WO2007003382A2 - Lagermedium für zellen - Google Patents

Lagermedium für zellen Download PDF

Info

Publication number
WO2007003382A2
WO2007003382A2 PCT/EP2006/006401 EP2006006401W WO2007003382A2 WO 2007003382 A2 WO2007003382 A2 WO 2007003382A2 EP 2006006401 W EP2006006401 W EP 2006006401W WO 2007003382 A2 WO2007003382 A2 WO 2007003382A2
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cells
cell medium
cell
sodium
medium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/EP2006/006401
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
WO2007003382A8 (de
WO2007003382A3 (de
Inventor
Lubomir Arseniev
Krassimira Alexandrova
Marc Barthold
Carsten Griesel
Hans-Gerd Heuft
Sabine Kafert-Kasting
Christoph Priesner
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Cytonet GmbH and Co KG
Original Assignee
Cytonet GmbH and Co KG
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to DK06754641.6T priority Critical patent/DK1901605T3/da
Priority to PL06754641T priority patent/PL1901605T3/pl
Priority to US11/994,231 priority patent/US20080199956A1/en
Priority to HK08108284.0A priority patent/HK1117346B/xx
Priority to EP06754641.6A priority patent/EP1901605B1/de
Priority to BRPI0613170A priority patent/BRPI0613170B1/pt
Priority to CN2006800309540A priority patent/CN101247720B/zh
Priority to SI200631807T priority patent/SI1901605T1/sl
Priority to CA002613709A priority patent/CA2613709A1/en
Application filed by Cytonet GmbH and Co KG filed Critical Cytonet GmbH and Co KG
Priority to JP2008518747A priority patent/JP2009500006A/ja
Priority to ES06754641.6T priority patent/ES2477867T3/es
Publication of WO2007003382A2 publication Critical patent/WO2007003382A2/de
Publication of WO2007003382A8 publication Critical patent/WO2007003382A8/de
Priority to IL188461A priority patent/IL188461A/en
Publication of WO2007003382A3 publication Critical patent/WO2007003382A3/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/10—Preservation of living parts
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/10—Preservation of living parts
    • A01N1/12—Chemical aspects of preservation
    • A01N1/122—Preservation or perfusion media
    • A01N1/126—Physiologically active agents, e.g. antioxidants or nutrients
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/16—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for liver or gallbladder disorders, e.g. hepatoprotective agents, cholagogues, litholytics

