и фаголиза- бельные свойства и индентифицируют культуры по совокупности признаков, характерных дл  бактерий брюшного тифа. Способ дает возможность вы вл ть ранее не диагносцируемую известным способом- значительную группу типичных бактерий брюшного тифа с несколько сниженной в пределах естественной вариабельности активностью протеолитических ферментов и фермента тиосульфатредуктазы. 5 табл. (Л С

Description

Изобретение относитс  к микробиологии и может быть использовано при идентификации энтеробактерий.
Известен классический способ идентификации возбудител  брюшного тифа, вы- бранный нами за прототип (Методические указани  по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактери ми .
Способ осуществл етс  путем посева исследуемого материала на среды обогащени  с последующим пересевом на селектив- ные пластинчатые среды, посевом выросших лактозоотрицательных колоний на 2-или 3-сахарные комбинированные среды и идентификацией культур по совокупности биохимических, серологических и фаго- лизабельных свойств.
Недостатком данного способа  вл етс  невозможность диагностировать значи- тельную группу типичных бактерий брюшного тифа с несколько сниженной в пределах естественной вариабельности протеолитической активностью фермента тиосульфатредуктазы, дающих на комбинированных средах ложноположительную оценку лактозного признака и ложноотри- цательную - признака продукции сероводорода .
Целью изобретени   вл етс  повышение точности способа.
v| 00
Ю Ю
ю
Цель достигаетс  путем дополнительного отбора из комбинированных средах лактозоположительных, не образующих газ и сероводород культур, пересева на скошенную со столбиком лактозную среду, содержащую , г/л:
Агар8-9
Пептон2-3
Углевод10-15
Натри  хлорид4-5
Кали  дигидрофосфат0 ,3-0,4
Натри  тиосульфат0,2-0,3
Бромтимоловый синий (0,2% водный раствор)11-12
Вода дистиллированна до 1 л рН 7,2-7,4. инкубировани  посева при 37°С (24-72 ч), пересева культур, учтенных на предлЪжен- ной среде как лактозоотрицательные, на среды биохимического р да, в котором са- харолитические свойства определ ют на скошенных со столбиком моноуглеводных средах (маннит, сахароза, дульцит, араби- ноза и др.), а признак образовани  сероводорода на среде типа Клиглера при культивировании при 37°С не менее 4-5 суток с ежедневным контролем, определени  серологических и фаголизабельных признаков и идентификации культуры по совокупности признаков, характерных дл  Salmonella typhi.
Пример 1. Исследуемый материал засевают в среды накоплени , инкубируют в течение 18-24 часов при 37°С. Пересевают на пластинчатые селективные среды. Культивируют при 37°С в течение 20-24 часов. Выросшие лактозоотрицательные колонии пересевают на 2-х или 3-х сахарные комбинированные среды типа Клиглера. Культивируют при 37°С в течение суток. Отбирают лэктозоположительные, не образующие газ и сероводород культуры и пересевают их на скошенную со столбиком лактозйую питательную среду, содержащую, г/л: Агар8-9
Пептон2-3
Углевод10-15
- Натри  хлорид 4-5
Кали  дигидрофосфат0 ,3-0,4
Натри  тиосульфат 0,2-0,3 Бромтимоловый синий (0,2 %-ный водный раствор)11-12
Вода дистиллированна до 1 л рН7,2-7.4
Посевы инкубируют 24-72 ч при 37°С, отбирают лактозоотрицательные культуры, засевают их на биохимический р д, в котором расщепление маннита, сахарозы,
5 ксилозы, арабинозы, дульцита, сорбита определ ют посевом на скошенные со столбиком моноуглеводные среды, а продукцию сероводорода инкубированием культуры на среде Клиглера с ежедневным контролем не
0 менее 4-5 сут. Определ ют серологические и фаголизабельные признаки и идентифицируют культуру по совокупности всех признаков .
П р и м е р 2. Приготовление моноугле5 водной скошенной со столбиком среды.
Навеску хлорида натри , углевода, пептона и двухзамещенного фосфата кали , гипосульфита предварительно раствор ют в небольшом количестве дистиллированной
0 воды. В оставшейс  дистиллированной воде при помешивании и подогревании до закипани  раствор ют агар. Затем все ингредиенты соедин ют, перемешивают и добавл ют индикатор. Устанавливают
5 ,2-7,4. Разливают в пробирки по 7-8 мл, стерилизуют при 0,5 избыточной атмосферы при 112°С в течение 20 мин. После стерилизации пробирки оставл ют в слегка наклонном положении дл  получени  ско0 шейного столбика. В готовом виде среда имеет трав нистый цвет.
Применение среды: Испытуемую культуру засевают штрихом по скосу и уколом в столбик среды. После культивировани  при
5 37°С в течение суток производ т учет теста. В зависимости от степени активности определ емого сахаролитического фермента к моменту учета возможны следующие варианты:
0 При высокой степени активности - среда в скосе и в столбике; колонии на скосе окрашиваютс  в желтый цвет.
При средней степени активности - в желтый цвет окрашиваютс  лишь колонии
5 на скошенной части среды.
