WO2001034218A1 - Transplant material and process for producing the same - Google Patents

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Hajime Ohgushi
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    • A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
    • A61L2430/02—Materials or treatment for tissue regeneration for reconstruction of bones; weight-bearing implants

Definitions

  • the present invention relates to transplantation materials such as artificial joints, artificial bones, artificial dental roots, and the like, which are used by being implanted in vivo as a substitute for bone tissue in surgical treatment of humans, pets, livestock, and the like.
  • the present invention relates to the manufacturing method. Conventional technology
  • an artificial joint composed of a stem portion, a head portion, and an acetabular portion
  • the stem portion and the head portion of the artificial joint are made of a biologically inert material such as a titanium alloy or alumina ceramics, which is a material that can maintain high strength and does not corrode easily.
  • the acetabular part is made of high-density polyethylene which is a bio-acceptable material having appropriate elasticity.
  • the PMMA bone cement generates an extremely high heat of polymerization when a methyl meta-acrylate polymer is polymerized and hardened. Then, there is a problem that bone heat in contact with the bone cement is greatly damaged by the heat of polymerization.
  • the artificial joint and the bone tissue are combined. Allow the patient to remain at rest until fully secured Treatments that use the patient's own natural healing power have been used.
  • mesenchymal stem cells present in the bone marrow of the patient migrate to the gap between the artificial joint and the bone tissue and implant, and further proliferate and differentiate into osteoblasts having high bone repair activity. I do. Then, the osteoblasts produce a bone matrix, and the produced bone matrix is coated on the surface of the artificial joint and the bone tissue, thereby filling the gap and fixing the artificial joint.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 3-452677 discloses a bone-deficient portion and a bone void composed of a body fluid collected from an animal containing osteoblasts and osteoblasts, or a calcium phosphate compound.
  • Part fillers are disclosed.
  • the bone defect filling material and the bone void filling material are obtained by adsorbing a bodily fluid collected from the animal to be treated to a porous or granular calcium phosphate compound, and artificially culturing as necessary. It is prepared accordingly.
  • the prepared bone defect and bone void filling material is filled into the bone tissue defect or void of the animal.
  • the filler is excellent in biocompatibility, does not cause a foreign body reaction, an inflammatory reaction, and the like, and has very little leakage of the filler from the filled portion, so that rapid formation of new bone can be expected.
  • the PMMA bone cement for bonding the artificial joint and the bone tissue generates heat during polymerization and elutes the residual monomer, thereby causing the living tissue including the surrounding bone tissue to be released.
  • the interface between the stem or acetabular portion and the surrounding bone tissue is destroyed, and furthermore, the artificial joint is damaged.
  • the likelihood of failure due to loose or dropped joints was significantly higher.
  • the conventional treatment method utilizing the natural healing power it takes a very long time until the mesenchymal stem cells move to the surface of the artificial joint and the bone tissue to produce a bone matrix.
  • the rate of bone repair by osteoblasts and progenitor osteoblasts is extremely slow due to the small number of mesenchymal stem cells present in the body, and it takes a very long time to completely heal. I was
  • a first aspect of the present invention provides a non-bioactive artificial material to be implanted in a living body as a substitute for bone tissue, which is selected from osteoblasts and progenitor osteoblasts.
  • the transplant material has at least one type of cells attached thereto and is coated with a bone matrix produced by the cells.
  • the artificial material is titanium, a titanium alloy, stainless steel, a cobalt chrome alloy, a cobalt-chromium-molybdenum alloy, an alumina ceramic tus, a carbon ceramic, a zirconium ceramic, a silicon carbide ceramic. Box, silicon nitride ceramics, glass ceramics, polyethylene, polystyrene, polytetrafluoroethylene, polyurethane, polyvinyl alcohol, polypropylene, polycarbonate, polymethyl methacrylate, methacrylate polymer, silicone resin and bioabsorption It is an implant composed of at least one material selected from conductive polymers.
  • Yet another embodiment of the present invention is a transplant material in which the surface of the artificial material is coated with a bioactive substrate.
  • the bioactive substrate is selected from the group consisting of hydroxyapatite, tricalcium phosphate, calcium-deficient apatite, amorphous calcium phosphate, tetracalcium phosphate, octacalcium phosphate, and fluoroapatite.
  • the artificial material may be composed of at least one metal material selected from titanium, a titanium alloy, stainless steel, a cobalt-chromium alloy, and a cobalt-chromium-molybdenum alloy.
  • the artificial material may be composed of at least one ceramic material selected from alumina ceramics, carbon ceramics, zirconia ceramics, silicon carbide ceramics, silicon nitride ceramics, and glass ceramics.
  • the artificial materials include polyethylene, polystyrene, polytetrafluoroethylene, polyurethane, polyvinylinole alcohol, polypropylene, polycarbonate, polymethyl methacrylate, methacrylate polymer, silicone resin and bioabsorbable material. It may be composed of at least one kind of synthetic resin material selected from the conductive polymers.
  • the bone matrix may contain a growth factor secreted by at least one cell selected from bone marrow cells, mesenchymal stem cells, osteoblasts and progenitor osteoblasts. Further, the surface of the artificial material may be formed in a porous shape. Further, at least a part of the bone matrix may be calcified.
  • the osteoblast or progenitor osteoblast may be one obtained by culturing and differentiation of the mesenchymal stem cell derived from the living body.
  • Yet another embodiment of the present invention is a method for producing the implant material.
  • the method comprises the steps of culturing mesenchymal stem cells collected from a living body to differentiate into at least one cell selected from osteoblasts and progenitor osteoblasts, and combining the differentiated cells with a non-bioactive artificial material. Culturing, whereby the differentiated cells are attached to the surface of the artificial material, and the bone matrices produced by the differentiated cells are coated on the surface of the artificial material.
  • the method may further include the step of subculturing the differentiated cells to increase the number of cells.
  • Still another production method of the present invention comprises a step of culturing mesenchymal stem cells collected from a living body together with a non-bioactive artificial material, and attaching the mesenchymal stem cells to the surface of the artificial material and attaching the mesenchymal stem cells to the surface. Differentiating the obtained mesenchymal stem cells into at least one cell selected from osteoblasts and progenitor osteoblasts, whereby the bone matrix produced by the differentiated cells is placed on the surface of the artificial material. Coated. BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing an artificial joint comprising a stem and an artificial head, which is one of the artificial materials used for the implant material of the present invention.
  • Bone tissue is composed of a bone matrix and osteoblasts differentiated from osteoblasts and progenitor osteoblasts, and the bone cells have settled in bone ostium scattered in the bone matrix.
  • the bone matrix is composed of a relatively small amount of mucopolysaccharide protein (proteodalican) mainly composed of chondroitin sulfate, and a large amount of calcium phosphate, magnesium phosphate, calcium carbonate, etc., and a bone morphogenetic factor (BMP) And various growth factors.
  • proteodalican mucopolysaccharide protein
  • BMP bone morphogenetic factor
  • bone matrix usually contains significant amounts of collagen fibers, which provide some elasticity.
  • the action of osteoblasts and the like causes the formation of inorganic components such as apatite (calcification of the bone matrix), and imparts hardness to the bone.
  • osteoblasts During bone tissue formation and remodeling, osteoblasts, progenitor osteoblasts, and osteoclasts, which are present at the periphery of bone matrix, function.
  • the osteoblasts and precursor osteoblasts are generated by the differentiation of mesenchymal stem cells (Mesenchymal Stem Cells).
  • the mesenchymal stem cells are present in the bone marrow and have a very strong differentiation ability.
  • Dexamethasone one of the steroid hormones, can differentiate the mesenchymal stem cells into osteoblasts and progenitor osteoblasts in vitro. And are involved in.
  • the implant material of the present invention allows at least one cell selected from osteoblasts and progenitor osteoblasts to adhere to the surface of a non-bioactive artificial material to be implanted in vivo as a substitute for bone tissue. At the same time, it is coated with the bone matrix produced by the cells.
  • the transplant material is implanted in a living body as a substitute for the tissue and used.
  • implantation means that an artificially manufactured product is surgically implanted and implanted in a living body.
  • the artificial material can be used in various shapes as a substitute for bone tissue.
  • artificial joints such as hip joints, knee joints, finger joints, shoulder joints, elbow joints, ankle joints, metal artificial bones, synthetic resin artificial bones, ceramic artificial bones, and for connecting bone tissues to each other Bolts (screw), prosthetic materials, dental implant materials, osteosynthesis supplies, and the like.
  • the artificial material is made of a non-bioactive material that is not degraded, decomposed, or degraded in a living body and adversely affects the living body.
  • Non-bioactive materials include materials other than bioactive materials that can be directly bonded to bone tissue without the presence of a coating (foreign film) when implanted in vivo as a substitute for bone tissue. And bio-acceptable and bio-inert materials.
  • the bio-acceptable material is a material that, when implanted in a living body, forms a thick connective tissue film (foreign matter film) between the tissue and the bone tissue to be isolated from the living tissue.
  • tissue film foreign matter film
  • high-density polyethylene, stainless steel and the like can be mentioned.
  • a biologically inert material is a material that, when implanted in a living body, has a thin coating (foreign matter film) interposed between it and bone tissue and can directly contact some bone tissue under favorable conditions. It is.
  • alumina ceramics, carbon ceramics, zirconium ceramics, titanium alloys and the like can be mentioned.
  • the artificial material allows mesenchymal stem cells, osteoblasts, and progenitor osteoblasts to adhere and grow, and the artificial matrix produces a bone matrix produced by the cells.
  • It is preferably composed of a material that can be coated on.
  • Such materials include, for example, titanium, titanium alloys, stainless copper, copanoletochromium alloy, cobalt-chromium-molybdenum alloy, alumina ceramics, carbon ceramics, zirconium ceramics, silicon carbide ceramics, Silicon nitride ceramics, glass ceramics, polyethylene, polystyrene, polytetrafluoroethylene ethylene, polyurethane, polyvinyl alcohol, polypropylene, polycarbonate, polymethyl methacrylate, methacrylate polymer, silicone resin, and bioabsorbable polymer At least one material selected from the group consisting of:
  • metal materials such as titanium, titanium alloy, stainless steel, cobalt-chromium alloy, and cono-noretochrome-molybdenum alloy, or alumina ceramics and carbon ceramics Ceramic materials such as zirconia ceramics, silicon carbide ceramics, silicon nitride ceramics, and glass ceramics can be suitably used.
