SU584801A3 - Способ получени фермента, окисл ющего холестерин до перекиси водорода и холестенона - Google Patents

Способ получени фермента, окисл ющего холестерин до перекиси водорода и холестенона

Info

Publication number
SU584801A3
SU584801A3 SU7301934663A SU1934663A SU584801A3 SU 584801 A3 SU584801 A3 SU 584801A3 SU 7301934663 A SU7301934663 A SU 7301934663A SU 1934663 A SU1934663 A SU 1934663A SU 584801 A3 SU584801 A3 SU 584801A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
enzyme
buffer solution
phosphate buffer
culture
atcc
Prior art date
Application number
SU7301934663A
Other languages
English (en)
Inventor
Грубер Вольфганг (Австрия)
Ульрих Бергмайер Ханс (Австрия)
Нельбек-Хохштеттер Михаель (Австрия)
Бокан Клаус (Фрг)
Хольц Гюнтер (Фрг)
Грамзалль Иоханна (Фрг)
Ланг Гюнтер (Фрг)
Original Assignee
Берингер Маннхайм Гмбх, (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from DE2224131A external-priority patent/DE2224131B2/de
Application filed by Берингер Маннхайм Гмбх, (Фирма) filed Critical Берингер Маннхайм Гмбх, (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU584801A3 publication Critical patent/SU584801A3/ru

