WO2009141470A1 - Solución acuosa para la preservación de tejidos y órganos - Google Patents

Solución acuosa para la preservación de tejidos y órganos Download PDF

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WO2009141470A1
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preservation
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organs
livers
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Carmen Peralta Uroz
Joan ROSELLÓ-CATAFAU
Ismail Ben Mosbah
Ramón BARTRONS BACH
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Consejo Superior de Investigaciones Cientificas CSIC
Universitat de Barcelona UB
Institut d'Investigacions Biomèdiques August Pi i Sunyer
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Consejo Superior de Investigaciones Cientificas CSIC
Universitat de Barcelona UB
Institut d'Investigacions Biomèdiques August Pi i Sunyer
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    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/10—Preservation of living parts
    • A—HUMAN NECESSITIES
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    • A01N1/10—Preservation of living parts
    • A01N1/12—Chemical aspects of preservation
    • A01N1/122—Preservation or perfusion media
    • A01N1/126—Physiologically active agents, e.g. antioxidants or nutrients

Definitions

  • Aqueous solution for the preservation of tissues and organs for the preservation of tissues and organs.
  • This invention is related to an aqueous solution to preserve tissues and organs, the use thereof, particularly, to preserve marginal organs, as well as a method to preserve tissues and organs.
  • Organ transplantation is the treatment of choice for patients suffering from chronic diseases in the terminal phase.
  • transplant techniques Despite advances in the improvement of transplant techniques, the lesion suffered by the graft during the period of ischemia and subsequent reperfusion remains an unsolved problem in clinical practice.
  • the organ (s) and the tissues are subjected to an inherent period of ischemia.
  • the liquid solutions used to preserve the organs and tissues have to meet a series of requirements: elimination of the donor's blood, achieve rapid cooling of the organ and ensure effective prevention and protection against injuries caused by ischemia. .
  • Static hypothermic preservation is an effective method for the preservation of organs during short periods of ischemia.
  • prolonged periods of ischemia are associated with primary graft failure in liver transplantation, and with graft dysfunction in kidney transplantation.
  • marginal organs which have little tolerance against the injury caused by a prolonged ischemia.
  • the use of marginal organs, such as steatotic grafts is associated with an increased risk of primary failure or graft dysfunction after transplanting, compared to non-steatotic ones.
  • the preservation solution University of Wisconsin (UW)
  • UW University of Wisconsin
  • This preservation solution contains different components aimed at improving the preservation of the organ, including the hydroxyethyl starch colloid, to prevent cell edema, adenosine as a source of ATP during reperfusion, allopurinol and glutathione with antioxidant effects, and impervious agents to The cell membrane such as lactobionic acid and raffinose.
  • UW has limitations in terms of efficacy, since irreversible lesions have been observed in the organs undergoing transplantation when the period of cold ischemia is prolonged (16 h-24 h).
  • Tacrolimus is a macrolide compound with effective mmunosuppressive, anti-microbial and other pharmacological activities, being of value for the prevention of rejection in the transplantation of organs and tissues, as well as for disorders of autoimmune and infectious origin. It is known that its addition to preservation solutions can protect against injury caused by reperfusion. In the literature a UW preservation solution containing tacrolimus has been described (KG Rajesh et al., "Mitochondrial Permeability transition-inhibition enhancing functional recovery after long-time hypothermic heart preservation", Transolantation. 2003, vol. 76 (9) , pp. 1314-20). Its action in preservation was tested in hearts. However, it was concluded that tacrolimus had no effect on preservation.
  • Carvedilol is a non-selective and lipophilic ⁇ -adrenergic blocking agent, with vasodilatory effects exerted primarily through the selective blocking of the ⁇ 1 receptor, and with a powerful antioxidant activity. Carvedilol's ability to inhibit lipoperoxidation is much greater than that obtained with other ⁇ -adrenergic blockers, which would explain its superiority in terms of protective effects in ischemia-reperfusion models.
  • antioxidants such as carvedilol in preservation solutions has been suggested in the literature (cf. B. Yard et al., "Prevention of cold-preservation injury of cultured endothelial cells by catecholamines andrelated compounds". American Journal of transplantation, 2004, vol. 4, pp. 22-30), no specific preservation solution comprising carvedilol has been described.
  • trimetazidine (TMZ)
  • UW preservation solution improved the ability of this standard preservation solution to protect both non-steatotic livers and, especially, steatotic livers subject to prolonged periods of ischemia (cf. I. Ben Mosbah et al. "Trimetazidine: Is it a promising drug for use in steatotic grafts?", World J Gastroenterol, 2006, vol. 12 (6), pp. 908-914).
  • preservation solutions containing tacrolimus, carvedilol, or trimetazidine are known or have been suggested in the state of the art, an aqueous solution for the preservation of tissues and organs that comprises a combination of the three pharmaceutical active ingredients has never been suggested.
  • the inventors surprisingly, have found that a preservation solution containing a combination of tacrolimus, carvedilol and trimetazidine synergistically improves the preservation capacity of organs and tissues subjected to a prolonged period of ischemia.
  • this synergistic effect is especially evident in marginal organs, such as steatotic livers, which makes the solution especially advantageous since it would improve the initial conditions of the marginal organs available for transplants but with poor post-operative results, and could also be increased the use of organs that are currently discarded for transplantation and, therefore, increase the amount of organs available to be transplanted.
  • one aspect of the present invention is related to an aqueous preservation solution for the preservation of tissues and organs comprising an effective amount of carvedilol, an effective amount of tacrolimus, and an effective amount of trimetazidine.
  • the aqueous preservation solution of the present invention allows tissues or organs to be maintained for a period of time longer than that achieved with other known preservation solutions. Another advantage of the preservation solution of the invention is that it allows lengthening the time in which a tissue or an organ functions properly and in which it is useful for transplantation compared to what would be achieved with other preservation solutions.
  • a second aspect of this invention is related to the use of the aqueous solution of the present invention to preserve tissues or organs.
  • the solution can be applied to mammalian tissues or organs, including humans. Examples of these tissues are arteries and veins.
  • Also part of this invention is a method for preserving tissues and Organs comprising maintaining said tissues or organs in the aqueous solution of the present invention at a temperature comprised between 2-10 0 C.
  • a tissue or organ By immersing a tissue or organ in the aqueous preservation solution of the present invention, the injury is prevented by reperfusion associated with the implantation of the tissue or organ and the rejection of the transplant.
  • an effective concentration of an active ingredient is the amount of active ingredient that is used for the preservation of tissues or organs.
  • Figures (1-10) illustrate the effect of the addition of tacrolimus (TCR), carvedilol (CVD), and trimetazidine (TMZ) to some known preservation solutions, and the effects of the preservation solution of Example 1 (P1 ) when the steatotic livers (S) and non-steatotic livers (NS) underwent a period of prolonged ischemia.
  • % P means protection percentage.
  • FIG. 1 illustrates the percentage of protection against the UW preservation solution when the ALT values were evaluated at the end of the ischemia period (0 min).