Definitions

  • the invention relates to methods for storing in particular human cells, cell media for the storage of cells, and the use of such cell media for storage of cells, wherein the vitality of the cells is maintained during storage.
  • Cryopreservation is a commonly used method of storing living cells for extended periods of time.
  • the cryopreservation techniques have been steadily developed and improved over the last decade.
  • This feeding of the cells can be carried out, for example, by intravenous administration of the cells.
  • the application of cells stored in a human, especially by means of cryopreservation can be used above all as a clinical, in particular as a therapeutic, application.
  • human liver cell transplants can be administered intravenously for therapeutic use.
  • the present invention is based on the technical problem of providing a cell medium which is easy to produce and as inexpensive as possible for the storage of animal cells, preferably of human cells, in particular liver cells or liver cell transplants.
  • the cells should preferably be stored in the context of cryopreservation before freezing and / or after thawing.
  • the present invention is therefore also based on the technical problem of providing a cell medium permitting a short-term storage of animal cells, preferably of human cells, more preferably of liver cells or liver cell transplants, with the least possible loss of vitality and the viable cell count of the cells and thus represents an alternative to known cell media.
  • cell media for storage and thawing are known. However, they contain ingredients such as 5 to 20% fetal calf serum (FCS), which are not legally licensed for use, in particular intravenous administration, in humans, or even unsuitable.
  • FCS fetal calf serum
  • the present invention is therefore further based on the technical problem of providing a medium that with a low loss of vitality and the Mosdzelliere of cells, preferably of human cells, in particular liver cells or liver cell transplants, a risk-free application of the cells in an animal , especially a human, allowed.
  • Custodiol ® can be successfully used as a cell medium for storing especially thawed, originally cryopreserved cells such as liver cells; it was used as a solution for organ transplantation of whole organs.
  • Custodiol ® is not authorized by law for intravenous administration in humans.
  • the invention is therefore also the technical problem of providing a cell medium for the short-term storage of cells, in particular in connection with the cryopreservation, which is approved for intravenous administration in humans, and therefore the cells, for example, after thawing without consuming and the armordzelliere diminishing washing steps can be administered to a human in this cell medium intravenously.
  • the present invention solves the underlying technical problem essentially by providing a method for the short-term storage of animal or human cells according to the claims.
  • a method is provided, wherein the cells in a liquid Zeumedium, the Saiziö- solution selected in particular a saline solution containing sodium chloride, sodium gluconate, sodium acetate, potassium chloride, magnesium chloride and sodium citrate, and / or a salt solution containing Ringer lactate and / or Phosphate-buffered saline and / or an aqueous solution of a high molecular weight sugar, in particular hydroxyethyl starch, as well as glucose and in addition serum albumin and / or blood plasma containing and stored in this cell medium.
  • the Saiziö- solution selected in particular a saline solution containing sodium chloride, sodium gluconate, sodium acetate, potassium chloride, magnesium chloride and sodium citrate, and / or a salt solution containing Ringer lactate and / or Phosp
  • the animal cells are mammalian cells.
  • it can be porcine, bovine or murine cells.
  • Particularly preferred are human cells.
  • Cells according to the invention are also cell suspensions meant and cell transplants.
  • the cells may be of one type, but it is also possible to use a composition or co-culture of different cell types.
  • the animal cells are preferably cells for therapeutic application.
  • the animal cells are cells for in vitro cultivation.
  • the animal cells may be, for example, hepatocytes, pancreatic islets, chondrocytes, cartilage cells, nerve cells, keratinocytes or lymphocytes.
  • the cells intended for storage in a cell medium are liver cells, especially hepatocytes.
  • liver cells are understood as meaning a mixture of cells predominantly consisting of hepatocytes. However, they may also contain different proportions of lymphocytes, endothelial cells and other non-parenchymal cell groups.
  • platelets also called platelets.
  • Platelets are not animal cells in the sense of the invention.
  • short term storage means in vitro storage in a medium according to the invention over a period of up to 24 hours, especially up to 10 hours, preferably up to 5 hours, especially up to 3 hours.
  • cryopreservation a mostly long-term storage of cells below 0 0 C, especially at -20 0 C to -200 0 C is understood. Freezing is usually carried out at 1 ° C / min.
  • a cell medium also referred to as medium, thawing medium or nutrient medium, is understood to mean, in particular, a liquid aqueous solution.
  • the cell medium is used for living in i / tfro storage cells while maintaining the highest possible armordzelliere, ie the lowest possible mortality of the cells, and the highest possible viability or vitality, the person skilled in the art also known as viability.
  • the constituents of a cell medium used according to the invention are legally approved for administration, in particular intravenous administration, into an animal organism, preferably into a human organism.
  • the cells can be used after storage in a medium according to the invention for a clinical application, in particular a therapeutic application, or for in vitro experiments.
  • a salt solution is understood to mean an aqueous solution of one or more salts.
  • a preferred salt solution according to the invention contains sodium chloride, sodium gluconate, sodium acetate, potassium chloride, magnesium chloride and sodium citrate, the salts being dissolved in water.
  • the used water is sterile, preferably deionized water for injection.
  • a preferred salt according to the invention solution is Composol® ® or a corresponding composition of Composol® ® solution.
  • Composol ® is an aqueous solution of sodium chloride, sodium gluconate, sodium acetate, potassium chloride, magnesium chloride hexahydrate and sodium citrate.
  • the salt solution therefore preferably contains from 0.45 to 0.60% by weight, particularly preferably 0.53% by weight, sodium chloride, from 0.45 to 0.55% by weight, particularly preferably 0.50% by weight .-%, sodium gluconate, from 0.20 to 0.25 wt .-%, particularly preferably 0.22 wt .-%, sodium acetate, from 0.03 to 0.04 wt .-%, particularly preferably 0.037 wt .-%.
  • the saline solution preferably has a pH of 7.0 to 7.4, more preferably 7.2.
  • the saline solution is Ringer's lactate.
  • the usual composition of Ringer's lactate is known to the person skilled in the art.
  • Ringer's lactate is an aqueous solution containing sodium chloride, potassium chloride, calcium chloride and sodium lactate.
  • Ringer lactate used according to the invention has a pH of 7.0 to 7.4, preferably 7.2.
  • the saline solution is phosphate buffered saline (PBS).
  • PBS phosphate buffered saline
  • the usual composition of PBS is known to the skilled person.
  • PBS used according to the invention has a pH of 7.0 to 7.4, preferably 7.2.
  • a component of the medium is an aqueous solution of at least one high molecular weight sugar.
  • High-molecular sugars according to the invention are, for example, dextran, also dextran solutions such as Perfadex, hydroxyethyl starch (HES) and derivatives of hydroxyethyl starch. Hydroxyethyl starch is preferably used according to the invention as high molecular weight sugar.
