WO1996005821A1 - Liposomal verkapseltes taxol, seine herstellung und seine verwendung - Google Patents

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taxol
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encapsulated taxol
taxol according
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Martin Brandl
Iduna Fichtner
Gernot Warnke
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Max Delbrueck Centrum fuer Molekulare in der Helmholtz Gemeinschaft
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Definitions

  • the invention relates to liposomally encapsulated taxol. its manufacture and its use. Areas of application of the invention are medicine and the pharmaceutical industry.
  • Taxol is a natural substance found in the bark of various yew species (Taxazeen), which is derived from these barks [J. Amer. Chem. Soc, 93: 2325 (1971)] or more recently also by chemical synthesis [J. Amer. Chem. Soc, 1110: 5917-5919 (1988)]. Taxol has a completely new mode of action compared to previously known cytostatics [Ann. NY. Acad. Be. 466: 733-744 (1986); Sartorelli, A. (ed.): Molecular Actions and Targets for Cancer Chemotherapeutic Agents. Academic Press, New York, 1981, pp. 483-507].
  • Taxol shows a clear antineoplastic activity against various tumors, e.g. against implanted B16 melanoma, P388 leukemia and against human breast tumors.
  • Taxol is severely limited due to its low water solubility.
  • Solubilizers such as Cremophor (polyethoxylated castor oil) and alcohol improve the solubility, but lead to the use
  • Taxol as an almost water-insoluble substance can be dissolved with high efficiency in the lipid phase of liposomes of a suitable composition, so that the toxicities observed by Cremophor EL in humans, including increased chylomicron formation, should no longer occur.
  • the therapeutic effectiveness of free, liposomally encapsulated and nanoparticulate taxol is compared in vitro on two leukaemias, the P388 and the L1210. While the inhibition of growth of the P388 cells was the same for all 3 drug forms, the L1210 was more sensitive to the nanoparticulate form.
  • Taxol liposomes produced show improved stability.
  • Taxol-liposome combinations are claimed, of which in particular
  • Vesicles with a positive charge based on cardiolipin, phosphate idylcholine and cholesterol were produced and examined.
  • the aim of the invention is to provide liposomally encapsulated taxol with a high taxol content and higher stability, and thus increased therapeutic effectiveness.
  • the task is to develop specific forms of Taxol encapsulation and to use them, possibly in combination with other free or liposomally encapsulated substances, for the treatment of different types of tumors and localizations.
  • the focus is also on preventing the dose-limiting neutropenic effect of the unencapsulated taxol, e.g. by combination with liposomal carboplatin.
  • the invention also relates to a pharmaceutical preparation which contains the liposomally encapsulated taxol according to the invention and pharmaceutically customary excipients and additives.
  • a practically advantageously usable mixture contains 0.98 mg taxol in 50 mg phosphatidylcholine (98% of the amount of taxol used).
  • the liposomal encapsulation takes place by high pressure homogenization or by spontaneous vesicle formation.
  • a prefabricated liposome mixture in solid or liquid form is combined with taxol, subsequently homogenized several times (preferably twice) at 5-160 MPa and optionally subsequently lyophilized.
  • the production process for the production of a taxol-containing liposomal preparation by means of high-pressure homogenization, and possibly the release of liposomes from such a preparation comprises the following steps:
  • REPLACEMENT LEAF Liposomes according to Example 1 were used for animal experiments. It could be shown, inter alia, on a human mamma carcinoma (MaTu) that this liposome preparation compared to free taxol (4 days of therapy, 12.5 mg / kg per day) after only one application of 50 mg / kg showed improved therapeutic efficacy with lower haematotoxicity (Fig. 1 + 2).
  • the encapsulants used are a) a natural, semi-synthetic or fully synthetic amphiphile, such as a lipid, a surfactant or an emulsifier, b) a charged lipid component and / or a saturated lipid component, an ether lipid component, c) a polymer d) a carrier liquid and optionally additional auxiliaries, such as Contains nano particles.
  • the amphiphile preferably has the formula I given in claim 3.