  • FIG. 2 illustrates the percentage of protection against the UW preservation solution when the ALT values were evaluated at the end of the reperfusion (120 min.).
  • FIG. 3 illustrates the percentage of protection against the UW preservation solution when bile production was evaluated at the end of reperfusion (120 min.).
  • FIG. 4 illustrates the percentage of protection against the UW preservation solution when the% of hepatic clearance of BSP in bile during reperfusion was evaluated.
  • FIG. 5 illustrates the percentage of protection against the UW preservation solution when ATP levels were evaluated at the end of reperfusion (120 min.).
  • FIG. 6 illustrates the percentage of protection against the IGL-1 preservation solution when the ALT values were evaluated at the end of the ischemia period (0 min.).
  • FIG. 7 illustrates the percentage of protection against the IGL-1 preservation solution when the ALT values were evaluated at the end of the reperfusion (120 min.).
  • FIG. 8 illustrates the percentage of protection against the IGL-1 preservation solution when bile production was evaluated at the end of reperfusion (120 min.).
  • FIG. 9 illustrates the percentage of protection against the IGL-1 preservation solution when the% of hepatic clearance of BSP in bile during reperfusion was evaluated.
  • FIG. 10 illustrates the percentage of protection against the IGL-1 preservation solution when ATP levels were evaluated at the end of reperfusion (120 min.).
  • the aqueous solution of the present invention can be applied to tissues or organs at the moment in which the donor is removed, during storage, transport, until its subsequent implantation in the receiver. It can be used for short periods of ischemia and mainly for prolonged periods of ischemia.
  • the concentration of carvedilol is 5 to 10 microM
  • the concentration of tacrolimus is 5 to 10 microM
  • the concentration of trimetazidine is 0.01 microM to 10 microM.
  • the aqueous solution of the present invention contains polyethylene glycol (PEG) with a molecular weight greater than 15,000, which guarantees the oncotic pressure.
  • PEG polyethylene glycol
  • the PEG used is a PEG of a molecular weight of 35,000.
  • the PEG is a purified non-linear PEG, ie a PEG synthesized from low molecular weight PEG molecules.
  • the aqueous solution of the present invention has a pH of 6.5 to 8 and an osmolarity of 290 to 320 millimoles / kg, and also comprises PEG with a molecular weight greater than 15,000 and in a concentration of 0.01 at 5 mM, raffinose in a concentration of 20 to 40 mM, MgSO 4 in a concentration of 1 to 10 mM, H ⁇ PO 4 " in a concentration of 10 to 40 mM, potassium ions in a concentration of 30 to 50 mM, sodium ions in a concentration of 110 to 160 mM, and lactobionic acid in a concentration of 70 to 140 mM.
  • PEG with a molecular weight greater than 15,000 and in a concentration of 0.01 at 5 mM
  • raffinose in a concentration of 20 to 40 mM
  • MgSO 4 in a concentration of 1 to 10 mM
  • H ⁇ PO 4 " in a concentration of 10 to 40 mM
  • the aqueous solution of the present invention has a pH of 7.4, an osmolarity of 320 millimoles / kg, and a concentration of PEG with a molecular weight greater than 15,000 of 0.03 mM, the raffinose concentration is 30 mM, the concentration of MgSO 4 is 5 mM, the concentration of H ⁇ PO 4 " is 25 mM, the concentration of potassium ions is 40 mM, the concentration of sodium ions is 120 mM, the concentration of lactobionic acid is of 100 mM, the concentration of tacrolimus is 5 microM, the concentration of carvedilol is 10 microM, and the concentration of trimetazidine is 1 microM.
  • the PEG has an approximate molecular weight of 35000.
  • the preservation solution of the invention allow to increase the tolerance of steatotic livers to the lesion caused by ischemia-reperfusion associated with liver transplantation. This fact allows to improve the post-transplant functionality of the steatotic graft and allows to increase the availability of organs suitable for transplantation.
  • a particularly preferred aqueous solution of the present invention consists of the following components:
  • - trimetazidine in a concentration of 1 microM, and has a pH of 7.4 and an osmolarity of 320 millimoles / kg.
  • this preservation solution further comprises dexamethasone at a concentration of 16 g / l, and penicillin at a concentration of 200,000 U / l.
  • these two preferred embodiments of the preservation solution of the invention do not contain some drugs such as GSH, HES, insulin, allopurinol, and adenosine, which are present in other known preservation solutions (such as UW preservation solutions and / or IGL-1) and it has been shown that such drugs have no effect or even have harmful effects on the preserved organ.
  • other known preservation solutions such as UW preservation solutions and / or IGL-1
  • a particularly relevant synergy has been observed for these preferred preservation solutions since they protect both steatotic and non-steatotic livers compared to the results obtained for the other preservation solutions.
  • the present invention is related to the use of the aqueous solution as described and revindicated herein to preserve tissues or organs.
  • the organ is an abdominal organ such as liver, kidney and pancreas.
  • the abdominal organ is a marginal organ, and more preferably, it is a steatotic liver.
  • the preservation solution of the present invention is applied to static hypothermic preservation and is used at a temperature between 2 and 10 0 C, preferably between 3 and 5 0 C, and more preferably at 4 0 C.
  • Step 1
  • TCR tacrolimus
  • the solution prepared in Step 1 was mixed with the solution prepared in Step 2, and subsequently the pH was adjusted to 7.4 ⁇ 0.1 with 5N NaOH.
  • the vessel was flush with water until it reached a volume of 1 liter, and filtered and sterilized. A solution with an osmolarity of 320 ⁇ 10 mOsm / l was obtained. Before using it, dexamethasone (16 g / l) and penicillin (200,000 U / l) were added.
  • the effect of the aqueous solution of the present invention on the liver was compared with respect to that obtained when the UW and IGL-1 preservation solutions.
  • liver lesion and functionality was evaluated by determining transaminases, bile production, liver clearance (% BSP) and ATP content.
  • composition of the preservation solutions UW, IGL-1 and P1 is shown in Table 2, P1 being a preservation solution according to the present invention.
  • UW + CVD The livers from 16 Zucker rats (8 Ln and 8 Ob) were preserved in the UW solution containing 10 ⁇ M of carvedilol during 24 h at 4 0 C.
  • UW + TMZ The livers from 16 Zucker rats (8 Ln and 8 Ob) were preserved in the UW solution containing 1 ⁇ M of trimetazidine for 24 h at 4 0 C.
  • UW + TCR The livers from 16 Zucker rats (8 Ln and 8 Ob) were preserved in the UW solution containing 5 ⁇ M of tacrolimus during
  • IGL Livers from 16 Zucker rats (8 Ln and 8 Ob) were preserved in the IGL-1 solution for 24 h at 4 0 C.
  • IGL + CVD Livers from 16 Zucker rats (8 Ln and 8 Ob) were preserved in the IGL-1 solution containing 10 ⁇ M of carvedilol for 24 h at 4 0 C.