  • the glucose is added to the cell medium in solid form or as an aqueous solution.
  • the serum albumin is dissolved in cell medium or added in liquid form.
  • Serum albumin may be present as, for example, fetal calf serum (FCS), bovine serum albumin (BSA) or human serum albumin (HSA).
  • FCS fetal calf serum
  • BSA bovine serum albumin
  • HSA human serum albumin
  • Preferred according to the invention is human serum albumin, since this is approved for intravenous administration in humans.
  • serum albumin is replaced or supplemented with blood plasma.
  • Preferred according to the invention is human, preferably autologous, blood plasma.
  • plasma and / or HSA is used as a cryoprotector, preferably alone or in combination with other known cryoprotectants, in particular DMSO.
  • the medium used according to the invention comprises at least one further constituent, selected from amino acids, hormones, vitamins, provitamins and anti-apoptotic substances.
  • the method according to the invention is preferably carried out with an aforementioned cell medium having a pH of from 6.4 to 8, preferably from 7.0 to 7.4, in particular from 7.2.
  • the cells are preferably washed out of the cryopreservation in cell medium according to the invention, separated from the preservation medium and the cell medium according to the invention and then taken up in fresh cell medium according to the invention for storage.
  • the separation is preferably carried out by centrifuging.
  • the process is preferably carried out at a temperature of 2 to 40 ° C.
  • the cell medium preferably has a temperature of 2 to 40 ° C.
  • the method at 4 ° C is particularly preferably carried out and / or the medium used has a temperature of 4 0 C.
  • the method is performed at 10 0 C and / or the medium used has a temperature of 10 0 C.
  • the process is carried out at 25 0 C and / or the medium used has a temperature of 25 ° C.
  • the process is carried out at 37 ° C. and / or the medium used has a temperature of 37 ° C.
  • the invention of course also the special cell medium for the short-term storage of thawed, especially after cryopreservation, animal or human cells, in particular a liquid cell medium, which sodium chloride, sodium gluconate, sodium acetate, potassium chloride, magnesium chloride and sodium citrate, and glucose and serumalbumin and beyond or blood plasma, and wherein said components are dissolved in water.
  • a liquid cell medium which sodium chloride, sodium gluconate, sodium acetate, potassium chloride, magnesium chloride and sodium citrate, and glucose and serumalbumin and beyond or blood plasma, and wherein said components are dissolved in water.
  • a preferred cell medium consists of sodium chloride, sodium gluconate, sodium acetate, potassium chloride, magnesium chloride hexahydrate and sodium citrate, as well as glucose and, in addition, serum albumin and / or blood plasma, wherein said constituents are dissolved in water.
  • a particularly preferred cell medium contains from 0.45 to 0.60 wt% sodium chloride, from 0.45 to 0.55 wt% sodium gluconate, from 0.20 to 0.25 wt% sodium acetate, from 0, From 03 to 0.04% by weight of potassium chloride, from 0.025 to 0.035% by weight of magnesium chloride hexahydrate, and from 0.31 to 0.33% by weight of sodium citrate, as well as glucose and, in addition, serum albumin and / or blood plasma the said ingredients are dissolved in water.
  • the cell medium preferably contains 0.01 to 0.5% by weight of glucose, particularly preferably 0.1 to 0.2% by weight of glucose.
  • the cell medium preferably contains human serum albumin.
  • the human serum albumin can be replaced according to the invention by human, in particular autologous, blood plasma.
  • the medium contains from 0.5 to 50% by weight of serum albumin, more preferably from 3 to 5% by weight of serum albumin.
  • the medium contains from 0.5 to 50% by weight of blood plasma, more preferably from 3 to 5% by weight of blood plasma.
  • the cell medium according to the invention preferably has a pH of from 6.4 to 8, preferably from 7.0 to 7.4, in particular from 7.2.
  • the constituents of a cell medium according to the invention are legally approved for administration, in particular intravenous administration, into an animal organism, preferably into a human organism.
  • Also preferred according to the invention are combinations of embodiments of the method according to the invention and / or the cell medium according to the invention.
  • the invention also encompasses the use of the aforementioned cell medium according to the invention for the short-term storage of animal cells thawed after cryopreservation, in particular according to the method according to the invention.
  • Figure 1 Vitality of the stored cells (after cryopreservation) depending on the storage time, the storage medium used and the storage temperature, legend: "HH142”: number of individual cell preparation (batch), "warm”: storage temperature of 18 0 C, “cold “: Storage Stem temperature of 4 0 C, "HES”: Medium 2, “PBS”: Medium 5, “Custodiol ®”: Medium 1, “Composol® ®”: Medium 4, “Ringer's lactate”: Medium 3, “human plasma”: Medium 6 ;
  • FIG. 2 Recovery of the stored cells (before cryoconservation) as a function of the storage time, the storage medium used and the storage temperature, for a legend see FIG. 1;
  • FIG. 3 vitality of stored cells (after cryopreservation) as a function of the storage time, the storage medium used and the storage temperature, for a legend see FIG. 1;
  • FIG. 4 shows the number of living cells (LZZ) of stored cells (after cryopreservation) as a function of the storage time and the storage medium used, for a legend see FIG. 1;
  • FIG. 5 life cell count (LZZ) of stored cells (before cryoconservation) as a function of the storage time and the storage medium used, median over three individual cell preparations (batches); Legend see Figure 1;
  • FIG. 6 Life cell count (LZZ) of stored cells (before cryopreservation) as a function of the storage time and the storage medium used, median over four individual cell preparations (batches); Legend see Figure 1;
  • Figure 7 AC Recovery, living cell count (LZZ) of stored cells (before cryopreservation) as a function of the storage time and the storage medium used, median over 3 individual Cell preparations (batches);
  • Cryopreserved liver cells from special cryobuels / cryotubes were used. Since the number of available cryoprogs from an individual cell preparation was not sufficient for the scope of the study, they were only used to compare the results. All work steps were carried out under aseptic conditions. The cell suspension was completely thawed before addition of the cell medium. The thawing of the cryotubes took place independently of the thawing of the bags. The cell medium was added slowly to the cells presented.
  • Per pass (a thawed pouch) about 50 ml of cell medium were needed. Human blood plasma was thawed in a 37 ° C. water bath.
  • the yellow cap was removed from the pouch and the septum pierced with a Benjamix spike.
  • a 60 ml syringe was connected and 60 ml of cell suspension were removed.
  • liver cell culture There was a cell count by cell count and vitality and after each cell count a liver cell culture was created.
  • liver cells with a vitality greater than 40% were used before cryopreservation.
  • the experiment was repeated at least 3 times with different individual cell preparations (batches). At least 1 bag was thawed per batch. For comparison, the results of the thawing of cryotubes of the batches used were used.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

Die Erfindung betrifft Verfahren zur Lagerung von insbesondere humanen Zellen, Zellmedien für die Lagerung von Zellen, sowie die Verwendung solcher Zellmedien zur Lagerung von Zellen, wobei die Vitalität der Zellen während der Lagerung erhalten bleibt.

