WO2016143227A1 - モノクローナル抗体の検出のためのサンプル調製用キット - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to a sample preparation kit for detecting a monoclonal antibody by mass spectrometry. More specifically, the present invention allows selective digestion of a peptide fragment containing a specific sequence of a monoclonal antibody to enable more efficient analysis. It is related with the kit for doing.
  • antibody drugs targeting pathogenic proteins as target antigens are attracting attention as molecular target drugs. Since antibodies are inherently present in the body, they are expected to have low side effects, and can be administered at a high concentration in order to enhance the molecular target effect. Furthermore, antibody drugs are suitable for cocktail therapy using a plurality of drugs, and there have been reports of cases where dramatic success can be obtained. As an approach from the drug delivery area, next-generation antibody drugs (antibody drug conjugates) in which a low molecular weight anticancer drug is bound to an antibody have also appeared. In addition, antibodies with enhanced medicinal effects by glycosylation and so-called immune checkpoint antibodies that bring about anti-cancer effects by activating immune cells are emerging, and the need for antibody drugs will increase in the future. Expected.
  • ELISA Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay
  • the measurement target is not directly measured, so abnormal values may appear, and it is necessary to create antibodies for each measurement target, which is time consuming and expensive, and multiple analyzes
  • antibody drugs cross-reaction with endogenous antibodies also occurs, making accurate measurement difficult.
  • the neutralizing antibody and the antigen are bound, the antigen recognition site is blocked, and it is often impossible to measure by ELISA.
  • the ELISA analysis conditions adopted in the animal test phase often cannot be applied to large animals or humans as they are due to cross-species problems.
  • the drug development stage and human clinical trials must be compared under different measurement conditions.
  • the matrix components that inhibit the detection are different. Therefore, in order to perform pharmacokinetics based on the ELISA, it is necessary to prepare a plurality of antibodies. This entails enormous risks, such as enormous costs and dropouts in late development.
  • the quantification and structural analysis of proteins using mass spectrometry has dramatically expanded its application range with the development of mass spectrometry technology and data analysis server software.
  • the absolute quantification technique using mass spectrometry has increased recognition as a method that does not depend on specific antibodies.
  • a device called a laser microdissection which cuts out a single cell, can be used universally. For example, it becomes possible to collect only cancer cells and directly observe the expression variation analysis of the pathogenic protein in the cells by mass spectrometry. This is an extremely technological innovation, especially in the pathology and clinical settings, and the development of standardization of analytical techniques is desired.
  • Patent Document 1 in order to detect an antibody in a sample, trypsin digestion is performed after digesting the antibody with pepsin together with degradation of the non-immunoglobulin protein to produce an F (ab ′) 2 fragment. It is disclosed. Further, Patent Document 2 is to select only peptides that have been appropriately separated at the liquid chromatography stage prior to mass spectrometry as targets for quantification. Non-Patent Document 1 is to concentrate a peptide to be measured using an anti-peptide antibody.
  • Non-Patent Document 2 reports that a protein having a small molecular weight can be selectively digested with trypsin by using mesoporous silica in which trypsin is fixed in the pores.
  • Non-Patent Document 3 reports an example in which trypsin is immobilized on a nylon membrane to make protein trypsin digestion highly efficient. In any of these methods, the protease is immobilized in the pores of the porous body, and the protease on the solid phase surface reacts with the substrate protein in the liquid phase.
  • Non-Patent Document 4 proposes a high-throughput method for discriminating between monoclonal antibodies and endogenous antibodies in a sample.
  • Protein recovery from paraffin-embedded pathological sections is sold as a kit from Agilent, AMR, Qiagen and others.
  • quantification of lesion proteins by mass spectrometry and clinical correlation have been published after collection by cancer cell laser microdissection from pathological sections, deparaffinization, protein extraction and digestion.
  • the target protein is cleaved in a position-selective manner, efficiently producing peptide fragments specific to that protein, and producing other peptide fragments. It is required to reduce the amount. Therefore, in the case of antibodies, it is necessary to regioselectively digest the Fab domain, particularly the variable region of the Fab domain, while suppressing digestion of the Fc domain.
  • the inventors of the present invention have been able to achieve regioselective protease digestion of monoclonal antibodies by immobilizing both the substrate antibody and the protease enzyme on a solid phase (N. Iwamoto et al., Selective detection of complementarity determining regions of monoclonal antibody by limiting protease access to the substrate: nano-surface and molecular-orientation limited proteolysis, Analyst, 2014, 139, 576) (Non-Patent Document 5). This method was obtained by subjecting a porous body in which a monoclonal antibody to be measured was immobilized in pores to nanoparticles in which protease was immobilized in a liquid and performing selective protease digestion of the monoclonal antibody.
  • LC-MS liquid chromatography mass spectrometry
  • the above method is an epoch-making method for selective protease digestion of monoclonal antibodies using a solid phase-solid phase reaction, but there is still room for further study for practical use.
  • An object of the present invention is to provide a sample preparation kit for providing an extremely versatile analytical technique that is not affected by antibody diversity, interspecies differences, matrix, and the like.
  • the present inventors have determined the conditions for preparing peptides to be detected by mass spectrometry in order to enable highly accurate and simple analysis without depending on the skill of the measurer.
  • Various studies were conducted, and it was studied to provide a kit that satisfies the optimum condition, and the present invention was completed.
  • the present invention includes the following inventions.
  • a sample preparation kit for detecting a monoclonal antibody by high performance liquid chromatography mass spectrometry A porous body for immobilizing the monoclonal antibody to be measured; Nanoparticles with immobilized protease, A reaction vessel for selectively digesting monoclonal antibodies by contacting the porous body and the nanoparticles; A buffer solution that is introduced into the reaction container together with the nanoparticles and the porous body, and causes a digestion reaction with the protease; A filtration membrane for removing the porous body and the nanoparticles after the digestion reaction and extracting the product of the digestion reaction together with the buffer; A kit as described above.
  • LC-MS liquid chromatography mass spectrometry
  • the filtration membrane hardly permeates the peptide produced by the digestion reaction with the buffer solution and the protease under a condition where no pressure or centrifugal force is applied, and the buffer solution under a condition where the pressure or centrifugal force is applied.
  • the kit according to (1) which is capable of permeating the peptide.
  • the filtration membrane is a membrane made of polyvinylidene fluoride (PVDF).
  • PVDF polyvinylidene fluoride
  • LC-MS liquid chromatograph mass spectrometry
  • kit according to any one of (1) to (5) further comprising one or more internal standard peptides including an amino acid sequence specific to the monoclonal antibody to be measured.
  • the measurement target is trastuzumab, trastuzumab-DM1, bevacizumab, or rituximab
  • the internal standard peptide is a peptide having any one or more amino acid sequences of SEQ ID NOs: 1 to 47.
  • a peptide obtained by subjecting a porous body in which a monoclonal antibody to be measured is immobilized in pores to nanoparticles in which protease is immobilized in a liquid to perform selective protease digestion of the monoclonal antibody A computer-readable record in which data for performing the mass spectrometry is recorded for use in a method for detecting the monoclonal antibody by analyzing fragments by high performance liquid chromatography mass spectrometry (LC-MS)
  • LC-MS liquid chromatography mass spectrometry
  • the recording medium wherein the data includes at least parent ion, fragment ion, expected retention time, voltage data in each of the triple quadrupoles for one or more peptides obtained by protease digestion of the monoclonal
  • a method package for detection of monoclonal antibodies by high performance liquid chromatography mass spectrometry comprising the recording medium according to (8) and instructions for use of the recording medium.
  • the data is for a peptide having any one or more amino acid sequences of SEQ ID NOS: 1 to 47.
  • the kit of the present invention is used for pretreatment of a liquid chromatograph mass spectrometer (particularly a triple quadrupole type).
  • mass spectrometers that can be used to carry out the present invention include LCMS-8030, LCMS-8040, LCMS-8050, and LCMS-8080 (all manufactured by Shimadzu Corporation).
  • LCMS-IT-TOF and LCMS-Q-TOF manufactured by Shimadzu Corporation
  • the principle of the method of digesting an antibody using the kit of the present invention is shown.
  • the result of examination of the filter membrane material used for detection of a trastuzumab digestion fragment is shown.
  • polytetrafluoroethylene (PTFE) and polyvinylidene fluoride (PVDF) were compared.
  • PTFE polytetrafluoroethylene
  • PVDF polyvinylidene fluoride
  • B Trastuzumab 33.3 ⁇ g / ml.
  • the result of examination of the filter membrane material used for detection of a trastuzumab digestion fragment is shown.
  • polytetrafluoroethylene and polyvinylidene fluoride were compared.
  • the present invention is a sample preparation kit for detecting a monoclonal antibody by high performance liquid chromatography mass spectrometry (LC-MS), A porous body for immobilizing the monoclonal antibody to be measured; Nanoparticles with immobilized protease, A reaction vessel for selectively digesting monoclonal antibodies by contacting the porous body and the nanoparticles; A buffer solution that is introduced into the reaction container together with the nanoparticles and the porous body, and causes a digestion reaction with the protease; A filtration membrane for removing the porous body and the nanoparticles after the digestion reaction and extracting the product of the digestion reaction together with the buffer; The kit.
  • LC-MS liquid chromatography mass spectrometry
  • FIG. 1 shows the principle of a method for digesting a monoclonal antibody using the kit of the present invention.
  • the present invention will be specifically described in association with the above method.
  • ⁇ Outline of mass spectrometry> a quantitative technique using mass spectrometry is mainly performed by a hybrid mass spectrometer called a triple quadrupole. Specifically, ionized biomolecules first pass through a portion called octopole to reduce the ionic molecule vibration radius. Next, ions having a specific mass number are selected by resonating in the first quadrupole, and other ions are excluded. This step is also called single ion monitoring (SIM).
  • SIM single ion monitoring
  • CID collision-induced dissociation
  • MRM multiple reaction monitoring
  • Quantification of biological samples using mass spectrometry has the greatest advantage of being able to quantify the structure-specific ions of biomolecules as an indicator, and this can be connected to a high-performance liquid chromatograph to enable continuous analysis. be able to.
  • this is the only technology that has good advantages.
  • an antibody In order to detect an antibody by mass spectrometry, it is necessary to first extract the antibody from a biological sample such as blood or tissue and dissolve it in an appropriate solvent. In addition, since an antibody has a large molecule for analysis as it is, it is decomposed into a peptide by protease and then separated by liquid chromatography, followed by mass spectrometry.
  • the molecular weight of peptides suitable for analysis is about 1000 to 3000 Da.
  • the matrix effect is a phenomenon in which the ionization efficiency of a target substance is reduced due to the presence of an ionization-inhibiting substance in the same droplet or the presence of various ions at the same time. Since the energy given to ionization is equal, if the ionization target substance increases, energy inevitably disperses and the amount of ions decreases.
  • the present invention intends to reduce the population of the analysis target while maintaining the specificity of the measurement target.
  • the measurement object for preparing a sample for detection by LC-MS using the kit of the present invention is a monoclonal antibody.
  • a monoclonal antibody is a biopolymer having a structure in which two heavy chains (molecular weight 50 kDa) and two light chains (molecular weight 25 kDa) are connected by a disulfide bond.
  • the Fab domain and Fc domain are connected via a hinge, and the heavy and light chains are composed of a constant region and a variable region, respectively.
  • the constant region has a structure that maintains the characteristic Y-shape of the antibody (framework structure), and has an amino acid sequence that is common to most antibodies from the same species.
  • each variable region has three sites each having a specific sequence called a complementarity-determining region (CDR).
  • CDR complementarity-determining region
  • the higher-order structure of the antibody is further characterized by a very flexible hinge and a variable region with respect to a stationary region having a rigid structure. It is known that there is a site to which a specific protein called Protein A or Protein G binds at the C-terminus of the heavy chain.
  • Monoclonal antibodies that can be measured include, but are not limited to, human antibodies such as panitumumab, ofatumumab, golimumab, and ipilimumab; tocilizumab, trastuzumab, trastuzumab-DM1, bevacizumab, omalizumab, mepolizumab, torizumab And humanized antibodies such as ocrelizumab, mogamulizumab and eculizumab; chimeric antibodies such as rituximab, cetuximab, infliximab and basiliximab.
  • the molecular diameter of the monoclonal antibody is about 14.5 nm.
  • a complex added with further functions while maintaining the specificity of the monoclonal antibody such as an Fc fusion protein, an antibody-drug complex (for example, gemtuzumab ozogamicin, trastuzumab-emtansine, etc.) is also a measurement target in the method of the present invention. It should be included in the monoclonal antibody.
  • the binding of the complex may be dissociated and the antibody alone may be subjected to LC-MS, or the complex may be used in the form of a complex for LC-MS.
  • a person skilled in the art can set the optimum conditions for the method of the present invention in accordance with the measurement object based on the description of the present specification.
  • the kit of the present invention is used for the identification and quantification of antibodies by subjecting the Fab domain of a monoclonal antibody to site-selective protease digestion and mass spectrometry of the obtained peptide fragment.
  • the porous body included in the kit of the present invention is not particularly limited as long as it has a large number of pores, and activated carbon, porous membranes, porous resin beads, metal particles, and the like can be used. . Among these, those capable of binding an antibody site-specifically are particularly preferable.
  • FIG. 1 shows a hemispherical pore, but the shape of the pore is not particularly limited. Moreover, what formed the pore which penetrates a porous body like a porous film can also be used.
  • the size of the pores in the porous body is not particularly limited, and considers the molecular diameter of the antibody so that when the antibody is immobilized, the site to be selectively digested is located near the surface of the pore. Is preferably determined.
  • the average pore diameter D2 of the porous body is appropriately set in a range of about 10 nm to 200 nm and smaller than the average particle diameter D1 of the nanoparticles.
  • the average pore diameter D2 of the porous body is, for example, preferably about 20 nm to 200 nm, and more preferably about 30 nm to 150 nm.
  • the pore diameter of the porous body is preferably 30 nm to 150 nm, more preferably 40 nm to 120 nm, and more preferably 50 nm to 100 nm. Particularly preferred is about 100 nm.
  • the monoclonal antibody to be measured is immobilized in the pores of the porous body.
  • the antibody is likely to denature, the fluctuation of the molecule is perturbed, and the probability of being attacked by the protease is improved.
  • the protease is immobilized on the nanoparticles, so that it becomes an environment that is sterically stable and difficult to cause self-digestion. Therefore, according to the method of the present invention, in addition to enabling regioselective protease digestion, high activity of the protease can be maintained.
  • those in which a linker molecule that interacts site-specifically with an antibody is immobilized in the pores of the porous body are preferably used.
  • the interaction between the antibody and the linker molecule include chemical bond, hydrogen bond, ionic bond, complex formation, hydrophobic interaction, van der Waals interaction, electrostatic interaction, and stereoselective interaction.
  • the linker molecule Protein A, Protein ⁇ G, or the like that binds site-specifically to the Fc domain of the antibody is preferably used.
  • the Fc domain of the antibody is immobilized in the pores, and the Fab domain is located near the surface layer of the pores. In this way, by controlling the orientation of the antibody in the pore, position selective digestion of the Fab domain by a protease becomes possible.
  • the size of the linker molecule is selected so that the selective cleavage site of the antibody is located near the surface layer of the pore.
  • the molecular size of the state in which the linker molecule is bound to the antibody is preferably about 0.5 to 1.5 times, more preferably about 0.6 to 1.2 times the pore diameter of the porous body. It is more preferably about 7 to 1.1 times, and particularly preferably about 0.8 to 1 times.
  • the linker molecule is not fixed to the porous body and the antibody is directly bonded to the pore, it is preferable that the molecular diameter of the antibody and the pore diameter of the porous body satisfy the above relationship.
  • the porous material that can be suitably used in the present invention is not particularly limited, and examples thereof include Protein® G Ultralink resin (manufactured by Pierce), Toyopearl, TSKgel (manufactured by TOSOH), and the like.
  • Protein® G® Ultralink resin it has been found that 95% of the Protein® G bound to the resin is in the pores.
  • the method for immobilizing the antibody in the pores of the porous body is not particularly limited, and an appropriate method can be adopted depending on the characteristics of the antibody and the porous body or the linker molecule.
  • an antibody is immobilized on a porous body in which protein A or protein G is immobilized in the pores, a mixture of the porous body suspension and the antibody-containing solution is mixed into the pores. It is possible to easily immobilize the antibody.
