SU1342011A1 - Strain of claviceps purpurea fungus as producer of peptide ergoalcaloids - Google Patents

Strain of claviceps purpurea fungus as producer of peptide ergoalcaloids Download PDF

Info

Publication number
SU1342011A1
SU1342011A1 SU853841889A SU3841889A SU1342011A1 SU 1342011 A1 SU1342011 A1 SU 1342011A1 SU 853841889 A SU853841889 A SU 853841889A SU 3841889 A SU3841889 A SU 3841889A SU 1342011 A1 SU1342011 A1 SU 1342011A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
strain
fungus
peptide
ergoalcaloids
producer
Prior art date
Application number
SU853841889A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
М.А. Саркисова
Original Assignee
Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Лекарственных Растений
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Лекарственных Растений filed Critical Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Лекарственных Растений
Priority to SU853841889A priority Critical patent/SU1342011A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1342011A1 publication Critical patent/SU1342011A1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

tt

Изобретение откоситс  к микройио - логической прокышленкостЕ и предстан- лйет собой гатамм спорыньи продуцирующий фармакологически цен1-а,е пеп- тидные эргоалкалоиды в сапрофитных услови х при глубинной ферментации. The invention retracts to the micro-biohazard industry and will be an ergot gatamm producing pharmacologically priced, peptidic ergoalkaloids under saprophytic conditions during deep fermentation.

Целью изобретени   вл етс  С lav leaps purpurea, обладающий зысо-- кой продуктивностью,The aim of the invention is C lav leaps purpurea, which has a high productivity,

„ Штам гриба Clavlceps pu.rpurea К-41 получен путем облучени , Уф-- у- чами суспензии спор спорьшьи С(5. ржи с последующей селекцией па агаризо- ванньш питательньш средах,.The strains of the fungus Clavlceps pu.rpurea K-41 were obtained by irradiation, with spores of spores C (5 rye, followed by selection on agaric nutrient media), using UV-radiation.

Штамм гриба Clavlceps purpursaThe strain of the fungus Clavlceps purpursa

депонирован в коллекции л. йь- тур М1исроо гаш-.31чов Всесоюзного наукно-исследовательского- института антибиотиков и i-шеет. рех истраци- oHHbift номер . deposited in the l collection. The tour is M1 Isroo Gash-.31chov of the All-Union Scientific Research Institute of Antibiotics and i-neck. reh istraci- oHHbift number.

Штамм Clavlceps purpurea ВНИИА характеризуетс  следующш-чи нризнакамк.The strain Clavlceps purpurea VNIIA is characterized by the following characters.

Морфолого-культураль ьш признаки, При выращршании. на агаризованной среде Т2 (состав среды, в г/лх. сахароза 100, дрожжевой экстракт .0,55 аспарагин 10 КН„Р04 G ,,25, KCI QJ2, HgS0. 0,25/СаШ 1, peSO -7Н : 0502, ZnSO THjO 0,015, агар 20 дистиллированна  вода - ЮСО см, рН 5д2) зш етньй рост mi atft-ia лро в-- п ётс  на сутки, Образзпощиес  колош-ш вначале светлые;, прозрачкывл впоследствии .приобретают 6ypo-Kopw4 -. йёзую окраску, 2-3-недельтле в-оло-  ки имеют складчат по крупи чатую мас сув кра  четко охт-аьжченЫс, ральеф ко- куса, иногда усеченного, i кокцу выращив-ани  размер колонк; от О,-.8 см ДО 1 ,5 CMg цвет буро-коричмевьй:; обратна  сторона колоний бехш.Бого цвета. Штамм растет в виде мидели- альнь1х клеток округлых диаметром 3050 мкм5 .сильно гран:улированных. Конидий в указанных услови к не-обра- .аует е Колонии этого штамма легко от-- дел ютс  от агаровой среды н при. переносе в жидкук среду распадаютс  на отдельные клетки шш небольшие агре-- гаты их,При росте в жидкик средах штамм вьщелдаот в среду пш мент g среда окрашиваетс  в бурый и светлсз .коричиевьй щзеТ; иногда почти до черного оMorphology culture signs, When grown. on T2 agar medium (medium composition, in g / lx. sucrose 100, yeast extract .0.55 asparagine 10 KN „Р04 G ,, 25, KCI QJ2, HgS0. 0.25 / SaSH 1, peSO -7Н: 0502, ZnSO THjO 0,015, agar 20 distilled water - YUSO cm, pH 5d2) 3x growth mi atft-ia lro vr per day, Obrazsposhles kolosh-sh at first light ;, transparently, later acquire 6ypo-Kopw4 -. The new color, 2-3 weeks long, has folds on a large mass of a clear edge, clearly oht ajchen, a ralef of a cocus, sometimes truncated, i growing a cockle-size column; from O, -. 8 cm TO 1, 5 CMg color brown-brown :; the reverse side of the colonies behsh. God color. The strain grows in the form of midi malignant cells rounded with a diameter of 3050 μm5. Strongly granular: ulified. Conidia under the specified conditions for non-forming. The colonies of this strain are easily separated from the agar medium at. when transferred into a liquid medium, small aggregates of them break down into separate cells; As they grow in liquid media, the strain of the strain into the medium ment of the medium stains in brown and light brown shrub; sometimes almost black about