При слабой степени активности в случае замедленной ферментации среда сохран ет зеленую окраску и окончательно тест следует учесть через 48-72 часа.
0 Из данных табл. 2 видно, что у некоторых испытуемых культур ферментаци  углеводов (лактозы) происходит только в относительно анаэробных услови х столбика среды. В этом случае тест оценивают как
55 положительный при (переходе окраски в столбике среды из зеленой в  рко-желтую при одновременном по влении синей окраски в скошенной части. Газообразование учитывают в столбике по по влению пу- зырьков, разрывов среды.
Энтеробактерии, не расщепл ющие соответствующий углевод, окрашивают скос среды в синий цвет за счет образующихс  в небольшом количестве щелочных продуктов протеолиза, более интенсивно протека- ющего в аэробных услови х скоса. Сохранение зеленой окраски или слабое неспецифическое пожелтение столбика при одновременном окрашивании скоса среды в синий цвет оценивают как отсутствие со- ответствующего фермента у испытуемых бактерий.
ПримерЗ. Среда с минимальными значени ми ингредиентов.
Среду готов т по примеру 2. Получен- на  среда имеет следующий состав, г/л: Агар8
Пептон2
Лактоза10
Натри  хлорид4
Натри  тиосульфат0,2
Кали  дигидрофосфат0,3
Бромтимоловый синий (0,2% водный
раствор)11
Вода дистиллированна До 1 л
рН7,2-7,4
Данные по идентификационным свойствам среды см. в табл. 1.
П р и м е р 4. Среда с оптимальными значени ми ингредиентов.
Среду готов т по примеру 2. Полученна  среда имеет следующий состав, г/л: Агар8,5
Пептон2,5
Лактоза12,5
Натри  хлорид4,5
Тиосульфат натри 0,25
Кали  дигидрофосфат0,35
Бромтимоловый
синий (0,2 %-ный водный раствор)11,5
Вода дистиллированна до 1 л
рН7,2-7,4
Данные по идентификационным свой- ствам среды см. в табл. 1.
П р и м е р 5. Среда с максимальными
значени ми ингредиентов.
Среду готов т по примеру 2. Получен-
на  среда имеет следующий состав (г/л): Агар9
Пептон3
Лактоза15
Натри  хлорид5
Натри  тиосульфат0,3
Кали  дигидрофосфат0,4
Бромтимоловый синий12
Вода дистиллированна До 1 л
рН7,2-7,4
Из данных табл.1 видно, что оптимальным  вл етс  следующий состав среды, г/л: Агар8-9
Пептон .2-3
Углевод10-15
Натри  хлорид4-5
Кали  дигидрофосфат0,3-0,4
Натри  тиосульфат0,2-0,3
Бромтимоловый синий (0,2% водный раствор)11-12
Вода дистиллированна До 1 л
рН7.2-7,4
Уменьшение концентрации ингредиентов неблагопри тно дл  жизнеде тельности и вы влени  ферментативных способностей микробов. Увеличение концентрации ингредиентов ведет к чрезмерному осмотическому давлению в среде, что также затрудн ет жизнеде тельность и вы вление ферментативной способности микроорганизмов.
Из сравнительных данных табл. 2, 3 на приме е определени  расщеплени  лактозы на х реде Гисса с лактозой, среде Клигле- ра и предлагаемой скошенной среде с лакто ой видно, что последн   обладает на- ибол- шей чувствительностью.
Из данных табл. 3 видно, что дл  ферментации углеводов (лактозы) у некоторых энтеробактерий имеет значение степень анаэробности условий. Дл  доказательства этого положени  испытуемые культуры, учтенные на среде Клиглера как лактозоотри- цательные, пересевают дл  оценки лактозного теста на скошенную со столбиком агаризованную среду Гисса с лактозой (г. Махачкала НИИ по производству питательных сред) и скошенную со столбиком лактозовую среду.
П р и м е р 6. Сравнительна  оценка ферментации лактозы на средах Клиглера, Гисса и скошенной лактозной среде (табл.2). Пример. Вли ние на метаболизм лактозы аэробных (скос среды) и относительно анаэробных условий (столбик среды ) (табл.3).
Дл  сохранени  форм скошенный столбик в среду Гисса при приготовлении добавл ют в количестве 8 г/л агар.
Основыва сь на полученных данных, представленных в таблице 2 и 3, можно утверждать, что использование скошенной со столбиком моноуглеводной среды позвол ет более достоверно определить расщепление углеводов при вариабельной активности соответствующего фермента, получить полуколичественную оценку теста и определить ферментативный (в относительно анаэробных услови х столбика) и респираторный (в услови х скошенной части) характер утилизации углеводов.
Более чем семикратна  разница в концентрации углевода и пептона позвол ет избежать маскирующего вли ни  щелочных продуктов протеолиза и создать преимущественные услови  дл  образующихс  кислых продуктов расщеплени  углеводов .
ПримерЗ. Вли ние срока экспозиции на продукцию сероводорода у штаммов S. typhl на среде Клиглера.
П р и м е р 9. Вли ние срока экспозиции на защелачивание скошенной части Клиглера при культивировании S. typhi.
Таким образом срок экспЪзиции культур S. typhi на средах типа Клиглера в 4-5 сут  вл етс  оптимальным, т.к. он достаточен дл  вы влени  признака образовани  сероводорода. Уменьшение срока ведет к ложноотрицательной оценке признака образовани  Сероводорода; увеличение экспозиции может привести к гибели культуры.