  • the charged lipid component used is preferably: the anion of dicethylphosphate, palmitic acid, stearic acid, the anion of a phospholipid, such as phosphatidylserine or phosphatidic acid, or the anion of a sphingolipid such as sulfatide.
  • phosphatidylglycerol is used as the charged lipid component.
  • the invention can equally be implemented with neutral lipid components such as phosphatidylcholine or saturated lipid components such as dipalmitoylphosphatidylcholine.
  • the polymer used is e.g. Polyethylene glycol of molecular weight 2000-10000.
  • Physiological saline is generally used as the carrier liquid.
  • aqueous medium in volume fractions of 1 to 30% of the volume of the preparation and mechanical mixing e.g. the three-dimensional gel structure is disassembled and the preformed liposomes released by manual shaking or using a vortex mixer.
  • the liposome dispersion can be filtered through filters with a pore size of 0.1 ⁇ m to 1 ⁇ m.
  • the preparation according to the invention which contains liposomes in a tight package (liposome gel), is suitable as an active substance depot which slowly releases the active substance, either in dissolved form or in the form of individual liposomes containing active substance.
  • This preparation can be applied by injection (e.g. i.m., i.p.) or implantation. However, insertion into body cavities or application to mucous membranes, the cornea of the eye (cornea) or areas of the skin is also possible.
  • the preparation thus serves as a carrier of the active ingredient and, if necessary, for its modified release.
  • the preparation according to the invention which contains liposomes in free-flowing form, is suitable as a carrier of the active ingredient.
  • This preparation can be applied by injection (e.g. i.v., i.m.) or also by introducing it into body cavities or by applying it to mucous membranes, the cornea of the eye (comea) or areas of skin.
  • the encapsulated liposomes according to the invention lead to a distribution of the liposomal active ingredient in the body, which selectively brings about a high and long-lasting active ingredient concentration at the site of action and thus to an improvement in the action or an improvement in the ratio of action to side effect.
  • the taxol / encapsulant / propellant mixture of metered dose aerosols is sprayed and forms after the evaporation of
  • preformed taxol liposomes can be nebulized. This route is particularly preferable if direct use against lung metastases is intended.
  • the liposomally encapsulated taxol can be used as a cytostatic. This can be used alone or in combination with other active ingredients such as carboplatin or liposomally encapsulated carboplatin. Preference is given to use against him tumors, malignant melanomas, liver metastases, pulmonary metastases, breast carcinomas and against urogenital carcinomas. During treatment i.a. A human breast carcinoma on the nude mouse showed a significant tumor volume inhibition after a single administration of 50 mg kg liposomally encapsulated taxol compared to the treated taxol group (4x12.5 mg / kg).
  • a lipid film consisting of 1500 mg of egg phosphatidylcholine and 30 mg of taxol is dispersed in 30 ml of sterile, calcium-free phosphate-buffered (pH 7.2-7.4) sodium chloride solution.
  • the resulting dispersion of multilayer liposomes is treated in a high pressure homogenizer (Gaulin Mikrolab 40) at 700 bar.
  • the resulting liposome dispersion (SUV) can be stored for a short time at 4 degrees Celsius and is suitable for parenteral (IV) application. Gel formation or lyophilization is suitable for longer storage.
  • Liposomes produced as in Example 1 are aerosolized with a suitable nebulizer (e.g. Aero-Tech II) and thus made accessible for inhalation.
  • a suitable nebulizer e.g. Aero-Tech II
  • 200 mg taxol, 200 mg encapsulant according to claim 2 and 400 ul ethanol (90%) are metered into a pressurized gas container.
  • a metering valve e.g. Perfect Valois DF 10/150 ACT
  • 10 ml of liquefied dimethyl ether are added to the preparation, so that the clear to opalescent or slightly cloudy solution is formed.

