WO2014196674A1 - 알러지성분이 분리된 분리정제봉독 제조방법 - Google Patents

알러지성분이 분리된 분리정제봉독 제조방법 Download PDF

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이지연
신연희
이선영
박정근
김의경
김철구
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Definitions

  • the present invention relates to a method for preparing a separate purified bee venom in which allergic components are separated, and more particularly, to separate or remove allergen causing ingredients during bee venom by ultrafiltration, while maintaining a pharmacological effect. It relates to a method for producing a separate purified bee venom separated allergen components that can be prepared.
  • Bee venom is a poison that bees have that can be used to relieve arthritis, harden atherosclerosis, reduce back pain, treat skin wounds, strengthen the immune system, as well as anti-inflammatory and anti-inflammatory effects. And wrinkle improvement.
  • Purified Bee Venom is a product of bee venom collected from bees using bee venom collection device and it has undergone natural drying, water purification, sterilization and freeze drying process. Known.
  • Purified bee venom is composed of more than 40 substances including peptides, proteins (eg enzymes) and low-molecular active amines, and the main active ingredient is less than 11 kDa (kilo-Dalton) as shown in Table 1.
  • Peptides apamin, melittin, MCD
  • active amines histamine, dopamin
  • amino acids amino acids
  • phospholipase A2 Phospholipase A2, PLA2
  • hyaluronidase phosphatase
  • phosphatase and ⁇ -glucosidase
  • phospholipase A2 Phospholipase A2, PLA2
  • hyaluronidase phosphatase
  • phosphatase and ⁇ -glucosidase
  • ⁇ -glucosidase have a molecular weight of about 13 kDa or more. It is composed of ingredients and mainly plays a role in physiological activity such as blood cell membrane destruction, blood coagulation, vasodilation and permeation, blood circulation promotion, protein hydrolysis promotion, etc.
  • phospholipase A2 and hyaluronidase are bee venom compositions that induce potent allergic reactions and are known to cause very serious safety problems in users with hypersensitivity to bee venom (Stefan Bogdanov; Bee Venom: composition, Health, Medicine: A Review, Bee Product Science (2011))
  • the prior art as described above does not include the process of removing the phospholipase A2 and hyaluronidase inducing a strong allergic reaction, the composition and cosmetic composition using the bee venom extract prepared by the prior art as an active ingredient If used by a user who is sensitive to bee venom, it may cause serious safety problems.
  • the present invention has been made to solve the above problems, allergic reaction by removing the phospholipase A2 and hyaluronidase (Hyaluronidase) that induces a strong allergic reaction from ultrafiltration It is an object of the present invention to provide a method for preparing a separate purified bee venom which can be prepared from the essentially safe separated purified bee venom.
  • the present invention is to remove the hyaluronidase that induces a strong allergic reaction by ultrafiltration of purified bee venom, and to reduce the phospholipase A2 to prepare a separate purified bee venom that can be produced from the allergic reaction essentially safe To provide a method.
  • an object of the present invention is to provide a method for producing a separate purified bee venom by increasing the yield by easily filtering out allergen components contained in the purified bee venom.
  • the separated purified bee venom manufacturing method comprises a first step of preparing a purified bee venom powder, a second step of preparing a bee venom solution by mixing the purified bee venom powder with distilled water, the bee venom solution
  • a fourth step of obtaining a separated purified bee venom and in the second step, distilled water mixed with the purified bee venom powder is 1000 ml to 1500 ml per 1 g of the purified bee venom powder, and in the third step, the ultrafiltration
  • the allergens removed through the membrane are phospholipase A2 and hyaluronidase
  • the isolated purified bee venom is apamin.
  • the method for preparing a separate purified bee venom has a first step of preparing purified bee venom powder, a second step of preparing bee venom solution by mixing the purified bee venom powder with distilled water, and the bee venom solution has a cutoff size of 30 kDa. And a fourth step of removing an allergen component contained in the bee venom solution by filtration through a filtration membrane, and a fourth step of obtaining a separated purified bee venom from which the allergen component has been removed.
  • the purified bee venom powder and The distilled water to be mixed is 100 ml to 200 ml per 1 g of the purified bee venom powder
  • the allergic component removed through the ultrafiltration membrane is hyaluronidase
  • the separated tablet obtained Bee venom is characterized in that it comprises at least 2.5% by weight of apamin, at least 45% by weight of melittin, and 1% by weight or less of phospholipase A2.
  • the separated tablet bee venom containing cosmetics according to the present invention is characterized by comprising the isolated tablet bee venom of the present invention as an active ingredient.
  • phospholipase A2 and hyaluronidase which induce strong allergic reaction, are removed by ultrafiltration from purified bee venom, thereby being essentially safe from allergic reactions.
  • phospholipase A2 and hyaluronidase which induce strong allergic reaction, are removed by ultrafiltration from purified bee venom, thereby being essentially safe from allergic reactions.
  • ultrafiltration of purified bee venom removes hyaluronidase, which induces a strong allergic reaction, and reduces phospholipase A2 to the maximum, which is essentially safe from allergic reaction.
  • sequestration tablets containing sequestration tablets of the present invention including the sequestration tablets prepared by the sequestration tablets method of the present invention as an active ingredient exhibits the wrinkle improvement and whitening effect contained in bee venom and allergic reactions at the same time There is a fundamentally safe advantage from this.
  • FIG. 1 is a flow chart of a method for producing a separate purified bee venom according to an example of the present invention.
  • FIG. 2 is a flow chart of a method for producing a separate purified bee venom according to another embodiment of the present invention.
  • FIG. 5 is a graph showing the results of the wrinkle improvement effect test of isolated tablet bee venom according to Experimental Example 3 of the present invention.
  • Figure 6 is a graph showing the results of the whitening effect test of isolated purified bee venom according to Experimental Example 4 of the present invention.
  • Embodiments according to the concept of the present invention may be variously modified and may have various forms, and specific embodiments will be illustrated in the drawings and described in detail in the present specification or application. However, this is not intended to limit the embodiments in accordance with the concept of the present invention to a particular disclosed form, it should be understood to include all changes, equivalents, and substitutes included in the spirit and scope of the present invention.
  • FIG. 1 is a flow chart of a method for producing a separate purified bee venom according to an example of the present invention.
  • a purified bee venom powder may be prepared (S11).
  • bee venom to be prepared as purified bee venom powder can be collected from Western species Bees (Apis Mellifera).
  • the purified bee venom powder may be prepared by a variety of conventional methods, specifically, bee venom collected from bees by bee venom collecting device may be prepared as refined bee venom powder through a process of natural drying, water purification, sterilization and freeze drying.
  • the bee venom powder thus prepared may have similar bioactivity to bee venom collected from bees, but the present invention is not limited thereto.
  • the purified bee venom powder is mixed with distilled water to prepare bee venom solution (S12).
  • the mixed distilled water is preferably 1000ml to 1500ml per 1g purified bee venom powder.
  • the amount of distilled water mixed is less than 1000ml, the viscosity of the bee venom solution is increased, thereby reducing the permeability of the bee venom solution to the ultrafiltration membrane (to be described later), there is a problem that the yield after filtration can be lowered have.
  • the amount of mixed distilled water is more than 1500ml, there is an uneconomical problem because the time required for filtering and drying the bee venom solution becomes longer.
  • the yield of the separated purified bee venom when the mixed distilled water is adjusted to 1000 ml to 1500 ml per 1 g of purified bee venom powder may be 60% or more.
  • the bee venom solution is filtered through an ultrafiltration membrane having a cut-off size of 10 kDa (kilo-Dalton) to remove allergen components contained in the bee venom solution (S13).
