WO1998037904A1 - DILUEUR DE SPERME COMPRENANT DU PHOSPHOCASEINATE NATIF OU DE LA β-LACTOGLOBULINE, SON PROCEDE DE PREPARATION ET SES UTILISATIONS - Google Patents

DILUEUR DE SPERME COMPRENANT DU PHOSPHOCASEINATE NATIF OU DE LA β-LACTOGLOBULINE, SON PROCEDE DE PREPARATION ET SES UTILISATIONS Download PDF

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phosphocaseinate
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Florence Batellier
Michèle MAGISTRINI
Jean-Louis Maubois
Eric Palmer
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Institut National de la Recherche Agronomique INRA
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    • A61K35/48—Reproductive organs
    • A61K35/52—Sperm; Prostate; Seminal fluid; Leydig cells of testes

Definitions

  • the present invention relates to the use of purified milk protein fractions to improve the survival of sperm and their ability to fertilize, for the purpose of artificial insemination or any other assisted reproduction practice.
  • sperm After harvest, the sperm quickly loses its fertilizing power. To remedy this situation, and allow sperm to be stored until it is used for artificial insemination, a medium called "diluent" is usually used in which the sperm is diluted immediately after its harvest.
  • the shelf life that can be obtained in the presence of a diluent depends on the species concerned and the storage conditions, and in particular on the type of diluent chosen; it generally varies from a few hours to a few days. In some species, this duration can be extended by freezing the sperm; however, this technique also results in the destruction or inactivation of a large number of sperm, and therefore a decrease in sperm fertility.
  • milk and milk-based diluents, which are used for example in the goat, ovine, bovine, and equine species.
  • the diluter called “INRA 82”, described by PALMER- [10 th Int. Congress on Anim. Reprod. and AI, Urbana-Champaign, IL USA, 3: 377, (1984)] or the diluter by KE NEY [KENNEY et al., Proc. 21 st Am. Assoc. Equine Pract. , 327-336, (1975)] are currently the most used for stallion semen for immediate or deferred artificial inseminations.
  • the storage temperature also plays an important role, although the different observations made on this subject, using different diluents, lead to divergent results.
  • VARNER et al. [Theriogenology, (32) 515-525, (1989)] use the KENNEY dilutor and do not observe any difference in fertility after using sperm stored at 5 C or 20 C;
  • SQUIRES et al. [Proc. ll Int. Congress on Anim. Reprod. and AI, Dublin, Ireland, (3) 297, (1988)] use the same diluent and conclude that the sperm stored at 5 C has better fertility, but only for certain standards.
  • Milk indeed has qualities which have made its use recommended as a diluent: it is a buffered medium which contains potential constituents - protective against sperm (lipids, proteins and lactose). However, it is a natural and particularly complex product, containing more than 100,000 molecular species, the composition of which is not fully known, and where the presence of constituents potentially harmful to sperm (this is ie spermicides or impaired sperm motility), has been suspected [GARCIA and GRAHAM, Cryobiology (24) 446-454, (1987)].
  • milk is a product whose components have a varying concentration under the effect of many factors (lactation stage, breed, diet, etc.)
  • the performance obtained with a milk-based diluent may vary from batch to batch.
  • the aim of the present invention is to obtain diluents based on milk constituents, of defined and reproducible composition, and making it possible to improve the conservation of sperm, and to control the conditions thereof.
  • the inventors have discovered that, surprisingly, the use of purified protein fractions obtained from milk, in particular native phosphocaseinate, and / or ⁇ -lactoglobulin, replacing milk in the semen dilution medium, allows significantly increase, compared to the milk-based diluents known in the prior art, both the shelf life of the sperm and the fertility rate obtained after storage.
  • the inventors have also found that, on the other hand, other milk proteins, such as ⁇ -lactalbumin, are toxic to the sperm.
  • the present invention relates to the use of a purified preparation of native phosphocaseinate and / or ⁇ -lactoglobulin for obtaining a sperm diluent.
  • the present invention relates in particular to a semen diluter constituted by a base medium formed of constituents suitable for diluting the sperm of a given animal species, and by a purified fraction of native phosphocaseinate, and / or a purified fraction of ⁇ -lactoglobulin.
  • basic medium comprising the constituents suitable for diluting the sperm of a given species
  • any medium comprising the constituents usually used in the semen diluents used for said species, and in which the constituents toxic for spermatozoa, in particular ⁇ -lactalbumin, are absent or are present only in the form of traces, so that these constituents are present in the diluent according to the invention only at a content at most equal to 2 to 3% (by weight) of the content of native ⁇ -lactoglobulin or phosphocaseinate and preferably at most equal to 0.5 to 1% (by weight) of the content of native ⁇ -lactoglobulin or of phosphosaseate .
  • a basic medium suitable for obtaining a diluent in accordance with the invention consists, for example, of a solution of mineral salts and of carbohydrates, buffered to an appropriate pH.
  • it also includes additives such as antibiotics or antifungals.
  • said sperm diluent comprises between 1 and 100 g / 1, preferably between 10 and 50 g / 1 of native phosphocaseinate and / or between 10 and 200 g / 1, preferably between 20 and 100 g / 1 of ⁇ -lactoglobulin.