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Abstract

Anwendungsgebiete der Erfindung sind die Medizin und die pharmazeutische Industrie. Die Erfindung hat das Ziel, liposomal verkapseltes Taxol mit hohem Taxolanteil und höherer Stabilität, damit erhöhter therapeutischer Wirksamkeit, zur Verfügung zu stellen. Die Aufgabe besteht darin, spezifische Formen der Verkapselung von Taxol zu entwickeln und diese, ggf. in Kombination mit anderen Substanzen, zur Behandlung unterschiedlicher Tumorarten einzusetzen. Das liposomal verkapselte Taxol ist dadurch gekennzeichnet, daß es durch Hochdruckhomogenisierung bzw. durch Aerosolbildung erzeugt wurde. Ein Beispiel ist die Anwendung in Kombination mit liposomal verkapseltem Carboplatin in Aerosolform gegen Lungenmetastasen.

Description

Liposomal verkapseltes Taxol, seine Herstellung und seine Verwendung
Beschreibung
Die Erfindung betrifft liposomal verkapseltes Taxol. seine Herstellung und seine Verwendung. Anwendungsgebiete der Erfindung sind die Medizin und die pharmazeutische Industrie.
Taxol ist ein in der Rinde verschiedener Eibenarten (Taxazeen) vorkommender Naturstoff, der aus diesen Rinden [J. Amer. Chem. Soc, 93:2325 (1971)] bzw. neuerdings auch durch chemische Synthese [J. Amer. Chem. Soc, 1110:5917- 5919 (1988)] gewonnen werden kann. Taxol verfugt im Vergleich zu bisher bekannten Zytostatika über einen völlig neuartigen Wirkmechanismus [Ann. NY. Acad. Sei. 466:733-744 (1986); Sartorelli, A. (ed.): Molecular Actions and Targets for Cancer Chemotherapeutic Agents. Academic Press, New York, 1981, pp. 483-507]. Die Substanz fördert die Polymerisation der Mikrotubuli aus Tubulindimeren und stabilisiert die Mikrotubuli durch Hemmung ihrer Depolymerisation. Weiterhin kommt es zu einer abnormen Anordnung und Bündelung von Mikrotubuli während des gesamten Zellzykluses, was zur Bildung multipler mikrotubulärer Teilungssterne während der Mitose und damit zur Hemmung der normalen dynamischen Reorganisation des mikrotubulären Netzwerkes führt. Da dadurch die vitale Zellfunktion in der Interphase und während der Mitose entscheidend beeinflußt wird, zeigt Taxol eine deutliche antineoplastische Aktivität gegen verschiedene Tumoren, u.a. gegen implantierte B16-Melanome, P388- Leukämie und gegen humane Mammatumoren.
Die Anwendbarkeit von Taxol ist durch seine geringe Wasserlöslichkeit stark eingeschränkt. Lösungsvermittler wie Cremophor (polyethoxyliertes Castoröl) und Alkohol verbessern die Löslichkeit, fuhren jedoch bei der Anwendung zu
ERSATZBLATT erheblichen Nebenwirkungen, z.B. zu anaphylaktoiden Reaktionen. Die Ver¬ dünnung solcher Lösungen mit physiologischer Kochsalzlösung zur Applika¬ tion hat den Nachteil, daß Taxol in physiologischer Kochsalzlösung keine aus¬ reichende Stabilität (maximal 24 Stunden) besitzt. Eine dosislimitierende Nebenwirkung ist die Myelosuppression in erster Linie die Neutropenie [Semin. Oncol. 19:646-662 (1992)]. Liposomen bieten aufgrund ihres amphi- philen Charakters die Möglichkeit sowohl wasser- als auch lipidlösliche Sub¬ stanzen einzuschließen bzw. zu inkorporieren.
Taxol als eine fast wasserunlösliche Substanz läßt sich mit hoher Effizienz in der Lipidphase von Liposomen geeigneter Zusammensetzung lösen, so daß die durch Cremophor EL beim Menschen beobachteten Toxizitäten einschließlich einer vermehrten Chylomikronenbildung nicht mehr auftreten sollte. Die thera¬ peutische Effektivität von freiem, liposomal verkapseltem und nanopartikulä- rem Taxol werden an zwei Leukämien, der P388 und der L1210, in vitro ver¬ glichen. Während die Wachstumshemmung der P388-Zellen für alle 3 Arzneimittelformen gleich war, zeigte die L1210 eine größere Sensitivität gegenüber der nanopartikulären Form.