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

1
Изобретение относитс  к области микробиологии.
Способ получени  фермента, окисл ющего холестерин до перекис;и водорода и холестенона заключаетс  в том, что биомассу микроорганизмов-продуцентов экстрагируют буфером, содержащим неионогенное поверхностно-активное вещество и выдел ют целевой прод кт из бесклеточного экстракта, кроме того в качестве продуцента используют культуру ProactijioJnvce eivthropotis штамм NBC 9158. или ЛТСС 17895,или АТСС 42 77,или культуру Bocardioi formica штамм АТСС 14811,
Микроорганизмы разлагают, раствор ют и извлекают с помощью буферного раствора, содержащего неионогенное поверхностно-активнае средство.
Предпочитаекыьда неионогенными поверхностно-активными средствами  вл ютс  ёьпкиларилэтиленг. и аддукты окисей полиэтилена и полипропилена, в особенностг: их сложные эфиры. Принципиальна  концентраци  пов ерхностно-активного средства в используемом дл  разложени  (растворени ) и дл  экстрагировани  в буферном растворе зависит от примен емого поверхностно-активного средства и может определ тьс  с помощью предварительных испытаний. При
годны концентрации 0,01-3%, преимущесвенно 0,1-1%. РН буферного раствора 5-9, предпочтительно 6-8.
Ьсобенно хорошие результаты получаютс , если микроорганизм перед растворением и перед экстракцией в прису ствии поверхностно-активного средства промывают смесью бутанола и воды.
Полученный экстракт, содержащий в растворе Фермент, очищают на ионообменнике .
В качестве ионообменника примен ют анионообменные смолы, в особенности слабобазисные сорта, предпочтительными ионообменниками  вл ютс  и те, которые несут диэтиламиноэтаноловую группу.
Вымывание ионообменника осуществл ют 0,01-0,2 М буферным раствором с рН 5-9. Концентраци  поверхностно-активного средства:преимущественно 0,052% .
Предпочтительно применение 0,03- 0,1 М фосфатного буферного раствора с содержанием 0,2-0,7% поверхностноактивного неионогенного средства.
Из полученного таким путем элюата фермент осаждают с помощью солей или органических растворителей, например сульфата аммокк , метанола и других.
Дл  повторного растворени , осажденного фермента примен ют.. буферный раствор, который содержит небольшое количество поверхностно-активного 1гредства.5
Фермент, полученный после и нооб шнного вымывани  можно использовать непосредетвенно дл  количественного определени  холестерина согласно уравнению «О колестёрин (НН) ( О,холестенон4-НаОйАктивность фермента и эффективность предла аемого способа определ ют благодар  тому, ЧТО1 образукадуюс  фракцию HgO замер ют по известным методам оп- , ределени 
Микроорганизмы выращивают на среде из минеральных солей, содержащих пептон; и как только достигают логариф;ьшчвской фазы роста, ;добавл ют водиую эмульсию, которую изготавливают путем мокрого размола водной суспеввчи холестерина и последующей стерилизацией при высокой температу зе.
Таким Ьбразом удаетс  достичь 100% использовани  холестерина в течение 25 односуточного выравнивани  культуры (| шкроорганизма) при выходе L-2 г чисгой субстанции сухих клеток. Бульон с купьтуроП добавл ют в таком колидестве , что задают 1-20 г холестерина 30 йа каждый литр в период роста. Загруэку осуществл ют порци ми по мере микроорганизмов.
Небольшое количество холестерина добавл ют в бульон с культурой ещё в ад начале роста, т.е. перед достижением логарифмической фазы роста.
В качестве питательной среде исполь- ауют водный.раствор, содержащий вес.%s 0,1-2 пептона, 0,01-0,2 , 0,05i , 0, гептагидрата суль ата магни , котора  содержит следы хлорида железа и хлорида кальци , рН 6-9. Начсшьна  загрузка холестерина составл ет 0,01-0,1%.
Удельное содержание фермента до 7 V/r сухой массы бактерий и 1-3,5 г сухой массы бактерий на .каждый литр йигательной среды.
Удельное содержание микроорганизвж в в ферменте удаетс , увеличить благодар  тому что лшкроорганизм сна«аала вЕзраашвают на ацетате и затем на холестерине в качестве единственного |йсточника углерода,.
Так, например при выращиваний-мик- роорганизмбв на среде из минеральных солей с указанным выше составом, но при замене пептона ацетатом вколичестве 0,5 вес,% до начала добавлени  холестериновой эмульсии достига- Йй ют повышени  удельной активности до 24 V/r сухой массы, одновременно увеличиваетс  содержание сухой массы до б,5-г/л. Значительное повышение содержани  сухой масйы и активности до- g$
ртигают благодар  тому, что к водной суспензии холестерина добавл ют в качестве эмульгатора небольшое количестйо 0,02-1, предпочтительно 0,05-0,3 вес.-% дрожжевого экстракта.
Предпочтительна  питательна  среда состоит из водного раствора с содержанием 0,1-2 вес.% ацетата (ацетата чм мони ), 0,01-0,2 вес,% KgHPO,, 0,051 вес.% , 0,05-0,l вес.% сульфата магни  в качестве гептагидрата, следовхлорида железа и хлорида кальци  с величиной рН 6-9. При достижении логарифмической $азы роста ацетат эамен ют хо.естерином. Чтобы величина рН в период эьфащивани  оставалась посто нной , ttenpeiX:iBHO или порци ми загружают кислоту. Во врем  фаз роста с помощью ацетата в качестве источника углерода примен ют уксусную кислоту , как только переход т на холестерин , уксусную кислоту замен ют минеральной кислотой. В этой второй стадии роста npHMeansTt сол ную кислоту дл  р«гулирован11Я величины рн. При этом достигают активность до 30V/r сухол ы&ссы,
