UA65968A - Method for assessing sensitivity of clinical bacterial isolates to disinfectants - Google Patents
Method for assessing sensitivity of clinical bacterial isolates to disinfectants Download PDFInfo
- Publication number
- UA65968A UA65968A UA2003076352A UA2003076352A UA65968A UA 65968 A UA65968 A UA 65968A UA 2003076352 A UA2003076352 A UA 2003076352A UA 2003076352 A UA2003076352 A UA 2003076352A UA 65968 A UA65968 A UA 65968A
- Authority
- UA
- Ukraine
- Prior art keywords
- microorganisms
- sensitivity
- disinfectants
- disinfectant
- nutrient medium
- Prior art date
Links
- 239000000645 desinfectant Substances 0.000 title claims abstract description 39
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 22
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 title claims abstract description 19
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 title abstract 4
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 16
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 13
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims abstract description 7
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims description 29
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 2
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 claims 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 abstract description 3
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 abstract 3
- 230000003472 neutralizing effect Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 11
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 10
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 9
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 7
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 7
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 7
- 241000191940 Staphylococcus Species 0.000 description 5
- QDHHCQZDFGDHMP-UHFFFAOYSA-N Chloramine Chemical compound ClN QDHHCQZDFGDHMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- AKHNMLFCWUSKQB-UHFFFAOYSA-L sodium thiosulfate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]S([O-])(=O)=S AKHNMLFCWUSKQB-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 4
- 235000019345 sodium thiosulphate Nutrition 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 2
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 description 2
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 2
- 238000003908 quality control method Methods 0.000 description 2
- 238000009331 sowing Methods 0.000 description 2
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 229940064004 antiseptic throat preparations Drugs 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 239000000644 isotonic solution Substances 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- 230000003449 preventive effect Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Запропонований спосіб відноситься до галузі медицини, а саме до мікробіології.The proposed method refers to the field of medicine, namely to microbiology.
Відомий спосіб визначення чутливості (стійкості) мікроорганізмів до антисептичних (дезінфікуючих) засобів, розроблений на кафедрі мікробіології Мінського державного медичного інституту (Красільніков О.П. Справочник по антисептике // Мінськ: Виішзйшая школа-1995. - 3670.)A well-known method of determining the sensitivity (resistance) of microorganisms to antiseptic (disinfectant) agents, developed at the Department of Microbiology of the Minsk State Medical Institute (O.P. Krasilnikov, Handbook of antiseptics // Minsk: Vyishzhyshaya shkola-1995. - 3670.)
Найбільш близьким до запропонованого нами є спосіб визначення чутливості мікроорганізмів до дезінфектантів (Морозова Н.С., Кібардіна Н.Н., Волошенко ПП. Г. Лабораторньй контроль качества дезинфекционньїх мероприятий в лечебно-профилактических учреждениях // Методичні рекомендації. -The method of determining the sensitivity of microorganisms to disinfectants is the closest to the one proposed by us (N.S. Morozova, N.N. Kibardina, PP. G. Voloshenko. Laboratory quality control of disinfection measures in treatment and prevention facilities // Methodological recommendations. -
Харківський НДІ мікробіології та імунології ім. Мечнікова І.І. - 1989. - 25с.), що здійснюють наступним чином: з добової культури мікроорганізмів, що досліджується на чутливість до дезінфікуючого засобу, готується 2-х міліаардний завис, який використовують для підготовки тест-об'єктів за загальноприйнятою методикою. Тест- об'єкти заливають дезінфектантом (з розрахунку 0,5мл на один тест-об'єкт), через кожні 5 хвилин протягом 2-х годин по два тест-об'єкта виймають з дезінфікуючого розчину, послідовно промивають в гіпосульфіті натрію та стерильній воді перед внесенням у рідке живильне середовище (м'ясо-пептонний бульйон). Після інкубації пробірок з м'ясо-пептонним бульйоном і тест-об'єктами в термостаті 24 години оцінюють чутливість культури до дезінфектанта по наявності (відсутності) її росту в рідкому живильному середовищі.Kharkiv Institute of Microbiology and Immunology named after Mechnikova I.I. - 1989. - 25 p.), which are carried out as follows: a 2 milliard suspension is prepared from the daily culture of microorganisms, which is tested for sensitivity to the disinfectant, which is used to prepare test objects according to the generally accepted method. Test objects are filled with disinfectant (at the rate of 0.5 ml per test object), after every 5 minutes for 2 hours, two test objects are removed from the disinfectant solution, successively washed in sodium hyposulfite and sterile water before adding to a liquid nutrient medium (meat-peptone broth). After incubation of test tubes with meat-peptone broth and test objects in a thermostat for 24 hours, the sensitivity of the culture to the disinfectant is assessed by the presence (absence) of its growth in the liquid nutrient medium.
