SU1165714A1 - Способ выделени моноаминоксидазы - Google Patents

Способ выделени моноаминоксидазы Download PDF

Info

Publication number
SU1165714A1
SU1165714A1 SU833599395A SU3599395A SU1165714A1 SU 1165714 A1 SU1165714 A1 SU 1165714A1 SU 833599395 A SU833599395 A SU 833599395A SU 3599395 A SU3599395 A SU 3599395A SU 1165714 A1 SU1165714 A1 SU 1165714A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
phosphate buffer
centrifuged
monoaminoxidase
volume
triton
Prior art date
Application number
SU833599395A
Other languages
English (en)
Inventor
Татьяна Александровна Москвитина
Наталия Евгеньевна Кучина
Владимир Зиновьевич Горкин
Original Assignee
Институт Биологической И Медицинской Химии Амн Ссср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Биологической И Медицинской Химии Амн Ссср filed Critical Институт Биологической И Медицинской Химии Амн Ссср
Priority to SU833599395A priority Critical patent/SU1165714A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1165714A1 publication Critical patent/SU1165714A1/ru

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

СНОСОВ ВЫДЕЛЕНИЯ МОНОАМИНОКСИДАЗЫ из мозга путем солюбилиэахщи митохондрий неиЬиным детергентом и аффинной хроматографии, о тличающийс  тем, что, с целью упрощени  процесса и увеличени  выхода целевого продукта, солю- билизацию провод т в 0,01-0,05 М фосфатном буфере рН 7,2-7,6 с последующей биоспецифической хроматографией в объеме.

Description

Изобретение относитс  к биохимии и медицине, а именно к способам выделени  высокоочищенных ферментных препаратов, конкретно к способам вьщелени  фермента моноаминоксидазы (МАО) из объектов животного происхождени , и может быть использовано в научных цел х, примен тьс  в лабораторной и медицинской практике
Цепь изобретени  - упрощение про цесса и увеличение выхода целевого продукта.
Пример 1. 500 г мозга быка промывают 0,9% КС1 и гомогенизируют в течение 1 мин при SOOO об/мин (гомогенизатор РТ-1) с 4500 мл 0,25 М сахарозы, к которой добавл ю 90 мл Ш KjHPO до рН 7,2. Полученн гомогенат центрифугируют при 1500 g в течение 10 мин на центрифуге ЦПР. Надосадочную жидкость (3350 мл) ценрифугируют в течение 10 мин при 1300 g на центрифуге ЦЛР дл  осаждени  митохондрий. Осадок, полученный после центрифугировани  при 1500 g втечение 10 мин, промьгоают 2250 мл 0,25 М сахарозы, рН 7,2, и npohe raHbie воды центрифугируют при 13000 g в течение 10 мин. Полученны осадки митохондрий объедин ют, суспендируют в 450 мл бидистиллированной воды и центрифугируют в течение 40 мин при 26000 g на центрифуге ЦВР-1. Полученный осадок, содержащи мембраны митохондрий, промывают два раза 0,01 М фосфатным буфером, рН 7,2, дл  удалени  белков митохондриального матрикса и суспендируют в бIHимaльнoм объеме того же буфера В полученной суспензии определ ют содержание белка при помощи калори метрического метода Лоури.
Суспензию, содержавшую 18,4 мг/мл белка в объеме 210 мл, центрифугируют 30 мин при 34000 g на центрифу ге ЦБР-1. Полученную надосадочную жидкость отбрасывают, а к 130 мл осадка добавл ют 257 мл 0,01 М фос:фатного буфера рН 7,2, содержавшего 18,8 МП водного раствора детергента тритон х-100. При перемешивании на холоду (0°) полученную смесь выдерживают 30 мин, а затем центрифугируют при 40000 g в течение 1 ч. Полученную надосадочную жидкость концентрируют методом ультрафильтрации через фильтр Амикок РМ-ЗО до 34 мл. Всего получено 456 г солюбизированного материала , который на воронке со стекл нными фильтрами диаметром 9,6 см обрабатывают 188 мл адсорбента АН-Сефарозы, уравновешенного 0,01 М фосфатным буфером, рН 7,2, Адсорбент промывают 600 мл этого же буфера , а препарат МАО-1 элюируют 0,1 М фосфатным буфером рН 7,2, собира  фракции по 30 мл. Те фракции , которые содержат белок (общий объем 175 мл), концентрируют в течение 18 ч при помощи Сефадекса Г-200 (сверхтонкий), а затем путем ультрафикадии через фильтр Амикон РМ-30 до объема 30 мл. Препараты МАО-Па элюируют как описано 0,1 М фосфатным буфером, содержавшим 0,09% тритон х-100; МАО-Пб - указанным буфером , содержавшим 0,25% тритон х-100 Регенерацию АН-Сефарозы осуществл ют промывкой 0,4 М фосфатным буфером , содержавшим 1% тритон Х-100 и 0,6 М NaCl, а затем 0,01 М фосфатным буфером, рН 7,2.
Пример 2. 500 г мозга быка промывают 0,9% КС1 и гомогенизируют в течение t мин при 8000 об./мин (гомогенизатор РТ-1) с 4500 мл О,25 М сахарозы, к которой добавл ют 90 мл 1М KjHPO до рН 7,6. Полученный гомогенат центрифугируют при 1500 g в течение 10 мин на центрифуге ЦПР. НадосадочнуюЖИДКОСТЬ (3350 мл) центрифугируют в течение 10 мин при 1300 g на центрифуге ЦПР дл  осаждений митохондрий. Осадок,, полученный после центрифугировани  при 1500 g в течение 10 мин, промывают 2250 мл 0,25 М сахарозы, рН 7,6 промывные воды центрифугируют при 13000 g в течение 10 мин. Полученные осадки митохондрий о ъедин ют, суспензируют в 450 мл бидистиллированной воды и центрифугируют, в течение 40 мин при 26000 g на центрифуге ЦВР-1. Полученный осадок, содержащий мембраны митохондрий, промывают два раза 0,01 М фосфатным буфером, рН 7,6, дл  удалени  белков митохондриального матрикса и суспензируют в минимальном объеме того же буфера. В полученной суспензии определ ют содержание белка прИ помощи калориметрического метода Лоури.
Суспензию, содержавшую 20,5 мг/мл белка в объеме 188 мл,центрифугируют 30 мин при 34000 g на центрифуre ЦВР-i. Полученную надосадочную жидкость отбрасьюают, а к 130 мл осадка добавл ли 257 мл 0,01 М фосфатного буфера рН 7,6, содержавшего 18,8 МП 25%-нЬго водного раствора детергента тритон х-100. При помешивании на холоду (0°) полученную смес вьщерживают 30 мин, а затем центрифугировали при 40000 g в течение 1 ч. Полученную надосадочную жидкость кон центрируют методом ультафильтрации через фильтр Амикон РМ-30 до 34 мл. Всего получено 464 мг солюбизированиого материала, который на воронке со стекл нным фильтром диаметром 9,6 см обрабатывают 191 мл адсорбента АН-Сефарозы, уравновешенного 0,01 М фосфатным буфером, рН 7,6. Адсорбент промьтают 600 мл этого же буфера, а препарат МАО-1 элюируют
0,1 М фосфатным буфером рН 7,6, собира  фракции по 30 мл. Те фракции, которые содержат белок (общий объем 170 мл), концентрируют в течение 18 ч при помощи Сефадекса Г-200 (сверхтонкий), а затем путем аультрафильтрации через фильтр Амикон РМ-30 до объема 30 мл. Препараты МАО-Па элюируют таким же образом 0,1 М фосфатным буфером, содержавшим 0,09% тритон х-100; МАО-Пб тем же буфером, содержавшим О,14% тритон х-100, а MAO-III - 0,4 М фосфатным буфером, содержавшим 0,25% тритон х-100. Регенерацию АН-Ч ефарозы осуществл ют промывкой 0,4 М фосфатным буфером, содержавшим 1% тритон х-100 и 0,6 М аС1, а затем 0,01 М фосфатным буфером, рН 7,6.