Description

Lagermedium für Zellen
Beschreibung
Die Erfindung betrifft Verfahren zur Lagerung von insbesondere humanen Zellen, Zellmedien für die Lagerung von Zellen, sowie die Verwendung solcher Zellmedien zur Lagerung von Zellen, wobei die Vitalität der Zellen während der Lagerung erhalten bleibt.
Die Kryokonservierung stellt eine häufig verwendete Methode zur Lagerung lebender Zellen über längere Zeiträume dar. Die Kryokon- servierungstechniken wurden im Laufe des letzten Jahrzehnts stetig weiterentwickelt und verbessert. Es besteht ein Bedürfnis Zellen auch kurzfristig zu lagern, zum Beispiel unmittelbar nach Isolierung aus einem Organ, vor dem Einfrieren oder nach oder während dem Auftauen der Zellen nach Kryokonservierung. Oft ist es erforderlich, dass die Zellen nach dieser Lagerung einem Organismus, insbeson- dere einem Menschen, wieder unmittelbar zugeführt werden sollen. Dieses Zuführen der Zellen kann beispielsweise durch eine intravenöse Applikation der Zellen erfolgen. Die Applikation von, besonders mittels Kryokonservierung, gelagerten Zellen in einen Menschen kann vor allem als klinische, insbesondere als therapeutische An- wendung genutzt werden. So können beispielsweise humane Leberzelltransplantate zur therapeutischen Anwendung intravenös appliziert werden. Jedoch stellt der Einfrierprozess und der Wiederauf- tauprozess und die vorausgehende beziehungsweise direkt anschließende in vitro Lagerung in Bezug auf die Vitalität und die Le- bendzellzahl der zu lagernden Zellen besonders bei der klinischen Anwendung weiterhin ein Problem dar. Der vorliegenden Erfindung liegt das technische Problem zugrunde, ein einfach herstellbares und möglichst preiswertes Zellmedium für die Lagerung von tierischen Zellen, bevorzugt von humanen Zellen, insbesondere von Leberzellen oder Leberzelltransplantaten, bereit- zustellen. Die Zellen sollen bevorzugt im Zusammenhang mit der Kryokonservierung vor dem Einfrieren und/oder nach dem Auftauen gelagert werden. Der vorliegenden Erfindung liegt daher auch das technische Problem zugrunde, ein Zellmedium bereitzustellen, dass ein kurzzeitiges Lagern von tierischen Zellen, bevorzugt von huma- nen Zellen, besonders bevorzugt von Leberzellen oder Leberzelltransplantaten, bei einem möglichst geringen Verlust der Vitalität und der Lebendzellzahl der Zellen erlaubt und somit eine Alternative zu bekannten Zellmedien darstellt.
Im Zusammenhang mit der Kryokonservierung sind Zellmedien zum Lagern und Wiederauftauen bekannt. Sie enthalten jedoch Bestandteile wie 5 bis 20 % fötales Kalbserum (FCS), die für eine Applikation, insbesondere eine intravenöse Applikation, in den Menschen gesetzlich nicht zugelassen sind, oder sogar ungeeignet sind. Der vorliegenden Erfindung liegt daher weiter das technische Problem zugrunde, ein Medium zur Verfügung zu stellen, dass bei einem geringen Verlust der Vitalität und der Lebendzellzahl von Zellen, bevorzugt von humanen Zellen, insbesondere von Leberzellen oder Leberzelltransplantaten, eine risikofreie Applikation der Zellen in ein Tier, insbesondere einen Menschen, erlaubt.
So lässt sich Custodiol® als Zellmedium zum Beispiel für die Lagerung besonders von aufgetauten, ursprünglich kryokonservierten Zellen wie Leberzellen erfolgreich einsetzen; es wurde als Konser- vierungslösung für die Organtransplantation von Ganzorganen entwickelt. Custodiol® ist jedoch für eine intravenöse Applikation beim Menschen gesetzlich nicht zugelassen. Der Erfindung liegt daher auch das technische Problem zugrunde, ein Zellmedium für die kurzzeitige Lagerung von Zellen, insbesondere im Zusammenhang mit der Kryokonservierung, zur Verfügung zu stellen, das für eine intravenöse Applikation beim Menschen zugelassen ist, und daher die Zellen beispielsweise nach dem Auftauen ohne aufwändige und die Lebendzellzahl vermindernde Waschschritte einem Menschen in diesem Zellmedium intravenös appliziert werden können.
Die vorliegende Erfindung löst das ihr zugrundeliegende technische Problem im Wesentlichen durch die Bereitstellung eines Verfahrens für die kurzzeitige Lagerung tierischer oder humaner Zellen gemäß der Patentansprüche. Bevorzugt wird ein Verfahren bereitgestellt, wobei die Zeüen in einem flüssigen Zeümedium, das eine Saiziö- sung, ausgewählt aus insbesondere einer Salzlösung enthaltend Natriumchlorid, Natriumglukonat, Natriumacetat, Kaliumchlorid, Magnesiumchlorid und Natriumeitrat, und/oder einer Salzlösung enthaltend Ringer-Lactat und/oder Phosphate-Buffered-Saline und/oder eine wässrige Lösung eines hochmolekularen Zuckers, insbesondere Hydroxyethylstärke, sowie Glucose und darüber hinaus Serumalbumin und/oder Blutplasma enthält, aufgenommen werden und in diesem Zellmedium gelagert werden.
In bevorzugten Ausführungsformen sind die tierischen Zellen Säuge- tier-Zellen. Es kann sich beispielsweise um porcine, bovine oder murine Zellen handeln. Besonders bevorzugt handelt es sich um humane Zellen. Unter Zellen sind erfindungsgemäß auch Zellsuspensio- nen und Zelltransplantate gemeint. Die Zellen können von einem Typ sein, es kann aber auch eine Zusammensetzung beziehungsweise Co-Kultur verschiedener Zelltypen eingesetzt werden.
Erfindungsgemäß bevorzugt handelt es sich bei den tierischen ZeI- len um Zellen zur therapeutischen Applikation. In einer weiteren bevorzugten Ausführungsform handelt es sich bei den tierischen Zellen um Zellen zur in vitro Kultivierung. Die tierischen Zellen können beispielsweise Hepatozyten, Pankreas Inseln, Chondrozyten, Knorpelzellen, Nervenzellen, Keratinozyten oder Lymphozyten sein. Am meisten bevorzugt handelt es sich bei den für die Lagerung in einem Zellmedium vorgesehenen Zellen um Leberzellen, insbesondere Hepatozyten.
Im Zusammenhang mit dieser Erfindung wird unter Leberzellen eine Mischung von Zellen vorwiegend bestehend aus Hepatozyten ver- standen. Sie können jedoch auch verschiedene Mengenanteile an Lymphozyten, Endothelzellen und weiteren nicht-parenchymalen Zellgruppen enthalten.
Das Auftauen und/oder Lagern von Thrombozyten, auch Blutplättchen genannt, ist von der Erfindung ausgenommen. Thrombozyten sind keine tierischen Zellen im Sinne der Erfindung.
Im Zusammenhang mit dieser Erfindung wird unter kurzzeitiger Lagerung eine in vitro Lagerung in einem erfindungsgemäßen Medium über einen Zeitraum bis 24 Stunden, besonders bis 10 Stunden, bevorzugt bis 5 Stunden, besonders bis 3 Stunden verstanden. Unter Kryokonservierung wird eine meist langfristige Lagerung von Zellen unterhalb von 0 0C, insbesondere bei -20 0C bis -200 0C verstanden. Das Einfrieren erfolgt in der Regel bei 1 °C/min.
Im Zusammenhang mit dieser Erfindung wird unter einem Zellmedi- um, auch Medium, Auftaumedium oder Nährmedium genannt, insbesondere eine flüssige wässrige Lösung verstanden. Das Zellmedium dient der in i/tfro-Lagerung lebender Zellen unter Beibehaltung einer möglichst hohen Lebendzellzahl, also einer möglichst geringen Sterberate der Zellen, sowie einer möglichst hohen Lebensfähigkeit be- ziehungsweise Vitalität, dem Fachmann auch als viability bekannt.
Erfindungsgemäß bevorzugt sind die Bestandteile eines erfindungsgemäß eingesetzten Zellmediums gesetzlich für die Applikation, insbesondere die intravenöse Applikation, in einen tierischen Organismus, bevorzugt in einen menschlichen Organismus, zugelassen. Erfindungsgemäß können die Zellen nach der Lagerung in einem erfindungsgemäßen Medium für eine klinische Anwendung, insbesondere einer therapeutischen Applikation, oder für in vitro Versuche verwendet werden.