Недоліками відомого способу є: 1) трудоємність процесу дослідження та затруднене виконання деяких його етапів (необхідність майже одночасного переносу тест-об'єктів в різні пробірки за допомогою петлі); 2) спосіб потребує великої затрати робочого часу, використання великої кількості лабораторного посуду, реактивів та живильного середовища; 3) під час перебування тест-об'єктів в дезінфектанті і послідовного промивання в розчині гіпосульфіту натрію та стерильній воді перед внесенням у м'ясо-пептонний бульйон відбувається зменшення дози тест-культури на тест-об'єкті, що знижує ступінь точності визначення чутливості.The disadvantages of the known method are: 1) the laboriousness of the research process and the difficult implementation of some of its stages (necessity of almost simultaneous transfer of test objects to different test tubes using a loop); 2) the method requires a large amount of working time, the use of a large number of laboratory dishes, reagents and nutrient medium; 3) during the stay of the test objects in the disinfectant and successive washing in a solution of sodium hyposulfite and sterile water before introduction into the meat-peptone broth, the dose of the test culture on the test object decreases, which reduces the degree of accuracy of determining the sensitivity .
Ці недоліки способу є причиною затрудненого його виконання, а отже, і впровадження в повсякденну роботу бактеріологічних лабораторій, що здійснюють контроль якості дезінфекційних заходів в лікувально- профілактичних закладах.These shortcomings of the method are the reason for its difficult implementation, and therefore, its introduction into the daily work of bacteriological laboratories that carry out quality control of disinfection measures in medical and preventive institutions.
В основу винаходу поставлене завдання розробити спосіб визначення чутливості клінічних штамів мікроорганізмів до дезінфектантів шляхом удосконалення відомого, досягти спрощення його виконання, зниження трудоємності і затрат часу та забезпечити підвищення ступеню точності визначення чутливості мікроорганізмів до дезінфектантів.The invention is based on the task of developing a method for determining the sensitivity of clinical strains of microorganisms to disinfectants by improving what is known, achieving simplification of its implementation, reducing labor and time consumption, and ensuring an increase in the degree of accuracy of determining the sensitivity of microorganisms to disinfectants.
Поставлене завдання вирішують створенням способу визначення чутливості клінічних штамів мікроорганізмів до дезінфектантів, що включає виготовлення 2-х міліардного завису мікроорганізмів, експозицію мікроорганізмів дезрозчині, висів на живильне середовище та витримку в термостаті протягом 24-х годин при 37"С, який, згідно винаходу, відрізняється тим, що дії дезінфектанта піддають суспензію мікроорганізмів, їх висів здійснюють на поверхню твердого живильного середовища з нейтралізатором, розміщеного в чашці Петрі і розділеного на сектори, а про чутливість мікроорганізмів до дезінфектантів судять по наявності чи відсутності колоній на поверхні живильного середовища відповідних секторів.The task is solved by creating a method for determining the sensitivity of clinical strains of microorganisms to disinfectants, which includes the production of a 2 billion suspension of microorganisms, exposure of microorganisms to a disinfectant solution, hanging on a nutrient medium and holding in a thermostat for 24 hours at 37"C, which, according to the invention, differs in that a suspension of microorganisms is exposed to the action of a disinfectant, they are sown on the surface of a solid nutrient medium with a neutralizer, placed in a Petri dish and divided into sectors, and the sensitivity of microorganisms to disinfectants is judged by the presence or absence of colonies on the surface of the nutrient medium of the corresponding sectors.
