WO1991015499A1 - 2'-o-alkylnukleotide sowie polymere, die solche nukleotide enthalten - Google Patents

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    • C07H21/00—Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids

Definitions

  • the invention relates to new nucleotide monomers and oligonucleotides and polynucleotides which contain such monomers, a process for their preparation and their use for controlling gene expression, as anti-sense samples and as medicaments.
  • Anti-sense oligonucleotides and polynucleotides are known to the person skilled in the art and are summarized, for example, in Spectrum of Science (1990), pages 70 to 77. This means the nucleotides complementary to the actual gene with opposite sequences.
  • Such anti-sense molecules regulate gene expression and play an important role in determining whether a genetic sequence encoded in a gene is translated into a protein.
  • the separation of the two DNA strands is triggered by a short RNA chain, the so-called primer, which first opens the DNA double helix and which hybridizes with the origin of replication. It has been shown that gene expression now depends not only on the concentration of these primer molecules, but on their relationship to the anti-sense RNA.
  • the aim of the invention is therefore to provide new oligo- and polynucleotides which are resistant to attack by nucleases and which bind to a complementary nucleotide strand with improved specificity.
  • the invention therefore relates to nucleopolymers based on 2'-O-alkyl nucleotides of the general formula II
  • A any descendant of any nucleoside base known to the person skilled in the art and in particular an adenyl-9-yl- (A), a cytosin-1-yl- (C), a guanin-9-yl- (G), an uracil- 1- yl- (U), a hypoxanthine-9-yl (I) or a thymin-1-yl group (T).
  • the 2-aminoadenin-9-yl radical is preferred.
  • One or more of the nucleoside bases expediently carry a substituent L, which facilitates attachment to certain cell parts or enzymes or also to suitable chromatography material. Such affinity substituents are known to the person skilled in the art.
  • A represents an O atom or a CH 2 group
  • X or Z represent an O atom, an S atom, an NH or CH 2 group and can be both the same and different
  • V and W represent a 0, S, Se atom, or a -OH, -SH, -NH 2 -, alkyl or alkyloxy group.
  • Preferred alkyl and alkyloxy groups have 1 to 4 carbon atoms and are in particular -CH 3 , C 2 H 5 and / or OCH 3 or 0C 2 H 5 .
  • V and W can be both the same and different.
  • L stands for an H atom or a partner of a binding pair.
  • C denotes a group of the general formula -OR, wherein R denotes an optionally modified alkyl group with at least 1 C atom, or an optionally modified alkenyl or alkynyl group with at least 2 C atoms, the modification being substituted by one or more halogen -, Cyano, carboxy, hydroxy, nitro or / and mercapto residues.
  • the alkyl group preferably has 3 to 6 and in particular 3 or 4 carbon atoms. Examples of particularly suitable alkyl groups are propyl and butyl, but modified alkyl groups such as cyanomethyl are also preferred.
  • Alkenyl chains and im are particularly preferred special alk-2-enyl radicals, of which in turn an allyl radical is preferred.
  • the propargyl radical can be mentioned as an example of alkynyl groups.
  • Preferred polymers according to the invention have one or more of the monomeric units described above, optionally in combination with other monomeric units in which -OR is -O-allyl, A is 0, X is 0, Z is 0, W is 0 and V is OH and the Cl carbon atom of the sugar has the ⁇ configuration.
  • the oligo- and polynucleotides according to the invention have a 3'-deoxyribonucleoside at their 3'-end, as a result of which the attack by 3'-exonucleases is inhibited and degradation by these enzymes is additionally made more difficult.
  • a partner of a binding pair e.g. from the pairs of antibody / antigen or biotin / avidin or streptavidin, preferably of biotin or a dinitrophenyl residue in the polymer according to the invention, it is possible to immobilize the nucleotide polymer according to the invention and an affinity chromatography of proteins, nucleic acids and / or perform protein / nucleic acid complexes that bind to the immobilized nucleotide polymer.
  • oligonucleotides according to the invention are notable for excellent hybridization with nucleic acids which have a correspondingly complementary target sequence and are particularly inert to degradation by means of nucleases, which is why they have a high biological half-life in living cells. In addition, they have a reduced, non-specific binding with nucleic acid binding proteins compared to the prior art.
  • nucleotide monomers which are used to synthesize the oligo- or polynucleotides according to the invention are suitable and in the 2 'position of the sugar part an alkyloxy, alkenyloxy or alkynyloxy radical with at least 1 carbon atom, optionally modified by one or more halogen, cyano, carboxy, hydroxyl, nitro or / and mercapto radicals exhibit.
  • radicals are O-alk-2-enyl radicals and in particular O-allyl radicals.
  • Such a monomer usually has the general formula I.
  • A, B and C have the previously defined meaning and D and E are reactive groups capable of forming 3'-5'-internucleotide bonds or the -P0 4 H 2 -, -P 2 0 7 H 3 - or -P 3 0 10 H 4 group mean.
  • Such groups are known to the person skilled in the art and are described, for example, in B. Sproat et al., Nucleic Acids Research .18 (1990), 41-49 and in summary in EL Winnacker, Gene und Klone, VCH Verlagsgesellschaft mbH, Weinheim (Germany) (1985), particularly pages 44 to 49 and in Froehler / Matteucci, Tetrahedron Lett. (1986), p. 469-472.
  • the OH group is particularly preferred as the reactive group.
  • D and / or E are the P0 4 H 2 -, -P 2 0 7 H 3 - and the -P 3 0 ** 0 H 4 group.
  • These mono-, di- or tri-phosphates or salts of the compounds of the general formula I can preferably be incorporated as 5'-triphosphates, for example enzymatically with DNA / RNA polymerases in growing nucleic acid chains (cf. eg Random pri ing, Anal. Biochem. 132 (1983) 6-13, Nick translation, J. Mol. Biol. 113 (1977) 237-251).
  • the reactive mononucleotides according to the invention can be used in a manner known per se, in particular on a solid phase, for the oligo- and poly- create nucleotides.
  • the preparation of such polynucleotides from the corresponding mononucleotides is known to the person skilled in the art and, for example, is also described in more detail in the literature references mentioned above.
  • the invention therefore also relates to a method for producing oligo- and polynucleotides using the nucleotide monomers according to the invention.
  • the invention also relates to the use of the oligonucleotides and polynucleotides obtained according to the invention as anti-sense samples and as a medicament, in particular as a medicament for the treatment of cells infected with viruses, e.g. the herpes, influenza or AIDS pathogen and to control gene expression.
  • viruses e.g. the herpes, influenza or AIDS pathogen and to control gene expression.
  • the 2'-O-allyl oligonucleotides according to the invention have an extraordinarily high specific and, compared to the prior art 2'-O-Me oligonucleotides, a negligible, non-specific binding activity.