Физиологические признаки. Штамм: . кулычшируют в аэробных услови х вPhysiological signs. Strain: kulichshiruyut in aerobic conditions in

погруженной культуре в жидклш ере-immersed culture in the liquid

2011 .дак, содержащих в качестве источни ка углерода преим чцественно сахарозу , глюкозу, макнит, глицерин, орга- нические кисд-оты - лимонную или  нтарную кислоту, В качестве источниг ка азота может бьп ь аммиак аспара- Sин, дрожжевой экстракт или аммонийна  соль, в качестве минеральных лей могут быть использованы хлориды нитраты, фосфаты, соли магни , железа и цинка.2011. dak, containing as a source of carbon predominantly sucrose, glucose, makhnit, glycerin, organic acids - citric or succinic acid, ammonia asparasin, yeast extract, or ammonium salt may be used as a source of nitrogen , as the mineral lees, the nitrates, phosphates, salts of magnesium, iron and zinc can be used.

Итамм отличаетс  стабильной хорошо воспроизводи1 1ой продуктивнойтьюItamm is stable and well reproducible by 1st productivity.

IS ы может быть сохранен культивировани  на средах или глубоким замо раживанием в жидком азоте.Cultivation can be maintained on media or by deep freezing in liquid nitrogen.

Культуру вырапшвагат на чашках Кетрн или в колбах на кача.тсах соCulture vyrashvagat on Ketrn cups or in flasks on kacha.tsah with

20 скоростью вращени  180-240 об/мин при 20-30 с., период культивировани  от 4 до 20 дней. Штамм выращивают на. средах при рН 3,,0-5 s5 . В. период .интенсивного синтеза алкалоидов рК20 rotation speed of 180-240 rpm at 20-30 sec., Cultivation period from 4 to 20 days. Strain grown on. environments at pH 3, 0-5 s5. B. Period. Intensive synthesis of pK alkaloids

2В среды колеблетс  от 3,12 до 6,2 в зависимости от состава использованных сред, Культ5-ширование можно прот водить одно, двух- и трехступенчато с Наиболее благопри тным  вл етйО с  использование соотношени  иноку- гаома и среды от 1:5 до 1:202B of the medium ranges from 3.12 to 6.2, depending on the composition of the used media. Cult5-shearing can be carried out in one, two or three stages with the most favorable effect using the ratio of inoculum and medium from 1: 5 to 1 :20

Пример 1, Штамм грнба С lair Iceps purpurea ВНИИА К 312-А выра- в течение 9 дней на агаризоgg ванной питательной среде T2s Затем колонии 1 омогенизируют и перенос т Б. колбы Эрле1-гмейера объемом 500 см , содержащих 50 см питательной среды Тд следующего составаj г/л5 ГлюкозаExample 1, Strain UAHa C lair Iceps purpurea VNIIA K 312-A was expressed for 9 days on a T2s agarose bath nutrient medium. Then, colonies 1 were homogenized and transported B. B. Erle1-gmeier flasks with a volume of 500 cm containing 50 cm of the following media composition j g / l 5 Glucose

40 ШО, лг-шонна  кислота 10, KHgP0440 SHO, LG-helonic acid 10, KHgP04

OjS,, Ид504- Н,0 0,3, дрожжевой экстракт 0,1 .РеЗОл Н О 0,007,OjS ,, Id504- N, 0 0.3, yeast extract 0.1. ResoN H About 0.007,

ZnSO,ZnSO,

О J 006 5 дистиллированна O J 006 5 distilled

качалках температуре 24 С в Теrocking temperature of 24 C in those

рода 1000 см .J рН до 5з2 ai-гмиаком,.1000 cm. J pH to 5z2 ai-gmiakom ,.