Примерю. У больного В., у которого при оперативном вмешательстве установлена перфораци  кишечника с подозрением на брюшнотифозную этиологию, была вз та проба крови в количестве 12 мл. Произведен посев в 150 мл желчного бульона. Через 48 часов инкубации при 37°С был произведен высев из желчного бульона на-среду Эндо. Через 18 чёсов инкубировани  при 37°С на среде Эндо выросли мелкие бесцветные колонии , которые были пересе ны на комбинированную дифференциальную среду Олькельницкого. Через 24 часа инкубировани  при 37°С на скосе среды выросли мелкие изолированные колонии. Скос и столбик среды изменили розовую окраску на желтую , газообразование и продукци  сероводорода отсутствовали. Культуры были оценены как ферментирующие глюкозу, лактозу, не продуцирующие газ и сероводород и не подлежащие дальнейшему исследованию согласно общеприн той схеме классического способа.
Культуры были пересе ны на скошенную со столбиком лактозную среду, см. пример 1. Через 24 ч инкубировани  при 37 С культура была оценена как лактозоотрица- тельна  (см. пример 2) и пересе на на среду Олькельницкого и среды биохимического дифференцирующего р да, в котором оценка теста расщеплени  углеводов производилась на скошенных со столбиком углеводных средах с соответствующими углеводами (ман- нит, сахароза, дульцит, ксилоза, арабиноза, сорбит, рамноза).
Через 72 ч инкубировани  культуры на среде Олькельницкого отмечалось защелачивание скошенной части среды и продуцирование сероводорода.
После оценки тестов на средах дифференцирующего р да культуры были оценены
как неферментирующие лактозу, сахарозу, дульцит, рамнозу, ферментирующие глюкозу , ксилозу, арабинозу, маннит, сорбит, де- карбоксилирующие лизин, не образующие индол, не утилизирующие цитрат и малонат
натри , продуцирующие сероводород, подвижные грамотрицательные палочки, агглютинирующиес  сальмонеллезной сывороткой 09 и VI, Hd, лизирующиес  брюшнотифозным бактериофагом.
По совокупности этих признаков они были идентифицированы как бактерии брюшного тифа, что нашло подтверждение после повторной идентификации в Ростов- ской-на-Дону областной баклаборатории,
где выделенна  культура была отнесена к фаговару Е I, второму ферментативному типу .
Указанный пример иллюстрирует веро тность диагностической ошибки при использовании комбинированных сред и повышение точности исследовани  при применении предложенного способа.
П р и м е р 11. Проба мочи в количестве 50 мл доставлена в лабораторию при обследовании Н, общавшегос  с больным В.
Был произведен пр мой посев на среду Плоскирева, Эндо. Через 20 ч на этих средах выросли мелкие бесцветные колонии, которые были пересе ны на среду Клиглера, инкубировались при 37°С. Через 24 ч сн тые культуры были оценены как лактозоположи- тельные, не образующие газ и сероводород. Культуры были пересе ны на лактозную скошенную со столбиком среду и культивировались при 37°С в течение 24 ч и были оценены как лактозоотрицательные. Культуры были вновь пересе ны на среду типа Клиглера (предпри тие центрального НИИВС им. И. И. Мечникова) и среды биохимического дифференцирующего р да. Через 48 часов инкубировани  на среде Клиглера отмечалось защелачивание скоса среды и продукци  сероводорода .
По результатам испытани  на средах
дифференцирующего р да, включа  скошенные со столбиком моноуглеводные среды, культуры по совокупности биохимических, серологических и фаголизабельных признаков были оценены как брюшнотифозные. После
повторной идентификации в Ростовской- на-Дону областной баклаборатории культура была отнесена к фаговару Е, второму ферментному типу.
П р и м е р 12. Проба испражнений
больного энтероколитом в количестве 1 г
была засе на в селенитовый бульон на чашки со средой Плоскирева и Эндо. Через 20 часов инкубации при 37°С на среде Эндо и Плоскирева выросли мелкие бесцветные колонии , которые были пересе ны на среду типа Клиглера. Культуры культивировались при 37°С 24 ч и были учтены как лактозопо- ложительные, не образующие газ и сероводород , и пересе ны на скошенную со столбиком лактозную среду. Через 24 ч куль- тивировани  при 37°С культура была учтена как лактозоположительна  и не подлежаща  дальнейшей идентификации на бактерии брюшного тифа.
Этот пример иллюстрирует, что в дан- ном случае оценка лактозного теста на среде Клиглера была достоверной.
Таким образом, использование предлагаемого способа дает возможность вы вл ть путем дополнительного отбора на 2-й 3-сахарном агаре лактозоположительных, не образующих газ и сероводород культур, и пересева их на лактозную скошенную со столбиком питательную среду, ранее не диагносцируемую значительную группу бактерий брюшного тифа и назначить соответствующее этиотропное лечение и провести своевременно необходимые противоэпидемические меропри ти .