  • the nucleotide sequence was
  • 5'-AIAACAIAUACUACACUUIA It binds to human U2 RNA.
  • the 2'-O-allyl oligoribonucleotides prepared according to Example 1 were mixed with various nucleases and their sensitivity to enzymatic degradation was determined. In comparison to normal, unmodified RNA with an identical sequence, it can be seen that when digested with pan-creative RNase A, RNase CL-3, RNase T1, RNase T2 and RNase U2, the 2'-O-allyl oligonucleotides according to the invention compared to one enzymatic attack by nucleases are completely stable, whereas natural RNA is completely degraded in all cases.
  • Tris (dibenzylidene acetone) dipalladium (O) (174 mg, 0.19 mmol) and 1,4-bis (diphenylphosphine) butane (324 mg, 0.76 mmol) were suspended in dry tetrahydrofuran (50 ml).
  • a solution of Compound A (13.11 g, 19 mmol) and allyl ethyl carbonate (4.95 g, 38 mmol) in 50 ml of dry tetrahydrofuran was added and the mixture was refluxed for 30 minutes heated.
  • the compound B was further via various stages in the corresponding nucleotide monomer, namely 5'-O-dimethoxytrityl-N 2 -dimethylaminomethylidene-2'-O-allylguanosine-3'-0- (2-cyanoethyl-N, N-diisopropyl phosphoramidite ) using the method described in Nucleic Acids Research, 1990, 18, 41-49.
  • the product was purified by preparative liquid chromatography using petroleum ether / dichloromethane / ethyl acetate (8: 2: 1 by volume) as the eluant.
  • the pure product C was obtained as a white foam (10.7 g, 53.3%).
  • 2'-O-Propylation is best accomplished by 2'-O-allylation followed by reduction of the allyl group.
  • 2'-O-butylation is best carried out by 2'-O-crotylation (using crotyl bromide and the procedure as described in Example 4), followed by reduction of the cotyl group.
  • the reaction is stopped by adding 5 ml of methanol and the mixture is evaporated in vacuo.
  • the residue is taken up in 200 ml of dichloromethane and extracted twice with 200 ml of 1 mol / 1 sodium bicarbonate solution.
  • the organic phase is dried over Na SO, filtered and evaporated in vacuo.
  • the residue is coevaporated twice with 25 ml of toluene in vacuo, after which a white foamy residue is obtained.
  • This is dissolved in 200 ml of anhydrous 1,2-dichloroethane and mixed with 42 ml of triethylamine (300 mmol) and 22.5 ml of chlorotrimethylsilane (180 mmol) with stirring and exclusion of moisture.
  • a thin layer chromatogram (silica gel; petroleum ether / ethyl acetate 2: 1) shows complete reaction with a spot of R f 0.39.
  • the reaction mixture is poured into 500 ml of 1 mol / 1 sodium bicarbonate solution with vigorous stirring, the organic phase is separated off and dried over Na 2 SO 4 . After filtration, the mixture is evaporated in vacuo and the residue is twice more. coevaporated with 25 ml of dry toluene each.
  • the 2 '-O-trimethylsilyl derivative thus obtained is dissolved in 300 ml of anhydrous dichloromethane and mixed with 42 ml of triethylamine (300 mmol), 19.5 g of 2-mesitylenesulphonyl chloride (90 mmol) and 1.8 g of 4-dimethylaminopyridine ( 15 mmol) with stirring and moist exclusion.
  • TLC sica gel; petroleum ether / ethyl acetate 2: 1
  • complete reaction to a product with R f 0.63 is observed after a reaction time of 30 minutes.
  • the syrup is dissolved in 300 ml of dichloromethane and a solution of 28.5 g of p-toluenesulfonic acid monohydrate (150 mmol) in 100 ml of tetrahydrofuran is added with stirring. After 2.5 minutes, 28 ml of triethylamine are added to neutralize the acid. The reaction solution is then poured into 500 ml of 1 mol / 1 Na bicarbonate solution with vigorous stirring. The organic phase is separated off, dried over Na 2 S0 4 and the solvent is distilled off in vacuo.
  • TLC (silica gel; petroleum ether / ethyl acetate 1: 1) shows one spot with R f 0.59 of 2,6-dichlorophenyl-2-mesitylene sulfonate and another with R f 0.41 of the desired product.
  • the crude product is purified in several portions by preparative chromatography on silica gel using petroleum ether / ethyl acetate (2: 1) as the eluent. After evaporating the fractions, 25.6 g, corresponding to 67.5% of theory of pure end product, are obtained.
  • Tris (dibenzylideneacetone) dipalladium (0) (0, 183 g, 0.2 mmol) and 1,4-bis (diphenylphosphino) butane (0.341 g, 0.8 mmol) are sus ⁇ in dry tetrahydrofuran (40 ml) under an argon atmosphere oscillates.
  • a solution of the compound prepared according to Example 7 (12.63 g, 20 mmol) and allyl ethyl carbonate (5.2 g, 40 mmol) in dry tetrahydrofuran (60 ml) is added and the mixture is heated under reflux for 30 min.
  • reaction product is indicated by a new band with an Rf value of 0.48. After cooling, the mixture is filtered and the solvent is removed in vacuo. The reaction product is purified by preparative chromatography on silica gel with 3% ethyl acetate in dichloromethane as the eluent.
  • the reaction is stopped with pyridine / methanol / water (50 ml, 3: 1: 1 vol.) And the solution is stirred with the pyridine form of Dowex 50 Wx4-200 resin (30 g suspended in pyridine / methanol / water 50 ml 3 : 1: 1 vol). The mixture is stirred for 20 min, the resin is filtered off and mixed with the above-mentioned. Washed solvent (3 x 50 ml). The combined filtrates and washing solutions are evaporated to dryness in vacuo, taken up in toluene and evaporated again. The crude product is purified in 3 portions by preparative chromatography on silica gel with 6% ethanol in chloroform as the eluent.
  • the aqueous phase is washed with 100 ml of dichloromethane and then with 100 ml of diethyl ether.
  • the yellowish aqueous phase is then stirred with the pyridine form of Dowex 50 Wx4-200 resin (25 g) for 5 min.
  • the resin is filtered off and the cloudy filtrate is washed with 2 ⁇ 50 ml of dichloromethane and then 100 ml of ether.
  • the aqueous phase is evaporated in vacuo. Traces of water are eliminated by adding methanol and tetrahydrofuran and subsequent evaporation.
  • the desired compound is crystallized from methanol, filtered off and washed with ether and dried. 1.83 g (94% of theory) of 2'-0-allyluridine are obtained.