; Пример 1.2л питательной среды, состо щей из вес.% казеинового пептона, 0,05 вес.% , 0,2 вес,% H KjPOv, 0,02 вес.% гепта-гидрата сульфата магни , следов хлорида железа и хлорида кальци  в водопроводной водо и с помощью КОН регулируют величину рН 7,5, засевают в качающейс  колбе с 200 мл хорошо вы рсшей предварительной культуры Р г OCSC i 1 по m у с е 5 er-vthropogig ЫВ(СГ Э15Жи сильно вентилируют иа магнитной мешалке. С началом логарифмической фазы роста, определ емой по возникающему увеличению помутнани , в период дальнейшего В1:фащивани  периодически загружают приготовленную с помощью мокрого размола, стерилизованную холестериновую эмульсию,таким образом, что в течение 20 ч в колбу загружают 10 г холестерина. Через 5 ч после по- следней загрузки клеточную массу собирают nyteM центрифугировани . Получают 4 г сухой массы бактерий. После расщеплени  с помощью ультразвука получают 3V/г фермента.
Пример 2. в сосуде культивируют 15л описанной в примере 1среды вместе с 0,5л хорошо выращенной предварительной культурой PfoactinoTTtTces ervttirpogis АТСС 17895 при сильной аэрации.С самого начала загружают 0,05% холестерина .С началом логарифмического рос та непрерывно загружают cтepилизoвaнt ную холестериновую суспензию в течение дальнейшего выращивани , так что в ферментер загружают в целом 50 г холестерина за 15 ч выращивани . При этом получают бактериальн то массу в 40 г. Из бактериальной массы посредством расщеплени  (разложени ) ультразвуком получают 7,1 V /г фермента.
Приме р 3. Как описано в примере 2, в рабочем объеме 60 л культивируют бактерии Prooctinomyces .erylhropofis (ВС 9158) . Приблизительно через 25 ч ввод т свежую питательную среду в сосуд дл  выращивани  бактерий и забирают раствор с вьфосшей культурой из этого сосуда.
Одновременно в ферментатор ввод т холестериновую суспензию; за 1 ч загружают около 3 г холестерина. Таким образом при непрерывном выращивании получеиот 1,2-1,5 г/л бактериальной сухой массы с одинаковой удельной активностью .
Пример4. В ферментаторе емкостью 20 ПК 15 л питательной среды, состо щей из 0,5 вес.% ацетата аммони , 0,05 вес.% вторичного фосфата кали , 0,2 вес.% первичного фосфата аммони , 0,02 вес.% гептагидрата сульфата магни  и следов хлориду железа и кальци  в водопроводной воде, засеивают 0,5 л хорошо выращенной предварительной культуры бактерий Proactinomjce rythrofotiA ЫВС 9158 и культивир1тот пр сильной аэрации.
Величину рН культуры поддержива от посто нной посредством текущей,загруз ки 20%-ной уксусной кислоты до конценрации биомассы около 1,5 г/л. После достижени  этого содержани  стерилизованную суспензию непрерывно загружают в ходе дальнейшего выращивани  таким образом, что в целом в ферментатор загружают 30 г холестерина в течение 20 ч выргшшвани  культуры. Холестеринова  суспензи  содержит 0,1-0,2% дрожжевого экстракта. Зааем дл  нейтрализации культуры вместо уксусной кислоты используют разбавленную сол ную кислоту.
После завершени  культивировани  биомассу с помс цыо центрифугировани  отдел ют от раствора культуры.
Примерз. При двухступенчатом непрерывном способе выращивани  комбинируют два ферментатора с рабочими объемами 15 л дл  первой и 70 л дл  второй ступени таким образом, что при часовом протоке 4 л, описанной в примере 1 питательной средаа получаетс  дол  протока 0,25-0,30 дл  первой ступени и 0,055-0,065 дл  второй. К началу культивировани  вторую ступень засевают хорошо выращенной предварительной культурой бактерий Prvac-. tinomyces eirithropolis , ATGC 17895 В количестве 1,5 л и вторую ступень засевают такой же предварительной культурой в количестве 0,5 л при сильной; аэрации обеих ступеней, причем первую ступень нейтрализуют с помощью уксусной кислоты, а вторую ступень с по (ющыо сол ной кислоты.
Одновременно во вторую ступень включают систему притока (4 л питательной среды/чар). Величину рН выдерживают 7-7,5. Таким образом за 1 ч получают 4 л бульона с культурой при 7 г/л при активности 30 /г сухой массы. Раствор культуры собирают в охлажденном резервуаре и бактериальную массу выдел ют из него на непрерывно действующей центрифуге. Дл  регулировани  виличины рН в первой ступени на каждый час требуетс  приблизительно 10 г :100%-ной уксусной киспоты .
fipHMepS. 40 мл суспензии с бактери ми Hocapdia erythropofis (около 10 г сухой массы)примешивают к 40 мл 1г -бутанола и в течение нескольких минут перемешивают при комнатной температуре. Смесь центрифугируют и из нее удал ют бутанол и лишнюю водную фазу. Осадок снова примешивают к 40 мл воды и после изготовлени  гомогенной суспензии клеток снова при-мешивают к 40 мл п -бутанола, несколко минут-перемешивают и. центрифугиру-t ют. Осадок суспендируют в 40 мл 0,01 ; буферного раствора фосфата (рН 7,0), к которому добавл ют 0,3% неионогенного поверхностно-активного средства (алкиларилполиэтиленгликоль) и перемешивают в течение 30 мик при комнат- ной температуре. Затем центрифугируют и оссщок извлекают. Экстракт содержит около 120 ед. фермента с уделаИой активностью 3 ед/м  протеина.
Этот экстракт примешивают к твер- ; дому сульфату аммони  до концентра ,ции 1,3 М в сульфате аммони  при температуре О С, затем суспензию центрифугируют , осадок собирают на основе очевидной липофильной доли на поверхт ности раствора. Спеченный осадок фил$труют , рас-рвор ют с 0,01 М буферного раствора фосфата, рН 7 и при температуре О С подвергают диализу по отношению к тому же буферному раствору, Диализированный раствор пропускают через уравновешенную с помощью 0,01 М фосфатного буферного, раствора колонну товарного анионита с диэтилЬминоэтаноловыми группами на основе дэкстрана. При этом фермент адсорбируетс . После промывки колонны с помощью того же буферного раствора npoj извод т последовательно промывку растворами с 0,5%, 2% и 5% указанного вы-Ь ше поверхностно-активного средства в воде. При этом вымываютс  большие количества загр знений.