  • the amount ratio of the porous body and the antibody can be appropriately set according to the purpose. For example, when performing quantitative analysis of an antibody, it is desired that almost the entire amount of the antibody in the sample is immobilized on the porous body. Therefore, it is preferable to set the quantity ratio so that the amount of the porous material is excessive with respect to the estimated content of the antibody in the sample.
  • Nanoparticles contained in the kit of the present invention are used for the purpose of controlling protease access to the antibody immobilized in the pores of the porous body by immobilizing the protease on the surface thereof. Therefore, it is assumed that the average particle diameter D1 of the nanoparticles is larger than the average pore diameter D2 of the porous body so that the nanoparticles do not enter deeply into the pores of the porous body (FIG. 1).
  • the shape of the nanoparticles is not particularly limited, but spherical nanoparticles are preferable from the viewpoint of uniform protease access to the pores of the porous body.
  • the nanoparticles are preferably highly dispersible and have a uniform average particle size.
  • the average particle diameter D1 of the nanoparticles is in the range of 50 nm to 500 nm, preferably 1.2 times or more than the average pore diameter D2 of the porous body, more preferably 1.5 times or more, 1.8 times or more, For example, about twice is particularly preferable.
  • the average particle diameter D1 of the nanoparticles is preferably 100 nm or more, and more preferably 150 nm or more.
  • the average particle diameter of the nanoparticles is preferably 120 nm or more, more preferably 150 nm or more, and particularly preferably 170 nm or more.
  • the upper limit of the average particle diameter D1 of the nanoparticles is preferably 500 nm or less, and more preferably 300 nm or less from the viewpoint of increasing the digestion efficiency by the protease.
  • the material of the nanoparticles is not particularly limited as long as the protease can be immobilized on the surface, and a metal, a resin, or the like is appropriately used. Moreover, what coated the metal surface with resin, what coated the resin surface with the metal, etc. can also be used.
  • the type of nanoparticles is preferably magnetic nanoparticles that can be dispersed or suspended in an aqueous medium and can be easily recovered from the dispersion or suspension by magnetic separation or magnetic precipitation separation.
  • magnetic nanoparticles whose surfaces are coated with an organic polymer are more preferable in that aggregation is unlikely to occur.
  • the base material of the magnetic nanoparticles include ferromagnetic alloys such as iron oxide (magnetite (Fe 3 O 4 ), maghemite ( ⁇ -Fe 2 O 3 )), and ferrite (Fe / M) 3 O 4 .
  • M means a metal ion that can be used together with iron ions to form a magnetic metal oxide, typically Co 2+ , Ni 2+ , Mn 2+. Mg 2+ , Cu 2+ , Ni 2+ and the like are used.
  • the organic polymer that coats the magnetic nanoparticles include polyglycidyl methacrylate (polyGMA), a copolymer of GMA and styrene, polymethyl methacrylate (PMMA), and polymethyl acrylate (PMA).
  • polyGMA polyglycidyl methacrylate
  • PMMA polymethyl methacrylate
  • PMA polymethyl acrylate
  • Specific examples of magnetic nanobeads coated with an organic polymer include FG beads, SG beads, Adembeads, and nanomag.
  • FG beads manufactured by Tamagawa Seiki Co., Ltd. (polymer magnetic nanoparticles having a particle diameter of about 200 nm in which ferrite particles are coated with polyglycidyl methacrylate (polyGMA)) are preferably used.
  • the nanoparticles are preferably modified with a spacer molecule capable of binding to a protease in order to suppress nonspecific protein adsorption and to selectively immobilize the protease.
  • a spacer molecule capable of binding to a protease in order to suppress nonspecific protein adsorption and to selectively immobilize the protease.
  • the spacer is preferably one that can bind to the protease and does not inactivate the protease. From the viewpoint of controlling the access range of the protease immobilized on the nanoparticle surface, the spacer preferably has a small molecular diameter.
  • the spacer molecular diameter is preferably 5 nm or less, more preferably 3 nm or less, and even more preferably 2 nm or less. Further, the molecular weight of the spacer is preferably 2000 or less, more preferably 1500 or less, and further preferably 1000 or less.
  • the spacer molecule capable of immobilizing protease with the above molecular diameter is preferably a non-protein, and has an amino group, carboxyl group, ester group, epoxy group, tosyl group, hydroxyl group, thiol group, aldehyde group, maleimide group, succinimide group at the terminal.
  • Molecules having functional groups such as azide group, biotin, avidin, chelate and the like are preferable.
  • spacer molecules having an activated ester group are preferred for immobilizing trypsin.
  • spacer arm portions other than the above functional groups are polyethylene glycol and derivatives thereof, polypropylene glycol and derivatives thereof, polyacrylamide and derivatives thereof, polyethyleneimine and derivatives thereof, poly (ethylene oxide) and derivatives thereof, poly Hydrophilic molecules such as (ethylene terephthalic acid) and its derivatives are used.
  • nanoparticles surface-modified with spacer molecules are also commercially available and may be used.
  • nanoparticles modified with spacer molecules having an ester group (active ester group) activated with N-hydroxysuccinimide are commercially available under the trade name “FG beads NHS” (Tamakawa Seiki Co., Ltd.).
  • the particle size of FG beads NHS is about 200 nm ⁇ 20 nm, and it is very homogeneous as nanoparticles.
  • the kit of the present invention preferably contains a nanoparticle in which a protease is immobilized.
  • a nanoparticle in which a protease is immobilized.
  • the nanoparticles and protease are provided separately and immobilized prior to use.
  • a protease cleaves an antibody immobilized in a pore of a porous body at a specific amino acid sequence site to generate a peptide fragment.
  • Protease can be included in the kit alone or immobilized on the surface of the nanoparticles.
  • the type of protease immobilized on the nanoparticles may be appropriately selected according to the type of protein to be quantified or identified by mass spectrometry, and is not limited.
  • trypsin trypsin, chymotrypsin, lysyl endopeptidase , V8 protease, AspN protease (Asp-N), ArgC protease (Arg-C), papain, pepsin, dipeptidyl peptidase and the like.
  • Two or more proteases can be used in combination.
  • trypsin is particularly preferably used in the present invention. Trypsin has high substrate specificity, and since Lys or Arg is present at the C-terminus of the peptide after cleavage, the charge amount and charge localization of the peptide can be made uniform, so that a sample for mass spectrometry can be prepared. Is particularly suitable. Trypsin has a small molecular diameter (about 3.8 nm) and an active site is present inside the molecule. Therefore, the region where the active site can access the antibody is limited, and the position selectivity of protease digestion can be enhanced.
  • protease When a peptide fragment of an antibody after protease digestion is subjected to mass spectrometry as a measurement data, it is preferable to use a protease with low self-digestion and high selectivity of the cleaved sequence.
  • a commercially available protease it is preferable to use a mass spectrometry grade or sequencing (sequence) grade protease.
  • native trypsin derived from living organisms is known to have low cleavage site specificity because it contains high self-digesting activity or trypsin that exhibits chymotrypsin-like activity. Therefore, as a mass spectrometry grade, a product obtained by reducing methylation of a lysine residue of trypsin to increase resistance to autolysis is commercially available.
  • proteases examples include Trypsin® Gold (manufactured by Promega) and Trypsin® TPCK-treated (manufactured by Sigma® Aldrich).
  • the method for immobilizing the protease on the surface of the nanoparticle is not particularly limited, and an appropriate method can be adopted depending on the characteristics of the protease and the nanoparticle (or the spacer molecule that modifies the nanoparticle surface).
  • the protease can be immobilized on the nanoparticle surface by mixing a suspension of nanoparticles and a solution containing protease.
  • the amine coupling method of nanoparticles and protease via the functional group of the spacer molecule is preferred.
  • the surface-modified carboxyl group of the nanoparticles can be esterified with N-hydroxysuccinimide (NHS) to form an activated ester group, and the protease amino group can be bound thereto.
  • NHS N-hydroxysuccinimide
  • 1-ethyl-3- (3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDAC), N, N'-dicyclohexylcarbodiimide (DCC), bis (2,6-diisopropylphenyl) carbodiimide (DIPC), etc. Can be carried out in the presence of a condensing agent.
  • the amino group of the surface of the nanoparticles is modified with a protease amino acid using a crosslinking agent such as glutaraldehyde, bifunctional succinimide, bis (sulfosuccinimidyl) suberate (BS3), sulfonyl chloride, maleimide, pyridyl disulfide.
  • a crosslinking agent such as glutaraldehyde, bifunctional succinimide, bis (sulfosuccinimidyl) suberate (BS3), sulfonyl chloride, maleimide, pyridyl disulfide.
  • the coupling method of nanoparticles and protease via the functional group of the spacer molecule can be performed by a simple operation of adding a protease solution to a suspension of nanoparticles and mixing and stirring under certain conditions.
  • the active part that is not bound to the protease on the nanoparticle surface after the protease is immobilized on the nanoparticle surface.
  • the unbound spacer molecule binds to impurities in the sample and adversely affects protease digestion or is produced by protease digestion.
  • the peptide fragments may be immobilized on the nanoparticles. Such imperfections are suppressed by blocking unbound spacer molecules after immobilizing the protease.
  • chemical modification is preferred.
  • an activated ester group can be inactivated by forming an amide bond by reaction with a primary amine.
  • ⁇ Protease digestion> By contacting the porous body on which the antibody is immobilized and the nanoparticles on which the protease is immobilized on the surface in a liquid, the antibody is digested with the protease and a peptide fragment is produced.
  • liquid means that the substrate (solid phase) and the enzyme (solid phase) come into contact with each other in the liquid phase, and an aqueous medium suitable for the protease digestion reaction is intended.
  • the conditions for protease digestion in the present invention are not particularly limited, and conditions similar to those for general protease digestion can be appropriately employed. For example, it is preferable to incubate at a temperature of about 37 ° C. for about 1 to 20 hours in a buffer solution adjusted to near the optimum pH of the protease.
  • the mixing ratio of the porous body on which the antibody is immobilized and the nanoparticle on which the protease is immobilized is not particularly limited, and may be set so that the amount of the protease corresponds to the amount of the antibody.
  • the amount of the protease is increased as compared with general protease digestion.
  • antibody: protease about 30: 1 to 3: 1 is preferable, about 15: 1 to 4: 1 is more preferable, and about 10: 1 to 5: 1 is more preferable.
  • protease digestion is carried out with the antibody immobilized on the porous body. Since the peptide fragment produced by protease digestion exists in the liquid phase, the target peptide fragment can be obtained in a position-selective manner without performing antibody elution or denaturation operation. According to the method of the present invention, peptide fragments can be recovered in a position-selective manner with a simpler operation than the conventional method.
  • the C-terminal side of the antibody is immobilized on a Protein® G resin having a pore diameter of 100 nm, and the variable region of the antibody is always oriented to the solution side.
  • protease is immobilized on the surface of the nanoparticle having a particle diameter of 200 nm.
  • Protease digestion is not particularly limited, but can be performed under tapping rotation accompanied by periodic tapping with stirring by gentle rotation.
  • Slow rotation refers to a rotational speed of, for example, about 3 to 10 rpm
  • “tapping” refers to an instantaneous operation such as playing or shocking (frequency: for example, 1 to 5 times per minute) , Preferably 2 to 4 times). Accordingly, the porous body on which the antibody is immobilized and the nanoparticle on which the protease is immobilized are effectively brought into contact with each other while maintaining the dispersed state, and the protease digestion reaction efficiency can be increased.
  • the pore size of the filtration membrane to be used is selected within the range in which the porous body and nanoparticles cannot pass through and the digested peptide can pass through.
  • a filtration membrane made of polyvinylidene fluoride (PVDF) Low-binding hydrophilic PVDF, pore size 0.2 ⁇ m, manufactured by Millipore
  • PTFE polytetrafluoroethylene
  • the porous body and the nanoparticles can be easily removed by filtering using a product manufactured by KK If the filtration is centrifugal filtration, rapid and simple filtration is possible.
  • the filter membrane is not limited, but a filter membrane in the form of a double-structured filter tube that enables centrifugal filtration can be suitably used.
  • a filter membrane in the form of a double-structured filter tube that enables centrifugal filtration
  • it is preferable to use a 0.2 ⁇ m filtration membrane spin filter such as Millipore Ultra Free PVDF, 0.2 ⁇ m or Millipore UFC30LG00 Ultra Free-C3LCR, 0.2 ⁇ m.
  • 0.2 ⁇ m filtration membrane plates such as Millipore multi-screen PVDF, Barex, and 0.2 ⁇ m can be preferably used.
  • the tube can be used as a reaction vessel for protease digestion reaction.
  • protease digestion can be carried out by putting a medium (including a buffer solution) for the reaction between the nanoparticles on which the protease is immobilized and the porous body on which the antibody is immobilized in a tube.
  • the antibody in the sample can be immobilized on the porous body in a tube, and after washing operation, nanoparticles having immobilized protease can be added.
  • a person skilled in the art can appropriately modify a series of operation procedures such as protease digestion reaction, removal of porous bodies and nanoparticles using the kit of the present invention.
  • LC-MS ⁇ Liquid chromatograph mass spectrometry
  • the sample before being subjected to mass spectrometry is separated and concentrated by liquid chromatography (LC).
  • LC liquid chromatography
  • the eluate from LC may be directly ionized and subjected to mass spectrometry.
  • Analysis can also be performed by LC / MS / MS or LC / MSn, which combines LC and tandem mass spectrometry.
  • the eluate from LC may be collected once and then subjected to mass spectrometry.
  • the LC column is not particularly limited, and a hydrophobic column such as C30, C18, C8, or C4 generally used for peptide analysis, a carrier for hydrophilic affinity chromatography, or the like can be appropriately selected and used. .
  • mass spectrometry can determine an amino acid sequence, it can be determined whether or not a peptide fragment is a peptide fragment derived from a specific protein such as an antibody. Further, the concentration of the peptide fragment in the sample can be determined based on the peak intensity. In the present invention, the type of peptide fragment contained in the sample is reduced because the antibody is treated with protease in a site-selective manner. Therefore, analysis conditions can be easily set by mass spectrometry or the like. In the analysis, if necessary, the sample may be used for the analysis after treatment such as desalting, solubilization, extraction, concentration, and drying.
  • the ionization method in mass spectrometry is not particularly limited. Electron ionization (EI) method, chemical ionization (CI) method, field desorption (FD) method, fast atom collision (FAB) method, matrix-assisted laser desorption ionization (MALDI) Method, electrospray ionization (ESI) method and the like can be employed.
  • the analysis method of the ionized sample is not particularly limited. Magnetic field deflection type, quadrupole (Q) type, ion trap (IT) type, time of flight (TOF) type, Fourier transform ion cyclotron resonance (FT-ICR) type Etc. can be appropriately determined according to the ionization method.
  • MS / MS analysis or multistage mass spectrometry of MS3 or higher can be performed using a triple quadrupole mass spectrometer or the like.
  • An apparatus particularly suitable for use in the method of the present invention is not particularly limited.
  • LCMS-8030, LCMS-8040, LCMS-8050, and LCMS-8080 (all of which are Shimadzu Corporation), LCMS-IT-TOF LCMS-Q-TOF (Shimadzu Corporation).
  • peptide fragments obtained by subjecting an antibody to position-specific protease digestion are used, so that the hit rate and data accuracy by database search can be improved.
  • An antibody can also be identified by specifying the amino acid sequence of a peptide fragment by multistage mass spectrometry or the like. If a peptide fragment having an amino acid sequence specific to an antibody, for example, an amino acid sequence containing an amino acid in the CDR2 region can be detected, the target antibody can be identified and quantified.
  • the peptide to be detected preferably has about 5 to 30 amino acid residues, more preferably about 7 to 25. If the number of amino acid residues is excessively small, it is difficult to distinguish from contaminants and peptide fragments derived from other parts of the same protein, which may cause false detection. On the other hand, if the number of amino acid residues is excessively large, detection may be difficult or the quantitative property may be lowered due to reasons such as difficulty in ionization.
  • the amount of antibody can be calculated based on the peak area and peak intensity of the detected peptide fragment ions (in the case of multistage MS, fragment ions obtained by cleavage of the parent ion).
  • a peptide fragment in a sample can be obtained by associating a calibration curve (calibration curve) obtained in advance with a peak area or by associating a peak area derived from an internal standard added to the sample with a peak area derived from the sample.
  • the amount and concentration of antibody are calculated based on the peptide fragment concentration.