  • polyethylene when used as a substitute for bone tissue requiring flexibility, polyethylene, polystyrene, polytetrafluoroethylene, polyurethane, polyvinylinoleacol, polypropylene, polycarbonate, polymethyl methacrylate, and methacryloyl ester
  • An elastically deformable synthetic resin material such as a polymer, a silicone resin, and a bioabsorbable polymer can be suitably used.
  • the surface of the artificial material is preferably porous. This is because mesenchymal stem cells, osteoblasts, and progenitor osteoblasts can easily enter the pores, and can settle in a more stable state.
  • the surface of the non-bioactive artificial material is coated with a bioactive substrate.
  • a bioactive substrate include, for example, hydroxyapatite, tricalcium phosphate, calcium-deficient apatite, amorphous calcium phosphate, tetracalcium phosphate, octacalcium phosphate, fluoroapatite, carbonate Apata Calcium phosphate, calcium pyrophosphate, monetite, wurtzite, etc., calcium carbonate, compounds capable of adsorbing calcium phosphate in vivo, crystallized glass containing apatite, crystallized glass containing calcium metaphosphate, A compound capable of forming an apatite layer on the surface of a material in a living body typified by bioactive glass such as bioglass, and titanium and a titanium alloy capable of forming an apatite layer on the surface of a material in a living body typified by bioactive glass such as bioglass, and titanium and a
  • the osteoblasts or progenitor osteoblasts contain a differentiation-inducing factor (dexamethasone), a mesenchymal stem cell isolated and cultured from bone marrow cells collected from a living body to be implanted with a transplant material. It is preferably one that has been differentiated by culturing in a culture solution. As a result, it is possible to reliably prevent problems such as rejection caused by autoimmunity after transplantation.
  • the bone matrix is preferably thickly coated on the surface of the artificial material in order to further improve the biocompatibility after implantation. More preferably, part of the coated bone matrix is calcified. Further, the bone matrix may contain growth factors such as bone morphogenetic factors secreted by at least one cell selected from bone marrow cells, mesenchymal stem cells, osteoblasts and progenitor osteoblasts. preferable.
  • the growth factor can promote the physiological implantation, proliferation and differentiation of the transplanted mesenchymal stem cells in the living body, so that the bone tissue repair speed and the biocompatibility can be further improved. .
  • an artificial material having a predetermined shape is prepared as a substitute for the bone tissue. Further, if necessary, the surface of the artificial material is coated with a bioactive substrate such as hydroxyavatite using a plasma spraying method, a simulated body fluid immersion method, an alternating immersion method, or the like. Subsequently, the material is sterilized. Next, bone marrow cells are aseptically collected from the living body to be transplanted using an injector or the like. At this time, mesenchymal stem cells are separated from the bone marrow cells by a known method. Let's multiply by.
  • the bone marrow cells or mesenchymal stem cells are attached to the artificial material,
  • a culture solution containing sodium glycerate phosphate, ascorbic acid, etc. to differentiate into osteoblasts and progenitor osteoblasts, and to convert the bone matrix produced by these cells into an artificial material.
  • the bone marrow cells or mesenchymal stem cells are differentiated into osteoblasts and progenitor osteoblasts in the culture solution in advance, and then cultured with a sterilized artificial material, so that those cells can be expressed in the artificial material.
  • the bone matrix produced by those cells may be coated on the surface of the artificial material.
  • the bone marrow cells or mesenchymal stem cells are differentiated while being cultured together with the artificial material, first, a cell suspension containing the bone marrow cells or mesenchymal stem cells is prepared, and the artificial material is immersed in the suspension. Then, the cells adhere to the surface of the artificial material immersed in the culture solution. Thereafter, when cultured in this culture solution, the cells proliferate on the surface of the artificial material and differentiate into osteoblasts and progenitor osteoblasts.
  • the differentiated osteoblasts and progenitor osteoblasts produce extracellular bone matrix, and the bone matrix is directly coated on the surface of the artificial material without intervening a foreign body membrane or the like.
  • bone marrow cells or mesenchymal stem cells are differentiated into osteoblasts and progenitor osteoblasts in advance and then cultured with artificial materials
  • the bone marrow cells or mesenchymal stem cells are placed in a culture dish filled with the culture solution. Incubate with Since the cells have a very high proliferation ability, they grow rapidly while adhering to the bottom of the culture dish. Thereafter, when the cells are cultured in the culture medium, they differentiate into a large number of osteoblasts and osteoblasts. At this time, the number of cells may be further increased by subculture if necessary.
  • Osteoblasts and progenitors When the number of osteoblasts has sufficiently increased, the cells are detached from the bottom of the culture dish using a trypsin solution or the like, and then suspended in the culture solution to prepare a cell suspension. You. Subsequently, the artificial material is immersed in a cell suspension and cultured in an incubator. At this time, some of the osteoblasts and precursor osteoblasts adhere to the surface of the artificial material immersed in the culture solution and grow on the surface. And the cells are bone matrix Is produced, and the produced bone matrix is directly coated on the surface of the artificial material without intervening a foreign body film or the like.
  • the surface of the graft material is coated with the cells of the living body itself and the bone matrix. It has a very high biocompatibility with bone tissue and other tissues and cells.
  • the bone matrix is coated on the entire surface of the implant material, the living body does not recognize the implant material as a foreign substance, and biological reactions such as generation of an inflammatory reaction and formation of a film (foreign substance film) are prevented. Be avoided.
  • osteoblasts and progenitor osteoblasts previously attached to the surface of the transplant material have already had a very high bone repair activity at the time of transplantation, and immediately after the transplant, the osteoblasts and progenitor osteoblasts have a large area around the transplant material. Initiate osteogenesis while coating the bone matrix. Then, over time, these cells densely fill gaps between the implant material and the surrounding bone tissue to repair the bone, and more reliably fix the implant material.
  • the bone matrix on the surface of the transplant material promotes the physiological implantation and growth of naturally occurring mesenchymal stem cells, osteoblasts and progenitor osteoblasts in the living body.
  • Cells are physiologically implanted on the surface of the implant. Then, these cells start bone repair while producing a new bone matrix on the bone matrix of the transplant material, and fix the transplant material more reliably.
  • the bone tissue repaired so as to surround the artificial material is constantly renewed properly by the physiological metabolism of the living body by the action of osteoclasts, precursor osteoblasts and osteoblasts. Will be maintained continuously. Under such conditions, the implant material hardly looses or falls off even after prolonged use.
  • the implant material of the present embodiment comprises, as a substitute for bone tissue, at least one cell selected from osteoblasts and progenitor osteoblasts on the surface of a non-bioactive artificial material to be implanted in a living body. Attach and attach the bone matrix produced by the attached cells. It was made to be For this reason, by selecting the non-bioactive material constituting the artificial material, it is possible to easily and surely impart desired mechanical properties (mechanical strength ⁇ ⁇ wear resistance) to the transplant material. . That is, the graft material can be selected according to a wide range of use purposes, such as replacement of bone tissue having high mechanical strength and bone tissue capable of deformability.
  • the bone matrix produced by osteoblasts and progenitor osteoblasts is coated on the surface of the implant, no coating (foreign body film) is formed between the surface of the implant and bone tissue.
  • Biocompatibility can be improved. Therefore, the biocompatibility in the transplanted living body can be maintained in a very high state immediately after the transplantation and for a long period of time. It can also promote the physiological implantation and growth of naturally occurring mesenchymal stem cells, osteoblasts and progenitor osteoblasts in vivo.
  • the PMMA bone cement generates a high heat of polymerization when hardened, so that the bone tissue in contact with the bone cement was greatly damaged. As a result, the biocompatibility between the bone cement and the surrounding bone tissue was greatly reduced, and the burden on the living body was significantly increased.
  • the transplant material of the present embodiment since the transplant material having a very high bone repair activity is used, the natural healing power can be used without using bone cement, and Immobilization can be performed quickly. Therefore, the problem of the heat of polymerization can be easily and reliably solved. Further, the problem of harmful effects due to residual monomers when polymerizing PMMA bone cement can be surely solved.
  • the bone matrix of the transplant material contains growth factors secreted by at least one cell selected from bone marrow cells, mesenchymal stem cells, osteoblasts and progenitor osteoblasts. And other biological factors.
  • physiological implantation and proliferation of the transplanted mesenchymal stem cells in the living body, and differentiation into osteoblasts and precursor osteoblasts can be promoted.
  • the biological factors contained in the bone matrix and the matrix will allow physiological implantation of mesenchymal stem cells in the living body. Etc. can be promoted. Therefore, the bone tissue repair speed and biocompatibility can be further improved.
  • Artificial materials include titanium, titanium alloys, stainless steel, cobalt-chromium alloys, cobalt chromium-molybdenum alloys, anoremina ceramics, carbon ceramics, zirconium ceramics, silicon carbide ceramics, silicon nitride ceramics, and glass ceramics.
  • the most suitable material for treatment can be appropriately selected and used from various kinds of materials, so that an implant material having desired mechanical properties can be obtained.
  • artificial materials composed of metal and ceramic materials have extremely high mechanical strength, and are suitable for replacing bone tissue that requires high strength.
  • the surface of an artificial material made of a ceramic material can be easily formed into a porous shape, and the material can be reduced in weight.
  • an artificial material composed of an elastically deformable synthetic resin material is suitable as a substitute for a skeleton requiring flexibility.
  • Non-bioactive artificial materials can further promote the attachment, growth and bone repair of mesenchymal stem cells, osteoblasts and progenitor osteoblasts by coating the surface with a bioactive substrate. .
  • osteoblasts and progenitor osteoblasts to be attached to the transplant material, which are obtained by culturing and differentiating mesenchymal stem cells from the living organism to be transplanted, autoimmunity of the transplanted living organism can be achieved. Rejection reactions can be reliably prevented.
  • mesenchymal stem cells collected from an aged organism can be cultured and grown in an in vivo mouth.
  • mesenchymal stem cells collected from an aged organism can be cultured and grown in an in vivo mouth.
  • it is possible to proliferate and differentiate almost in the same manner as mesenchymal stem cells derived from young organisms, and to exert substantially the same bone repair activity. Therefore, it can exert a very high therapeutic effect even on elderly organisms.