Культуру выращивают на в темноте приThe culture is grown on in the dark at

чение б дней,, 5 -t-m пол гченной культуры инокулир ют в колбы такого же объема с 50 см среды Т25 следугоDtero состава,, г/л, сахароза 300$ ..шкокка  кислота 15, О-З. 0,25, дрожжевой экстракт Оj КС 1 0,12, FeS047Н 0 ()s007j ZnSO 7Н,,0 0,006, дисткплированна  вода 1000 ск, рИ - до 5,2.амина к ом„ Куль тив ироБ ание тфовод г в течение 8 дней.days, a 5-t-m pollen culture is inoculated in flasks of the same volume with 50 cm of medium T25 of a medium Dtero composition, g / l, sucrose, $ 300 .. shkka acid 15, O-3. 0.25, yeast extract Оj КС 1 0.12, FeS047Н 0 () s007j ZnSO 7Н ,, 0 0.006, districted water 1000 sk, pI - up to 5.2. Amino acid ом Cult d days

Сод : ржание суг-мы пепт адньк эрго- ;шкаловдов в мицехши и культуральной жидкости определ ют по методу Румпел .Sod: Neft of a snowy pept adn ergo; scales in micellas and culture liquid is determined by the Rumpel method.

Дл  определени  алкалоидов куль- туральную жидкость отдел ют от мице лиальной массы фильтрованием. Куль- туральную жидкость отдел ют, измер ют объем, а мицелий дважды промывают дистиллированной водой по 0 м 0,3 г сырого отфильтрованного мицели  растирают в фарфоровой ступке с небольшим количеством песка и добавл ют 2 мл 4%-ного раствора винной кислоты в 50% метаноле. Полученную массу перенос т в коническую центрифужную пробирку. Экстракцию Провод т на вод ной бане при температуре 50-60 С в течение 3 мин при перемешивании . К гор чему виннокислртному извлечению добавл ют 2 мл 10%-ный раствор уксуснокислого цинка, мешивают и отстаивают в течение 10 мин. Затем центрифугируют при 2000 об/мин в течение 10 мин. К 1 мл прлученной надосадочной жидкости добавл ют 2 мл реактива Ван-Урка (раствор парадиметиЛаминобензальде- гида в 60%-ного растворе серной кислоты) и оставл ют на свету. Чере 30 мин растворы, окрашенные в сине- фиолетовый цвет, колориметрируют на ФЭК-М с зеленьм светофильтром (длина волны 540 нм) в кювете с толщиной сло  10 мм. Содержание алкалоидов рассчитьюают- по калибровоч - ной кривой, построенной по зргота- мину-тартрату. Содержание алкалоидов в процентах (Х) рассчитьшают по формуле:To determine the alkaloids, the culture fluid is separated from the mycelial mass by filtration. The culture liquid is separated, the volume is measured, and the mycelium is washed twice with 0 m distilled water. 0.3 g of the crude filtered mycelium is ground in a porcelain mortar with a small amount of sand and 2 ml of a 4% tartaric acid solution in 50% is added. methanol. The resulting mass is transferred to a conical centrifuge tube. Extraction It is carried out in a water bath at a temperature of 50-60 ° C for 3 minutes with stirring. To the hot tartaric extract, add 2 ml of a 10% solution of zinc acetate, stir and settle for 10 minutes. Then centrifuged at 2000 rpm for 10 minutes. To 1 ml of the supernatant obtained, add 2 ml of Van-Urq reagent (paramete solution Laminobenzaldehyde in 60% sulfuric acid) and leave it in the light. After 30 min, blue-violet colored solutions are colorimetric on FEC-M with a green light filter (wavelength 540 nm) in a cuvette with a layer thickness of 10 mm. The content of alkaloids is calculated using a calibration curve constructed on the basis of mineramine-tartrate. The content of alkaloids in percent (X) is calculated by the formula:

., а.4.100.100., a.4.100.100

о зПТоб-ь)  about ЗПТоб-ь)

где а - количество эргоалкалоидовwhere a is the number of ergoalkaloids

в i мл раствора, г, найденное по калибровочному графику; . b - влага, %,i ml solution, g, found on the calibration graph; . b - moisture,%

Дл  определени  содержа1Л1  эргоалкалоидов в культуральной жид- кости (КЖ) к 2 мл КЖ добавл ют 4 мл реактива Ван-Урка, перемешивают, оставл ют на свету и через 20 мин . . колориметрируют на ФЭК. Количество эргоалкалоидов (Х) в КЖ рассчитывают по формулеTo determine the content of 1L1 ergoalkaloids in the culture fluid (QL), 4 ml of Van-Urc reagent is added to 2 ml of QOL, stirred, left in the light and after 20 minutes. . colorimetric on FEC. The number of ergoalkaloids (X) in QOL is calculated by the formula

X а.1000-100 мг %,X a.1000-100 mg%

,  ,

342011342011

где а - кол1-гчество эргоалкалоидов в I мл КЖ, г, найденное по калибровочному, графику. Общую алкалоидную продуктивность подсчитывают как сумму алкалоидов, найденных в КЖ и мицелии. Дл  идентификации алкалоидов провод т вы-: деление суммы алкалоидов из КЖ-и 10 мицели . КЖ и мицелш подщелачивают до рН 9-10, экстрагируют хлористым метиленом, затем 2%-ным водньп-i раствором кислоты. Биннокислотное извлечение подп елачивают до рН 9 и вновь . 15 экстрагируют хлористьгм метиленом. Xлopиctoмeтилёнoвый экстракт сгущают и добавл ют гексан дл  осаждени  алкалоидов. Полученную порош- кообуазную сумму алкалоидов сушат 20 в вакууме.. Пепт -1дные эргоалкалоиды в вьщеленной сукше подтверждают ме- |тодами тонкослойной хроматографии с разными сорбентами в разнътх системах , растворителей в сравнении с досто- 25 верными образцами эргоалкалоидов пептидного типа (группы эрготамина и эрготоксина), методом жидкостной хроматографии и установлением аминокислотного состава пептидной части 30- молекулы после кислотного гвдролиза.where a is the number of ergoalkaloids in I ml of QOL, g, found from the calibration schedule. The total alkaloid productivity is calculated as the sum of the alkaloids found in QOL and mycelium. To identify alkaloids, you carried out: - division of the amount of alkaloids from QOL and 10 mycelium. QOL and micelles are alkalinized to pH 9-10, extracted with methylene chloride, then with a 2% aqueous solution of acid. The binnacid extraction of the sub is acidified to pH 9 and again. 15 is extracted with methylene chloride. The chloro-methyl selective extract is concentrated and hexane is added to precipitate the alkaloids. The obtained powdered amount of alkaloids is dried in a vacuum 20. ), by the method of liquid chromatography and the determination of the amino acid composition of the peptide part of the 30- molecule after acid hydrolysis.

Таким образом, проведенна  проверка показала, что Ciaviceps purpurea ВНИЙА № 3I2-A продуцирует j- пептидные эргоалкалоиды, при этом продуктивность его в процессе ферментации составл ет на 8 сутки куль- тивировани  1657 /мл.Thus, the test showed that Ciaviceps purpurea VNIIA No. 3I2-A produces j-peptide ergoalkaloids, while its productivity in the fermentation process is 1657 / ml on the 8th day of cultivation.

40 11ример2. Культуру выращивают на агаризованной среде Т2 и в среде Тд аналогично примеру I. 5 мл инокульной массы засевают кол- бы 50 см среды 668 следующего сос.40 11example2. The culture is grown on T2 agar medium and in Td medium as in Example I. 5 ml of the inoculum mass is inoculated with a 50 cm flask of medium 668 of the next flask.