  • the molecular weights of phospholipase A2 and hyaluronidase are approximately 13 kDa and 38 kDa, respectively.
  • the molecular weight is generally expressed in Daltons to indicate the approximate molecular weight, and the size is determined by the molecular weight.
  • the cutoff size of the ultrafiltration membrane is set to 10 kDa so as not to pass through a material having a size larger than that, and the phospholipase A2 which is an allergic component contained in the bee venom solution And hyaluronidase.
  • the time required for filtration can be shortened.
  • the separated purified bee venom from which the allergic component has been removed is obtained (S14).
  • the obtained separated tablet bee venom may comprise at least 4% by weight, melittin (melittin) at least 50% by weight.
  • FIG. 2 is a flow chart of a method for producing a separate purified bee venom according to another embodiment of the present invention.
  • the method of preparing a separate purified bee venom is as follows. First, a purified bee venom powder is prepared (S21). At this time, the purified bee venom powder may be prepared in the same manner as the purified bee venom powder according to an example of the present invention.
  • purified bee venom powder is mixed with distilled water to prepare bee venom solution (S22).
  • the mixed distilled water is preferably 100ml to 200ml per 1g of purified bee venom powder.
  • the bee venom solution is filtered through an ultrafiltration membrane having a cutoff size of 30 kDa to remove allergen components contained in the bee venom solution (S23).
  • the amount of distilled water to be mixed is less than 100ml, the viscosity of the bee venom solution is increased, thereby lowering the permeability of the ultrafiltration membrane, there is a problem that the yield after filtration can be lowered.
  • the amount of distilled water to be mixed is more than 200ml, referring to Table 2, the concentration of phospholipase A2, which is an allergic component, is diluted, and a strong allergic component because the permeability of phospholipase A2 to the ultrafiltration membrane is increased. There is a problem in that phosphorus lipase A2 can not be reduced as much as possible.
  • the method for preparing a separate purified bee venom is hyaluronidase, in which distilled water mixed to prepare bee venom solution is 100 ml to 200 ml per 1 g of purified bee venom powder, and the cutoff size of the ultrafiltration membrane is set to 30 kDa. Can be removed and phospholipase A2 can be reduced as much as possible.
  • the time required for filtration can be shortened.
  • the separated purified bee venom from which the allergic component has been removed is obtained (S24).
  • the obtained separated tablet bee venom may include 2.5 wt% or more, melittin (melittin) 45 wt% or more, phospholipase A2 1 wt% or less.
  • ultrafiltration of purified bee venom removes hyaluronidase that induces a strong allergic reaction, and reduces phospholipase A2 as much as possible to fundamentally prevent allergic reactions.
  • phospholipase A2 as much as possible to fundamentally prevent allergic reactions.
  • Separately purified bee venom-containing cosmetics includes an isolated tablet bee venom prepared according to an example of the present invention and the method of preparing separate bee venom as an active ingredient.
  • the separate tablets containing the separated tablets according to another embodiment of the present invention including the isolated tablets prepared by the method of manufacturing the tablets separated tablets as an active ingredient wrinkle improvement and whitening effect contained in the bee venom At the same time there is a fundamentally safe advantage from allergic reactions.
  • Bee venom was collected from Western honey bee (Apis Mellifera) by an electric shock method, and the collected bee venom was dissolved in distilled water, and then filtered with filter paper in which pores having an average diameter of 3.0 ⁇ m were filtered. Pollen and the like were removed.
  • impurities and bacteria were removed by filtration through a membrane filter having a pore size of 0.45 ⁇ m to 0.2 ⁇ m, and freeze-dried to prepare purified bee venom powder.
  • the bee venom solution was prepared by mixing the previously prepared purified bee venom powder and distilled water filtered with a membrane filter of 0.2 ⁇ m in a ratio of 1: 1000 (g / ml).
  • the beeper solution was filtered through an ultrafiltration membrane (Ultracel PL regenerated cellulose, 76 mm) having a cutoff size of 10 kDa to remove allergen components, thereby obtaining a separate purified bee venom.
  • an ultrafiltration membrane Ultracel PL regenerated cellulose, 76 mm
  • the bee venom solution in the cell was filtered until it was concentrated to about 5 mL to 10 mL.
  • the separated purified bee venom was dried in powder form by a freeze drying method.
  • Example 2 of the present invention purified bee venom powder was prepared in the same manner as in Example 1 of the present invention.
  • the bee venom solution was prepared by mixing the previously prepared purified bee venom powder and distilled water filtered with a membrane filter of 0.2 ⁇ m in a ratio of 1: 100 (g / ml).
  • the bee venom solution was filtered through an ultrafiltration membrane (Ultracel, RC 76 mm) having a cutoff size of 30 kDa to remove allergen components, thereby obtaining a purified purified venom.
  • an ultrafiltration membrane Ultracel, RC 76 mm
  • the bee venom solution in the cell was filtered until it was concentrated to about 5 mL to 10 mL.
  • the separated purified bee venom was dried in powder form by a freeze drying method.
  • 18% or 20% gel composition ((i) 18% gel composition: 1.3 ml of distilled water, 6.0 ml of 30% acrylamide mix, tris (hydroxymethyl) aminomethane-HCl 1.5 M Tris-HCl) ) (pH8.8) 2.5 mL, 10 ⁇ l 10% sodium dodecyl sulfate (SDS), 100 ⁇ l 10% ammonium persulfate, 4 ⁇ l tetramethylethylenediamine (TEMED); (ii) 20% gel composition: distilled water 700 Make a ⁇ l, 30% acrylamide mix, 6.6 ml of 1.5 M Tris-HCl (pH8.8) 2.5 ml, 100 ⁇ l 10% SDS, 100 ⁇ l 10% ammonium persulfate, 4 ⁇ l TEMED and make a glass plate About 10 mL was dispensed.
  • SDS sodium dodecyl sulfate
  • TEMED tetramethylethylenediamine
  • the separating gel was hardened, and then about 5 ml of staking gel composition (staking gel composition: 3.4 ml of distilled water, 830 ⁇ l of 30% acrylamide mix, 630 ⁇ l of 1.5 M Tris-HCl (pH 8.8), 10% SDS). 50 ⁇ l, 50 ⁇ l 10% ammonium persulfate, 5 ⁇ l TEMED) were dispensed, and then comb was inserted before the gel solidified. After the staking gel solidified, the comb was removed to complete the SDS page gel.
  • staking gel composition 3.4 ml of distilled water, 830 ⁇ l of 30% acrylamide mix, 630 ⁇ l of 1.5 M Tris-HCl (pH 8.8), 10% SDS.
  • 50 ⁇ l, 50 ⁇ l 10% ammonium persulfate, 5 ⁇ l TEMED were dispensed, and then comb was inserted before the gel solidified. After the staking gel solidified, the comb was removed to
  • Fraction and sample buffer (Laemmli 2x Concentrate, sigma, S3401) to check the SDS page was mixed in a 1: 1 ratio, and the water bath at 90 °C water bath for 5 minutes.
  • the SDS page power supply was run for about 30min at 60V in the staking gel and for 60-90 min at 120V in the separating gel.
  • the components of the sample were separated according to the molecular weight in the gel according to the current flowing from the power supply, and the results of staining with the coomassie brilliant bule R-250 dye and the destaining solution are shown in FIG. 3.
  • FIG 3 is an image showing the results of the electrophoretic test according to the experimental example of the present invention.