Im Zusammenhang mit dieser Erfindung wird unter einer Salzlösung eine wässrige Lösung von einem oder mehreren Salzen verstanden. Eine erfindungsgemäß bevorzugte Salzlösung enthält Natriumchlorid, Natriumglukonat, Natriumacetat, Kaliumchlorid, Magnesiumchlo- rid und Natriumcitrat, wobei die Salze in Wasser gelöst sind. Das benutzte Wasser ist steriles, bevorzugt deionisiertes Wasser zur In- jektion. Eine erfindungsgemäß bevorzugte Salzlösung ist Composol® beziehungsweise eine der Zusammensetzung von Composol® entsprechende Lösung. Composol® ist eine wässrige Lösung von Natriumchlorid, Natriumglukonat, Natriumacetat, Kaliumchlorid, Magnesi- umchloridhexahydrat und Natriumeitrat. Sie enthält 173 mmol/l Natrium, 5 mmol/l Kalium, 1 ,5 mmol/l Magnesium, 98 mmol/l Chlorid, 10,9 mmol/l Citrat, 27 mmol/l Acetat und 23 mmol/l Glukonat, bevorzugt besteht sie daraus.
Erfindungsgemäß bevorzugt enthält die Salzlösung daher von 0,45 bis 0,60 Gew.-%, besonders bevorzugt 0,53 Gew.-%, Natriumchlorid, von 0,45 bis 0,55 Gew.-%, besonders bevorzugt 0,50 Gew.-%, Natriumglukonat, von 0,20 bis 0,25 Gew.-% , besonders bevorzugt 0,22 Gew.-%, Natriumacetat, von 0,03 bis 0,04 Gew.-% , besonders bevorzugt 0,037 Gew.-%, Kaliumchlorid, von 0,025 bis 0,035 Gew.-%, besonders bevorzugt 0,031 Gew.-%, Magnesiumchloridhexahydrat, und von 0,31 bis 0,33 Gew.-% , besonders bevorzugt 0,32 Gew.-%, Natriumeitrat, bevorzugt besteht sie daraus. Die Salzlösung hat bevorzugt einen pH-Wert von 7,0 bis 7,4, besonders bevorzugt von 7,2.
In einer weiteren Ausführungsform ist die Salzlösung Ringer-Lactat. Die übliche Zusammensetzung von Ringer-Lactat ist dem Fachmann bekannt. Ringer-Lactat ist eine wässrige Lösung enthaltend Natriumchlorid, Kaliumchlorid, Calciumchlorid und Natrium-Lactat. Erfindungsgemäß eingesetztes Ringerlactat hat einen pH-Wert von 7,0 bis 7,4, bevorzugt von 7,2.
In einer weiteren Ausführungsform ist die Salzlösung Phosphat- gepufferte-Saline (PBS). Die übliche Zusammensetzung von PBS ist dem Fachmann bekannt. Erfindungsgemäß verwendetes PBS hat einen pH-Wert von 7,0 bis 7,4, bevorzugt von 7,2.
In einer weiteren Ausführungsform ist Bestandteil des Mediums eine wässrige Lösung mindestens eines hochmolekularen Zuckers. Erfin- dungsgemäße hochmolekulare Zucker sind beispielsweise Dextran, auch Dextranlösungen wie Perfadex, Hydroxyethylstärke (HES) und Derivate der Hydroxyethylstärke. Erfindungsgemäß bevorzugt wird als hochmolekularer Zucker Hydroxyethylstärke verwendet.
Erfindungsgemäß wird die Glucose dem Zellmedium in fester Form oder als wässrige Lösung zugegeben.
Erfindungsgemäß wird das Serumalbumin in Zellmedium gelöst oder in flüssiger Form zugegeben. Serumalbumin kann beispielsweise als fötales Kälberserum (FCS), bovines Serumalbumin (BSA) oder humanes Serumalbumin (HSA) vorliegen. Erfindungsgemäß bevorzugt ist humanes Serumalbumin, da dieses für die intravenöse Applikation im Menschen zugelassen ist.
In einer weiteren Ausführungsform ist Serumalbumin durch Blutplasma ersetzt oder ergänzt. Erfindungsgemäß bevorzugt ist humanes, bevorzugt autologes, Blutplasma. Besonders wird Plasma und/oder HSA als Kryoprotektor, bevorzugt allein oder in Verbindung mit anderen bekannten Kryoprotektoren, insbesondere DMSO, eingesetzt.
In weiteren bevorzugten Ausführungsformen enthält das erfindungsgemäß eingesetzte Medium mindestens einen weiteren Bestandteil, ausgewählt aus Aminosäuren, Hormonen, Vitaminen, Provitaminen und antiapoptotisch wirksamen Substanzen.
Die Bestandteile der Medienzusammensetzung wird der Fachmann je nach Einsatzgebiet nach seinem Fachwissen auswählen, nach- dem er durch die erfindungsgemäße Lehre dazu angehalten wird, sie entsprechend der Erfindung und in den erfindungemäßen Konzentrationen einzusetzen.
Das erfindungsgemäße Verfahren wird bevorzugt mit einem vorgenannten Zellmedium mit einem pH-Wert von 6,4 bis 8, bevorzugt von 7,0 bis 7,4, insbesondere von 7,2 durchgeführt.
Bevorzugt werden die Zellen nach dem Auftauen aus der Kryokonservierung in erfindungsgemäßem Zellmedium gewaschen, vom Konservierungsmedium und dem erfindungsgemäßem Zellmedium abgetrennt und dann in frischem erfindungsgemäßem Zellmedium zur Lagerung aufgenommen. Die Abtrennung erfolgt bevorzugt durch Abzentrifugieren.
Das Verfahren wird bevorzugt bei einer Temperatur von 2 bis 40 °C durchgeführt. Das Zellmedium hat bevorzugt eine Temperatur von 2 bis 40 °C. Besonders bevorzugt wird das Verfahren bei 4 °C durch- geführt und/oder das verwendete Medium hat eine Temperatur von 4 0C. In einer weiteren bevorzugten Variante wird das Verfahren bei 10 0C durchgeführt und/oder das verwendete Medium hat eine Temperatur von 10 0C. In einer weiteren besonders bevorzugten Variante wird das Verfahren bei 25 0C durchgeführt und/oder das verwendete Medium hat eine Temperatur von 25 °C. In einer weiteren besonders bevorzugten Variante wird das Verfahren bei 37 0C durchgeführt und/oder das verwendete Medium hat eine Temperatur von 37 0C.
Gegenstand der Erfindung ist selbstverständlich auch das spezielle Zellmedium für die kurzzeitige Lagerung von, insbesondere nach Kryokonservierung aufgetauten, tierischen oder humanen Zellen, insbesondere ein flüssiges Zellmedium, welches Natriumchlorid, Natriumglukonat, Natriumacetat, Kaliumchlorid, Magnesiumchlorid und Natriumeitrat, sowie Glucose und darüber hinaus Serumalbumin und/oder Blutplasma enthält, und worin die genannten Bestandteile in Wasser gelöst sind.
Ein bevorzugtes Zellmedium besteht aus Natriumchlorid, Natriumglukonat, Natriumacetat, Kaliumchlorid, Magnesiumchloridhexa- hydrat und Natriumeitrat, sowie Glucose und darüber hinaus Serumalbumin und/oder Blutplasma, wobei die genannten Bestandteile in Wasser gelöst sind. Ein besonders bevorzugtes Zellmedium enthält von 0,45 bis 0,60 Gew.-% Natriumchlorid, von 0,45 bis 0,55 Gew.-% Natriumglukonat, von 0,20 bis 0,25 Gew.-% Natriumacetat, von 0,03 bis 0,04 Gew.-% Kaliumchlorid, von 0,025 bis 0,035 Gew.-% Magne- siumchloridhexahydrat, und von 0,31 bis 0,33 Gew.-% Natriumeitrat, sowie Glucose und darüber hinaus Serumalbumin und/oder Blutplasma, wobei die genannten Bestandteile in Wasser gelöst werden.
Bevorzugt enthält das Zellmedium 0,01 bis 0,5 Gew-% Glucose, besonders bevorzugt von 0,1 bis 0,2 Gew-% Glucose.
Erfindungsgemäß bevorzugt enthält das Zellmedium Humanserum- albumin. Das Humanserumalbumin kann erfindungsgemäß durch humanes, insbesondere autologes, Blutplasma ersetzt werden. In einer bevorzugten Ausführungsform enthält das Medium von 0,5 bis 50 Gew-% Serumalbumin, besonders bevorzugt von 3 bis 5 Gew-% Serumalbumin. In einer anderen bevorzugten Ausführungsform enthält das Medium von 0,5 bis 50 Gew-% Blutplasma, besonders be- vorzugt von 3 bis 5 Gew-% Blutplasma.
Das erfindungsgemäße Zellmedium hat vorzugsweise einen pH-Wert von 6,4 bis 8, bevorzugt von 7,0 bis 7,4, insbesondere von 7,2.
Erfindungsgemäß bevorzugt sind die Bestandteile eines erfindungsgemäßen Zellmediums gesetzlich für die Applikation, insbesondere die intravenöse Applikation, in einen tierischen Organismus, bevorzugt in einen menschlichen Organismus, zugelassen.
Erfindungsgemäß bevorzugt sind auch Kombinationen erfindungsgemäßer Ausführungsformen des erfindungsgemäßen Verfahrens und/oder des erfindungsgemäßen Zellmediums.
Die Erfindung umfasst auch die Verwendung des vorgenannten erfindungsgemäßen Zellmediums zur kurzzeitigen Lagerung von nach Kryokonservierung aufgetauten tierischen Zellen, insbesondere nach dem erfindungsgemäßen Verfahren.
Die Figuren zeigen:
Figur 1 : Vitalität der gelagerten Zellen (nach Kryokonservierung) in Abhängigkeit von der Lagerungszeit, dem verwendeten Lagerungsmedium und der Lagerungstemperatur, Legende: „HH142": Nummer der individuellen Zellpräparation (Charge), „warm":Lagerungstemperatur von 18 0C, „kalt": Lagerungstem- peratur von 4 0C, „HES": Medium 2, „PBS": Medium 5, „Custodiol®": Medium 1 , „Composol®": Medium 4, „RingerLactat": Medium 3, „humanes Plasma": Medium 6;
Figur 2: Wiederfindung der gelagerten Zellen (vor Kryokonser- vierung) in Abhängigkeit von der Lagerungszeit, dem verwendeten Lagerungsmedium und der Lagerungstemperatur, Legende siehe Figur 1 ;
Figur 3: Vitalität gelagerter Zellen (nach Kryokonservierung) in Abhängigkeit von der Lagerungszeit, dem verwendeten Lagerungs- medium und der Lagerungstemperatur, Legende siehe Figur 1 ;
Figur 4: Lebendzellzahl (LZZ) gelagerter Zellen (nach Kryokonservierung) in Abhängigkeit von der Lagerungszeit und dem verwendeten Lagerungsmedium, Legende siehe Figur 1 ;
Figur 5: Lebendzellzahl (LZZ) gelagerter Zellen (vor Kryokon- servierung) in Abhängigkeit von der Lagerungszeit und dem verwendeten Lagerungsmedium, Median über drei individuelle Zellpräparationen (Chargen); Legende siehe Figur 1 ;
Figur 6: Lebendzellzahl (LZZ) gelagerter Zellen (vor Kryokonservierung) in Abhängigkeit von der Lagerungszeit und dem verwen- deten Lagerungsmedium, Median über vier individuelle Zellpräparationen (Chargen); Legende siehe Figur 1 ;
Figur 7 A-C: Wiederfindung, Lebendzellzahl (LZZ) gelagerter Zellen (vor Kryokonservierung) in Abhängigkeit von der Lagerungszeit und dem verwendeten Lagerungsmedium, Median über 3 individuelle Zellpräparationen (Chargen); Figur 7C: Vergleich mit Custodiol (=100%) , Mittelwert über vier Lagenrungszeiten, Median über 3 individuelle Zellpräparationen (Chargen), Legende siehe Figur 1.
Beispiel
Es wurden kryokonservierte Leberzellen aus speziellen Kryobeu- teln/Kryoröhrchen verwendet. Da die Anzahl der vorhandenen Kryo- röhrchen aus einer individuellen Zellpräparation für den Umfang der Studie nicht ausreichend waren, wurden sie nur zum Vergleich der Ergebnisse hinzugezogen. Alle Arbeitsschritte wurden unter asepti- sehen Bedingungen durchgeführt. Die Zellsuspension war vor Zugabe des Zellmediums vollständig aufgetaut. Das Auftauen der Kryo- röhrchen erfolgte zeitlich unabhängig vom Auftauen der Beutel. Das Zellmedium wurde langsam zu den vorgelegten Zellen gegeben.
Um vergleichbare Ergebnisse zu erzielen, wurden die verschiedenen Versuche parallel von mindestens 2, gegebenenfalls 3 Personen durchgeführt.
Folgende Auftaumedien wurden hergestellt:
Medium 1 : Custodiol® (Vergleichsbeispiel)
Medium 2: Hydroxyethylstärke (HES) + 1 g/l Glucose + 4% HSA (erfindungsgemäß)
Medium 3: Ringer-Lactat + 1 g/l Glucose + 4% HSA (erfindungsgemäß) Medium 4: Composol® + 1 g/l Glucose + 4% HSA (erfindungsge- mäß)
Medium 5: Phosphatgepufferte Saline (PBS) + 1 g/l Glucose + 4% HAS (erfindungsgemäß)
Medium 6: humanes Blutplasma (Vergleichsbeispiel)
Pro Durchlauf (ein aufgetauter Beutel) wurden ca. je 50 ml Zellmedium benötigt. Humanes Blutplasma wurde im 37 0C warmen Wasserbad aufgetaut.
Bei drei Versuchen wurden die Medien im 37 0C warmen Wasserbad für mindestens 15 min temperiert (= „warm"). Bei 2 Versuchen wurden die Zellmedien im Kühlschrank für mindestens 15 min. gekühlt (= „kalt").
Sechs entsprechend den Lösungen etikettierte 50 ml-Röhrchen wurden vorgelegt und bei Raumtemperatur aufbewahrt.
Es wurde bei „warmen" Versuchen für 5 min bei 18 0C und 50 g zentrifugiert und bei „kalten" Versuchen für 5 Minuten bei 4 0C und 50 g zentrifugiert.
Kryobeutel wurden vorsichtig aus der Aluminiumkassette herausgenommen. Die Kryosuspension wurde 2 bis 5 min unter ständigem Schwenken aufgetaut bis keine Eiskristalle mehr zu sehen waren. Der gesamte Vorgang dauerte nicht länger als 5 min.
Die gelbe Kappe wurde vom Beutel entfernt und das Septum mit Anstechdorn eines Benjamix durchstochen. An den Benjamix des Kry- obeutels wurde eine 60 ml Spritze angeschlossen und 60 ml Zellsuspension wurden entnommen.
Jeweils 10 ml Zellsuspension wurden in den sechs vorbereiteten Röhrchen überführt. Dazu wurden jeweils 40 ml von den entspre- chenden Zellmedien langsam zugegeben. Der gesamte Vorgang dauerte nicht länger als 5 min.
Nach der Zentrifugation erfolgte das Waschen der Zellen. Es wurden die Überstände mit Pasteurpipette abgesaugt. Die Zellpellets wurden durch vorsichtiges Schwenken in 5 ml des entsprechenden Zellme- diums vollständig resuspendiert.
Es erfolgte eine Zellzählung nach Zellzahl und Vitalität und nach jeder Zellzählung wurde eine Leberzell-Kultur angelegt.
Für eine Gesarntiagerdauer von 3 Stunden wurden jeweils nach 60 min die beiden letztgenannten Schritte wiederholt.
Es wurden nur Leberzellen mit einer Vitalität größer als 40% vor der Kryokonservierung verwendet. Der Versuch wurde mindestens 3 mal mit unterschiedlichen individuellen Zellpräparationen (Chargen) wiederholt. Dabei wurde pro Charge mindestens 1 Beutel aufgetaut. Zum Vergleich wurden die Ergebnisse vom Auftauen von Kryoröhr- chen der verwendeten Chargen herangezogen.
Es wurden vier individuelle Zellpräparationen (Chargen) hinsichtlich des Einflusses der Auftaulösung getestet. Die Ergebnisse wurden hinsichtlich der Parameter Vitalität und Lebendzellzahl (LZZ) nach Auftauen sowie Vitalitäts- und Lebendzeilzahlerhalt bei Lagerung in Suspension getestet. Die Temperatur des Mediums und für die Zentrifugation wurde bei Leberzelltransplantaten auf 4 0C festgelegt. Der Versuch mit Charge HH 142 wurde einmal „warm" durchgeführt und dann „kalt" wiederholt (siehe Figur 1 und Figur 2). Für die weite- re Auswertung wurden die Mittelwerte von beiden Versuchen genommen und als HH142 bezeichnet.
Die einzelnen Ergebnisse sind in den Figuren 3 und 4 dargestellt.
Um eine chargenunabhängige Auswertung zu gewährleisten, wurde der Parameter Wiederfindung der Lebendzellzahl bei der Lagerung in den getesteten Lösungen definiert. Dieser wurde auf zwei verschiedenen Ausgangspunkte bezogen. Zum einen die Wiederfindung bezogen auf die Lebendzellzahl vor Einfrieren (Figur 5a ). Zum anderen die Wiederfindung bezogen auf die Lebendzellzahl nach Waschen (Stunde 0 in spezifischen Lagermedium) (Figur 5b). Zum Vergleich der fünf Lösungen wurden Medianwerte für die genannten Parameter aus den drei getesteten Chargen berechnet und in Figur 5 graphisch dargestellt.
Die beiden ausgewählten Lösungen - Composol® und HES - wurden zusätzlich anhand der Medianwerte von vier Chargen ausgewer- tet und in Figur 6 graphisch dargestellt:
Für eine bessere Analyse der dargestellten Ergebnisse wurde folgende Annährung gemacht. Der Parameter Wiederfindung der eingefrorenen LZZ wurde beim Custodiol® 100% gesetzt. Für die getesteten fünf Ansätze (Vergleichsbeispiel/erfindungsgemäße Beispiele) wurde die prozentuale Abweichung dieses Parameters im Vergleich mit Custodiol® berechnet (siehe Figur 7a und Figur 7b). Direkt nach dem Waschen der Zellen zeigten drei der Lösungen (PBS, Composol® und HES) eine vergleichbare (Übereinstimmung größer 80%) mit Custodiol® hinsichtlich des Parameters Wiederfindung der LZZ. Dabei zeigte Composol® sogar bessere Ergebnisse als Custodiol® (Wiederfindung größer 100%). Während nach 1 h PBS die besten Ergebnisse aufwies zeigten Composol® und humanes Plasma nach 2 Stunden wiederum etwa 10% bessere mediane Ergebnisse als Custodiol®.
Zum weiteren Vergleich wurde eine weitere Auswertung durchge- führt. Für jede Lösung wurde der Mittelwert aus allen 4 Zeitpunkten berechnet (Stunde 0 bis 3, Figur 7c).
Unabhängig von Zeitvorlauf des Versuchs zeigten HES und Ringer- Lactat ca. 20% Verlust der LZZ im Vergleich mit Custodiol®, wobei PBS, Composol® und humanes Plasma vergleichbare (Abweichung kleiner 10%) Ergebnisse wie Custodiol® zeigten.