  • the present invention is a sample preparation kit for use in the above-described method for detecting a monoclonal antibody by high performance liquid chromatography mass spectrometry (LC-MS), A porous body for immobilizing the monoclonal antibody to be measured; Nanoparticles with immobilized protease, A reaction vessel for selectively digesting monoclonal antibodies by contacting the porous body and the nanoparticles; A buffer solution that is introduced into the reaction container together with the nanoparticles and the porous body, and causes a digestion reaction with the protease; A filtration membrane for removing the porous body and the nanoparticles after the digestion reaction and extracting the product of the digestion reaction together with the buffer; The kit.
  • LC-MS liquid chromatography mass spectrometry
  • Measures by mass spectrometry can be performed with very high accuracy, while appropriate sample preparation and setting of appropriate analysis conditions are very important.
  • the present invention provides a sample preparation kit that can be used to carry out the above-described method so that accurate test results can be obtained more easily in a clinical setting.
  • the porous body and nanoparticles contained in the kit of the present invention are as described above.
  • the reaction vessel may be any vessel that can contact the monoclonal antibody immobilized on the porous body and the protease immobilized on the nanoparticles in the liquid phase, and is not particularly limited. However, considering that it is for preparing a sample to be detected by mass spectrometry, it is preferable to use a microtube or a plate. In consideration of reaction steps such as mixing by vortex or rotator for the reaction, filtration for separation of the peptide after the reaction and the porous material and nanoparticles, a person skilled in the art assumes an appropriate reaction vessel. be able to.
  • the buffer contained in the kit of the present invention is introduced into the reaction vessel together with the nanoparticles and the porous body, and is used for digestion reaction with the protease, and reaction conditions suitable for protease digestion. Is to provide.
  • the reaction conditions can be appropriately determined depending on the selected protease and the like, and the composition of the buffer solution can also be appropriately determined.
  • the kit of the present invention also includes a filtration membrane for removing the porous body and the nanoparticles after the protease digestion reaction and extracting the product of the digestion reaction together with the buffer solution.
  • a filtration membrane for removing the porous body and the nanoparticles after the protease digestion reaction and extracting the product of the digestion reaction together with the buffer solution.
  • the filtration membrane in the kit of the present invention functions as a “bottom of the reaction vessel” and hardly permeates the peptide produced by digestion of the buffer solution and the protease under the condition where no pressure or centrifugal force is applied, and is used for centrifugation, etc.
  • the centrifugation conditions to be added because the filtration membrane can permeate the buffer solution and the peptide are not limited, but for example, a range of 3,000 to 10,000 g is preferable.
  • filtration membrane examples include a filtration membrane made of polyvinylidene fluoride (PVDF) (Low-binding hydrophilic PVDF, pore size 0.2 ⁇ m, manufactured by Millipore).
  • PVDF polyvinylidene fluoride
  • a filtration membrane is made of PVDF
  • a housing material is polyacrylonitrile resin, for example, Barex (registered trademark) (made by Mitsui Chemicals Fine Co., Ltd.) can do.
  • the kit of the present invention can also include instructions describing the method of using the kit and / or mass spectrometric conditions for detection of monoclonal antibodies.
  • the kit of the present invention can also contain one or more internal standard peptides.
  • the internal standard peptide provides more reliable analysis results by analyzing under the same conditions simultaneously with the sample or separately.
  • the internal standard peptide includes a specific amino acid sequence of the monoclonal antibody to be measured, and is a peptide generated by digestion with a protease included in the kit of the present invention.
  • the internal standard peptide can be selected from peptides having any one or more amino acid sequences of SEQ ID NOs: 1 to 47.
  • the internal standard peptide is a peptide having an amino acid sequence represented by SEQ ID NOs: 1 to 7 Or more.
  • the internal standard peptide can be one or more of the peptides having the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 8-12.
  • the internal standard peptide can be one or more of the peptides having the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 13 to 19.
  • the monoclonal antibody to be measured is trastuzumab or trastuzumab-DM1 and the protease is Trypsin TPCK-treated (manufactured by Sigma), in addition to the peptide having the amino acid sequence shown by SEQ ID NOs: 1 to 7, It can be one or more of the peptides having the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 20-28, 46 and 47.
  • the monoclonal antibody to be measured is bevacizumab and the protease is TrypsintreatedTPCK-treated (manufactured by Sigma), in addition to the peptide having the amino acid sequence shown in SEQ ID NOs: 8-12, the internal standard peptide is SEQ ID NO: 29- One or more of the peptides having the amino acid sequence represented by 38 can be used.
  • the monoclonal antibody to be measured is rituximab and the protease is Trypsin TPCK-treated (manufactured by Sigma), in addition to the peptides having the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 13 to 19, the internal standard peptide is SEQ ID NO: 39 to One or more of the peptides having the amino acid sequence represented by 45 can be used.
  • the internal standard peptide is a peptide containing an amino acid sequence specific to the monoclonal antibody to be measured, more specifically an amino acid sequence of the Fa domain, more preferably an amino acid sequence containing an amino acid derived from the CDR2 region of the heavy chain or light chain It is preferable to use a peptide consisting of
  • peptide fragment preparation for monoclonal antibody identification and quantification can be performed more easily, and automation with an apparatus can be easily achieved.
  • trypsin and the like can retain activity even when immobilized on the surface of the nanoparticle. Therefore, if protease is provided as a component of the kit in a state of being immobilized on the surface of the nanoparticle, the operation of peptide fragment preparation Can be further simplified.
  • kit of the present invention is provided in the following configuration, for example.
  • a reagent kit for analyzing one sample at a time has the following configuration, for example. 0.2 ⁇ m filtration membrane spin filter (Millipore Ultra Free PVDF, 0.2 ⁇ m) Protein G resin slurry with a pore size of 100 nm (stored at 4 ° C) Trypsin beads immobilized on nanoparticles with a particle size of 200 nm (stored at -20 ° C) Low-adsorption tubes for plasma dilution Solution collection microtubes Buffer for plasma dilution (PBS + 0.1% n-octyl- ⁇ -D-thioglycoside or equivalent surfactant such as n-octyl- ⁇ -D-glycoside) Bead washing buffer (PBS) Protease reaction buffer (25 mM Tris-HCl, pH 8.0 + protease reaction-promoting additive) 10% formic acid aqueous solution instruction manual
  • a reagent kit for multi-sample processing that enables simultaneous analysis of 96 samples has the following configuration, for example.
  • 0.2 ⁇ m filtration membrane plate (Millipore multiscreen PVDF, Barex, 0.2 ⁇ m) Protein G resin slurry with a pore size of 100 nm (stored at 4 ° C) Trypsin and protease beads immobilized on nanoparticles with a particle size of 200 nm (stored at -20 ° C)
  • Protease bead plate Plasma dilution buffer (PBS + 0.1% n-octyl- ⁇ -D-thioglycoside or equivalent surfactant such as n-octyl- ⁇ -D-glycoside) Bead washing buffer (PBS)
  • Protease reaction buffer 25 mM Tris-HCl, pH 8.0 + protease reaction
  • an internal standard peptide is included in the kit of the present invention. This is to increase the quantification accuracy of the biopharmaceutical peptide, and it is desirable to prepare a plurality of peptides for each biopharmaceutical and sell them separately.
  • the internal standard peptides may include those labeled with stable isotope amino acids. In that case, the mass spectrometric quantification conditions differ from those of peptides that do not contain isotopes. preferable.
  • the present invention is also obtained by subjecting a porous body in which a monoclonal antibody to be measured is immobilized in pores to nanoparticles in which trypsin is immobilized in a liquid to perform selective trypsin digestion of the monoclonal antibody.
  • a method package is provided for use in the method of detecting the monoclonal antibody by analyzing the obtained peptide fragment by high performance liquid chromatography mass spectrometry (LC-MS).
  • LC-MS liquid chromatography mass spectrometry
  • the “method package” refers to a package that includes the analysis conditions of liquid chromatograph mass spectrometry for a specific measurement target in a readable form and can be circulated alone. By importing the data included in the method package into LC-MS, it is possible to analyze under the optimal measurement conditions obtained after detailed examination.
  • the present applicant has provided method packages for analysis by LC-MS in order to allow users to perform mass spectrometry of agricultural chemicals and veterinary drugs more easily. Therefore, the present invention also provides a method package for identifying and quantifying monoclonal antibodies in a sample by LC-MS.
  • the present invention performs selective protease digestion of a monoclonal antibody by bringing a porous body in which the monoclonal antibody to be measured is immobilized in the pores and nanoparticles in which the protease is immobilized into contact with each other in a liquid.
  • LC-MS high performance liquid chromatography mass spectrometry
  • the data includes, but is not limited to, for example, a peptide obtained by protease digestion of the monoclonal antibody, such as a peptide having an amino acid sequence comprising an amino acid of a Fab domain, more preferably a CDR region.
  • each of the triple quadrupole contains data of the voltage at, provides the recording medium.
  • the expected holding time, voltage data, and the like described above are numerical values that vary depending on the equipment used, measurement conditions, etc., and are preferably provided according to the equipment. Further, as will be understood by those skilled in the art, it is preferable to provide the fluctuation range of the numerical value that varies depending on the conditions.
  • the recording medium may be in any form and is not particularly limited.
  • a disk or memory capable of recording information magnetically and optically can be mentioned.
  • the above method package can include, for example, the following information and software functions.
  • optimized ⁇ been parent ion m / z values and optimized fragment ion m / z values, optimized Q1 pre bias voltage-Optimized Q2 collision energy voltage-Optimized Q3 pre Bias voltage value • Expected ion retention time and mass analysis time • Quantitative value conversion formula • Analysis result report output function *: Measures each condition item, the highest ion intensity, and the most reproducible m / z Adopt a value and make it the optimal value.
  • the present invention also provides a method package for detection of monoclonal antibodies by high performance liquid chromatography / mass spectrometry (LC-MS), which includes the above recording medium and instructions for using the recording medium.
  • LC-MS high performance liquid chromatography / mass spectrometry
  • Examples of the above recording medium or method package include those containing only information limited to a specific monoclonal antibody. Therefore, when the monoclonal antibody is, for example, trastuzumab, trastuzumab-DM1, bevacizumab, or rituximab, it is possible to provide a recording medium or method package that describes analysis conditions suitable for them.
  • the data included in the recording medium may be related to analysis conditions for a peptide having any one or more amino acid sequences of SEQ ID NOs: 1 to 47, for example.
  • the method package may describe data common to a plurality of mass spectrometers, or may describe various data suitable for analysis by a specific mass spectrometer.
  • the recording medium or method package can be provided together with the kit of the present invention described above or separately from the kit.
  • Example 1 Sample preparation kit Prepare a kit with the following configuration for the analysis of a single sample.
  • PBS buffer PBS + 0.1% n-octyl- ⁇ -D-thioglucoside, Dojindo
  • Enzyme reaction buffer 25 mM Tris-HCl, pH 8.0
  • Enzyme stop solution 10% formic acid
  • Filter tube Li-binding hydrophilic PVDF, pore size 0.2 ⁇ m, Millipore
  • Low adsorption tube (Richell Micro Resico Tube 92017)
  • LCMS vial, insert Shiadzu GLC GLC4010-VP target vial VP, C4010-630P Target PP Polyspring
  • Porous material Porous material (Pierce 53126 Protein G UltraLink Resin, 40 ⁇ l dispensing)
  • Nanoparticles trypsin-immobilized FG beads (trypsin 40 ⁇ g))
  • 9 9
  • ⁇ Protocol (described in the instruction manual (9))> 1. Take 20 ⁇ l of blood sample into a low adsorption tube (5) and dilute buffer (1) with 180 ⁇ l. 2. Centrifuge the porous body (7) in a tabletop centrifuge and discard the supernatant. Add 100 ⁇ l of buffer (1), stir gently, centrifuge, and discard the supernatant. Repeat this operation three times. Thereafter, 40 ⁇ l of buffer solution (1) is added and suspended, and then transferred to the filter tube (4). This operation may be performed on the filter tube (4). 3. Transfer the blood diluted sample from step 1 to the filter tube (4). 4. Stir at room temperature for 1 hour while tapping lightly with a tapping rotary mixer (Nisshin Rika). 5.
  • Example 3 Examination of filtration membrane 2
  • An experiment similar to Example 2 was verified using bevacizumab. The results are shown in FIG.
  • Example 2 As a result, as in Example 2, there was no difference in the case of a high concentration peptide, but when the peptide concentration was low, a significant difference occurred in the recovery rate, and PVDF was found to be suitable as a filtration membrane. did.
  • Example 4 Examination of filtration membrane 3
  • Two membrane materials (PTFE, PVDF) and three types of housings were compared to verify the peptide recovery rate of filtration membrane plates for use in multi-sample measurements.
  • PTFE membrane / Solvinert housing (Merck) 2) PVDF membrane / Acryl clear housing (Merck), 3) PVDF membrane / Barex white housing (Merck) were used for comparison.
  • PTFE was dominant on the high concentration side of the peptide, but PVDF was superior on the low concentration side.
  • 5-20 ⁇ g / ml is the required peptide concentration range, so it was judged effective to select PFDV Barex.
  • saturation with a high concentration of peptide when Barex resin is used aggregation of protein components can be considered.
  • the blood sample assumed clinically includes a large amount of antibody and there is a washing step with a surfactant, so this saturation phenomenon is considered to be eliminated.
  • the acrylic resin was excluded from the selection because of its large peptide loss due to physical adsorption.
  • Example 5 Stability evaluation of protease activity
  • enzyme activity was measured. Since the nanoparticles inhibit the substrate absorbance, several modifications were made to the conventional method.
  • TPCK Trypsin Gold, Mass Spec Grade (Promega) (hereinafter referred to as “Gold”) and Trypsin TPCK Treated from bovine pancreas, Product Number T1426 (Sigma Aldrich) (hereinafter referred to as “TPCK”)
  • the two types of trypsin and “FG-Gold” and “FG-TPCK” in which “Gold” and “TPCK” were immobilized on the nanoparticles using the kit described in Example 1 were used for various conditions. Under the enzyme reaction, enzyme stability was examined. "Gold” is resistant to self-digestion by applying a reductive dimethylation reaction in addition to chymotrypsin inactivation treatment (TPCK treatment), and has a broad activity independent of temperature and pH. It is a mass spectrometry grade protease that maintains On the other hand, “TPCK” is a protease in which chymotrypsin remains, although chymotrypsin is inactivated.
  • ⁇ Protocol> Dissolve the protease substrate in DMSO to a final concentration of 10 mM to make a stock solution. Mix as follows. ⁇ Substrate 10 ⁇ l (100 nmol) ⁇ Reaction buffer (50 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, pH 8.0) 200 ⁇ l ⁇ Immobilized enzyme suspension (0.5 mg / ml) 2 ⁇ l
  • protease digestion reaction was performed for 1.5 hours under vortexing.
  • 50 ml of 2N-HCl was added to stop the reaction completely.
  • Filter through a multi-screen filter plate (Millipore multi-screen PVDF, Barex, 0.2 ⁇ m), remove the nanoparticles, dispense into an optical bottom plate (Cosmo Bio Co., Ltd.), and microplate reader (TECAN Infinite M200Pro, Tecan
  • the nanoparticles with immobilized trypsin were stored at 4 ° C. and ⁇ 20 ° C. and monitored for about 3 months to evaluate their enzyme activity. As shown in FIG. 5, the storage stability does not depend on the temperature, and it was found that the storage temperature should be 4 ° C. for providing as a kit.
  • Example 6 Impact assessment by scale-up
  • Example 7 Impact assessment by scale-up
  • kit of the present invention makes it easy to identify and quantify monoclonal antibodies in a sample and reduce the error in the procedure.
  • the target ion species since the target ion species is determined, it is not necessary for the user to set mass analysis conditions.
  • the concentration quantification technique by mass spectrometry of antibody drugs has the potential to replace the current ELISA method, and the present invention can contribute to the advancement into the clinical pharmacology field and the market expansion.