  • Phospholipase A2 bands appearing in the molecular weight 15-20kDa can be confirmed that the removal of the separated tablets of Example 1, it is confirmed that the present invention is reduced almost in the separated tablets of Example 2. In addition, it can be confirmed that the band of hyaluronidase shown at 50 kDa was removed from the separated tablet bee venom of Examples 1 and 2 of the present invention.
  • the separated purified bee venom of Example 1 and the isolated purified bee venom of Example 2 were each prepared at a concentration of 1.0 mg / ml, and were subjected to a high-performance liquid chromatography (HPLC) apparatus and a column for peptide analysis (150 X 4.6 mm 4.0 ⁇ m, 90 ⁇ s, phenomenex®), and HPLC (0.2% TFA in water) and acetonitrile (0.22% TFA in ACN) were analyzed as solvents.
  • HPLC high-performance liquid chromatography
  • Example 2 As shown in Table 3 in the separated tablets of Example 1, it can be seen that there is no PLA2. In addition, it can be seen that in the separated tablet bee venom of Example 2 present as much as 1% by weight or less.
  • Example 3 of the present invention 20 ⁇ l of the standard purified bee venom and the separated purified bee venom of Examples 1 and 2 were respectively added to 200 ⁇ l of 0.1 mM N-succinly- (Ala) 3-p-nitroanilide as a substrate, and 10 ⁇ l of Elastase (Porcine pancreas solution) of mg / ml was added and reacted at 25 ° C. for 10 minutes, and then the absorbance at 410 nm was measured using an Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) reader (%). By calculating, the effect of wrinkle improvement is confirmed.
  • Elastase Porcine pancreas solution
  • FIG. 5 is a graph showing the results of the wrinkle improvement effect test of isolated tablet bee venom according to Experimental Example 3 of the present invention.
  • the wrinkle improvement effect of the separated tablet bee venom of Examples 1 and 2 was 0.2 mg. It can be seen that all of the concentrations of / ml, 0.5 mg / ml, 1 mg / ml, 2 mg / ml and 3 mg / ml showed better activity than the standard tablet bee venom.
  • the substrate solution was prepared by dissolving 21.2 mg tyrosine in 46.8 ml 0.1 M Phosphate buffered saline (PH6.8). Each was mixed with distilled water to prepare a test solution.
  • Figure 6 is a graph showing the whitening effect test results of the separated tablets according to Experimental Example 4 of the present invention.
  • the whitening effect of the separated tablet bee venom of Examples 1 and 2 was 0.1 mg / ml. It can be seen that at each concentration of 0.5 mg / ml, 1 mg / ml, 3 mg / ml, 5 mg / ml, 8 mg / ml and 10 mg / ml, all showed better activity than the standard tablet bee venom.
  • Experimental strains were absorbed in various concentrations of standard purified bee venom, isolated purified bee venom of Experimental Examples 1 and 2, and then inoculated with a dispenser on a solid medium cultured with the strain. After 16 to 18 hours of incubation, the size of the bacterial inhibition zone (inhibition zone) was observed to compare the antimicrobial status with the reference purified bee venom as a control.
  • the bacteria are passaged to the liquid medium, followed by incubation for 24 hours, and then the indicator bacteria are activated.
  • the number of indicators is found to be 0.5-0.7 O.D at 660 nm, a certain amount is dispensed into the solid medium and plated on the medium with sterile triangular glass rods.
  • a paper disc is placed on the medium on which the indicator bacteria are smeared, and 40 ⁇ l of the standard purified bee venom and the separated purified bee venom of Experimental Examples 1 and 2 are loaded by concentration.
  • S.aureus is Staphylococcus aureus
  • S.mutans is Streptococcus mutans
  • S.typhimurium is Salmonella typhimurium
  • the active ingredient of the separated tablets of Examples 1 and 2 of the present invention can be seen to exhibit the same degree of antimicrobial effect as compared to the standard tablets, the isolated tablets according to the present invention are allergic While blocking fundamentally it can be seen that it shows a significant antibacterial effect.
  • Salmonella typhimurium and Staphylococcus aureus strains were incubated for 24 hours in luria-bertani (LB) broth, and Streptococcus epidermidis strains were used for 24 hours in brain heart infusion (BHI) broth.
  • Purified bee venom was diluted in distilled water each half to prepare a test solution at various concentrations.
  • the absorbance at 650 nm was measured to measure the initial concentration of the strain, and the pure liquid medium and the standard purified bee venom and the separated purified bee venom of each of Examples 1 and 2 were added to the tube, and then a certain amount of strain was added. Inoculated.
  • S.typhimurium is Salmonella typhimurium (S.T)
  • S.aureus is Staphylococcus aureus (S.A)
  • S.epidermidis is Staphylococcus epidermidis (S.E)
  • the isolated tablet bee venom according to Examples 1 and 2 of the present invention showed the same degree of bacterial inhibition as compared with the standard tablet bee venom, and the effect on the minimum inhibitory growth concentration test (MIC) was It can be seen that the result is better than the standard purified bee venom.
  • the isolated tablet bee venom according to Examples 1 and 2 of the present invention exhibits a significant antimicrobial effect while blocking allergy induction.
  • the isolated tablet bee venom of the present invention can be used in the industry of medicine, food and cosmetics using bee venom as a material.

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Abstract

본 발명은 한외여과방법으로 봉독 중 알러지 유발성분을 감축 또는 제거하여 약리 효과를 유지하면서도 알러지유발을 근본적으로 차단한 분리정제봉독을 제조할 수 있는 알러지성분이 분리된 분리정제봉독 제조방법에 관한 것으로, 정제봉독 분말을 준비하는 제 1단계, 상기 정제봉독 분말을 증류수와 혼합하여 봉독용액을 제조하는 제 2단계, 상기 봉독용액을 컷오프(cut-off) 사이즈가 10kDa(kilo-Dalton)인 한외여과 막(ultrafiltration membrane)으로 여과하여 상기 봉독용액에 포함된 알러지(allergy)성분을 제거하는 제 3단계 및 상기 알러지성분이 제거된 분리정제봉독을 수득하는 제 4단계를 포함하고, 상기 제 2단계에서, 상기 정제봉독 분말과 혼합되는 증류수는 상기 정제봉독 분말 1g 당 1000㎖ 내지 1500㎖이며, 상기 제 3단계에서, 상기 한외여과 막을 통해 제거되는 알러지성분은 포스포리파아제 A2(Phospholipase A2) 및 히알루로니다제(Hyaluronidase)이며, 상기 제 4단계에서, 수득되는 상기 분리정제봉독은 아파민(apamin)을 4 중량% 이상, 멜리틴(melittin)을 50 중량% 이상 포함하는 것을 특징으로 한다.

Description

알러지성분이 분리된 분리정제봉독 제조방법
본 발명은 알러지성분이 분리된 분리정제봉독 제조방법에 관한 것으로, 보다 상세하게는 한외여과방법으로 봉독 중 알러지 유발성분을 감축 또는 제거하여 약리 효과를 유지하면서도 알러지유발을 근본적으로 차단한 분리정제봉독을 제조할 수 있는 알러지성분이 분리된 분리정제봉독 제조방법에 관한 것이다.
봉독(蜂毒)이란 벌이 가지고 있는 독이며, 관절염 완화, 동맥경화 완화, 요통 완화, 피부상처의 치료, 면역체계를 강화하는 항균작용 및 항염증작용뿐만 아니라, 미용의 목적으로도 피부의 미백작용 및 주름개선작용에 관여한다고 알려져 있다.