Claims (2)

  1. Затем последовательно, осуществл ют промывку с помощью 0,1 М фосфатного буферного раствора, рН - 7; 0,05 М фосфатного буферного раствора, рН - 7, 0,2м фосфатного буферного раствора, рН 7, и 0,5 М фосфатгчого буферного раствора рН 7. Затем снова п5юизвод т промывку с помощью 0,05 М фосфатного буферного раствора (рН 7) и фермент с 0,05 М фосфатного раствора, к которому добавл ют 0,05% поверхностно-активного сред ства, вымьгааетс . В элюате наход тс  около 80% адсорбированной на колонне ферментной активности в ферменте с удельной активностью 25-30 V/мг протеина. Пример 7. Повторно осуществл ют способ по примеру 6, но промывку во дой с бутанолом не производ т,Таким об разом, получают экстракт дл  высг1живани  сульфата аммони , который содержит около 120. ед. фермента с удельной активностью в 1ед/мл протеина. Дальнейшее обогащение известным способом приводит к получению продукта с удельиой активностью 8-10 V /мг протеина. Примере. Повтор ют способ по примеру 6, но вымывание анионита осу1гествл ют с помощью водного раствора, кото1илй содержит 5% такого же поверхностно-активного средства в растворенном состо нии. Фермент поглощаетс  из внионита (анионообменной смоле). Формула изобретени  1.Способ получени  фермента, скисл кидего холестерин до перекиси водорода и холестенона,отличающийс   тем, что биомассу микроорганизмовпродуцентов экстрагируют буфером, содержгшшм неионогенное поверхностно-активное вещество и выдел ют целевой продукт из бесклеточного экстракта.
  2. 2.Способ по п. 1, отличающийс  тем, что в качестве проду-, Цента используют культуру Proociinomyoes «r thropotis штамм КВС 9158, или АТСС 17895, или АТСС 4277, или культуру НосалКа formica штамм АТСС 14811
SU7301934663A 1972-05-17 1973-05-17 Способ получени фермента, окисл ющего холестерин до перекиси водорода и холестенона SU584801A3 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2224131A DE2224131B2 (de) 1972-05-17 1972-05-17 Verfahren zur Gewinnung des Enzyms Cholesterinoxydase, welches Cholesterin mit O tief 2 zu Cholestenon und H tief 2 O tief 2 oxydiert
DE2224133A DE2224133B2 (de) 1972-05-17 1972-05-17 Verwendung von bestimmten Mikroorganismen-Stämmen zur Gewinnung von Cholesterinoxydase, welche Cholesterin mit O tief 2 zu Cholestenon + H tief 2 O tief 2 oxydiert

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU584801A3 true SU584801A3 (ru) 1977-12-15

Family

ID=25763267

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU7301934663A SU584801A3 (ru) 1972-05-17 1973-05-17 Способ получени фермента, окисл ющего холестерин до перекиси водорода и холестенона

Country Status (2)

Country Link
HU (1) HU169971B (ru)
SU (1) SU584801A3 (ru)

Also Published As

Publication number Publication date
HU169971B (ru) 1977-03-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4144129A (en) Cholesteroloxidase and method for its production from microorganisms
CN110218661A (zh) 一种热带假丝酵母菌及其应用、以及一种长链二元酸的生产方法
CN112239728B (zh) 一种适用于蛹虫草菌培养的含有还原型谷胱甘肽的合成培养基、制备方法及应用
US2576932A (en) Fermentation process for production of vitamin b12
US3776816A (en) Process for producing steroid dehydrogenase
CN110791462A (zh) 一株枯草芽孢杆菌及其在发酵生产腺苷中的应用
EP0082114B1 (de) Mikroorganismen des Genus Hyphomicrobium und Verfahren zum Abbau von Methylgruppen-haltigen Verbindungen in wässrigen Lösungen
Lee et al. Large-scale production of Azotobacter
CS217986B2 (en) Method of making the 2-keto-l-gulonic acid
CN105036330B (zh) 一种结晶型精酮合剂的制备方法
CN117384770B (zh) 一种连续流生产单细胞蛋白的方法
US2951017A (en) Cobalamin producing fermentation process
JPS59151894A (ja) グルタチオン高含有酵母の製造法
CN118389295A (zh) 一株塔宾曲霉ptn02及其应用
US3957579A (en) Method for preparing d-tartaric acid
DE69520829T2 (de) Herstellung von L - Ascorbinsäure in Mikroorganismen
MÄKINEN et al. Effect of Xylitol on Some Food‐Spoilage Microorganisms
JPS6279777A (ja) ス−パ−オキシドデイスムタ−ゼの製造方法
US3986933A (en) Method of preparing yeasts enriched in l-lysine and capable of excreting organic acids
US2816856A (en) Improvement in production of vitamin b12 products by propionibacterium freudenreichii
US5792646A (en) Process for preparing S. cerevisiae containing organically bound germanium
DE1695598C3 (ru)
US2817624A (en) Preparation of ergosterol containing yeast
DE1922843A1 (de) Mikrobiologisches Oxydationsverfahren
US2943983A (en) Process of obtaining concentrates of vitamins of the b12 group from waste liquors and residual products of industrial fermentation processes