Bei Testung aller 3 Zubereitungen an der P388 in vivo (12,5 mg/kg/4 Tage) waren die freie und liposomale Form in ihrer therapeutischen Effektivität ver¬ gleichbar, während nanopartikuläres Taxol akute Toxizitäten hervorrief [J. Microencapsul. 7 (2):191-7 (1990]. In einer weiteren Studie wurde Taxol in freier und liposomaler Form hinsichtlich der Antitumoraktivität an zwei humanen Glioblastomen im Nude-Maus-Modell getestet (12,5 mg/kg/4 Tage). Beide Formen führten zu einer signifikanten Verringerung des Tumorwachstums [In- Vivo 6 (l):23-7 (992)]. Sharma et al. [Cancer Res. 53:5877-81 (1993)] und Straubinger et al. [J. Natl. Cancer Inst. Monographs 15:69-78 (1993)] berichten von einem signifikanten Antitumoreffekt von lipo- somalem Taxol (10-45 mg/kg) am murinen Taxol-resistenten Colon-26- Modell. In WO 93/18751 wird die Verkapselung von Taxol in Liposomen und
ERSATZBLATT die Verwendung der erhaltenen Produkte zur Behandlung von
Krebserkrankungen beschrieben. Bevorzugt wird eine Kombination dieser
Behandlung mit Hyperthermie. Die hergestellten Taxol-Liposomen zeigen eine verbesserte Stabilität.
Bisher wurde ein Patent (WO 93/18751) angemeldet, in dem eine Vielzahl von
Taxol-Liposomen-Kombinationen beansprucht wird, von denen insbesondere
Vesikel mit positiver Ladung auf der Basis von Cardiolipin, Phosphat- idylcholin und Cholesterol hergestellt und untersucht wurden.
Das auf diese Weise verkapselte Taxol mußte jedoch in den Tierversuchen an vier aufeinanderfolgenden Tagen appliziert werden, da eine einmalige Gabe offensichtlich nicht zum gewünschten Antitumoreffekt führte.
Die Erfindung hat das Ziel, liposomal verkapseltes Taxol mit hohem Taxolan- teil und höherer Stabilität, damit erhöhter therapeutischer Wirksamkeit, zur Verfugung zu stellen. Die Aufgabe besteht darin, spezifische Formen der Ver¬ kapselung von Taxol zu entwickeln und diese, ggf. in Kombination mit anderen freien bzw. liposomal verkapselten Substanzen, zur Behandlung unterschiedlicher Tumorarten und Lokalisationen einzusetzen. Im Vordergrund steht hierbei neben der möglichst einmaligen Applikation des liposomalen Taxols auch die Verhinderung des dosislimitierenden neutropenischen Effektes des unverkapselten Taxols z.B. durch Kombination mit liposomalem Carboplatin.
Die Aufgabe wird gemäß den Ansprüchen 1, 13, 14 und 16 gelöst, die Unteransprüche sind Vorzugsvarianten. Die Verkapselung wird erfindungsge- mäß mittels Hochdruckhomogenisierung bzw. mittels Aerosolbildung durch¬ geführt.
Unsere eigenen Experimente umfassen Arbeiten zur Präparation und Charak¬ terisierung verschiedener taxolhaltiger Liposomentypen unterschiedlicher Größe und Zusammensetzung (vgl. Ansprüche).
ERSATZBLATT Gegenstand der Erfindung ist auch eine pharmazeutische Zubereitung, die das erfindungsgemäße, liposomal verkapselte Taxol und pharmazeutisch übliche Träger- und Zusatzstoffe enthält. Eine praktisch vorteilhaft einsetzbare Mischung enthält 0.98 mg Taxol in 50 mg Phosphatidylcholin (98% der einge¬ setzten Taxolmenge).