Claims

Patentansprüche
1. Verfahren zur kurzzeitigen Lagerung von tierischen Zellen, wobei die Zellen in einem flüssigen Zellmedium enthaltend
a) eine Salzlösung, ausgewählt aus
- einer Salzlösung insbesondere enthaltend Natriumchlorid, Natriumglukonat, Natriumacetat, Kaliumchlorid, Magnesiumchlorid und Natriumeitrat,
- Ringer-Lactat, und
- Phosphat-gepufferte Saline (PBS),
und/oder eine wässrige Lösung eines hochmolekularen
Zucker, insbesondere Hydroxyethylstärke,
b) Glucose und
c) Serumalbumin und/oder Blutplasma
aufgenommen werden und in diesem Zellmedium gelagert werden.
2. Verfahren nach Anspruch 1 , wobei die Zellen kryokonser- vierte Zellen sind und aufgetaut werden und nach dem Auftauen in dem Zellmedium gewaschen werden, vom Zellmedium abgetrennt werden und dann in frischem ZeII- medium zur Lagerung aufgenommen werden.
3. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei das Zellmedium eine Temperatur von 2 bis 40 0C hat.
4. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei es sich bei den Zellen um Leberzellen handelt.
5. Verfahren nach Anspruch 4, wobei es sich bei den Zellen um Hepatozyten handelt.
6. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei es sich bei den Zellen um Säugetier-Zellen handelt.
7. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei es sich bei den Zellen um humane Zellen handelt.
8. Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei es sich bei den Zellen um Zellen zur therapeutischen Applikation handelt.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7, wobei es sich um Zellen zur in vitro Kultivierung handelt.
10. Verwendung eines Zellmediums wie in Anspruch 1 charakterisiert zur kurzzeitigen Lagerung von tierischen Zellen, insbesondere nach dem Verfahren nach einem der An- Sprüche 1 bis 9.
11. Zellmedium für die kurzzeitige Lagerung tierischer Zellen, wobei das Zellmedium a) Natriumchlorid, Natriumglukonat, Natriumacetat, Kaliumchlorid, Magnesiumchlorid und Natriumeitrat,
b) Glucose und
c) Serumalbumin und/oder Blutplasma
in Wasser gelöst enthält.
12. Zellmedium nach Anspruch 1 1 , wobei das Serumalbumin Humanserumalbumin ist.
13. Zellmedium nach einem der Ansprüche 11 oder 12, wobei das Blutplasma humanes Blutplasma ist.
14. Zellmedium nach einem der Ansprüche 11 bis 13, wobei das Zellmedium von 0,45 bis 0,60 Gew.-% Natriumchlorid, von 0,45 bis 0,55 Gew.-% Natriumglukonat, von 0,20 bis 0,25 Gew.-% Natriumacetat, von 0,03 bis 0,04 Gew.-% Kaliumchlorid, von 0,025 bis 0,035 Gew.-% Magnesiumchloridhexahydrat, und von 0,31 bis 0,33 Gew.-% Natriumeitrat enthält.
15. Zellmedium nach einem der Ansprüche 1 1 bis 14, wobei das Zellmedium von 0,01 bis 0,5 Gew.-%, bevorzugt 0,1 bis 0,2 Gew.-%, Glucose enthält.
16. Zellmedium nach einem der Ansprüche 1 1 bis 15, wobei das Zellmedium von 0,5 bis 50 Gew.-%, bevorzugt 3 bis 5 Gew.-%, Serumalbumin enthält.
17. Zellmedium nach einem der Ansprüche 11 bis 16, wobei das Zellmedium von 0,5 bis 50 Gew.-%, bevorzugt 3 bis 5 Gew.-%, Blutplasma enthält.
18. Zellmedium nach einem der Ansprüche 1 1 bis 17, wobei das Zellmedium einen pH-Wert von 6,4 bis 8, bevorzugt von 7,0 bis 7,4, hat.
19. Zellmedium nach einem der Ansprüche 11 bis 18, enthaltend mindestens einen weiteren Bestandteil, ausgewählt aus: Aminosäuren, Hormonen, Vitaminen, Provitaminen und antiapoptotisch wirksamen Substanzen
PCT/EP2006/006401 2005-07-01 2006-06-30 Lagermedium für zellen Ceased WO2007003382A2 (de)

Priority Applications (12)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CA002613709A CA2613709A1 (en) 2005-07-01 2006-06-30 Storage medium for cells
US11/994,231 US20080199956A1 (en) 2005-07-01 2006-06-30 Storage Medium For Cells
HK08108284.0A HK1117346B (zh) 2005-07-01 2006-06-30 细胞保藏介质
EP06754641.6A EP1901605B1 (de) 2005-07-01 2006-06-30 Lagermedium für zellen
BRPI0613170A BRPI0613170B1 (pt) 2005-07-01 2006-06-30 meios de armazenamento para células
CN2006800309540A CN101247720B (zh) 2005-07-01 2006-06-30 细胞贮藏介质
SI200631807T SI1901605T1 (sl) 2005-07-01 2006-06-30 Medij za shranjevanje celic
DK06754641.6T DK1901605T3 (da) 2005-07-01 2006-06-30 Opbevaringsmedium til celler
JP2008518747A JP2009500006A (ja) 2005-07-01 2006-06-30 細胞貯蔵培地
PL06754641T PL1901605T3 (pl) 2005-07-01 2006-06-30 Podłoże do przechowywania komórek
ES06754641.6T ES2477867T3 (es) 2005-07-01 2006-06-30 Medio de almacenamiento para células
IL188461A IL188461A (en) 2005-07-01 2007-12-27 Cell medium and methods for storage of animal cells

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE102005031532A DE102005031532A1 (de) 2005-07-01 2005-07-01 Lagermedium für Zellen
DE102005031532.1 2005-07-01

Publications (3)

Publication Number Publication Date
WO2007003382A2 true WO2007003382A2 (de) 2007-01-11
WO2007003382A8 WO2007003382A8 (de) 2007-05-31
WO2007003382A3 WO2007003382A3 (de) 2007-12-27

Family

ID=37490279

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/EP2006/006401 Ceased WO2007003382A2 (de) 2005-07-01 2006-06-30 Lagermedium für zellen

Country Status (17)

Country Link
US (1) US20080199956A1 (de)
EP (1) EP1901605B1 (de)
JP (1) JP2009500006A (de)
CN (1) CN101247720B (de)
BR (1) BRPI0613170B1 (de)
CA (1) CA2613709A1 (de)
CY (1) CY1115786T1 (de)
DE (1) DE102005031532A1 (de)
DK (1) DK1901605T3 (de)
ES (1) ES2477867T3 (de)
IL (1) IL188461A (de)
PL (1) PL1901605T3 (de)
PT (1) PT1901605E (de)
RU (1) RU2396748C2 (de)
SI (1) SI1901605T1 (de)
WO (1) WO2007003382A2 (de)
ZA (1) ZA200800039B (de)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2184263A1 (de) 2008-11-06 2010-05-12 Unilever N.V. Wasseraufbereitungsvorrichtung
CN102186338A (zh) * 2008-08-20 2011-09-14 人类起源公司 改进的细胞组合物及制备所述组合物的方法
CZ306800B6 (cs) * 2016-05-13 2017-07-12 Ústav experimentální medicíny AV ČR, v. v. i. Prostředek pro uchování, transport a aplikaci kmenových buněk
US10273456B2 (en) 2011-04-07 2019-04-30 Fenwal, Inc. Automated methods and systems for washing platelet concentrates
US10358627B2 (en) 2007-12-20 2019-07-23 Fenwal, Inc. Medium and methods for the storage of platelets

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101919378B (zh) * 2010-08-06 2013-09-11 青岛奥克生物开发有限公司 一种直接静脉应用的间充质干细胞冻存液
DK2938722T3 (da) * 2012-12-31 2022-02-14 Janssen Biotech Inc Suspension og klyngedannelse af humane pluripotente celler til differentiering til endokrine pankreasceller
JP6779616B2 (ja) * 2015-12-25 2020-11-04 富士ソフト株式会社 Ｎｋｔ細胞活性化医薬組成物、その製造方法、及び抗原提示細胞の保存方法
CN107047536A (zh) * 2016-11-22 2017-08-18 浙江三誉生物科技有限公司 一种细胞保存液及其应用
CN108235981B (zh) * 2016-12-23 2021-07-23 西比曼生物科技（香港）有限公司 一种可临床使用的细胞冻存液
CN106665560B (zh) * 2017-01-16 2021-02-05 哈尔滨医科大学 一种直接静脉回输的免疫细胞冻存液及其应用
CN106577637A (zh) * 2017-01-20 2017-04-26 北京天晟宇生物科技有限公司 人羊膜间充质干细胞的保存方法
CN107912419A (zh) * 2017-10-11 2018-04-17 重庆金时代生物技术有限公司 一种人外周血单个核细胞的冻存液及冻存方法
CN110402919B (zh) * 2019-07-17 2021-09-28 西北农林科技大学 环腺苷酸用于制备山羊精子冷冻保存用稀释液的应用及制备方法
WO2022133061A1 (en) * 2020-12-17 2022-06-23 Artiva Biotherapeutics, Inc. Infusion ready cryopreservation compositions