Спосіб здійснюють наступним чином чашку Петрі з м'ясо-пептонним агаром і нейтралізатором ділять на 6 секторів (відповідно до кількості посівів). ІЗ добової культури мікроорганізмів готують 2-х міліаардний завис в ізотонічному розчині натрію хлориду та дезінфектанті. 0,4мл завису після певної експозиції із пробірки з дезінфектантом переносять мікропіпеткою та розподіляють бактеріологічною петлею по поверхні відповідного сектора чашки Петрі. Кількість посівів (а відповідно і секторів на чашці Петрі) може варіювати, але ми вважаємо за доцільне здійснювати З посіви до встановленої для даного дезінфектанта експозиції та 2 посіви після встановленої експозиції. Якщо встановлена експозиція становить 60 хвилин, то посіви здійснюють через 5(10), 20, 40, 60, 90 хвилин, якщо встановлена експозиція 30 хвилин, то посіви здійснюють через 5, 15, 20, 30, 60 хвилин.The method is carried out as follows: a Petri dish with meat-peptone agar and a neutralizer is divided into 6 sectors (according to the number of crops). A 2 milliard suspension is prepared from the daily culture of microorganisms in an isotonic solution of sodium chloride and a disinfectant. After a certain exposure, 0.4 ml of the suspension is transferred from a test tube with a disinfectant with a micropipette and distributed with a bacteriological loop on the surface of the corresponding sector of the Petri dish. The number of inoculations (and, accordingly, the sectors on the Petri dish) may vary, but we consider it expedient to carry out Z of inoculations before the exposure established for this disinfectant and 2 inoculations after the established exposure. If the set exposure is 60 minutes, then sowing is carried out after 5(10), 20, 40, 60, 90 minutes, if the exposure is set for 30 minutes, then sowing is carried out after 5, 15, 20, 30, 60 minutes.
Контрольним має бути посів на відповідний сектор чашки 0,4-х мл завису досліджуваних мікроорганізмів у фізіологічному розчині натрію хлориду. Чашку з посівами ставлять в термостат на 24 години при 37"С. Через добу проводять облік та оцінку результатів дослідження.The control should be inoculation on the appropriate sector of the cup with 0.4 ml of the suspension of the investigated microorganisms in a physiological solution of sodium chloride. The cup with crops is placed in a thermostat for 24 hours at 37"C. After a day, the results of the study are recorded and evaluated.
Відсутність росту мікроорганізмів на відповідному секторі м'ясо-пептонного агару свідчить про загибель мікроорганізмів у дезінфектанті при даній експозиції.The lack of growth of microorganisms on the corresponding sector of meat-peptone agar indicates the death of microorganisms in the disinfectant at this exposure.
Наявність росту мікроорганізмів на секторі м'ясо-пептонного агару свідчить про нечутливість мікроорганізмів до дезінфектанта при даній експозиції.The presence of growth of microorganisms on the sector of meat-peptone agar indicates the insensitivity of microorganisms to the disinfectant at this exposure.
Високочутливими до даного дезінфектанта вважаємо мікроорганізми при відсутності їх росту на м'ясо- пептонному агарі після експозиції в дезінфектанті 5-10 хвилин.We consider microorganisms highly sensitive to this disinfectant if they do not grow on meat-peptone agar after exposure to the disinfectant for 5-10 minutes.
Чутливою - при відсутності росту на м'ясо-пептонному агарі після встановленої для даного дезінфектанта експозиції.Sensitive - in the absence of growth on meat-peptone agar after exposure established for this disinfectant.
Нечутливими - при наявності росту на м'ясо-пептонному агарі після встановленої для даного дезінфектанта експозиції.Insensitive - in the presence of growth on meat-peptone agar after exposure established for this disinfectant.