  • the surface of the artificial material By making the surface of the artificial material porous, mesenchymal stem cells, osteoblasts and progenitor osteoblasts can easily penetrate into the artificial material, and settle these cells in a stable state .
  • the increased surface area of the artificial material allows more cells to colonize it and, after bone repair, makes contact with surrounding bone tissue in a large area and intricately complex shape The ability to reduce the likelihood of loosening or falling off of the implant material is possible.
  • the graft material By calcifying the bone matrix, the graft material can be very firmly bound to the bone tissue around the graft site. As a result, the biocompatibility can be further improved, and the period for complete recovery can be significantly reduced.
  • a step of culturing mesenchymal stem cells collected from a living body to differentiate into at least one cell selected from osteoblasts and progenitor osteoblasts, Culturing with a non-bioactive artificial material As a result, the differentiated cells are attached to the surface of the artificial material, and the bone matrix produced by the differentiated cells is coated on the surface of the artificial material.
  • Bone marrow cells were collected from the femoral shaft of a 7-week-old male Fischer rat, and ⁇ -MEM (minimum essential culture solution) containing 15% fetal calf serum (FBS) was added to the cells, followed by incubator. (3 7, 5% C0 2 ) 7 ⁇ initial and incubated 1 2 days in.
  • ⁇ -MEM minimum essential culture solution
  • FBS fetal calf serum
  • a transplant test was performed in which four types of artificial materials (titanium alloy, stainless steel, alumina ceramics, and high-density high-molecular-weight polyethylene) were directly implanted under the back of the rat.
  • four types of artificial materials titanium alloy, stainless steel, alumina ceramics, and high-density high-molecular-weight polyethylene
  • fibrous tissue foreign film
  • Bone marrow cells were collected from adult dogs, and the cells were initially cultured in the same manner as in Example 1 for 7 to 12 days, and then a cell suspension was prepared.
  • the stem portion of the human E hip composed of a titanium alloy was immersed in this suspension, the incubator was immersed (3 7.C, 5% C 0 2) within about 2 hours. Thereafter, it was transferred to the stem portion to the culture vessel plus the same medium as in Example 1, were cultured for about 1 week in an incubator (3 7 ° C, 5% C 0 2) within. The medium was changed as needed.
  • progenitor osteoblasts and osteoblasts differentiated from bone marrow-derived mesenchymal stem cells are attached, and the bone matrix produced by these cells is coated. It was confirmed that. Further, when the stem portion of the hip prosthesis was implanted in the cavity of the femur of the adult dog, a connection between the stem portion and the femur was observed. Furthermore, in this hip prosthesis, new bone tissue was confirmed on the surface of the stem early in the transplantation, and the fixation of the stem was completed early.
  • Example 3 2 ml of bone marrow cells were collected from the humerus of a beagle dog weighing 12 kg. The bone marrow cells were transferred to a tube containing 2 ml of FBS supplemented with heparin, and centrifuged (900 rpm, 10 minutes, 24 ° C). After removing the fat cells and the supernatant from the centrifuged tube, the cells were transferred to a T-175 flask and subjected to primary culture in a medium containing 15% FBS and an antibiotic for 10 days. The medium was changed three times a week.
  • a stem 1 made of a titanium alloy hereinafter referred to as “cho i”) shown in FIG.
  • a recessed surface 3 (0.5 mm deep, area 1.3 cm 2 ) was provided on both sides of stem 1 and sprayed with pure Ti. The average surface roughness of the sprayed surface was 32 / m. After the primary culture, the cells were detached with 0.25% trypsin, and then a cell suspension was prepared.
  • (Dexamethasone) -added medium was added to 48 ml, and subculture was performed for 11 days.
  • the stem subjected to the subculture in this manner was stained with al force phosphatase, the Ti-sprayed surface on the side where the cells were seeded was stained red.
  • the Ti-sprayed surface on the back side of the stem not seeded with cells was not stained. This means that osteoblast-differentiated cells are present all over the cell-seeded surface.
  • the head of the beagle dog was cut off from the line from the greater trochanter to the lesser trochanter of the right femur, the head was removed, the medullary cavity was enlarged, and rubbing was performed using a trial.
  • the surface of the stem with cells mounted on one side prepared as described above was thoroughly washed with PBS (-) and physiological saline, and inserted into the femoral marrow cavity, and then an artificial head was attached.
  • the present embodiment can be embodied with the following changes.
  • Artificial materials can also be constructed by combining metal or ceramic materials with synthetic resin materials.
  • the stem portion and the head portion may be made of a metal material or a ceramic material
  • the acetabular portion may be made of a synthetic resin material.
  • the implant material becomes more suitable for the mechanical properties required for each part, so that the discomfort to the living body can be further reduced.
  • the implant material does not have to be coated with a bioactive substrate on the surface of an artificial material made of a non-bioactive material. Even with such a configuration, the mesenchymal stem cells, osteoblasts and progenitor osteoblasts can be attached to the surface of the artificial material, and the bone matrix produced by the osteoblasts and progenitor osteoblasts can be obtained. Can be coated.
  • the surface of the artificial material may be formed flat instead of being formed in a porous shape. In the artificial material having such a configuration, the artificial material can be easily formed.
  • An artificial material composed of a non-bioactive material to which mesenchymal stem cells, osteoblasts, and progenitor osteoblasts cannot adhere and proliferate, and the surface of the artificial material is coated with a bioactive substrate. It may be used to construct an implant. Even with such a configuration, at least one cell selected from osteoblasts and progenitor osteoblasts can be attached to the surface of the transplant material, and the bone matrix can be coated.
  • MHC major histocompatibility complex
  • HLA human leukocyte antigen
  • cells that do not match the MHC or HLA (antigenicity) may be used, and an immunosuppressant may be administered.
  • an immunosuppressant may be administered.
  • autoimmune rejection is reliably suppressed when the transplant material is transplanted. can do.
  • transplantation of a transplant material having cells derived from the bone marrow cells into the living body allows the proliferation and growth of cancer. It may promote metastasis.
  • bone marrow cells from healthy organisms that are not at risk for cancer can eliminate that possibility.
  • cord blood it is very advantageous to use mesenchymal stem cells contained therein.
  • a portion of the bone marrow cells or mesenchymal stem cells is cultured in a culture solution together with the artificial material, and the rest is cultured on a culture dish, and when the number of cells increases, the cells on the culture dish are exposed to the surface of the artificial material. And may be cultured. Further, the "parts" of the cells increased by the subculture are adhered to the surface of the artificial material and cultured, and the remaining cells are further subcultured.
  • the number of osteoblasts and progenitor osteoblasts can be efficiently increased in a short period of time, and the time required for the production of a transplant material is greatly reduced.
  • it is also possible to attach more cells to the surface of the transplant material to produce a transplant material using an artificial material molded into a shape corresponding to a bone defect or a bone void, and to transfer the transplant.
  • the material may be implanted in a bone defect or a bone void for treatment, and in this case, desired mechanical properties can be imparted, and bone tissue repair speed and biocompatibility can be achieved. Can improve .
  • bone morphogenetic protein As a differentiation inducing factor for differentiating the mesenchymal stem cells into osteoblasts and progenitor osteoblasts, bone morphogenetic protein, fibroblast growth factor, dalcocorticoid or prostaglandin may be used.
  • the surface of the transplant material may be adhered, adsorbed, or impregnated with at least one growth factor selected from dexamethasone, bone morphogenetic protein, fibroblast growth factor, dalcocorticoid and prostaglandin. With this configuration, the bone repair activity of the implant material can be further enhanced.