  • the subject of the present invention is a process for the preparation of a sperm diluent, as defined above, comprising native phosphocaseinate, characterized in that it comprises at least one step during which the dissolution of the phosphocaseinate native in an aqueous medium, at a temperature between 30 and 80 ° C, preferably between 40 and 60 ° C.
  • the mother solution of native phosphocaseinate obtained in this way is then mixed with a base medium as defined above.
  • a base medium as defined above.
  • the mother solution comprises at least 300, and preferably 350 to 450 mg / l of ionized soluble calcium; the solubilization of calcium ions can in particular be obtained by adding citrate, for example disodium citrate at a concentration of the order of 2 to 5 g / 1.
  • the present invention also relates to a semen diluter capable of being obtained by the process according to the invention.
  • the present invention also relates to sperm preparations for artificial insemination, characterized in that said sperm is diluted in a diluent according to the invention.
  • the use of a diluent of the invention clearly improves the conservation of sperm, compared to the milk-based diluents used in the prior art.
  • the sperm prepared using a diluent in accordance with the invention can be stored at positive temperatures, between 4 ° C. and 20 ° C., and advantageously around 15 ° C.
  • the optimal storage temperature also depends on the species considered. In horses, for example, the use of a diluent in accordance with the invention makes it possible to store the sperm at 15 ° C. under aerobic conditions, and to obtain a longer shelf life and a higher fertility rate than those obtained. with dilutors of the prior art. This storage at 15 ° C avoids the thermal shock effect mique usually occurring during the cooling of the sperm.
  • a diluent according to the invention can be used for the conservation of the sperm of different mammals, such as for example horses and goats, as well as for the conservation of the sperm of other farm animals, such as birds.
  • the base medium used is HGLL medium, the composition of which is as follows: 0.140 g of CaCl 2 0.40 g of KCl 0.06 g of KH 2 P0 4
  • Amphotericin B, penicillin, and gentamicin are added to this medium to reach final concentrations in the respective base medium of 0.5 ⁇ g / ⁇ l, 500 IU / ml, and 100 ⁇ g / ml .
  • Said basic medium is then sterilized by filtration on a membrane whose pore diameter is 0.22 ⁇ m. 3) Preparation of a diluent based on native phosphocaseinate (diluent PPCN).
  • 0.5 liters of base medium obtained as described in 2) above is added 0.5 liters of a solution of ⁇ -lactoglobulin at 80 g / 1, previously sterilized by filtration on a membrane the diameter of which pore size is 0.22 ⁇ m. If necessary, the pH of the mixture is adjusted to a value of 7.1. The mixture is conditioned aseptically. 5) Preparation of a PPCN diluent supplemented with citrate.
  • a solution of basic medium is prepared and sterilized in the cold by filtration through a 0.22 ⁇ m membrane, as described in 2) above.
  • the samples are reheated for 10 minutes at 37 C.
  • the quality of the sperm preservation is evaluated by automated analysis of the mobility of the spermatozoa (Hamilton Thorn Motility Analyzer, Hamilton Thorn Research, Danvers, NIA, USA), in retaining as a criterion the percentage of rapid spermatozoa, that is to say having a speed greater than 30 ⁇ m / sec.
  • the highest percentage of rapid sperm is obtained with the diluent HGLL + native phosphocaseinate.
  • the results obtained with this glow are identical to those obtained with milk, and lower than those obtained with INRA 82.
  • ⁇ -lactoglobulin makes it possible to obtain results significantly greater than those obtained with 4 C BSA; on the other hand at 15 C these 2 proteins provide identical protection.
  • the ⁇ -lactalbumin and the ultrafiltrate are two fractions toxic for sperm-tozoids.
  • the semen from 20 ejaculates was stored for 7 days at 15 ° C. in the HGLL-PPCN diluent, with or without the addition of disodium hydrogen citrate, obtained as described in Example 1 above.
  • the percentage of rapid sperm was assessed as described above. It is 56.58% for HGLL-PPCN supplemented with disodium hydrogen citrate, and 55.49% for HGLL-PPCN alone.
  • the standard semen is diluted to a concentration of 20 x 10 sperm per ml.
  • the experimental conditions are summarized in Table II below.
  • the ponets and the mares were ultrasounded every day from the first day of heat and distributed at random in the 2 lots.
  • experiment # 1 the ponets were first inseminated when the dominant follicle reached 33 mm. Ovulation was induced 24 hours later by an intravenous injection of 25 mg of EC. G (crude equine gonadotrophin or total equine pituitary extract) and a second insemination was carried out 48 hours after the first, if ovulation had not occurred.
  • G crude equine gonadotrophin or total equine pituitary extract
  • a second insemination was carried out 48 hours after the first, if ovulation had not occurred.
  • experiments 2 to 4 the conditions were closer to the breeding conditions: the mares were inseminated from the day when the dominant follicle reached 33 mm, every 48 hours until ovulation. Table III below brings together the results of these 4 experiments, expressed as a percentage of females in which pregnancy diagnosis is
  • the doses stored at 15 ° C. with the diluent according to the invention made it possible to obtain fertility per cycle greater than that obtained with the doses stored at 4 C.