정제봉독(Purified Bee Venom, PBV)은 봉독채집장치를 이용하여 벌로부터 채집된 봉독이 자연건조, 수용정제, 멸균 및 동결건조 등의 공정을 거친 결과물이며, 정제봉독과 봉독의 생리활성은 유사한 것으로 알려져 있다.
정제봉독의 생리활성작용을 가지는 구성성분은 다음의 표 1과 같다.
[표 1]
Figure PCTKR2013005016-appb-I000001
정제봉독은 펩티드, 단백질(eg. 효소) 및 낮은 분자의 활성아민 등을 포함하여 40가지 이상의 물질로 구성되고, 주된 유효성분은 표 1에 나타낸 바와 같이, 분자량이 11kDa(kilo-Dalton)이하로 구성되는 펩티드(apamin, melittin, MCD), 활성아민(histamine, dopamin) 및 아미노산 등이다.
봉독구성 중 단백질은 약 13kDa 이상의 분자량을 가지고 있는 포스포리파아제 A2(Phospholipase A2, PLA2), 히알루로니다제(Hyaluronidase), 포스파타아제(phosphatase), α-글루코시다아제(α-Glucosidase) 등의 성분으로 구성되고, 주로 혈액세포막 파괴, 혈액응고, 혈관확장 및 투과, 혈액순환 촉진, 단백질의 가수분해 촉진 등의 생리활성역할이 있다,
특히, 포스포리파아제 A2와 히알루로니다제는 강력한 알러지반응을 유도하는 봉독 조성물이며, 봉독에 대한 과민성을 지닌 사용자에게서는 매우 심각한 안전상의 문제를 일으킬 수 있는 것으로 알려져 있다.(Stefan Bogdanov; Bee Venom: composition, Health, Medicine: A Review, Bee Product Science (2011))
이러한 부작용 때문에 봉독의 효율적인 투입량을 제한하고 있으며, 봉독의 투입량이 제한됨에 따라 봉독의 생리활성 효과 또한 제한되어 완전히 구현되지 못하는 문제가 발생하게 된다.
공개특허공보 제10-2012-0003178호는 봉독 추출물을 함유하는 피부 미백 및 보습용 조성물에 관한 것으로, 봉독을 전처리하거나 봉독으로부터 봉독추출물을 추출하고 이를 유효성분으로 하는, 피부 미백 및 피부 보습효과를 나타내는 조성물 또는 화장품 조성물에 대하여 개시하고 있다.
그러나 상기와 같은 종래의 기술에서는 강력한 알러지반응을 유도하는 포스포리파아제 A2와 히알루로니다제를 제거하는 과정을 포함하지 않아, 종래의 기술에 의해 제조된 봉독추출물을 유효성분으로 하는 조성물 및 화장품 조성물을, 봉독에 대하여 과민성을 지닌 사용자가 사용할 경우 매우 심각한 안전상의 문제를 일으킬 수 있다.
또한, 종래에 알러지반응을 저해하기 위하여 알러지반응 저해제를 첨가하는 방안이 고안되기도 하였으나, 이는 알러지를 근본적으로 해결하지 못하고, 알러지반응 저해제에 의한 부작용을 유발할 수 있는 문제가 있다.
또한, 종래의 봉독에서 포스포리파아제 A2와 히알루로니다제를 제거하는 방안으로는 HPLC(high performance liquid chromatography) 또는 젤 여과(gel filtration) 방법이 있지만, 분리 또는 정제 과정이 진행됨에 따라 수율이 급격히 낮아지고, 대량생산을 하기 어려운 문제가 있다.
본 발명은 상기한 바와 같은 문제를 해결하기 위해 안출된 것으로, 강력한 알러지반응을 유도하는 포스포리파아제 A2(Phospholipase A2)와 히알루로니다제(Hyaluronidase)를 정제봉독으로부터 한외여과하여 제거함으로써, 알러지반응으로부터 근본적으로 안전한 분리정제봉독을 제조할 수 있는 분리정제봉독 제조방법의 제공을 목적으로 한다.
또한, 본 발명은 정제봉독을 한외여과하여 강력한 알러지반응을 유도하는 히알루로니다제를 제거하고, 포스포리파아제 A2를 감축하여 알러지반응으로부터 근본적으로 안전한 분리정제봉독을 제조할 수 있는 분리정제봉독 제조방법의 제공을 목적으로 한다.
또한, 본 발명은 정제봉독에 포함된 알러지성분을 한외여과하여 제거함으로써 수율을 높이고, 대량생산이 용이한 분리정제봉독 제조방법의 제공을 목적으로 한다.
또한, 본 발명은 본 발명의 분리정제봉독을 포함하는 것을 특징으로 하는 분리정제봉독 함유 화장품의 제공을 목적으로 한다.
그러나 본 발명의 목적은 상기에 언급된 목적으로 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 목적들은 아래의 기재로부터 당업자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.
상기한 바와 같은 목적을 달성하기 위해 본 발명에 따른 분리정제봉독 제조방법은 정제봉독 분말을 준비하는 제 1단계, 상기 정제봉독 분말을 증류수와 혼합하여 봉독용액을 제조하는 제 2단계, 상기 봉독용액을 컷오프(cut-off) 사이즈가 10kDa(kilo-Dalton)인 한외여과 막(ultrafiltration membrane)으로 여과하여 상기 봉독용액에 포함된 알러지(allergy)성분을 제거하는 제 3단계 및 상기 알러지성분이 제거된 분리정제봉독을 수득하는 제 4단계를 포함하고, 상기 제 2단계에서, 상기 정제봉독 분말과 혼합되는 증류수는 상기 정제봉독 분말 1g 당 1000㎖ 내지 1500㎖이며, 상기 제 3단계에서, 상기 한외여과 막을 통해 제거되는 알러지성분은 포스포리파아제 A2(Phospholipase A2) 및 히알루로니다제(Hyaluronidase)이며, 상기 제 4단계에서, 수득되는 상기 분리정제봉독은 아파민(apamin)을 4 중량% 이상, 멜리틴(melittin)을 50 중량% 이상 포함하는 것을 특징으로 한다.
또한, 본 발명에 따른 분리정제봉독 제조방법은 정제봉독 분말을 준비하는 제 1단계, 상기 정제봉독 분말을 증류수와 혼합하여 봉독용액을 제조하는 제 2단계, 상기 봉독용액을 컷오프 사이즈가 30kDa인 한외여과 막으로 여과하여 상기 봉독용액에 포함된 알러지성분을 제거하는 제 3단계 및 상기 알러지성분이 제거된 분리정제봉독을 수득하는 제 4단계를 포함하고, 상기 제 2단계에서, 상기 정제봉독 분말과 혼합되는 증류수는 상기 정제봉독 분말 1g 당 100㎖ 내지 200㎖이며, 상기 제 3단계에서, 상기 한외여과 막을 통해 제거되는 알러지성분은 히알루로니다제이고, 상기 제 4단계에서, 수득되는 상기 분리정제봉독은 아파민을 2.5 중량% 이상, 멜리틴을 45 중량% 이상, 포스포리파아제 A2를 1 중량% 이하 포함하는 것을 특징으로 한다.
또한, 본 발명에 따른 분리정제봉독 함유 화장품은 본 발명의 분리정제봉독을 유효성분으로 포함하는 것을 특징으로 한다.
본 발명의 분리정제봉독 제조방법에 따르면, 강력한 알러지반응을 유도하는 포스포리파아제 A2(Phospholipase A2)와 히알루로니다제(Hyaluronidase)를 정제봉독으로부터 한외여과하여 제거함으로써, 알러지반응으로부터 근본적으로 안전한 분리정제봉독을 제조할 수 있는 이점이 있다.