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Description

明細書 移植材料及びその製造方法 技術分野
本発明は、 例えば、 ヒ ト、 ペッ ト、 家畜等の外科的治療において、 骨組織の代 替として生体内に埋植されて使用される人工関節、 人工骨、 人工歯根等の移植材 料及びその製造方法に関するものである。 従来の技術
この種の移植材料としては、 例えば、 ステム部分、 骨頭部分及び臼蓋部分とか ら構成される人工関節が従来より知られている。 前記人工関節のステム部分及び 骨頭部分は、 高い強度を保持できるとともに容易に腐食しない材料である、 チタ ン合金又はアルミナセラミックス等の生体不活性な材料から構成されている。 一 方、 前記臼蓋部分は、 適当な弾力性を有する生体許容性材料である高密度ポリエ チレンによって構成されている。 そして、 前記人工関節を、 損傷を受けた股関節 の代替として移植する場合、 大腿骨の上部に穿設された中空部に、 ポリメチルメ タァクリ レート (P MM A)骨セメントを介してステム部分を埋植するとともに、 骨盤下部の寛骨に該骨セメントを介して臼蓋部分を埋植する。 埋植された人工関 節は、 股関節の機能を充分に発揮することができるうえ、 腐食を防止しつつ、 髙 い強度を保持することができる。
一方、 前記 P MMA骨セメントは、 メチルメタアタリ レート単量体を重合させ て硬化させる際に、 非常に高い重合熱を発生することが知られている。 そして、 この重合熱によって骨セメントと接する骨組織に多大な損傷を与えるという問題 が存在する。 この問題を解決するために、 前記人工関節のステム部分及び臼蓋部 分を、骨セメントを用いずに直接骨組織と接するように埋植する手術を行った後、 人工関節と骨組織とが充分に固定されるまで患者に安静状態を保持させて、 その 患者自身の自然治癒力を利用して治療する治療法が行われてレ、た。
前記治療法を行った場合、 患者の骨髄に存在する間葉系幹細胞が人工関節と骨 組織との隙間まで移動して着床し、 さらに骨修復活性の高い骨芽細胞へと増殖及 び分化する。 そして、 前記骨芽細胞が骨マ トリ ックスを産生し、 産生された骨マ トリッタスが前記人工関節及び骨組織の表面にコーティングされることにより前 記隙間が埋められ、 人工関節が固定される。
また、 特開平 3— 4 5 2 6 7号公報には、 骨芽細胞及びノ又は前駆骨芽細胞を 含む動物から採取された体液と、 リン酸カルシウム化合物とから構成された骨欠 損部及び骨空隙部充てん剤が開示されている。 該骨欠損部及び骨空隙部充てん剤 は、 多孔体状又は顆粒状に成形されたリン酸カルシウム化合物に、 治療対象であ る動物自身から採取した体液を吸着させ、 必要に応じて人工的に培養することに よって調製される。 調製された骨欠損部及び骨空隙部充てん剤を、 前記動物の骨 組織の欠損部又は空隙部に充てんする。 該充てん剤は、 生体適合性に優れ、 異物 反応、 炎症反応等も起こらず、 しかも充てん箇所からの充てん剤の漏出も極めて 少ないため、 速やかな新生骨の形成を期待することができる。
ところが、 前記従来の人工関節では、 人工関節と骨組織とを接着するための P MM A骨セメントが、 重合時に発熱したり残留モノマーを溶出させたりすること によって、 周囲の骨組織を含む生体組織を害するおそれがあった。 従って、 該人 ェ関節を機械的 (物理学的) に非常に過酷な条件下で使用する場合、 ステム部分 又は臼蓋部分と、 それを取り囲む骨組織との界面が破壊されたり、 さらには人工 関節がゆるんだり脱落したり して不具合が発生する可能性が著しく高かった。 また、 前記従来の自然治癒力を利用した治療法では、 間葉系幹細胞が人工関節 及び骨組織の表面に移動して骨マトリ ックスを産生するまでには、 非常に長い時 間を要した。 特に、 高齢な生物体では、 体内に存在する問葉系幹細胞の数が少な いために、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞による骨修復速度が著しく遅く、 完治する までに非常に長い時間を要していた。
一方、 前記従来の骨欠損部及び骨空隙部充てん剤では、 その基質として、 リン 酸カルシウムセラミッタスの多孔体や顆粒等が使用されていた。 これらの基質か ら構成されるセラミックスの機械的強度は低く、 また、 典型的な脆性材料である ため、 大きな荷重のかかる部位や弾性変形が要求されるような部位には利用でき なかった。 発明の概要
本発明は、 上記従来技術の問題点を解決するためになされたものであり、 所望 の機械的性質を付与することができるとともに、 骨組織修復速度及び生体親和性 を向上させることができる移植材料及びその製造方法を提供することにある。 上記の目的を達成するために、 本発明の第 1の態様は、 骨組織の代替として生 体内に埋植するための非生体活性な人工材料に、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から 選ばれる少なくとも 1種の細胞を付着させるとともに、 前記細胞が産生する骨マ トリ ックスをコーティングさせた移植材料である。
本発明の別の態様は、 前記人工材料が、 チタン、 チタン合金、 ステンレス鋼、 コバノレ トークロム合金、 コバル ト一クロム一モリブデン合金、 アルミナセラミ ツ タス、 カーボンセラミ ッタス、 ジルコ二アセラミ ックス、 炭化珪素セラミ ックス、 窒化ケィ素セラミ ックス、 ガラスセラミ ックス、 ポリエチレン、 ポリスチレン、 ポリテトラフルォロエチレン、 ポリウレタン、 ポリ ビニルアルコール、 ポリプロ ピレン、 ポリカーボネート、 ポリメタクリル酸メチル、 メタクリル酸エステル系 ポリマー、 シリコーン樹脂及び生体吸収性高分子から選ばれる少なく とも 1種の 材料から構成された移植材料である。
本発明の更に別の態様は、 前記人工材料の表面に生体活性な基質を被覆した移 植材料である。
本発明の更に別の態様は、 前記生体活性な基質が、 ヒ ドロキシァパタイ ト、 リ ン酸三カルシウム、 カルシウム欠損型アパタイ ト、 非晶質リン酸カルシウム、 リ ン酸四カルシウム、 リン酸八カルシウム、 フッ素アパタイ ト、 炭酸アパタイ ト、 ピロ リ ン酸カルシウム、 ブルツシャイ ト、 モネタイ ト、 炭酸カルシウム、 ァパタ ィ ト含有結晶化ガラス、 メタリン酸カルシウム含有結晶化ガラス及びバイオガラ スから選ばれる少なく とも 1種を含む移植材料である。
前記人工材料は、 チタン、 チタン合金、 ステンレス鋼、 コバルト一クロム合金 及びコバルトークロム一モリブデン合金から選ばれる少なく とも 1種の金属材料 によって構成されてもよレ、。
また、 前記人工材料は、 アルミナセラミックス、 力一ボンセラミックス、 ジル コニアセラミックス、 炭化珪素セラミックス、 窒化ケィ素セラミックス及ぴガラ スセラミックスから選ばれる少なく とも 1種のセラミックス材料によって構成さ れてもよい。
また、 前記人工材料は、 ポリエチレン、 ポリスチレン、 ポリテトラフルォロェ チレン、 ポリ ウレタン、 ポリ ビニノレアルコ一ノレ、 ポリプロピレン、 ポリカーボネ ート、 ポリメタクリル酸メチル、 メタクリル酸エステル系ポリマ一、 シリ コーン 樹脂及び生体吸収性高分子から選ばれる少なく とも 1種の合成樹脂材料によって 構成されてもよい。
前記骨マ トリ ックス中に、 骨髄細胞、 間葉系幹細胞、 骨芽細胞及ぴ前駆骨芽細 胞から選ばれる少なく とも 1種の細胞が分泌する成長因子が含有されてもよい。 また、 前記人工材料の表面は、 多孔質状に形成されてもよい。 さらに、 前記骨マ トリ ックスの少なく とも一部は石灰化させてもよい。 前記骨芽細胞又は前駆骨芽 細胞は、 前記生体由来の間葉系幹細胞を培養して分化させたものでもよい。 また、 本発明の更に別の態様は前記移植材料の製造方法である。 該方法では、 生体から採取した間葉系幹細胞を培養して骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から選ばれ る少なくとも 1種の細胞に分化させる工程と、 分化した細胞を非生体活性な人工 材料とともに培養する工程とを含み、 それにより、 前記分化した細胞が人工材料 の表面に付着されるとともに、 前記分化された細胞が産生する骨マトリ ッタスが 人工材料の表面にコーティングされる。
前記方法は、 分化させた細胞を継代培養して細胞数を増やす工程を更に含んで いてもよい。 本発明の更に別の製造方法は、 生体から採取した間葉系幹細胞を非生体活性な 人工材料とともに培養する工程と、 前記間葉系幹細胞を人工材料の表面に付着さ せるとともに、 表面に付着された間葉系幹細胞を骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から 選ばれる少なく とも 1種の細胞に分化させる工程とを含み、 それにより前記分化 された細胞が産生する骨マトリックスが人工材料の表面にコーティングされる。 図面の簡単な説明
図 1は、 本発明の移植材料に使用される人工材料の一つである、 ステムと人工 骨頭からなる人工関節を示す概略図である。 発明を実施するための最良の形態
以下、 本発明の実施形態を詳細に説明する。
骨組織は、 骨マトリックスと骨芽細胞及ぴ前駆骨芽細胞が分化した骨細胞等か ら構成され、 該骨細胞は骨マトリ ックス中に散在する骨小孔内に定着している。 前記骨マトリックスは、 比較的少量のコンドロイチン硫酸を主体とするムコ多糖 タンパク質 (プロテオダリカン) と、 多量のリン酸カルシウム、 リン酸マグネシ ゥム、 炭酸カルシウム等から構成されており、 骨形成因子 (B M P ) 等の種々の 成長因子類を含んでいる。 さらに、 骨マトリ ックスは通常かなりの量の膠原繊維 を含んでおり、 その膠原繊維によってある程度の弾力性が付与される。 同時に、 骨芽細胞等の働きによってァパタイ ト等の無機成分が形成され (骨マトリ ックス の石灰化)、 骨に硬さが付与される。
骨組織の形成時及びリモデリング時では、 骨マトリッタスの周縁に存在する骨 芽細胞、 前駆骨芽細胞及び破骨細胞がそれぞれ機能する。 前記骨芽細胞及び前駆 骨芽細胞は間葉系幹細胞 (Mesenchymal Stem Cells) が分化することによって 生成される。 該間葉系幹細胞は骨髄中に存在しており、 非常に旺盛な分化能を有 している。 また、 ステロイ ドホルモンの 1種であるデキサメサゾンは、 前記間葉 系幹細胞をインビトロ (in vitro) で骨芽細胞及び前駆骨芽細胞へと分化させるこ とに関与している。
本発明の移植材料は、 骨組織の代替として生体内に埋植するための非生体活性 な人工材料の表面に、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から選ばれる少なく とも 1種の 細胞を付着させるとともに、 その細胞が産生する骨マトリックスをコーティング させたものである。 前記移植材料は、 ヒ ト、 ペッ ト、 家畜等の骨組織が損傷され た場合に、 その組織の代替として生体内に埋植され、 使用される。
本明細書において、 埋植とは人為的に製造されたものを生体内に外科的に移植 して埋入することを意味する。
前記人工材料は、 骨組織の代替として種々の形状で利用することができる。 例 えば、 股関節、 膝関節、 指関節、 肩関節、 肘関節、 足関節等の人工関節、 金属製 人工骨、 合成樹脂製人工骨、 セラミ ックス製人工骨、 骨組織同士を連結させるた めのボルト (スクリュー)、 補綴材、 歯科用インプラント材、 骨接合用品等が挙げ られる。
前記人工材料は、 生体内で劣化したり、 分解したり、 或いは分解されて生体に 悪影響を及ぼしたりすることのない非生体活性な材料によつて構成されている。 非生体活性な材料は、 骨組織の代替として生体内に埋植された場合、 被膜 (異物 膜) 等が介在せずに骨組織と直接結合することができる生体活性な材料を除く材 料からなり、 生体許容性材料及び生体不活性材料を含む。