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Способ идентификации возбудител  брюшного тифа путем посева исследуемого
    материала на среды обогащени  с последующим пересевом на селективные пластинчатые среды, пересевом выросших лактозоотрицательных колоний на двух-или трехсахарные среды и идентификацией культур по совокупности биохимических, серологических и фаголизабельных свойств, отличающийс  тем, что, с целью повышени  точности способа, дополнительно отбирают на комбинированных средах первичной идентификации лактозоположи- тельные, не образующие газ и сероводород культуры, пересевают на скошенную со столбиком лактозную среду, содержащую, г/л:
    Агар8-9
    Пептон2-3
    Углевод10-15
    Натри  хлорид4-5
    Кали  дигидрофосфат0,3-0,4
    Натри  тиосульфат0,2-0,3
    Бромтимоловый синий 0,2-ный водный раствор11-12
    Вода дистиллированна до 1 л
    рН7,2-7,4,
    инкубируют в течение 24-72 ч, отбирают лактозоотрицательные культуры, определ ют сахаролитические свойства на скошенных со столбиком моноуглеводных средах, а продукцию сероводорода - на средах типа Клиглера в течение 24-120 ч.
    Данные по идентификационным свойствам среды
    Таблица 1
    Таблица 2
    Проодолжение табл.2
    Таблица 3
    Таблица 4
    Таблица 5
SU904908092A 1990-11-27 1990-11-27 Способ идентификации возбудител брюшного тифа RU1781299C (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904908092A RU1781299C (ru) 1990-11-27 1990-11-27 Способ идентификации возбудител брюшного тифа