  • IGL + TMZ The livers from 16 Zucker rats (8 Ln and 8 Ob) were preserved in the IGL-1 solution containing 1 ⁇ M of trimetazidine for 24 h at 4 0 C.
  • IGL + TCR The livers from 16 Zucker rats (8 Ln and 8 Ob) were preserved in the UW solution containing 5 ⁇ M of tacrolimus for 24 h at 4 0 C.
  • IGL + CVD + TMZ + TCR The livers from 16 Zucker rats (8 Ln and 8 Ob) were preserved in the IGL-1 solution containing 10 ⁇ M of carvedilol, 1 ⁇ M of trimetazidine and 5 ⁇ M of tacrolimus for 24 has 4 oC .
  • ALT alanine aminotransferase
  • the perfusion liquid consisted of a cell culture medium (William's medium E, Bio Whitaker, Spain) with the Krebs-Heinseleit-albumin solution.
  • the perfusion liquid was oxygenated with a mixture of 95% O 2 and 5% CO 2 and the temperature of the perfusion liquid was maintained at 37 0 C.
  • normothermic reperfusion Ia 120 min aliquots were collected fluid perfusion to evaluate ALT.
  • Bile production and liver clearance (% BSP) in bile samples as well as ATP content in liver samples were also evaluated.
  • transaminases test As a parameter of liver injury, transaminases were evaluated according to the instructions provided by the Commercial Kits from Boehringer Mannheim (Munich, Germany).
  • Bile production was assessed as a parameter of liver functionality. Bile was collected through the bile duct and bile production was estimated by measuring the volume of bile obtained after 120 min of perfusion, and expressed as ⁇ l / g liver.
  • BSP hepatic clearance of BSP.
  • the hepatic clearance of BSP is considered another reliable parameter of liver functionality.
  • 10 mg of BSP was added in the infusion liquid.
  • the concentration of BSP in the bile samples was determined by measuring the absorbance at 580 nm. He BSP liver clearance was expressed as% BSP.
  • liver samples were homogenized in a solution containing perchloric acid and the determination of ATP was carried out by high performance liquid chromatography.
  • the data were expressed as the value of the mean ⁇ standard error of the mean.
  • the data obtained were subjected to statistical study by means of an analysis of variance test, and the level of statistical significance was determined by the Student-Newman-Keuls test. In all cases, the results were considered significantly different when p ⁇ 0.05.
  • ALT levels were assessed. This determination is a valuable tool for predicting organ damage after cold preservation.
  • higher levels of transaminases were observed in steatotic livers than in non-steatotic livers preserved in both the UW and IGL solution. This confirms the poor tolerance of steatotic livers to the harmful effects caused during cold ischemia.
  • the ALT (U / 1) values at the end of the cold ischemia when the grafts were preserved in the UW solution were 32.87 ⁇ 2.91 and 152.23 ⁇ 2.21 for non-steatotic and steatotic livers, respectively.
  • ALT values (U / l) at the end of the cold ischemia when the grafts were preserved in IGL solution were 21.44 ⁇ 0.62 and 87.47 ⁇ 3.20 for non-steatotic and steatotic livers, respectively.
  • ALT values (U / l) at the end of the reperfusion when the grafts were preserved in UW preservation solution were 45.05 ⁇ 3.53 and 159.11 ⁇ 3.01 for non-steatotic and steatotic livers, respectively.
  • the ALT values (U / l) at the end of the reperfusion when the grafts were preserved in IGL preservation solution were 35.62 + 2.32 and 121.41 ⁇ 1.23 for non-steatotic and steatotic livers, respectively.
  • Hepatic functionality was assessed by measuring bile production and liver clearance (% BSP).
  • Bile production and% BSP was lower in steatotic livers than in non-steatotic livers preserved in both the UW and IGL solution.
  • the values of the biliary production ( ⁇ l / g / 120 min) at the end of the reperfusion when the livers were preserved in UW were 9.55 +0.25 and 1.46 ⁇ 0.18 for non-steatotic livers and steatotic livers, respectively.
  • the values of the biliary production ( ⁇ l / g / 120 min.) At the end of the reperfusion when the livers were preserved in IGL were 14.25 ⁇ 0.63 and 3.44 ⁇ 0.38 for non-steatotic livers and steatotic livers, respectively.
  • the values of% BSP in bile at the end of reperfusion when the livers were preserved in UW were 6.13 + 1.13 and 4.70 ⁇ 0.65 for non-steatotic livers and steatotic livers, respectively.
  • the values of% BSP in bile at the end of reperfusion when the livers were preserved in IGL were 8.04 + 0.61 and 7.34 ⁇ 0.58 for non-steatotic livers and steatotic livers, respectively.
  • ATP levels were lower in steatotic livers than in non-steatotic livers preserved in both the UW and IGL-1 solution.
  • the ATP values ( ⁇ M / g) at the end of the reperfusion when the livers were preserved in UW were 0.90 ⁇ 0.02 and 0.61 ⁇ 0.03 for non-steatotic livers and steatotic livers, respectively.
  • the ATP values ( ⁇ M / g) at the end of the reperfusion when the livers were preserved in IGL were 1.19 + 0.09 and 0.77 ⁇ 0.06 for non-steatotic livers and steatotic livers, respectively.
  • Tables 3-6 set forth below show the effect of the addition of tacrolimus (TCR), carvedilol (CVD), and trimetazidine (TMZ) to the preservation solutions already known, and that obtained by the preservation solution of the Example 1 (P1) when the steatotic and non-steatotic livers underwent a period of prolonged ischemia.
  • the values are expressed as a percentage of protection against UW or IGL-1 preservation solutions of the lesion parameters and liver functionality: ALT at the end of 24 hours of ischemia (0 min), ALT at the end of 120 min. reperfusion (120 min.), biliary production,% BSP, and ATP content at the end of reperfusion (120 min.).
  • Table 3 Non-steatotic livers (from Zucker Ln rats) in UW preservation solution
  • preservation solution P1 offered greater protection in both types of livers (steatotic as well as non-steatotic) compared to the results obtained in UW + TCR + CVD + TMZ and IGL-1 + TCR + CVD + TMZ.

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Abstract

Se proporciona una solución acuosa mejorada para la preservación de tejidos y órganos que comprende carvedilol, tacrolimus y trimetazidina. Se observa un efecto sinérgico para esta solución de preservación que es especialmente efectiva en órganos marginales como los hígados esteatósicos.

Description

Solución acuosa para Ia preservación de tejidos v órganos.
Esta invención está relacionada con una solución acuosa para preservar tejidos y órganos, el uso de Ia misma, particularmente, para preservar órganos marginales, así como con un método para preservar tejidos y órganos.
ESTADO DE LA TÉCNICA ANTERIOR
El trasplante de órganos es el tratamiento a escoger para pacientes que padecen enfermedades crónicas en fase terminal. A pesar de los avances en Ia mejoría de las técnicas del trasplante, Ia lesión que sufre el injerto durante el período de isquemia y Ia subsiguiente reperfusión continúa siendo un problema sin resolver en Ia práctica clínica.