前記生体許容性材料は、 生体内に埋植された場合、 骨組織との間に結合組織性 の厚い被膜 (異物膜) が形成されて生体組織と隔絶される材料である。 例えば、 高密度ポリエチレンやステンレス鋼等が挙げられる。 また、生体不活性材料とは、 生体内に埋植された場合、 骨組織との間に薄い被膜 (異物膜) が介在され、 好条 件下では一部骨組織と直接接することができる材料である。 例えば、 アルミナセ ラミ ックス、 カーボンセラミ ックス、 ジルコ二アセラミ ックス、 チタン合金等が 挙げられる。
さらに、 人工材料は、 間葉系幹細胞、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞が接着して增 殖することができるとともに、 それらの細胞が産生する骨マトリックスを該材料 上にコーティングできる材料から構成されていることが好ましい。 このような材 料としては、 例えば、 チタン、 チタン合金、 ステンレス銅、 コパノレトークロム合 金、 コバルト一クロム一モリブデン合金、 アルミナセラミックス、 カーボンセラ ミ ックス、 ジルコ二アセラミ ックス、 炭化珪素セラミ ックス、 窒化ケィ素セラミ ックス、 ガラスセラミ ックス、 ポリエチレン、 ポリスチレン、 ポリテ トラフノレオ 口エチレン、 ポリウレタン、 ポリビニルアルコール、 ポリプロピレン、 ポリカー ボネート、 ポリメタクリル酸メチル、 メタクリル酸エステル系ポリマー、 シリコ ーン樹脂及び生体吸収性高分子から選ばれる少なく とも 1種の材料が挙げられる。
さらに、 高い強度が要求される骨組織の代替に用いる場合には、 チタン、 チタ ン合金、 ステンレス鋼、 コバルト一クロム合金、 コノ ノレトークロム一モリブデン 合金等の金属材料、 又はアルミナセラミ ックス、 カーボンセラミ ックス、 ジルコ 二アセラミックス、 炭化珪素セラミックス、 窒化ケィ素セラミックス、 ガラスセ ラミックス等のセラミックス材料を好適に使用することができる。
また、 柔軟性が要求される骨組織の代替に用いる場合には、 ポリエチレン、 ポ リスチレン、 ポリテトラフノレォロエチレン、 ポリウレタン、 ポリ ビニノレア コー ル、 ポリプロピレン、 ポリカーボネート、 ポリメタクリル酸メチル、 メタクリノレ 酸エステル系ポリマー、 シリコーン樹脂、 生体吸収性高分子等の弾性変形可能な 合成樹脂材料を好適に使用することができる。
人工材料の表面は多孔質であることが好ましい。 なぜならば、 間葉系幹細胞、 骨芽細胞、 前駆骨芽細胞がその孔内に容易に入り込むことができ、 かつ、 それら の細胞がより安定な状態で定着することができるからである。
また、 前記非生体活性な人工材料の表面は、 生体活性な基質で被覆されている と好ましい。 それにより、 骨芽細胞や前駆骨芽細胞の定着及び骨マ トリ ックスの 産生をより一層促進させることができるうえ、 生体親和性をさらに向上させるこ とができる。 このような生体活性な基質としては、 例えば、 ヒ ドロキシァパタイ ト、 リン酸三カルシウム、 カルシウム欠損型アパタイ ト、 非晶質リン酸カルシゥ ム、 リン酸四カルシウム、 リン酸八カルシウム、 フッ素アパタイ ト、 炭酸ァパタ ィ ト、 ピロリン酸カルシウム、 モネタイ ト、 ブルツシャイ ト等のリン酸カルシゥ ム類、 炭酸カルシウム類、 生体内でリン酸カルシウム類を吸着することができる 化合物、ァパタイ ト含有結晶化ガラス、 メタリン酸カルシウム含有結晶化ガラス、 バイオガラス等の生体活性ガラスによって代表される生体内で材料表面にァパタ イ ト層を形成することができる化合物、 さらに、 擬似体液浸漬法によってァパタ イ ト層を形成させることができるチタン、 チタン合金、 高分子材料等が挙げられ る。
前記骨芽細胞又は前駆骨芽細胞は、 移植材料を埋植する予定の生体から採取し た骨髄細胞から分離-培養によって増殖された間葉系幹細胞を、分化誘導因子(デ キサメサゾン) を含有する培養液中で培養することによって分化させたものであ ることが好ましい。 それにより、 移植後の自己免疫によって拒絶反応が引き起こ される等の不具合を確実に防止することができる。
骨マトリックスは、 移植後の生体親和性をより一層向上させるために、 人工材 料の表面に厚くコーティングされていることが好ましい。 コーティングされた骨 マ トリ ックスの一部が石灰化されていることが更に好ましい。 さらに、 この骨マ トリックス中に、 骨髄細胞、 間葉系幹細胞、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から選ば れる少なくとも 1種の細胞が分泌する骨形成因子等の成長因子が含有されている ことが好ましい。 前記成長因子は、 移植された生体内の間葉系幹細胞の生理的な 着床、 増殖及び分化を促進させることができるので、 骨組織修復速度及び生体親 和性をより一層向上させることができる。
次に、 上記移植材料の作用について説明する。
上記のように構成される移植材料を製造する際には、 まず、 骨組織の代替とし て所定形状をなす人工材料を用意する。 さらに、 必要に応じて、 プラズマ溶射法、 擬似体液浸漬法、 交互浸漬法等を用いて、 前記人工材料の表面にヒ ドロキシアバ タイ ト等の生体活性な基質を被覆する。 続いて、 前記材料を滅菌する。 次に、 注 射器等を用いて、 移植予定の生体から骨髄細胞を無菌的に採取する。 このとき、 この骨髄細胞から間葉系幹細胞を公知の方法により分離 *培養、 さらに継代培養 によって増殖させるとよレ、。
続いて、 前記骨髄細胞又は間葉系幹細胞を人工材料に付着させ、
ン、 J3—グリセ口リン酸ナトリウム、 ァスコルビン酸等を含有する培養液中で培 養して骨芽細胞及び前駆骨芽細胞へと分化させ、 それらの細胞が産生する骨マト リ ックスを人工材料の表面にコーティングさせる。 或いは、 前記骨髄細胞又は間 葉系幹細胞を前記培養液中で予め骨芽細胞及び前駆骨芽細胞へと分化させた後に、 滅菌した人工材料とともに培養することによって、 それらの細胞を人工材料の表 面に付着させるとともに、 それらの細胞が産生する骨マトリツクスを人工材料の 表面にコーティングさせてもよい。
前記骨髄細胞又は間葉系幹細胞を人工材料とともに培養しながら分化させる場 合、 まず、 骨髄細胞又は間葉系幹細胞を含む細胞浮遊液を調製し、 これに人工材 料を浸漬する。 すると、 前記細胞は前記培養液に浸漬された人工材料の表面に付 着する。 その後、 この培養液中で培養すると、 人工材料の表面で増殖しながら骨 芽細胞及び前駆骨芽細胞へと分化する。 分化した骨芽細胞及び前駆骨芽細胞は細 胞外に骨マトリックスを産生し、 該骨マトリックスは、 異物膜等を介在すること なく人工材料の表面に直接コーティングされる。
一方、 骨髄細胞又は間葉系幹細胞を予め骨芽細胞及び前駆骨芽細胞に分化させ た後に人工材料とともに培養する場合、 まず、 骨髄細胞又は間葉系幹細胞を前記 培養液を満たした培養皿内で培養する。 該細胞は非常に増殖能が高いので、 培養 皿の底面に接着しながら迅速に増殖する。 その後、 該細胞を前記培養液中で培養 すると、 多数の前駆骨芽細胞及び骨芽細胞へと分化する。 このとき、 必要に応じ て継代培養することによつて細胞数をさらに増やしてもよい。 骨芽細胞及び前駆 骨芽細胞数が充分に増えたところで、 トリプシン溶液等を用いてそれらの細胞を 培養皿の底面から剥離させた後、 前記培養液中に浮遊させて細胞浮遊液を調製す る。 続いて、 細胞浮遊液中に前記人工材料を浸漬させてインキュベータ内で培養 する。 このとき、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞の一部は、 培養液に浸漬された人工 材料の表面に接着し、 その表面上で生育する。 そして、 該細胞は骨マ トリ ックス を産生し、 産生された骨マトリックスは異物膜等を介在することなく人工材料の 表面に直接コーティングされる。
さて、 上記のように構成された移植材料を骨組織の代替として生体内に埋植し た場合、 移植材料の表面は、 生体自身の細胞と骨マトリックスとによってコーテ ィングされていることから、 隣接する骨組織及びその他の組織や細胞に対して非 常に高い生体親和性を有することとなる。 また、 骨マトリックスが移植材料の表 面全体にコーティングされていることから、 生体が移植材料を異物と認識するこ とがなく、 炎症反応の発生や被膜 (異物膜) の形成等の生体反応が回避される。 さらに、 予め移植材料の表面に付着された骨芽細胞及び前駆骨芽細胞は、 移植 の時点で既に骨修復活性が非常に高められた状態になっており、 移植後直ちに移 植材料の周囲に骨マトリックスをコーティングしながら骨新生を開始する。 そし て、 時間の経過とともに、 これらの細胞は移植材料と周囲の骨組織との隙間を緻 密に埋めて骨修復し、 移植材料をより一層確実に固定化する。
また、 移植材料表面の骨マトリックスが生体の自然発生的な間葉系幹細胞、 骨 芽細胞及び前駆骨芽細胞の生理的な着床及び生育を促進するので、 移植後しばら く経過すると、 それらの細胞が移植材料の表面に生理的に着床する。 そして、 こ れらの細胞は、 前記移植材料の骨マトリックス上で新たな骨マトリックスを産生 しながら骨修復を開始し、 移植材料をさらに確実に固定化する。
さらにまた、 時間が経過すると、 前記人工材料を取り囲むように修復された骨 組織は、 破骨細胞、 前駆骨芽細胞及び骨芽細胞の働きによる生体の生理的な代謝 作用によって、 常に適正に更新される状態を継続的に維持するようになる。 この ような状態になれば、 移植材料は長期間の使用によってもゆるみや脱落等がほと んど起こらない。
上記実施形態によって発揮される効果について、 以下に記載する。
本実施形態の移植材料は、 骨組織の代替として生体内に埋植するための非生体 活性な人工材料の表面に、 骨芽細胞及ぴ前駆骨芽細胞から選ばれる少なく とも 1 種の細胞を付着させるとともに、 付着した細胞が産生する骨マトリックスをコ一 ティングさせたものである。 このため、 人工材料を構成する非生体活性材料を選 択することによって、 移植材料に対して所望とする機械的性質 (機械的強度ゃ耐 摩耗性等) を容易かつ確実に付与させることができる。 即ち、 高い機械的強度を 有する骨組織ゃ弹性変形可能な骨組織の代替など、 広範囲にわたる使用目的に応 じて、 移植材料を選択することができる。
さらに、 骨修復活性の高い細胞が移植材料の表面に付着されていることから、 生体内に移植された直後から、 該細胞が移植材料と周囲の骨組織との隙間を埋め るように作用し、 骨組織修復速度をより一層高めることができる。 また、 高齢の 生物体においては、 生体内の自然発生的な骨修復速度が遅い場合が多い。 そのよ うな場合でも、 人為的に骨修復活性を高めた細胞を付着させることによって、 移 植材料の早期治療及び早期固定を確実に行うことができる。 従って、 完治するま でに要する日数を少なくすることができ、 身体的、 精神的負担を強く感じる期間 を短縮させることができるとともに、 治療にかかる費用を抑制することが可能で ある。
加えて、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞が産生した骨マトリックスが移植材料の表 面にコーティングされているので、 移植材料の表面と骨組織との間に被膜 (異物 膜) が形成されず、 生体親和性を向上させることができる。 従って、 移植直後か ら長期間に渡って、 移植された生体内での生体親和性を非常に高い状態で維持す ることができる。 また、 生体内の自然発生的な間葉系幹細胞、 骨芽細胞及び前駆 骨芽細胞の生理的な着床及ぴ生育を促進させることもできる。