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU904908092A RU1781299C (ru) 1990-11-27 1990-11-27 Способ идентификации возбудител брюшного тифа

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1781299C true RU1781299C (ru) 1992-12-15

Family

ID=21558756

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU904908092A RU1781299C (ru) 1990-11-27 1990-11-27 Способ идентификации возбудител брюшного тифа

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1781299C (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Методические указани по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактери ми, М., 1984, с. 24-35. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wesley Catlin Nutritional profiles of Neisseria gonorrhoeae, Neisseria meningitidis, and Neisseria lactamica in chemically defined media and the use of growth requirements for gonococcal typing
US6046021A (en) Comparative phenotype analysis of two or more microorganisms using a plurality of substrates within a multiwell testing device
Busse Media for salmonella
Difco Laboratories Difco manual of dehydrated culture media and reagents for microbiological and clinical laboratory procedures
Ewing Enterobacteriaceae: Biochemical methods for group differentiation
Ewing et al. Media and tests for differentiation of Enterobacteriaceae
Winslow et al. Studies on the classification of the colon-typhoid group of bacteria with special reference to their fermentative reactions
Seleen et al. Some characteristics of green-fluorescent pigment-producing bacteria
Ayers et al. The Streptococci of the Bovine Udder: IV. Studies of the Streptococci
Gaby Study of Dissociative Behavior of Pseudomonas aeruginos
US5882882A (en) Gel matrix with redox purple for testing and characterizing microorganisms
Rosan et al. Hyaluronidase production by oral enterococci
Clarke A simplified plate method for detecting gelatine-liquefying bacteria
Gunn et al. Comparison of methods for identifying Staphylococcus and Micrococcus spp
Stillman et al. Biological study of the hemophilic bacilli
RU1781299C (ru) Способ идентификации возбудител брюшного тифа
RU2734940C1 (ru) Способ дифференциации бактерий Vibrio cholerae от бактерий представителей рода Aeromonas
Moench et al. Analysis of the Fecal Flora in Thirty-Three Cases of Pernicious Anemia: With Particular Reference to B. welchii
RU2268932C2 (ru) Питательная среда для первичной дифференциации условно-патогенных энтеробактерий
McIver et al. Assessment of conventional and commercial methods for identification of clinical isolates of cysteine-requiring strains of Escherichia coli and Klebsiella species
Horrocks The Bacillus coli communis; considered as an indication of sewage contamination of water supplies
RU2077576C1 (ru) Питательная среда для выделения и культивирования гонококка
BROADHURST et al. Thirty-second annual meeting of the society of american bacteriologists
Brown et al. Rapid identification of enterococci
Rappaport et al. UMAGIS Medium—A Medium for Single-Tube Differentiation of Enteric Bacteria