또한, 본 발명의 분리정제봉독 제조방법에 따르면, 정제봉독을 한외여과하여 강력한 알러지반응을 유도하는 히알루로니다제를 제거하고, 포스포리파아제 A2를 최대한 감축하여 알러지반응으로부터 근본적으로 안전한 분리정제봉독을 제조할 수 있는 이점이 있다.
또한, 본 발명의 분리정제봉독 제조방법에 따르면, 정제봉독에 포함된 알러지성분을 한외여과하여 제거함으로써 수율을 높이고, 대량생산이 용이한 이점이 있다.
또한, 본 발명의 분리정제봉독 함유 화장품에 따르면, 본 발명의 분리정제봉독 제조방법에 의해 제조된 분리정제봉독을 유효성분으로 포함하여 봉독에 포함된 주름개선효과 및 미백효과를 나타냄과 동시에 알러지반응으로부터 근본적으로 안전한 이점이 있다.
도 1은 본 발명의 일례에 따른 분리정제봉독 제조방법의 흐름도이다.
도 2는 본 발명의 다른 예에 따른 분리정제봉독 제조방법의 흐름도이다.
도 3은 본 발명의 실험예 1에 따른 전기영동 테스트의 결과를 나타내는 이미지이다.
도 4는 본 발명의 실험예 2에 따른 분리정제봉독의 HPLC(High-performance liquid chromatography) 성분분석 그래프이다.
도 5는 본 발명의 실험예 3에 따른 분리정제봉독의 주름개선효과 테스트 결과를 나타내는 그래프이다.
도 6은 본 발명의 실험예4에 따른 분리정제봉독의 미백효과 테스트 결과를 나타내는 그래프이다.
이하, 본 발명의 바람직한 실시 예의 상세한 설명은 첨부된 도면들을 참조하여 설명할 것이다. 하기에서 본 발명을 설명함에 있어서, 관련된 공지 기능 또는 구성에 대한 구체적인 설명이 본 발명의 요지를 불필요하게 흐릴 수 있다고 판단되는 경우에는 그 상세한 설명을 생략할 것이다.
본 발명의 개념에 따른 실시 예는 다양한 변경을 가할 수 있고 여러 가지 형태를 가질 수 있으므로 특정 실시 예들을 도면에 예시하고 본 명세서 또는 출원에 상세하게 설명하고자 한다. 그러나 이는 본 발명의 개념에 따른 실시 예를 특정한 개시 형태에 대해 한정하려는 것이 아니며, 본 발명의 사상 및 기술 범위에 포함되는 모든 변경, 균등물 내지 대체물을 포함하는 것으로 이해되어야 한다.
어떤 구성요소가 다른 구성요소에 "연결되어" 있다거나 "접속되어" 있다고 언급된 때에는, 그 다른 구성요소에 직접적으로 연결되어 있거나 또는 접속되어 있을 수도 있지만, 중간에 다른 구성요소가 존재할 수도 있다고 이해되어야 할 것이다. 반면에, 어떤 구성요소가 다른 구성요소에 "직접 연결되어" 있다거나 "직접 접속되어" 있다고 언급된 때에는, 중간에 다른 구성요소가 존재하지 않는 것으로 이해되어야 할 것이다. 구성요소들 간의 관계를 설명하는 다른 표현들, 즉 "~사이에"와 "바로 ~사이에" 또는 "~에 이웃하는"과 "~에 직접 이웃하는" 등도 마찬가지로 해석되어야 한다.
본 명세서에서 사용한 용어는 단지 특정한 실시예를 설명하기 위해 사용된 것으로, 본 발명을 한정하려는 의도가 아니다. 단수의 표현은 문맥상 명백하게 다르게 뜻하지 않는 한, 복수의 표현을 포함한다. 본 명세서에서, "포함하다" 또는 "가지다" 등의 용어는 설시된 특징, 숫자, 단계, 동작, 구성요소, 부분품 또는 이들을 조합한 것이 존재함을 지정하려는 것이지, 하나 또는 그 이상의 다른 특징들이나 숫자, 단계, 동작, 구성요소, 부분품 또는 이들을 조합한 것들의 존재 또는 부가 가능성을 미리 배제하지 않는 것으로 이해되어야 한다.
도 1은 본 발명의 일례에 따른 분리정제봉독 제조방법의 흐름도이다.
본 발명의 일례에 따른 분리정제봉독 제조방법은 도 1에 도시된 바와 같이, 먼저 정제봉독 분말을 준비할 수 있다(S11). 이때, 정제봉독 분말로 준비될 봉독은 서양종 꿀벌(Apis Mellifera)로부터 채취될 수 있다.
여기서, 정제봉독 분말은 종래의 다양한 방법으로 준비될 수 있는데, 구체적으로는 봉독채집장치에 의해 벌로부터 채집된 봉독이 자연건조, 수용정제, 멸균 및 동결 건조의 공정을 통해 정제봉독 분말로 준비될 수 있고, 이렇게 준비된 정제봉독 분말은 벌로부터 채집된 봉독과 생리활성이 유사할 수 있으나, 본 발명이 이에 한정되는 것은 아니다.
다음으로, 정제봉독 분말을 증류수와 혼합하여 봉독용액을 제조한다(S12). 이때, 혼합되는 증류수는 정제봉독 분말 1g 당 1000㎖ 내지 1500㎖인 것이 바람직하다.
여기서, 혼합되는 증류수의 양이 1000㎖ 미만일 경우, 봉독용액의 점도가 증가되고, 이에 따라 후술할 한외여과 막(ultrafiltration membrane)에 대한 봉독용액의 투과성이 낮아져서, 여과 후의 수득률이 낮아질 수 있는 문제점이 있다. 또한, 혼합되는 증류수의 양이 1500㎖ 초과일 경우, 봉독용액의 여과 및 건조에 필요한 소요시간이 길어지므로 비경제적인 문제가 있다.
더불어, 혼합되는 증류수를 정제봉독 분말 1g 당 1000㎖ 내지 1500㎖로 조절할 경우의 분리정제봉독의 수득률은 60% 이상일 수 있다.
그리고 봉독용액을 컷오프(cut-off) 사이즈가 10kDa(kilo-Dalton)인 한외여과 막(ultrafiltration membrane)으로 여과하여 봉독용액에 포함된 알러지성분을 제거한다(S13).
정제봉독 분말 주요성분의 대략적인 분자량은 다음의 표 2와 같다.
[표 2]
Figure PCTKR2013005016-appb-I000002
표 2에 나타난 바와 같이, 강력한 알러지성분으로 알려져 있는 포스포리파아제 A2(Phospholipase A2) 및 히알루로니다제(Hyaluronidase)의 분자량은 대략적으로 각각 13kDa과 38kDa이다. 이러한 리보솜, 미토콘드리아, 바이러스 등의 생리활성 물질들의 경우, 분자량을 일반적으로 달톤(Dalton)으로 표시하여 대략적인 분자량을 나타내며, 그 분자량으로 크기(size)를 가늠한다.
따라서 본 발명의 일례에 따른 분리정제봉독 제조방법은 한외여과 막의 컷오프 사이즈를 10kDa으로 설정하여, 그 이상의 크기를 가지는 물질을 통과 못 하도록 하는 방식으로, 봉독용액에 포함된 알러지성분인 포스포리파아제 A2 및 히알루로니다제를 제거할 수 있다. 또한, 여과 시, 봉독용액에 압력을 가하여 여과가 빠르게 진행되도록 함으로써, 여과 소요시간을 단축할 수 있다.