以上に述べたように、 本発明によれば、 移植材料による骨組織の早期治療及び 早期固定を容易かつ確実に行うことができるうえ、 移植材料を長期間に渡ってほ とんど不具合なく使用することができる。
—方、 従来の人工関節では、 非生体活性材料である P MM A骨セメント又は人 ェ材料が直接骨組織と接するように構成されていたので、 それらの表面に被膜が 形成され、 人工関節がゆるんだり脱落したりして不具合が発生する可能性が著し く高かった。 これに対し、 本実施形態の移植材料では、 その表面にコ一ティング された骨マトリックスが生体親和性を大幅に高めている。 その結果、 人工関節の ゆるみや脱落がほとんど起こらず、 長期間に渡って不具合なく使用することがで さる。
さらに、 前記 P MM A骨セメントは硬化する際に高い重合熱を発生するので、 骨セメントと接する骨組織に多大な損傷を与えていた。 その結果、 骨セメントと 周囲の骨組織との生体親和性を大幅に低下させ、 生体に対する負担を著しく増大 させていた。 これに対し、 本実施形態の移植材料では、 骨修復活性が非常に高め られた移植材料を使用していることから、 骨セメントを使用しなくても自然治癒 力を利用して、 移植材料の固定化を迅速に行わせることができる。 従って、 前記 重合熱の問題を容易かつ確実に解決することができる。 また、 P MMA骨セメン トを重合させる際の残留モノマーによる為害作用の問題も確実に解決することが できる。
また、 従来の人工関節等の移植材料では、 治療において高価な薬剤であるサイ トカイン等の生物学的因子を投与することによって、 骨修復活性を高めることが 検討されている。 しかしながら、 本実施形態の移植材料では、 既に骨修復活性が 高められた骨芽細胞及び前駆骨芽細胞が付着されており、 前記生物学的因子の投 与の必要がほとんどないことから非常に経済的である。 また、 術後のアフターケ ァの負担を軽減させることもできる。
また、 従来より、 移植予定の生体から腸骨等の骨組織を採取し、 損傷された骨 組織の代替としてその生体内に埋植して使用する自家骨移植手術が行われていた。 しかしながら、 この自家骨移植手術では、 損傷された組織以外の骨組織を採取す るために余分な手術を行う必要があった。 これに対し、 本実施形態の移植材料で は、 注射器等を用いて骨髄細胞を採取するという非常に負担の少ない手術を行う のみにとどまり、 前記余分な手術の必要が全くないため、 移植される生体に対し て身体的、 精神的負担を著しく軽減させることができる。
さらに、 この移植材料の骨マトリ ックス中には、 骨髄細胞、 間葉系幹細胞、 骨 芽細胞及び前駆骨芽細胞から選ばれる少なくとも 1種の細胞が分泌する成長因子 等の生物学的因子を含むこともできる。 それにより、 移植された生体内の間葉系 幹細胞の生理的な着床及び増殖、 並びに骨芽細胞、 前駆骨芽細胞への分化を促進 させることができる。 また、 仮に、 何らかの原因により移植材料表面に付着され た細胞が死滅した場合でも、 骨マトリックスやマトリ ッタスに含まれている前記 生物学的因子が生体内の間葉系幹細胞の生理的な着床等を促進させることができ る。従って、骨組織修復速度及び生体親和性をより一層向上させることができる。 人工材料は、 チタン、 チタン合金、 ステンレス鋼、 コバルト一クロム合金、 コ バノレトークロム一モリブデン合金、 ァノレミナセラミ ックス、 カーボンセラミ ック ス、 ジルコ二アセラミ ックス、 炭化珪素セラミ ッタス、 窒化ケィ素セラミ ックス、 ガラスセラミ ックス、 ポリエチレン、 ポリスチレン、 ポリテ トラフルォロェチレ ン、 ポリ ウレタン、 ポリ ビニルアルコール、 ポリプロピレン、 ポリカーボネート、 ポリメタクリル酸メチル、 メタクリル酸エステル系ポリマー、 シリコーン樹脂及 び生体吸収性高分子から選ばれる少なく とも 1種の材料から構成することができ る。 それにより、 該移植材料が生体内で劣化したり、 分解したり、 或いは分解さ れて生体に悪影響を及ぼしたりせずに、 損傷を受けた骨組織の代替としての機能 を確実に発揮させることができる。
さらに、 多種の材料から治療に最も適した材料を適宜選択して使用することが できるので、 所望とする機械的性質が付与された移植材料が得られる。 特に、 金 属材料やセラミックス材料から構成された人工材料は、 非常に高い機械的強度を 備えていることから、 高い強度が要求される骨組織の代替に適している。 また、 セラミックス材料によって構成された人工材料は、 その表面を容易に多孔質状に 形成させることができるうえ、 該材料を軽量化することができる。 また、 弾性変 形可能な合成樹脂材料によつて構成された人工材料は、 柔軟性を要求される骨組 織の代替に適している。
非生体活性な人工材料は、その表面に生体活性な基質を被覆することによって、 間葉系幹細胞、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞の付着、 生育及び骨修復をより一層促 進させることができる。 移植材料に付着されるべき骨芽細胞及び前駆骨芽細胞として、 移植予定の生体 由来の間葉系幹細胞を培養して分化させたものを使用することによって、 移植さ れた生体の自己免疫による拒絶反応を確実に防止することができる。
また、 例えば、 高齢の生物体から採取した間葉系幹細胞であっても、 インビト 口で培養して増殖させることができる。 それにより、 若齢の生物体由来の間葉系 幹細胞とほぼ同様に増殖及び分化させることができるとともに、 ほぼ同様の骨修 復活性を発揮させることができる。 従って、 高齢の生物体に対しても非常に高い 治療効果を発揮することができる。
人工材料の表面を多孔質にすることによって、 間葉系幹細胞、 骨芽細胞及び前 駆骨芽細胞が人工材料に容易に入り込むことができ、 それらの細胞を安定な状態 で定着させることができる。 さらに、 人工材料の表面積が大きくなることから、 より多くの細胞を定着させることができるとともに、 骨修復された後には周囲の 骨組織に対して広い面積で、 かつ複雑に入り組んだ形状で接することができるこ と力 ら、 移植材料のゆるみや脱落を起こり難くすることができる。
骨マトリックスを石灰化させることによって、 移植部位の周囲の骨組織に対し て移植材料を非常に強固に結合させることができる。 それにより、 生体親和性を より一層向上させることができるうえ、 完治するまでの期閒を著しく短縮させる ことができる。
本実施形態の移植材料の製造方法では、 生体から採取した間葉系幹細胞を培養 して骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から選ばれる少なくとも 1種の細胞に分化させる 工程と、分化させた細胞を非生体活性な人工材料とともに培養する工程とを含む。 それにより、 分化した細胞が人工材料の表面に付着されるとともに、 分化した細 胞が産生する骨マトリックスが人工材料の表面にコーティングされる。 前記方法 を用いれば、 所望とする機械的性質を付与することができるとともに、 骨組織修 復速度及び生体親和性を向上させることができる移植材料を容易に製造すること ができる。 実施例 以下、 上記実施形態を具体化した実施例及び比較例について説明する。
(皮下移植試験)
(実施例 1 )
7週齢雄 Fischer系ラッ 卜の大腿骨骨幹部より骨髄細胞を採取し、 該細胞に、 1 5 %ゥシ胎児血清 (F B S) を含有する α— MEM (最小必須培養液) を加え、 インキュベータ (3 7 、 5 %C02) 内で 7〜 1 2日間初期培養した。
初期培養後、 0. 0 1 %トリプシン溶液で該骨髄細胞を処理することによって、 1 X 1 0G〜 1 X 1 07cells/m 1 の細胞浮遊液を調製した。 この浮遊液に円盤状 (直径 3 4 mm、 厚さ 2 mm) の人工材料 (チタン合金、 ステンレス銅、 アルミ ナセラミックス及び高密度高分子ポリエチレン) を添加し、 インキュベータ (3 7°C、 5 %C 02) 内で約 2時間浸漬した。 また、 この細胞浮遊液に、 直方体状(3 X 3 X 5 mm) に形成するとともに多孔質状に形成した人工材料 (チタン合金、 ステンレス鋼、 アルミナセラミ ックス及び高密度高分子ポリエチレン) を添加し、 前記と同様にィンキュベータ内で約 2時間浸漬した。
その後、 これらの材料を、 上記培地に抗生物質、 1 0一8 Mデキサメサゾン、 1 0mMj3—グリセロ リン酸ナトリ ゥム及び 5 0 μ g /m 1ァスコルビン酸を含む ように調製した培地 2 m 1 を加えた 3 5 mm培養皿に移し替え、 インキュベータ ( 3 7°C、 5 %C 02) 内で約 1週間培養した。 なお、 必要に応じて培地交換した。 これらの移植材料の表面には、 骨髄由来の間葉系幹細胞から分化した前駆骨芽 細胞及び骨芽細胞が付着されるとともに、 それらの細胞が産生する骨マトリック スがコ一ティングされていることが、 アル力リ フォスファターゼ活性及びァリザ リンレツド染色により確認された。 さらに、 前記多孔質状に形成された移植材料 を同系ラッ トの背部皮下に移植する移植試験を行った結果、 約 1〜 2週間後には 移植材料表面に骨組織の新生が確認された。 (比較例 1 )
4種類の人工材料 (チタン合金、 ステンレス鋼、 アルミナセラミ ックス及び高 密度高分子ポリエチレン) をそのままラッ 卜の背部皮下に移植する移植試験を行 つた。 その結果、 皮下への移植後の早い段階で人工材料の周囲に繊維性組織 (異 物膜) の介在が確認され、 骨組織の新生は全く確認されなかった。
(人工関節使用試験)
(実施例 2 )
成犬から骨髄細胞を採取し、 その細胞を実施例 1 と同様に 7〜 1 2日間初期培 養した後に細胞浮遊液を調製した。 この浮遊液中にチタン合金から構成された人 ェ股関節のステム部分を浸漬し、 インキュベータ (3 7。C、 5 % C 02) 内で約 2 時間浸漬した。 その後、 実施例 1 と同様の培地を加えた培養容器にステム部分を 移し替え、 インキュベータ (3 7 °C、 5 % C 02) 内で約 1週間培養した。 なお、 必要に応じて培地交換した。
この人工股関節のステム部分の表面には、 骨髄由来の間葉系幹細胞から分化し た前駆骨芽細胞及び骨芽細胞が付着されるとともに、 それらの細胞が産生する骨 マトリ ックスがコーティングされていることが確認された。 さらに、 この人工股 関節のステム部分を前記成犬の大腿骨の空隙部に埋植したところ、 ステム部分と 大腿骨との結合が認められた。 さらに、 この人工股関節は、 移植後の早い時期に ステム部分の表面に骨組織の新生が確認されるとともに、 ステム部分の固定も早 期に完了した。
(比較例 2 )
前記細胞浮遊液中に浸漬していない人工股関節を用いて、 上記実施例 2と同様 に人工股関節を移植したところ、 ステム部分と大腿骨との結合が部分的にしか認 められず、 結果としてステム部分のゆるみを生じた。
(実施例 3 ) 体重 1 2 k gのビーグル犬の上腕骨より骨髄細胞 2 m 1 を採取した。 この骨髄 細胞を、 へパリンが添加された F B S 2m 1 を加えたチューブに移し、 遠心分離 (900 r pm, 1 0分, 24°C) を行った。 遠心分離されたチューブ内から脂 肪細胞と上澄み液を取り除いた後、 T一 75フラスコに移し、 1 5%F B S及び 抗生剤を含む培地で 1 0日間初代培養を行った。 培地は 1週間に 3回交換した。 本実施例では、 図 1に示すチタン (以下、 「丁 i」 と記載) 合金からなるステム 1 と、 高純度アルミナからなる人工骨頭 2を使用した。 ステム 1の両面にはくぼ み面 3 (深さ 0. 5mm, 面積 1. 3 c m 2 ) を設け、 純 T iの溶射処理を施し た。 溶射面の平均表面粗さは 32 / mであった。 初代培養後、 0. 25%トリプ シンで剥離処理した後、 細胞浮遊液を作製した。