Desde el momento en que se realiza Ia extracción del donante hasta que se procede a Ia implantación del injerto en el receptor, el/los órgano(s) y los tejidos se someten a un inherente período de isquemia. Así pues, las soluciones líquidas utilizadas para preservar los órganos y los tejidos tienen que cumplir una serie de requisitos: eliminación de Ia sangre del donante, conseguir un enfriamiento rápido del órgano y asegurar una prevención y protección efectiva frente a las lesiones causadas por Ia isquemia.
La preservación hipotérmica estática es un método efectivo para la preservación de órganos durante cortos períodos de isquemia. Sin embargo, períodos de isquemia prolongados están asociados con el fallo primario del injerto en el trasplante hepático, y con disfunción del injerto en el trasplante renal. Además de la necesidad de ampliar el período de isquemia, la escasez de donantes y en consecuencia el aumento en las listas de espera en el trasplante de órganos ha derivado en Ia aceptación de órganos marginales, los cuales presentan poca tolerancia frente a Ia lesión ocasionada por una isquemia prolongada. En el caso del trasplante hepático, Ia utilización de órganos marginales, como es el caso de injertos esteatósicos está asociada con un mayor riesgo de padecer fallo primario o disfunción del injerto tras realizar el trasplante, comparado con los no esteatósicos. Además, algunos hígados esteatósicos no se consideran aptos para ser trasplantados, acentuando aún más Ia falta de órganos para el trasplante. Es bien conocido que la mayoría de Ia lesión que presenta un órgano marginal durante el trasplante está relacionada con el período de preservación hipotérmica. Estas observaciones indican Ia necesidad de optimizar Ia preservación de órganos. Portante, el principal objetivo en Ia preservación de órganos, es procurar prolongar Ia tolerancia del órgano a Ia isquemia.
Existen pruebas que indican que Ia composición de las soluciones de preservación es un factor crítico para Ia calidad de órganos conservados durante períodos de isquemia prolongados. La solución de preservación, Universidad de Wisconsin (UW), está considerada como Ia solución estándar para Ia preservación hepática, ya que ha resultado efectiva para reducir el daño ocasionado por Ia isquemia fría y ha extendido los límites de los tiempos de almacenamiento. Esta solución de preservación contiene diferentes componentes encaminados a mejorar Ia preservación del órgano, incluyendo el coloide hidroxietil almidón, para prevenir el edema celular, Ia adenosina como fuente de ATP durante Ia reperfusión, el alopurinol y el glutation con efectos antioxidantes, y agentes impermeables a Ia membrana celular tales como el ácido lactobiónico y Ia rafinosa. Sin embrago, esta solución de preservación, UW, presenta limitaciones en cuanto a Ia eficacia, ya que se han observado lesiones irreversibles en los órganos sometidos a trasplante cuando se prolonga el período de isquemia fría (16 h-24 h).
El tacrolimus (TCR) es un compuesto macrólido con efectiva actividad ¡mmunosupresora, anti-microbiana y otras actividades farmacológicas, siendo de un valor para Ia prevención del rechazo en el trasplante de órganos y tejidos, así como para desórdenes de origen autoimmune e infeccioso. Es conocido que su adición a las soluciones de preservación puede proteger frente a Ia lesión ocasionada por Ia reperfusión. En Ia literatura se ha descrito una solución de preservación UW que contiene tacrolimus (K. G. Rajesh et al., "Mitochondrial Permeability transition-pore inhibition enhances functional recovery after long-time hypothermic heart preservation", Transolantation. 2003, vol. 76 (9), pp. 1314-20). Su acción en Ia preservación se ensayó en corazones. Sin embargo, se concluyó que el tacrolimus no tenía ningún efecto en Ia preservación.
El carvedilol (CVD) es un agente bloqueador β-adrenérgico no selectivo y lipofílico, con efectos vasodilatadores ejercidos principalmente a través del bloqueo selectivo del receptor α1 , y con una potente actividad antioxidante. La capacidad del carvedilol de inhibir Ia lipoperoxidación es mucho mayor que aquella obtenida con otros bloqueadores β-adrenérgicos, Io cual explicaría su superioridad en cuanto a los efectos protectores en modelos de isquemia- reperfusión. A pesar de que Ia adición de antioxidantes como el carvedilol en las soluciones de preservación se ha sugerido en Ia literatura (cf. B. Yard et al., "Prevention of cold-preservation injury of cultured endothelial cells by catecholamines andrelated compounds". American Journal of transplantation, 2004, vol. 4, pp. 22-30), no se ha descrito ninguna solución de preservación específica que comprenda carvedilol.
Un estudio reciente indica que Ia adición de trimetazidina (TMZ) a Ia solución de preservación UW mejoró Ia capacidad de esta solución de preservación estándar para proteger ambos, hígados no-esteatósicos y, especialmente, hígados esteatósicos sujetos a períodos de isquemia prolongados (cf. I. Ben Mosbah et al. "Trimetazidine: Is it a promising drug for use ¡n steatotic grafts?", World J Gastroenterol, 2006, vol. 12(6), pp. 908-914).
Sin embargo, algunas de las propiedades de Ia solución UW como son Ia alta concentración de potasio (requerida para lavar el órgano antes de Ia reperfusión del injerto en el receptor) y Ia presencia de hidroxietil almidón (HES) como soporte oncótico (que podría ser responsable de Ia agregación de glóbulos rojos) no favorecen Ia preservación del órgano. Estudios recientes han demostrado que ambos tipos de injertos de hígado (injertos esteatósicos y no-esteatósicos) se preservan mejor en una solución de preservación modificada a partir de Ia UW (llamada IGL-1 ) que se caracteriza por Ia inversión en las concentraciones de K+ y Na+ y en Ia substitución del HES por el polietilenglicol (PEG) en Ia solución UW original (cf. I. Ben Mosbah et al., "Preservation of steatotic livers ¡n IGL-1 solution", Liver Transpl. 2006, vol. 12 (8), pp. 1215-23). Por otro lado, a pesar de las mejoras ofrecidas por Ia solución IGL-1 , el daño ocasionado por Ia isquemia- reperfusión (UR) continua siendo aún un problema sin resolver.
Todavía existe Ia necesidad de encontrar soluciones de preservación que permitan prolongar Ia tolerancia del órgano a Ia isquemia y minimizar el riesgo inherente que sufren los órganos marginales sometidos a trasplante. EXPLICACIÓN DE LA INVENCIÓN
Aunque se conocen o se han sugerido en el estado de Ia técnica soluciones de preservación que contienen tacrolimus, carvedilol, o trimetazidina, nunca se ha sugerido una solución acuosa para Ia preservación de tejidos y órganos que comprenda una combinación de los tres principios activos farmacéuticos. Los inventores, sorprendentemente, han encontrado que una solución de preservación que contenga una combinación de tacrolimus, carvedilol y trimetazidina mejora de forma sinérgica Ia capacidad de preservación de órganos y tejidos sometidos a un período de isquemia prolongado. En particular, este efecto sinérgico es especialmente evidente en órganos marginales, tales como hígados esteatósicos, que hace Ia solución especialmente ventajosa ya que mejorarían las condiciones iniciales de los órganos marginales disponibles para transplantes pero con deficientes resultados post-operatorios, y se podría aumentar también el uso de órganos que actualmente son descartados para el trasplante y, por tanto, aumentar Ia cantidad de órganos disponibles para ser trasplantados.