그 뒤, 알러지성분이 제거된 분리정제봉독을 수득한다(S14). 이때, 수득되는 분리정제봉독은 아파민(apamin)을 4 중량% 이상, 멜리틴(melittin)을 50 중량% 이상 포함할 수 있다.
도 2는 본 발명의 다른 예에 따른 분리정제봉독 제조방법의 흐름도이다.
본 발명의 다른 예에 따른 분리정제봉독 제조방법은 도 2에 도시된 바와 같이, 먼저 정제봉독 분말을 준비한다(S21). 이때, 정제봉독 분말은 본 발명의 일례에 따른 정제봉독 분말과 같은 방식으로 준비될 수 있다.
다음으로, 정제봉독 분말을 증류수와 혼합하여 봉독용액을 제조한다(S22). 여기서, 혼합되는 증류수는 정제봉독 분말 1g 당 100㎖ 내지 200㎖인 것이 바람직하다.
그리고 봉독용액을 컷오프 사이즈가 30kDa인 한외여과 막으로 여과하여 봉독용액에 포함된 알러지성분을 제거한다(S23).
특히, 혼합되는 증류수의 양이 100㎖ 미만일 경우, 봉독용액의 점도가 증가되고 이에 따라 한외여과 막의 투과성이 낮아져서, 여과 후의 수득률이 낮아질 수 있는 문제점이 있다. 또한, 혼합되는 증류수의 양이 200㎖ 초과일 경우, 표 2를 참고하여, 알러지성분인 포스포리파아제 A2의 농도가 희석되고, 한외여과 막에 대한 포스포리파아제 A2의 투과율이 증가되므로 강력한 알러지성분인 포스포리파아제 A2를 최대한 감축할 수 없는 문제가 있다.
따라서 본 발명의 다른 예에 따른 분리정제봉독 제조방법은 봉독용액을 제조하기 위해 혼합되는 증류수가 정제봉독 분말 1g 당 100㎖ 내지 200㎖로, 한외여과 막의 컷오프 사이즈를 30kDa으로 설정하여 히알루로니다제를 제거하고, 포스포리파아제 A2를 최대한 감축할 수 있다. 또한, 여과 시, 봉독용액에 압력을 가하여 여과가 빠르게 진행되도록 함으로써, 여과 소요시간을 단축할 수 있다.
그 뒤, 알러지성분이 제거된 분리정제봉독을 수득한다(S24). 이때, 수득되는 분리정제봉독은 아파민(apamin)을 2.5 중량% 이상, 멜리틴(melittin)을 45 중량% 이상, 포스포리파아제 A2를 1 중량% 이하 포함할 수 있다.
상술한 바와 같이, 본 발명의 일례에 따른 분리정제봉독 제조방법에 의하면, 강력한 알러지반응을 유도하는 포스포리파아제 A2(Phospholipase A2)와 히알루로니다제(Hyaluronidase)를 정제봉독으로부터 한외여과하여 제거함으로써, 알러지반응으로부터 근본적으로 안전한 분리정제봉독을 제조할 수 있는 이점이 있다.
또한, 본 발명의 다른 예에 따른 분리정제봉독 제조방법에 의하면, 정제봉독을 한외여과하여 강력한 알러지반응을 유도하는 히알루로니다제를 제거하고, 포스포리파아제 A2를 최대한 감축하여 알러지반응으로부터 근본적으로 안전한 분리정제봉독을 제조할 수 있는 이점이 있다.
또한, 본 발명의 분리정제봉독 제조방법에 따르면, 정제봉독에 포함된 알러지성분을 한외여과하여 제거함으로써 수율을 높이고, 대량생산이 용이한 이점이 있다.
본 발명의 또 다른 예에 따른 분리정제봉독 함유 화장품은 본 발명의 일례 및 다른 예의 분리정제봉독 제조방법에 따라 제조된 분리정제봉독을 유효성분으로 포함한다.
상술한 바와 같이, 본 발명의 또 다른 예에 따른 분리정제봉독 함유 화장품은 본 발명의 분리정제봉독 제조방법에 의해 제조된 분리정제봉독을 유효성분으로 포함하여 봉독에 포함된 주름개선효과 및 미백효과를 나타냄과 동시에 알러지반응으로부터 근본적으로 안전한 이점이 있다.
아래에서 본 발명에 대해 실시예를 기초로 하여 상세하게 설명한다. 제시된 실시예는 예시적인 것으로 본 발명의 범위를 제한하기 위한 것은 아니다.
<실시예 1>
1) 정제봉독 분말의 준비
서양종 꿀벌(Apis Mellifera)로부터 봉독(bee venom)을 전기충격방법으로 채집하고, 채집한 봉독을 증류수에 용해시킨 후, 평균 3.0 ㎛의 세공이 형성된 거름종이(filter paper)로 여과하여 흙, 먼지 및 화분(花粉) 등을 제거하였다.
그리고 0.45 ㎛ 내지 0.2 ㎛의 세공을 가지는 막 필터(membrane filtration)로 여과하여 불순물 및 균을 제거하였고, 동결 건조하여 정제봉독 분말을 준비하였다.
2) 알러지성분 분리
앞서 준비한 정제봉독 분말과 0.2 ㎛의 막 필터로 여과한 증류수를 1:1000(g/㎖)의 비로 혼합하여 봉독용액을 제조하였다.
그리고 Millipore series 8400 stirred cell을 이용하여, 컷오프 사이즈가 10kDa인 한외여과 막(Ultracel PL regenerated cellulose, 76 ㎜)으로 봉독용액을 여과하여 알러지성분을 제거함으로써, 분리정제봉독을 수득하였다. 이때, 0.4 MPa의 압력으로, cell 내의 봉독용액이 약 5 ㎖ 내지 10 ㎖로 농축될 때까지 여과하였다.
수득된 분리정제봉독은 동결 건조방법으로 분말형태로 건조되었다.
<실시예 2>
1) 정제봉독 분말의 준비
본 발명의 실시예 2에서는 본 발명의 실시예 1에서와 같은 방법으로 정제봉독 분말을 준비하였다.
2) 알러지성분 분리
앞서 준비한 정제봉독 분말과 0.2 ㎛의 막 필터로 여과한 증류수를 1:100(g/㎖)의 비로 혼합하여 봉독용액을 제조하였다.
그리고 Millipore series 8400 stirred cell을 이용하여, 컷오프 사이즈가 30kDa인 한외여과 막(Ultracel, RC 76 ㎜)으로 봉독용액을 여과하여 알러지성분을 제거함으로써, 분리정제봉독을 수득하였다. 이때, 0.4 MPa의 압력으로, cell 내의 봉독용액이 약 5 ㎖ 내지 10 ㎖로 농축될 때까지 여과하였다.
수득된 분리정제봉독은 동결 건조방법으로 분말형태로 건조되었다.
<실험예 1>
전기영동 테스트
18% 또는 20%의 겔(gel) 조성((i) 18%의 겔 조성: 증류수 1.3 ㎖, 30% 아크릴아미드 믹스(acrylamide mix) 6.0 ㎖, 1.5 M Tris-HCl(tris(hydroxymethyl)aminomethane-HCl) (pH8.8) 2.5 ㎖, 10% SDS(sodium dodecyl sulfate) 100 ㎕, 10% 암모늄 퍼설페이트(ammonium persulfate) 100 ㎕, TEMED(tetramethylethylenediamine) 4 ㎕; (ii) 20%의 겔 조성: 증류수 700㎕, 30% 아크릴아미드 믹스 6.6 ㎖, 1.5 M Tris-HCl (pH8.8) 2.5 ㎖, 10% SDS 100 ㎕, 10% 암모늄 퍼설페이트(ammonium persulfate) 100 ㎕, TEMED 4 ㎕)을 만들고, 유리 플레이트에 약 10 ㎖정도 분주하였다.