直径 94 mmの培養用ディ ッシュにィヌ用ステムを置き、 ステム上側の純 T i 溶射処理面 (面積 1. 3 c m2) に 1 X 1 05 Cellsの細胞浮遊液を乗せ、 3 7°C、 30分間インキュベートして細胞を T i溶射処理面に接着させた。 ϋいて、 1 0 mM )3—グリセ口フォスフェート (J3— glycerophosphate)、 82 μ g Zm 1 ビ タミン Cフォスフェート (vitamin C phosphate) 及び 1 0— 8Mテキサメサゾン
(Dexamethasone)を添加した培地を 48m l加えて 1 1 日間継代培養を行った。 このように継代培養を行ったステムにアル力リフォスファターゼ染色を行った ところ、 細胞を播種した側の T i溶射処理面は赤く染色されていた。 一方、 細胞 を播種していないステムの裏側の T i溶射処理面は染色されなかった。 このこと は細胞を播種した面には骨芽細胞に分化した細胞が一面に存在していることを意 味する。
ビーグル犬の右側大腿骨の大転子から小転子にかけてのラインより骨頭側を切 り、 骨頭部分を摘出し、 髄腔拡大、 トライアルでラスビングを行った。 上述のよ うに調製した片面に細胞を搭載したステムの表面を P B S (—) 及び生理食塩水 でよく洗浄し、 大腿骨髄腔に挿入した後、 人工骨頭を装着した。
術後 3週で屠殺し、 ステム埋入部分を摘出した。 ステムの丁 i溶射処理部分を 組織学的に観察した結果、 細胞を搭載した T i溶射面では、 新生骨が T i溶射面 の凹部にまで形成されており、 細胞搭載面のほぼ全面が新生骨で覆われていた。 一方、 細胞を搭載していないステムの T i溶射面では部分的にしか骨との接触が 観られなかった。
なお、 本実施形態は、 次のように変更して具体化することも可能である。
金属材料又はセラミックス材料と、 合成樹脂材料とを組み合わせて人工材料を 構成することもできる。 例えば、 ステム部分、 骨頭部分及び臼蓋部分からなる人 ェ関節において、 ステム部分及ぴ骨頭部分を金属材料又はセラミックス材料から 構成するとともに、 臼蓋部分を合成樹脂材料から構成することもできる。 このよ うな構成とした場合、 各部分毎に要求される機械的性質により適合した移植材料 となるので、 生体に対する違和感をより一層低減させることができる。
移植材料は、 非生体活性な材料からなる人工材料の表面に、 生体活性な基質が 被覆されていなくてもよい。 このような構成にしても、 間葉系幹細胞、 骨芽細胞 及ぴ前駆骨芽細胞を人工材料の表面に付着させることができるうえ、 骨芽細胞及 び前駆骨芽細胞が産生する骨マトリックスをコーティングさせることができる。 人工材料の表面を多孔質状に形成せずに、 平坦に形成してもよい。 このような 構成を備えた人工材料では、 該人工材料の成形を容易に行うことができる。
間葉系幹細胞、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞が接着して増殖することができない 非生体活性な材料により人工材料を構成し、 その人工材料の表面に生体活性な基 質を被覆したものを使用して移植材料を構成してもよい。 このように構成した場 合でも、 移植材料の表面に骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から選ばれる少なく とも 1 種の細胞を付着させることができるうえ、 骨マトリックスをコーティングさせる ことができる。
移植材料の表面に付着される骨芽細胞又は前駆骨芽細胞として、 主要組織適合 性遺伝子複合体 (MH C ) 又はヒ ト白血球抗原 (H L A ) がー致する同種の生物 体由来の細胞を使用してもよい。 或いは、 前記 M H C又は H L A (抗原性) がー 致しない細胞を使用するとともに、 免疫抑制剤を投与してもよい。 このように構 成した場合、 移植材料を移植したときに、 自己免疫による拒絶反応を確実に抑制 することができる。 また、 例えば、 移植予定の生体の骨髄細胞がガン化している 可能性があるような場合には、 その骨髄細胞由来の細胞が付着された移植材料を 生体に移植することによって、 ガンの増殖及び転移を促進させてしまうおそれが ある。 しかしながら、 ガン化のおそれのない健康な生物体由来の骨髄細胞を使用 することによって、 それらの可能性をなくすことができる。 また、 臍帯血が利用 できる場合には、 その中に含まれる間葉系幹細胞を使用すれば大変有利である。 骨髄細胞又は間葉系幹細胞の一部を人工材料とともに培養液中で培養するとと もに、 残りを培養皿上で培養し、 細胞数が増えたところで培養皿上の細胞を前記 人工材料の表面に付着させて培養してもよい。 さらに、 継代培養して増えた細胞 の"部を前記人工材料の表面に付着させて培養するとともに、 残りの細胞をさら に継代培養し、 細胞数が増えたところで前記人工材料の表面に付着させて培養し てもよい。 このように構成した場合、 骨芽細胞及び前駆骨芽細胞数を短期間で効 率的に増やすことができ、 移植材料の製造に要する期間を大幅に短縮することが できる。 また、 より多くの細胞を移植材料の表面に付着させることもできる。 骨欠損部又は骨空隙部に対応する形状に成形された人工材料を用いて移植材料 を製造し、 その移植材料を骨欠損部又は骨空隙部に埋植して治療してもよい。 こ のように構成した場合、所望とする機械的性質を付与することができるとともに、 骨組織修復速度及び生体親和性を向上させることができる。
間葉系幹細胞を骨芽細胞及び前駆骨芽細胞に分化させるための分化誘導因子と して、 骨形成タンパク質、 繊維芽細胞増殖因子、 ダルココルチコィ ド又はプロス タグランジンを使用してもよい。
移植材料の表面に、 デキサメサゾン、 骨形成タンパク質、 繊維芽細胞増殖因子、 ダルココルチコィ ド及びプロスタグランジンから選ばれる少なくとも 1種の成長 因子を付着、 吸着又は含浸させてもよい。 このように構成した場合、 移植材料の 骨修復活性をさらに高めることができる。

Claims

請求の範囲
1 . 骨組織の代替として生体内に埋植するための非生体活性な人工材料に、 骨芽 細胞及び前駆骨芽細胞から選ばれる少なくとも 1種の細胞を付着させるとともに、 付着した細胞が産生する骨マトリックスをコーティングさせた移植材料。
2 . 前記人工材料を、 チタン、 チタン合金、 ステンレス銅、 コバルト一クロム合 金、 コバルト一クロム一モリブデン合金、 ァノレミナセラミ ックス、 カーボンセラ ミックス、 ジルコ二アセラミ ックス、 炭化珪素セラミ ックス、 窒化ケィ素セラミ ックス、 ガラスセラミ ックス、 ポリエチレン、 ポリスチレン、 ポリテ トラフルォ 口エチレン、 ポリ ウレタン、 ポリ ビニルアルコール、 ポリプロピレン、 ポリカー ボネート、 ポリメタク リル酸メチル、 メタク リル酸エステル系ポリマー、 シリ コ —ン樹脂及び生体吸収性高分子から選ばれる少なく とも 1種の材料から構成した 請求項 1に記載の移植材料。
3 . 前記人工材料の表面に生体活性な基質を被覆した請求項 1又は請求項 2に記 載の移植材料。
4 . 前記生体活性な基質は、 ヒ ドロキシアパタイ ト、 リン酸三カルシウム、 カル シゥム欠損型アパタイ ト、 非晶質リン酸カルシウム、 リ ン酸四カルシウム、 リ ン 酸八カルシウム、 フッ素アパタイ ト、 炭酸アパタイ ト、 ピロ リン酸カルシウム、 ブルツシャイ ト、 モネタイ ト、 炭酸カルシウム、 ァパタイ ト含有結晶化ガラス、 メタリ ン酸カルシウム含有結晶化ガラス及びバイオガラスから選ばれる少なく と も 1種である請求項 3に記載の移植材料。
5 . 前記人工材料は、 チタン、 チタン合金、 ステンレス鋼、 コバルト一クロム合 金及びコバルト一クロム一モリブデン合金から選ばれる少なく とも 1種の金属材 料からなる請求項 1乃至 4のいずれか一項に記載の移植材料。
6 . 前記人工材料は、 アルミナセラミ ックス、 カーボンセラミ ックス、 ジルコ二 アセラミ ックス、 炭化珪素セラミ ックス、 窒化ケィ素セラミ ックス及びガラスセ ラミッタスから選ばれる少なくとも 1種のセラミ ックス材料からなる請求項 1乃 至 4のいずれか一項に記載の移植材料。
7 . 前記人工材料は、 ポリエチレン、 ポリスチレン、 ポリテ トラフルォロェチレ ン、 ポリ ウレタン、 ポリ ビニルアルコール、 ポリプロピレン、 ポリカーボネート、 ポリメタク リル酸メチル、 メタク リル酸エステル系ポリマー、 シリ コーン樹脂及 び生体吸収性高分子から選ばれる少なく とも 1種の合成樹脂材料からなる請求項
1乃至 4のいずれか一項に記載の移植材料。
8 . 前記骨マ トリ ックスは、 骨髄細胞、 間葉系幹細胞、 骨芽細胞及び前駆骨芽細 胞から選ばれる少なく とも 1種の細胞が分泌する成長因子を含む請求項 1乃至 7 のいずれか一項に記載の移植材料。
9 . 前記人工材料の表面が多孔質状に形成されている請求項 1乃至 8のいずれか 一項に記載の移植材料。
1 0 . 前記骨マトリックスの少なく とも一部が石灰化されている請求項 1乃至 9 のいずれか一項に記載の移植材料。
1 1 . 前記骨芽細胞又は前駆骨芽細胞は、 前記生体由来の間葉系幹細胞を培養し て分化させたものである請求項 1乃至 1 0のいずれか一項に記載の移植材料。
1 2 . 骨組織の代替として生体内に埋植するための移植材料を製造するための方 法において、
生体から採取した間葉系幹細胞を培養して骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から選ば れる少なく とも 1種の細胞に分化させる工程と、
前記分化させた細胞を非生体活性な人工材料とともに培養する工程とを含み、 それにより、 前記分化させた細胞が人工材料の表面に付着されるとともに、 前 記分化された細胞が産生する骨マトリッタスが人工材料の表面にコーティングさ れる方法。
1 3 . 前記方法が分化させた細胞を継代培養して細胞数を増やす工程を更に含む 請求項 1 2に記載の方法。
1 4 . 骨組織の代替として生体内に埋植するための移植材料を製造するための方 法において、
生体から採取した間葉系幹細胞を非生体活性な人工材料とともに培養する工程 と、
前記間葉系幹細胞を人工材料の表面に付着させるとともに、 表面に付着された 間葉系幹細胞を骨芽細胞及び前駆骨芽細胞から選ばれる少なく とも 1種の細胞に 分化させる工程とを含み、
それにより前記分化された細胞が産生する骨マトリッタスが人工材料の表面に コーティングされる方法。
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Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002017847A (ja) * 2000-07-03 2002-01-22 Kikuji Yamashita 細胞外マトリックス結合型生体融和材料およびその製造方法、細胞外マトリックス製剤およびその製造方法
JP2005065803A (ja) * 2003-08-21 2005-03-17 Yasumasa Akagawa インプラント固定方法およびその固定部材ならびにインプラント複合材
CN100408114C (zh) * 2006-06-22 2008-08-06 四川大学 纳米羟基磷灰石/硅橡胶复合生物医用材料及其制备方法
JP2012090822A (ja) * 2010-10-27 2012-05-17 Nagoya Univ インプラント定着補助剤及びその製造方法