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Abstract

　抗体の多様性や、種間差、マトリックスなどの影響を受けない、極めて汎用性の高い分析手法を提供するための、サンプル調製用キットを提供する。　高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によってモノクローナル抗体を検出するためのサンプル調製用キットであって、測定対象のモノクローナル抗体を固定化するための多孔質体と、プロテアーゼを固定化したナノ粒子と、前記多孔質体と前記ナノ粒子とを接触させてモノクローナル抗体を選択的に消化するための反応容器と、前記ナノ粒子及び多孔質体と共に前記反応容器内に導入され、前記プロテアーゼによる消化反応をさせるための緩衝液と、前記消化反応後に前記多孔質体および前記ナノ粒子を除去して、前記消化反応の生成物を前記緩衝液と共に抽出するためのろ過膜と、を含む、上記キットを提供する。

Description

モノクローナル抗体の検出のためのサンプル調製用キット
　本発明は質量分析によってモノクローナル抗体を検出するためのサンプル調製用キットに関し、より具体的には、モノクローナル抗体の特異的配列を含むペプチド断片を選択的に消化し、より効率的な分析を可能とするためのキットに関する。
　創薬領域における最大の課題は、副作用が少なく高い薬効を発揮する薬の開発である。そのために現在着目されているのが薬物動態、特に濃度モニタリング（therapeutic drug monitoring, TDM）である。処方した薬が適正量であるかどうか、病変部位に到達しているかどうかを指標にシーズのスクリーニングが行われることで、ドロップアウトする薬を早期に発見し、この情報を早期創薬開発や臨床試験で有効に利用することが出来るようになる。以前はオーダーメイド医療とも言われる個別化医療への期待があったが、現実的には医療技術や医薬品を個別化することは、一部富裕層を除けば医療経済の観点からも現実不可能といっても良い。そのため、入手できる医療機器や医薬品を、実際に治療効果のある患者へ届けるという試みに移行しつつあり、これを最適化医療と呼んでいる。医薬品開発における最適化医療への最大の試みがTDMを用いた創薬開発である。特にがんや自己免疫疾患等の分野では、昨今は分子標的薬と呼ばれる創薬が主流である。分子標的薬の効果的な薬効は、病変部位に蓄積し薬効を発揮しているかどうかを測定し、医師自身が判断できることが重要である。
　分子標的薬としては現在、病原タンパク質を標的抗原とする抗体医薬が注目されている。抗体は本来体内に存在するタンパク質であるため、副作用が低いことが予想され、分子標的効果を高めるために高濃度で投与することも可能である。さらに、抗体医薬は複数の医薬品を用いたカクテル療法にも適し、劇的に奏功が得られる症例報告も出てきている。また、ドラッグデリバリー領域からのアプローチとして、抗体に低分子抗がん剤を結合した次世代抗体医薬（抗体医薬コンジュゲート）も登場している。更に、糖鎖改変によって薬効を増強した抗体や、免疫細胞を活性化することで抗がん効果をもたらす、いわゆる免疫チェックポイント抗体等も出てきており、抗体医薬のニーズは、今後ますます高まるものと予想される。
　抗体はその性質上、極めて高い分子特異性を示し、標的となる病変に蓄積されると言われてきたが、それをきちんと検証する技術は存在しなかった。また、抗体医薬そのものの薬価の問題もあり、適正使用による最適化医療というものが、患者にとっても医療経済的にも重要であると議論されるようになっている。そのためには抗体医薬の局在や濃度を測定することで、最適な投薬量を設定することも重要である。さらには、投薬した薬の薬効指標をきちんと観察し薬理評価をするための、抗体医薬濃度の定量にも大きな需要がある。
　抗体等のタンパク質の定量のための最も一般的な技術はELISA（Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assay）である。これは測定対象のタンパク質に対する抗体を作製し、さらに検出用抗体でサンドイッチすることで、簡便に測定対象分子を定量する技術である。ELISAは極めて汎用性の高い技術であり、また自動化支援環境も整っているため、今後も診断技術としてはゴールデンスタンダードとなると予想される。
　しかしながら、ELISAには、例えば、測定対象を直接測定していないため、異常値が出ることがあること、また測定対象ごとに抗体を作製する必要があり、時間やコストがかかること、複数の解析対象を同時に測定できないことなど、多くの課題が存在する。特に抗体医薬に関しては、内在性抗体との交差反応も生じ、正確な測定が難しい。さらに、中和抗体と抗原が結合した状態では抗原認識部位がふさがれ、ELISAで測定出来ないことも多い。
　また、動物試験フェーズで採用されたELISAの分析条件では、種間交差の問題からそのまま大型動物やヒトには応用できないこともしばしばである。つまり、創薬開発段階とヒト臨床試験では、別々の測定条件で比較せざるを得ない。病変組織中の薬剤濃度のELISAでは、検出を阻害するマトリックス成分が異なるため、ELISAベースで薬物動態を行うためには、複数の抗体の作製が必要となってしまう。このことは、膨大なコストや後期開発におけるドロップアウトなど、非常に大きなリスクをはらんでいる。
　一方、質量分析を用いたタンパク質の定量および構造解析は、質量分析技術やデータ解析サーバ・ソフトウェアの発展と共に、飛躍的にその応用範囲を広げている。特に、質量分析を用いた絶対定量技術は、特異的抗体に依存しない方法として、認知度が高まっている。
　例えば、市販抗体のないタンパク質を定量する場合、従来はタンパク質を大量に精製する必要があったが、質量分析を用いることで、このステップが省略されるため、飛躍的に効率的となった。医学の分野でも、従来は病理切片の薄切方法、保存方法など医師の手技の誤差、施設間差などの問題で、免疫組織染色に差が出てしまい、陽性、偽陽性、陰性の判定が難しいことはしばしば起こり得た。これに対して病理切片中の目的病原タンパク質を質量分析で定量することで、高発現タンパク質であるかどうかの判定が可能である。さらに昨今では、レーザーマイクロダイセクションと呼ばれる、細胞一個を切り出してくる装置が汎用的に使える状況にある。例えば、がん細胞のみを回収し、その細胞内の病原タンパク質の発現変動解析を、質量分析で直接観察することが可能となる。これは特に病理や臨床の現場で極めて画期的な技術革新であり、分析技術の標準化などの整備が望まれている状況である。
　精度の高い分析技術である一方で、生物学的サンプル中のタンパク質を質量分析によって検出する場合には、測定対象のタンパク質をプロテアーゼ消化して断片化することが多いため、夾雑物を含む多様なペプチド断片から目的のペプチド断片を効率的に選択することが重要となってくる。
　特許文献１では、サンプル中の抗体の検出のために、ペプシンを用いて非免疫グロブリンタンパク質の分解と共に抗体を消化してF(ab')2断片を産生させた後に更にトリプシン消化を行うことが開示されている。また特許文献２は、質量分析に先立つ液体クロマトグラフィー段階で適切に分離されたペプチドのみを定量対象として選択するというものである。非特許文献１は抗ペプチド抗体を用いて測定対象ペプチドを濃縮するというものである。
　また近年、プロテアーゼ消化の高効率化手法として、ナノ粒子等の微小環境（マイクロリアクター）内で、プロテアーゼ消化を行う方法が注目されている。例えば、非特許文献２では、細孔内にトリプシンを固定したメソ多孔シリカを用いることで、分子量の小さいタンパク質を選択的にトリプシン消化できることが報告されている。非特許文献３では、ナイロン膜にトリプシンを固定化し、タンパク質のトリプシン消化を高効率化した例が報告されている。これらの方法はいずれも、多孔質体の細孔内にプロテアーゼを固定化し、固相表面のプロテアーゼと液相内の基質タンパク質とを反応させるものである。
　非特許文献４はサンプル中のモノクローナル抗体と内在性の抗体とを識別するためのハイスループット法を提案するものである。
　パラフィン包埋された病理切片からのタンパク質回収は、アジレント、AMR、キアゲンなどからキットとして販売されている。また、病理切片からのがん細胞レーザーマイクロダイセクションによる回収、脱パラフィン処理、タンパク質抽出および消化を経て、質量分析による病変タンパク質の定量と臨床相関について発表されている。
特表2010-515020号 特開2012-197258号
N. Leigh Anderson等, Mass Spectrometric Quantitation of Peptides and Proteins Using Stable Isotope Standards and Capture by Anti-Peptide Antibodies (SISCAPA), Journal of Proteome Research, 2004, 3(2), 235 Qianhao Min等, Size-selective proteolysis on mesoporous silica-based trypsin nanoreactor for low-MW proteome analysis, Chemical Communications, 2010, 46, 6144 Fei Xu等, Facile Trypsin Immobilization in Polymeric Membranes for Rapid, Efficient Protein Digestion, Analytical Chemistry, Analytical Chemistry, 2010, 82, 10045 Xiaotao Duan等, High-Throughput Method Development for Sensitive, Accurate, and Reproducible Quantification of Therapeutic Monoclonal Antibodies in Tissues Using Orthogonal Array Optimization and Nano Liquid Chromatography/Selected Reaction Monitoring Mass Spectrometry, Analytical Chemistry, 2012, 84, 4373 N. Iwamoto等, Selective detection of complementarity determining regions of monoclonal antibody by limiting protease access to the substrate: nano-surface and molecular-orientation limited proteolysis, Analyst, 2014, 139, 576
　質量分析法により、タンパク質を簡便に検出・定量するためには、測定対象のタンパク質を位置選択的に切断し、そのタンパク質に特異的なペプチド断片を効率的に産生させ、他のペプチド断片の産生量を小さくすることが求められる。従って、抗体の場合には、Fabドメイン、特にFabドメインの可変領域を位置選択的に消化し、一方Fcドメインの消化を抑制する必要がある。
　本発明者等は、基質となる抗体とプロテアーゼ酵素の両方を固相に固定化することによって、モノクローナル抗体の位置選択的なプロテアーゼ消化を実現することができた（N. Iwamoto等, Selective detection of complementarity determining regions of monoclonal antibody by limiting protease access to the substrate: nano-surface and molecular-orientation limited proteolysis, Analyst, 2014, 139, 576）（非特許文献５）。この方法は、測定対象のモノクローナル抗体を細孔内に固定化した多孔質体と、プロテアーゼを固定化したナノ粒子とを液体中で接触させてモノクローナル抗体の選択的プロテアーゼ消化を行い、得られたペプチド断片を液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によって検出するものである。プロテアーゼとしてはトリプシンとリジルエンドペプチダーゼ（Lys-C）を9:1の比率で使用する二重消化が最も効率的であると報告した。
　上記の方法は、固相-固相反応を用いてモノクローナル抗体の選択的なプロテアーゼ消化を行う画期的な方法であるが、実際に使用するためには更に検討する余地を残している。
　本発明の課題は、抗体の多様性や、種間差、マトリックスなどの影響を受けない、極めて汎用性の高い分析手法を提供するための、サンプル調製用キットを提供することである。
　本発明者等は上記課題を念頭に鋭意検討した結果、測定者の技能に依存せずに高精度かつ簡便な分析を可能とするために、質量分析によって検出するペプチドの調製のための条件を種々検討し、最適条件を満たすキットを提供することを検討し、本発明を完成させるに至った。
　すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
 (１）高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によってモノクローナル抗体を検出するためのサンプル調製用キットであって、
　　測定対象のモノクローナル抗体を固定化するための多孔質体と、
　　プロテアーゼを固定化したナノ粒子と、
　　前記多孔質体と前記ナノ粒子とを接触させてモノクローナル抗体を選択的に消化するための反応容器と、
　　前記ナノ粒子及び多孔質体と共に前記反応容器内に導入され、前記プロテアーゼによる消化反応をさせるための緩衝液と、
　　前記消化反応後に前記多孔質体および前記ナノ粒子を除去して、前記消化反応の生成物を前記緩衝液と共に抽出するためのろ過膜と、
を含む、上記キット。
（２）前記ろ過膜が、圧力又は遠心力を加えない条件下では前記緩衝液及び前記プロテアーゼによる消化反応によって生成するペプチドをほとんど透過せず、圧力又は遠心力を加えた条件下では前記緩衝液及び前記ペプチドを透過することができるものである、（１）記載のキット。
（３）前記ろ過膜がポリフッ化ビニリデン（PVDF）製の膜である、（１）または（２）記載のキット。
（４）前記キットが多検体を同時に処理するためのキットであり、前記ろ過膜のハウジング素材がポリアクリロニトリル樹脂である、（１）～（３）のいずれか記載のキット。
（５）（１）～（４）のいずれか記載のキットに、更にモノクローナル抗体の検出のための質量分析条件を記載した説明書を含む、高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によるモノクローナル抗体検出のためのキット。
（６）測定対象となるモノクローナル抗体に特異的なアミノ酸配列を含む１以上の内部標準ペプチドを更に含む、（１）～（５）のいずれか記載のキット。
（７）測定対象がトラスツズマブ、トラスツズマブ-DM1、ベバシズマブ、またはリツキシマブであって、内部標準ペプチドが配列番号１～４７のいずれか１以上のアミノ酸配列を有するペプチドである、（６）記載のキット。
（８）測定対象のモノクローナル抗体を細孔内に固定化した多孔質体と、プロテアーゼを固定化したナノ粒子とを液体中で接触させてモノクローナル抗体の選択的プロテアーゼ消化を行い、得られたペプチド断片を高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によって分析することによって前記モノクローナル抗体の検出を行う方法に使用するための、前記質量分析を実行させるためのデータが記録されたコンピュータ読み取り可能な記録媒体であって、前記データが、前記モノクローナル抗体のプロテアーゼ消化によって得られるペプチドの1以上に対して、少なくとも親イオン、フラグメントイオン、予想保持時間、三連四重極のそれぞれにおける電圧のデータを含む、上記記録媒体。
（９）（８）記載の記録媒体と、前記記録媒体の使用説明書とを含む、高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によるモノクローナル抗体の検出のためのメソッドパッケージ。
（１０）前記モノクローナル抗体が、トラスツズマブ、トラスツズマブ-DM1、ベバシズマブ、リツキシマブの１種以上である、（８）記載の記録媒体または（９）記載のメソッドパッケージ。
（１１）前記データが、配列番号１～４７のいずれか１以上のアミノ酸配列を有するペプチドに対するものである、（８）記載の記録媒体または（９）記載のメソッドパッケージ。
　本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2015-047729号の開示内容を包含する。
　本発明のキットは、液体クロマトグラフ質量分析計（特に三連四重極型）の前処理用として使用する。本発明を実施するために使用可能な質量分析装置としては、例えばLCMS-8030、LCMS-8040、LCMS-8050、及びLCMS-8080（いずれも島津製作所社製）が挙げられる。また、本発明のキットを使用して前処理したサンプルの解析のために、LCMS-IT-TOF、LCMS-Q-TOF（島津製作所社製）を使用することもできる。