  • the results obtained for the 2 parts of the experiment are identical, and do not depend on the number of inseminations, or on the presence of a second post-ovulation insemination very close to the time of ovulation.
  • the fertility percentages per cycle are 48% obtained after delayed inseminations of 72 hours, and 68% obtained after immediate inseminations.
  • sperm is conserved conventionally at 4 ° C, after elimination of the seminal plasma and dilution in milk (milk powder reconstituted and heated at 92 ° C for 10 minutes). The diluted semen is then packaged in 2 ml aliquots placed in 5 ml tubes.
  • spermatozoa after storage at 4 or 15 ° C: - Or in a diluent according to the invention, obtained by the addition of native phosphocaseinate (27 g / l) to a base medium called KGB, which is constituted by BES-KOH medium [DUNNER, Anim. Prod. , 56, 387-391, (1993); DUNNER and IMPASTO, Small Ruminant Research, 11, 57-64, (1993)] supplemented with 2mg / ml of glucose,
  • conditioning Two types of conditioning were also tested: conventional aerobic conditioning (2 ml of diluted semen, in 5 ml tubes) mentioned above, or an anaerobic conditioning in the form of 0.5 ml "flakes" completely filled diluted semen.
  • Tables V and VI The mobility results obtained from 10 pools of ejaculates are shown in Tables V and VI below.
  • Table V represents the percentage of rapid spermatozoa (automated analysis)
  • Table VI represents the results of an evaluation of mobility by observation under a microscope and assessment of the percentage of mobile spermatozoa and the quality of movement, according to the defined criteria. by [BISHOP et al., J. Agriculture Science, 44, 227, (1954)]; the results are scored on a scale of 0 to 5.

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Abstract

L'invention est relative à un dilueur de sperme comprenant une fraction purifiée de phosphocaséinate natif, et/ou une fraction purifiée de beta -lactoglobuline. Ce dilueur peut être utilisé pour la conservation du sperme en vue de l'insémination artificielle.

Description

DILUEUR DE SPERME COMPRENANT DU PHOSPHOCASEINATE NATIF OU DE LA β-LACTOGLOBULINE, SON PROCEDE DE PREPARATION ET SES
UTILISATIONS .
-_ La présente Invention est relative à l'utili- sation de fractions protéiques laitières purifiées pour améliorer la survie des spermatozoïdes et leur aptitude à la fécondation, en vue de l'insémination artificielle ou de toute autre pratique de reproduction assistée.
Les techniques d'insémination artificielle qui sont de plus en plus utilisées actuellement, posent des problèmes de conservation du sperme en attente de 1 ' insémination.
En effet, après la récolte, le sperme perd rapidement son pouvoir fécondant . Pour remédier à cette situation, et permettre la conservation du sperme jusqu'à son utilisation pour l'insémination artificielle, on utilise habituellement un milieu dénommé "dilueur" dans lequel on dilue le sperme aussitôt après sa récolte.
La durée de conservation que l'on peut obtenir en présence de dilueur dépend de l'espèce concernée et des conditions de conservation, et en particulier du type de dilueur choisi ; elle varie en général de quelques heures à quelques jours. Chez certaines espèces, on peut prolonger cette durée par la congélation du sperme ; cependant, cette technique entraîne également la destruction ou 1 ' inactivation d'un nombre important de spermatozoïdes, et donc une baisse de fertilité du sperme.
L'obtention de dilueurs permettant d'améliorer la conservation et la capacité fécondante des spermato- zoïdes a fait l'objet de diverses recherches.
Parmi les dilueurs les plus fréquemment préconisés pour la conservation du sperme, on citera en particulier le lait, et les dilueurs à base de lait, qui sont utilisés par exemple chez les espèces caprine, ovine, bovine, et équine . Par exemple, chez cette dernière espèce, le dilueur dénommé « INRA 82 », décrit par PALMER-[10th Int. Congress on Anim. Reprod. and AI, Urbana-Champaign, IL USA, 3:377, (1984)] ou le dilueur de KE NEY [KENNEY et al., Proc. 21st Am. Assoc. Equine Pract . , 327-336, (1975)] sont actuellement les plus utilisés pour la semence d'étalon en vue d'inséminations artificielles immédiates ou différées.
La température de conservation joue également un rôle important, bien que les différentes observations réalisées à ce sujet, en utilisant des dilueurs différents, aboutissent à des résultats divergents. Par exemple, chez le cheval, VARNER et al. [Theriogenology, (32) 515-525, (1989)] utilisent le dilueur de KENNEY et n'observent aucune différence de fertilité après utilisation du sperme conservé à 5 C ou à 20 C ; SQUIRES et al. [Proc. ll Int. Congress on Anim. Reprod. and AI, Dublin, Ireland, (3) 297,(1988)] utilisent le même dilueur et concluent à une meilleure fertilité du sperme conservé à 5 C, mais uniquement pour certains étalons.