평형을 맞춰 separating gel을 굳혔고, 그 뒤, staking gel 조성물 약 5 ㎖(staking gel 조성물: 증류수 3.4 ㎖, 30% 아크릴아미드 믹스 830 ㎕, 1.5 M Tris-HCl (pH 8.8) 630 ㎕, 10% SDS 50 ㎕, 10% 암모늄 퍼설페이트 50 ㎕, TEMED 5 ㎕)을 분주 후, 겔이 굳기 전에 comb를 끼워 굳혔다. Staking gel이 굳은 다음, comb를 제거하여 SDS page gel을 완성시켰다.
SDS page로 확인하고자 하는 분획과 샘플 버퍼(Laemmli 2x Concentrate, sigma, S3401)를 1:1 비율로 혼합하였고, 90℃의 water bath에서 5분 동안 중탕시켰다. 그리고 겔의 comb에 마커를 5 ㎕, 기준 정제봉독, 실시예 1 및 2에 의한 분리정제봉독, 아파민, 포스포리파아제 A2 및 멜리틴을 각 30 ㎕씩 로딩하고, 겔을 SDS page 탱크에 끼워서 running buffer(25 mM Tris, 192 mM 글리신, 0.1% SDS, pH 8.3)를 채웠다.
SDS page power supply 통하여 staking gel에서 60V로 약 30min동안 running시켰고, separating gel에서 120V로 약 60-90 min동안 running시켰다.
시료의 성분은 power supply에서 흘려주는 전류를 따라 겔에서 분자량 별로 분리되었고, coomassie brilliant bule R-250 염료와 destaining solution으로 염색 후 탈색 처리한 결과를 도면 3에 나타내었다.
도 3은 본 발명의 실험예에 따른 전기영동 테스트의 결과를 나타내는 이미지이다.
도 3에 나타난 바와 같이, 기준 정제봉독, 본 발명의 실시예 1 및 2의 분리정제봉독(10kDa, 30kDa), 아파민(apamin 99.9%, STDA), 포스포리파아제 A2(PLA2 90.7%, STDP) 및 멜리틴(melittin 96%, STDM)이 각 전기영동 테스트에서 나타내는 밴드를 비교하였다.
분자량 15-20kDa에 나타나는 포스포리파아제 A2 밴드는 실시예 1의 분리정제봉독에서는 제거됨을 확인할 수 있고, 실시예 2의 분리정제봉독에서는 감축되어 거의 존재하지 않는 것을 확인할 수 있다. 또한, 50kDa에 나타내는 히알루로니다제의 밴드는 본 발명의 실시예 1 및 2의 분리정제봉독에서 모두 제거되었음을 확인할 수 있다.
<실험예 2>
HPLC 정량분석
실시예 1의 분리정제봉독 및 실시예 2의 분리정제봉독을 각각 1.0 ㎎/㎖의 농도로 만들고, HPLC(High-performance liquid chromatography)장치와 펩티드 분석 전용 컬럼(150 X 4.6 mm 4.0μm, 90Å, phenomenex®)을 이용하고, HPLC용 물(0.2% TFA in water)과 acetonitrile(0.22% TFA in ACN)을 용매로 하여 각각 분석하였다.
도 4는 본 발명의 실험예 2에 따른 분리정제봉독의 HPLC(High-performance liquid chromatography) 성분분석 그래프이다.
실시예 1 및 실시예 2의 분리정제봉독을 각각 HPLC 정량분석한 결과는 도 4에 도시된 바와 같이, 기준 정제봉독과 비교하여 성분분석을 확인할 수 있다.
보다 구체적으로, 기준 정제봉독에 대한 HPLC 정량분석 결과에 의하면, 아파민(apamin)과 멜리틴(melittin)의 피크(peak)는 각각 10.4 min와 21.3 min에서 나타나고, 포스포리파아제 A2(phospholipase A2, PLA2)의 피크는 16.3 min에 나타남을 확인할 수 있다.
이러한 피크의 면적으로 함량을 구할 수 있는데, 구체적으로는 다음의 [식 1]과 같다.
[식 1]
Figure PCTKR2013005016-appb-I000003
식 1의 검액에 실시예 1의 분리정제봉독과 실시예 2의 분리정제봉독에 해당하는 값을 각각 대입하여 계산한 결과는 다음의 표 3과 같다.
[표 3]
Figure PCTKR2013005016-appb-I000004
따라서 실시예 1의 분리정제봉독에서는 표 3에 나타난 바와 같이, PLA2가 없는 것을 알 수 있다. 또한, 실시예 2의 분리정제봉독에서는 PLA2가 1 중량% 이하로 존재하여 최대한 감축되었음을 알 수 있다.
<실험예 3>
주름개선효과(Elastase inhibitory effect)
본 발명의 실험예 3에서는 기질인 0.1 mM의 N-succinly-(Ala)3-p-nitroanilide 200 ㎕에 기준 정제봉독과 실시예 1 및 2의 분리정제봉독을 각각 20㎕ 첨가하고, 또한, 0.1 ㎎/㎖의 Elastase(Porcine pancreas solution) 10㎕을 첨가하여 25℃에서 10분 동안 반응시킨 후, ELISA(Enzyme-linked immunosorbent assay) reader로 410 ㎚에서의 흡광도를 측정하여 Elastase에 대한 저해율(%)을 계산함으로써, 주름개선효과를 확인한다.
도 5는 본 발명의 실험예 3에 따른 분리정제봉독의 주름개선효과 테스트 결과를 나타내는 그래프이다.
기준 정제봉독과 실시예 1 및 실시예 2의 분리정제봉독에 대한 주름개선효과를 확인하면, 도 5에 도시된 바와 같이, 실시예 1 및 실시예 2의 분리정제봉독의 주름개선효과가 0.2 ㎎/㎖, 0.5 ㎎/㎖, 1 ㎎/㎖, 2 ㎎/㎖ 및 3 ㎎/㎖ 각 농도에서 모두 기준 정제봉독보다 우수한 활성도를 나타내는 것을 알 수 있다.
<실험예 4>
미백효과(Tyrosinase inhibitory effect)
본 발명의 실험예 4에서는 기질액을 46.8 ㎖ 0.1 M PBS(Phosphate buffered saline) (pH6.8)에 21.2 ㎎ tyrosine을 용해하여 만들고, 또한, 기준 정제봉독과 실시예 1 및 2의 분리정제봉독을 각각 증류수와 혼합하여 실험액을 준비하였다.
이러한 각 실험액 300 ㎕을 기질액 225 ㎕과 혼합시키고, tyrosinase 효소(tyrosinase 효소는 210 U/㎖(in PBS)로 희석시키고 사용)를 107 ㎕ 첨가(PBS로 900 ㎕까지 채움)하여 37℃로 인큐베이터(incubator)에서 15분간 반응을 시킨 후, microplate reader와 ELISA를 이용하여 480nm에서 흡광도를 측정함으로써, 미백효과를 확인하였다.
도 6은 본 발명의 실험예 4에 따른 분리정제봉독의 미백효과 테스트 결과를 나타내는 그래프이다.