本発明のキットを用いて抗体を消化する方法の原理を示す。 トラスツズマブ消化断片の検出のために用いるろ過膜素材の検討の結果を示す。ペプチド回収率を検証するため、ポリテトラフルオロエチレン（polytetrafluoroethylene、PTFE）、およびポリフッ化ビニリデン（polyVinylidene difluoride、PVDF）を比較した。(A)トラスツズマブ 100.0μg/ml、(B)トラスツズマブ 33.3μg/ml。 トラスツズマブ消化断片の検出のために用いるろ過膜素材の検討の結果を示す。ペプチド回収率を検証するため、ポリテトラフルオロエチレン、およびポリフッ化ビニリデンを比較した。(C)トラスツズマブ 11.1μg/ml、（D)トラスツズマブ 3.7μg/ml。 トラスツズマブ消化断片の検出のために用いるろ過膜素材の検討の結果を示す。ペプチド回収率を検証するため、ポリテトラフルオロエチレン、およびポリフッ化ビニリデンを比較した。（E)トラスツズマブ 1.2μg/ml、（F)トラスツズマブ 0.4μg/ml。 ベバシズマブ消化断片の検出のために用いるためのろ過膜素材の検討の結果を示す。ペプチド回収率を検証するため、ポリテトラフルオロエチレン、およびポリフッ化ビニリデンを比較した。(A)ベバシズマブ 100.0μg/ml、(B)ベバシズマブ 33.3μg/ml。 ベバシズマブ消化断片の検出のために用いるためのろ過膜素材の検討の結果を示す。ペプチド回収率を検証するため、ポリテトラフルオロエチレン、およびポリフッ化ビニリデンを比較した。(C)ベバシズマブ 11.1μg/ml、（D)ベバシズマブ 3.7μg/ml。 ベバシズマブ消化断片の検出のために用いるためのろ過膜素材の検討の結果を示す。ペプチド回収率を検証するため、ポリテトラフルオロエチレン、およびポリフッ化ビニリデンを比較した。（E)ベバシズマブ 1.2μg/ml、（F)ベバシズマブ 0.4μg/ml。 多検体の検出のために用いるろ過膜プレートのペプチド回収率を検証するため、2つの膜素材（PTFE、PVDF）およびハウジング3種を比較した結果を示す。ペプチドとして(A)FTISADTSK(配列番号３)、（B)ASQDVNTAVAWYQQKPGK(配列番号４７)をそれぞれ用いた。 多検体の検出のために用いるろ過膜プレートのペプチド回収率を検証するため、2つの膜素材（PTFE、PVDF）およびハウジング3種を比較した結果を示す。ペプチドとして(C)GLEWVAR(配列番号６)、(D)DTYIHWVR(配列番号５)をそれぞれ用いた。 本発明の方法に用いるナノ粒子の経時的安定性を示す。(A)トリプシン基質の切断により増加するp-ニトロアニリンの吸光度。縦軸：405nmにおける吸光度、横軸：反応時間（分）、(B)酵素活性。 本発明の方法に用いるナノ粒子の経時的安定性を示す。(A)-20℃保存の場合、(B)4℃保存の場合をそれぞれ示す。
　本発明は、高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によってモノクローナル抗体を検出するためのサンプル調製用キットであって、
　　測定対象のモノクローナル抗体を固定化するための多孔質体と、
　　プロテアーゼを固定化したナノ粒子と、
　　前記多孔質体と前記ナノ粒子とを接触させてモノクローナル抗体を選択的に消化するための反応容器と、
　　前記ナノ粒子及び多孔質体と共に前記反応容器内に導入され、前記プロテアーゼによる消化反応をさせるための緩衝液と、
　　前記消化反応後に前記多孔質体および前記ナノ粒子を除去して、前記消化反応の生成物を前記緩衝液と共に抽出するためのろ過膜と、
を含む、上記キットに関する。
　本発明のキットを用いてモノクローナル抗体を消化する方法の原理を図１に示す。以下、本発明を、上記の方法と関連付けて具体的に説明する。
＜質量分析の概要＞
　質量分析を用いた定量技術は、近年では主に三連四重極と呼ばれるハイブリッド型質量分析装置によって行われる。具体的には、イオン化された生体分子はまず、オクトポールと呼ばれる部分を通過することで、そのイオン分子振動半径を小さくする。次に第１四重極の中で、特定の質量数を持つイオンを共振させることで選択し、他のイオンを排除する。このステップはシングルイオンモニタリング（single ion monitoring, SIM）とも呼ばれる。
　選択されたイオンは第２四重極に運ばれ、アルゴンと衝突することで開裂が行われる。この反応は衝突誘起解離（collision-induced dissociation, CID）という。この開裂反応の結果、生成した特異的な断片を第３四重極で選択することで、非常に高感度で、かつ高選択的な定量が可能となる。この一連の分析を多重反応モニタリング（multiple reaction monitoring, MRM）と呼ぶ。
　質量分析を用いた生体試料の定量は、生体分子の構造特異的なイオンを指標に定量できるという最大の利点があり、これを高速液体クロマトグラフに連結することで、連続的解析を可能とすることができる。現存する分析機器の中で、ほぼ唯一といって良い利点を持つ技術である。
　質量分析により抗体を検出するためには、まず血液や組織などの生体試料より抗体を抽出し、適切な溶媒に溶解することが必要である。また、抗体はそのまま分析するには分子が大きいため、プロテアーゼによりペプチドに分解し、その後液体クロマトグラフで分離した後に質量分析を行う。分析に適したペプチドの分子量は約1000～3000 Da程度である。
　しかしながら、一般的なタンパク質分子をプロテアーゼ分解すると、ペプチド断片が約100本程度、抗体の場合には200本を遙かに超えるペプチド断片が生成する。従って、単一のタンパク質だけでも測定対象数は膨大になり、複雑な生体試料を対象にした場合には、巨大なサンプルセットとなる。
　また、抗体分子では、CDR領域等のごく一部の配列のみが異なり、残りの部分は共通配列であるため、上記の巨大で複雑なサンプルから、目的の特異的配列のみを分析、定量するためには、質量分析ステップの前に高分離能及び再現性のよい液体クロマトグラフが必須となる。現在は、超高速・高圧クロマトグラフ機器があり、それに対応した、粒径が均一で非常に細かいカラム樹脂なども開発されており、このような高速、高分離、耐高圧カラムを用いることで、飛躍的に分離能向上が図れるようになってきている。しかしながら、プロテオミクスなど、タンパク質セットを対象とする研究分野においてはまだまだ十分とは言えない現状がある。
　また、高精度な質量分析による解析における課題として、「マトリックス効果」というものがある。マトリックス効果とは、同じ液滴内にイオン化阻害物質が存在すること、もしくは同時に多種のイオンが存在することで、目的物質のイオン化効率が低減してしまう現象である。イオン化に与えられるエネルギーは等しいので、イオン化対象物質が増えると、必然的にエネルギーが分散し、イオン量が減少してしまう。
　解析対象ペプチドの本数が増えると、カラム分離で完全に分離することは困難である。よって、マトリックス効果によるイオン化効率の低下、結果的には感度や定量再現性の低下を引き起こす要因となる。これを改善するために質量分析側で、高速チャンネル切り替え機能などを作り、改善を図っているが、根本的には母集団の低減をしない限りは、このマトリックス効果を克服することは出来ない。
　上記のような種々の問題点を考慮し、本発明は、測定対象の特異性を維持しながら、解析対象の母集団を減らすことを意図するものである。
＜抗体＞
　本発明のキットを用いてLC-MSによる検出のためのサンプルを調製する測定対象はモノクローナル抗体である。モノクローナル抗体は、2本の重鎖（分子量50 kDa）と2本の軽鎖（分子量25 kDa）がジスルフィド結合でつながった構造を有する生体高分子である。FabドメインとFcドメインがヒンジを介してつながっており、また重鎖及び軽鎖はそれぞれ定常領域と可変領域から成る。定常領域は、抗体の特徴的なY字型の形を保つ構造（フレームワーク構造）を有し、同一種由来の抗体のほとんどで共通するアミノ酸配列を有している。一方、可変領域には、相補性決定領域（complementarity-determining region, CDR）と呼ばれる特異的な配列を持つ部位が各3つずつ存在する。このCDR（CDR1、CDR2、CDR3）領域が規定する立体構造が抗原との特異的結合に関わっており、それによって抗体－抗原複合体が形成される。
　抗体の高次構造でさらに特徴的なものは、リジッドな構造を持つ定常領域に対し、非常にフレキシブルなヒンジ、及び可変領域である。重鎖のC末端にはProtein AやProtein Gと呼ばれる特定のタンパク質が結合する部位が存在することが分かっている。
　近年では、種々の疾患に対して特異的に作用し得る抗体医薬として、数多くのモノクローナル抗体が開発されている。測定対象となり得るモノクローナル抗体としては、限定するものではないが、例えばパニツムマブ、オファツムマブ、ゴリムマブ、イピリムマブ等のヒト抗体；トシリズマブ、トラスツズマブ、トラスツズマブ-DM1、ベバシズマブ、オマリズマブ、メポリズマブ、ゲムツズマブ、パリビズマブ、ラニビズマブ、セルトリズマブ、オクレリズマブ、モガムリズマブ、エクリズマブ等のヒト化抗体；リツキシマブ、セツキシマブ、インフリキシマブ、バシリキシマブ等のキメラ抗体等が挙げられる。尚、モノクローナル抗体の分子径は約１４．５ｎｍである。
　また、モノクローナル抗体の特異性を維持しつつ更なる機能を付加した複合体、例えばFc融合タンパク質、抗体-薬物複合体（例えばゲムツズマブ・オゾガマイシン、トラスツズマブ-エムタンシン等）も本発明の方法における測定対象のモノクローナル抗体に含めるものとする。この場合、測定に先立って複合体の結合を解離させて抗体のみをLC-MSに供しても良く、あるいは複合体の形態のままでLC-MSに供することもできる。当業者であれば、本明細書の記載に基づいて、測定対象に応じて本発明の方法のための最適な条件を設定することができる。
　本発明のキットは、モノクローナル抗体のFabドメインを位置選択的にプロテアーゼ消化し、得られたペプチド断片の質量分析により、抗体の同定や定量を行うために用いるものである。
＜多孔質体＞
　本発明のキットに含まれる多孔質体は、多数の細孔を有するものであれば、その材料は特に限定されず、活性炭、多孔質膜、多孔質樹脂ビーズ、金属粒子等を用いることができる。これらの中でも、抗体を部位特異的に結合可能なものが特に好ましい。
　図１では、半球形状の細孔が図示されているが、細孔の形状は特に限定されない。また、多孔質膜のように、多孔質体を貫通する細孔が形成されたものを用いることもできる。多孔質体の細孔の大きさは特に限定されず、抗体を固定化した際に、細孔の表層付近に選択的に消化されるべき部位が位置するように、抗体の分子径等を考慮して決定することが好ましい。多孔質体の平均細孔径Ｄ２は、１０ｎｍ～２００ｎｍ程度の範囲で、かつナノ粒子の平均粒径Ｄ１よりも小さい範囲で適宜に設定される。多孔質体の平均細孔径Ｄ２は、例えば、２０ｎｍ～２００ｎｍ程度が好ましく、３０ｎｍ～１５０ｎｍ程度がより好ましい。抗体のFcドメインを細孔内に固定化し、Fabドメインを位置選択的にプロテアーゼ消化するためには、多孔質体の細孔径は、３０ｎｍ～１５０ｎｍが好ましく、４０ｎｍ～１２０ｎｍがより好ましく、５０ｎｍ～１００ｎｍ、特に約１００ｎｍがさらに好ましい。
　本発明に係る方法は、測定対象のモノクローナル抗体を多孔質体の細孔内に固定化する。細孔内に抗体を固定化し、固相と液相の界面という微細な環境に存在させることで、抗体は変性を起こしやすく、分子の揺らぎが摂動を受け、プロテアーゼのアタックを受ける確率が向上する。また、本発明では、後述するようにプロテアーゼがナノ粒子に固定化されることで、立体的に安定で、自己消化が生じ難い環境となるため、プロテアーゼの安定性が増すと考えられる。そのため、本発明の方法によれば、位置選択的なプロテアーゼ消化が可能となることに加えて、プロテアーゼの高活性を維持できる。
　本発明においては、多孔質体の細孔内に、抗体と部位特異的に相互作用するリンカー分子が固定化されたものが好ましく用いられる。抗体とリンカー分子との相互作用としては、化学結合、水素結合、イオン結合、錯体形成、疎水的相互作用、ファンデルワールス相互作用、静電的相互作用、立体選択的相互作用等が挙げられる。
　リンカー分子としては、抗体のFcドメインと部位特異的に結合するProtein AやProtein G等が好ましく用いられる。細孔内にこれらのリンカー分子が固定化された多孔質体を用いることにより、細孔内に抗体のFcドメインが固定化され、Fabドメインが細孔の表層付近に位置する。このように、細孔内での抗体の配向が制御されることで、プロテアーゼによるFabドメインの位置選択的消化が可能となる。
　リンカー分子の大きさは、抗体の選択的切断部位が細孔の表層付近に位置するように選択される。リンカー分子と抗体とが結合した状態の分子サイズは、多孔質体の細孔径の０．５倍～１．５倍程度が好ましく、０．６倍～１．２倍程度がより好ましく、０．７倍～１．１倍程度がさらに好ましく、０．８倍～１倍程度が特に好ましい。なお、多孔質体にリンカー分子が固定されておらず、細孔内に抗体を直接結合させる場合は、抗体の分子径と多孔質体の細孔径が上記関係を満たすことが好ましい。
　本発明において好適に使用可能な多孔質体として、特に限定するものではないが、例えばProtein G Ultralink樹脂（Pierce社製）、トヨパール、TSKgel（TOSOH社製）等が挙げられる。例えばProtein G Ultralink樹脂では、樹脂に結合したProtein Gの９５％は細孔内にあることがわかっている。
＜多孔質体への抗体の固定化＞
　抗体を多孔質体の細孔内に固定化する方法は特に限定されず、抗体と多孔質体あるいはリンカー分子の特性等に応じて適宜の方法を採用できる。例えば、細孔内にprotein Aやprotein Gが固定化された多孔質体に抗体を固定化する場合は、多孔質体の懸濁液と抗体を含む溶液とを混合することにより、細孔内に抗体を容易に固定化できる。
　多孔質体と抗体の量比は、目的に応じて適宜に設定できる。例えば、抗体の定量分析を行う場合、試料中の抗体のほぼ全量が多孔質体に固定化されることが望まれる。そのため、試料中の抗体の推定含有量に対して、多孔質体の量が過剰となるように量比を設定することが好ましい。
＜ナノ粒子＞
　本発明のキットに含まれるナノ粒子は、その表面にプロテアーゼを固定化して、多孔質体の細孔内に固定化された抗体へのプロテアーゼのアクセスを制御する目的で用いられる。そのため、ナノ粒子は、多孔質体の細孔の奥深くまで入り込まないように、その平均粒径Ｄ１が、多孔質体の平均細孔径Ｄ２よりも大きいものとする（図１）。
　ナノ粒子の形状は特に限定されないが、多孔質体の細孔へのプロテアーゼのアクセスの均一化の観点から、球状のナノ粒子が好ましい。また、ナノ粒子は、分散性が高く、平均粒径が均一であることが好ましい。
　ナノ粒子の平均粒径Ｄ１は、５０ｎｍ～５００ｎｍの範囲であり、多孔質体の平均細孔径Ｄ２の１．２倍以上がより好ましく、１．５倍以上がさらに好ましく、１．８倍以上、例えば約２倍が特に好ましい。例えば多孔質体の平均細孔径が３０～１５０ｎｍ程度の場合、ナノ粒子の平均粒径Ｄ１は１００ｎｍ以上が好ましく、１５０ｎｍ以上がより好ましい。多孔質体の平均細孔径が５０ｎｍ～１００ｎｍ程度の場合、ナノ粒子の平均粒径は、１２０ｎｍ以上が好ましく、１５０ｎｍ以上がより好ましく、１７０ｎｍ以上が特に好ましい。ナノ粒子の平均粒径Ｄ１の上限は、プロテアーゼによる消化効率を高める観点から５００ｎｍ以下が好ましく、３００ｎｍ以下がさらに好ましい。
　ナノ粒子は、上記のプロテアーゼを表面に固定化できるものであれば、その材質は特に限定されず、金属や樹脂等が適宜に用いられる。また、金属表面を樹脂で被覆したものや、樹脂表面を金属で被覆したもの等を用いることもできる。
　ナノ粒子の種類としては、水性媒体に分散又は懸濁することができ、分散液又は懸濁液から磁気分離または磁性沈殿分離により容易に回収することができる磁気ナノ粒子が好ましい。また、凝集が起こりにくいという点において、その表面が有機ポリマーで被覆された磁気ナノ粒子がより好ましい。磁気ナノ粒子の基材としては、酸化鉄（マグネタイト（Fe3O4）、マグヘマイト（γ‐Fe2O3））、フェライト（Fe/M)3O4などの強磁性合金が挙げられる。フェライト（Fe/M)3O4において、Mは、鉄イオンと共に用いて磁性金属酸化物を形成することのできる金属イオンを意味し、典型的にはCo2+、Ni2+、Mn2+、Mg2+、Cu2+、Ni2+などが用いられる。また、磁気ナノ粒子を被覆する有機ポリマーとしては、ポリグリシジルメタクリレート（ポリGMA）、GMAとスチレンのコポリマー、ポリメタクリル酸メチル(PMMA)、ポリアクリル酸メチル（PMA)などを挙げることができる。有機ポリマーで被覆された磁性ナノビーズの具体例としては、FGビーズ、SGビーズ、Adembeads、nanomagなどが挙げられる。市販品としては、例えば、多摩川精機株式会社製のFG beads（フェライト粒子をポリグリシジルメタクリレート（ポリGMA）で被覆した粒径約２００ｎｍのポリマー磁性ナノ粒子）が好適に用いられる。
　上記ナノ粒子は、非特異的なタンパク質の吸着抑制と、プロテアーゼの選択的な固定化のために、プロテアーゼと結合可能なスペーサ分子で修飾されていることが好ましい。スペーサ分子を介してプロテアーゼを固定化することにより、ナノ粒子表面からのプロテアーゼの脱離が抑制され、プロテアーゼ消化の位置選択性が高められる。また、スペーサの分子サイズを調整することにより、抗体の所望の位置にプロテアーゼを選択的にアクセスさせ、位置選択性を高めることもできる。
　スペーサは、プロテアーゼと結合可能であり、かつプロテアーゼを失活させないものが好ましい。ナノ粒子表面に固定化されたプロテアーゼのアクセス範囲を制御する観点から、スペーサは分子径が小さいものが好ましい。スペーサの分子径は、５ｎｍ以下が好ましく、３ｎｍ以下がより好ましく、２ｎｍ以下がさらに好ましい。また、スペーサの分子量は２０００以下が好ましく、１５００以下がより好ましく、１０００以下がさらに好ましい。