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1149900A1 (de) 2000-04-26 2001-10-31 Wolfgang Dr. Thasler Lösung zur Konservierung menschlicher Leberzellen, konservierte Leberzelle, und ihre Verwendung

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH08217601A (ja) * 1994-05-16 1996-08-27 Seitai Kagaku Kenkyusho:Kk 生物組織保存方法および潅流液
JPH08325101A (ja) * 1995-05-31 1996-12-10 Seitai Kagaku Kenkyusho:Kk 動物組織保存方法
US6043092A (en) * 1996-03-18 2000-03-28 University Of Pittsburgh Cell culture media for mammalian cells
RU2140152C1 (ru) * 1997-03-13 1999-10-27 Иван Антонович Мазур Консервирующий раствор "б-2" для трансплантатов
US5955257A (en) * 1997-10-21 1999-09-21 Regents Of The University Of Minnesota Infusible grade short-term cell storage medium for mononuclear cells
JP5230042B2 (ja) * 1999-06-02 2013-07-10 株式会社ビーエムジー 動物の細胞または臓器の保存剤およびその保存方法。
US7112576B1 (en) * 1999-12-10 2006-09-26 Regents Of The University Of Minnesota Compositions and methods for cryopreservation of peripheral blood lymphocytes
AU2001260658A1 (en) * 2000-06-01 2001-12-11 Hokkaido Technology Licensing Office Co., Ltd. Method of preparing small hepatocytes preservable in freeze-dried state and method of preserving the same in freeze-dried state
JP3877978B2 (ja) * 2001-05-18 2007-02-07 独立行政法人科学技術振興機構 細胞保存方法
JP2004307404A (ja) * 2003-04-08 2004-11-04 Nipro Corp 人工酸素運搬体を含む医薬組成物

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1149900A1 (de) 2000-04-26 2001-10-31 Wolfgang Dr. Thasler Lösung zur Konservierung menschlicher Leberzellen, konservierte Leberzelle, und ihre Verwendung

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MARSH D.C. ET AL.: "Cryobiology", vol. 27, February 1990, ACADEMIC PRESS INC., article "Hypothermic Preservation of Hepatocytes, 11. Importance of Ca2+ and Amino Acids", pages: 1 - 8

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10358627B2 (en) 2007-12-20 2019-07-23 Fenwal, Inc. Medium and methods for the storage of platelets
CN102186338A (zh) * 2008-08-20 2011-09-14 人类起源公司 改进的细胞组合物及制备所述组合物的方法
EP2184263A1 (de) 2008-11-06 2010-05-12 Unilever N.V. Wasseraufbereitungsvorrichtung
US10273456B2 (en) 2011-04-07 2019-04-30 Fenwal, Inc. Automated methods and systems for washing platelet concentrates
CZ306800B6 (cs) * 2016-05-13 2017-07-12 Ústav experimentální medicíny AV ČR, v. v. i. Prostředek pro uchování, transport a aplikaci kmenových buněk

Also Published As

Publication number Publication date
BRPI0613170B1 (pt) 2018-10-09
DK1901605T3 (da) 2014-08-18
EP1901605B1 (de) 2014-05-14
CN101247720A (zh) 2008-08-20
ES2477867T3 (es) 2014-07-18
CN101247720B (zh) 2012-06-06
US20080199956A1 (en) 2008-08-21
PL1901605T3 (pl) 2014-10-31
WO2007003382A8 (de) 2007-05-31
ZA200800039B (en) 2009-04-29
IL188461A (en) 2011-09-27
WO2007003382A3 (de) 2007-12-27
PT1901605E (pt) 2014-07-15
JP2009500006A (ja) 2009-01-08
HK1117346A1 (en) 2009-01-16
BRPI0613170A2 (pt) 2010-12-21
RU2008103820A (ru) 2009-08-10
RU2396748C2 (ru) 2010-08-20
DE102005031532A1 (de) 2007-01-04
EP1901605A2 (de) 2008-03-26
SI1901605T1 (sl) 2014-09-30
CY1115786T1 (el) 2017-01-25
CA2613709A1 (en) 2007-01-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69509913T2 (de) Verlängerte konservierung von blutplättchen
EP1901605B1 (de) Lagermedium für zellen
DE68921945T2 (de) Verfahren zur Lyophilisierung von Zellen Lyophilisierungsmedien und Verfahren zur Wiederherstellung von lyophilisierten Zellen.
DE68906458T2 (de) Lyophilisation von erythrozyten und dafuer brauchbare mittel.
DE69126861T2 (de) Lösung zur aufbewahrung roter blutzellen
DE69810755T2 (de) Verfahren und zusammensetzungen zur herstellung getrockneter, lagerungsstabiler blutplättchen
DE3843958C2 (de) Zusammensetzung für die Konservierung und Lagerung eines Organtransplantats und Verfahren zu dessen Konservierung
DE69129294T2 (de) Zusammensetzung zur verbesserung der lebenserhaltung biologischer materialien
DE69114485T2 (de) Definierte medizinische Lösung ohne Serum und deren Verwendung.
DE69216615T2 (de) Entwässerte Blutzellen und Verfahren zur Herstellung
DE4342728A1 (de) Verfahren, Apparate und Perfusionslösungen zur Konservierung explantierter Organe
DE69028144T2 (de) Verfahren zum Lagern von Erythrozyten
WO2010025859A2 (de) Stabilisierung von zellen durch ionische flüssigkeiten
DE69634499T2 (de) Verwendungsmethoden von einkernigen phagozyten zur förderung der axonalen regeneration
EP0712574A2 (de) Verwendung von D,L-alpha-Liponsäure, ihren Enantiomeren, und/oder ihren Derivaten als Zusatz bei Erythrozyten-Flüssig und -Kryokonserven für homologe und autologe Erythrozytenkonzentrate
JP2024098028A (ja) 細胞および／または組織の輸送用組成物および／または凍結保存用組成物
DE102021116694B4 (de) Wässrige Lösung zur Zellkonservierung
EP2205066B1 (de) Transparentes kältegel
DE2016269C3 (de) Verfahren zur Verlängerung der Lebensfähigkeit von Lymphocyten, die vom Blut abgetrennt worden sind
DE2551017A1 (de) Verfahren zur herstellung von urokinase
KR101746025B1 (ko) 아스타잔틴 또는 커큐민을 포함하는 돼지 정자 동결보존용 조성물
Pinaffi et al. Effect of platelet rich plasma lysate and fibroblast growth factor 2 on stallion sperm motility
DE2016274B2 (de) Verfahren zur Abtrennung von Leukozyten vom Gesamtblut
BR102017024173A2 (pt) Solução de água de coco desidratada, processo de obtenção, e seu uso para preservação de órgãos e tecidos
HK1117346B (zh) 细胞保藏介质

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: MX/a/2007/016107

Country of ref document: MX

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2006754641

Country of ref document: EP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2008518747

Country of ref document: JP

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2613709

Country of ref document: CA

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 2008103820

Country of ref document: RU

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 200680030954.0

Country of ref document: CN

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 11994231

Country of ref document: US

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2006754641

Country of ref document: EP

ENP Entry into the national phase

Ref document number: PI0613170

Country of ref document: BR

Kind code of ref document: A2

Effective date: 20080102