  • di- and triphosphates 365 mg (1 mmol) of the monophosphate were each prepared using the method of Hoard and Ott (1965) J. Am. Chem. Soc. .87, 1785 reacted with orthophosphoric acid or pyrophosphoric acid. The yields were 220 mg of diphosphate and 140 mg of triphosphate.

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Abstract

Oligonukleotide der allgemeinen Formel (II), in der B eine beliebige Nukleobase bedeutet, A gleich O oder CH2 ist, X oder Z gleich O, S, NH oder CH2 bedeutet, wobei X und Z gleich oder verschieden sein können, V und W ein O, S, Se, NH2 oder ein Alkyloxyrest, OH oder SH bedeutet, wobei V und W in einer Monomereinheit gleich oder verschieden sein können und L ein H-Atom oder ein Partner eines Bindepaares ist und C gleich -O-R ist und R eine gegebenenfalls modifizierte Alkylgruppe mit mindestens 1 C-Atom, oder eine gegebenenfalls modifizierte Alkenyl- oder Alkinylgruppe mit mindestens 2 C-Atomen bedeutet, wobei die Modifikation in einer Substitution durch einen oder mehrere Halogen-, Cyano-, Carboxy-, Hydroxy-, Nitro- oder/und Mercapto-Reste besteht, n eine beliebige ganze Zahl ist, sind stabile und spezifisch bindende Anti-Sense-Proben. Solche Oligo- und Polynukleotide finden zur Steuerung der Genexpression und als Arzneimittel Verwendung. Ihre Synthese erfolgt aus den entsprechenden 2'-substituierten Monomeren nach an sich bekannten Verfahren, vorzugsweise an einer festen Phase.

Description

2 ' -O-Alkylnukleotide sowie Polymere,die solche Nukleotide enthalten
B E S C H R E I B U N G
Die Erfindung betrifft neue Nukleotidmonomere sowie Oligo- und Polynukleotide, die solche Monomere enthalten, ein Ver¬ fahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung zur Steuerung der Genexpression, als Anti-Sense-Proben und als Arzneimit¬ tel.
Anti-Sense-Oligo- und Polynukleotide sind dem Fachmann be¬ kannt und zusammenfassend z.B. in Spektrum der Wissenschaft (1990), Seiten 70 bis 77 beschrieben. Darunter werden die zum eigentlichen Gen komplementären Nukleotide mit gegenläufiger Sequenz verstanden. Solche Anti-Sense-Moleküle greifen regu¬ lierend in die Genexpression ein und spielen dabei eine we¬ sentliche Rolle, ob eine in einem Gen kodierte Erbseguenz in ein Protein übersetzt wird. Die Trennung der beiden DNA- Stränge wird dabei durch eine kurze RNA-Kette, dem sogenann¬ ten Primer ausgelöst, der zuerst die DNA-Doppelhelix öffnet und der mit dem Replikationsursprung hybridisiert. Es hat sich gezeigt, daß nun die Genexpression nicht nur von der Konzentration dieser Primermoleküle abhängt, sondern von deren Verhältnis zur Anti-Sense-RNA. Auf diese Weise ist es daher möglich, in einer Zelle gezielt vorausbestimmte Gene an- und auszuschalten und so die gesamte Zellfunktion zu steuern. So ist es z.B. bereits gelungen, mittels einem Po- lyoma-Virus maligne transformierte Zellen dadurch wieder gesund erscheinen zu lassen, daß man in diese polyoma-trans- formierte Zellen Expressionsvektoren für eine Anti-Sense-RNA gegen src einschleust. Dadurch verlieren diese Zellen ihre krebsartigen Merkmale. Ähnliche Ergebnisse wurden mit dieser Anti-Sense-Technik bereits an den Onkogenen fos, ras und sys erzielt. Schließlich ist es auch bereits in Gewebekulturen gelungen, mit Anti-Sense-Oligonukleotiden die Infektion von Herpes-Viren, Influenza-Viren und dem HIV-Virus zu hemmen. Mit Hilfe von biotinylierten Anti-Sense-Oligonukleotiden ist es auch bereits gelungen, die Ausbildung und Wirkung des Splicing-Komplexes näher zu untersuchen (S. Barabino, B. Sproat et al., The EMBO Journal 8., 4171-4178 (1989)).
Die bislang bekannten Anti-Sense-Oligo- und Polynukleotide weisen jedoch den Nachteil auf, daß diese nach dem Einschleu¬ sen in eine intakte Zelle von RNA und DNA spezifischen Nu- kleasen angegriffen und abgebaut werden, wodurch ihre Wirkung verlorengeht. Es ist daher bereits versucht worden, den Abbau von Poly- und Oligoribonukleotiden durch Nukleasen mittels 2'-O-Methylsubstitution zu hemmen (B. Sproat et al., Nucleic Acids Research 11_ (1989), 3373-3386).
Die Erfindung hat daher zum Ziel, neue Oligo- und Polynukleo¬ tide bereitzustellen, die gegenüber einem Angriff von Nuklea¬ sen beständig sind und die mit verbesserter Spezifität an einen komplementären Nukleotidstrang binden.
Es wurde nun überraschenderweise gefunden, daß sich dieses Ziel dadurch erreichen läßt, daß man die 2'-Position mit einer Alkyloxygruppe mit mindestens 2 Kohlenstoffatomen sub¬ stituiert.
Die Erfindung betrifft daher Nukleopolymere auf der Basis von 2'-O-Alkylnukleotiden der allgemeinen Formel II
Figure imgf000004_0001
worin
B ein beliebiger, dem Fachmann bekannter Abkömmling irgend¬ einer Nukleosidbase und insbesondere eine Adenyl-9-yl- (A) , eine Cytosin-1-yl- (C), eine Guanin-9-yl- (G) , eine Uracil-1- yl- (U) , eine Hypoxanthin-9-yl- (I) oder eine Thymin-1-yl- Gruppe (T) darstellt. Von den Adeninderivaten ist der 2-Ami- noadenin-9-yl-Rest bevorzugt. Zweckmäßigerweise tragen ein oder mehrere der Nukleosidbasen einen Substituenten L, die die Anlagerung an bestimmte Zellteile oder Enzyme oder auch an geeignetes Chromatographiematerial erleichtert. Solche Affinitäts-Substituenten sind dem Fachmann bekannt. A ein O-Atom oder eine CH2 -Gruppe bedeutet, X oder Z ein O-Atom, ein S-Atom, eine NH- oder CH2 -Gruppe darstellen und sowohl gleich als auch verschieden sein kön¬ nen,
V und W für ein 0-, S-, Se-Atom stehen, bzw. eine -OH-, -SH-, -NH2-, Alkyl- oder Alkyloxygruppe bedeuten.