Die liposomale Verkapselung erfolgt durch Hochdruckhomogenisierung oder durch spontane Vesikelbildung. Im ersten Falle wird eine vorgefertigte Lipo- somen-Mischung in fester bzw. flüssiger Form mit Taxol vereinigt, nachfol¬ gend mehrfach (bevorzugt 2 fach) bei 5-160 MPa homogenisiert und ggf. nachfolgend lyophilisiert.
Das Herstellungsverfahren zur Erzeugung einer Taxol-haltigen liposomalen Zubereitung mittels Hochdruckhomogenisation, sowie ggf. Freisetzung von Liposomen aus einer solchen Zubereitung umfaßt folgende Schritte:
1 ) Fakultativ Herstellung eines Lipidfilms und Überführung desselben in eine Vormischung bestehend aus Membranbildnem und wäßrigem Medium:
Herstellung eines dünnen, trockenen Lipidfilms durch Auflösen des Taxols zusammen mit den Membranbildnem in organischen Lösungsmitteln. Nachfol¬ gend vollständige Entfernung der Lösungsmittel durch Evaporation ggf. durch Sprühtrocknung. Dispergieren des Lipidfilms nach Zugabe von wäßrigem Medium, z.B. durch Schütteln, Rühren, Kneten o.a. ggf. unter erhöhter Temperatur (ca. 10 °C oberhalb der Phasenübergangstemperatur der Phospholipide).
2) Hochdruckhomogenisation:
Entweder die aus 1 ) erhaltene Vormischung oder alternativ ein Gemisch aus Lipid(en), Wasser und Taxol (ggf. grob dispergiert durch Rühren z.B. mittels eines Magnetrührers o.a.) wird ein- oder mehrmals (jedoch nicht mehr als fünfzigmal) der Hochdruckhomogenisation (z.B. mittels APV Gaulin Micron
ERSATZBLATT Für die tierexperimentelle Prüfung wurden Liposomen nach Beispiel 1 einge¬ setzt. Es konnte u.a. an einem menschlichen Mam-ma-Karzinom (MaTu) ge¬ zeigt werden, daß diese Liposomenpräparation im Vergleich zum freien Taxol (4 Tage Therapie, je Tag 12,5 mg/kg) bereits nach einmaliger Applikation von 50 mg/kg eine verbesserte therapeutische Wirksamkeit bei geringerer Hämato- toxizität aufwies (Abb. 1+2).
Als Verkapselungsmittel werden verwendet a) ein natürliches, halbsynthetisches oder vollsynthetisches Amphiphil, wie ein Lipid, ein Tensid oder einen Emulgator, b) eine geladene Lipidkomponente und/oder eine gesättigte Lipidkomponente, eme Etherlipidkomponente, c) ein Polymer d) eine Trägerflüssigkeit und ggf. zusätzliche Hilfsstoffe, wie z.B. Nano partikel enthält.
Das Amphiphil hat bevorzugt die in Anspruch 3 angegebene Formel I. Als geladene Lipidkomponente werden bevorzugt eingesetzt: das Anion des Dicethylphosphats, der Palmitinsäure, der Stearinsäure, das Anion eines Phospholipids, wie Phosphatidylserin oder Phosphatidsäure oder das Anion eines Sphingolipids wie Sulfatid. In einer besonders günstigen Ausführungs¬ form der Erfindung wird als geladene Lipidkomponente Phosphatidylglycerol eingesetzt.
Die Erfindung kann gleichermaßen mit neutralen Lipidkomponenten wie Phosphatidylcholin oder gesättigten Lipidkomponenten wie Dipalmitoyl- phosphatidylcholin realisiert werden.
Als Polymer dient z.B. Polyethvlenglycol vom Molekulargewicht 2000-10000. Als Trägerflüssigkeit wird im allgemeinen physiologische Kochsalzlösung ein¬ gesetzt.
AT LATT Lab) unter Drucken zwischen 5 und 160 Mpa (50 bis 1600 bar) unterzogen. Edukt, Homogenisator und Produkt werden ggf. temperiert.