Así, un aspecto de Ia presente invención está relacionado con una solución de preservación acuosa para Ia preservación de tejidos y órganos que comprende una cantidad efectiva de carvedilol, una cantidad efectiva de tacrolimus, y una cantidad efectiva de trimetazidina.
La solución de preservación acuosa de Ia presente invención permite mantener tejidos u órganos durante un período de tiempo mayor que el que se consigue con otras soluciones de preservación conocidas. Otra ventaja de Ia solución de preservación de Ia invención es que permite alargar el tiempo en el cual un tejido o un órgano funcionan adecuadamente y en que es útil para trasplante comparado con Io que se alcanzaría con otras soluciones de preservación.
Un segundo aspecto de esta invención está relacionado con el uso de Ia solución acuosa de Ia presente invención para preservar tejidos u órganos. La solución se puede aplicar a tejidos u órganos de mamíferos, incluido humanos. Ejemplos de estos tejidos son arterias y venas.
También forma parte de esta invención un método para preservar tejidos y órganos que comprende mantener dichos tejidos u órganos en Ia solución acuosa de Ia presente invención a una temperatura comprendida entre 2-10 0C. A través de sumergir un tejido u órgano en Ia solución de preservación acuosa de Ia presente invención se previene Ia lesión por reperfusión asociada a Ia implantación del tejido u órgano y el rechazo del trasplante.
Tal como se utiliza aquí, Ia frase "una concentración efectiva" de un ingrediente activo, es Ia cantidad ingrediente activo que se utiliza para Ia preservación de tejidos u órganos.
Cualquier valor en un intervalo dado aquí se puede extender o alterar sin perder los efectos buscados, como sería aparente para una persona experta en Ia materia. Así, los intervalos dados, tales como concentraciones, y similares se deberían considerar aproximados, a menos que se especifique Io contrario.
A Io largo de Ia descripción y las reivindicaciones Ia palabra "comprende" y sus variantes no pretenden excluir otras características técnicas, aditivos, componentes o pasos.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LOS DIBUJOS
Las Figuras (1-10) ilustran el efecto de Ia adición del tacrolimus (TCR), carvedilol (CVD), y trimetazidina (TMZ) a algunas soluciones de preservación ya conocidas, y los efectos de Ia solución de preservación del Ejemplo 1 (P1 ) cuando los hígados esteatósicos (S) y los hígados no esteatósicos (NS) se sometieron a un período de isquemia prolongado. En las Figuras, %P significa porcentaje de protección.
La FIG. 1 ilustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación UW cuando se evaluaron los valores de ALT al final del período de isquemia (0 min).
La FIG. 2 ¡lustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación UW cuando se evaluaron los valores de ALT al final de Ia reperfusión (120 min.). La FIG. 3 ¡lustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación UW cuando se evaluó Ia producción de bilis al final de Ia reperfusión (120 min.).
La FIG. 4 ilustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación UW cuando se evaluó el % de aclaramiento hepático de BSP en bilis durante Ia reperfusión.
La FIG. 5 ilustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación UW cuando se evaluaron los niveles de ATP al final de Ia reperfusión (120 min.).
La FIG. 6 ilustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación IGL-1 cuando se evaluaron los valores de ALT al final del período de isquemia (0 min.).
La FIG. 7 ilustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación IGL-1 cuando se evaluaron los valores de ALT al final de Ia reperfusión (120 min.).
La FIG. 8 ilustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación IGL-1 cuando se evaluó Ia producción de bilis al final de Ia reperfusión (120 min.).
La FIG. 9 ilustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación IGL-1 cuando se evaluó el % de aclaramiento hepático de BSP en bilis durante Ia reperfusión.
La FIG. 10 ilustra el porcentaje de protección frente a Ia solución de preservación IGL-1 cuando se evaluaron los niveles de ATP al final de Ia reperfusión (120 min.).
DESCRIPCIÓN DETALLADA DE LA INVENCIÓN
La solución acuosa de Ia presente invención puede ser aplicada a tejidos u órganos en el momento en que se procede a Ia extracción del donante, durante su almacenamiento, transporte, hasta su posterior implantación en el receptor. Se puede utilizar para cortos períodos de isquemia y principalmente para períodos de isquemia prolongados.
En una realización preferida de Ia solución acuosa de Ia presente invención, Ia concentración de carvedilol es de 5 a 10 microM, Ia concentración de tacrolimus es de 5 a 10 microM, y Ia concentración de trimetazidina es de 0.01 microM a 10 microM.
Para evitar Ia formación de edema tisular y celular, Ia solución de acuosa de Ia presente invención contiene polietilenglicol (PEG) con un peso molecular superior a 15.000, Io cual garantiza Ia presión oncótica. Preferiblemente, el PEG utilizado es un PEG de un peso molecular de 35.000. Más preferiblemente, el PEG es un PEG purificado no lineal, es decir un PEG sintetizado a partir de moléculas de PEG de bajo peso molecular.
Por consiguiente, en otra realización preferida, Ia solución acuosa de Ia presente invención tiene un pH de 6.5 a 8 y una osmolaridad de 290 a 320 milimoles/kg, y además comprende PEG con un peso molecular superior a 15.000 y en una concentración de 0.01 a 5 mM, rafinosa en una concentración de 20 a 40 mM, MgSO4 en una concentración de 1 a 10 mM, H^PO4 " en una concentración de 10 a 40 mM, iones potasio en una concentración de 30 a 50 mM, iones sodio en una concentración de 110 a 160 mM, y ácido lactobiónico en una concentración de 70 a 140 mM.
En otra realización todavía más preferida, Ia solución acuosa de Ia presente invención tiene un pH de 7.4, una osmolaridad de 320 milimoles/kg, y una concentración de PEG con un peso molecular superior a 15.000 de 0.03 mM, Ia concentración de rafinosa es de 30 mM, Ia concentración de MgSO4 es 5 mM, Ia concentración de H^PO4 " es 25 mM, Ia concentración de iones potasio es de 40 mM, Ia concentración de iones sodio es de 120 mM, Ia concentración de ácido lactobiónico es de 100 mM, Ia concentración de tacrolimus es de 5 microM, Ia concentración de carvedilol es de 10 microM, y Ia concentración de trimetazidina es de 1 microM. Preferiblemente, el PEG tiene un peso molecular aproximado de 35000.