Bevorzugte Alkyl- und Alkyloxygruppen weisen 1 bis 4 Kohlen¬ stoffatome auf und sind insbesondere -CH3 , C2 H5 und/oder OCH3 bzw. 0C2H5. In einer Monomereinheit in den erfindungsgemäßen Oligo- bzw. Polynukleotiden können V und W sowohl gleich als auch verschieden sein. L steht für ein H-Atom oder einen Partner eines Bindepaares.
C bedeutet eine Gruppe der allgemeinen Formel -O-R, worin R eine gegebenenfalls modifizierte Alkylgruppe mit mindestens 1 C-Atom, oder eine gegebenenfalls modifizierte Alkenyl- oder Alkinylgruppe mit mindestens 2 C-Atomen bedeutet, wobei die Modifikation in einer Substitution durch einen oder mehrere Halogen-, Cyano-, Carboxy-, Hydroxy-, Nitro- oder/und Mercap- to-Reste besteht. Vorzugsweise weist die Alkylgruppe 3 bis 6 und im besonderen 3 oder 4 Kohlenstoffatome auf. Beispiele für besonders geeignete Alkylgruppen sind Propyl, Butyl, jedoch sind auch modifizierte Alkylgruppen, wie Cyanomethyl, bevorzugt. Besonders bevorzugt sind Alkenylketten und im besonderen Alk-2-enylreste, wovon wiederum ein Allylrest bevorzugt ist. Beispielhaft für Alkinylgruppen kann der Pro- pargylrest genannt werden.
Bevorzugte erfindungsgemäße Polymere weisen ein oder mehrere der zuvor geschilderten monomeren Einheiten auf, gegebenen¬ falls in Kombination mit anderen monomeren Einheiten, in denen -O-R gleich -O-Allyl, A gleich 0, X gleich 0, Z gleich 0, W gleich 0 und V gleich OH ist und das Cl-Kohlenstoffatom des Zuckers die ß-Konfiguration aufweist. In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform weisen die erfindungsgemäßen Oligo- und Polynukleotide an ihrem 3'-Ende ein 3'-Deoxyribo- nukleosid auf, wodurch der Angriff von 3'-Exonukleasen inhi¬ biert und ein Abbau durch diese Enzyme zusätzlich erschwert wird.
Durch den Einbau eines Partners eines Bindepaares, z.B. aus den Paaren Antikörper/Antigen oder Biotin/Avidin bzw. Strept- avidin, vorzugsweise von Biotin oder einem Dinitrophenylrest in das erfindungsgemäße Polymer ist es möglich, das erfin¬ dungsgemäße Nukleotidpoly er zu immobilisieren und eine Affi¬ nitäts-Chromatographie von Proteinen, Nukleinsäuren und/oder Protein/Nukleinsäure-Komplexen durchzuführen, die an das immobilisierte Nukleotidpolymer binden.
Die erfindungsgemäßen Oligonukleotide zeichnen sich durch eine ausgezeichnete Hybridisierung mit Nukleinsäuren aus, die eine dazu entsprechend komplementäre Zielsequenz aufweisen und sind besonders inert gegen den Abbau mittels Nukleasen, weshalb sie in lebenden Zellen eine hohe biologische Halb¬ wertszeit aufweisen. Darüberhinaus weisen sie gegenüber dem Stand der Technik eine verringerte, nicht spezifische Bindung mit Nukleinsäure-Bindungsproteinen auf.
Die Erfindung betrifft jedoch auch Nukleotid-Monomere, die zur Synthese der erfindungsgemäßen Oligo- bzw. Polynukleotide geeignet sind und die in der 2 '-Position des Zuckerteils einen gegebenenfalls durch einen oder mehrere Halogen-, Cyano-, Carboxy-, Hydroxy-, Nitro- oder/und Mercapto-Reste modifizierten Alkyloxy-, Alkenyloxy- oder Alkinyloxyrest mit mindestens 1 Kohlenstoffatomen aufweisen.
Besonders bevorzugte Reste sind O-Alk-2-enyl-Reste und im besonderen O-Allylreste. Üblicherweise weist ein solches Monomer die allgemeine Formel I
Figure imgf000007_0001
auf, worin A, B und C die zuvor definierte Bedeutung aufwei¬ sen und D und E zur Ausbildung von 3'-5'-Internukleotid-Bin- dungen fähige reaktive Gruppen oder die -P04 H2 -, -P207H3 - oder -P3010H4 -Gruppe bedeuten. Solche Gruppen sind dem Fach¬ mann bekannt und z.B. in B. Sproat et al., Nucleic Acids Research .18 (1990), 41-49 sowie zusammenfassend in E.L. Win- nacker, Gene und Klone, VCH Verlagsgesellschaft mbH, Weinheim (Deutschland) (1985), insbesondere Seiten 44 bis 49 und in Froehler/Matteucci, Tetrahedron Lett. (1986), p. 469-472, beschrieben. Besonders bevorzugt als reaktive Gruppe ist die OH-Gruppe. Ebenso bevorzugt als D und/oder E sind die P04H2-, -P207H3- und die -P30** 0 H4 -Gruppe. Diese Mono-, Di- oder Tri- phosphate bzw. Salze der Verbindungen der allgemeinen Formel I können bevorzugt als 5 '-Triphosphate, beispielsweise enzy- matisch mit DNA/RNA-Polymerasen in wachsende Nucleinsäureket- ten eingebaut werden (vgl. z.B. Random pri ing, Anal.Biochem. 132 (1983) 6-13, Nick translation, J.Mol.Biol. 113 (1977) 237-251). Mit den erfindungsgemäßen reaktiven Mononukleotiden lassen sich auf an sich bekannte Weise, insbesondere an einer festen Phase die ebenfalls erfindungsgemäßen Oligo- und Poly- nukleotide herstellen. Die Herstellung solcher Polynukleotide aus den entsprechenden Mononukleotiden ist dem Fachmann be¬ kannt und beispielsweise ebenfalls in den zuvor genannten Literaturstellen näher beschrieben. Die Erfindung betrifft daher auch ein Verfahren zur Herstellung von Oligo- und Poly- nukleotiden unter der Verwendung der erfindungsgemäßen Nu- kleotidmonomere.
Schließlich betrifft die Erfindung auch die Verwendung der erfindungsgemäß erhaltenen Oligo- und Polynukleotide als Anti-Sense-Proben und als Arzneimittel, insbesondere als Arzneimittel zur Behandlung von mit Viren befallenen Zellen wie z.B. dem Herpes, Influenza- oder dem AIDS-Erreger sowie zur Steuerung der Genexpression.
Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele näher erläu¬ tert.