Claims (1)

  1. СНОСОВ ВЫДЕЛЕНИЯ МОНОАМИНОКСИДАЗЫ из мозга быда путем солюбилизации митохондрий неионным детергентом и аффинной хроматографии, о тличающийся тем, что, с целью упрощения процесса и увеличения выхода целевого продукта, солюбилизацию проводят в 0,01-0,05 М фосфатном буфере pH 7,2-7,6 с последующей биоспецифической хроматографией в объеме.
    ’(П)
    1 1165714 . 2
SU833599395A 1983-06-03 1983-06-03 Способ выделени моноаминоксидазы SU1165714A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833599395A SU1165714A1 (ru) 1983-06-03 1983-06-03 Способ выделени моноаминоксидазы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833599395A SU1165714A1 (ru) 1983-06-03 1983-06-03 Способ выделени моноаминоксидазы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1165714A1 true SU1165714A1 (ru) 1985-07-07

Family

ID=21066316

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU833599395A SU1165714A1 (ru) 1983-06-03 1983-06-03 Способ выделени моноаминоксидазы

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1165714A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Ргераг. Biochem,, 1979, v. 9, 2, p. 171-196. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4217339A (en) Glycoprotein and process for isolating it
Geffen et al. Immunohistochemical localization of protein components of catecholamine storage vesicles
US4948874A (en) Purified protein G from streptococcal bacteria
SU1431691A3 (ru) Способ получени гликопротеина
US4075193A (en) Process for producing intravenous immune globulin
US4269825A (en) New glycoprotein and process for isolating it
EP0011032B1 (en) Method for isolation of hbsag
US4301064A (en) Ubiquitary tissue protein PP8
EP0003916B1 (en) Purification of pertussis haemagglutinins
JPH0132840B2 (ru)
US4368148A (en) Protein PP9, process for its enrichment and its isolation and its use
SU1165714A1 (ru) Способ выделени моноаминоксидазы
Ceriani et al. Characterization of differentiation antigens of the mouse mammary epithelial cell (MME antigens) carried on the mouse milk fat globule
Langer et al. New, rapid methods for purifying alpha-actinin from chicken gizzard and chicken pectoral muscle.
GB2146027A (en) Process for producing human interferon and method for assaying the interferon productivity of blood
US4558011A (en) Method for preparation of pure hepatitis B surface antigen from human plasma
Hulea et al. Intracellular distribution of ribonuclease activity during erythroid cell development
JPS58404B2 (ja) ステロイド結合性グロブリンの製造方法
Pogell et al. [32] Specific elution with substrate
US4588685A (en) Process for the preparation of a new-type active substance selectively inhibiting food intake
WO1991018104A1 (en) Indh enzyme compositions and their methods of use
RU2763552C1 (ru) Способ выделения лактоферрина верблюда
GB2024228A (en) Process and adsorbent for the isolation in purer form of enzyme(s) from a crude enzyme solution
FUNATSU et al. Structure and Toxic Function of Ricin I Purification Procedures of Ricin D
Brackenridge et al. THE EXTRACTION AND SOME PROPERTIES OF MEMBRANE‐BOUND PROTEINS FROM OX CEREBRAL CORTEX MICROSOMES