기준 정제봉독과 실시예 1 및 실시예 2의 분리정제봉독에 대한 미백효과를 확인하면, 도 6에 도시된 바와 같이, 실시예 1 및 실시예 2의 분리정제봉독의 미백효과가 0.1 ㎎/㎖, 0.5 ㎎/㎖, 1 ㎎/㎖, 3 ㎎/㎖, 5 ㎎/㎖, 8 ㎎/㎖ 및 10 ㎎/㎖의 각 농도에서 모두 기준 정제봉독보다 우수한 활성도를 나타내는 것을 알 수 있다.
<실험예 5>
디스크 확산법(Disc diffusion method)
실험균주를 배양한 디스크(disc)에 다양한 농도의 기준 정제봉독, 실험예 1 및 2의 분리정제봉독을 흡수시킨 후 균주가 배양된 고체배지위에 디스펜서(dispenser)로 접종하였다. 16 내지 18시간 배양 후, 균 억제대(inhibition zone)의 크기를 관찰하여 대조군인 기준 정제봉독을 사용했을 경우와 항균여부를 비교한다.
본 발명의 실험예 5에 따라 실험예 1 및 2의 분리정제봉독의 항균 효과를 검증하기 위하여, 한국미생물보존센터로부터 지시균(그람 양성균인 Staphylococcus aureus, Streptococcus mutans 와 그람 음성균인 Salmonella typhimurium) 3종을 분양 받아 사용하였다.
구체적으로, 액체 배지에 균을 계대하여 24시간 배양 후, 지시균을 활성화시킨다. 지시균의 수가 660 nm에서 O.D값 0.5 내지 0.7으로 확인되면, 고체배지에 일정한 양을 분주하고 멸균된 삼각 유리봉으로 배지에 도말한다. 지시균을 도말한 배지 위에 페이퍼 디스크(paper disc)를 올려놓고, 기준 정제봉독, 실험예 1 및 2의 분리정제봉독을 농도별로 40㎕ 로딩시킨다.
페트리디쉬(petri dish)를 배양기에서 18-24시간 동안 배양하고, 균억제대(clear zone)의 크기를 비교한 결과를 표 4에 나타내었다.
[표 4]
Figure PCTKR2013005016-appb-I000005
(이때, S.aureus는 Staphylococcus aureus이고, S.mutans는 Streptococcus mutans이며, S.typhimurium은 Salmonella typhimurium이다)
표 4를 참조하면, 본 발명의 실시예 1 및 2의 분리정제봉독의 유효성분은 기준 정제봉독과 비교하여 동일한 정도의 항균 효과를 나타냄을 확인할 수 있으므로, 본 발명에 따른 분리정제봉독은 알러지 유발을 근본적으로 차단하면서도 유의한 항균 효과를 나타냄을 확인할 수 있다.
<실험예 6>
최소억제발육 농도검사법- MIC(Minium Inhibitory Concentration)
Salmonella typhimurium과 Staphylococcus aureus 균주는 LB(luria-bertani) broth에서 24시간 배양시키고, Streptococcus epidermidis 균주는 BHI(brain heart infusion) broth에서 24시간 배양시켜 사용하였고, 기준 정제봉독과 실시예 1 및 2의 분리정제봉독은 각각 증류수에 1/2로 희석하여 다양한 농도로 실험액을 준비하였다.
균주를 접종하기 전에 650 nm에서 흡광도를 측정하여 균주의 초기농도를 측정하고 튜브에 순수 액체 배지와 각 농도별로 기준 정제봉독과 실시예 1 및 2의 분리정제봉독을 첨가한 후 일정 양의 균주를 접종시켰다.
37℃에서 24시간 배양 후, 650nm에서 O.D를 측정하여 순수 액체 배지와 같은 결과를 나타내는 시료의 농도를 최소농도 MIC로 결정하고 균의 저해율을 [1-(시료처리군 흡광도/대조군 흡광도)] X 100의 계산식으로 계산하여 그 결과를 다음의 표 5에 나타내었다.
[표 5]
Figure PCTKR2013005016-appb-I000006
(이때, S.typhimurium은 Salmonella typhimurium(S.T)이고, S.aureus는 Staphylococcus aureus(S.A)이며, S.epidermidis는 Staphylococcus epidermidis(S.E)이다)
표 5를 참조하면, 본 발명의 실시예 1 및 실시예 2에 따른 분리정제봉독은 기준정제봉독과 비교하여 동일한 정도의 균 저해율을 보임과 동시에, 최소억제발육 농도검사법(MIC)에 대한 효과는 기준 정제봉독보다 더 우수한 결과를 나타냄을 알 수 있다.
따라서 본 발명의 실시예 1 및 실시예 2에 따른 분리정제봉독은 알레르기 유발을 차단하면서도 유의한 항균 효과나타냄을 확인할 수 있다.
상기 본 발명의 내용은 도면에 도시된 실시예를 참고로 설명되었으나 이는 예시적인 것에 불과하며, 본 기술 분야의 통상의 지식을 가진 자라면 이로부터 다양한 변형 및 균등한 타 실시예가 가능하다는 점을 이해할 것이다. 따라서 본 발명의 진정한 기술적 보호 범위는 첨부된 특허청구범위의 기술적 사상에 의해 정해져야 할 것이다.
본 발명의 분리정제봉독은 봉독을 재료로하는 의약, 식품 및 화장품의 산업에 사용될 수 있다.

Claims (3)

  1. 정제봉독 분말을 준비하는 제 1단계;
    상기 정제봉독 분말을 증류수와 혼합하여 봉독용액을 제조하는 제 2단계;
    상기 봉독용액을 컷오프(cut-off) 사이즈가 10kDa(kilo-Dalton)인 한외여과 막(ultrafiltration membrane)으로 여과하여 상기 봉독용액에 포함된 알러지(allergy)성분을 제거하는 제 3단계; 및
    상기 알러지성분이 제거된 분리정제봉독을 수득하는 제 4단계;를 포함하고,
    상기 제 2단계에서, 상기 정제봉독 분말과 혼합되는 증류수는 상기 정제봉독 분말 1g 당 1000㎖ 내지 1500㎖이며,
    상기 제 3단계에서, 상기 한외여과 막을 통해 제거되는 알러지성분은 포스포리파아제 A2(Phospholipase A2) 및 히알루로니다제(Hyaluronidase)이고,
    상기 제 4단계에서, 수득되는 상기 분리정제봉독은 아파민(apamin)을 4 중량% 이상, 멜리틴(melittin)을 50 중량% 이상 포함하는 것을 특징으로 하는 분리정제봉독 제조방법.
  2. 정제봉독 분말을 준비하는 제 1단계;
    상기 정제봉독 분말을 증류수와 혼합하여 봉독용액을 제조하는 제 2단계;
    상기 봉독용액을 컷오프 사이즈가 30kDa인 한외여과 막으로 여과하여 상기 봉독용액에 포함된 알러지성분을 제거하는 제 3단계; 및
    상기 알러지성분이 제거된 분리정제봉독을 수득하는 제 4단계;를 포함하고,
    상기 제 2단계에서, 상기 정제봉독 분말과 혼합되는 증류수는 상기 정제봉독 분말 1g 당 100㎖ 내지 200㎖이며,
    상기 제 3단계에서, 상기 한외여과 막을 통해 제거되는 알러지성분은 히알루로니다제이고,
    상기 제 4단계에서, 수득되는 상기 분리정제봉독은 아파민을 2.5 중량% 이상, 멜리틴을 45 중량% 이상, 포스포리파아제 A2를 1 중량% 이하 포함하는 것을 특징으로 하는 분리정제봉독 제조방법.
  3. 제 1항 또는 제 2항의 제조방법에 의해 제조된 분리정제봉독을 유효성분으로 포함하는 분리정제봉독 함유 화장품.
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