B e i s p i e l 1
Nach dem in B. Sproat, B. Beijer und A. Iribarren in Nucleic Acids Research, Vol. 18 (1990), 41-49 beschriebenen Verfahren wurden nach der Phosphoamidit-Methode 2'-O-Allyl-oligoribonu- kleotide sowie 2'-O-Methyl-oligoribonukleotide mit jeweils identischer Sequenz hergestellt. Anschließend wurden, wie in A. Lamond et al. in Cell, Vol. 58 (1989), 383-390 beschriebe¬ nen Verfahren die beiden an ihrem 5'-Ende mit 32P-Phosphat markierten Proben mit einem Kernextrakt inkubiert, der von Heia-Zellen gewonnen wurde. Beide Proben wurden dann einer Gelchromatographie unterzogen. Es zeigt sich, daß die erfin¬ dungsgemäßen 2'-O-Allyl-Oligonukleotide eine außergewöhnlich hohe spezifische und im Vergleich zu den zum Stand der Tech¬ nik gehörenden 2'-O-Me-Oligonukleotide eine vernachlässigba¬ re, nichtspezifische Bindungsaktivität. Die Nukleotidsequenz war
5'-AIAACAIAUACUACACUUIA Sie bindet an Human U2 RNA.
B e i s p i e l 2
Die gemäß Beispiel 1 hergestellten 2'-O-Allyl-Oligoribonu- kleotide wurden verschiedenen Nukleasen versetzt und ihrer Empfindlichkeit gegenüber enzymatischem Abbau bestimmt. Im Vergleich zu normaler, nicht modifizierter RNA mit einer identischen Sequenz zeigt sich, daß bei Verdauung mit pan- kreatischer RNase A, RNase CL-3, RNase Tl, RNase T2 und RNase U2 die erfindungsgemäßen 2'-O-Allyl-Oligonukleotide gegenüber einem enzymatischen Angriff von Nukleasen völlig stabil sind, wohingegen natürliche RNA in allen Fällen vollständig abge¬ baut wird.
B e i s p i e l 3
3' ,5'-O-(Tetraisopropyldisiloxan-1,3-diyl)-2-chlor-6-(2,6- dichlorphenoxy)purinribosid (A) wurde wie in Sproat, B.S., Beijer, B. und Iribarren, A. , Nucleic Acids Research, 1990, 18, 41-49 beschrieben, synthetisiert. Die so erhaltene Ver¬ bindung A wurde dann wie nachstehend beschrieben allyliert.
Synthese von 3',5'-0-(Tetraisopropyldisiloxan-l,3-diyl)-2'- 0-allyl-2-chlor-6-(2,6-dichlorphenoxy)purinribosid (B) :
Tris(dibenzylidenaceton)dipalladium (O) (174 mg, 0,19 mmol) und 1,4-bis (Diphenylphosphin)butan (324 mg, 0,76 mmol) wur¬ den in trockenem Tetrahydrofuran (50 ml) suspendiert. Eine Lösung von Verbindung A (13,11 g, 19 mmol) und Allylethylcar- bonat (4,95 g, 38 mmol) in 50 ml trockenem Tetrahydrofuran wurde zugesetzt und die Mischung 30 Minuten zum Rückfluß erhitzt. Silica-Gel t.l.c. in Petroläther/Ethylacetat (2:1 v/v) zeigte eine vollständige Reaktion mit einem einzigen UV- positiven Fleck von Rf 0,54 (Verbindung A hat Rf 0,41). Das Lösungsmittel wurde im Vakuum abgezogen unter Zurücklassung eines roten Sirups, der in Petroläther/Ethylacetat (9:2 v/v) gelöst und die Lösung filtriert wurde, um unlöslichen Pd- Phosphinkomplex zu entfernen. Das Produkt wurde durch präpa- rative Flüssigkeitschromatographie auf Silica-Gel gereinigt unter Elution mit Petroläther/Ethylacetat (9:2 v/v). Die reine Verbindung B wurde so erhalten in Form eines hellgelben Schaums (12,4 g, 89,4 %) . 13C NMR Spektrum (CDCl3 )δ: 158,12 (C6), 153,13 und 152,54 (C-2 und C-4) , 144,66 (Phenyl C-l), 142,43 (C-8), 133,75 (-CH = von Allyl), 128,77 (Phenyl C-2 und C-6), 128,52 (Phenyl C-3 und C-5), 127,12 (Phenyl C-4), 120,51 (C-5), 117,0 (= CH2 von Allyl), 88,26 (C-l'), 81,16 (C-4'), 80,6 (C-2'), 71,4 (0-CH2- von Allyl) , 69,54 (C-3'), 59,61 (C-5'), 17,19-16,63 (Isopropyl CH3 s) , 13,16, 12,70 und 12,29 p.p. . (Isopropyl CHs).
Die Verbindung B wurde weiter über verschiedene Stufen in das entsprechende Nukleotidmonomer, nämlich 5'-O-Dimethoxytrityl- N2-dimethylaminomethyliden-2'-O-allylguanosin-3'-0-(2-cyano- ethyl-N,N-diisopropylphosphoramidit) unter Verwendung der in Nucleic Acids Research, 1990, 18, 41-49 beschriebenen Metho¬ de umgewandelt.
Mono ere wurden in Polymere überführt wie beschrieben in Nucleic Acids Research, 1989, 17, 3373-3386.
B e i s p i e l 4
Synthese von 3 ' ,5 '-0-(Tetraisopropyldisiloxan-l,3-diyl)-2 '-0- propargyl-4-0-(2,6-dichlorphenyl)uridin (C) :
3 ' ,5'-O-(Tetraisopropyldisiloxan-1,3-diyl)-4-0-(2,6-dichlor- phenyl)uridin (18,95 g, 30 mmol) wurden durch Verdampfen von Acetonitril im Vakuum getrocknet. Der verbleibende Schaum wurde in wasserfreiem Acetonitril (50 ml) aufgelöst, eine 80 %ige Lösung bezogen auf das Gewicht von Propargylbromid in Toluol (3,56 ml, 33 mmol) gefolgt von 2-Tert.-butylimino-2- diethylamino-1,3-dimethylperhydro-l,3,2-diazaphosphorin (9,55 ml, 33 mmol) wurden unter Rühren und Ausschluß von Feuchtigkeit zugegeben. Silicagel t.l.c. in Hexan/Ethylacetat (2:1 v/v) zeigte komplette Reaktion nach 5 Stunden mit einem UV-absorbierenden Produktpunkt von Rf 0,38. Das Lösungsmittel wurde im Vakuum entfernt unter Zurücklassung eines cremefar¬ bigen Schaums. Das Produkt wurde durch präparative Flüssig¬ chromatographie unter Verwendung von Petrolether/Dichlorme- than/Ethylacetat (8:2:1, bezogen auf das Volumen) als Eluant gereinigt. Das reine Produkt C wurde erhalten als ein weißer Schaum (10,7 g, 53,3 %). 13C NMR-Spektrum (CDCl3 )δ: 169,80 (C-4), 154,60 (C-2), 144,76 (Phenyl C-l), 144,41 (C-6), 128,69 (Phenyl C-2 und C-6), 128,65 (Phenyl C-3 und C-5), 127,08 (Phenyl C-4), 93,80 (C-5), 89,80 (C-l'), 81,70 (C-2'), 80,34 (C-4'), 79,54 ( -C≡ von Propargyl), 74,63 ( ≡CE von Pro- pargyl), 67,63 (C-3'), 59,37 (C-5'), 58,01 (0CH2 von Propar¬ gyl), 17,36, 17,21, 16,90 und 16,73 (Isopropyl CH3 s ) , 13,36, 12,92, 12,84 und 12,28 p.p.m. (Isopropyl CHS ) .