　上記分子径で、プロテアーゼを固定化できるスペーサ分子は、非タンパク質が好ましく、末端にアミノ基、カルボキシル基、エステル基、エポキシ基、トシル基、ヒドロキル基、チオール基、アルデヒド基、マレイミド基、スクシンイミド基、アジド基、ビオチン、アビジン、キレート等の官能基を有する分子が好ましい。例えば、トリプシンの固定には、活性化されたエステル基を有するスペーサ分子が好ましい。また、スペーサ分子のうち、上記官能基以外のスペーサアーム部分は、ポリエチレングリコール及びその誘導体、ポリプロピレングリコール及びその誘導体、ポリアクリルアミド及びその誘導体、ポリエチレンイミン及びその誘導体、ポリ（エチレンオキシド）及びその誘導体、ポリ（エチレンテレフタル酸）及びその誘導体などの親水性分子が用いられる。
　このようなスペーサ分子で表面修飾されたナノ粒子もまた市販されており、それらを利用すればよい。例えば、N-ヒドロキシスクシンイミドで活性化されたエステル基（活性エステル基）を有するスペーサ分子で修飾されたナノ粒子は、商品名「FG beads NHS」（多摩川精機株式会社）として市販されている。FG beads NHSの粒子径は約２００ｎｍ±２０ｎｍであり、ナノ粒子として非常に均質のものである。
　本発明のキットは、上記のナノ粒子にプロテアーゼを固定化させたものを含むのが良い。しかしながら、ナノ粒子とプロテアーゼとを別個に提供し、使用前に固定化する態様を企図することもできる。
＜プロテアーゼ＞
　本発明に係る方法は、プロテアーゼが、多孔質体の細孔内に固定化された抗体を特定のアミノ酸配列部位で切断してペプチド断片を生じさせるものである。
　プロテアーゼは、単独で、あるいはナノ粒子の表面に固定化された状態でキットに含めることができる。
　本発明においてナノ粒子に固定化させるプロテアーゼの種類は、質量分析による定量又は同定の対象となるタンパク質の種類に応じて適宜選択すればよく、限定はされないが、例えば、トリプシン、キモトリプシン、リジルエンドペプチダーゼ、V8プロテアーゼ、AspNプロテアーゼ（Asp-N）、ArgCプロテアーゼ（Arg-C）、パパイン、ペプシン、ジペプチジルペプチダーゼなどが挙げられる。プロテアーゼは２種以上を組み合わせて用いることもできる。
　上記プロテアーゼの中でも、本発明においては、トリプシンが特に好ましく用いられる。トリプシンは基質特異性が高く、また切断後のペプチドのＣ末端にLys又はArgがあるためにペプチドの電荷量及び電荷局在を均質にすることができ、質量分析のための試料の作製のために特に好適である。またトリプシンは分子径が小さく（約３．８ｎｍ）、かつ活性部位が分子の内部に存在している。そのため、活性部位が抗体にアクセスできる領域が制限され、プロテアーゼ消化の位置選択性を高めることができる。
　プロテアーゼ消化後の抗体のペプチド断片を測定資料として質量分析に供する場合は、自己消化が少なく、切断配列の選択性が高いプロテアーゼを用いることが好ましい。市販のプロテアーゼを用いる場合、質量分析グレードや配列決定（シーケンス）グレードのプロテアーゼを用いることが好ましい。例えば、生体由来のネイティブのトリプシンは、自己消化活性が高かったり、キモトリプシン様の活性を示すトリプシンが含まれているため、切断部位の特異性が低いことが知られている。そのため、質量分析グレードとして、トリプシンのリジン残基を還元メチル化して自己消化に対する抵抗性を高めたものが市販されている。
　本発明の方法において好適に使用できるプロテアーゼとして、例えばTrypsin Gold（プロメガ社製）、Trypsin TPCK-treated（Sigma Aldrich社製）が挙げられる。
＜ナノ粒子へのプロテアーゼの固定化＞
　プロテアーゼをナノ粒子の表面に固定化する方法は特に限定されず、プロテアーゼとナノ粒子（あるいはナノ粒子表面を修飾するスペーサ分子）の特性等に応じて適宜の方法を採用でき、例えば、プロテアーゼをスペーサ修飾されたナノ粒子表面に固定化する場合は、ナノ粒子の懸濁液とプロテアーゼを含む溶液とを混合することにより、ナノ粒子表面にプロテアーゼを固定化できる。上記のスペーサ分子の官能基を介したナノ粒子とプロテアーゼのアミンカップリング法が好ましい。例えば、ナノ粒子に表面修飾したカルボキシル基をN-ヒドロキシスクシンイミド（NHS）でエステル化して活性化エステル基とし、これに、プロテアーゼのアミノ基を結合させることができる。このカップリング反応には、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド(EDAC)、N,N'-ジシクロヘキシルカルボジイミド（DCC)、ビス（2,6-ジイソプロピルフェニル）カルボジイミド（DIPC)等のカルボジイミドを縮合剤の存在下に行うことができる。また、ナノ粒子に表面修飾したアミノ基に、グルタルアルデヒド、2官能性スクシンイミド、ビス（スルホスクシンイミジル）スベレート（BS3)、スルホニルクロリド、マレイミド、ピリジルジスルフィド等の架橋剤を用いてプロテアーゼのアミノ基を結合させてもよい。
　スペーサ分子の官能基を介したナノ粒子とプロテアーゼのカップリング法は、ナノ粒子の懸濁液にプロテアーゼ溶液を添加し、一定の条件下で混合撹拌するという簡便な操作で行うことができる。
　ナノ粒子表面にプロテアーゼを固定化後に、ナノ粒子表面のプロテアーゼと未結合の活性部分を不活性化させることが好ましい。例えば、ナノ粒子表面にプロテアーゼが固定化されていないスペーサ分子が存在すると、未結合のスペーサ分子が、試料中の夾雑物等と結合して、プロテアーゼ消化に悪影響を及ぼしたり、プロテアーゼ消化により産生されたペプチド断片がナノ粒子に固定化される等の不具合を生じる場合がある。プロテアーゼを固定化後に、未結合のスペーサ分子をブロックすることにより、このような不具合が抑制される。プロテアーゼと未結合の活性部分を不活性化する方法としては、化学修飾が好ましい。例えば、活性化エステル基は、一級アミンとの反応によりアミド結合を形成して不活性化させることができる。
＜プロテアーゼ消化＞
　抗体が固定化された多孔質体と、プロテアーゼが表面に固定化されたナノ粒子とを液体中で接触させることにより、抗体がプロテアーゼ消化され、ペプチド断片が産生される。ここで、「液体」とは、基質（固相）及び酵素（固相）が液相中で接触することを意味するものであり、またプロテアーゼ消化反応に適した水性媒体を意図する。
　本発明におけるプロテアーゼ消化の条件は特に限定されず、一般的なプロテアーゼ消化と同様の条件を適宜に採用できる。例えば、プロテアーゼの至適ｐＨ近傍に調整された緩衝溶液中で、通常３７℃程度の温度で、１時間～２０時間程度インキュベートすることが好ましい。
　抗体が固定化された多孔質体と、プロテアーゼが表面に固定化されたナノ粒子との混合量比も特に制限されず、抗体の量に応じたプロテアーゼ量となるように設定すればよい。なお、一般的なプロテアーゼ消化条件は、基質：プロテアーゼ＝１００：１～２０：１（重量比）程度である。これに対して、本発明では、多孔質体とナノ粒子との組み合わせにより、抗体とプロテアーゼとのアクセスが物理的に制限されるため、一般的なプロテアーゼ消化に比べて、プロテアーゼ量を多くすることが好ましい。例えば、抗体：プロテアーゼ＝３０：１～３：１程度が好ましく、１５：１～４：１程度がより好ましく、１０：１～５：１程度がさらに好ましい。
　本発明の方法では、多孔質体に抗体を固定化させたままの状態でプロテアーゼ消化が行われる。プロテアーゼ消化により産生されたペプチド断片は液相内に存在するため、抗体の溶出や変性操作を行うことなく、位置選択的に目的のペプチド断片が得られる。本発明の方法によれば、従来法に比して簡便な操作で、かつ位置選択的にペプチド断片の回収を行うことができる。
　より具体的には、例えば細孔径１００ｎｍのProtein G樹脂上に抗体のC末端側を固定化し、抗体の可変領域は必ず溶液側に配向するようにする。次に、粒子径２００ｎｍのナノ粒子表面にプロテアーゼを固定化する。プロテアーゼの抗体への接触を制限することで、可変領域選択的な抗体分解反応を行う反応場を形成することが可能となる。また相対表面積の非常に大きなナノ粒子表面をプロテアーゼ反応場として用いることで、抗原との接触確率を向上させることが可能となる。
　プロテアーゼ消化は、特に限定するものではないが、緩やかな回転による撹拌とともに定期的なタッピングを伴うタッピングローテーション下で行うことができる。「緩やかな回転」は、例えば３～１０ｒｐｍ程度の回転数を指し、また、「タッピング」は、弾くような、若しくは、ショックを与えるような瞬間動作（頻度：例えば、１分間あたり１～５回、好ましくは２～４回）を指す。これによって、抗体を固定化した多孔質体とプロテアーゼを固定化したナノ粒子が共に分散状態を保持しながら効果的に接触し、プロテアーゼ消化反応効率を高めることができる。
＜多孔質体及びナノ粒子の除去＞
　プロテアーゼ消化によって得られた目的のペプチド断片を質量分析に供するためには、多孔質体及びナノ粒子を除去することが必要である。これは、プロテアーゼ消化後のサンプルに対してろ過、遠心分離、磁気分離、透析等の操作を行うことで達成できる。
　ろ過によって多孔質体及びナノ粒子を除去する場合、使用するろ過膜の孔径は、上記の多孔質体及びナノ粒子が通過できず、かつ消化されたペプチドの通過を可能とする範囲で選択される。例えばポリフッ化ビニリデン（PVDF）製のろ過膜（Low-binding hydrophilic PVDF、孔径0.2μm、ミリポア社製）、ポリテトラフルオロエチレン（PTFE）製のろ過膜（Low-binding hydrophilic PTFE、孔径0.2μm、ミリポア社製）等を用いてろ過することにより、多孔質体及びナノ粒子を簡便に除去することができる。ろ過は、遠心ろ過とすると迅速かつ簡便なろ過が可能である。
　ろ過膜は、限定するものではないが、遠心ろ過を可能とする二重構造のフィルターチューブ形態のものを好適に使用することができる。例えば一サンプルの調製のためには0.2μmの濾過膜スピンフィルター、例えばミリポア　ウルトラフリーPVDF、0.2μmやミリポア　UFC30LG00　ウルトラフリー-C3LCR、0.2μmを使用することが好適である。また、複数のサンプルを同時に調製するためには0.2μmのろ過膜プレート、例えばミリポア　マルチスクリーンPVDF、Barex、0.2 μmを好適に使用することができる。
　これらのチューブ形態のろ過膜を使用する場合、チューブをプロテアーゼ消化反応のための反応容器として使用することができる。この場合、プロテアーゼを固定化したナノ粒子と抗体を固定化した多孔質体とを反応のための媒体（緩衝液を含む）をチューブ内に入れてプロテアーゼ消化を行うことができる。あるいはまた、サンプル中の抗体の多孔質体への固定化をチューブ内で行い、洗浄操作を行った後に、プロテアーゼを固定化したナノ粒子を添加することもできる。当業者であれば、本発明のキットを用いたプロテアーゼ消化反応、多孔質体及びナノ粒子の除去等の一連の操作手順を適宜改変することができる。
＜液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）＞
　上記で得られたペプチド断片を含む試料を、LC-MSにより分析することで、抗体の同定や定量を行い得る。
　ペプチド断片の分離をより確実として、分析精度を高める等の目的で、質量分析に供する前の試料を、液体クロマトグラフ（LC）により、分離・濃縮する。LCにより試料の分離を行う場合、LCからの溶出液を直接イオン化して質量分析に供しても良い。LCとタンデム質量分析を組み合わせたLC/MS/MSやLC/MSnにより分析を行うこともできる。また、LCからの溶出液を一度分取してから、質量分析に供してもよい。LCのカラムは特に限定されず、ペプチドの分析に一般的に用いられるC30、C18、C8、C4等の疎水カラムや、親水性アフィニティークロマトグラフィー用の担体等を適宜に選択して用いることができる。
　質量分析は、アミノ酸配列を決定可能であるため、ペプチド断片が抗体等の特定のタンパク質に由来のペプチド断片であるか否かを判別可能である。また、ピーク強度に基づいて試料中のペプチド断片の濃度を決定できる。本発明では、抗体が位置選択的にプロテアーゼ処理されるため、試料中に含まれるペプチド断片の種類が減少されている。そのため、質量分析等による分析条件の設定を容易になし得る。分析に際しては、必要に応じて、脱塩、可溶化、抽出、濃縮、乾燥等の処理を行った後、試料を分析に用いてもよい。
　質量分析におけるイオン化法は特に限定されず、電子イオン化（EI）法、化学イオン化（CI）法、電界脱離（FD）法、高速原子衝突（FAB）法、マトリクス支援レーザー脱離イオン化（MALDI）法、エレクトロスプレーイオン化（ESI）法等を採用し得る。イオン化された試料の分析方法も特に限定されず、磁場偏向型、四重極（Ｑ）型、イオントラップ（IT）型、飛行時間（TOF）型、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴（FT-ICR）型等を、イオン化法に応じて適宜に決定できる。また、三連四重極型質量分析装置等を用いて、MS/MS分析、あるいはMS3以上の多段階質量分析を行うこともできる。
　本発明の方法の使用において特に適した装置は、特に限定するものではないが、例えばLCMS-8030、LCMS-8040、LCMS-8050、及びLCMS-8080（いずれも島津製作所）、LCMS-IT-TOF、LCMS-Q-TOF（島津製作所）を挙げることができる。
　質量分析結果に基づいて、抗体を同定するために、既存のデータベースを用いることもできる。本発明では、抗体が位置特異的にプロテアーゼ消化されたペプチド断片が用いられるため、データベース検索によるヒット率やデータの確度が高められる。また、多段階の質量分析等により、ペプチド断片のアミノ酸配列を特定することにより、抗体を同定することもできる。抗体に特異的なアミノ酸配列、例えばCDR2領域のアミノ酸を含むアミノ酸配列を有するペプチド断片が検出できれば、目的の抗体を同定・定量することができる。
　なお、検出結果に基づいて、抗体の同定や定量を行う場合、検出対象のペプチドは、アミノ酸残基数が５～３０程度のものが好ましく、７～２５程度がより好ましい。アミノ酸残基数が過度に小さいと、夾雑物や同一タンパク質の別の部位に由来するペプチド断片との区別がつき難く、誤検出等の原因となり得る。また、アミノ酸残基数が過度に大きいと、イオン化が困難となる等の理由により、検出が困難となったり、定量性が低下する場合がある。
　抗体の濃度を定量する場合、検出されたペプチド断片イオン（多段階MSの場合は、親イオンの開裂により得られたフラグメントイオン）のピーク面積やピーク強度に基づいて、抗体の量を算出できる。例えば、予め求められた検量線（較正曲線）とピーク面積との関連付けや、試料中に添加された内部標準に由来するピーク面積と試料由来のピーク面積との関連付け等によって、試料中のペプチド断片の濃度が算出され、ペプチド断片濃度に基づいて、抗体の量や濃度が算出される。
＜本発明のサンプル調製用キット＞
　本発明は、上記した高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によってモノクローナル抗体を検出する方法において使用するためのサンプル調製用キットであって、
　　測定対象のモノクローナル抗体を固定化するための多孔質体と、
　　プロテアーゼを固定化したナノ粒子と、
　　前記多孔質体と前記ナノ粒子とを接触させてモノクローナル抗体を選択的に消化するための反応容器と、
　　前記ナノ粒子及び多孔質体と共に前記反応容器内に導入され、前記プロテアーゼによる消化反応をさせるための緩衝液と、
　　前記消化反応後に前記多孔質体および前記ナノ粒子を除去して、前記消化反応の生成物を前記緩衝液と共に抽出するためのろ過膜と、
を含む、上記キットに関する。
　質量分析による測定は、非常に高精度な分析ができる一方、適切なサンプル調製と適正な分析条件の設定が非常に重要である。例えば臨床の場においてより簡便に正確な検査結果が得られるようにするために、本発明は、上記の方法を実施するために利用できるサンプル調製用キットを提供する。
　本発明のキットに含まれる多孔質体及びナノ粒子は、上記した通りである。反応容器としては、多孔質体に固定化されたモノクローナル抗体と、ナノ粒子に固定化されたプロテアーゼとを液相中で接触させることが可能な容器であればいずれでも良く、特に限定するものではないが、質量分析で検出するサンプル調製用であることを考慮すれば、マイクロチューブやプレートとすることが好ましい。反応のために行うボルテックス又はローテーターによる混合、反応後のペプチドと多孔質体及びナノ粒子との分離のためのろ過等の反応工程を考慮して、当業者であれば適切な反応容器を想定することができる。
　本発明のキットに含まれる緩衝液は、前記ナノ粒子及び多孔質体と共に前記反応容器内に導入され、前記プロテアーゼによる消化反応をさせるためのものであって、プロテアーゼ消化のために適した反応条件を提供するものである。反応条件は、選択されるプロテアーゼ等によって、適宜決定することができ、緩衝液の組成も適宜決定することができる。
　本発明のキットはまた、プロテアーゼ消化反応後に前記多孔質体および前記ナノ粒子を除去して、消化反応の生成物を前記緩衝液と共に抽出するためのろ過膜を含む。プロテアーゼ消化によって得られた目的のペプチド断片を質量分析に供するためには、多孔質体及びナノ粒子を除去することが必要である。
　また、本発明のキットにおけるろ過膜は、圧力又は遠心力を加えない条件下では緩衝液及びプロテアーゼ消化によって生成するペプチドをほとんど透過せずに「反応容器の底」として機能し、かつ遠心分離等の操作の際には緩衝液及びペプチドを透過することができる「ザル」として機能するものであることが好ましい。
　ろ過膜が緩衝液及びペプチドを透過することができるために加える遠心分離条件としては、限定するものではないが、例えば3,000～10,000gの範囲が好ましい。