45 тава, г/л: сахароза 60, глицерин 60, глюкоза 80, дрожжевой экстракт 0,1, лимонна  кислота 15, КС1 0,125, КНгРО 0,5, 0,5, x7H,b 0,007, ZnSO. -0,006, дне5Q тиллированна  вода - 1000 см , рН до 5,2 аммиаком. Через 10 дней выращивани  штамм продуцирует 1701 у/ /мл суммы эргоалкалоидов.45 tava, g / l: sucrose 60, glycerin 60, glucose 80, yeast extract 0.1, citric acid 15, KCl 0.125, KNgRO 0.5, 0.5, x7H, b 0.007, ZnSO. -0.006, bottom 5Q tilled water - 1000 cm, pH up to 5.2 with ammonia. After 10 days of cultivation, the strain produces 1701 y / ml of the amount of ergoalkaloids.

55 П р и м е р 3. Колонии с агаризо- ванной среды Т2, выращенные 21 день, гомогенизируют, засевают колбы Эр- ленмейера с 50 см среды Тд и выращивают в тех же услови х, что и в55 EXAMPLE 3. Colonies from the T2 agar medium, grown for 21 days, are homogenized, seeded with Erlenmeyer flasks with 50 cm of medium Td and grown under the same conditions as in

513420П 513420П

Claims (1)

примере 2, 5 мл инокульной массы зй Формула изобретени  севают колбы с 50 см среды 668,Example 2, 5 ml of inoculum mass Через II дней культивировани  штамм Штамм гриба Clavlceps purpurea продуцирует 2315 у/нп суммы эргоап-. ВНИИА W - продуцент пептидных калондов.,эргоалкалоидов.After II days of cultivation, the strain of the strain of the fungus Clavlceps purpurea produces 2315 y / np ergoap- amount. VNIIA W - producing peptide calonds., Ergoalkaloids.
SU853841889A 1985-01-10 1985-01-10 Strain of claviceps purpurea fungus as producer of peptide ergoalcaloids SU1342011A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853841889A SU1342011A1 (en) 1985-01-10 1985-01-10 Strain of claviceps purpurea fungus as producer of peptide ergoalcaloids

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853841889A SU1342011A1 (en) 1985-01-10 1985-01-10 Strain of claviceps purpurea fungus as producer of peptide ergoalcaloids

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1342011A1 true SU1342011A1 (en) 1990-02-23

Family

ID=21157891

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU853841889A SU1342011A1 (en) 1985-01-10 1985-01-10 Strain of claviceps purpurea fungus as producer of peptide ergoalcaloids

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1342011A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Патент СССР № 562205, . кл. С 12 Р 33/20, опублик.1973. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20240300867A1 (en) Brevundimonas and use thereof in tea plant planting
PETERSEN et al. Production of cladospirone bisepoxide, a new fungal metabolite
SU1342011A1 (en) Strain of claviceps purpurea fungus as producer of peptide ergoalcaloids
CA1086668A (en) Process for preparation of 7-amino-cephem compounds using mold fungi
US3110651A (en) Method of artificial cultivation of ergot
CN116121080A (en) Aspergillus aculeatus and application thereof in tannase and gallic acid production
RU2146287C1 (en) Method of selenium-containing spirulina producing
US4447540A (en) Microorganism strain of species Claviceps purpurea
KR850001939B1 (en) Process for preparing a-32724 antibiotics
US4968610A (en) Process for the preparation of chanoclavine
CN111254083A (en) Antacoside A and preparation method and application thereof
GB2071651A (en) Fermentation process for the preparation of ergot alkaloids
US4870185A (en) Hapalindoles
KR100592129B1 (en) Liquid Culture Method for Mass Production of Chaga Mushrooms (Inonotus Obliquus)
JP2695225B2 (en) New substance UCT-1003
JPS639834B2 (en)
RU2078138C1 (en) Strain of bacterium arthrobacter globiformis - a producer of coproporphyrin-iii and a method of coproporphyrin-iii preparing
US3803307A (en) Antibiotic sl 21429
EP0171283A2 (en) Hapalindoles
JPH0662836A (en) New killer yeast
KR950005548B1 (en) Antibiotic GTX-01 and its manufacturing method
US20050054031A1 (en) Method for producing novel beta-lactam antibiotic from protoplast fusion strain
JPS61149095A (en) M4854-ii and production thereof
CZ282334B6 (en) High-production strain of penicillium chrysogenum ccm 8196 micro-organism
EP0189430B1 (en) Process for the production of festuclavin