Die Verbindung C konnte über verschiedene Schritte in Cytidin und Uridin-Monomere zur Festphasenpolymer-Herstellung über¬ führt werden. B e i s p i e l 5
Synthese von 3' ,5 '-0-(Tetraisopropyldisiloxan-l,3-diyl)-2 '-0- cyanomethyl-4-0-(2,6-dichlorphenyl)uridin (D) :
Die Alkylierung wurde analog Beispiel 4 durchgeführt unter Verwendung von Bromacetonitril anstelle von Propargylbro id. Die Titelverbindung wurde erhalten als ein weißer Schaum in 55 %iger Ausbeute, Rf 0,51 auf Silicagel t.l.c. in Petrol- ether/Ethylacetat (1:1 v/v). 13C NMR-Spektrum (CDCl3 )δ: 169,91 (C-4), 154,57 (C-2), 144,54 (Phenyl C-l), 143,96 (C- 6), 128,69 (Phenyl C-2 und C-6), 128,60 (Phenyl C-3 und C-5), 127,12 (Phenyl C-4), 115,72 (CN von Cyanomethyl) , 94,10 (C- 5), 89,17 (C-l'), 82,34 (C-2'), 81,60 (C-4'), 67,27 (C-3'), 59,06 (C-5'), 55,82 (CH2 von Cyanomethyl) , 17,20, 17,08, 16,80 und 16,61 (Isopropyl CH3 s ) , 13,23, 12,70 und 12,24 p.p. . (Isopropyl CHS ) .
B e i s p i e l 6
2 '-O-Propylierung wird am besten bewirkt durch 2'-O-Allylie- rung gefolgt von Reduktion der Allylgruppe. 2 '-O-Butylierung wird am besten durchgeführt durch 2'-O-Crotylierung (unter Verwendung von Crotylbromid und dem Verfahren, wie es in Beispiel 4 beschrieben ist) , gefolgt von Reduktion der Cro- tylgruppe.
B e i s p i e l 7
3 ' ,5 '-0-(Tetraisopropyldisiloxan-l,3-diyl)-4-0-(2,6-dichlor- phenyl)-uridin
14,65 g (60 mmol) getrocknetes Uridin werden in 150 ml was¬ serfreiem Pyridin gelöst und die Lösung im Eisbad gekühlt. Dazu wird eine Lösung von 21 g (67 mmol) 1,3-Dichlor-l, 1,3,3- tetraisopropyldisiloxan in 10 ml Dichlormethan während 15 Minuten unter Rühren und Feuchtigkeitsausschluß zugefüg .Nach beendeter Zugabe wird die Mischung 3 Stunden bei Raumtempera¬ tur weitergerührt; im Dünnschichtchromatogramm (Kieselgel; Fließmittel Chloroform/Ethanol 9:1) beobachtet man danach vollständige Umsetzung zu einem Produkt mit Rf 0,58. Die Reaktion wird durch Zugabe von 5 ml Methanol gestoppt und die Mischung im Vakuum eingedampft. Der Rückstand wird in 200 ml Dichlormethan aufgenommen und 2x mit je 200 ml 1 mol/1 Natriumbicarbonat-Lösung extrahiert. Die organische Phase wird über Na S0 getrocknet, filtriert und im Vakuum einge¬ dampft. Der Rückstand wird 2x mit je 25 ml Toluol im Vakuum coevaporiert wonach ein weißer schaumiger Rückstand resul¬ tiert. Dieser wird in 200 ml wasserfreiem 1,2-Dichlorethan gelöst und mit 42 ml Triethylamin (300 mmol), sowie 22,5 ml Chlortrimethylsilan (180 mmol) unter Rühren und Feuchtig¬ keitsausschluß versetzt. Nach 30 Minuten Reaktionszeit zeigt ein Dünnschichtchromatogramm (Kieselgel; Petrolether/Ethyl- acetat 2:1) vollständige Umsetzung mit einem Fleck vom Rf 0,39. Die Reaktionsmischung wird unter kräftigem Rühren in 500 ml 1 mol/1 Natriumbicarbonat-Lösung gegossen, die organi¬ sche Phase abgetrennt und über Na2 S04 getrocknet. Nach Fil¬ tration wird im Vakuum eingedampft und der Rückstand noch 2x . mit je 25 ml trockenem Toluol coevaporiert. Das so erhaltene 2 '-O-Trimethylsilyl-Derivat wird in 300 ml wasserfreiem Di¬ chlormethan gelöst und mit 42 ml Triethylamin (300 mmol), 19,5 g 2-Mesitylensulphonylchlorid (90 mmol) und 1,8 g 4- Dimethylaminopyridin (15 mmol) unter Rühren und Feuchtig- keitsausschluß versetzt. Im DC (Kieselgel; Petrolether/Ethyl- acetat 2:1) beobachtet man nach 30 minütiger Reaktionszeit vollständige Umsetzung zu einem Produkt mit Rf 0,63. Zur Reaktionslösung gibt man 1,35 g l,4-Diazabicyclo[2.2.2]octan (12 mmol) und 19,6 g 2,6-Dichlorphenol (120 mmol) und rührt 2 Stunden bei Raumtemperatur. Nach dieser Zeit ist die Umset¬ zung vollständig, wie ein DC in Petrolether/Ethylacetat 2:1 auf Kieselgel zeigt (Rf 0,56). Die Reaktionsmischung wird in 500 ml 1 mol/1 Na-bicarbonat-Lösung eingerührt die organische Phase abgetrennt, über Na2 SOA getrocknet, filtriert und im Vakuum eingedampft. Der 2'-0-Trimetylsilylether wird als öliger, viskoser Rückstand erhalten. Der Sirup wird in 300 ml Dichlormethan gelöst und dazu unter Rühren eine Lösung von 28,5 g p-Toluolsulfonsäure-monohydrat (150 mmol) in 100ml Tetrahydrofuran gegeben. Nach 2,5 Minuten werden 28 ml Tri¬ ethylamin zur Neutralisation der Säure zugefügt. Danach wird die Reaktionslösung unter starkem Rühren in 500 ml 1 mol/1 Na-bicarbonat-Lösung eingegossen. Die organische Phase wird abgetrennt, über Na2S04 getrocknet und das Lösungsmittel im Vakuum abdestilliert. Das DC (Kieselgel; Petrolether/Ethyl¬ acetat 1:1) zeigt einen Fleck mit Rf 0,59 von 2,6-Dichlorphe- nyl-2-mesitylensulfonat und einen weiteren mit Rf 0,41 des gewünschten Produktes. Das rohe Produkt wird in mehreren Portionen durch präparative Chromatographie an Kieselgel mit Petrolether/Ethylacetat(2:l) als Eluens gereinigt. Nach Ein¬ dampfen der Fraktionen erhält man 25,6 g, entsprechend 67,5 % der Theorie an reinem Endprodukt.