　本発明のキットにおいて好適に使用可能なろ過膜としては、例えばポリフッ化ビニリデン（PVDF）製のろ過膜（Low-binding hydrophilic PVDF、孔径0.2μm、ミリポア社製）を挙げることができる。
　キットが多検体を同時に処理するためのキットである場合、例えばろ過膜がPVDF製であり、ハウジング素材がポリアクリロニトリル樹脂、例えばBarex(登録商標)（三井化学ファイン株式会社製）であるものを使用することができる。
　本発明のキットにはまた、キットの使用方法、及び／又はモノクローナル抗体の検出のための質量分析条件を記載した説明書を含めることができる。
　本発明のキットはまた、１以上の内部標準ペプチドを含めることができる。内部標準ペプチドは、検体と同時に、又は別個に、同じ条件で分析することで、より確実な分析結果を提供する。内部標準ペプチドは、測定対象のモノクローナル抗体の特異的アミノ酸配列を含み、本発明のキットに含まれるプロテアーゼによる消化によって生じるペプチドとする。
　例えば測定対象がトラスツズマブ、トラスツズマブ-DM1、ベバシズマブ、またはリツキシマブである場合、内部標準ペプチドは配列番号１～４７のいずれか１以上のアミノ酸配列を有するペプチドから選択することができる。
　より具体的には、測定対象のモノクローナル抗体がトラスツズマブ又はトラスツズマブ-DM1であって、プロテアーゼがTrypsin Gold（プロメガ社製）の場合、内部標準ペプチドは配列番号１～７で示されるアミノ酸配列を有するペプチドの１以上とすることができる。
　測定対象のモノクローナル抗体がベバシズマブであって、プロテアーゼがTrypsin Gold（プロメガ社製）の場合、内部標準ペプチドは配列番号８～１２で示されるアミノ酸配列を有するペプチドの１以上とすることができる。
　測定対象のモノクローナル抗体がリツキシマブであって、プロテアーゼがTrypsin Gold（プロメガ社製）の場合、内部標準ペプチドは配列番号１３～１９で示されるアミノ酸配列を有するペプチドの１以上とすることができる。
　測定対象のモノクローナル抗体がトラスツズマブ又はトラスツズマブ-DM1であって、プロテアーゼがTrypsin TPCK-treated（シグマ社製）の場合、内部標準ペプチドは配列番号１～７で示されるアミノ酸配列を有するペプチドに加えて、配列番号２０～２８、４６及び４７で示されるアミノ酸配列を有するペプチドの１以上とすることができる。
　測定対象のモノクローナル抗体がベバシズマブであって、プロテアーゼがTrypsin TPCK-treated（シグマ社製）の場合、内部標準ペプチドは配列番号８～１２で示されるアミノ酸配列を有するペプチドに加えて、配列番号２９～３８で示されるアミノ酸配列を有するペプチドの１以上とすることができる。
　測定対象のモノクローナル抗体がリツキシマブであって、プロテアーゼがTrypsin TPCK-treated（シグマ社製）の場合、内部標準ペプチドは配列番号１３～１９で示されるアミノ酸配列を有するペプチドに加えて、配列番号３９～４５で示されるアミノ酸配列を有するペプチドの１以上とすることができる。
　内部標準ペプチドは、測定対象となるモノクローナル抗体に特異的なアミノ酸配列を含むペプチド、より具体的にはFaドメインのアミノ酸配列、より好ましくは重鎖又は軽鎖のCDR2領域由来のアミノ酸を含むアミノ酸配列からなるペプチドとすることが好ましい。
　本発明のキットを使用することにより、モノクローナル抗体の同定・定量のためのペプチド断片調製の操作をより簡便にすることができ、装置による自動化も容易になし得る。特に、トリプシン等は、ナノ粒子表面に固定化された状態でも活性を保持し得るため、プロテアーゼがナノ粒子表面に固定化された状態でキットの構成要素として提供されれば、ペプチド断片調製の操作をさらに簡略化できる。
　本発明のキットは、より具体的には、例えば以下のような構成で提供される。
＜１．シングル分析用＞
　一サンプルずつ分析するための試薬キットは、例えば以下の構成のものである。
　　0.2μmのろ過膜スピンフィルター（ミリポア　ウルトラフリーPVDF、0.2μm）
　　細孔径100 nmのProtein G樹脂スラリー（4℃保存）
　　粒子径200 nmのナノ粒子に固定化されたトリプシンビーズ（-20℃保存）
　　血漿希釈用低吸着チューブ
　　溶液回収マイクロチューブ
　　血漿希釈用バッファー（PBS + 0.1% n-オクチル-β-D-チオグリコシドもしくは相当する界面活性剤、例えばn-オクチル-β-D-グリコシド）
　　ビーズ洗浄用バッファー（PBS）
　　プロテアーゼ反応用バッファー（25 mM Tris-HCl, pH 8.0 + プロテアーゼ反応促進添加剤）
　　10%ギ酸水溶液
　　使用説明書
＜２．マルチサンプル分析用＞
　例えば96サンプル同時分析を可能とする多検体処理用の試薬キットは、例えば以下の構成のものである。
　　0.2μmのろ過膜プレート（ミリポア　マルチスクリーンPVDF、Barex、0.2 μm）
　　細孔径100 nmのProtein G樹脂スラリー（4℃保存）
　　粒子径200 nmのナノ粒子に固定化されたトリプシンおよびプロテアーゼビーズ（-20℃保存）
　　血漿希釈用低吸着プレート
　　溶液回収用プレート
　　溶液廃棄用プレートリザーバー
　　プロテアーゼビーズ用プレート
　　血漿希釈用バッファー（PBS + 0.1% n-オクチル-β-D-チオグリコシドもしくは相当する界面活性剤、例えばn-オクチル-β-D-グリコシド）
　　ビーズ洗浄用バッファー（PBS）
　　プロテアーゼ反応用バッファー（25 mM Tris-HCl, pH 8.0 + プロテアーゼ反応促進添加剤）
　　10%ギ酸水溶液
　　プレートカバーシール
　　オートサンプラー用DMSO耐性、ニードルピアシブルプレートカバーシール
　　使用説明書
＜３．付加的試薬＞
　本発明のキットに場合によって含めるものとして、例えば内部標準ペプチドがある。これは、バイオ医薬品定量用ペプチドの定量精度を高めるためのものであって、バイオ医薬ごとに複数のペプチドを用意し、別売することが望ましい。内部標準ペプチドには、安定同位体アミノ酸でラベルしたものを含めても良く、その場合、同位体を含まないペプチドと比較すると質量分析定量条件が異なるため、内部標準用定量条件を同封することが好ましい。
＜構成：＞
　　内部標準ペプチド（例えばトラスツズマブ用として、配列番号１～７のペプチドのいずれか１以上）
　　試薬品質保証データ（質量分析データ、および原子純度測定結果）
　　定量条件ファイルパッケージ
　　使用説明書
＜メソッドパッケージ＞
　本発明はまた、測定対象のモノクローナル抗体を細孔内に固定化した多孔質体と、トリプシンを固定化したナノ粒子とを液体中で接触させてモノクローナル抗体の選択的トリプシン消化を行い、得られたペプチド断片を高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によって分析することによって前記モノクローナル抗体の検出を行う方法に使用するための、メソッドパッケージを提供する。本明細書において、「メソッドパッケージ」とは、特定の測定対象に対する液体クロマトグラフ質量分析の分析条件を読取り可能な形態で含み、単独で流通可能なものをいう。メソッドパッケージに含まれるデータをLC-MSにインポートすることで、詳細な検討の末に得られた最適測定条件で分析することが可能となる。
　上記した通り、質量分析による測定は、非常に高精度な分析ができる一方、目的のイオンによって分析条件が全く異なってくるため、適正な分析条件の設定が非常に重要でありながら、非常に困難であり、条件設定のために膨大な時間を要する。こうした条件を予め準備しておくことで、実際に質量分析を行うユーザーの利便性を向上させることができる。本出願人はこれまでに、ユーザーが例えば農薬や動物医薬品の質量分析をより簡便に行うことを可能とするために、これらのLC-MSによる分析のためのメソッドパッケージを提供してきた。従って本発明は、試料中のモノクローナル抗体のLC-MSによる同定・定量のためのメソッドパッケージも提供する。
　すなわち、本発明は、測定対象のモノクローナル抗体を細孔内に固定化した多孔質体と、プロテアーゼを固定化したナノ粒子とを液体中で接触させてモノクローナル抗体の選択的プロテアーゼ消化を行い、得られたペプチド断片を高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によって分析することによって前記モノクローナル抗体の検出を行う方法に使用するための、前記質量分析を実行させるためのデータが記録されたコンピュータ読み取り可能な記録媒体であって、前記データが、限定するものではないが、例えば前記モノクローナル抗体のプロテアーゼ消化によって得られるペプチド、例えばFabドメイン、より好ましくはCDR領域のアミノ酸を含むアミノ酸配列を有するペプチドの1以上に対して、少なくとも親イオン、フラグメントイオン、予想保持時間、三連四重極のそれぞれ（第１四重極、第２四重極、第３四重極）における電圧のデータを含む、上記記録媒体を提供する。尚、上記の予想保持時間、電圧データ等は、使用する機器及び測定条件等によって変動する数値であり、機器に合わせて提供することが好ましい。また、当業者には理解されるように、条件によって変動する数値についてはその変動幅も併せて提供することが好ましい。
　記録媒体はどのような形態のものでも良く、特に限定するものではない。例えば情報を磁気的、光学的に記録することが可能なディスクやメモリを挙げることができる。
　より具体的には、上記のメソッドパッケージ中には、例えば以下の情報及びソフト機能を含むことができる。
　　・最適化※されたペアレントイオンm/z値
　　・最適化されたフラグメントイオンm/z値
　　・最適化されたQ1 pre bias電圧値
　　・最適化されたQ2 collision energy電圧値
　　・最適化されたQ3 pre bias電圧値
　　・目的イオンの予想保持時間および質量分析時間
　　・定量値換算式
　　・解析結果レポート出力機能
※：各条件項目を実測し、最もイオン強度の高いもの、および最も再現性のあるm/z値を採択し、これを最適値とする。
　本発明はまた、上記の記録媒体と、記録媒体の使用説明書とを含む、高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によるモノクローナル抗体の検出のためのメソッドパッケージを提供する。
　上記の記録媒体又はメソッドパッケージの例として、特定のモノクローナル抗体に限定した情報のみを含むものが挙げられる。従って、モノクローナル抗体が、例えばトラスツズマブ、トラスツズマブ-DM1、ベバシズマブ、又はリツキシマブである場合、それらに適した分析条件を記載した記録媒体またはメソッドパッケージを提供することができる。
　この場合、記録媒体に含まれるデータは、例えば配列番号１～４７のいずれか１以上のアミノ酸配列を有するペプチドに対する分析条件に関するものとすることができる。
　メソッドパッケージは、複数の質量分析装置で共通のデータを記載するものであっても良く、あるいは特定の質量分析装置による分析に適した種々のデータを記載するものであっても良い。
　記録媒体又はメソッドパッケージは、上記の本発明のキットと併せて、あるいはキットと別個に提供することができる。
　以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
［実施例１　サンプル調製用キット］
　単一サンプルの分析のために、以下の構成のキットを準備する。
(1)　　PBS緩衝液（PBS + 0.1% n-オクチル-β-D-チオグルコシド, Dojindo）
(2)　　酵素反応緩衝液（25 mM Tris-HCl, pH8.0）
(3)　　酵素反応停止液（10% ギ酸）
(4)　　フィルターチューブ（Low-binding hydrophilic PVDF、孔径0.2μm、ミリポア社）
(5)　　低吸着チューブ（リッチェル マイクロレシコチューブ 92017）
(6)　　LCMSバイアル、インサート（島津GLC GLC4010-VPターゲットバイアルVP、C4010-630P Target PP Polyspring）
(7)　　多孔質体（Pierce 53126 Protein G UltraLink Resin、40 μl分注）
(8)　　ナノ粒子（トリプシン固定化FGビーズ（トリプシン 40 μg））
(9)　　使用説明書
＜プロトコール（使用説明書(9)に記載）＞
1.　血液サンプル20 μlを低吸着チューブ(5)にとり、緩衝液(1)を180 μlで希釈する。
2.　多孔質体(7)を卓上遠心機にて遠心し、上清を捨てる。緩衝液(1)を100 μl加え、軽く攪拌後遠心し、上清を捨てる。この操作を3回行う。その後40 μlの緩衝液(1)を加え懸濁した後、フィルターチューブ(4)へ移す。この操作はフィルターチューブ(4)上で行ってもよい。
3.　ステップ1の血液希釈サンプルを、フィルターチューブ(4)へ移す。
4.　タッピングロータリーミキサー（日伸理化）で軽くタッピングしながら、室温で1時間攪拌する。
5.　遠心ろ過（10,000g x 1 分）し、溶液を分離する。緩衝液(1)を200 μl加え遠心ろ過し、ろ液を廃棄する。この操作を3回行う。
6.　PBS緩衝液(1)を200 μl加え、軽く攪拌後遠心ろ過し、ろ液を捨てる。この操作を1回行う。
7.　ステップ6の多孔質体に、緩衝液(2)を200μl加える。
8.　ナノ粒子(8)を氷上で溶解する。手早く超音波洗浄機もしくはボルテックスミキサーで均一に分散し、ステップ7へ加える。
9.　フィルターチューブに溶液回収用チューブをとりつけ、ふた側にパラフィルムなどを用いシールをする。タッピングロータリーミキサーで軽くタッピングしながら、37℃で6時間攪拌して、タンパク質分解を行う。
10.　反応混合液を遠心ろ過（10,000g x 1 分）し、樹脂を除去する。ろ液を回収する。
11.　ステップ10に、酵素反応停止液(3)を15 μl加える。
12.　LC-MSバイアルセット(6)に移し、底の気泡を除去する。
13.　LC-MSのオートサンプラーにセットし、分析を行う。
14.　LC-MS分析条件リストは、別紙添付する（表１～表６）。
＜抗体医薬定量用ペプチドの質量分析条件（記録媒体に含める）＞
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000004
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
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Figure JPOXMLDOC01-appb-I000012
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000014
Figure JPOXMLDOC01-appb-I000015
［実施例２　ろ過膜の検討１］
　ろ過に使用する膜素材によるペプチド回収率の相違を検証するため、ポリテトラフルオロエチレン（polytetrafluoroethylene、PTFE）およびポリフッ化ビニリデン（polyvinylidene difluoride、PVDF）の2つの膜素材を比較した。
　回収率の検証は、100μg/mlトラスツズマブを開始とし、3倍希釈系列を作成（N=4）し、トリプシンを固定化したナノ粒子（Trypsin TPCK treated）にてプロテアーゼ消化を行った後、配列を記載したそれぞれのペプチド（LFPPKPK(配列番号４６)、LYSGVPSR(配列番号２１)、FTISADTSK(配列番号３)、ASQDVNTAVAWYQQKPGK(配列番号４７)、GLEWVAR(配列番号６)、DTYIHWVR(配列番号５)）に対し、質量分析法（LCMS-8040(島津製作所社製)）にてペプチド回収率を定量した。PRFEの結果を基準としたPVDFの結果を相対値（変化倍率）として図２に示す。有意差検定はT検定を用い、p < 0.05（*）、p < 0.01（**）をマークした。
　その結果、高濃度のペプチドの場合は差がないが、ペプチドが低濃度の場合には回収率に大きな有意差が生じ、ろ過膜としてPVDFが好適であることが判明した。
［実施例３　ろ過膜の検討２］
　実施例２と同様の実験を、ベバシズマブを用いて検証した。結果を図３に示す。
　その結果、実施例２と同様に、高濃度のペプチドの場合は差がないが、ペプチドが低濃度の場合には回収率に大きな有意差が生じ、ろ過膜としてPVDFが好適であることが判明した。
［実施例４　ろ過膜の検討３］
　多検体の測定に用いるためのろ過膜プレートのペプチド回収率を検証するため、2つの膜素材（PTFE、PVDF）およびハウジング3種を比較した。マルチスクリーンプレートとして、1) PTFE membrane/Solvinert housing（メルク社）、2) PVDF membrane/Acryl clear housing（メルク社）、3) PVDF membrane/Barex white housing（メルク社）を用いて比較した。
　回収率の検証は、400μg/mlトラスツズマブを開始とし、2倍希釈系列を作成（N=4）し、酵素消化を行った後、それぞれのペプチドに対し、回収率を質量分析法（LCMS-8040）にて定量した。結果を図４に示す。有意差検定はT検定を用い、p < 0.05（*）, p < 0.01（**）をマークした。