Запропонований нами спосіб відрізняється від відомого способу визначення чутливості мікроорганізмів до дезінфектантів наступним: 1) дії дезінфектанта піддається не тест-об'єкт, а суспензія мікроорганізмів, тому етап приготування тест- об'єктів опускається; 2) після експозиції в дезінфектанті посів мікроорганізмів здійснюють на поверхню твердого живильного середовища, а не у рідке живильне середовище, як при використанні способу-прототипу;The method proposed by us differs from the known method of determining the sensitivity of microorganisms to disinfectants as follows: 1) the disinfectant is not exposed to the test object, but the suspension of microorganisms, therefore the stage of preparation of test objects is omitted; 2) after exposure to the disinfectant, microorganisms are seeded on the surface of a solid nutrient medium, and not in a liquid nutrient medium, as when using the prototype method;
З) тверде живильне середовище, на яке здійснюють посів мікроорганізмів, містить гіпосульфіт натрію чи інший нейтралізатор (в залежності від дезінфектанта), що позбавляє наш спосіб трудоемкого етапу промивання тест-об'єктів в гіпосульфіті натрію та стерильній воді перед посівом на живильне середовище; 4) кількість посівів мікроорганізмів на живильне середовище при використанні нашого способу менша: З посіви до встановленої для даного дезінфектанта експозиції, 2 посіви після встановленої експозиції та 1 контрольний, на відміну від 24-х посівів при виконанні способу-прототипу; 5) про чутливість мікроорганізмів до дезінфектанта судять не по наявності (відсутності) помутніння м'ясо- пептонного бульйону, а по наявності (відсутності) колоній мікроорганізмів на відповідних секторах м'ясо- пептонного агару, тобто, результати дослідження більш наочні, ніж при виконанні способу-прототипу.C) the solid nutrient medium on which microorganisms are inoculated contains sodium hyposulfite or another neutralizer (depending on the disinfectant), which eliminates our method from the time-consuming step of washing the test objects in sodium hyposulfite and sterile water before inoculation on the nutrient medium; 4) the number of inoculations of microorganisms on the nutrient medium when using our method is less: from the inoculation before the exposure established for this disinfectant, 2 inoculations after the established exposure and 1 control, in contrast to 24 inoculations when performing the prototype method; 5) the sensitivity of microorganisms to the disinfectant is judged not by the presence (absence) of turbidity of the meat-peptone broth, but by the presence (absence) of colonies of microorganisms on the corresponding sectors of the meat-peptone agar, that is, the results of the study are more obvious than when performing prototype method.
Приклад:Example:
Необхідно визначити чутливість виділеної культури стафілококу до 395 розчину хлораміну. Чашку Петрі ділять на 6 секторів. Готують 2-х мілі«ардний завис стафілококу у фізіологічному розчині натрію хлориду та 395-му розчині хлораміну. Для даного дезінфектанта встановлена експозиція 30 хвилин. Через 5, 15, 20, 30, 60 хвилин здійснюють посіви на відповідні сектори чашки Петрі 0,4-х мл завису стафілококу у розчині хлораміну та у фізрозчині (контрольний посів). Через добу після інкубації чашки в термостаті проводять облік результатів дослідження. Ріст культури наявний на секторі, що відповідає експозиції у дезінфектанті 5 хвилин та на контрольному секторі. На решті секторів ріст стафілококу відсутній. Отже, виділена культура стафілококу чутлива до 395 розчину хлораміну.It is necessary to determine the sensitivity of the isolated culture of staphylococcus to 395 chloramine solution. The Petri dish is divided into 6 sectors. A 2 milliard suspension of staphylococcus is prepared in a physiological solution of sodium chloride and a 395% solution of chloramine. Exposure time of 30 minutes is set for this disinfectant. After 5, 15, 20, 30, 60 minutes, 0.4 ml suspension of staphylococcus in a chloramine solution and saline solution are inoculated onto the corresponding sectors of the Petri dish (control inoculation). A day after the incubation of the cups in the thermostat, the results of the study are recorded. Culture growth is present on the sector corresponding to exposure in the disinfectant for 5 minutes and on the control sector. There is no growth of staphylococcus in the remaining sectors. Therefore, the isolated culture of staphylococcus is sensitive to 395 chloramine solution.