Rf-Wert (Kieselgel; Petrolether/Ethylacetat 2:1) 0,23
13C NMR-Spektrum (CDC13 ) δ : 169,82 (C-4), 154,70 (C-2), 144,94 (C-6), 144,77 (Phenyl-C-1) , 128,92 (Phenyl-C-2 and C- 6), 128,71 (Phenyl C-3 und C-5), 127,11 (Phenyl C- 4), 94,05 (C-5), 92,22 (C-l'), 82,01 (C-4'), 74,88 (C-2'), 68,89 (C- 3'), 60,35 (C-5'), 17,40 - 16,85 (Isopropyl-CH3 's) , 13,34, 12,91, 12,83 und 12,48 ppm (Isopropyl-CH's) . B e i s p i e l 8
3 ' ,5'-0-(Tetraisopropyldisiloxan-l,3-diyl)-2 '-O-allyl-4-O- (2,6-dichlorphenyl)uridin
Tris(dibenzylidenaceton)dipalladium(0) (0, 183 g, 0,2 mmol) und l,4-Bis(diphenylphosphino)butan (0,341 g, 0,8 mmol) werden in trockenem Tetrahydrofuran (40 ml) unter Argonatmosphäre sus¬ pendiert. Eine Lösung der nach Beispiel 7 hergestellten Ver¬ bindung (12,63 g, 20 mmol) und Allylethylcarbonat (5,2 g, 40 mmol) in trockenem Tetrahydrofuran (60 ml) wird zugegeben und die Mischung für 30 min unter Rückfluß erhitzt. Der voll¬ ständige Reaktionsablauf wird durch Dünnschichtchromatogra¬ phie (Kieselgel, Laufmittel Petrolether/Ethylacetat, 2:1, vol.) überprüft. Das Reaktionsprodukt wird durch eine neue Bande mit einem Rf-Wert von 0,48 angezeigt. Nach Abkühlen wird die Mischung filtriert und das Lösungsmittel im Vakuum entfernt. Das Reaktionsprodukt wird durch präparative Chroma¬ tographie an Kieselgel mit 3 % Ethylacetat in Dichlormethan als Laufmittel gereinigt.
Nach Eindampfen der Fraktionen erhält man 11 g (81,9 % der Theorie) Endprodukt.
Rf -Wert (Kieselgel-Dünnschichtchromatographie; Petrol¬ ether/Ethylacetat 2:1): 0,51
13C NMR-Spektrum (CDC13 ) δ: 169,61 (C-4), 154,49 (C-2), 144,64 (Phenyl C-l), 144,37 (C-6), 134,29 (Allyl CH), 128,75 (Phenyl C-2 und C-6), 128,51 (Phenyl C-3 und C-5), 126,93 (Phenyl C-4), 116,85 (Allyl = CH2 ) , 93,50 (C- 5), 89,94 (C- 1'), 81,64 (C-2'), 80,40 (C-4'), 70,90 (0-CH2 von Allyl) , 67,49 (C-3'), 59,34 (C-5'), 17,24, 17,10, 16,79 und 16,63 (Isopropyl CH3s), 13,21, 12,83, 12,70 und 12,30 p.p.m. (Iso¬ propyl CHs) . B e i s p i e l 9
2 '-O-Allyl-4-O-(2,6-dichlorphenyl)uridin
5,5 g (8,19 mmol), der nach Beispiel 8 hergestellten Verbin¬ dung, werden in 20 ml trockenem Tetrahydrofuran gelöst und 1,1 Mol/1 Tetrabutylammoniumfluorid in 18 ml Tetrahydrofuran unter Rühren zugegeben. Nach 5 min ist die Reaktion vollstän¬ dig wie ein Dünnschichtchromatogramm mit Ethanol/Chloroform (5 : 95 vol.) als Laufmittel auf Kieselgel zeigt (Rf : 0,22).
Die Reaktion wird mit Pyridin/Methanol/Wasser (50 ml, 3 : 1 : 1 vol.) gestoppt und die Lösung unter Rühren auf die Pyridinform von Dowex 50 Wx4-200 Harz (30 g suspendiert in Pyridin/Methanol/Wasser 50 ml 3: 1 : 1 vol) gegeben. Die Mischung wird 20 min gerührt, das Harz abfiltriert und mit dem o. g. Lösungsmittel (3 x 50 ml) gewaschen. Die vereinig¬ ten Filtrate und Waschlösungen werden bis zum Trockenen im Vakuum eingedampft, in Toluol aufgenommen und nochmals einge¬ dampft. Das Rohprodukt wird in 3 Portionen durch präparative Chromatographie auf Kieselgel mit 6 % Ethanol in Chloroform als Elutionsmittel gereinigt. Nach Eindampfen der Fraktionen im Vakuum werden Reste von Ethanol und Pyridin durch Zugabe von Toluol und nochmaliges Eindampfen im Vakuum bei 45°C entfernt. Nach Eindampfen erhält man 2,91 g (82,9 % der Theo¬ rie) an reinem Endprodukt.