De même la durée maximale de conservation a fait l'objet de rapports contradictoires. Certains auteurs [DOUGLAS-HAMILTON et al., Theriogenolgy, (22) 291-304, (1984)] ont utilisé les doses 6 heures à 24 heures après la récolte, et obtenu des gestations. D'autres, (SQUIRES et al. 1988, communication précitée) n'obtiennent par contre aucune gestation après conservation de la semence pendant 48 heures à 20 C. Une étude plus récente [HEISKANEN et al., Theriogenology (42) 1043- 1051 (1994)] utilisant du sperme conservé 70 et 80 heures à 5 C dans le dilueur de Kenney supplémenté en théophylline (10 mM) et Hepes (10 mM) , donne des résultats de 77% et 57% de fertilité par cycle.
Le lait présente en effet des qualités qui ont fait préconiser son emploi en tant que dilueur : c'est un milieu tamponné qui contient des constituants potentiel- lement protecteurs des spermatozoïdes (lipides, protéines et lactose) . Cependant, il s'agit d'un produit naturel et particulièrement complexe, contenant plus de 100 000 espèces moléculaires, dont la composition n'est pas totale- ment connue, et où la présence de constituants potentiellement néfastes pour les spermatozoïdes (c'est à dire spermicides ou diminuant la motilité des spermatozoïdes) , a été soupçonnée [GARCIA et GRAHAM, Cryobiology (24) 446- 454, (1987)] . En outre, du fait que le lait est un pro- duit dont les composants ont une concentration variant sous l'effet de nombreux facteurs (stade de lactation, race, alimentation, etc.), les performances obtenues avec un dilueur à base de lait peuvent varier d'un lot à 1 ' autre . La présente Invention a pour but l'obtention de dilueurs à base de constituants du lait, de composition définie et reproductible, et permettant d'améliorer la conservation du sperme, et d'en contrôler les conditions . Les Inventeurs ont découvert que, de façon surprenante, l'utilisation de fractions protéiques purifiées obtenues à partir du lait, en particulier le phosphocaseinate natif, et/ou la β-lactoglobuline , en remplacement du lait dans le milieu de dilution du sperme, permettait d'augmenter de façon très significative, par rapport aux dilueurs à base de lait connus dans l'art antérieur, aussi bien la durée de conservation du sperme, que le taux de fertilité obtenu après conservation. Les Inventeurs ont également constaté qu'en revanche, d'autres protéines laitières, comme 1 ' α-lactalbumine, étaient toxiques pour les spermatozoïdes.
La présente Invention a pour objet l'utilisation d'une préparation purifiée de phosphocaseinate natif et/ou de β-lactoglobuline pour l'obtention d'un dilueur de sperme. La présente Invention a en particulier pour objet un dilueur de sperme constitué par un -milieu de base formé de constituants convenant pour la dilution du sperme d'une espèce animale déterminée, et par une frac- tion purifiée de phosphocaseinate natif, et/ou une fraction purifiée de β-lactoglobuline.
Par « milieu de base comprenant les constituants convenant pour la dilution du sperme d'une espèce déterminée », on entend tout milieu comprenant les cons- tituants habituellement utilisés dans les dilueurs de sperme utilisés pour ladite espèce, et dans lequel les constituants toxiques pour les spermatozoïdes, en particulier 1 ' α-lactalbumine , sont absents ou ne sont présents que sous forme de traces, de manière à ce que ces consti- tuants ne soient présents dans le dilueur conforme à l'invention qu'à une teneur au plus égale à 2 à 3% (en poids) de la teneur en β-lactoglobuline ou en phosphocaseinate natif et de préférence au plus égale à 0,5 à 1% (en poids) de la teneur en β-lactoglobuline ou en phos- phocaséinate natif.
Un milieu de base convenant pour l'obtention d'un dilueur conforme à l'invention est par exemple constitué par une solution de sels minéraux et de glucides, tamponnée à un pH approprié. Avantageusement, il comprend également des additifs tels que des antibiotiques ou des antifongiques.
Selon un mode de réalisation préféré de la présente Invention, ledit dilueur de sperme comprend entre 1 et 100 g/1, de préférence entre 10 et 50 g/1 de phosphocaseinate natif et/ou entre 10 et 200 g/1, de préférence entre 20 et 100 g/1 de β-lactoglobuline.
La présente Invention a pour objet un procédé de préparation d'un dilueur de sperme, tel que défini ci- dessus, comprenant du phosphocaseinate natif, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une étape au cours de laquelle on procède à la dissolution du phosphocaseinate natif dans un milieu aqueux, à une température comprise entre 30 et 80°C, de préférence entre 40 et 60°C.
La solution mère de phosphocaseinate natif obtenue de la sorte est ensuite mélangée avec un milieu de base tel que défini ci -dessus. Avantageusement, on la stérilise au préalable par traitement UHT . De préférence, pour éviter la déstabilisation du phosphocaseinate natif lors de la stérilisation, la solution mère comprend au moins 300, et de préférence 350 à 450 mg/1 de calcium ionisé soluble ; la solubilisation des ions calcium peut notamment être obtenue par addition de citrate, par exemple du citrate disodique à une concentration de l'ordre de 2 à 5 g/1.
La présente Invention a également pour objet un dilueur de sperme susceptible d'être obtenu par le procédé conforme à l'invention.
La présente Invention a également pour objet des préparations du sperme en vue de l'insémination artificielle, caractérisée en ce que ledit sperme est dilué dans un dilueur conforme à l'invention.