Висновок: виходячи з вищевказаного, позитивний ефект від використання запропонованого нами способу визначення чутливості клінічних штамів мікроорганізмів до дезінфікуючих засобів полягає в спрощенні виконання, зменшенні затрат робочого часу, лабораторного посуду, реактивів, у збільшенні ступеню точності визначення чутливості, у більшій наочності результатів дослідження.Conclusion: based on the above, the positive effect of using the method proposed by us for determining the sensitivity of clinical strains of microorganisms to disinfectants consists in simplifying the implementation, reducing the cost of working time, laboratory dishes, reagents, increasing the degree of accuracy of determining sensitivity, and increasing the visibility of research results.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UA2003076352A UA65968A (en) | 2003-07-08 | 2003-07-08 | Method for assessing sensitivity of clinical bacterial isolates to disinfectants |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UA2003076352A UA65968A (en) | 2003-07-08 | 2003-07-08 | Method for assessing sensitivity of clinical bacterial isolates to disinfectants |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| UA65968A true UA65968A (en) | 2004-04-15 |
Family
ID=34517336
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| UA2003076352A UA65968A (en) | 2003-07-08 | 2003-07-08 | Method for assessing sensitivity of clinical bacterial isolates to disinfectants |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| UA (1) | UA65968A (en) |
-
2003
- 2003-07-08 UA UA2003076352A patent/UA65968A/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Singh | A method of estimating the numbers of soil protozoa, especially amoebae, based on their differential feeding on bacteria | |
| WO2014074012A1 (en) | Method for determining the sensitivity of microorganisms to antimicrobial substances | |
| RU2378363C1 (en) | Method for determining microorganism sensitivity to disinfectant (versions) | |
| Kilvington | Activity of water biocide chemicals and contact lens disinfectants on pathogenic free-living amoebae | |
| Stuart et al. | Studies on bacteriologically sterile Moina macrocopa and their food requirements | |
| NZ520851A (en) | Apparatus and methods for testing effects of materials and surface coatings on the formation of biofilms | |
| UA65968A (en) | Method for assessing sensitivity of clinical bacterial isolates to disinfectants | |
| CA2229059A1 (en) | A method for determining the antimicrobial agent sensitivity of a nonparaffinophilic microorganism and an associated apparatus | |
| RU2098486C1 (en) | Method of bacteremia diagnosis | |
| Quinn | A Method for the Determination of Antimicrobial Properties of Treated Fabrics | |
| RU2603100C1 (en) | Method for assessing effectiveness of antimicrobial action of antiseptic on bacteria in form of biofilm | |
| RU2337360C1 (en) | Method of determination of bacteriostatic properties of antibodies to virulence factors burkholderia pseudomallei | |
| RU2650760C1 (en) | Method for determining sensitivity of microorganisms to disinfectants | |
| Shyrobokov et al. | Determination of the anti-protozoal activity of medicinal agents using the phenomenon of plaque formation by Acanthamoeba spp. | |
| SU545671A1 (en) | Method for isolating pure cultures of Vibrio cholerae | |
| RU2401862C2 (en) | Method of isolating enterococcus from fresh pathological material | |
| RU2233887C2 (en) | Method for quantitative analysis of antibiotic-resistant phytopathogenic fungus in soil | |
| UA26856U (en) | Method for determination of disinfection effectiveness at tuberculosis | |
| RU1794343C (en) | Method of alternariose infection detection in wheat seeds | |
| UA136814U (en) | METHOD OF EXPRESS DIFFERENTIATION OF PSEUDOMONAS AERUGINOSA USING UV LIGHT | |
| SU1564191A1 (en) | Method of determining antiinterferon activity of microorganisms | |
| RU2732222C1 (en) | Diagnostic method for bacteremia | |
| SU1707624A1 (en) | Method for evaluating antilysozymic activity of meningococcus strains | |
| SU1703696A1 (en) | Method of isolating and identifying hanthomonas maltophillia bacteria | |
| RU2332461C1 (en) | Method of pathogenic staphylococci detection by plasma coagulating activity |