3) Fakultativ Gefrier/Tau-Behandlung:
Durch ein- bis mehrmaliges Einfrieren und nachfolgendes Wiederauftauen der Zubereitung während, d.h. zwischen einzelnen Zyklen der Hochdruckhomoge- nisation oder an deren Ende wird eine homogenere Durchmischung des Ansatzes erreicht und evtl. die vorgebildeten Liposomen vorübergehend destabilisiert, so daß Liposomen mit noch mehr inkorporiertem Taxol gebildet werden.
4) Fakultativ Gefriertrocknen und Redispergieren:
Durch ein- bis mehrmaliges Gefriertrocknen und nachfolgendes Redispergieren der Zubereitungen bevorzugt während, d.h. zwischen einzelnen Zyklen der Hochdruckhomogenisation oder an deren Ende wird eine homogenere Durchmischung des Ansatzes erreicht und die vorgebildeten Liposomen vorübergehend destabilisiert, so daß Liposomen mit noch mehr inkorporiertem Taxol gebildet werden.
5) Fakultativ Überführung der Zubereitung in eine freifließende Liposomendispersion :
Durch schrittweise Zugabe von wäßrigem Medium in Volumenanteilen von 1 bis 30 % des Volumens der Zubereitung und mechanisches Mischen z.B. durch manuelles Schütteln oder mittels eines Vortex-Mischers wird das dreidimensionale Gelgerüst zerlegt und die vorgebildeten Liposomen freigesetzt.
ERSATZBLATT 6) Fakultativ Filtration der Liposomendispersion:
Falls die Liposomengröße nach oben hin begrenzt werden soll bzw. eme sterile Zubereitung erhalten werden soll, kann die Liposomendispersion durch Filter mit einer Porenweite von 0,1 μm bis 1 μm filtriert werden.
Die erfindungsgemäße Zubereitung, die Liposomen in dichter Packung enthält (Liposomengel), eignet sich als Wirkstoffdepot, das den Wirkstoff langsam freisetzt und zwar entweder in gelöster Form oder in Form einzelner Wirkstoff-enthaltender Liposomen. Diese Zubereitung kann durch Injektion (z.B. i.m., i.p.) oder Implantation angewendet werden. Aber auch ein Einbringen in Köφerhöhlen oder ein Aufbringen auf Schleimhäute, auf die Hornhaut des Auges (Kornea) oder Hautpartien ist möglich. Somit dient die Zubereitung als Träger des Wirkstoffs sowie ggf. zu dessen modifizierter Freigabe.
Die erfindungsgemäße Zubereitung, die Liposomen in freifließender Form ent¬ hält, eignet sich als Träger des Wirkstoffs. Diese Zubereitung kann durch Injektion (z.B. i.v., i.m.) oder ebenfalls durch Einbringen in Köφerhöhlen oder Aufbringen auf Schleimhäute, auf die Hornhaut des Auges (Komea) oder Hautpartien angewendet werden. Die erfindungsgemäß verkapselten Liposo¬ men führen zu einer Verteilung des liposomalen Wirkstoffs im Köφer, die selektiv eine hohe und lange andauernde Wirkstoffkonzentration am Wirkort bewirkt und damit zu einer Verbesserung der Wirkung oder zu einer Verbesse¬ rung des Verhältnisses von Wirkung zu Nebenwirkung.
Zur spontanen Vesikelbildung wird die Taxol/Verkapselungsmittel/Treibgas- Mischung aus Dosieraerosolen versprüht und bildet nach dem Verdampfen des
ERSATZBLATT Treibgases auf der Lungenoberfläche spontan liposomal verkapseltes Taxol. Alternativ können vorgebildete Taxol-Liposomen vernebelt werden. Dieser Weg ist vor allem dann vorzuziehen, wenn ein direkter Einsatz gegen Lungenmetastasen beabsichtigt ist.