　その結果、ペプチドの高濃度側ではPTFEが優位だが、低濃度側ではPVDFが勝っていた。臨床的には5-20μg/mlが求められるペプチド濃度範囲であるため、PFDV Barexを選定することが有効と判定した。Barex樹脂を用いた場合の高濃度のペプチドでの飽和については、タンパク質成分の凝集が考えられる。臨床的に想定される血液サンプルでは、多量に抗体が含まれること、および界面活性剤での洗浄工程があるため、この飽和現象は解消されるものと考えられる。尚、アクリル樹脂は物理吸着によるペプチドロスが大きく、選定から除外した。
［実施例５　プロテアーゼ活性の安定性評価］
　ナノ粒子に固定化するプロテアーゼ（トリプシン）の活性の安定性をモニターするために、酵素活性測定を行った。ナノ粒子が基質吸光度を阻害するので、従来法に対し、いくつかの改変を加えた。
　プロテアーゼとしてTrypsin Gold, Mass Spec Grade（プロメガ社製）(以下、「Gold」と表記する）およびTrypsin TPCK Treated from bovine pancreas, Product Number T1426（Sigma Aldrich社製）(以下、「TPCK」と表記する）の2種のトリプシン、ならびに「Gold」、「TPCK」をそれぞれ実施例１に記載のキットを用いてナノ粒子に固定化した「FG-Gold」、「FG-TPCK」を用いて、種々の条件下で酵素反応を行い、酵素安定性を調べた。尚、「Gold」は、キモトリプシン失活処理（TPCK処理）に加え、還元ジメチル化反応を施すことによって、自己消化に対して抵抗性を有し、温度やpHに依存することなくブロードに高い活性を維持している質量分析グレードのプロテアーゼである。一方、「TPCK」は、キモトリプシン失活処理をしているが、キモトリプシンが残存するプロテアーゼである。
　基質として、N-α-ベンゾイル-DL-アルギニン-p-ニトロアニリド塩酸塩（MW=434.9）を用い、加水分解反応により基質より遊離するパラニトロアニリン（p-NA）の吸光度（405 nm, 吸光係数＝9920 M-1・cm-1）を測定することで酵素活性を測定した。
＜プロトコール＞
　プロテアーゼ基質を終濃度10 mMとなるよう、DMSOに溶解し、ストック溶液とする。
下記のように混合する。
・基質　10μl（100 nmol）
・反応緩衝液（50 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, pH8.0）　200μl
・固定化酵素懸濁液（0.5 mg/ml）　2μl
　ナノ粒子（FGビーズ）自体の懸濁による吸光度、および壁面への物理吸着によるFGビーズのロスがあるため、コントロールとして基質なしのサンプルウェルを作り、同時測定を行う。各サンプルN=2の測定をし、平均値を吸光度とする。FGビーズは、添加前に十分懸濁する。
　それぞれの条件でプロテアーゼ消化反応を1.5時間、ボルテックス攪拌下にて行った。反応終了時は、2N-HClを50 ml加えて反応を完全に停止した。マルチスクリーンフィルタープレート（ミリポア　マルチスクリーンPVDF、Barex、0.2 μm）でろ過し、ナノ粒子を除去後、オプティカルボトムプレート（コスモ・バイオ株式会社製）に分注し、マイクロプレートリーダー(TECAN Infinite M200Pro、テカンジャパン株式会社製)を用いて基質より遊離したパラニトロアニリン（p-NA）の吸光度（405 nm, 吸光係数＝9920 M-1・cm-1）を測定し、酵素活性を評価した。
　25℃室温にて、1 分ごとに装置内ボルテックス攪拌直後に吸光度測定、120回連続測定を行う。吸光度増加に伴う近似直線を作成し、その傾きを酵素反応速度とする。
　トリプシンを固定化したナノ粒子は、4℃および-20℃にて保存し、約3ヶ月モニターすることで、その酵素活性を評価した。結果を図５に示すように、保存安定性は温度に左右されることはなく、キットとして提供するにあたり、保管温度は4℃とすれば良いことが判明した。
［実施例６　スケールアップによる影響評価］
　プロテアーゼ固定化ナノ粒子の大量製造に対し、プロテアーゼ活性に変化が生じるか否かを検証した。測定方法は、実施例５と同様の改変に加え、反応緩衝液を50 mM Tris-HCl、pH8.0に変更した。
　比較のために、初期仕込みナノ粒子量をラボスケール（5 mg、Scale A）、ミリグラムスケール（20 mg、Scale B）、ラージスケール（200 mg、Scale C）で比較を行った。酵素活性は約2ヶ月モニターを行った。結果を図６に示す。
　その結果、スケールアップによる酵素活性の低下はないものと判断できた。
［実施例７　スケールアップによる影響評価］
　ナノ粒子の大量製造に伴い、洗浄工程が不十分となる可能性が考えられる。洗浄工程の効率化を図る目的で、固定化後の洗浄液に界面活性剤を使用し、その効果を検証した。
　酵素活性評価の結果、
　　マスキングなし（detergent -）FGビーズトリプシン：5.784E-03
　　マスキングあり（detergent +）FGビーズトリプシン：5.902E-03
となり、界面活性剤洗浄による酵素失活はないと判断できた。
　本発明のキットを用いれば、試料中のモノクローナル抗体の同定・定量が簡便となり、かつ手技の誤差を減らすことが可能である。また、対象となるイオン種が決定されているため、ユーザーの質量分析条件の設定は不要である。
　特に抗体医薬の質量分析による濃度定量技術は、現行ELISA法を置き換えるポテンシャルがあり、本発明は臨床薬理分野への進出、マーケット拡大に貢献し得る。
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。

Claims (11)

  1. 　高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によってモノクローナル抗体を検出するためのサンプル調製用キットであって、
    　　測定対象のモノクローナル抗体を固定化するための多孔質体と、
    　　プロテアーゼを固定化したナノ粒子と、
    　　前記多孔質体と前記ナノ粒子とを接触させてモノクローナル抗体を選択的に消化するための反応容器と、
    　　前記ナノ粒子及び多孔質体と共に前記反応容器内に導入され、前記プロテアーゼによる消化反応をさせるための緩衝液と、
    　　前記消化反応後に前記多孔質体および前記ナノ粒子を除去して、前記消化反応の生成物を前記緩衝液と共に抽出するためのろ過膜と、
    を含む、上記キット。
  2. 　前記ろ過膜が、圧力又は遠心力を加えない条件下では前記緩衝液及び前記プロテアーゼによる消化反応によって生成するペプチドをほとんど透過せず、圧力又は遠心力を加えた条件下では前記緩衝液及び前記ペプチドを透過することができるものである、請求項１記載のキット。
  3. 　前記ろ過膜がポリフッ化ビニリデン（PVDF）製の膜である、請求項１または２記載のキット。
  4. 　前記キットが多検体を同時に処理するためのキットであり、前記ろ過膜のハウジング素材がポリアクリロニトリル樹脂である、請求項１～３のいずれか１項記載のキット。
  5. 　請求項１～４のいずれか１項記載のキットに、更にモノクローナル抗体の検出のための質量分析条件を記載した説明書を含む、高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によるモノクローナル抗体検出のためのキット。
  6. 　測定対象となるモノクローナル抗体に特異的なアミノ酸配列を含む１以上の内部標準ペプチドを更に含む、請求項１～５のいずれか１項記載のキット。
  7. 　測定対象がトラスツズマブ、トラスツズマブ-DM1、ベバシズマブ、またはリツキシマブであって、内部標準ペプチドが配列番号１～４７のいずれか１以上のアミノ酸配列を有するペプチドである、請求項６記載のキット。
  8. 　測定対象のモノクローナル抗体を細孔内に固定化した多孔質体と、プロテアーゼを固定化したナノ粒子とを液体中で接触させてモノクローナル抗体の選択的プロテアーゼ消化を行い、得られたペプチド断片を高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によって分析することによって前記モノクローナル抗体の検出を行う方法に使用するための、前記質量分析を実行させるためのデータが記録されたコンピュータ読み取り可能な記録媒体であって、前記データが、前記モノクローナル抗体のプロテアーゼ消化によって得られるペプチドの1以上に対して、少なくとも親イオン、フラグメントイオン、予想保持時間、三連四重極のそれぞれにおける電圧のデータを含む、上記記録媒体。
  9. 　請求項８記載の記録媒体と、前記記録媒体の使用説明書とを含む、高速液体クロマトグラフ質量分析（LC-MS）によるモノクローナル抗体の検出のためのメソッドパッケージ。
  10. 　前記モノクローナル抗体が、トラスツズマブ、トラスツズマブ-DM1、ベバシズマブ、リツキシマブの１種以上である、請求項８記載の記録媒体または請求項９記載のメソッドパッケージ。
  11. 　前記データが、配列番号１～４７のいずれか１以上のアミノ酸配列を有するペプチドに対するものである、請求項８記載の記録媒体または請求項９記載のメソッドパッケージ。
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Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2019130536A1 (ja) 2017-12-28 2019-07-04 株式会社島津製作所 モノクローナル抗体の簡素化された定量方法
WO2019155576A1 (ja) * 2018-02-08 2019-08-15 株式会社島津製作所 モノクローナル抗体の検出結果を向上する方法
JP2022526671A (ja) * 2019-04-11 2022-05-25 エンクリアー セラピーズ， インク． 脳脊髄液の改善の方法ならびにそのためのデバイスおよびシステム
CN114878289A (zh) * 2022-07-12 2022-08-09 北京大学 一种耐低温低盐的蓝藻藻胆体样品的制备方法
WO2022270126A1 (ja) 2021-06-23 2022-12-29 株式会社島津製作所 抗体を分析する方法
US12188942B2 (en) 2017-12-28 2025-01-07 Shimadzu Corporation Method for improving result monoclonal antibody detection
US12329930B2 (en) 2020-09-29 2025-06-17 Enclear Therapies, Inc. Subarachnoid fluid management method and system

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3270154B1 (en) * 2015-03-09 2020-03-04 Shimadzu Corporation Method for detecting a monoclonal antibody using mass spectrometry
JP7215467B2 (ja) * 2019-08-19 2023-01-31 株式会社島津製作所 ホルマリン固定パラフィン包埋組織試料からの抗体の分離、検出及び／又は分析方法
CN115552215A (zh) * 2020-05-08 2022-12-30 沃特世科技公司 用于热辅助酶消化的方法
CN112326816B (zh) * 2020-10-19 2021-07-20 广东莱恩医药研究院有限公司 一种定量检测血清中地舒单抗的液质联用方法

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4244694A (en) * 1978-03-31 1981-01-13 Union Carbide Corporation Reactor/separator device for use in automated solid phase immunoassay
JPS6321559A (ja) * 1986-07-16 1988-01-29 Matsushita Electric Ind Co Ltd ハプテンの酵素免疫測定法
US6803237B2 (en) * 2000-01-25 2004-10-12 Woods Hole Oceanographic Institution Sequential processing reaction vessel for chemical fractionation and analysis
EP1495323A2 (en) * 2002-04-05 2005-01-12 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Method for cleaving and deglycosylating antibodies to promote ligand binding
RU2461390C2 (ru) * 2005-01-28 2012-09-20 Галенбио, Инк. Иммунологически активные составы
JP2010515020A (ja) * 2006-12-21 2010-05-06 ノバルティス アーゲー 抗体定量法
WO2009029231A2 (en) * 2007-08-24 2009-03-05 Millipore Corporation Method of detecting filter extractables in biopharmaceutical products by liquid chromatography-mass spectrometry
JP2012197258A (ja) 2011-03-23 2012-10-18 Tohoku Univ 個別化治療診断のためのマーカータンパク質絶対量の定量方法
CN105518447B (zh) 2013-09-09 2018-01-16 株式会社岛津制作所 肽片段的制备方法及该方法中使用的肽片段制备用试剂盒、以及分析方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
IWAMOTO N: "Selective detection of complementarity-determining regions of monoclonal antibody by limiting protease access to the substrate: nano-surface and molecular- orientation limited proteolysis", ANALYST, vol. 139, no. 3, pages 576 - 580, XP055308690 *
MERCK MILLIPORE BUNSEKIYO FILTER CATALOG 2014, 2014, pages 17, 21, XP009504967 *
See also references of EP3270152A4 *

Cited By (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US12188942B2 (en) 2017-12-28 2025-01-07 Shimadzu Corporation Method for improving result monoclonal antibody detection
JPWO2019130536A1 (ja) * 2017-12-28 2020-10-22 株式会社島津製作所 モノクローナル抗体の簡素化された定量方法
US11209392B2 (en) 2017-12-28 2021-12-28 Shimadzu Corporation Simplified monoclonal antibody quantification method
WO2019130536A1 (ja) 2017-12-28 2019-07-04 株式会社島津製作所 モノクローナル抗体の簡素化された定量方法
WO2019155576A1 (ja) * 2018-02-08 2019-08-15 株式会社島津製作所 モノクローナル抗体の検出結果を向上する方法
JPWO2019155576A1 (ja) * 2018-02-08 2021-01-07 株式会社島津製作所 モノクローナル抗体の検出結果を向上する方法
JP7056675B2 (ja) 2018-02-08 2022-04-19 株式会社島津製作所 モノクローナル抗体の検出結果を向上する方法
JP2022526671A (ja) * 2019-04-11 2022-05-25 エンクリアー セラピーズ， インク． 脳脊髄液の改善の方法ならびにそのためのデバイスおよびシステム
US12329930B2 (en) 2020-09-29 2025-06-17 Enclear Therapies, Inc. Subarachnoid fluid management method and system
US12337140B2 (en) 2020-09-29 2025-06-24 Enclear Therapies, Inc. Subarachnoid fluid management method and system with varying rates
WO2022270126A1 (ja) 2021-06-23 2022-12-29 株式会社島津製作所 抗体を分析する方法
CN114878289B (zh) * 2022-07-12 2022-09-27 北京大学 一种耐低温低盐的蓝藻藻胆体样品的制备方法
CN114878289A (zh) * 2022-07-12 2022-08-09 北京大学 一种耐低温低盐的蓝藻藻胆体样品的制备方法

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