La mise en oeuvre d'un dilueur de l'Invention améliore nettement la conservation du sperme, par rapport aux dilueurs à base de lait utilisées dans l'art antérieur. Le sperme préparé en utilisant un dilueur conforme à 1 ' Invention peut être conservé à des températures positives, comprises entre 4°C et 20°C, et avantageusement aux environs de 15 °C. La température de conservation optimale dépend également de l'espèce considérée. Chez le cheval, par exemple, la mise en œuvre d'un dilueur conforme à 1 ' invention permet de conserver le sperme à 15 °C en conditions aérobies, et d'obtenir une durée de conservation et un taux de fertilité supérieurs à ceux obtenus avec les dilueurs de l'art antérieur. Cette conservation à 15°C permet d'éviter l'effet de choc ther- mique intervenant habituellement lors du refroidissement du sperme .
Un dilueur conforme à l'invention peut être utilisé pour la conservation du sperme de différents mammifères, tels que par exemple les équins et les caprins, ainsi que pour la conservation du sperme d'autres animaux d'élevage, tels que les oiseaux.
La présente Invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples non-limitatifs de préparation d'un dilueur conforme à l'Invention, et de son utilisation.
EXEMPLE 1 - PREPARATION D'UN DILUEUR CONFORME A L'INVENTION
1) Fractionnement du lait Le fractionnement des composants du lait écrémé cru est effectué par microfiltration sur membrane, [PIERRE et al. Lait (72) 461-474, (1992)] qui permet de séparer le microfiltrat (ou petit lait) du phosphocaseinate natif (caséines sous la forme micellaire qu'elles ont dans le lait) . La β-lactoglobuline est obtenue à partir du microfiltrat, selon le protocole décrit par MAUBOIS et al. [Bull. IDF, 212, 154-159, (1987)] Les étapes de ce fractionnement sont schématisées sur la Figure 1 en annexe . 2) Milieu de base :
Le milieu de base utilisé est le milieu HGLL, dont la composition est la suivante : 0, 140 g de CaCl2 0,40 g de KCl 0,06 g de KH2P04
0 , 2 g de MgS04 , 7H20 8 g de NaCl 0 , 35 g de NaHC03 4 , 76 g d ' Hepes 13 , 5 g de glucose 45 g de lactose eau distillée q.s.p. 0,5 litres.
On ajoute à ce milieu de 1 ' amphotéricine B, de la pénicilline, et de la gentamicine, pour parvenir à des concentrations finales dans le milieu de base respectives de 0,5 μg/μl, 500 Ul/ml, et 100 μg/ml .
Ledit milieu de base est ensuite stérilisé par fil- tration sur une membrane dont le diamètre des pores est de 0,22 μm. 3) Préparation d'un dilueur à base de phosphocaseinate natif (dilueur PPCN) .
On ajoute à 0,5 litres d'eau, à une température de 60°C, et sous agitation forte, 27 g de phosphocaseinate natif ; on poursuit l'agitation jusqu'à dissolu- tion complète, et obtention d'une solution d'aspect laiteux. Cette solution est ensuite soumise à un traitement UHT (145°C, 2 secondes), puis mélangée à 0,5 litres de milieu de base obtenu comme décrit en 2) ci-dessus. Si nécessaire, le pH du mélange est ajusté à une valeur de 7,1. Le mélange est ensuite conditionné de façon aseptique . 4) Préparation d'un dilueur à base de β-lactoαlobuline .
On ajoute à 0,5 litres de milieu de base obtenu comme décrit en 2) ci-dessus, 0,5 litres d'une solution de β-lactoglobuline à 80 g/1, préalablement stérilisée par filtration sur une membrane dont le diamètre des pores est de 0,22 μm. Si nécessaire, le pH du mélange est ajusté à une valeur de 7,1. Le mélange est conditionné de façon aseptique. 5) Préparation d'un dilueur PPCN supplémenté en citrate.
Pour effectuer une stérilisation plus poussée du dilueur, permettant une conservation optimale du sperme à 15°C, il est nécessaire de conserver la stabilité du phosphocaseinate natif (PPCN) lors du traitement thermique à haute température. Dans ce but, on maintient une concentration minimale en calcium ionisé soluble de l'ordre de 400 mg/1, par -l'addition d' hydrogénocitrate disodique à la solution de phosphocaseinate natif. La préparation du dilueur et sa stérilisation peuvent alors s'effectuer comme suit : une solution de phosphocaseinate natif
(PPCN) (54g/l) , préparée comme décrit ci-dessus, est additionnée de 2,65 g/1 d' hydrogénocitrate disodique (FLUKA 71 634) , préalablement à sa stérilisation par traitement à ultra-haute température (140 à 144°C) , pendant 3 à 4 secondes) .
- une solution de milieu de base est préparée et stérilisée à froid par filtration sur membrane de 0,22 μm, comme décrit en 2) ci-dessus.