Das liposomal verkapselte Taxol ist als Zytostatikum verwendbar. Diese Ver¬ wendung kann allein oder in Kombination mit anderen Wirkstoffen wie Car- boplatin oder liposomal verkapseltem Carboplatin erfolgen. Bevorzugt ist der Einsatz gegen Himtumoren, maligne Melanome, Lebermetastasen, Lungenme¬ tastasen, Mammakarzinome und gegen Urogenitalkarzinome. Bei der Behandlung u.a. eines menschlichen Mamma-Karzinoms auf der Nude-Maus wurde nach einmaliger Gabe von 50 mg kg liposomal verkapseltem Taxols, im Vergleich zur behandelten Taxolgruppe (4x12,5 mg/kg) eine signifikante Tumorvolumenhemmung erreicht.
Die Erfindung soll nachfolgend durch Ausführungsbeispiele näher erläutert werden.
Beispiel 1
Ein Lipidfi n, bestehend aus 1500 mg Eiphosphatidylcholin und 30 mg Taxol, wird in 30 ml steriler, Calcium-freier Phosphat-gepufferter (pH 7,2-7,4) Koch¬ salzlösung dispergiert.
Die entstandene Dispersion multischichtiger Liposomen wird im Hochdruck¬ homogenisator (Gaulin Mikrolab 40) bei 700 bar behandelt. Die entstandene Liposomendispersion (SUV) ist bei 4 Grad Celsius kurzzeitig lagerfähig und eignet sich zur parenteralen (i.v.) Applikation. Zur längeren Lagerung eignet sich die Gelbildung bzw. die Lyophilisierung.
ERSATZBLATT Beispiel 2
Liposomen, hergestellt wie im Beispiel 1 werden mit einem geeigneten Ver- nebler aerosohsiert (z.B. Aero-Tech II) und somit der inhalativen Applikation zugänglich gemacht.
Beispiel 3
200 mg Taxol, 200 mg Verkapselungsmittel nach Anspruch 2 und 400 μl Ethanol (90%) werden in einen Druckgasbehälter dosiert. Nach Aufbördeln eines Dosierventils (z. B. Perfect Valois DF 10/150 ACT) wird die Zuberei¬ tung mit 10 ml dmckverflüssigtem Dimethylether versetzt, so daß die klare bis opaleszierende oder leicht getrübte Lösung entsteht.
Beispiel 4
Wie Beispiel 3, jedoch unter Verwendung von dmckverflüssigtem Isobutan als Treibgas.
Beispiel 5
Wie Beispiel 3, jedoch unter Verwendung von dmckverflüssigtem Propan/Butan (15/85) als Treibgas.
ERSATZBLATT

Claims

Patentansprüche
1 Liposomal verkapseltes 1 axol, dadurch gekennzeichnet, daß es durch Hochdruckhomogenisierung bzw. durch Aerosolbildung erzeugt wurde
2 Liposomal verkapseltes l axol nach Anspmch 1 , dadurch gekennzeichnet, daß es als Verkapselungsmittel a) em natürliches, halbsynthetisches oder vollsynthetisches Amphiphil, wie em Lipid, em lensid oder emen bmuigator, b) eme geladene Lipidkomponente und/oder eme gesättigte Lipidkomponente und/oder eine Etherhpidkomponente, c) em Polymer d) eme Trägerflüssigkeit und ggf. zusätzliche Hilfsstoffe, wie z.B. Nanopartikel enthält.
3 Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1 und 2, dadurch gekenn¬ zeichnet, daß es em natürliches, halbsynthetisches oder vollsynthetisches Amphiphil der allgemeinen Formel 1,
Figure imgf000012_0001
R2 - - 0 - CH 0 CH3
I I ! + /
Figure imgf000012_0002
0 CH 3
worin Ri und R2 CIÜ - C2o -Alkanoyl, -Alkenoyl, -Alkyl, -Alkenyl bedeuten, enthält.
ERSATZBLATT
4. Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1-3, dadurch gekennzeich¬ net, daß es als geladene Lipidkomponente das Anion des Dicethylphosphats, der Palmitinsäure, der Stearinsäure, das Anion eines Phospholipids, wie Phosphatidylserin, Phosphatidsäure, oder das Anion eines Sphingolipids, wie Sulfatid enthält.
5. Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1-4, dadurch gekennzeich¬ net, daß es als geladene Lipidkomponente ein chemisch modifiziertes Phosphatidylethanolamin enthält, über das Proteine (wie z.B. Antiköφer) angekoppelt werden können.
6. Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1-5, dadurch gekennzeich¬ net, daß es als neutrale Lipidkomponente Phosphatidylcholin enthält.
7. Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1-5, dadurch gekennzeich¬ net, daß es als geladene Lipidkomponente Phosphatidylserin enthält.
8. Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1-5, dadurch gekennzeich¬ net, daß es als geladene Lipidkomponente Phosphatidylglycerol enthält.
9. Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1-5, dadurch gekennzeich¬ net, daß es als gesättigte Lipidkomponenten Dipalmitoylphosphatidylcho- lin enthält.
10. Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1-5, dadurch gekennzeich¬ net, daß es als gesättigte Lipidkomponenten Dimyrestoylphosphatidylcho- lin enthält.
ERSATZBLATT
1 1. Liposomal verkapseltes 1 axo nach Anspmch 1 -5 dadurch gekennzeichnet, daß es als geladene Lipidkomponente Etherlipide enthält.
12. Liposomal verkapseltes Taxol nach Anspmch 1-11 , dadurch gekennzeich¬ net, daß in bzw. an der Membran der Vesikel (über chemische Kopplung) Polyethvlenglycol (MG 2000-10000) enthält.
13. Pharmazeutische Zubereitung, enthaltend eine wirksame Menge verkapsel¬ tes Taxol nach Anspmch 1-12 und pharmazeutisch übliche Träger- und Zusatzstoffe.
14. Verfahren zur Herstellung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 1-12, dadurch gekennzeichnet, daß ein Gemisch von membran¬ bildenden Amphiphilen, in denen Taxol gelöst wurde, und eine wäßrige Phase, ggf. nach Herstellung eines dünnen, trockenen Lipidfilms, nachfolgender Entfernung der Lösungsmittel durch Evaporation und Dispergieren in Wasser, ein- oder mehrmals, höchstens fünfzigmal, einer Hochdruckhomogenisation mit Drucken von 50 bis 1600 bar (5-160 Mpa) unterzogen wird und ggf. nachfolgend eine Gefrier/Tau-Behandlung, ggf. eine Überführung in eine freifließende Dispersion und anschließend ggf. eine Extrusion durch Filter mit einer Porenweite von 0,1 bis 1 μm erfolgt.
15. Verfahren zur Herstellung von liposomal verkapseltem Taxol nach An spmch 1-12 durch Aerosolbildung, dadurch gekennzeichnet, daß eine vorgefertigte Liposomen-Mischung in fester bzw. flüssiger Form mit Taxol vereinigt und nachfolgend in speziellen Aerosol-bildenden Vorrichtungen behandelt wird.
ERSATZBLATT
16 Verfahren zur Herstellung von liposomal verkapseltem Taxol nach An¬ spmch 1-12, dadurch gekennzeichnet, daß Taxol und die Verkapse- lungsmittel in einem druckverflüssigten Treibgas gelöst vorliegen und nach Verdampfen des Treibgases durch spontane Vesikelbildung auf dem Lungenephithel in liposomal verkapseltes Taxol überführt werden.
17. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 1-12 als Cytostatikum.
18. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 in Kombination mit anderen Wirkstoffen.
19. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 in Kombination mit liposomal verkapseltem Carboplatin.
20. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 in Kombination mit Carboplatin.
21. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 gegen Hirntumoren.
22. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 gegen maligne Melanome.
23. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 gegen Lebermetastasen.
24. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 gegen Lungenmetastasen .
ERSATZBLATT
25. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 gegen Mammakarzinome .
26. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol nach Anspmch 17 gegen Urogenitalkarzinome.
27. Verwendung von liposomal verkapseltem Taxol in Kombination mit lipo somal verkapseltem Carboplatin in Aerosolform nach Anspmch 19 gegen Lungenmetastasen .
ERSATZBLATT
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