Es bien conocido que Ia principal causa de no aceptación de órganos para ser trasplantados es Ia esteatosis. Las realizaciones preferidas anteriormente mencionadas de Ia solución de preservación de Ia invención permiten aumentar Ia tolerancia de los hígados esteatósicos a Ia lesión ocasionada por Ia isquemia-reperfusión asociada al trasplante hepático. Este hecho permite mejorar Ia funcionalidad post-trasplante del injerto esteatósico y permite aumentar Ia disponibilidad de órganos aptos para el trasplante.
Una solución acuosa particularmente preferida de Ia presente invención consiste en los siguientes componentes:
- polientilenglicol con un peso molecular aproximado de 35000 en una concentración de 0.03 mM,
- rafinosa en una concentración de 30 mM,
- MgSO4 en una concentración de 5 mM,
- H2PO4 " en una concentración de 25 mM,
- iones potasio en una concentración de 40 mM, - iones sodio en una concentración de 120 mM,
- ácido lactobiónico en una concentración de 100 mM.
- tacrolimus en una concentración de 5 microM,
- carvedilol en una concentración de 10 microM, y
- trimetazidina en una concentración de 1 microM, y tiene un pH de 7.4 y una osmolaridad de 320 milimoles/kg.
Más preferiblemente esta solución de preservación además comprende dexametaxona a una concentración de 16 g/l, y penicilina a una concentración de 200.000 U/l.
Estas dos realizaciones preferidas de Ia solución de preservación de Ia invención no contienen algunos fármacos tales como el GSH, HES, insulina, alopurinol, y adenosina, los cuales están presentes en otras soluciones de preservación ya conocidas (tales como las soluciones de preservación UW y/o IGL-1) y se ha demostrado que tales fármacos no tienen efecto o incluso poseen efectos dañinos sobre el órgano preservado. Una sinergia particularmente relevante se ha observado para estas soluciones de preservación preferidas ya que ellas protegen tanto los hígados esteatósicos como los no esteatósicos en comparación con los resultados obtenidos para las otras soluciones de preservación.
Tal y como se ha mencionado anteriormente, un aspecto adicional de Ia presente invención está relacionado con Ia utilización de Ia solución acuosa tal y como se describe y se revindica aquí para preservar tejidos u órganos. En una realización preferida, el órgano es un órgano abdominal tal como hígado, riñon y páncreas. Preferiblemente, el órgano abdominal es un órgano marginal, y más preferiblemente, es un hígado esteatósico.
La solución de preservación de Ia presente invención se aplica a Ia preservación hipotérmica estática y es utilizada a temperatura entre 2 y 10 0C, preferiblemente entre 3 y 5 0C, y más preferiblemente a 40C.
Además, Ia presente invención cubre todas las posibles combinaciones de grupos particulares y preferidos indicados anteriormente.
Para los expertos en Ia materia, otros objetos, ventajas y características de Ia invención se desprenderán en parte de Ia descripción y en parte de Ia práctica de Ia invención. Los siguientes ejemplos y dibujos se proporcionan a modo de ilustración, y no se pretende que sean limitativos de Ia presente invención.
EJEMPLOS
EJEMPLO 1 : Preparación de una solución de preservación acuosa
Se preparó una solución acuosa, cuya composición está expuesta en Ia Tabla 1. teniendo en cuenta el proceso que se detalla a continuación.
Tabla 1 :
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Paso 1 :
A una solución que contenía 1 g of polientilenglicol (PEG 35.000) dializado, se añadió 4.11 mg de tacrolimus (TCR) y se agitó hasta obtener una primera solución.
Paso 2:
En un recipiente de un litro que contenía 800 mi de agua (destilada y desionizada) a temperatura ambiente, se añadió 35.83 g de ácido lactobiónico y se agitó hasta su disolución. Seguidamente, se añadieron 0.60 g de MgSO4, 22.5 mi de NaOH 5N, 6 mi de KOH 5N, 3.4 g de KH2PO4, y 17.83 g de rafinosa para formar así una segunda solución. A continuación, a esta segunda solución se añadió 1 mi de solución que contenía TMZ procedente de una solución stock (Ia solución stock: 2.66 mg de TMZ disueltos en 10 mi de agua) y 10 mi de CVD procedente de una solución stock (solución stock: 6.5 mg de carvedilol en 8 mi de ácido tartárico y 8 mi de agua).
La solución preparada en el Paso 1 se mezcló con Ia solución preparada en el Paso 2, y posteriormente se ajustó el pH a 7.4 ± 0.1 con NaOH 5N.
Finalmente, se enrasó con agua el recipiente hasta llegar a un volumen de 1 litro, y se filtró y esterilizó. Se obtuvo una solución con una osmolaridad de 320 ± 10 mOsm/l. Antes de utilizarla, se añadió dexametaxona (16 g/l) y penicilina (200,000 U/l).
EJEMPLO 2
En este ejemplo, se comparó el efecto de Ia solución acuosa de Ia presente invención sobre el hígado con respecto al obtenido cuando se utilizaron las soluciones de preservación UW e IGL-1.
Se evaluó Ia lesión y funcionalidad hepática determinando las transaminasas, Ia producción de bilis, el aclaramiento hepático (%BSP) y el contenido de ATP.
Para llevar a cabo el estudio, se utilizaron ratas Zucker homocigotas (obesas, Ob) y heterocigotas (delgadas, Ln) entre 16 y 18 semanas de edad, procedentes de Iffa-Credo (L'Abresle, France). Se utilizó un modelo de hígado perfundido aislado para evaluar Ia lesión y funcionalidad hepática, sin Ia influencia de otros órganos, de componentes plasmáticos y de efectos neuronales/hormonales. En este modelo experimental se preserva Ia arquitectura hepática, Ia microcirculación y Ia producción biliar. Este modelo experimental utilizado se ha considerado apropiado en Ia literatura para testar Ia eficacia de diferentes soluciones de preservación para trasplante. Todos los procedimientos se realizaron bajo anestesia inhalatoria de isofluorano. El estudio respetó las regulaciones de Ia Unión Europea sobre Ia realización de experimentos en animales (Directiva 86/609/CEE).
Obtención del hígado v grupos experimentales
La cirugía se realizó siguiendo los pasos descritos en anteriores estudios (I. Ben Mosbah et al. "Preservation of steatotic livers in IGL-1 solution", Liver Transpl 2006. vol. 12 (8), pp. 1215-23, and I. Ben Mosbah et al. "Addition of adenosine monophosphate-activated protein kinase activators to University of Wisconsin solution: a way of protecting rat steatotic livers", Liver Transpl., 2007, vol. 13(3), pp. 410-25). Tras Ia canulación del conducto biliar, se aisló Ia vena porta y se ligaron las ramas esplécnica y pilórica. Todos los animales se distribuyeron en los siguientes grupos experimentales, de una manera aleatoria tal y como se describe a continuación.
Soluciones de Preservación v grupos experimentales
La composición de las soluciones de preservación UW, IGL-1 y P1 se muestra en Ia Tabla 2, siendo P1 una solución de preservación según Ia presente invención.