Le mélange des 2 solutions stériles est ensuite réalisé comme décrit en 3) ci-dessus, et le dilueur final est conditionné stérilement sous forme de briques TETRAPAK® . EXEMPLE 2 : EFFET DES DIFFERENTES FRACTIONS DU LAIT SUR LA MOBILITE DES SPERMATOZOÏDES IN VITRO
Différentes fractions du lait, à savoir le phosphocaseinate natif, et la β-lactoglobuline mentionnés ci-dessus, et également 1 ' α-lactalbumine , et le résidu d' ultrafiltration ont été testées. Ces fractions sont additionnées au dilueur de base HGLL. A titre de témoins, on a utilisé du HGLL additionné de 1% de BSA (Sérum Albumine Bovine, Sigma A7906) , du lait UHT du commerce, et du dilueur IΝRA 82 [PALMER, Proc. 10th Int. Congress on Anim. Reprod. and AI, Urbana-Champaign, IL USA, 3 :337, (1984) ] .
Dix étalons ont été utilisés au total, avec un minimum de 6 étalons (1 éjaculat par étalon) pour chaque test. Après la récolte, le sperme filtré sur de la gaze est dilué, pour obtenir une concentration de 20 x 106 spermatozoides/ml, dans les différents milieux à tester, puis stocké en conditions aérobies à 15°C ou à 37°C (0,5 ml de sperme dilué dans des tubes de 5 ml) , ou anaérobies à 4 C (5 ml de sperme dilué dans des tubes de 5 ml) . Les. durées de conservation ont varié entre 6 et 96 heures en fonction de la température et de la qualité des dilueurs utilisés afin que les observations soient réalisées à un moment où les dilueurs puissent être discriminés. Avant l'analyse, les échantillons sont réchauffés 10 minutes à 37 C. La qualité de la conservation du sperme est évaluée par analyse automatisée de la mobilité des spermatozoïdes (Hamilton Thorn Motility Analyser, Hamilton Thorn Research, Danvers, NIA, USA) , en retenant comme critère le pourcentage de spermatozoïdes rapides c'est à dire ayant une vitesse supérieure à 30 μm/sec.
Les résultats sont illustrés par le Tableau I ci-après :
TABLEAU I
Figure imgf000011_0001
Les résultats obtenus avec les dilueurs témoin sont indiqués en italique. * : p<0,05 ; ns : non-significatif
A 15 C après 96 heures de conservation, le pourcentage de spermatozoïdes rapides le plus élevé est obtenu avec le dilueur HGLL + phosphocaseinate natif. Par contre à 4 C, les résultats obtenus avec ce di-lueur sont identiques à ceux obtenus avec le lait, et inférieurs à ceux obtenus avec 1 ' INRA 82. La β-lactoglobuline permet d'obtenir des résultats significativement supérieurs à ceux obtenus avec la BSA à 4 C ; par contre à 15 C ces 2 protéines apportent une protection identique. L ' α-lactalbumine et 1 ' ultrafiltrat sont 2 fractions toxiques pour les sperma- tozoïdes.
L'effet éventuel de la supplémentation par 1 ' hydrogénocitrate disodique a également été testé.
La semence provenant de 20 éjaculats a été conservée pendant 7 jours à 15 °C, dans le dilueur HGLL- PPCN additionné ou non d' hydrogénocitrate disodique, obtenu comme décrit à l'exemple 1 ci -dessus. Le pourcentage de spermatozoïdes rapides a été évalué comme décrit ci -dessus. Il est de 56,58 % pour le HGLL-PPCN supplémenté en hydrogénocitrate disodique, et de 55,49 % pour le HGLL-PPCN seul.
Ces résultats montrent que l'addition d' hydrogénocitrate disodique n'induit aucun effet significatif sur la mobilité des spermatozoïdes.
EXEMPLE 3 : EFFET D'UN DILUEUR CONFORME A L'INVENTION COMPRENANT DU PHOSPHOCASEINATE NATIF, SUR LA FERTILITE JN
VIVO
1) Sperme conservé pendant 24 heures
Quatre expériences utilisant du sperme conservé 24 heures ont été réalisées. Dans chacune de ces 4 expériences deux types de conditions de conservation du sperme ont été comparées :
- dans 1 ' INRA 82 ou le dilueur de Kenney à 4 C, en conditions anaérobies dans des seringues de 20 ml ne contenant que 10 ml de sperme dilué (piston tiré à moitié) . dans le dilueur HGLL + phosphocaseinate natif conforme à l'invention, à 15°C en conditions aérobies dans des seringues de 20 ml contenant 10 ml de sperme dilué et 10 ml d'air (piston tiré complètement) .
La semence d'étalon est diluée à une concentration de 20 x 10 spermatozoïdes par ml. Les races des étalons, leur nombre, le nombre de cycles ont varié selon les expériences. Les conditions expérimentales sont résumées dans le tableau II ci-après.