Families Citing this family (26)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9522217B2 (en) * 2000-03-15 2016-12-20 Orbusneich Medical, Inc. Medical device with coating for capturing genetically-altered cells and methods for using same
US20160287708A9 (en) * 2000-03-15 2016-10-06 Orbusneich Medical, Inc. Progenitor Endothelial Cell Capturing with a Drug Eluting Implantable Medical Device
US20050271701A1 (en) * 2000-03-15 2005-12-08 Orbus Medical Technologies, Inc. Progenitor endothelial cell capturing with a drug eluting implantable medical device
US8088060B2 (en) * 2000-03-15 2012-01-03 Orbusneich Medical, Inc. Progenitor endothelial cell capturing with a drug eluting implantable medical device
ES2424614T3 (es) * 2001-05-01 2013-10-07 Amedica Corporation Injerto óseo radiolúcido
US20050177238A1 (en) * 2001-05-01 2005-08-11 Khandkar Ashok C. Radiolucent bone graft
US7776085B2 (en) * 2001-05-01 2010-08-17 Amedica Corporation Knee prosthesis with ceramic tibial component
US7695521B2 (en) 2001-05-01 2010-04-13 Amedica Corporation Hip prosthesis with monoblock ceramic acetabular cup
EP1408874B1 (en) * 2001-06-14 2012-08-08 Amedica Corporation Metal-ceramic composite articulation
ITRM20010628A1 (it) * 2001-10-23 2003-04-23 Univ Roma Protesi d'anca e relativo metodo di progettazione.
US6981991B2 (en) * 2002-06-27 2006-01-03 Ferree Bret A Arthroplasty devices configured to reduce shear stress
AU2003297195A1 (en) * 2002-12-17 2004-07-22 Amedica Corporation Total disc implant
US20040137551A1 (en) * 2003-01-13 2004-07-15 Markovic Nenad S. Cervical acid phosphatase - papanicolaou (CAP-PAP) test kit, method and accesories, processes for producing and using the same
USD565179S1 (en) * 2005-06-16 2008-03-25 Pentax Corporation Bone implant
US8252058B2 (en) * 2006-02-16 2012-08-28 Amedica Corporation Spinal implant with elliptical articulatory interface
US20070198093A1 (en) * 2006-02-17 2007-08-23 Amedica Corporation Spinal implant with offset keels
US20100291042A1 (en) * 2007-05-03 2010-11-18 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Multipotent stem cells and uses thereof
US8574567B2 (en) * 2007-05-03 2013-11-05 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Multipotent stem cells and uses thereof
US20090005868A1 (en) * 2007-06-27 2009-01-01 Depuy Products, Inc. Osteogenic prosthesis, associated instrument, and associated method
US9192695B2 (en) * 2008-11-20 2015-11-24 Allosource Allografts combined with tissue derived stem cells for bone healing
US20110207166A1 (en) * 2009-11-06 2011-08-25 Sarah Rivkah Vaiselbuh Human bone marrow microenvironments and uses thereof
ES2665328T3 (es) 2010-07-02 2018-04-25 Mesoblast, Inc. Células que expresan STRO-1bright para tratar la enfermedad de injerto contra huésped
US9289312B2 (en) * 2011-07-13 2016-03-22 Vivex Biomedical, Inc. Spinal implants with stem cells
KR102312720B1 (ko) 2013-03-15 2021-10-13 알로소스 연조직 회복 및 재생을 위한 세포 재배치된 콜라겐 매트릭스
CN109549762A (zh) * 2018-11-27 2019-04-02 微普安全科技(徐州)股份有限公司 一种生物活性材料及其应用
CN111718435B (zh) * 2020-06-17 2021-12-28 西北大学 一种抗菌高分子聚乙烯醇材料及方法和应用

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1993025246A1 (en) * 1992-06-16 1993-12-23 Stryker Corporation Prosthetic devices having enhanced osteogenic properties
JPH07116184A (ja) * 1993-10-21 1995-05-09 Terumo Corp 人工関節
JPH08112341A (ja) * 1994-10-12 1996-05-07 Japan Steel Works Ltd:The 骨充填材およびその製造方法
WO1997005238A1 (en) * 1995-07-26 1997-02-13 University College London Site-directed bone formation
WO1997040137A1 (en) * 1996-04-19 1997-10-30 Osiris Therapeutics, Inc. Regeneration and augmentation of bone using mesenchymal stem cells

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2679245A (en) * 1950-03-20 1954-05-25 Timmermans Frans Donatus Prosthesis for femoral heads
US4164794A (en) * 1977-04-14 1979-08-21 Union Carbide Corporation Prosthetic devices having coatings of selected porous bioengineering thermoplastics
JPS6131163A (ja) * 1984-07-23 1986-02-13 京セラ株式会社 セラミツク製生体補綴材とその製造方法
JP2725387B2 (ja) 1989-07-12 1998-03-11 三菱マテリアル株式会社 骨欠損部及び骨空隙部充てん材
US5306305A (en) * 1992-01-31 1994-04-26 Etex Corporation Methods of coating implants with bony structure
CA2142282A1 (en) * 1992-08-13 1994-03-03 Paul Ducheyne Bioactive material template for in vitro synthesis of bone tissue

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1993025246A1 (en) * 1992-06-16 1993-12-23 Stryker Corporation Prosthetic devices having enhanced osteogenic properties
JPH07116184A (ja) * 1993-10-21 1995-05-09 Terumo Corp 人工関節
JPH08112341A (ja) * 1994-10-12 1996-05-07 Japan Steel Works Ltd:The 骨充填材およびその製造方法
WO1997005238A1 (en) * 1995-07-26 1997-02-13 University College London Site-directed bone formation
WO1997040137A1 (en) * 1996-04-19 1997-10-30 Osiris Therapeutics, Inc. Regeneration and augmentation of bone using mesenchymal stem cells

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See also references of EP1228773A4 *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002017847A (ja) * 2000-07-03 2002-01-22 Kikuji Yamashita 細胞外マトリックス結合型生体融和材料およびその製造方法、細胞外マトリックス製剤およびその製造方法
JP2005065803A (ja) * 2003-08-21 2005-03-17 Yasumasa Akagawa インプラント固定方法およびその固定部材ならびにインプラント複合材
CN100408114C (zh) * 2006-06-22 2008-08-06 四川大学 纳米羟基磷灰石/硅橡胶复合生物医用材料及其制备方法
JP2012090822A (ja) * 2010-10-27 2012-05-17 Nagoya Univ インプラント定着補助剤及びその製造方法

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