Rf-Wert (Kieselgel; Ethanol/Chloroform 1 : 4): 0,57
13C NMR Spektrum (CDC13 ) δ: 169,74 (C-4); 155,28 (C-2), 146,20 (C-6), 144,42 (phenyl C-l), 133,54 (allyl CH), 128,67 (phenyl C-2 und C-6), 128,57 (phenyl C-3 und C-5), 127,13 (phenyl C-4), 117,98 (allyl = CH2 ) , 94,41 (C-5), 89,60 (C- 1'), 84,54 (C-4'), 81,01 (C-2'), 71,10 (allyl CH20) , 67,43 (C-3') and 59,55 p.p.m. (C-5'). B e i s p i e l 10
2'-O-Allyl-uridin
2,91 g (6,79 mmol) der nach Beispiel 9 hergestellten Verbin¬ dung werden in 20 ml trockenem Acetonitril gelöst. Es werden 2,82 g (16,98 mmol) 2-Nitrobenzaldoxim und 1,76 g (15,28 mmol) 1,1,3,3-Tetramethylguanidin in 20 ml trockenem Acetoni¬ tril zugegeben und die Mischung bei Raumtemperatur 18 Stunden gerührt. Ein Dünnschichtchromatogramm auf Kieselgel mit Etha- nol/Chloroform (1 : 4 vol) als Laufmittel zeigt, daß die Reaktion vollständig abgelaufen ist (Rf 0,37). Das Lösungs¬ mittel wird im Vakuum abgedampft und der verbleibende Rest in 100 ml Dichlormethan gelöst und das Produkt mit 100 ml Wasser extrahiert. Die wäßrige Phase wird mit 100 ml Dichlormethan und anschließend mit 100 ml Diethylether gewaschen. Die gelb¬ liche wäßrige Phase wird anschließend mit der Pyridinform von Dowex 50 Wx4-200 Harz (25 g) 5 min gerührt. Das Harz wird abfiltriert und das trübe Filtrat mit 2 x 50 ml Dichlormethan und anschließend 100 ml Ether gewaschen. Die wäßrige Phase wird im Vakuum eingedampft. Wasserspuren werden durch Zugabe von Methanol und Tetrahydrofuran und anschließendes Eindamp¬ fen beseitigt. Die gewünschte Verbindung wird aus Methanol kristallisiert, abfiltriert und mit Ether gewaschen und ge¬ trocknet. Man erhält 1,83 g (94 % der Theorie) von 2'- 0- Allyluridin.
Rf -Wert (Kieselgel; Ethanol/Chloroform 1 : 4 vol): 0,39.
3C N.M.R. spektrum (pyridin - d5 )δ: 164,48 (C-4), 151,72 (C- 2), 140,76 (C-6), 135,11 (CH von Allyl) . 116,96 (allyl = CH2), 102,17 (C-5), 88,26 (C-l'), 85,72 (C-4'), 82,57 (C-2'), 71,38 (allyl CH20), 69,41 (C-3') and 60,75 p.p.m. (C-5'). B e i s p i e l 11
2'-O-Allyl-uridin-5'-monophosphat
1,42 g 2'-O-Allyl-uridin (5,0 mmol) wurden nach der Methode von Yoshikawa et al. (1967) Tetrahedron Lett. 50., 5065 phos- phoryliert. Die Ausbeute nach chromatographischer Aufreini- gung betrug 980 mg.
Beispiel 12
2'-O-Allyl-uridin-5'-diphosphat und -5'-triphosphat
Zur Herstellung der Di- bzw. Triphosphate wurden jeweils 365 mg (1 mmol) des Monophosphates nach der Methode von Hoard und Ott (1965) J. Am. Chem. Soc. .87, 1785 mit Orthophosphorsäure bzw. Pyrophosphorsäure umgesetzt. Die Ausbeuten betrugen 220 mg an Diphosphat bzw. 140 mg an Triphosphat.
Alle 5'-Phosphate wurden mittels Elementaranalyse, Elektro¬ phorese und 31 P-NMR-Spektroskopie charakterisiert.

Claims

P A T E N T A N S P R Ü C H E
1. Nukleotid-Analogon der allgemeinen Formel I,
Figure imgf000019_0001
worin
B eine beliebige Nukleobase,
A ein O-Atom oder CH2 ;
C gleich -O-R ist und R eine gegebenenfalls modifi¬ zierte Alkylgruppe mit mindestens 1 C-Atom, oder eine gegebenenfalls modifizierte Alkenyl- oder Alkinyl-gruppe mit mindestens 2 C-Atomen bedeutet, wobei die Modifikation in einer Substitution durch einen oder mehrere Halogen-, Cyano-, Carboxy-, Hydroxy-, Nitro- oder/und Mercapto-Reste besteht, und
D und E an sich bekannte, zur Ausbildung von 3'-5'-In- ternukleotid-Bindungen fähige reaktive Gruppen oder die -P04H2-, -P207H3- oder -P30** 0H4-Grup¬ pe bedeuten.
2. Nukleotid nach Anspruch 1, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daß es als Nukleobase einen Adenin-9-yl-, Cytosin-1-yl-, Guanin-9-yl-, Uracil-1-yl, Hypoxanthin-9-yl-, oder Thy- min-1-yl-Rest aufweist.
3. Nukleotid nach Anspruch 1 oder 2, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daß die Nukleobase ein 2-Aminoadenin-9-yl-Rest ist.
4. Nukleotid nach Anspruch 1 oder 2, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daß der Alkenylrest ein Alk-2-enylrest ist.
5. Nukleotid nach einem der vorhergehenden Ansprüche, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daß der Alkenylrest ein Allylrest ist.
6. Verfahren zur Herstellung von Poly- und Oligonukleoti- den, insbesondere an einer festen Phase, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daß man mindestens ein Nukleotid nach einem der Ansprü¬ che 1 bis 5 auf an sich bekannte Weise mit anderen Nu- kleotiden umsetzt.
7. Nukleotid-Polymere, erhältlich durch Umsetzung von reak¬ tiven Mononukleotiden auf an sich bekannte Weise, insbe¬ sondere an einer festen Phase, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daß es mindestens ein Monomeres nach den Ansprüchen 1 bis 5 enthält.
8. Nukleotid-Polymeres nach Anspruch 7 mit der Formel II
Figure imgf000020_0001
wobei
X oder Z gleich 0, S, NH oder CH2 bedeutet, wobei X und Z in einer monomeren Einheit gleich oder verschieden sein kann,
V und W ein 0, S, Se, NH2 , ein Alkyl- oder ein Alkyloxy- rest, OH oder SH bedeutet, wobei V und W in einer Mono¬ mereinheit gleich oder verschieden sein können und L ein H-Atom oder ein Partner eines Bindepaares ist und wobei B, A und C die in Anspruch 1 definierte Bedeutung aufweisen und n eine beliebige ganze Zahl bedeutet.
9. Nukleotid-Polymeres nach einem der Ansprüche 7 oder 8, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daß L einen Biotinrest bedeutet.
10. Polynukleotid nach einem der Ansprüche 7 bis 9, d a d u r c h g e k e n n z e i c h n e t , daß es an seinem 3'-terminalen Ende ein 3 '-Deoxyribonu- kleosid aufweist.
11. Verwendung von Nukleotidpolymeren nach einem der vorher¬ gehenden Ansprüche als Antisense-Proben zur Hemmung der Genexpression und als Arzneimittel.
PCT/EP1991/000665 1990-04-09 1991-04-08 2'-o-alkylnukleotide sowie polymere, die solche nukleotide enthalten Ceased WO1991015499A1 (de)

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