TABLEAU II
Figure imgf000013_0001
Les ponettes et les juments ont été échogra- phiées chaque jour à partir du premier jour des chaleurs et réparties au hasard dans les 2 lots. Dans l'expérience n°l, les ponettes ont été inséminées une première fois quand le follicule dominant a atteint 33 mm. L'ovulation a été induite 24 heures après par une injection intraveineuse de 25 mg de CE. G (crude equine gonadotrophin ou extrait hypophysaire équin total) et une seconde insémination a été réalisée 48 heures après la première, si l'ovulation n'était pas survenue. Dans les expériences n° 2 à 4, les conditions ont été plus proches des conditions d'élevage : les juments ont été inséminées à partir du jour où le follicule dominant a atteint 33 mm, toutes les 48 heures jusqu'à ovulation. Le tableau III ci-dessous regroupe les résultats de ces 4 expériences, exprimés en pourcentage de femelles chez lesquelles le diagnostic de gestation est positif au 14eme jour après l'ovulation :
TABLEAU III
Figure imgf000014_0001
Dans chaque expérience les doses conservées à 15°C avec le dilueur conforme à l'invention ont permis d'obtenir une fertilité par cycle supérieure à celle obtenue avec les doses conservées à 4 C.
2) Sperme conservé pendant 72 heures
Une expérience utilisant du sperme conservé 72 heures avant l'insémination a également été réalisée. Toutes les doses ont été préparées dans le dilueur HGLL + phosphocaseinate natif conforme à l'invention, et ont été utilisées soit pour insémination immédiate, soit après conservation à 15 C avec agitation constante. Les ponettes ont été échographiées chaque jour à partir du premier jour des chaleurs et réparties au hasard dans les 2 lots. Cent deux cycles de ponettes ont été utilisés au total. Dans la première partie de l'expérience, toutes les ponettes ont été inséminées une seule fois, environ 7 heures avant l'ovulation induite par une injection intraveineuse de 25 mg de CE. G. Dans la seconde partie, les ponettes du lot "inséminations différées" ont été inséminées 2 fois : la première fois environ 12 heures avant l'ovulation induite et la seconde fois environ 4 heures après l'ovulation.
Les résultats (en pourcentage de femelles chez lesquelles le diagnostic de gestation est positif au 14eme jour après l'ovulation) sont illustrés par le tableau IV ci dessous :
TABLEAU IV
Figure imgf000015_0001
Les résultats obtenus pour les 2 parties de l'expérience sont identiques, et ne dépendent pas du le nombre d'inséminations, ou de la présence d'une seconde insémination post-ovulation très proche du moment de l'ovulation. Les pourcentages de fertilité par cycle sont de 48% obtenus après inséminations différées de 72 heures, et de 68% obtenus après inséminations immédiates.
Ces résultats montrent que la fertilité obtenue après 72 heures de conservation du sperme à 15°C dans le dilueur HGLL + phosphocaseinate natif est d'une qualité qui permet son utilisation dans les élevages. EXEMPLE 4 : EFFET D'UN DILUEUR CONFORME A L'INVENTION COMPRENANT DU PHOSPHOCASEINATE NATIF, SUR LA MOBILITE TN VIVO DE SPERME CAPRIN.
Dans l'espèce caprine, la conservation du sperme s'effectue classiquement à 4°C, après élimination du plasma séminal et dilution dans du lait (lait en poudre reconstitué et chauffé à 92 °C pendant 10 minutes) . La semence diluée est ensuite conditionnée en aliquotes de 2 ml placées dans des tubes de 5 ml .
En utilisant ce même protocole, les Inventeurs ont comparé la mobilité des spermatozoïdes, après conservation à 4 ou à 15 °C : - soit dans un dilueur conforme à l'invention, obtenu par l'addition de phosphocaseinate natif (27 g/l) à un milieu de base dénommé KGB, qui est constitué par du milieu BES-KOH [DUNNER, Anim. Prod . , 56, 387-391, (1993) ; DUNNER et IMPASTO, Small Ruminant Research, 11, 57-64, (1993)] supplémenté avec 2mg/ml de glucose,
- soit dans du lait.
Deux types de conditionnement ont également été testés : le conditionnement aérobie classique (2 ml de semence diluée, dans des tubes de 5 ml) mentionné ci -dessus, ou bien un conditionnement anaérobie sous forme de « paillettes » de 0,5 ml totalement remplies de semence diluée.
Les résultats de mobilité obtenus à partir de 10 pools d'éjaculats sont représentés sur dans les tableaux V et VI ci -dessous. Le tableau V représente le pourcentage de spermatozoïdes rapides (analyse automatisée) , et le tableau VI représente les résultats d'une évaluation de la mobilité par observation au microscope et appréciation du pourcentage de spermatozoïdes mobiles et de la qualité du mouvement, selon les critères définis par [BISHOP et al., J. Agriculture Science, 44, 227, (1954)] ; les résultats sont notés sur une échelle de 0 à 5.
TABLEAU V
Figure imgf000016_0001
Ces résultats montrent que l'utilisation d'un dilueur conforme à l'invention améliore très significativement la survie à 4°C des spermatozoïdes caprins.

Claims

REVENDICATIONS
1) Dilueur de sperme, constitué par- un milieu de base formé de constituants convenant pour la dilution du sperme, d'une espèce animale déterminée, et par une fraction purifiée de phosphocaseinate natif, et/ou une fraction purifiée de β-lactoglobuline.
2) Dilueur de sperme selon la revendication 1 caractérisé en ce qu'il comprend entre 1 et 100 g/l de phosphocaseinate natif et/ou entre 10 et 200 g/l de β- lactoglobuline .