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A) Estudio I: P1 vs. UW
1 ) UW: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución UW durante 24 h a 40C.
2) UW+CVD: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución UW que contenía 10 μM de carvedilol durante 24 h a 40C. 3) UW+TMZ: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución UW que contenía 1μM de trimetazidina durante 24 h a 4 0C. 4) UW+TCR: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución UW que contenía 5 μM de tacrolimus durante
24 h a 4 0C. 5) UW+CVD+TMZ+TCR: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8
Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución UW que contenía 10 μM de carvedilol, 1 μM de trimetazidina y 5 μM de tacrolimus durante 24 h a 40C.
Los resultados obtenidos en los grupos 1-5 se compararon con aquéllos obtenidos cuando los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron con Ia solución de preservación P1 durante 24 h a 4 0C.
B) Estudio II: P1 vs. IGL-1
1) IGL: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución IGL-1 durante 24 h a 40C. 2) IGL+CVD: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución IGL-1 que contenía 10 μM de carvedilol durante 24 h a 4 0C.
3) IGL+TMZ: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución IGL-1 que contenía 1 μM de trimetazidina durante 24 h a 40C.
4) IGL+TCR: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución UW que contenía 5 μM de tacrolimus durante 24 h a 40C.
5) IGL+CVD+TMZ+TCR: Los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron en Ia solución IGL-1 que contenía 10 μM de carvedilol, 1 μM de trimetazidina y 5 μM de tacrolimus durante 24 h a 4oC.
Los resultados obtenidos en los grupos 1-5 se compararon con aquellos obtenidos cuando los hígados procedentes de 16 ratas Zucker (8 Ln y 8 Ob) se preservaron con Ia solución de preservación P1 durante 24 h a 40C. Procedimiento
Tras las 24h de Ia preservación fría del injerto, se determinaron los niveles de alanina aminotransferasa acumulada (ALT) tras una isquemia prolongada. Además, tras las 24h de Ia preservación fría del injerto, los hígados se expusieron a 22 0C durante 30 min para mimetizar el período de isquemia caliente que sufre el injerto durante Ia implantación en el receptor. Seguidamente, los hígados se conectaron a través de Ia vena porta al circuito de perfusión y se perfundieron durante 120 min. a 370C. Durante los primeros 15 min de perfusión, se aumentó progresivamente el flujo hasta que se estabilizó Ia presión portal a 12 mm Hg (Pression Monitor BP-1 , Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA). El flujo se controló mediante una bomba peristáltica (Minipuls 3, Gilson, France). El líquido se perfusión consistió en un medio de cultivo celular (William's médium E, Bio Whitaker, Spain) con Ia solución Krebs-Heinseleit-albúmina. El líquido de perfusión se oxigenó con una mezcla de 95% O2 y 5% CO2, y Ia temperatura del líquido de perfusión se mantuvo a 370C. Al final de Ia reperfusión normotérmica (120 min) se recogieron alícuotas del líquido de perfusión para evaluar Ia ALT. Se evaluaron además Ia producción biliar y el aclaramiento hepático (%BSP) en muestras biliares así como el contenido de ATP en muestras de hígado.
Determinaciones Bioquímicas
-Ensayo de transaminasas. Como parámetro de lesión hepática, se evaluaron las transaminasas atendiendo a las instrucciones proporcionadas por los Kits comerciales procedentes de Boehringer Mannheim (Munich, Germany).
- Producción de Bilis. La producción de bilis se valoró como parámetro de funcionalidad hepática. La bilis se recogió a través del conducto biliar y Ia producción de bilis se estimó midiendo el volumen de bilis obtenido después de 120 min de perfusión, y se expresó como μl/g hígado.
- Aclaramiento hepático de BSP. Al igual que Ia producción de bilis, el aclaramiento hepático de BSP es considerado otro parámetro fiable de funcionalidad hepática. Treinta minutos después del inicio de Ia perfusión, se añadieron 10 mg de BSP en el líquido de perfusión. La concentración de BSP en las muestras biliares se determinó midiendo Ia absorbancia a 580 nm. El aclaramiento hepático de BSP se expresó como % BSP.
- ATP. Las muestras hepáticas se homogeneizaron en una solución conteniendo ácido perclórico y Ia determinación de ATP se llevó a cabo por cromatografía líquida de alta resolución.
Estudio Estadístico
Los datos se expresaron como valor de Ia media ± error estándar de Ia media. Los datos obtenidos se sometieron a estudio estadístico mediante un test de análisis de varianza, y se determinó el nivel de significación estadística mediante el test Student-Newman-Keuls. En todos los casos, ios resultados se consideraron significativamente diferentes cuando p<0.05.
Para predecir el daño hepático después del período de preservación del injerto se valoraron los niveles de ALT. Esta determinación es una herramienta valiosa para predecir el daño del órgano tras preservación fría. Al final de Ia isquemia fría, se observaron niveles de transaminasas más elevados en los hígados esteatósicos que en los no esteatósicos preservados tanto en Ia solución UW como IGL. Esto confirma Ia poca tolerancia que presentan los hígados esteatósicos a los efectos dañinos ocasionados durante Ia isquemia fría. Los valores de ALT (U/1) al final de Ia isquemia fría cuando los injertos se preservaron en Ia solución UW fueron 32.87 ± 2.91 y 152.23 ± 2.21 para hígados no esteatósicos y esteatósicos, respectivamente. Los valores de ALT (U/l) al final de Ia isquemia fría cuando los injertos se preservaron en solución IGL fueron 21.44 ± 0.62 y 87.47 ± 3.20 para hígados no esteatósicos y esteatósicos, respectivamente.
Al final de Ia reperfusión, se observaron niveles de transaminasas más elevados en los hígados esteatósicos que en los no esteatósicos. Los valores de ALT (U/l) al final de Ia reperfusión cuando los injertos fueron preservados en solución de preservación UW fueron 45.05 ± 3.53 y 159.11 ± 3.01 para hígados no esteatósicos y esteatósicos, respectivamente. Los valores de ALT (U/l) al final de Ia reperfusión cuando los injertos fueron preservados en solución de preservación IGL fueron 35.62 + 2.32 y 121.41 ± 1.23 para hígados no esteatósicos y esteatósicos, respectivamente. La funcionalidad hepática se valoró midiendo Ia producción de bilis y el aclaramiento hepático (%BSP). La producción de bilis y el %BSP fue menor en hígados esteatósicos que en los no esteatósicos preservados tanto en Ia solución UW como IGL. Los valores de Ia producción biliar (μl/g/120 min) al final de Ia reperfusión cuando los hígados se preservaron en UW fueron de 9.55 +0.25 y 1.46 ± 0.18 para hígados no esteatósicos e hígados esteatósicos, respectivamente. Los valores de Ia producción biliar (μl/g/120 min.) al final de Ia reperfusión cuando los hígados se preservaron en IGL fueron de 14.25 ± 0.63 y 3.44 ± 0.38 para hígados no esteatósicos e hígados esteatósicos, respectivamente. Los valores de % BSP en bilis al final de Ia reperfusión cuando los hígados se preservaron en UW fueron 6.13+1.13 y 4.70 ± 0.65 para hígados no esteatósicos e hígados esteatósicos, respectivamente. Los valores de % BSP en bilis al final de Ia reperfusión cuando los hígados se preservaron en IGL fueron 8.04 + 0.61 y 7.34 ± 0.58 para hígados no esteatósicos e hígados esteatósicos, respectivamente.