3) Dilueur de sperme selon la revendication 2 caractérisé en ce qu'il comprend entre 10 et 50 g/l de phosphocaseinate natif et/ou entre 20 et 100 g/l de β- lactoglobuline . 4) Procédé de préparation d'un dilueur de sperme selon une quelconque des revendications 1 à 3, comprenant du phosphocaseinate natif, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une étape au cours de laquelle on prépare une solution de phosphocaseinate natif, en procé- dant à la dissolution dudit phosphocaseinate natif dans un milieu aqueux, à une température comprise entre 30 et 80°C, de préférence entre 40 et 60°C.
5) Procédé selon la revendication 4 caractérisé en ce que ladite solution de phosphocaseinate natif est stérilisée par traitement UHT.
6) Préparation de sperme en vue de l'insémination artificielle, caractérisée en ce que ledit sperme est dilué dans un dilueur selon une quelconque des revendications 1 à 3. 7) Utilisation d'une fraction purifiée de phosphocaseinate natif, et/ou d'une fraction purifiée de β-lactoglobuline, pour l'obtention d'un dilueur de sperme .
8) Utilisation d'un dilueur de sperme selon une quelconque des revendications 1 à 3, pour la conser- vation de sperme de mammifère en vue de l'insémination artificielle.
9) Utilisation selon la revendication 8, caractéri-sée en ce que ledit mammifère appartient à l'espèce équine .
10) Utilisation selon la revendication 8, caractérisé en ce que ledit mammifère appartient à 1 ' espèce caprine .
11) Utilisation selon une quelconque des revendications 8 ou 9 , caractérisée en ce que ladite conservation est effectuée à une température de 15 °C en conditions aérobies.
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2925917A1 (fr) * 2007-12-27 2009-07-03 Agronomique Inst Nat Rech Methode de conservation du sperme et ses applications.
WO2019073071A1 (fr) 2017-10-13 2019-04-18 Biodesiv Efnium Polymere antimicrobien pour semences animales

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NL1033198C2 (nl) * 2007-01-09 2008-07-10 Bartel Marinus Van Den Berg Verdunningsmedia voor varkenssperma met eiwitten uit koeienmelkserum.
FR2946885B1 (fr) 2009-06-17 2011-08-26 Phagexel Composition de nacre destinee a corriger des defauts de nidation chez les mammiferes.
CN103704202A (zh) * 2013-12-11 2014-04-09 广西大学 一种矮马精液冷冻保存的方法
CZ305177B6 (cs) * 2014-03-27 2015-05-27 Výzkumný ústav živočišné výroby, v. v. i. Ředidlo pro krátkodobě konzervované inseminační dávky kanců
WO2016135284A1 (fr) * 2015-02-27 2016-09-01 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Dilueur de sperme contenant un inhibiteur de rac
DE102021002257A1 (de) 2021-04-29 2022-11-03 Forschungsverbund Berlin E.V. Mittel zur Konservierung von Säugetiersperma und Verwendung des Mittels

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR1043684A (fr) * 1951-10-10 1953-11-10 Nouveau milieu favorisant la dilution, la conservation et le ponvoir fécondant du sperme destiné à l'insémination artificielle
GB2057247A (en) * 1979-08-27 1981-04-01 Seisan Nipponsha Kk Method of preserving sperm of domestic animals
JPS623785A (ja) * 1985-06-28 1987-01-09 Kiyoshi Kumabe 活性細胞及び生鮮組織の保存方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR1043684A (fr) * 1951-10-10 1953-11-10 Nouveau milieu favorisant la dilution, la conservation et le ponvoir fécondant du sperme destiné à l'insémination artificielle
GB2057247A (en) * 1979-08-27 1981-04-01 Seisan Nipponsha Kk Method of preserving sperm of domestic animals
JPS623785A (ja) * 1985-06-28 1987-01-09 Kiyoshi Kumabe 活性細胞及び生鮮組織の保存方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BATELLIER F ET AL: "Effect of milk fractions on survival of equine spermatozoa.", THERIOGENOLOGY 48 (3). 1997. 391-401, XP002069671 *
DATABASE WPI Section Ch Week 8707, Derwent World Patents Index; Class B04, AN 87-046449, XP002045866 *
JASKO D J ET AL: "EFFECT OF SEMINAL PLASMA DILUTION OR REMOVAL ON SPERMATOZOAL MOTION CHARACTERISTICS OF COOLED STALLION SEMEN.", THERIOGENOLOGY 35 (6). 1991. 1059-1068, XP002069670 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2925917A1 (fr) * 2007-12-27 2009-07-03 Agronomique Inst Nat Rech Methode de conservation du sperme et ses applications.
WO2009103908A1 (fr) * 2007-12-27 2009-08-27 Institut National De La Recherche Agronomique Methode de conservation du sperme et ses applications.
WO2019073071A1 (fr) 2017-10-13 2019-04-18 Biodesiv Efnium Polymere antimicrobien pour semences animales
FR3072246A1 (fr) * 2017-10-13 2019-04-19 Biodesiv Efnium Polymere antimicrobien pour semences animales
FR3072247A1 (fr) 2017-10-13 2019-04-19 Biodesiv Efnium Polymere antimicrobien pour semences animales

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