Al final de Ia reperfusión, los niveles de ATP fueron menores en hígados esteatósicos que en los no esteatósicos preservados tanto en Ia solución UW como IGL-1. Los valores de ATP (μM/g) al final de Ia reperfusión cuando los hígados se preservaron en UW fueron 0.90 ± 0.02 y 0.61 ± 0.03 para hígados no esteatósicos e hígados esteatósicos, respectivamente. Los valores de ATP (μM/g) al final de Ia reperfusión cuando los hígados se preservaron en IGL fueron 1.19 + 0.09 y 0.77 ± 0.06 para hígados no esteatósicos e hígados esteatósicos, respectivamente.
Las Tablas 3-6 que se exponen a continuación muestran el efecto de Ia adición de tacrolimus (TCR), carvedilol (CVD), y trimetazidina (TMZ) a las soluciones de preservación ya conocidas, y aquél obtenido por Ia solución de preservación del Ejemplo 1 (P1 ) cuando los hígados esteatósicos y no esteatósicos se sometieron a un período de isquemia prolongado. Los valores se expresan como porcentaje de protección frente a las soluciones de preservación UW o IGL-1de los parámetros de lesión y funcionalidad hepática: ALT al final de los 24h de isquemia (0 min), ALT al final de los 120 min. de reperfusión (120 min.), producción biliar, % BSP, y contenido de ATP al final de Ia reperfusión (120 min.). Tabla 3: Hígados no esteatósicos (procedentes de ratas Zucker Ln) en solución de preservación UW
Figure imgf000018_0001
Tabla 4: Hígados esteatósicos (procedentes de ratas Zucker Ob) en solución de preservación UW
Figure imgf000018_0002
Tabla 5: Hígados no esteatósicos (procedentes de ratas Zucker Ln) en solución de preservación IGL-1
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Tabla 6: Hígados esteatósicos (procedentes de ratas Zucker Ob) en solución de preservación IGL-1
Figure imgf000019_0002
Atendiendo a los parámetros de lesión y funcionalidad hepática, nuestros resultados indican que Ia combinación de tacrolimus, carvedilol y trimetazidina como aditivo a las soluciones de preservación, UW o IGL-1 , (UW+TCR+CVD+TMZ o IGL-1+TCR+CVD+TMZ) resultó en un grado de protección mayor tanto en hígados esteatósicos como en no esteatósicos, comparado con los resultados obtenidos cuando el tacrolimus, carvedilol y trimetazidina fueron añadidos por separado a Ia solución de preservación UW (por ejemplo, [UW+TCR]+[UW+CVD]+[UW+TMZ]) o IGL-1 (por ejemplo [IGL+TCR]+[ IGL+CVD]+[ IGL+TMZ]). Además, Ia solución de preservación P1 ofreció una protección mayor en ambos tipos de hígados (esteatósicos como no esteatósicos) comparado con los resultados obtenidos en UW+TCR+CVD+TMZ y IGL-1 +TCR+CVD+TMZ.
En resumen, teniendo en cuenta los resultados mostrados en las Tablas 3-6, se observa un efecto sinérgico en las soluciones de Ia presente invención, el cual es especialmente evidente en el caso de Ia solución de preservación P1. Este efecto sinérgico es especialmente mejorado en hígados esteatósicos.

Claims

REIVINDICACIONES
1. Solución acuosa para Ia preservación de tejidos y órganos que comprende una cantidad efectiva de carvedilol, una cantidad efectiva de tacrolimus y una cantidad efectiva de trimetazidina.
2. Solución según Ia reivindicación 1 , que tiene una concentración de carvedilol comprendida entre 5 y 10 microM, una concentración de tacrolimus comprendida entre 5 y 10 microM, y una concentración de trimetazidina comprendida entre 0.01 microM y 10 microM.
3. Solución según cualquiera de las reivindicaciones 1-2, que tiene un pH de 6.5 a 8 y una osmolaridad de 290 a 320 milimoles/kg y que además comprende: - polientilenglicol teniendo un peso molecular superior a 15.000 en una concentración de 0.01 a 5 mM,
- rafinosa en una concentración de 20 a 40 mM,
- MgSO4 en una concentración de 1 a 10 mM,
- H2PO4 " en una concentración de 10 a 40 mM, - iones potasio en una concentración de 30 a 50 mM,
- iones sodio en una concentración de 110 a 160 mM, y
- ácido lactobiónico en una concentración de 70 a 140 mM.
4. Solución según Ia reivindicación 3, donde el pH es 7.4, Ia osmolaridad es 320 milimoles/kg, Ia concentración de polientilenglicol es 0.03 mM, Ia concentración de rafinosa es 30 mM, Ia concentración de MgSO4 es 5 mM, Ia concentración de H2PO4 " es 25 mM, Ia concentración de iones potasio es 40 mM, Ia concentración de iones sodio es 120 mM, Ia concentración de ácido lactobiónico es 100 mM, Ia concentración de tacrolimus es 5 microM, Ia concentración de carvedilol es 10 microM, y Ia concentración de trimetazidina es 1 microM.
5. Solución según Ia reivindicación 4, que consiste en:
- polientilenglicol que tiene un peso molecular aproximado de 35000 en una concentración de 0.03 mM,
- rafinosa en una concentración de 30 mM,
- MgSO4 en una concentración de 5 mM, - H2PO4 " en una concentración de 25 mM,
- iones potasio en una concentración de 40 mM,
- iones sodio en una concentración de 120 mM,
- ácido lactobiónico en una concentración de 100 mM, - tacrolimus en una concentración de 5 microM,
- carvedilol en una concentración de 10 microM, y
- trimetazidina en una concentración de 1 microM.
6. Solución según Ia reivindicación 5, que además consiste en dexametaxona en una concentración de 16 g/l, y penicilina en una concentración de 200.000
U/l.
7. Uso de Ia solución como se define en cualquiera de las reivindicaciones 1- 6 para Ia preservación de un tejido o un órgano.
8. Uso según Ia reivindicación 7, donde el órgano es un órgano abdominal.
9. Uso según la reivindicación 8, donde el órgano abdominal es un órgano marginal.
10. Método para Ia preservación de tejidos y órganos que comprende mantener dichos tejidos u órganos en Ia solución de preservación acuosa como se define en cualquiera de las reivindicaciones 1-6 a una temperatura comprendida entre 2-10 0C.
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